Name: Biyokimyasal Analiz için Duyu Nöronlar gelen üretim ve Aksonlar izolasyonu gözenekli Filtre Kullanma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-08T23:45:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: Öğrenin, gözenekli filtre kullanarak duyu nöronlarından saf akson örnekleri izole etme yöntemini. Bu teknik, biyokimyasal ve immünositokimyasal analizler için güvenilir akson preparatları sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu proje, Kanada Sağlık Araştırmaları Enstitüleri'nden hibe MOP62827 ile desteklenmiştir.

NOT: Aşağıdaki prosedürler Hayvan Bakımı Kanada Konseyi tarafından onaylanan esaslara uygun olarak vardır. Tüm çabalar işlemler sırasında ağrı ve hayvanların sıkıntı en aza indirmek için yapılır. Filtre 1. Kaplama Not: Kültür filtre malzemeleri, çok-delikli plakalara yerleştirilir zaman, iki bölme tanımlanmaktadır: En iyi bölme elemanının üzerine bölgedir ve alt bölme, ekin Şekil 1A.ab aşağıdaki biridir. Eksplantlar bunlar filtrenin üst tarafına takmak üst bölmesine tohumlanır; Birçok aksonlar filtreden büyümesi ve alt bölme Şekil 1A.c içinde, filtrenin alt tarafında uzanır. (Örneğin kaplama çözeltisi, yıkama, kültür ortamı, vb uygulanması için) standart çalışma hacimleri alt bölme boyunca 2 ml ve üst bölmesi için 1 ml ve &quot;olarak protokolde de ifade olacak, Standart hacimleri &quot;. Eklemek ve kuyunun tarafı arasındaki boşluğa pipet ucu yerleştirerek alt bölme ile başlayarak çözüm ekleyin. Filtrenin alt sıkışmış olması kabarcıklarını önlemek için bir çözüm dağıtım yapılırken, bir tarafa ekleme yatırın. <ol><li> Filtreleri kaplama bir gün önce kaplanması başlayın. Steril doku kültürü kaputu altında, 6-çukurlu bir plaka içerisinde alan 24 mm filtre ekler yerleştirin. Alt bölmesine 2 mi ve üst 1 ml: Standart miktarlar kullanılarak oda sıcaklığında 1 saat için su içinde poli-D-lisin (1 mg / ml) ile inkübe ekler. </li><li> Aspire poli-D-lisin ve su ile bir kere yıkayın. Aspire su, kapağını kapatın ve kaput O / N kurumaya plakaları bırakın Sıvıların aspirasyon sırasında, doğrudan filtre altında hapsolur sıvı kalıntısı kaldırmak için emin olun. </li><li> Ertesi sabah, suda laminin (10 ug / ml) seyreltin ve sıcak karışım 37 ° C&#39;de Cel 1 saat laminin ile uçlar inkübestandart birimleri kullanarak 37 ° C&#39;de l inkübatör. </li><li> Aspire laminin ve su içinde kolajen (0.1 mg / ml) ekleyin ve oda sıcaklığında 1 saat boyunca inkübe edilir. Bu durumda, üst bölmesinin alt bölmesi için 2 ml ve 2 ml kullanın. </li><li> Aspire kollajen ve steril su ile bir kez yıkanır. ADIM 3 &#39;de tarif edildiği gibi filtre, hemen kültür ortamı ve DRG eksplantlar almaya hazırdır. </li></ol> 2.. Diseksiyon Embriyonik Dorsal kök ganglion (DRG) Eksplantlarındaki <ol><li> Avertin (250 mg / kg) bir IP enjeksiyonu ile 13 günlük bir hamile bir dişi fare anestezisi. 10-15 dk bekleyin ve kornea ve pedal çekme reflekslerinin olmaması için kontrol edin. Refleksleri bir kez servikal çıkık gerçekleştirin. </li><li> % 70 etanol ile tüm cerrahi aletler ve kadın karın dezenfekte edin. Araçlar kurumasını bekleyin. Karın cildi tutun ve karın boşluğuna maruz deri ve kas tabakaları kesti. </li><li> Serviks ve yumurtalıklardan ayırarak rahim kaldırmak. Bir Steri içindele kaput, makas ile rahim embriyolar kaldırmak ve buz-soğuk L15 medya ile dolu bir Petri kabındaki onları toplamak. Buz üzerinde tutmak. NOT: Gebeliğin 17,18 13 gün embriyo elde etme ile ilgili daha fazla ayrıntı için önceki teknik raporlara bakın. </li><li> Mikroskop altında, bir tarafta embriyo yatıyordu ve baş kaldırmak için küçük yaylı makas kullanın. Yan kenarları boyunca bir kesi göğüs, karın, bacak ve kuyruk atmak için emin olun. Tüm visseral organlar kadar ventral yan yattı ve kaldırmak omurgayı içeren geri tutun. </li><li> Küçük yaylı makas ile, orta hat boyunca ventral tarafında omurga keserek tüm omurilik maruz. Forseps bir çift (# 3) ile karkas basılı tutun ve onun en rostral yönü ile omurilik tutmak için ikinci bir çift kullanın. </li><li> Yavaş yavaş ve nazikçe vertebra boşluğundan kablosunu çekin ve ultra-ince forseps (# 5) kullanılarak omurilikten DRG&#39;ler çimdik. Grup DRG&#39;ler üzerinde toplanacakyemeğin alt. </li><li> Onun açılış büyütmek için kesilmiş bir 200 ul pipet ile aspire göre gruplandırılmış DRG&#39;ler toplayın. Bir tüp içinde DRG&#39;ler yerleştirin ve DRG toplama bitene kadar buz üzerinde bırakın. NOT: DRG&#39;ler bu uç duvarlarına sopa yok, çünkü (standart sarı ipuçları kıyasla) Beyaz / saydam ipuçları tercih edilir. Medya ile Flushing ipuçları kullanmadan önce daha da duvarlara yapışmasını DRG&#39;ler engeller. </li></ol> Filtreler 3. Tohum ve sırt kök ganglion Eksplantlarından Bakım <ol><li> Standart birimleri kullanarak kaplanmış ekler için 37 ° C de tam DRG ortam ekleyin. NGF içermeyen üst bölmesi tutarken, NGF&#39;nin 15 ng / ml &#39;si ile alt bölme ortamı Ek. Not: NGF etkili bir filtre boyunca yayılır ve konsantrasyonu saat içinde dengeye da, doğrudan tohumlama yapılmadan önce alt bölüme NGF uygulanması önemli ölçüde b aksonal verimini artırır gözledikFiltrenin ottom yüzeyi. </li><li> Açıklığını büyütmek için kesilmiş bir ucu ile bir 1000 ul pipet kullanarak filtrelere tüpten DRG&#39;ler aktarın. </li><li> DRG&#39;ler toplama önce uç 2-3x içine medya çizin. Bu, ucun iç tarafına yapışmasını engeller. Aynı ucu, tüm kuyuları için yeniden kullanılabilir. (Standart mavi ipuçları karşı) renksiz ipuçları kullanımı ucu yüzeye DRG yapışmasını azaltır. </li><li> , DRG&#39;ler aktarmak 800 ul pipet ayarlamak için. Aspire filtrenin üst tarafında medya yaklaşık 200 ul, sonra DRG içeren tüp gidin ve yukarı ve aşağı küçük bir hacim pipet - dibine battı DRG&#39;ler tekrar süspansiyon. Bütün hacmi ve ucun ortasında ucu daldırarak pipet DRG&#39;ler aspire. </li><li> Bir kez tüm uçlar yüklenir, plaka kapağını kapatın ve plakayı 10x girdap, her girdap arasındaki kaput bankta hafifçe dokunarak. Bu hareketler yardım ederek akson verimi artırmak DRG eksplantlarında lavabo vefiltreye takın. Bu aynı zamanda farklı eksplantlardan aksonlar üst üste kalmamak eşit explant&#39;larını dağıtmak yardımcı olur. NOT: Bir önceki adımlarda açıklandığı eksplant tohumlama prosedür belirgin olarak alt-tabaka (% 75&#39;e kadar) için eksplant eklenme genel hızını artırır. En önemlisi, pipetleme prosedür kolayca ortam yüzeyinde yüzen yerine ucun altına batmakta eksplantlar engeller. </li><li> Biyokimyasal analizler için, filtre başına (30 civarında) bir embriyo tohum DRG&#39;ler. Morfolojik analizler için, yarım veya bir embriyo (10-15) DRG&#39;ler üçüncü birini kullanın. Bir borunun tüm DRG (30, 15, ya da 10 DRG olup olmadığı), tek bir kuyunun içine ekilir, böylece bu karar, tüpler içine DRG&#39;ler toplama önce yapılmalıdır. </li><li> Her 2-3 günde bir ortam değiştirme, 37 ° C&#39;de bir hücre kuluçka makinesi içinde kültürleri koruyun. Ortamı değiştirmek ilk üst bölmesini aspire, alt bölmesi izledi. Standart hacimde taze ortam eklemealt bölme ile başlayan s. Not: kurutma hücre / aksonlar önlemek için, aynı anda birden fazla 3 uçlar ortamı değişmez. NGF varlığında filtreleri üzerinde yetiştirilen DRG&#39;ler kültür içinde 2 gün sonra 2 mm&#39;ye kadar ulaşan, uzun aksonlar uzanacaktır. </li></ol> 4. Trophic Faktörü Çekilme Tedavi NGF çekilmesi bu ilk çekilmesinden sonra yaklaşık 12 saat belirir (IF faz kontrast ve β-III-tubulin tarafından belirlenir) aksonal parçalanma ile aksonal dejenerasyon neden olur. Tam parçalanma 36 saat ile elde edilir. Dejenerasyon deney tasarımına göre, son kullanıcı tarafından seçilecek olan ilerlemeye bırakılır ne kadar. <ol><li> 2 günlük aksonal genişleme safhasından sonra, NGF yoksun ve herhangi bir geri kalan (ya da endojen olarak üretilen) NGF&#39;ye ayırmak için anti-NGF antikoru (1 ug / ml) içeren ortam için, üst ve alt bölmeleri ortam değiştirin. </li><li> Izin vermek için hücre kuluçka makinesi (37 ° C) plakaları Dönüşİstenen zaman miktarı için devam etmek için NGF çekilmesi kaynaklı dejenerasyon. </li><li> Western blot ile muayene için protein ekstraksiyon (6. adım) devam etmek veya doğrudan IF (adım 7) tarafından filtreleri incelemek. </li></ol> 5.. Aksonal Kesisi Wallerian Hastalığı tetikleyebilecek Bu prosedür, hücre gövdesinden ayrılmış filtrenin alt tarafındaki aksonlar bırakır, ama aksi halde sağlam. Bundan sonra, bu aksonlar hızla Wallerian dejenerasyon başlatmak. İlk kesilerinden sonra 3 saat olarak görünen (IF faz kontrast veya β-III-tubulin kanıtladığı) aksonal parçalanma; 9 saat ile, aksonlar tamamen parçalanmış ve filtre ayrılır. Dejenerasyon deney tasarımına göre, son kullanıcı tarafından seçilecek olan ilerlemeye bırakılır ne kadar. <ol><li> Bir hücre kazıyıcı ile, DRG yetiştirilen eksplantlar ihtiva eden filtrenin üst kısmı kazıyın. X-, Y-ve dairesel olarak hareket eden kazıyıcı göre en malzemesinin tamamen çıkarılmasını sağlamaktarifi. </li><li> Filtreden kazınır ve NGF (10 ng / ml) ihtiva eden önceden ısıtılmış tam DRG eden 1 ml&#39;lik ortam ile değiştirin olan yüzen eksplantları ihtiva eden üst bölmesinden ortamı atın. </li><li> Wallerian dejenerasyon, son kullanıcı tarafından seçilen bir zaman miktarı için devam etmesi için kuluçka makinesi (37 ° C) hücre plaka geri dönün. </li><li> Western blot ile muayene için protein ekstraksiyon (6. adım) devam etmek veya doğrudan IF (adım 7) tarafından filtreleri incelemek. </li></ol> Aksonal 6 Numunelerin. Protein Ekstraksiyonu <ol><li> Laemmli numune tamponu 75 ul ile toplama tüpleri (1.5 mi) doldurun. Filtrelerin tüm set aksonları hasat sırasında buz üzerinde tüpler tutun. </li><li> PBS içinde DRG eksplant ile uygulanan filtre yıkayın ve filtrenin üst tarafını kazıyın. , Plakadan elemanını çıkartın bir pamuk uçlu aplikatör ile filtrenin üst kısmı temizlenir ve üst ve alt tarafı herhangi bir ek PBS aspire. </li><li> Insert ters yerleştirinbankta aşağı ve keskin bir neşter kullanılarak ucun dışarı filtre kesti. Forseps, aşağıdan yukarıya ile filtre tutun. Makas ile filtrenin merkezine çevresi bir kesim yapın. </li><li> Toplama tüpünün üstüne koyun filtre ve forseps ile, tüp aşağı filtrenin ortasına basın. Bunu yaparken, bir huni oluşturmalıdır. Bu Laemmli numune tamponu içinde kalmasını, böylece tüpün altına huni şekilli filtre itin. </li><li> 4 dakika için kaynatma ile tüpler tam protein ekstraksiyonu. Tüpün üst içine baş aşağı yerleştirin forseps kullanarak ve kısa bir spin (15 saniye için 2,000 xg) sahne filtreyi kaldırmak. Kurutulmuş filtreler atın. </li><li> Ilgi konusu proteinleri tespit etmek için western blot ardından SDS-PAGE ile protein aksonal preparasyon 10 ul giderin. NOT: Bir referans olarak, 2 gün boyunca büyütüldü ve RIPA 100 ul içinde lize 20 eksplantlar bir akson hazırlama tamponu 4-6 &#39;lik bir protein konsantrasyonuna sahip olacaktır lizisug / ul. </li></ol> Filtreler Aksonlar 7. İmmünofloresan Sınavı Aşağıdaki adımlar, β-III-tübülin tespiti ile örneklenen filtre ekler ilgili boyama IF gerçekleştirmek için genel manipülasyonlar özetlemektedir. Sabitleme, inkübasyon süresi, konsantrasyon ve diğer ayrıntılar diğer antijen-antikor çifti için optimize edilmelidir. <ol><li> Insertlerin aşağıdaki yıkama ve inkubasyon için iyice temizlendi, daha önce kullanılmış, 6 oyuklu plakalar, kullanmaktadır. </li><li> Kısaca, PBS içinde ekler yıkayın. Karıştırıcısı üzerinde oda sıcaklığında 10 dakika boyunca PBS içinde taze hazırlanmış% 4 paraformaldehid içinde tespit edin. </li><li> Tespit edildikten sonra, kazıma ve filtrenin alt yüzeyine sadece büyümüş aksonlar toplamak için ucun üst tarafını temizleyin. IF standart inkubasyon ile devam edin. </li><li> Hafif sallama ile oda sıcaklığında 1 saat için, standart miktarlar kullanılarak, (TBS,% 0.05 Tween 20,% 5 kaymağı alınmış süt) bloke etme çözeltisi olarak ekler inkübe edin. </li><li> Transfer standardı birimleri kullanılarak, tampon (anti-β-III-tubulin, 1:5,000) engelleme seyreltilmiş birincil antikora ekler. Nazik çalkalama ile 4 ° C&#39;de O / N-(~ 18 saat) inkübe edin. </li><li> PBS (oda sıcaklığında 2 X 10 dakika) içinde iki kez ilk antikoru yıkanır. </li><li> Transfer standardı birimleri kullanılarak, (1:2,000 keçi anti-fare) blokaj tamponunda seyreltilmiş floresan-konjuge sekonder antikor ile ekler. Hafifçe çalkalanarak oda sıcaklığında 2 saat boyunca ışıktan kapalı inkübe edin. </li><li> PBS (oda sıcaklığında 3 x 10 dakika) &#39;de ikincil antikor 3 kez yıkayın. </li><li> IF tamamlandıktan sonra, dışarı eklemek çıkarmak son yıkama PBS uzak dökün ve bir pamuk uçlu aplikatör ile filtrenin üst tarafını temizlemek. Üst ve alt taraftan sıvı aspire. </li><li> Yeri bankta baş aşağı yerleştirin ve keskin neşter ile ekin dışarı filtre kesti. </li><li> , Forseps ile filtre tutun yukarı olumsuz ve mikroskopi slayt üzerine yerleştirin. Bir lamel ve floresan uyumlu mou ile Yerleşiminting ortamı. Işıktan kaplı soğuk odada kuru düz, olsun. Incelemek ve bir floresan mikroskop kullanılarak görüntü yakalayabilir. Not: 4 ° C&#39;de saklanan ve ışıktan korunan, bu preparatlar floresans kaybıyla hafta içinde tutulabilir. </li><li> İSTEĞE BAĞLI: Seçenek olarak ise, IF insertin kaldırılmış filtreler üzerinde gerçekleştirilebilir. Bunu yapmak için, kazıma ve doğrudan tespit sonrası filtrelerin üst tarafını temizlemek. <ol><li> Bir altı plaka altındaki keskin bir neşter ve yer filtreleri akson-up ile uçlar dışarı filtreler alın. </li><li> 7,4-7,8 ve 7,11 belirtildiği gibi Daha sonra, IF için inkübasyonlar gerçekleştirin. Bu alternatifin avantajı, örneğin, kuluçka hacimleri (7,1-7,11 gösterildiği gibi filtreler doğrudan ekler üzerinde lekeli kullanılan 3 ml kıyasla) 500 ul aşağı gidebilir, çünkü, reaktifleri kaydeder olmasıdır. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Conde, C., Caceres, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule+assembly%2C+organization+and+dynamics+in+axons+and+dendrites%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Microtubule assembly, organization and dynamics in axons and dendrites.</a> Nat. Rev. Neurosci. 10, 319-332 (2009).</li>
<li>Rasband, M. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+axon+initial+segment+and+the+maintenance+of+neuronal+polarity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The axon initial segment and the maintenance of neuronal polarity.</a> Nat. Rev. Neurosci. 11, 552-562 (2010).</li>
<li>Lingor, P., Koch, J. C., Tonges, L., Bahr, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+degeneration+as+a+therapeutic+target+in+the+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Axonal degeneration as a therapeutic target in the CNS.</a> Cell Tissue Res. 349, 289-311 (2012).</li>
<li>Torre, E. R., Steward, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Demonstration+of+local+protein+synthesis+within+dendrites+using+a+new+cell+culture+system+that+permits+the+isolation+of+living+axons+and+dendrites+from+their+cell+bodies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Demonstration of local protein synthesis within dendrites using a new cell culture system that permits the isolation of living axons and dendrites from their cell bodies.</a> J. Neurosci. 12, 762-772 (1992).</li>
<li>Zheng, J. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+functional+role+for+intra-axonal+protein+synthesis+during+axonal+regeneration+from+adult+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A functional role for intra-axonal protein synthesis during axonal regeneration from adult sensory neurons.</a> J. Neurosci. 21, 9291-9303 (2001).</li>
<li>Willis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+transport+and+local+translation+of+cytoskeletal%2C+injury-response%2C+and+neurodegeneration+protein+mRNAs+in+axons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Differential transport and local translation of cytoskeletal, injury-response, and neurodegeneration protein mRNAs in axons.</a> J. Neurosci. 25, 778-791 (2005).</li>
<li>Poon, M. M., Choi, S. H., Jamieson, C. A., Geschwind, D. H., Martin, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+process-localized+mRNAs+from+cultured+rodent+hippocampal+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Identification of process-localized mRNAs from cultured rodent hippocampal neurons.</a> J. Neurosci. 26, 13390-13399 (2006).</li>
<li>Schoenmann, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+degeneration+is+regulated+by+the+apoptotic+machinery+or+a+NAD%2B-sensitive+pathway+in+insects+and+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Axonal degeneration is regulated by the apoptotic machinery or a NAD+-sensitive pathway in insects and mammals.</a> J. Neurosci. 30, 6375-6386 (2010).</li>
<li>Unsain, N., Higgins, J. M., Parker, K. N., Johnstone, A. D., Barker, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((XIAP+regulates+caspase+activity+in+degenerating+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">XIAP regulates caspase activity in degenerating axons.</a> Cell Rep. 4, 751-763 (2013).</li>
<li>Ure, D. R., Campenot, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrograde+transport+and+steady-state+distribution+of+125I-nerve+growth+factor+in+rat+sympathetic+neurons+in+compartmented+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Retrograde transport and steady-state distribution of 125I-nerve growth factor in rat sympathetic neurons in compartmented cultures.</a> J. Neurosci. 17, 1282-1290 (1997).</li>
<li>Taylor, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+mRNA+in+uninjured+and+regenerating+cortical+mammalian+axons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Axonal mRNA in uninjured and regenerating cortical mammalian axons.</a> J. Neurosci. 29, 4697-4707 (2009).</li>
<li>Minis, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+transcriptomics-Dissection+of+the+mRNA+composition+in+the+axonal+compartment+of+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Subcellular transcriptomics-Dissection of the mRNA composition in the axonal compartment of sensory neurons.</a> Dev. Neurobiol. , (2013).</li>
<li>Niekerk, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sumoylation+in+axons+triggers+retrograde+transport+of+the+RNA-binding+protein+La%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Sumoylation in axons triggers retrograde transport of the RNA-binding protein La.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104, 12913-12918 (2007).</li>
<li>Huang, E. J., Reichardt, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophins%3A+roles+in+neuronal+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurotrophins: roles in neuronal development and function.</a> Annu. Rev. Neurosci. 24, 677-736 (2001).</li>
<li>Vargas, M. E., Barres, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Why+is+Wallerian+degeneration+in+the+CNS+so+slow%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Why is Wallerian degeneration in the CNS so slow.</a> Annu. Rev. Neurosci. 30, 153-179 (2007).</li>
<li>Waller, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experiments+on+the+Section+of+the+Glossopharyngeal+and+Hypoglossal+Nerves+of+the+Frog%2C+and+Observations+of+the+Alterations+Produced+Thereby+in+the+Structure+of+Their+Primitive+Fibres%5BTitle%5D)+AND+%22Philosophical+Transactions+of+the+Royal+Society+of+London%22%5BJournal%5D)">Experiments on the Section of the Glossopharyngeal and Hypoglossal Nerves of the Frog, and Observations of the Alterations Produced Thereby in the Structure of Their Primitive Fibres.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 140, 423-429 Forthcoming.</li>
<li>Albuquerque, C., Joseph, D. J., Choudhury, P., MacDermott, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection%2C+Plating%2C+and+Maintenance+of+Dorsal+Root+Ganglion+Neurons+for+Monoculture+and+for+Coculture+with+Dorsal+Horn+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Dissection, Plating, and Maintenance of Dorsal Root Ganglion Neurons for Monoculture and for Coculture with Dorsal Horn Neurons.</a> Cold Spring Harbor Protocols. , (2009).</li>
<li>Leach, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+culture+of+primary+motor+and+sensory+neurons+in+defined+media+on+electrospun+poly-L-lactide+nanofiber+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The culture of primary motor and sensory neurons in defined media on electrospun poly-L-lactide nanofiber scaffolds.</a> J Vis Exp. (48), (2011).</li>
<li>Sasaki, Y., Araki, T., Milbrandt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulation+of+nicotinamide+adenine+dinucleotide+biosynthetic+pathways+delays+axonal+degeneration+after+axotomy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Stimulation of nicotinamide adenine dinucleotide biosynthetic pathways delays axonal degeneration after axotomy.</a> J. Neurosci. 26, 8484-8491 (2006).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bu teknik uyarlama dikkate almak için önemli parametreler, incelenecek olan nöron popülasyonu, alt-tabakanın, filtrenin gözenek boyutu ve yüzey alanı bulunmaktadır. Tüm bu parametreler elde edilen nörit hazırlama özgüllüğü, kalite ve miktar etki edecek, ve son kullanıcı tarafından dikkatli bir şekilde ele alınmalıdır. Bu protokolde yer alan örneklerde, DRG nöronlarının kullanımı, böylece, saf (özel) aksonal hazırlama vermek için sadece aksonlar uzanan avantajına sahiptir. Embriyonik DRG&#39;...

Nöronların aksonal bölmesi somato-dendritik bölmesinden fonksiyonel bağımsızlık büyük derecesini gösterir. Projeksiyon nöronlarının olarak, aksonlar nöronal protein 1,2 çoğunu içerir. Son çalışmalar erken aksonal disfonksiyon nörodejeneratif hastalıklar ve nöropsikiyatrik bozuklukların 3 ortak bir özelliği olarak görünür olduğunu göstermiştir çünkü akson fizyolojisi ve fizyopatolojisi çalışma nörobilim toplumda ivme kazanmıştır. Bu normal ve patolojik koşullar altında akson-özel mekanizmaların daha iyi anlaşılması disfonksiyonu sürücü erken olaylara ışık tutacak gibi görünmektedir. Mevcut protokol biyokimyasal için uygundur ve immünositokimyasal analizleri saf aksonal büyük miktarda malzeme elde etmek için gözenekli bir membran (filtre) taşıyan kültür ekler nasıl kullanılacağı açıklanır. Filtrenin kullanılması aksonal biyoloji ilk Steward tarafından yürütülen çalışma ekler veayrıca bugünkü yapılandırmasına Twiss ve arkadaşları 5 tarafından geliştirilen meslektaşları 4. ve. Bu teknik çalışılan nöronların nüfus için karşılamak için her durumda hafif modifikasyonlarla, akson ve dentrit biyoloji farklı yönlerini grup ile mevcut anda kullanımda, yapılan tedaviler ve biyokimyasal analizler type 6-9 kullanılır. Bu protokol uygulamaları gibi çeşitli tüm alternatifleri karşılamak niyetinde değil, bir çok uygulama için uygun olan basit bir yaklaşım sağlamaz. Özellikle, burada açıklanan protokol geri ve trofik faktörlerin 9 yoksun zaman daha hızlı dejenere az aksonlarını üretilen biyokimyasal analizler için aksonal verim maksimize ve literatürde tarif aksonal dejenerasyon-diğer kaplamalar incelemek için en uygun olan bir üçlü kaplama kullanır. Bu prosedürde, nöronal hücre gövdeleri filtre wh üstünde izole edilmiş durumdaIle aksonlar gözeneklerinden geçmek ve taban yüzeyi boyunca büyür. Filtrenin alt yüzeyi üzerinde büyür (glia ve nöronal hücre gövdesi yabancı maddelerden arındırılmış) Saf akson biyokimyasal analizler için toplanabilir ya da in situ sabit ve imünositokimyasal teknikler 9 ile incelenebilir. Prosedür, arka kök gangliyon (DRG) embriyonik duyu nöronlarının kullanımına dayanır. Bu faktörün yoksun zaman hızlı bir şekilde geçmesi için dejenerasyon Embriyonik DRG&#39;ler yaygın olarak sinir büyüme faktörü (NGF) tutulan zaman, bu hücrelerden nevritlerin in vitro olarak hızlı ve sağlam bir büyüme geçmesi için aksonal biyoloji incelemek için kullanılır ve. Bu yöntem ile toplanan tüm neurites saf aksonlar, böylece de, DRG nöronları, dendrit yoksundur. Filtre uçlar aksonlarını incelemek için kullanılan diğer yöntemlere göre büyük bir avantaj oluşturmaktadır. Süreçleri olanlardan hücre soma meydana ayırt etmek için mikroskobu kullanımına dayanan çalışmalarXons sınırlı biyokimyasal bilgi sağlar. Başka bir örnek olarak, bölmeli kültür sistemleri (örneğin, 10 ya da Campenot odaları mikroakışkan cihazları 11) görüntüleme yaklaşımlara ve hücre bölmelerine ayırıcı tedavisi için yararlı olan, ancak gerekli biyokimyasal analizler için bu tekniklerin kullanımı engelleyen, aksonal malzemenin sadece küçük miktarlarda sağlamak numunenin, nispeten büyük miktarlarda. Dahası, bunların kullanımı önemli eğitim gibi özel cihazlar gerektirir ve zaman alıcı vardır. Genellikle Eksplantlardan aksonlarını izole etmek için kullanılan başka bir yaklaşım elle akson numune toplama önce (nöronal hücre gövdeleri içeren) bir eksplant merkezi kaldırmaktır. Bu akson zenginleştirilmiş preparatlar büyük miktarlarda üretmek de, bu hazırlanmasında aksonlar glia saran ve hızlı bir şekilde (en az bir deneyin bir örneği olarak) 6 kuyu art arda 20 eksplant bedenlerini çıkarılması olabilir, zaman alıcı ve fizibilite limitte. Buna karşılık olarak, burada sunulan yöntem daha sonra western blot, immünopresipitasyon 6, kuzey blot 5 kütle spektrometrisi 6, RNA saflaştırma gibi sık bütün hücre lizatları analiz etmek için kullanılan hemen hemen her türlü biyokimyasal tekniği ile analiz edilebilir ve bol saf aksonal preparatlar üretir 7,12,13, ve diğerleri. Protokol, daha da IF ile incelemeye filtrenin alt tarafına büyüyen aksonlar düzeltmek için mümkün olduğu gibi, (IF) teknikleri bağışıklık uygulanabilir. Hiçbir hücre gövdeleri son hazırlık var çünkü bu yaklaşım büyük ölçüde aksonal özgü süreçlerin analizini kolaylaştırır. Hücre gövdeleri yüksek immunofluorescent sinyal çoğu muayene ve bu akson gibi ince yapılarından kaynaklanan bir zayıf sinyal analizi çürüten bu yana bu önemli bir avantajdır. Aksonal dejenerasyon ar çalışma kültürü yöntemiyle İki uygulamalarıe tarif; gelişim budama ve yaralanma kaynaklı dejenerasyon modeli bir modeli (genel olarak Wallerian dejenerasyon anılacaktır). Gelişimsel budama modelleme in vivo duyusal nöronlar hedef türetilen NGF miktarlarda ve yeterli nörotrofık ​​destek dejenere 14 almak için başarısız olan sınırlayıcı için rekabet olduğu gerçeğine dayanmaktadır. Bu durum, in vivo olduğu gibi, vücut hücre yıkımı, ardından aksonal dejenerasyon başlatır, kültür ortamı, ikinci NGF çekilmesi ile DRG embriyonik kültürlerde taklit edilebilir. Wallerian dejenerasyona modellemek için, hücre gövdeleri ile filtrenin üst tarafı kazınarak. Fiziksel hücre gövdelerinden ayrıldı ve daha sonra, ilk olarak 1850 yılında 16 olgusunu bilgi A. Waller almıştır Wallerian dejenerasyon 15 olarak bilinen, hızlı ve stereotipik dejeneratif süreci, tabi olmak filtrenin alt tarafına büyümüştü aksonlar.

<table><tbody><tr><td>CD-1 fare, E13 zamanlı gebelik</td><td>Charles River</td><td></td><td>Evde zamanlanmış gebelikler, farelerin çiftleşmesi ve vajinal tıkaçların kontrol edilmesiyle yapılabilir (Gün E0)</td></tr><tr><td>Falcon hücre kültürü ekleri</td><td>Corning</td><td>353102</td><td>1 & m gözenek boyutu, 6 kuyulu alıcı plakaya uyar</td></tr><tr><td>Falcon hücre kültürü yardımcı plakaları</td><td>Corning</td><td>353502</td><td>Uçlar için alıcı plakalar</td></tr><tr><td>Poli-D-lizin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6407</td><td>Suda 1 mg / ml'de kullanılır. Bir kez tekrar kullanılabilir.</td></tr><tr><td>Laminin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td>10 &'de kullanılır; su içinde g / ml. -80 dereceden 100x hisse senedi alın; C ve O/N'yi 4 &°C'de çözün; C&nbsp;</td></tr><tr><td>PureCol sığır kollajen çözeltisi</td><td>Gelişmiş Biomatrix</td><td>5005-B</td><td></td></tr><tr><td>Leibovitz'in L-15 Orta</td><td>Invitrogen</td><td>11415-064</td><td>DMEM</td></tr><tr><td>Neurobazal medium</td><td>Invitrogen</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>B-27 serum içermeyen takviyesi</td><td>ile değiştirilebilir Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>5-Fluoro-2 & prime;-deoksiüridin (FDU)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>F0503</td><td></td></tr><tr><td>NGF (2.5S, beta alt birimi)</td><td>Cedarlane</td><td>CLMCNET-001</td><td></td></tr><tr><td>Anti-NGF antikoru</td><td>Kurum</td><td></td> içinde <td>hazırlanmıştır Açıklandığı gibi: Acheson, A. et al. Fibroblastlarda ve Schwann hücrelerinde beyin kaynaklı nörotrofik faktör benzeri aktivitenin tespiti: NGF'ye karşı antikorlar tarafından inhibisyon. Nöron. <Güçlü>7</Güçlü>, 265-75, (1991).</td></tr><tr><td>Alomone Labs</td><td>AN-240</td><td>Ticari seçenek</td><td></td></tr><tr><td>Anti-tubulin antikoru</td><td>Millipore</td><td>MAB5564</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 keçi anti-fare antikoru</td><td>Invitrogen</td><td>A-11029</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">DRG kültür ortamı<</td></tr><tr>td colspan="4">Nörobazal Orta %2 B27 Nörobazal Takviye 2 mM l-Glutamin %1 Penisilin-streptomisin 10 ve mikro; M FDU 15 ng/ml NGF (yalnızca alt bölme)</td></tr><tr><td colspan="4">1x Laemmli numune tamponu</td></tr><tr><td colspan="4">2% SDS 50 mM DTT 60 mM Tris (pH 6.8) %5 Gliserol %0.01 (a/h) Bromofenol mavisi</td></tr></tbody></table>

biyokimyasal analiz için duyu nöronlar gelen üretim ve aksonlar izolasyonu gözenekli filtre kullanma

Production and Isolation of Axons from Sensory Neurons for Biochemical Analysis Using Porous Filters

Nöronal aksonlar, uzamaya aracılık etmek, bütünlüğü korumak ve dejenerasyonu indüklemek için belirli mekanizmalar kullanır. Fonksiyonel nöronal devreleri şekillendirmek için bu olayların uygun bir dengesi gereklidir. Burada açıklanan protokol, konvansiyonel biyokimyasal veya immünositokimyasal tekniklerle incelemeye uygun büyük miktarlarda saf aksonal preparatlar elde etmek için gözenekli bir zar (filtre) taşıyan hücre kültürü eklerinin nasıl kullanılacağını açıklar. Bu filtre eklerinin işlevselliği, embriyonik dorsal kök ganglionunun eksplantları kullanılarak gelişimsel budama ve Wallerian dejenerasyon modelleri ile gösterilecektir. Aksonal bütünlük ve fonksiyon, çok çeşitli nörodejeneratif patolojilerde tehlikeye girer. Gerçekten de, aksonal disfonksiyonun, çeşitli nörodejeneratif hastalıklarda nöronal soma kaybından çok daha erken hastalık seyrinde ortaya çıktığı açıktır, bu da bu bozukluklarda aksonal spesifik süreçlerin öncelikle hedef alındığını göstermektedir. Moleküler ve biyokimyasal tekniklerle analiz için saf aksonal örnekler elde eden bu teknik, aksonların fizyolojisini ve patofizyolojisini düzenleyen mekanizmalara yeni bir ışık tutma potansiyeline sahiptir. Bu da, sinir sisteminin dejeneratif hastalıklarını yönlendiren süreçleri anlamamızda bir etkiye sahip olacaktır.

E13.5 farelerden alınan dorsal kök ganglion eksplantları kültür içinde 2 gün içinde 2 mm'ye kadar ulaşan, filtreler üzerine çok sayıda poli-D-lisin, laminin ve kolajen (Şekil 1B, sol) ile kaplanmış bir sekans büyür. Bu alt-tabaka kombinasyonu özellikle canlı büyümesi verir; Diğer kombinasyonlar oldukça kısadır aksonlarını verim (Şekil 1B, sağ). Ayrıca, filtre üzerinde tutulan DRG'ler plastik Şekil 1C yetişen DRG'ler daha fazla ve daha uzun aksonlar uzatmak. <p class...

Bu makale, biyokimyasal ve immünositokimyasal analizler için büyük miktarlarda saf aksonal numune elde etmek için kullanılabilecek bir nöronal kültür sistemini açıklamaktadır. Bu teknik, normal aksonal fizyolojinin ve nörodejenerasyona yol açan sinyal yollarının daha iyi anlaşılmasını sağlayacaktır.

Biyokimyasal Analiz için Duyu Nöronlar gelen üretim ve Aksonlar izolasyonu gözenekli Filtre Kullanma

Neuronal axons use specific mechanisms to mediate extension, maintain integrity, and induce degeneration. An appropriate balance of these events is ...

Bu prosedürün amacı, konvansiyonel, biyokimyasal veya immünosito kimyasal tekniklerle incelemeye uygun saf aksonal preparatlar elde etmektir. Bu, ilk olarak embriyonik dorsal kök ganglion hücrelerinin, DRG nöronları aksonları uzatırken gözenekli bir zar filtresi taşıyan kültür ekleri üzerinde kültürlenmesiyle gerçekleştirilir. Aksonların bir kısmı filtredeki gözeneklerden büyür ve alt yüzeyine doğru uzarken, hücre gövdeleri üst yüzeyde izole kalır İstenilen deneysel manipülasyonlardan sonra, filtrelerin üst tarafındaki hücrelerin fiziksel olarak çıkarılması ve alt tarafta büyüyen aksonların tutulmasıyla aksonal preparat elde edilir.Sonuç olarak, izole edilen aksonlar biyokimyasal analizler için yatabilir veya konvansiyonel biyokimyasal tekniklerle analize uygun saf aksonal numuneler üretilerek immünokimyasal inceleme için sabitlenebilir. Bu prosedürün aksonların fizyolojisini ve patofizyolojisini araştırmak için çok yararlı olduğu kanıtlanmıştır. Göreceğiniz gibi, tekniğin uygulanması nispeten basittir ve belirli deneysel ortamlara uyarlanabilir.Kaplamadan bir gün önce aksonal dejenerasyon mekanizmalarının incelenmesinde kullanımını göstereceğiz. Filtreleri steril bir doku kültürü başlığı altında kaplayarak başlayın. İlk olarak, altı kuyulu bir alıcı plakaya 24 milimetre filtre yerleştirilir.Daha sonra mililitre başına bir miligramlık iki mililitre, alt bölmeye su içinde poli de lisin ve üstüne bir mililitre ekleyin ve ekleri oda sıcaklığında bir saat inkübe edin. Bir sonraki aspirasyonu olan poli de lycine, doğrudan filtrenin altında sıkışan sıvı kalıntısını çıkardığından emin olmaktır. Daha sonra suyu aspire ettikten sonra bir kez su ile durulayın, kapağı kapatın ve plakaları gece boyunca davlumbazda kurumaya bırakın.Ertesi sabah, bir laminat ve su çözeltisini 37 santigrat derecede karıştırın ve ısıtın. Laminin çözeltisindeki ekleri, standart hacimler kullanarak 37 santigrat derecede bir hücre inkübatöründe bir saat inkübe edin. Aspire ettikten sonra.Laminin, mililitre başına 0.1 miligram, suya kollajen ekler ve oda sıcaklığında bir saat inkübe eder, daha sonra kollajeni aspire eder ve bir kez steril su ile yıkayın. Filtreler, metin protokolünde açıklandığı gibi bir E 13 fare embriyosunun diseke edilmesinden ve dekapite edilmesinden sonra kültür ortamını ve DRG explan'ını almaya hazırdır. Diseksiyon mikroskobu ile gözlem yaparken embriyoyu L 15 ortamı ile doldurulmuş bir Petri kabına yan yatırın, göğüs, göbek uzuvları ve kuyruğu atmak için yan taraflar boyunca bir kesi yapın.Omurganın ventral tarafı yukarı bakacak şekilde sırtı yerleştirin ve küçük yaylı makas kullanarak tüm iç organları çıkarın. Omurgayı orta hat boyunca ventral tarafından keserek tüm omuriliği açığa çıkarın. Karkası bir çift üç numaralı forseps ile tutun ve omuriliği en rostral yönüyle tutmak için ikinci bir çift kullanın.Şimdi, kordonu yavaşça ve nazikçe omur boşluğundan çekin. DRG'ler açığa çıktıkça, onları omurilikten sıkıştırmak için ultra ince beş numaralı forseps kullanın. Ayrılmış DRG'leri, büyütmek için kesilmiş 200 mikrolitrelik bir pipet ucu kullanarak tabağın dibine yerleştirin.Açılışı. Toplanan DRG'leri aspire edin ve buz üzerinde bir tüpe yerleştirin. Üst bölme NGF'sini serbest tutarken alt bölme ortamını mililitre başına 15 nanogram NGF ile destekleyin.Ardından, standart hacimleri kullanarak kaplanmış eklere 37 santigrat derecede eksiksiz DRG ortamı ekleyin. Ardından, açıklığını büyütmek için ucu kesilmiş 1000 mikrolitrelik bir pipet kullanın. Pipeti 800 mikrolitreye ayarlayın.Daha sonra, filtrenin üst tarafından yaklaşık 200 mikrolitre ortama, dibe batmış D RRG'leri yeniden askıya almak için küçük bir hacimde yukarı ve aşağı DRG içeren tüp pipetine aktarın. Yeniden askıya alındıktan sonra tüm hacmi aspire edin, şimdi pipet ucunu ekin ortasına daldırarak ve DRG'leri dışarı atarak DRG'leri filtreye aktarın. Kültürleri bir hücre inkübatöründe 37 santigrat derecede tutun.Medyayı değiştirmek için medyayı her iki ila üç günde bir değiştirmek. Önce üst bölmeyi, ardından alt bölmeyi aspire edin. Trofik faktör çekilmesinin aksonlar üzerindeki etkisini incelemek için alt bölmeden başlayarak standart hacimlerde taze ortam ekleyin.Aksonal ekstansiyona izin vermek için iki gün bekleyin. Ardından, ortamı üst ve alt bölmelerden çıkarın. Daha sonra, kalan veya endojen olarak üretilen ve GF'yi ayırmak için, NGF'den yoksun ve anti NGF antikorları içeren ortamlar ekleyin.NGF yoksunluğuna bağlı dejenerasyonun, arian dejenerasyonu sırasında çalışmak için istenen süre boyunca devam etmesine izin vermek için plakaları 37 santigrat derecede hücre inkübatöre geri koyun. İki gün boyunca NGF'de tutulan DRG explan içeren filtreleri kullanın. Filtrenin üst tarafından DRG'leri kazımak için bir hücre kazıyıcı kullanın.Sıyırıcıyı x ve y yönlerinde ve daireler halinde ileri geri hareket ettirerek nöronal hücre gövdelerinin tamamen çıkarılmasını sağlayın. Filtreye bağlı X bitkisi kalmadığını kontrol ederek kazıma işleminin başarısını onaylayın. Daha sonra, yüzen eksplantları içeren ortamı üst bölmeden atın ve mililitre ve gf başına 10 nanogram içeren bir mililitre ön ısıtma tam DRG ortamı ekleyin.Daha sonra, aksonal örneklerden proteini çıkarmak için wallerian dejenerasyonunun istenen süre boyunca ilerlemesine izin vermek için plakayı 37 santigrat derecede hücre inkübatörüne geri koyun. 1,5 mililitrelik toplama tüplerini 75 mikrolitre kuzu yaprağı numune tamponu ile doldurarak başlayın ve tüpleri buzun üzerine yerleştirin. DRG explan'ı içeren filtreyi PBS'de yıkayın ve filtrenin üst tarafını daha önce olduğu gibi kazıyın.Ek parçayı plakadan çıkardıktan sonra, filtrenin üst tarafını temizlemek için pamuklu uçlu bir aplikatör kullanın. Ardından, fazla PBS'yi üst ve alt taraflardan aspire edin. Ardından, eki baş aşağı bir tezgahın üzerine yerleştirin ve filtreyi ek parçadan kesmek için keskin bir neşter kullanın.Ardından filtreyi forseps ile tutun. Aşağıdan yukarıya. Filtrenin çevresinden ortasına kadar bir kesim yapmak için makas kullanın.Şimdi filtreyi toplama tüpünün üzerine yerleştirin ve forseps ile filtrenin ortasını tüpün aşağısına doğru bastırın. Bunu yaparken, bir huni oluşacaktır, huni şeklindeki filtreyi tüpün dibine itin, böylece laly numune tamponuna daldırılır. Şimdi tüpleri kaplayarak ve dört dakika kaynar suya koyarak protein ekstraksiyonunu tamamlayın.Forseps kullanarak filtreyi çıkarın ve tüpün üstüne baş aşağı yerleştirin ve kısa bir süre santrifüjleyin. Bittiğinde, kurumuş filtreleri immünofloresan için atın. PBS'deki ekleri altı kuyulu plakalarda yıkayın.Daha sonra ekleri PBS'de taze hazırlanmış% 4 paraform aldehit içinde oda sıcaklığında 10 dakika boyunca bir çalkalayıcı üzerine sabitleyin Sabitlemeden sonra, yalnızca filtrenin alt yüzeyinde büyüyen aksonların lekelenmesini sağlamak için eklerin üst tarafını kazıyın ve temizleyin. Ardından, metin protokolünde açıklandığı gibi standart immünofloresan gerçekleştirin. Tüm immünofloresan inkübasyonları tamamlandıktan sonra.PBS'yi son yıkamadan itibaren dökün. Filtrenin üst tarafını pamuklu uçlu bir aplikatör ile temizleyin ve üst ve alt taraflardan kalan sıvıyı aspire edin. Ek parçayı tezgahın üzerine baş aşağı yerleştirin ve filtreyi ek parçadan kesmek için keskin bir neşter kullanın.Ardından filtreyi forseps ile aşağı doğru tutun. Bir mikroskop lamı üzerine yerleştirin. Filtrenin üzerine bir kapak kayması, yerleştirmek için floresan uyumlu montaj ortamı kullanın ve filtreyi karanlıkta dört santigrat derecede düz bir şekilde kurumaya bırakın.Floresan mikroskobu kullanarak görüntüleri inceleyerek ve yakalayarak tamamlandı. Filtrelerin polilizin, laminin ve kollajen ile sıralı olarak kaplanması, tek başına polilisin veya aynı substrat altında polilisin ve kollajen ile yetiştirilenlere kıyasla daha fazla ve daha uzun aksonlar büyüyen bitkilerle sonuçlanır. Kaplama koşulları.Filtrelerde bakımı yapılan DRG Explan, plastik üzerinde yetiştirilen X bitkilerinden çok daha coşkulu aksonal büyüme gösterir. Filtrenin üst tarafının kazınmasından sonra elde edilen aksonal preparat, hücre çekirdeklerinden yoksundur, bu da hücre gövdelerinin gösterilen filtrenin alt tarafından dışlandığını gösterir. Burada, 24 milimetrelik bir filtrenin alt tarafında büyümek için filtre gözeneklerinden uzanan yaklaşık 17 explan'dan kaynaklanan akson örnekleri verilmiştir.Filtre üstlerinden ve altlarından toplanan lizatların immün lekeleri, nükleer bir belirteç olan histon H üç'ün filtre üstleriyle sınırlı olduğunu göstermektedir. Toplam protein içeriği, farklı numuneler arasında normalize edildi. NGF yoksunluğu deneyleri, bu görüntülerde, NGF'de tutulan veya 12 veya 36 saat boyunca NGF'den yoksun bırakılan explan'dan aksonal preparatların farklı büyütmelerinde gösterilmiştir.Duvar Arian aksonal dejenerasyon çalışmaları, diğer wallerian dejenerasyon modellerinde olduğu gibi, bozulmamış eksplantlardan veya transeksiyondan üç ila 7.5 saat sonra aksonal preparatların bu görüntülerinde gösterilmektedir. Beş milimolar NAD plus, bir kez ustalaştıktan sonra transeksiyonun neden olduğu dejenerasyondan korur. Bu teknik sağlamdır ve çoğaltılması kolaydır.İlk olarak 2001 yılında twist ve meslektaşları tarafından tanımlandığından beri büyük miktarlarda güvenilir aksonal preparatların üretilmesine izin verir. Bu tekniğin varyasyonları, akson ve dendrit fizyolojisinin birçok yönünü keşfetmek için kullanılmıştır. Bu tekniğin diğer uygulamalarını keşfetmek için metin protokolündeki alıntılara bakın.

production-isolation-axons-from-sensory-neurons-for-biochemical

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Biz yetişkin sıçan siyatik sinir miyelin bırakın ve kalan akson zenginleştirilmiş malzeme çıkarılması takip olmayan aksonal yapıları, lyse hipotonik orta sinir fasiküller ve kuluçka diseksiyonu dayalı axoplasm izolasyonu için bir protokol göstermektedir.

Sıçan Siyatik Sinir Axoplasm İzolasyon

Fare beyin korteksi translationally etkin, sağlam synaptoneurosomes (SNS) hazırlamak için bir yöntem açıklanmıştır. Bu yöntem, aktif SNS hızlı hazırlanması için izin veren bir süreksiz Percoll sakaroz yoğunluk gradiyenti kullanır.

Süreksiz Percoll Sakkaroz Yoğunluk Gradient kullanarak Fare Cortex Synaptoneurosomes hazırlanması

Bu video, fare omurga köklerinden Schwann hücrelerinin izolasyonunu ve kültürlenmesini özetlemektedir. İzole edilen hücreler daha sonra spesifik ortamda kültürlenir. Schwann hücreleri, diferansiyel sindirim ve aderans yoluyla izole edilir. Daha sonra bağlanma ve çoğalma için hücre dışı matris kaplı lamellere aktarılırlar.

Schwann Hücrelerinin Fare Omurga Köklerinden İzolasyonu

Biz deniz deniz tavşan sinir sisteminin diseksiyonu...

Duyusal nöronlar izolasyonu<em&gt; Aplysia californica</em&gt; Glutamaterjik Akımlar Patch Kelepçe Kayıtlar için

Afferent duyusal nöronlar, duyusal bilgileri çevreden merkezi sinir sistemine gönderir. Spesifik afferent nöronların tanımlanması, fizyolojilerinin anlaşılmasına yardımcı olacaktır. Afferent nöronları tanımlamak için bir retrograd etiketleme yöntemi tanımladık ve bu nöronlardaki voltaj kapılı iyon kanallarını yama kelepçesi elektrofizyolojisi ve immünositokimya kullanarak inceledik.

Ifade İyon Kanallarının Çalışması için özel Duyusal Nöron Populasyonlarının Belirlenmesi

Burada, omuriliğin hidrolik ekstrüzyonunun yanı sıra aynı kemirgende spesifik dorsal kök gangliyonlarının (DRG'ler) tanımlanması ve izolasyonu için bir protokol sunuyoruz. Standart omurilik izolasyon yöntemleriyle karşılaştırıldığında, bu yöntem önemli ölçüde daha hızlıdır ve doku hasarı riskini azaltır.

Kemirgenler dorsal kök gangliyon Omurilik ve İzolasyon hidrolik eldesi

Burada, fibroblastlar ve Schwann hücrelerini in vitro olarak duyusal ve motor sinirlerden arındırmak için bir yöntem salıyoruz.

Fibroblastların ve Schwann Hücrelerinin İn vitro duyusal ve motor sinirlerden arındırması

Mevcut protokol, nöronal mitokondrinin mikroakışkan odalarda tohumlanmasını ve boyanmasını tanımlamaktadır. Bu odalardaki akışkan basınç gradyanı, aksonlardaki mitokondrilerin, hücre gövdesi bölmesini etkilemeden farmakolojik zorluklara yanıt olarak özelliklerini analiz etmek için seçici tedavisine izin verir.

Aksonal Mitokondrinin Mikroakışkanlar Yardımlı Seçici Depolarizasyonu

Bu protokol, aksonal yaralanma sonrası nöronal metabolik dinamikleri modelleyen, görüntüleme, çoklu omik analiz ve içsel metabolik yeniden şekillenmenin mekanik çalışmalarını mümkün kılan bir mikroakışkan sistemi tanımlar.

Aksonal Yaralanma Modelleri Yapımı ve Çoklu Omik Analizin Etkinleştirilmesi için Mikroakışkan Çip

Nöronal membran proteazomu (NMP) yakın zamanda somatosensoriyel nöronların bir alt kümesinde dokunma, ağrı ve kaşıntı algısının önemli bir düzenleyicisi olarak tanımlandı. Bu makale, hücre sınıflandırması, transkriptom profili oluşturma ve kültür bazlı immünofloresan analizleri kullanarak hücre tipine özgü NMP ekspresyonunu ve fonksiyonunu analiz etmek için sağlam bir iş akışı sunmaktadır.

Somatosensoriyel Nöronlarda Nöronal Membran Proteazomunun Hücre Alt Tipine Özgü Analizi

Bu çalışma, gözenekli membran insertleri kullanarak aksonal mRNA'ları izole etmek için sağlam bir yöntem sunmaktadır; böylece toplam nöron ve nörit ayrımı ve RNA arındırmasını mümkün kılar. RTddPCR ile birleştiğinde, bu yaklaşım düşük kopyalı transkriptlerin mutlak nicelendirilmesini sağlar; mRNA taşınımı ve yerel çeviri çalışmalarını yüksek duyarlılık, tekrarlanabilirlik ve geniş deneysel uygulama ile kolaylaştırır.

Gözenekli Membran Insertleri ve RTddPCR Kullanarak Aksonal MRNA'ların İzolasyonu ve Nicelesi

Öğrenin, gözenekli filtre kullanarak duyu nöronlarından saf akson örnekleri izole etme yöntemini. Bu teknik, biyokimyasal ve immünositokimyasal analizler için güvenilir akson preparatları sağlar.

Biyokimyasal Analiz için Duyu Nöronlar gelen üretim ve Aksonlar izolasyonu gözenekli Filtre Kullanma

Daha fazla video keşfet