Name: Geçirgenliği için bir yöntem Drosophila Embriyolar (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: Keşfedin, Drosophila embriyolarında geçirgen kabuk hazırlama yöntemiyle küçük moleküllerin biyolojik aktivitesini nasıl test edebilirsiniz. Bu teknik, ilaç ve toksin etkilerini gelişim biyolojisi ve farmakoloji araştırmalarında incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu çalışma NIH/NIEHS R03ES021581 (MDR'ye verildi) ve Rochester Üniversitesi Çevre Sağlığı Merkezi (NIH/NIEHS P30 ES001247) tarafından desteklenmiştir.

1.. Fly Kültürler, Çözümleri ve Embriyo Taşıma Cihazlar hazırlanması <ol><li> Drosophila bir kafes kültürü hazırlayın. 10 cm üzüm-agar plakası ve maya macun bir nokta ile donatılmış bir kafes nüfus istenen soyunun 500 + çiftleşme sinekler yerleştirin. 25 ° C nem kontrollü inkübatör kültürünü korumak. Not: &#160; Cage kültürler tutarlı embriyo döşeme desenleri elde etmek için klima bir veya iki gün gerektirir. Maya hamur ile üzüm plakaları klima sırasında sabah ve bir kez akşam bir kez değiştirilir. </li><li> EPS hazırlayın. 37 ° C de yüzey aktif maddeler (kokamid DEA ve etoksillenmiş alkol) sıcak çözeltiler Pipet Küçük bir karıştırma çubuğu ile donatılmış bir cam sintilasyon şişesine d-limonen 18 mi. Pipet d-limonen 1 mi, iki yüzey (her biri% 5 nihai konsantrasyon) her biri. İyice karıştırın ve karıştırma çubuğu çıkarın. Not: EPS Bu stok çözeltisi, oda sıcaklığında yaklaşık 2 ay için iyidir. Çözelti37 ° C&#39;de ısıtıldı ve tam kullanımdan önce yüzey aktif çözünür hale getirmek için döndürülmüştür olmalıdır. Zaman içinde bir plastik çözülür gibi EPS ve d-limonen, bir cam kap içinde saklanmalıdır. </li><li> Embriyo dechorionation çözüm, kuluçka ortamları, boya ve ilaç çözümler hazırlayın. 25 ml H2O ve sığ bir kaba yer ağartıcının 25 ml karıştırın. Önceki reçeteye 1,12 göre modifiye temel kuluçka ortamını (MBIM) ve MBIM-T hazırlayın. Shields hazırlayın ve (Malzeme listesi) üreticinin protokolüne göre M3, hücre kültür ortamı ve PBS Sang. DMSO içinde 10 mM konsantrasyonu permeabilizasyon boyasının bir stok çözelti hazırlayın. </li><li> Embriyo işleme cihazları ve malzemeleri birleştirin: <ol><li> Dechorionation ve EPS tedavi sepeti (Şekil 1A bakınız) hazırlayın. Ince dişli bir testere ile bir tek 50 ml polipropilen santrifüj / kültür tüpü bir 3 cm bölümü kesin. Yapıştırılır Zımpara üzerinde tüp bölümü sürtünme tarafından kaynak yüzey floş olunbir tezgah üstü yüzeye. Kaynak, bir alev üzerinde tüp bölümün ağız eritilmesi ve bir cam plaka üzerine örgüye basarak Nitex naylon elek tüp bölümü. Serin edelim ve ekstra örgü keserek. NOT: Sırf taraf ve alt ilgili adımlar artık çamaşır suyu ve EPS kapalı hızlı ve tam durulama için izin verir. Kaynak adımlar, davlumbaz altında gerçekleştirilmelidir. </li><li> Bir gelişme sepet hazırlayın. Kapağın kenarı ile aynı hizada bir 50 ml santrifüj / kültür tüpünün üst kısmı kesin. Çıkarın ve Şekil 1B&#39;de gösterildiği gibi, kenar boyunca bir orta açıklık ve çentiklere keserek kapağı değiştirin. Tel üzerinde ve kesilmiş boru bölümünün konuları üzerinde vidalı kapaklı ve ekstra örgü kırpın. Not: kapak 60 mm rezervuar çanak (Şekil 1 B &#39;)&#39; de yer alan zaman bulk ortamına difüzyon izin jant çentikler içermektedir. </li><li> Bir slayt odasının bileşenleri hazırlayın. Daha büyük olan DO membran bir kare kesilmişslayt odası açma. Açıklığın iç dudak vakum gres çok ince bir tabaka uygulanır. Tutma halkası ile yağ karşı sızdırmazlık ağzına DO membran yapıştırın. Yakın tutma halkası için geri keserek aşırı DO membran kesin. NOT:. Slayt odası için Özellikler Kiehart ark 13 bulunabilir Bu bölme ticari olarak mevcut değildir ve bir makine atölyesi ile özel imalat gerektirir. </li></ol></li></ol> 2.. Sahneleme, dechorionation ve Embriyolar EPS Tedavisi <ol><li> Zamanlanmış bir kolleksiyon ile embriyolar evreleme. AM sinek kültür kafesine taze üzüm / maya plakasını ayarlayın. Embriyolar 25 ° C&#39;de 1 saat boyunca döşenecek Veren Bu plaka atın ve 25 ° C&#39;de 2 saat daha sonraki bir embriyo döşenmesi için yeni bir üzüm / maya plakası ile değiştirin Daha gelişimsel evreleme için 18 ° C inkübatör bu plaka ve yeri toplayın. NOT: 25 ° C&#39;de 1 saat geliştirme gelişim 2 saat eşittir18 ° C&#39;de Geç dönem embriyo, EPS geçirgenliği muhafaza 25 ° C karşısında 18 ° C &#39;de yaşlanma etkisi Şekil 2&#39;de görülebilir. </li><li> Dechorionation. Yavaşça 25 ° C musluk suyu ve bir fırça kullanarak örgü sepet içine üzüm plaka kapalı embriyolar durulayın. Musluk suyu yumuşak bir akışı altında sepete embriyolardan aşırı maya durulayın. 2 dakika boyunca% 50 çamaşır suyu ile sepet bırakın. Iyice musluk suyu akışı altında embriyolar yıkayın. NOT: hafifçe aralıklı plastik bir pipet kullanarak embriyolar üzerinde çamaşır suyu fışkırtma. 2 dakika tam Dechorionation için genellikle yeterli iken, kuluçkalama süresi, doğrudan incelenmesi ile kontrol edilir ve buna uygun olarak ayarlanmalıdır. Musluk suyu içine daldırılmış sepete dechorionated embriyoların bakımı ve EPS aşamasından hemen devam edin. </li><li> EPS Tedavi <ol><li> Her PBS yaklaşık 10 ml ile 60 mm altı yemekler hazırlayın. 2.925 ml MTE 75 ul EPS eritilerek EPS seyreltme hazırlayınDöndürme ile bir 50 ml&#39;lik bir cam çanak içinde M (1:40). Not: Bu karışımdan beyaz bir emülsiyon biçimleri. </li><li> Silin bir laboratuvar ile örgü sepetin altından aşırı su kurutun. Beher içinde seyreltilmiş EPS sepet daldırın ve hemen sepetin alt EPS çözelti içinde embriyo dağıtmak için girdap. 30 saniye boyunca hareket dönen devam ediyor. Not: EPS seyreltmeler ve maruz bırakma süreleri geçirgenliği kontrol etmek için değiştirilebilir. Bu, en uygun EPS seyreltmeler ve tedavi süresi kullanılan sinekler suşları ile empirik olarak tayin edilmesi önerilir. 60-90 sn pozlama süresini artırmak aşamada 12 ve üzeri embriyolar için uygundur. </li><li> , Sepet kaldırmak silin bir laboratuvar ile aşırı EPS uzakta kurulayın. 60 mm tabaklar PBS, 10 ml altı ardışık yıkama devam edin. Yavaşça, altı yıkama her PBS ile embriyolar fışkırtma için plastik bir pipet kullanın. Boya geçin ve ilaç tedavisi adımlar. Not: EPS lavabo aşağı bertaraf edilebilir. </li></ol></li></ol>Permeabilize Embriyolar 3.. Boya ve İlaç Tedavisi <ol><li> Boya Tedavi <ol><li> 10 mM CY5 karboksilik asit boya *, bir 1.5 ml mikrofüj tüpe ve karıştırmak için girdap MBIM-T (50 uM son konsantrasyon) ve 1 ml 5 ul ekle. NOT: * boya seçimi alt analizi bağlıdır. CY 5 karboksilik asit tespit ve immüno-lekeleme kullanılarak daha sonraki analizler için etkilidir. Rhodamine B canlı embriyo analizi için yararlıdır. Rodamin B kırmızı emisyon ve onun metabolitleri 1 yeşil emisyon, floresan kullanan alt uygulamalar ile bazı komplikasyonlar ortaya çıkabilir. Ilaç veya toksini içerir, bu aşamada tedavi başlatmak için ya da bu aşamada bir pals için ilaç / toksin tedavisi sınırlamak için boya çözeltisine ilave edilebilir. Bakım MSDS ve çevre güvenlik standartlarına uygun olarak işlemek ve uyuşturucu ve toksinlerin atılması için alınmalıdır. </li><li> Bir fırça ile boya çözeltisine örgü sepet embriyolar aktarın. Tüpü Cap ve sağlamak için tekrar tekrar tersembriyolar boya çözeltisi içinde süspansiyon içinde serbestçe yüzer. Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca bir sallanan rocker tüpü yerleştirin. </li><li> Nutator dan tüpünü çıkarın ve embriyolar razı olsun. Ince bir pipet ile boya çözeltisini çıkarın ve yıkama MBIM-T&#39;nin, 1 ml ile değiştirin. Tamamen embriyolar yeniden askıya tüp ters. Embriyolar razı olsun ve daha üç MBIM-T yıkar tekrarlayın. Son durulama tüm MBIM-T çıkarın ve inkübasyon adıma geçin. </li></ol></li><li> Embriyo Gelişimi için inkübasyon <ol><li> Gelişme sepet veya slayt odası: iki odadan birine embriyolar transfer. Not: gelişimi sepet uzun süreler boyunca gelişim tercih edilir, ve daha sonra sabitleme ve immüno-lekeleme adımları yürütülecek ise gereklidir. Slayt odası yüksek çözünürlük time-lapse görüntüleme için en uygun ve kısa gelişim dönemleri (örneğin, erken embriyonik olaylar) için etkilidir. Ilaç veya toksini çeşitli konsantrasyonları ve embriyo d ortama eklenebilirevelopment standart fiksasyon kullanarak ve protokolleri immünolekeleme canlı embriyolar veya bir ucundaki gerçek zamanlı olarak izlenebilir. </li><li> Sepetleri Kalkınma <ol><li> % 70 etanol ile oyuncak bir gelişme sepet temizleyin, de-iyonize su ile iyice yıkayın ve silin laboratuvar ile kuru kurulayın. Ilaç veya toksini istenen konsantrasyonuna sahip inkübasyon ortamının 6 ml hazırlayın. Kafes tabanının altında 60 mm çanak alarak bakım için değil tuzak hava kabarcıkları ortam içinde gelişme sepetini yerleştirin. Not: Two ortam yaygın olarak kullanılır: 50:50 karışımı içinde tek başına MBIM veya MBIM/M3, ikinci daha uzun gelişme dönemlerinde daha etkili olması. </li><li> Bir fırça ile sepet bazında yüzey mesh geçirgenleştirilmiştir embriyolar transfer. Yavaşça çevreleyen rezervuar medya ile embriyolar fışkırtma. Bu ağ üzerinde bir tek tabaka içinde böylece fırça ile embriyolar dağıtılır. Not: Mikroskopi görüntüleme geçin ve pr Permeabilization ve canlılık özelliklerini değerlendirmekAyırma (adım 4). </li></ol></li><li> Slayt Odası Kalkınma <ol><li> Slayt odası ters çevirin ve açıklığın çevre üzerinde vakum yağ küçük bir boncuk uygulanır. Açıklık ÇO zarın yüzeyi üzerinde ilaç ya da toksin istenen miktarda ortam 150 ul koyun. Not: Two ortam yaygın olarak kullanılır: 50:50 karışımı içinde tek başına MBIM veya MBIM/M3, ikinci daha uzun gelişme dönemlerinde daha etkili olması. </li><li> Bir fırça ile medya damlasına geçirgenleştirilmiştir embriyolar transfer. Onları damla içinde zar üzerinde yerleşmek yapma embriyolar dağıt. </li><li> Dikkatlice böylece orta düzleştirme ağzına 25 mm dairesel bir lamel uygulanır. Yağ ile bir conta oluşturmak üzere lamel çevresi boyunca yavaşça bastırın. Not: (Adım 4) hazırlanması Permeabilization ve canlılık özelliklerini değerlendirmek için görüntüleme mikroskop geçin. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Identipermeabilize Canlı Embriyolar bahsedilmekte <ol><li> Permeabilize embriyolar tespit. Bir dijital kamera ile donatılmış bir mikroskop ile epifluoresan altında embriyolar gözlemleyin. Sabit mikroskop ve kamera ayarlarını kullanarak çeşitli alanları (profil sarısı otoflüoresanı belirlemek için mavi dalga boyunda) görüntü kazanır. </li><li> Nispi floresan yoğunluğuna göre embriyo geçirgenliği belirler. Sepeti karşılamak için ve embriyoların manipülasyon sağlamak için büyük bir çalışma mesafesi olan bir stereo mikroskop kullanarak. Mikroskop programlanabilir XYZ aşamada, epifluorışıma aydınlatma ve bir dijital kamera ile donatılmış olmalıdır. Görüntü daha sonraki bir zaman noktasında aynı embriyoların yeniden değerlendirilmesine olanak maruz ve her embriyo görüntünün sahne pozisyon parametreleri kaydetmek için özen embriyolar (Şekil 3 temsili bir sonuç bakınız). Not: Boya alımı şekilleri, kullanılan boyanın, maruz kalma ve embriyo yaşı uzunluğuna bağlı olarak değişir. Geniş bir yelpazedetek bir preparat içinde boya alımı üzerinde tipik ve nüfuziyet derecesindeki varyasyonu göstermektedir. </li><li> , Embriyo tanımlayın. Permeabilize embriyo konumunu işaretlendikten sonra, oda sıcaklığında ya da 25 ° C &#39;de devam embriyo gelişimi Mikroskop için sepet veya slayt odasına dönün. Kanal mavi floresan altında gözlemlemek ve önceden belirlenen geçirgenleştirilmiştir embriyoların sarısı otofloresanm görüntü kazanır. Yumurta sarısı dağılım normal ilerleme göre uygunluğunun değerlendirilmesi (Rand ve diğerleri. 1 ve Şekil 3 &#39;de temsili bir sonuç bakınız). Not: Aydınlık mikroskopi ile gözlenir embriyo diğer morfolojik özellikleri uygulanabilirliğini değerlendirmek için de kullanılabilir. Bu canlılığı ile uyumlu geçirgenlik düzeyini kuran her bir boya ve ikinci sineği suşu ile deneysel olarak tespit edilmesi önerilir. </li><li> Permeabilize canlı embriyoların ilaç veya toksin etkilerini değerlendirir. </li><li> Prosedürü EmbriyolarYukarıdaki protokol geleneksel bir dizi için hazır edilir ile bastırılacaktır ilaç veya toksini maruz kalma sonucu daha sonra analiz eder. Analizlerin çeşitli türlerde birçok aşağıda Tartışma kabul edilir ve doğrudan canlı embriyoların morfolojilerinden gözlem yanı sıra post-tespit İmmünoboyama analizleri içerir. Bu yaklaşımların her ikisi de gen ekspresyonu ve hücre soy ve morfolojisi profillerini ortaya vital boyaların (örn., GFP) kullanılarak geliştirilmiştir. </li></ol>

<ol><li>Rand, M. D., Kearney, A. L., Dao, J., Clason, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeabilization+of+Drosophila+embryos+for+introduction+of+small+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+biochemistry+and+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Permeabilization of Drosophila embryos for introduction of small molecules.</a> Insect biochemistry and molecular biology. 40, 792-804 (2010).</li>
<li>Jaeger, J., Manu,, Reinitz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+blastoderm+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Drosophila blastoderm patterning.</a> Curr Opin Genet Dev. 22, 533-541 (2012).</li>
<li>Kopczynski, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high+throughput+screen+to+identify+secreted+and+transmembrane+proteins+involved+in+Drosophila+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">A high throughput screen to identify secreted and transmembrane proteins involved in Drosophila embryogenesis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 9973-9978 (1998).</li>
<li>Bejsovec, A., Chao, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T.+crinkled+reveals+a+new+role+for+Wingless+signaling+in+Drosophila+denticle+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">T. crinkled reveals a new role for Wingless signaling in Drosophila denticle formation.</a> Development. 139, 690-698 (2012).</li>
<li>Zappe, S., Fish, M., Scott, M. P., Solgaard, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+MEMS-based+Drosophila+embryo+injection+system+for+high-throughput+RNAi+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Automated MEMS-based Drosophila embryo injection system for high-throughput RNAi screens.</a> Lab on a chip. 6, 1012-1019 (2006).</li>
<li>Delubac, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+system+with+integrated+microinjector+for+automated+Drosophila+embryo+injection%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Microfluidic system with integrated microinjector for automated Drosophila embryo injection.</a> Lab on a chip. 12, 4911-4919 (2012).</li>
<li>Mahowald, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fixation+problems+for+electron+microscopy+of+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Drosophila+Info+Serv%22%5BJournal%5D)">Fixation problems for electron microscopy of Drosophila embryos.</a> Drosophila Info Serv. 36, 130-131 (1962).</li>
<li>Margaritis, L. H., Kafatos, F. C., Petri, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+eggshell+of+Drosophila+melanogaster.+I.+Fine+structure+of+the+layers+and+regions+of+the+wild-type+eggshell%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+cell+science%22%5BJournal%5D)">The eggshell of Drosophila melanogaster. I. Fine structure of the layers and regions of the wild-type eggshell.</a> Journal of cell science. 43, 1-35 (1980).</li>
<li>Mazur, P., Cole, K. W., Mahowald, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+factors+affecting+the+permeabilization+of+Drosophila+embryos+by+alkanes%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Critical factors affecting the permeabilization of Drosophila embryos by alkanes.</a> Cryobiology. 29, 210-239 (1992).</li>
<li>Arking, R., Parente, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+RNA+inhibitors+on+the+development+of+Drosophila+embryos+permeabilized+by+a+new+technique%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+zoology%22%5BJournal%5D)">Effects of RNA inhibitors on the development of Drosophila embryos permeabilized by a new technique.</a> The Journal of experimental zoology. 212, 183-194 (1980).</li>
<li>Li, J. S., Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Major+chorion+proteins+and+their+crosslinking+during+chorion+hardening+in+Aedes+aegypti+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+biochemistry+and+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Major chorion proteins and their crosslinking during chorion hardening in Aedes aegypti mosquitoes.</a> Insect biochemistry and molecular biology. 36, 954-964 (2006).</li>
<li>Strecker, T. R., McGhee, S., Shih, S., Ham, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeabilization+staining+and+culture+of+living+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Biotech+Histochem%22%5BJournal%5D)">Permeabilization staining and culture of living Drosophila embryos.</a> Biotech Histochem. 69, 25-30 (1994).</li>
<li>Kiehart, D. P., Montague, R. A., Rickoll, W. L., Foard, D., Thomas, G. H. High-resolution microscopic methods for the analysis of cellular movements in Drosophila embryos. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKiehart%2C+DP+%22Methods+in+Cell+Biology.+Drosophila+melanogaster%3A+Practical+uses+in+cell+and+molecular+biology%22">Methods in Cell Biology. Drosophila melanogaster: Practical uses in cell and molecular biology</a>. 44, Academic Press. San Diego. 518 (1994).</li>
<li>Patel, N. Drosophila melanogaster: Practical uses in cell and molecular biology. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPatel%2C+N+%22Methods+in+Cell+Biology%22">Methods in Cell Biology</a>. 44, Academic Press. 445-487 (1994).</li>
<li>Engel, G. L., Delwig, A., Rand, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+methylmercury+on+Notch+signaling+during+embryonic+neural+development+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+In+Vitro%22%5BJournal%5D)">The effects of methylmercury on Notch signaling during embryonic neural development in Drosophila melanogaster.</a> Toxicol In Vitro. 26, 485-492 (2012).</li>
<li>Limbourg, B., Zalokar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeabilization+of+Drosophila+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Permeabilization of Drosophila eggs.</a> Developmental biology. 35, 382-387 (1973).</li>
<li>Schulman, V. K., Folker, E. S., Baylies, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+reversible+drug+delivery+to+internal+tissues+of+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Fly+%28Austin%29%22%5BJournal%5D)">A method for reversible drug delivery to internal tissues of Drosophila embryos.</a> Fly (Austin). 7, (2013).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Yukarıdaki yöntem, geniş bir gelişim aralığında küçük molekül tedavileri için erişilebilir uygun bir Drosophila embriyoların elde edilmesi için bir yöntem açıklar. Bu yöntem daha önce sadece erken evre embriyolar görüldüğü gibi 18 ° C&#39;de embriyolar yaşlanma aynı etkinlikte geç evre embriyoların geçirgenliği sağlayan yeni ve basit bulma tanıttı. Buna ek olarak, geçirgenlik göstergesi olarak uzak-kırmızı boya CY5 karboksilik asidin kullanımı sonrası düzeltme uygulamalarında etkili olduğu kanıtlanmıştır ve gel...

Drosophila embriyo gelişimi 2 temel mekanizmalarının araştırılması için bir ilk örnek olmaya devam ediyor. Bu güçlü model, herhangi bir zaman noktasında ve herhangi gelişen organ içinde esasen herhangi bir genin manipülasyonlara izin moleküler genetik araçları geniş bir yelpazede tarafından desteklenmektedir. Drosophila embriyonun morfojenezinin küçük boyutlu, hızlı bir gelişme ve kapsamlı karakterizasyonu bu temel gelişimsel geçitler 3,4 ortaya birçoğu genetik ekranlar için seçim bir model olun. Drosophila embriyo çok sayıda fenotipleri özelliği ve kolay yorumlanabilir, genellikle anormal bir özellikten sorumlu yatan moleküler genetik mekanizmaları tanımlamak için bir araç temin edilmiştir. Tarihsel olarak, uçucu embriyo modelinin bir eksiklik embriyonik dokular için küçük moleküller tanıtan zorlanmasıdır. 1) bize: Bu engel üzerine sınırlamalar poz vardırsondalar gelişimsel mekanizmaları sorgulamak ve 2) uncharacterized küçük moleküllerin teratojenik veya farmakolojik aktivitesini değerlendirmek için Kurulan bu modeli kullanarak olarak bilinen biyoaktif küçük moleküller ing. Bunun bir sonucu olarak, sinek embriyonun tarama olası küçük molekül aktivitesinin karakterizasyonu atıl edilmiştir. Kabuğu 1) permeabilizasyon ve 2) mikroenjeksiyon: sinek embriyoya küçük moleküllerin teslim iki yöntem ile elde edilebilir. Bu makalede, bir Drosophila geleneksel laboratuar ortamında çalıştırmak kolay nüfuziyet yöntemine avans sunar. Bu teknoloji ile mikro-enjeksiyon ve arayüz yöntemlerinde son gelişmeler, aynı zamanda embriyo 5,6 bileşiklerin tanıtılması için yöntemler ile katkı olduğu not edilmelidir. Embriyoya molekülleri Tanıtımı kabuğu 7 bir yapışkan tabakası ile önlenir. Drosophila yumurta kabuğu beş tabakadan oluşur. Itibareniçten dışa bunlar: vitellin membran, mumsu tabaka, iç koryon tabakası, endochorion ve exochorion 8. Üç dış koryonik tabakalar seyreltik ağartıcı embriyonun kısa daldırma yoluyla kaldırılabilir bir adım Dechorionation olarak anılacaktır. Bu temel vitellin zar ile kaplı kalır maruz yapışkan katman daha sonra, geçirgen hale dechorionated embriyo gibi heptan ve oktan 7,9 gibi organik çözücüler, maruz bırakılarak tehlikeye girebilir. Bununla birlikte, bu çözücülerin kullanımı da toksisite ve embriyo canlılığı 9,10 Stark olumsuz etkileri vardır, her ikisi de güçlü su-geçirimli eylem düzenlenmesinde zorluğu nedeniyle komplikasyonlar getirmektedir. Çözücü, bir bileşim olarak adlandırılan embriyo geçirgenliği (EPS) kullanılarak nüfuziyet için bir yöntem olup, daha önce tarif edildiği 1 olmuştur. Bu çözücü miscibl olmak için solvent olanak d-limonen ve bitki-türevi yüzey aktif maddeler oluşmaktadırSulu tampon maddeler ile örn. D-limonen ve arzu edilen konsantrasyonlara kadar çözücünün seyreltilmesi için yeteneğinin düşük toksisiteye yüksek canlılığı 1 ile geçirgen embriyolar oluşturmak için etkin bir yöntem vermiştir. Bununla birlikte, iki endojen faktör uygulamaya sınırlamalar getirmek için devam etmiştir. İlk olarak, embriyolar ilgilenmek kapatmak gelişimsel evreleme korumak için alındığında bile, EPS tedaviden sonra geçirgenliği heterojenite göstermektedir. İkincisi, yaklaşık sekiz saatten daha eski yumurta 11 döşeme sonra ortaya kabuğunun bir sertleşme ile tutarlı, geçirgenliği zor kanıtlanmıştır embriyolar. Burada tarif EPS yönteminde gelişmeler bulunmaktadır: 1) sabitleme parçaları ve immüno-lekeleme adımlar yürütülür ve 2)&gt; (geç gelişim zaman noktalarında, 8 saat, sahne embriyo geçirgenliği sağlayacak sonra bile, yakın aynı permeabilize embriyolar tanımlanması ve analiz yardımcı 12 ve üzeri). Spesifik olarak, bir uzak-kırmızı boya uygulanması,CY5 karboksilik asit, geliştirme sırasında ve formaldehit tespit sonrası embriyo devam geçirgenlik göstergesi olarak hizmet vermektedir tarif edilir. Buna ek olarak, 18 ° C &#39;de embriyolar yetiştirme geç dönem embriyo (aşamalar 12-16) geçirgenliği sağlayan, bir EPS hassas halde yumurtaların muhafaza gösterilmiştir. Bu gelişmeler EPS metodoloji için daha önce sözü edilen sınırlamalarının üstesinden gelir. Bu uygulama, bu nedenle canlılığını korurken farklı gelişim zaman noktalarında embriyo ilgilendiren küçük moleküller tanıtmak için bir araç ile araştırmacılar sağlayacaktır.

<table><tbody><tr><td>Fly Cage</td><td>Flystuff.com</td><td>59-101</td><td>http://flystuff.com/general.php</td></tr><tr><td>Cocamide DEA [Ninol 11-CM]&nbsp;</td><td>Stepan Chemical</td><td>özel sipariş çağrısı</td><td>http://www.stepan.com/</td></tr> <tr><td>Etoksillenmiş alkol [Bio-soft 1-7]&nbsp;</td><td>Stepan Chemical</td><td>özel sipariş http://www.stepan.com/</td><td></td></tr> <tr><td>d-limonen (Ultra yüksek saflık derecesi)</td> için çağrı yapıyorFlorida <td>Chemical Co.&nbsp;</td><td>Özel sipariş için arayın</td><td>http://www.floridachemical.com/</td></tr> <tr><td>Sodyum hipoklorit&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>SS290-4</td><td>http://www.fishersci.com/</td></tr> <tr><td>Ara-20&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>BP337</td><td>http://www.fishersci.com/</td></tr> <tr><td>PBS tozu</td><td>Sigma</td><td>56064C</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/</td></tr> <tr><td>Rhodamine B</td><td>Sigma</td><td>R6626</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/</td></tr> <tr><td>CY5 karboksilik asit</td><td>Lumiprobe</td> <td># 23090</td><td>http://www.lumiprobe.com/p/cy5-carboxylic-acid</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>472310-100</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/</td></tr> <tr><td>Kalkanlar ve Sang M3 orta</td><td>Sigma</td><td>S8398</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/</td></tr> <tr><td>Nitex Naylon ağ&nbsp;</td><td>Flystuff.com</td><td>57-102</td><td>http://flystuff.com/misc.php</td></tr><tr><td>Çözünmüş oksijen (DO) membranı&nbsp;</td><td>YSI#</td><td>5793</td><td>http://www.ysireagents.com/search.php</td></tr><tr><td>25 mm dairesel no.1 kapak kayması&nbsp;</td><td>VWR</td><td>48380-080</td><td>https://us.vwr.com/</td></tr> <tr><td>Üzüm-agar tabağı karışımı&nbsp;</td><td>Flystuff.com</td><td>47-102</td><td>http://flystuff.com/media.php</td></tr><tr><td>Somun Makinesi</td><td>VWR</td><td>82007-202</td><td>https://us.vwr.com/</td></tr></tbody></table>

geçirgenliği için bir yöntem<em&gt; drosophila</emküçük molekül faaliyet tahliller için&gt; embriyolar

A Method of Permeabilization of Drosophila Embryos for Assays of Small Molecule Activity

Drosophila embriyo uzun gelişimini kontrol moleküler ve genetik mekanizmaları ortaya çıkması için güçlü bir laboratuvar model olmuştur. Bu modelle genetik manipülasyon kolaylığı diğer hayvan modelleri ve hücre bazlı deneylerde olağan farmakolojik yaklaşımlar yerini almıştır. Burada gelişmekte olan meyve sineği embriyo küçük moleküllerin uygulama sağlayan bir protokol son gelişmeleri açıklar. Yöntem, embriyo canlılığını korurken kabuğunun geçirimsizliği aşmak için adımlar ayrıntıları. Gelişim aşamaları, geniş bir yelpazesinde Eggshell permeabilizasyon çözücü, daha önce tarif d-limonen embriyo nüfuziyet (1 EPS) uygulanmasıyla ve (18 ° C) daha önce uygulanan tedavilerin indirgenmiş sıcaklıkta yaşlanma embriyoların elde edilir. Buna ek olarak, bir permeabilizasyon göstergesi olarak bir uzak-kırmızı boya (CY5) kullanımı standart kırmızı, yeşil ve gribi kapsayan alt uygulamaları ile uyumlu olan, tarif edilmektedirCanlı ve sabit preparasyonlarda orescent boyalar. Bu protokol, gelişim mekanizmaları sonda olarak karakterize edilmemiş, küçük moleküllerin ya da teratojenik farmakolojik etkinliğini değerlendirmek amacıyla çalışmalar için biyoaktif bileşiklerin kullanılması çalışmaları için de geçerlidir.

Embriyo taşıma cihazları yukarıdaki Protokoller&#39;de manipülasyon için &quot;ev yapımı&quot; cihazları görselleştirme yardımcı olmak için Şekil 1&#39;de resmedilmiştir. Şekil 2&#39;de görülen sonuçlar gelişiminin geç safhalarında EPS ile geçirgen olması kabiliyetleri üzerinde 18 ° C &#39;de embriyolar yetiştirme güçlü etkisini gösterir. Bu durum protokol aşama 2.1 &#39;de uygulanır. Tipik olarak muamele edilmiş EPS embriyolar görülen geçirgenlik çeşitli düzeylerde ortaya çıkarmak için...

Gelişmekte olan embriyoya Drosophila küçük moleküllerin giriş yeni bileşikler, ilaçlar, toksinler ve biyolojik aktivitesini karakterize edici hem de temel geliştirme yolunu tarama için büyük bir potansiyel sunmaktadır. Açıklanan yöntemler burada Drosophila embriyo modelin programını genişleterek, bu yaklaşımın doğal engelleri aşmak adımları özetlemektedir.

Geçirgenliği için bir yöntem<em&gt; Drosophila</emKüçük Molekül Faaliyet Tahliller için&gt; Embriyolar

The Drosophila embryo has long been a powerful laboratory model for elucidating molecular and genetic mechanisms that control development. The ease of ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, eklenen küçük moleküllü ilaçların veya toksinlerin biyolojik aktivitesini test etmek için geçirgen yumurta kabuğuna sahip canlı drosophila embriyoları hazırlamaktır. Bu işlem, öncelikle gelişimsel evreleri belirlenmiş embriyoların, dış korion yumurta kabuğu tabakalarını uzaklaştırmak için seyreltik çamaşır suyu ile işlenmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, küçük moleküllü çözünenleri engelleyen ince balmumu yumurta kabuğu tabakasını tüketen bir çözücü ile embriyoların geçirgen hale getirilmesidir.Üçüncü adım, yumurta kabuğunun geçirgenliğini aynı anda ölçmek ve ilgi duyulan bir bileşiği içeri aktarmak için embriyoları bir ilaç veya toksin ile bir boyayla işlemektir. Daha fazla gelişimin ardından, embriyolar ya doğrudan görüntülenebilir ya da immünohistokimya için işlenebilir. Nihayetinde sonuçlar, immün reaktifler veya vital boyalarla yapılan floresan mikroskopisi ile belirlendiği üzere, bir ilacın veya toksinin doku gelişimi üzerindeki aktivitesini gösterebilir.Bugün, küçük molekül aktivite analizleri için drosophila embriyolarının permeabilizasyon yöntemini sunacağım. Bu tekniğin, yumurta kabuğunu permeabilize etmek için heptan gibi geleneksel org

a-method-permeabilization-drosophila-embryos-for-assays-small

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Biz belirli genotipler Drosophila embriyolar "fileto" hazırlıkları üretmek için akıcı bir protokol açıklar. Bu protokol, genetik ekranlardan çeşitli verimli bir şekilde yürütülmesini sağlar. Aynı zamanda geç embriyo yapıları mükemmel görselleştirme sağlar.

VE Canlı Diseksiyon Drosophila Embriyolar: Aerodinamik Antikor Boyama Mutant Koleksiyonlar Eleme Yöntemleri

Tüm Dağı RNA Floresan<em&gt; In situ</emVe&gt; Hibridizasyon<em&gt; Drosophila</em&gt; Embriyolar

Çok geç evre Drosophila embriyoların embriyonik epidermis hızlı lastik yara cevap analizi için bir in vivo sistemi sağlar ve memeli modelleri tercüme için, yara iyileşmesi çalışmalar ilerlemek için genetik manipülasyon ya da mikro-enjeksiyon kimyasal tedaviler ile kombine edilebilir.

Mikroenjeksiyon Yara Deneyi ve<em&gt; In vivo</em&gt; Epidermal lokalizasyonu Tepki Gazeteciler Yara<em&gt; Drosophila</em&gt; Embriyolar.

Bu protokolün amacı , orta derecede (0.5-1 g) Drosophila embriyolarının toplanması ve afinite saflaştırması-kütle spektrometresi (AP-MS) gibi protein proteini uygulamalarında kullanılabilen protein ekstraktlarının hazırlanması için basit ve ucuz bir yaklaşım sağlamaktır ).

Orta Ölçekli Hazırlanışı<em&gt; Drosophila</em&gt; Proteomik Denemeler için Embriyo Özleri

Bu protokol, Drosophila'nın embriyodan yetişkine kadar her gelişim aşamasındaki canlılığını değerlendirmek için tasarlanmıştır. Yöntem, farklı genotiplerin veya büyüme koşullarının canlılığını belirlemek ve karşılaştırmak için kullanılabilir.

Drosophila Melanogaster'In Embriyodan Yetişkine Canlılığını Değerlendirmek Için Doğrudan ve Basit Bir Yöntem

Kan-beyin bariyerbütünlüğü sinir sistemi fonksiyonu için çok önemlidir. Drosophila melanogasterolarak, kan-beyin bariyeri geç embriyogenez sırasında glial hücreler tarafından oluşur. Bu protokol, D. melanogaster embriyolarında ve üçüncü instar larvalarında kan-beyin bariyeri oluşumu ve bakımı için taht yöntemlerini açıklamaktadır.

Drosophila melanogaster Kan-beyin Bariyer Bütünlüğü için Tahse

Burada sunulan mikroenjekte etmek ve aynı anda görüntü birden fazla Drosophila embriyoembriyonik gelişim sırasında bir plaka tabanlı, yüksek içerik görüntüleyici kullanarak bir protokoldür.

Drosophila Embriyo Hazırlama ve Canlı Hücre Mikroskopisi Için Mikroenjeksiyon Otomatik Yüksek İçerik Analizörü Kullanılarak Gerçekleştirildi

Erken Drosophila embriyosunda, birçok organel hareketlidir. Prensip olarak, belirli floresan problar aracılığıyla canlı olarak görüntülenebilirler, ancak yumurta kabuğu embriyoya doğrudan uygulamayı önler. Bu protokol, bu tür probların mikroenjeksiyon yoluyla nasıl tanıtılacağını ve daha sonra parçacık  görüntü velosimetrisi yoluyla toplu organel hareketinin nasıl analiz edileceğini açıklar.

Drosophila Embriyolarında Lipid İçeren Organellerin Sitoiskelete Bağımlı Ticaretinin Görselleştirilmesi

Burada, konvansiyonel lazer taramalı konfokal mikroskop kullanılarak süper çözünürlüklü görüntüleme elde etmek için erken Drosophila embriyolarında genişleme mikroskobunun uygulanması için bir protokol sunulmaktadır.

Süper Çözünürlüklü Görüntüleme için Tam Montajlı Drosophila Embriyolarını Fiziksel Olarak Büyütmek için Genişleme Mikroskobunun Kullanılması

Bu protokoller, kontrol ve mutant Drosophila embriyonik epitelisindeki pileli septat bağlantılarının organizasyonu ve kapatma fonksiyonunun nasıl karakterize edileceğini açıklar.

Drosophila embriyonik epitelinde çekirdek pileli septat bağlantı proteinlerini tanımlamak için immünboyama ve boya penetrasyonu deneyleri

Keşfedin, Drosophila embriyolarında geçirgen kabuk hazırlama yöntemiyle küçük moleküllerin biyolojik aktivitesini nasıl test edebilirsiniz. Bu teknik, ilaç ve toksin etkilerini gelişim biyolojisi ve farmakoloji araştırmalarında incelemek için kullanılır.

Geçirgenliği için bir yöntem

Daha fazla video keşfet