Name: Çekme Kuvveti Mikroskopi Hücre Kültürü Yüzey civarında yerelleştirme raportör flöresan Beads için Yeni Bir Yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 30 s
Description: Öğrenin, çekme kuvveti mikroskopisi için poliakrilamid jellerde floresan mikroküreleri hücre kültürü yüzeyine yakın yerleştirme yöntemini. Bu teknik, hücre mekaniği çalışmalarında daha hassas kuvvet hesaplamaları sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Disiplinlerarası İnovasyon Girişimi Programı, Illinois Üniversitesi kabul etmek istiyorum, 12.035 hibe. SK Ulusal Bilim Vakfı (NSF) Hibe dan UIUC finanse edildi 0965918 IGERT: Hücresel ve Moleküler Mekaniği ve Biyonanoteknoloji içinde Araştırmacıları Nesil eğitilmesi.

Imalatı ve hücre kültürü yüzeye yakın fluoresan gömülü mikrosferler ile katılıkları değişen PA jeller fonksiyonalize. 1. Üst cam kapak slipleri işlevselleştirici <ol><li> Temiz cam kapak slipleri (# 1.0, 12 mm çap.) Sabun ve su ile, ardından da etanol ile yabancı tozunu alın. </li><li> Yer cam kapak onlar lamelleri ile etkileşim kolaylığı kolaylaştırmak için değmiyor böyle bir rendelenmiş yüzey (yani pipet tutucu) üzerinde kayıyor. </li><li> Kat, kapağın tüm yüzey poli-D-Lizin 1 saat (Şekil 1A) (0.1 mg / ml) ile kayar. </li><li> Bu süre sırasında, 1 gerçekleştirmek: 0.1 um çaplı kolloid solüsyonu 10,000 seyreltme, deiyonize (Dİ) su ile mikro-kırmızı flöresanlı jel yüzeyi üzerinde 20 mikron 2 başına yaklaşık 1 mikro-partikül yoğunluğu elde edildi. Çeşitli dilüsyonları sonuçları için Şekil 2&#39;ye bakınız. Bu dilution Özel deneylerin ihtiyacını karşılamak üzere değiştirilebilir. </li><li> 30 dakika boyunca ultrasonik su banyosu içinde seyreltilmiş çözelti yerleştirin. </li><li> 1 saat sonra, dikkatle her kapak kayma kaldırın ve hava ile kuru darbe için cımbız kullanın. Rendelenmiş yüzeye kuru bir örtü fişleri dönün. </li><li> Her kapak kayma üzerine ultrasonik banyo ve pipetle 150 ul gelen seyreltilmiş kolloid çözüm çıkarın. 10 dakika (Şekil 1B) için bırakın. </li><li> Dikkatle her kapak kayma kaldırın ve hava ile kuru darbe için cımbız kullanın. Kullanıma hazır olana kadar kuru bir örtü karanlıkta rendelenmiş yüzey ve mağaza fişleri dönün. </li></ol> Doğrudan Glass Bottom Petri Yemekleri PA Jel hazırlanması 2. <ol><li> 100 ° C&#39;ye kadar ön ısıtma ocak gözü. </li><li> Cam alt Petri yemekleri istenilen sayıda yatırın (14 mm ile 35 mm çanak mikro-iyi, # 1.0), bir kimyasal davlumbaz düz bir yüzeye yerleştirin. </li><li> % 97 3-aminopropil-trimethoxys her Petri kabı, mikro oyuk cam bölümünü kapsarliane kimyasal aktivasyon için 7 dakika boyunca (3-APTES&#39;le). Polistiren zarar görmesini önlemek için bir Petri kabındaki plastik yüzeyine 3-APTES yersiz damlamasını önlemek için dikkat ediniz. </li><li> 7 dakika sonra, DI su ile Petri doldurmak ve atık kabı içine atın. </li><li> Daha sonra tekrarlayın için her yemeğin adım 2.4 3x ve ekstra su çıkarmak için Petri kabı sallayın. Cam kısım kuruyana kadar sıcak bir plaka üzerinde Petri kapları yerleştirin. </li><li> Sıcak plakadan Petri kapları çıkarın ve kimyasal bir davlumbaz olarak düz bir yüzeye döner. </li><li> Kimyasal bir davlumbaz olarak,% 0.5 glutaraldehid ile bir çözelti yapmak ve de 30 dakika için çözelti ile her bir Petri kabı cam bölümünü kapsar. Plastik zarar görmesini önlemek için bir Petri kabındaki plastik yüzeyine glutaraldehit yersiz damlamasını önlemek için dikkat ediniz. </li><li> 30 dakika sonra, DI su ile Petri doldurmak ve durulayın atık kabına atın ve glutarald çıkarınehyde. </li><li> Daha sonra tekrarlayın için her yemeğin adım 2.4 3x ve ekstra su çıkarmak için Petri kabı sallayın. Cam kısım kuruyana kadar sıcak bir plaka üzerinde Petri kapları yerleştirin. </li><li> PA jel solüsyonunun bileşenlerin karıştırılması önce, cam alt ile jel hızlı sandviçlenmesine yönelik sağlayan, kolaylıkla ulaşılabilir olacak şekilde kimyasal bir davlumbaz içine fonksiyonalize cam slaytlar hareket jel çözelti karıştırıldıktan sonra Petri kapları. </li><li> 15 ml&#39;lik bir santrifüj tüpü, Tablo 1 de listelenen konsantrasyonlarda hemen arka arkaya% 40 bisakrilamid, 2% akrilamid ve akrilik asit karışımı, istenen matris esnekliğini elde etmek için (10 yayınlanan bir protokolün uyarlanmıştır). </li><li> Jel tamamlamak üzere solüsyon arzu edilen matris elastiklik tekabül eden Tablo 1&#39;de belirtilen miktarlarda, 100 mM HEPES,% 10 amonyum persülfat ve TEMED ilave edin. </li><li> Hemen cam kısmın merkezi üzerine jel solüsyonu 15 ul pipetpetri kutularının. </li><li> Hemen cımbız ile bir fonksiyonlaşmış cam kapak kayma pick up. <ol><li> Floresan boncuk jel çözeltisi ile yan yapma temas olduğu gibi üzerinde cam kapak kayma çevirin. </li><li> Yavaşça fonksiyonalize yan jel (Şekil 1C) ile temas içinde olduğu şekilde, artık sıvı PA jelinin üzerine kapak kayma yerleştirin. Not: En iyi sonuçlar için, ikinci bir kişi birden fazla Petri kapları üzerine sıvı Pensilvanya jel çözüm pipetleme ise kısmi polimerizasyon olasılığını önlemek için kapak kayma ekleme rolü için tavsiye edilir. </li></ol></li><li> PA jel düşük seviyelerine polimerleştirerek floresan nano partiküller yerçekimi etkileri kaçınarak yardımcı olmak için tüm Petri kapları ters çevirin. </li><li> PA jel stok çözelti görsel olarak santrifüj tüpü içinde polimerize en az 35 dakika boyunca, ya da kadar bekleyin. </li><li> Üzerinde geri Petri yemekleri Flip ve kapak kayma kaldırılması ile yardımcı olmak için PBS ile onları doldurmak. </li><li> Dikkatle kapak kayma çevresini kazımak için cımbız kullanarak, Petri kabı cam kısmı ve kapak kayma hatları ile temas. Kapak kayma yerinden kadar birkaç çevrimi gerçekleştirin. Kapak kayma çıkarın ve uygun bir kavuz çöp bidonuna atın. </li><li> Tüm kapak slipi üzerinde ayrılmasından sonra, floresan boncuk jel (Şekil 1D) transfer olacaktır. Tamamen PBS ile PA jeller Kapak her yemeğin Petri kabı kapağı yerleştirin ve 4 ° C&#39;de saklayın. </li></ol> 3. Fibronektin PA jel işlevselleştirilmesi <ol><li> Kurulu bir protokol 11&#39;de tarif edildiği gibi, aşağıdaki önceden hazırlanmış solüsyon hazırlayın: solüsyonu ıslatın (137 mM NaCI,% 5 (h / h) gliserol) ile karıştırılır ve 2 x konjugasyon tamponu (0.2 M 2-(N-morfolino) etansülfonik asit (MES), 10 % (h / h) gliserol, pH 4.5). </li><li> PA jelleri içeren cam-alt yemekler tüm PBS kaldırmak için biyolojik bir ocak içinde bir vakum pompası kullanılır. </li><li> Pipetleyinte jel tamamen daldırılır şekilde, her jeli üzerine çözelti ıslatın. En az 1 saat oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Sıcak 1-etil-3-[3-dimetilaminopropil] karbodiimid hidroklorür (EDC) ve oda sıcaklığında N -hydroxysulfosuccinimide (NHS) içerir. </li><li> EDC 10x çözeltileri (150 mM deiyonize suda 19 mg / ml) ve NHS (250 mM deiyonize suda 29 mg / ml) ile karıştırın. </li><li> 1 bölümü 10x EDC, 1 kısım 10x NHS, 3 parça DI su ve 5 parça 2x konjugasyon tampon karıştırın. </li><li> Emmek çözeltinin çıkarılması için biyolojik bir ocak içinde bir vakum pompası kullanılır. Tüm akışkan jel yüzeyden emin olun. </li><li> Jel yüzeyini kaplayan ve Petri kabına (150-250 ul) cam alt kuyu doldurmak için yeterli NHS / EDC çözeltisi ekleyin. Karanlıkta 30 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir. </li><li> Oda sıcaklığında erimeye fibronektin. Çözüldükten sonra, 50 ug / ml fibronektin çözüm oluşturmak için steril distile su karıştırın. </li><li> NHS / EDC Solu kaldırmak için biyolojik bir ocak içinde bir vakum pompası kullanınyon. Tüm akışkan jel yüzeyden emin olun. </li><li> Her jel için fibronektin çözeltisi 150 ul ilave edin. Fibronektin bağlanmasına olanak sağlamak için 35 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir. </li><li> 35 dakika sonra, 2 haftaya kadar 4 ° C &#39;de her bir Petri kabı ve saklamak için PBS ekleyin. </li></ol> 4. Çekiş Kuvveti Deneyleri <ol><li> Bir su banyosunda ılık bir ortam hücre PBS ve 37 ° C tripsin. </li><li> Jeller durular arasında PBS aspire, steril PBS ile 5 kata, ve kaputun kaplı bırakın durulayın. </li><li> Şişe içeren hücrelere 1 ml tripsin 2 cm başına 25 ekleyin. Hücreler şişe kaldırdı sonra, hücre medya ile tripsin sulandırmak ve hücreleri saymak. Jel yüzey alanına bağlı olarak, / cm2 3000 hücrelerinin bir nihai hücre yoğunluğu için tohumlama jel başına gerekli olan hücre sayısının belirlenmesi. Seyreltik veya hücreye ortam karışımından 150 ul hücre, bu sayı içerir şekilde süspansiyon konsantre edilir. Hücre Suspens alikosu 150 ulHer jel üzerine iyon. </li><li> 30 dakika için bir kuluçka makinesi içinde hücreleri içeren Petri kapları yerleştirin. Daha sonra dikkatli bir şekilde Petri kapları kaldırmak ve çanak şeklinde ve yüzeyleri tamamen batırılır ortam (yaklaşık 2 mi) ile Petri kabı kalan doldurun. </li><li> Görüntü alımı kadar inkübatör Petri kapları geri yerleştirin. </li><li> , Diferansiyel Girişim Kontrast (DIC) prizma takın, 40x suya daldırma hedefi eklemek mCherry veya eşdeğer floresan filtreyi seçin ve çevre odasında açın: görüntüleme için mikroskop ve veri toplama sistemi hazırlayın. </li><li> Görüntüleme için hazırlandığı zaman, inkübatör bir Petri kabı çıkarın ve mikroskop sahnede yavaşça yerleştirin. DIC görüntüleme için Petri kabı kapağını çıkarın. </li><li> Tek bir hücre bulmak ve DIC hücrenin tek bir hareketsiz görüntü yakalamak. </li><li> Mikroskop sahne hareket ettirmeden, floresan görüntüleme moduna geçiş. Floresan-küreler ve rec odaklanmaMikro-kürelerin, bir görüntü Kat. </li><li> Dikkatlice bir pipet ile Petri kabı, hücre ortamını çıkarın ve% 0.05 tripsin-EDTA ekleyin. </li><li> Görüntü sonra hücreler hücre altında mikro-müstakil. </li><li> ImageJ 12 Kullanım parçacık görüntü velosimetri (PIV) analizi nedeniyle hücresel kuvvetleri deplasman alanını hesaplamak için. </li></ol>

<ol><li>Pelham, R. J., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+locomotion+and+focal+adhesions+are+regulated+by+substrate+flexibility%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility.</a> PNAS. 94 (25), 13661-13665 (1997).</li>
<li>Dembo, M., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stresses+at+the+cell-to-substrate+interface+during+locomotion+of+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Stresses at the cell-to-substrate interface during locomotion of fibroblasts.</a> Biophys. J. 76 (4), 2307-2316 (1999).</li>
<li>Lo, C. M., Wang, H. B., Dembo, M., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+movement+is+guided+by+the+rigidity+of+the+substrate%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Cell movement is guided by the rigidity of the substrate.</a> Biophys. J. 79 (1), 144-152 (2000).</li>
<li>Aratyn-Schaus, Y., Oakes, P. W., Stricker, J., Winter, S. P., Gardel, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+Complaint+Matrices+for+Quantifying+Cellular+Contraction%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction.</a> JoVE. , http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=2173 (2010).</li>
<li>Kandow, C. E., Georges, P. C., Janmey, P. A., Beningo, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyacrylamide+Hydrogels+for+Cell+Mechanics%3A+Steps+Toward+Optimization+and+Alternative+Uses%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Polyacrylamide Hydrogels for Cell Mechanics: Steps Toward Optimization and Alternative Uses.</a> Methods in Cell Biol. 83, 29-46 (2007).</li>
<li>Marinkovic, A., Mih, J. D., Park, J. -A., Liu, F., Tschumperlin, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+throughput+traction+microscopy+reveals+pivotal+role+for+matrix+stiffness+in+fibroblast+contractility+and+TGF-%CE%B2+responsiveness%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Lung+Cell+Mol.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Improved throughput traction microscopy reveals pivotal role for matrix stiffness in fibroblast contractility and TGF-β responsiveness.</a> Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 303 (3), 169-180 (2012).</li>
<li>Buxboim, A., Rajagopal, K., Brown, A. E. X., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+deeply+cells+feel%3A+methods+for+thin+gels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys.%3A+Condens.+Matter%22%5BJournal%5D)">How deeply cells feel: methods for thin gels.</a> J. Phys.: Condens. Matter. 22 (2010), 194116-194126 (2010).</li>
<li>Polio, S. R., Rothenberg, K. E., Stamenovic,, Smith, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+micropatterning+and+image+processing+approach+to+simplify+measurement+of+cellular+traction+forces%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">A micropatterning and image processing approach to simplify measurement of cellular traction forces.</a> Acta Biomaterialia. 8, 82-88 (2012).</li>
<li>Wang, Y. L., Pelham, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+a+flexible%2C+porous+polyacrylamide+substrate+for+mechanical+studies+of+cultured+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Preparation of a flexible, porous polyacrylamide substrate for mechanical studies of cultured cells.</a> Methods in Enzymol. 298, 489-496 (1998).</li>
<li>Tse, J. R., Engler, A. J. Preparation of Hydrogel Substrates with Tunable Mechanical Properties. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTse%2C+JR+%22Current+Protocols+in+Cell+Biol%22">Current Protocols in Cell Biol</a>. , Chapter 10, Unit 1 16(2010).</li>
<li>Poellmann, M. J., Wagoner Johnson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+and+Patterning+Polyacrylamide+Substrates+Functionalized+with+N-Hydroxysuccinimide%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+and+Mol.+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Characterizing and Patterning Polyacrylamide Substrates Functionalized with N-Hydroxysuccinimide.</a> Cell and Mol. Bioengineering. 6 (3), 299-309 (2013).</li>
<li>Tseng, Q., Duchemin-Pelletier, E., Deshiere, A., Balland, M., Guillou, H., Filhol, O., Théry, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+organization+of+the+extracellular+matrix+regulates+cell%E2%80%93cell+junction+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Spatial organization of the extracellular matrix regulates cell–cell junction positioning.</a> PNAS. 109 (5), 1506-1511 (2012).</li>
<li>Trappmann, B., Gautrot, J. E., Connelly, J. T., Strange, D. G. T., Li, Y., Oyen, M. L., Cohen Stuart, M. A., Boehm, H., Li, B., Vogel, V., Spatz, J. P., Watt, F. M., Huck, W. T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular-matrix+tethering+regulates+stem-cell+fate%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Extracellular-matrix tethering regulates stem-cell fate.</a> Nature Materials. 11, 642-649 (2012).</li>
<li>Wong, J. Y., Leach, J. B., Brown, X. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Balance+of+chemistry%2C+topography%2C+and+mechanics+at+the+cell-biomaterial+interface%3A+Issues+and+challenges+for+assessing+the+role+of+substrate+mechanics+on+cell+response%5BTitle%5D)+AND+%22Surface+Science%22%5BJournal%5D)">Balance of chemistry, topography, and mechanics at the cell-biomaterial interface: Issues and challenges for assessing the role of substrate mechanics on cell response.</a> Surface Science. 570 (1-2), 119-133 (2004).</li>
<li>Mih, J. D., Sharif, A. S., Marinković, A., Symer, M. M., Tschumperlin, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Multiwell+Platform+for+Studying+Stiffness-Dependent+Cell+Biology%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">A Multiwell Platform for Studying Stiffness-Dependent Cell Biology.</a> PLoS ONE. 6 (5), e19929(2011).</li>
<li>Butler, J. P., Tolić-Nørrelykke, I. M., Fabry, B., Fredberg, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traction+fields%2C+moments%2C+and+strain+energy+that+cells+exert+on+their+surroundings%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Traction fields, moments, and strain energy that cells exert on their surroundings.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 282, 595-605 (2001).</li>
<li>Tolić-Nørrelykke, I. M., Butler, J. P., Chen, J., Wang, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+and+temporal+traction+response+in+human+airway+smooth+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Spatial and temporal traction response in human airway smooth muscle cells.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 283, 1254-1266 (2002).</li>
<li>Atanackovic, T., Guran, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAtanackovic%2C+T+%22Theory+of+Elasticity+for+Scientists+and+Engineers%22">Theory of Elasticity for Scientists and Engineers</a>. , Maple-Vail Book Manufacturing Group. York, PA. (2000).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Bu teknik kullanıldığında, bu çözelti, uygun şekilde seyreltilmiş boncuk ve tanecikler arzu edilen çapına göre seçilir esastır, Pensilvanya jel tabaka sertliği ve arzu edilen deneyde incelenmektedir fenomenlerin boyut ölçeği. Üst cam kapak slipi üzerinde karıştırılmıştır fonksiyonalize önce boncuk seyreltilmesi zaman dikkatli alınmalıdır. Jel yüzeyinde halkalar arasında aralık koloit çözelti seyreltme faktörü değiştirerek değiştirilebilir. Çok fazla seyreltilmesi kapak kayma o çift boncuk sa...

Yerel çevre ile yaşayan hücrenin mekanik etkileşim yaygın Pensilvanya jeller kullanılarak incelenmiştir. Bu alt-tabakalar, bu alt-tabakaların en önemli avantajlarından 1. Biri 1997 yılında Dembo ve Wang tarafından kurulan basit, iyi karakterize edilmiş protokolüne dayanan kendi sertliği jel solüsyonunun özel bileşenlerin konsantrasyonlarını değiştirerek ayarlanabilir olmasıdır. Bu, farklı katılıklarla ortamlarda hücrelerin etkileşimi incelemek için bir arzu platform sağlar. PA jeller, hücre dışı matris (ECM), proteinleri ile kaplanmış olduğunu zaman, hücreler kuvveti oluşturarak, bunlara yapışır. Hücre kuvvetin sonucu olarak, jel elastik bir gövde olarak deforme eder. Bu deformasyon, hücrelerin ve jelin elastik özellikleri tarafından uygulanan kuvvetin büyüklüğüne bağlıdır. Çeşitli çalışmalarda hücresel çekiş kuvvetleri araştırmak PA jelleri istihdam var. PA jel imalat Bir varyasyonda, floresan mikrosferler (boncuk) t gömülürfarklı bükülmezliklerde 2 jelleri üzerinde çekme kuvvetlerinin hücre miktarını belirlemek için jel hroughout. Hücre kuvvet başvuru üzerine, boncuk jel izleyen deformasyon onların ilk konumdan yerinden. Deformasyon alan tek tek kordonların ölçülür. Bu deformasyon alan esneklik teorisi ile çekme kuvvetlerinin hesaplanması için jelin elastik özellikleri kullanılmaktadır. Bu ölçümler hücreler mekanik duygusu ve kendi yerel mikroçevresinin 3 ile etkileşim olarak nasıl fikir verir. Yaygın olarak kullanılan bir çok Pensilvanya jel üretim protokolleri, haplar, sıvı, polimerize edilmemiş halde PA, jel boyunca birbirine karıştırılır. Tam polimerleştirilmiş jel, Pensilvanya hacmi boyunca flüoresan boncuklar içerir. Hücre çekme kuvvetlerinin işlem olduğunda, jel yüzeyi (hücre alt-tabaka arayüzü) yakınındaki en boncuklar izlenir. Bu tür boncukların değiştirmeler kuvvet calculatio basitlik için hücre kültürü yüzeyinde meydana varsayılmaktadırn. Jelin derinliğinde boncukların gerçek konumu göz ardı edilir. Bununla birlikte, elastik bir ortamda (örneğin, Pensilvanya jel gibi), bir kuvvet tatbiki bir noktaya yakın bir kordon daha uzak bir noktadan bir boncuk daha hareket eder. Böylece, hücresel traksiyonların düşük hesaplanmasına yüzey sonuçlara edilene yüzeyden uzak (boncuk yerde) bir noktanın yer değiştirmesi muamele edilmesini içerir. Hatanın derecesi yüzeyinden kordonun uzaklığa bağlıdır. Hata kordonun konumu bilgisi olmadan tahmin edilemez. Çok hücre kültürü yüzeye yakın boncuk sınırlandırmak için basit bir yönteme ihtiyaç birkaç teknikleri ile ele alınmıştır. Araçlardan biri, çok yüzeye yakın hareketini ölçmek için üst odak düzlemi boncuk yeterli sayıda olacak şekilde bütün jel boyunca boncuk yoğunluğunu artırmaktır. Bir başka teknik, ışık o canlı hücre görüntüleme için bir konfokal görüntüleme odası inşa içerirüst en odak düzlemi sadece boncuk 4 toplanır. Farklı bir yöntem taneleri 5 olmayan bir önceden polimerize edilmiş jelinin üzerine boncuklar içeren PA jel son derece ince bir katmanı üzerinde içerir. Bu tekniklerin bir dezavantajı, her birinin, jel içindeki boncukların hassas konum bilinmemektedir olmasıdır. Bu boncuklar yer değiştirme alanı ve bu yüzden, hücre kuvvetlerin hesaplanması hesaplamaya dahil hata olarak yansır. Bir başka teknik, Sülfo-SANPAH 6 kullanılarak hali hazırda polimerize PA jel üst yüzeyine boncuk konjugasyon içerir. Bu teknik, tek taneler PA jel üzerinde gerçekten de sağlar, fakat jelin derinlikte gömülü ne ölçüde bilinmemektedir. Önce iş hücreleri gücü birkaç mikron uzaklıkta 7 hissedebiliyorum önerdi gibi bu potansiyel, hücre davranışını değiştirebilir hücreler, bir yerel topografya oluşturabilirsiniz. Son zamanlarda, 1 mikron çaplı f PA jeller desenlendirme için bir tekniktirdüzenlilestirilmis dizi luorescent fibronektin nokta belirteçler 8 kurulmuştur. Bu durumda, flüoresan işaretler derinliği bilinir ve fibronektin model dolaylı jel yüzey üzerine baskı gibi, esas olarak sıfırdır. Bununla birlikte, bu yöntem, ECM protein 1 mikron çaplı noktalar, olduğu gibi hücreler, ekleyebilir üzerinde sürekli bir ortam sağlamaz. Tamamen yüzeye çok yakın bilinen bir konuma Pensilvanya jeller içinde izci boncuk entegre ve hapsedilmesini için bir yöntem henüz kurulamamıştır. Burada, biz çok Pensilvanya jel içindeki hücre kültürü yüzeye yakın bir odak düzlemine mikron çaplı floresan boncuk alt-mikron sınırlamak için bir yöntem geliştirmek. Bir jel, genellikle, iki cam levha arasında polimerize edilmemiş sıvı jel çözeltisi sandöviç muamele edilmektedir. Jel şiddetle bağlıdır, böylece plakaların bir işlevlendirilmektedir. Diğer fonksiyonelleştirilmemiş ve jel sertleşmeden sonra çıkartılır. Biz bu çıkarılabilir cam su değiştirmekboncuklar bir tabaka ile kaplamak suretiyle rface. Fonksiyonalize ve boncuk kaplı cam yüzeyi arasındaki sıvı jel sandviçleyerek sonra, jel boncukları transfer işleminin sertleştirme sırasında. Bu yüzey 1.6 um olan jel içine Tanelerin entegrasyon mesafeyi sınırlar. Cam alt Petri kapları jel tedavi edildiği yapışık yüzeyi olarak kullanılır. Polimerizasyon sırasında düz bir üst yüzey jel oluşturmak için, bir dairesel cam lamel sandviç etmek için, cam alt-Petri kabı ile jel kullanılır. Jel üretiminden önce, üst cam kapak kayma bir yüzey yükü, sonuçta poli-D-lisin (PDL) ile kaplanır. PDL basınçlı hava ile üflenerek uzaklaştırıldı edilir ve su içinde boncuk çözeltisi kapak slipleri üzerinde bırakılır. Bu, negatif bir yük taşıyan karboksile floresan, mikro-boncuklar, uygulanması ve PDL ile işlenerek oluşturulan pozitif yüklü yüzey ile etkileşime girer. Basınçlı hava, tek bir tabaka ile lamel kapalı boncuk çözeltisi üfleme sonraboncuklar elektrostatik kuru kapak kayma birleştiğinde kalır. Cam slaytlar, hasarsız ve tamamen sağlam PA jelden çıkarıldı olarak PDL kaplama, jel yüzeyine camın yapışkanlığını etkilemez. Cam alt Petri kutuları 97% 3-aminopropil-trimethoxysliane ve% 0.5 glutaraldehid ile işlenerek yapışkan yapılır. İstenen katılıklarının Pensilvanya jeller standart bir prosedür ile 9 bisakrilamid akrilamid uygun konsantrasyonlarda karıştırılmasıyla oluşturulur. Jel çözeltisinin bir damlacık cam alt Petri kabı üzerine pipetlenir. Boncuklar ihtiva eden bir cam kapak kılıfı sandviç etmek için Petri kabı ile jel kullanılır. Jel tedavi edildiğinde, üst kapak kayma yüzeyinden 1.6 um olan PA jel gömülü boncuk bırakarak kaldırılır.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><güçlü>Reaktifler</güçlü></td></tr><tr><td>97% 3-Aminopropil-trimetoksislian (APTES)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>281778</td><td></td></tr><tr><td>%70 Gluteraldehit</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>111-30-8</td><td></td></tr><tr><td>1 M HEPES tampon çözeltisi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>83264</td><td></td></tr><tr><td>%40 Akrilamid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4058</td><td></td></tr><tr><td>%2 Bisakrilamid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1533</td><td></td></tr><tr><td>0.1 & mikro; m Floresan mikroküreler (mCherry)</td><td>Invitrogen</td><td>F8801</td><td></td></tr><tr><td>Fibronektin, İnsan, 1 mg</td><td>BD Biosciences</td><td>354008</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum persülfat</td><td>Bio-RAD</td><td>161-0700</td><td></td></tr><tr><td>Tetrametiletilendiamin (TEMED)</td><td>Bio-RAD</td><td>161-0801</td><td></td></tr><tr><td>Poli-D-lizin</td><td>Millipor</td><td>A-003-E</td><td></td></tr><tr><td>1-Etil-3- [3-dimetilaminopropil] karbodiimid hidroklorür (EDC)&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>22980</td><td></td></tr><tr><td>N-hidroksisülfosüksinimid (NHS)</td> <td>Thermo Scientific</td><td>24500</td><td></td></tr><tr><td>%0.05 Tripsin-EDTA (1X)</td> <td>Yaşam Teknolojileri</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>Akrilik asit&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>147230</td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7757</td><td></td></tr><tr><td>2- (N-morfolino) etansülfonik asit (MES)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>M3671</td><td></td></tr><tr><td colspan="4"><güçlü>Malzemeler</güçlü></td></tr><tr><td>35 mm 14 mm mikro kuyulu cam alt çanak #1 kapaklı cam</td><td>In Vitro Scientific</td><td>D35-14-1-N</td><td></td></tr><tr><td>Cam kapak kızakları, 12 mm çap. </td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>26023</td><td></td></tr></tbody></table>

Çekme kuvveti mikroskopi hücre kültürü yüzey civarında yerelleştirme raportör flöresan beads için yeni bir yöntem

A Novel Method for Localizing Reporter Fluorescent Beads Near the Cell Culture Surface for Traction Force Microscopy

Pensilvanya jeller uzun imalat ve nağme elastik özelliklerini yeteneği kolaylığı nedeniyle hücre çekiş kuvvetleri incelemek için bir platform olarak kullanılmıştır. Alt-tabaka, bir hücre dışı matris proteini ile kaplanmıştır zaman hücreler, jele yapışmayan ve jel deforme neden kuvvetler uygulanır. Bu deformasyon, hücre çekiş ve jelin elastik özelliklerine bağlıdır. Yüzeyinin deformasyonu alanı biliniyorsa, yüzey çekme esnekliği teorisi kullanılarak hesaplanabilir. Jel deformasyon genellikle homojen jel içine fluoresan işaretleyici boncuklar içine gömülmesiyle ölçülür. Jel deforme olarak probları değiştirmesine neden olmaktadır. Jel yüzeyine yakın sondalar izlenir. Bu problar tarafından bildirilen değiştirmeler yüzey değiştirmeler olarak kabul edilir. Yüzeyden Bunların derinlikleri göz ardı edilir. Bu varsayım çekiş kuvveti değerlendirmelerde hata tanıtır. Boncukların yer bilinmesi için hücre güçlerinin hassas ölçümü için, bu önemlidir. Biz geliştirdikyüzeyinin 1.6 um olan PA jellerinde, floresan markörü boncuklar, çapı 0.1 ile 1 um sınırlandırmak için basit kimyası kullanan bir teknik sunmaktır. Bu kat, poli-D-lisin (PDL) flüoresan boncuklar ile bir lamel. PA jel çözeltisi, sonra da lamel ve yapışkan bir yüzeyi arasında yer alır. Floresan boncuk kür sırasında jel çözeltisine transfer. Polimerizasyondan sonra, PA jel jel yüzeyine yakın bir düzlem üzerinde floresan boncuklar içerir.

Konfokal görüntüleme boncuklar, jel yüzeyinin altına gerçekten olduğunu tespit etmek ve jel derinliği içindeki tam yerini belirlemek için kullanıldı. Jelin içindeki edilenlerden daha farklı bir dalga boyunda floresan taneler yüzeyinde yerleşmeye bırakıldı ve gömülü floresan, nanopartiküller ve yüzeyi üzerinde bu arasındaki mesafenin bir ağırlık merkezi tanıma algoritması kullanılarak hesaplanmıştır. Jel yüzeyi üzerindeki kordonun konumu jel-hücrelerinin yüzeyine yapışması üzerinde kuvvet uygulamak üst yüzey için bir ref...

Floresan probları içeren poliakrilamid (PA) jelleri imal edilmesi için geleneksel teknikler yapışkan bir yüzeyi ve bir cam kayar arasında sandviç tarzı bir jel barındırır. Burada, poli-D-lisin (PDL) ve fluoresan problar, bu slayt kaplama jel yüzeyinden 1.6 um olan probları lokalize olduğunu göstermektedir.

Çekme Kuvveti Mikroskopi Hücre Kültürü Yüzey civarında yerelleştirme raportör flöresan Beads için Yeni Bir Yöntem

PA gels have long been used as a platform to study cell traction forces due to ease of fabrication and the ability to tune their elastic properties. When ...

Bu prosedürün genel amacı, jel yüzeyine çok yakın gömülü floresan mikro küreler ile hücre kültürü için poli akrilamid veya PA jelleri üretmektir. Bu, ilk olarak cam kapak kızaklarının poli D lizin ile işlevselleştirilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, cam kapak kızaklarını floresan mikro küreler içeren bir çözelti ile kaplamaktır.Sonraki PA jelleri, uygun konsantrasyonlarda bis, akrilamid ve akrilamid karıştırılarak formüle edilir ve alttaki bir yüzey ile cam kapak kızaklarının işlevselleştirilmiş tarafı arasına sıkıştırılır. Son adım, jeli hücre dışı bir matris proteini ve jel yüzeyindeki kültür hücreleri ile işlevselleştirmektir. Sonuç olarak, çekiş kuvveti mikroskobu, hücre kaynaklı substrat deformasyonunun bir sonucu olarak hücreler tarafından uygulanan mekanik kuvvetleri ölçmek için kullanılır.Bu tekniğin geleneksel PHL üretimi gibi mevcut yöntemlere göre ana avantajı, floresan mikro küreleri jel derinliği içinde bilinen bir konuma lokalize etmesi ve hücresel çekiş kuvvetlerinin daha doğru bir şekilde hesaplanmasına izin vermesidir. Bu yöntemin görsel gösterimi kritik öneme sahiptir, çünkü floresan bitlerinin PHL First place'e düzgün bir şekilde aktarılmasını sağlamak için cam kapak kızakları işlevselleştirilirken uzamsal kürleme yapılmalıdır. Önceden temizlenmiş cam kapak, ızgaralı bir yüzeye temas etmeyecek şekilde kayar.Kapak fişleri ile etkileşimi kolaylaştırmak için, kapak fişlerinin tüm yüzeyini bir saat boyunca mililitre poli D lizin başına 0.1 miligram ile kaplayın. Bu süre zarfında, 0.1 mikrometre çapındaki kolloid çözeltisinin bir ila 10.000 seyreltmesini gerçekleştirin. Jel yüzeyinde 20 mikron kare başına yaklaşık bir mikroküre partikül yoğunluğu elde etmek için deiyonize su içeren kırmızı floresan mikro küreler.Seyreltilmiş çözeltiyi 30 dakika boyunca ultrasonik su banyosuna yerleştirin. Bir saat sonra, her bir kapak fişini dikkatlice kaldırmak için cımbız kullanın ve hava ile kurutun. Ardından kuru kapak fişlerini rendelenmiş yüzeye geri koyun.Seyreltilmiş kolloid çözeltisi ultrasonik banyodan çıkarıldıktan sonra, her bir kapak fişine 150 mikrolitre çözelti pipetleyin. 10 dakika sonra, her bir kapak kızağını dikkatlice kaldırmak için cımbız kullanın ve hava ile kurutun. Kuru örtü kızakları dereceli yüzeye geri döndükten sonra, kullanıma hazır olana kadar karanlıkta saklayın.Daha sonra, istenen sayıda cam tabanlı Petri kabını kimyasal bir davlumbazda düz bir yüzeye yerleştirin. Her Petri kabının cam kısmını kapatın. Kimyasal aktivasyon için yedi dakika boyunca üç amino propil trimetilin% 97'si ile mikro kuyu.Yedi dakika sonra, Petri kabını deiyonize suyla doldurun ve çözeltiyi bir atık kabına atın. Her Petri kabının cam kısmını dikkatlice kapatın. Önceden hazırlanmış% 0.5 glutaraldehit çözeltisi ile 30 dakika.30 dakika sonra, Petri kabını deiyonize su ile doldurun ve glutaraldehit derisini durulamak ve çıkarmak için bir atık kabına atın. Poli Akrilamid jel çözeltisinin bileşenlerini karıştırmadan önce, işlevselleştirilmiş cam slaytları, jelin cam tabanlı Petri kapları ile hızlı bir şekilde sandviçlenmesine izin vererek, kolayca erişilebilecek şekilde kimyasal çeker ocak içine taşıyın. Jel çözeltisini 15 mililitrelik bir santrifüj tüpünde karıştırdıktan sonra, hemen art arda %40 bis akrilamid, %2 akrilamid ve akrilik asidi karıştırın.İstenen matris elastikiyetini elde etmek için, 100 milimolar HEP, sülfat başına %10 amonyum ekleyin ve istenen matris elastikiyetine karşılık gelen miktarlarda birleştirin. Jel solüsyonunu tamamlamak için, hemen 15 mikrolitre jel solüsyonunu Petri kaplarının cam kısmının ortasına pipetleyin. İşlevselleştirilmiş bir cam örtüyü cımbızla aldıktan sonra, floresan boncuklar jel çözeltisi ile temas edecek şekilde yan tarafta olacak şekilde ters çevirin.Ardından, kapak kayışını, işlevselleştirilmiş taraf jel ile temas edecek şekilde, şimdi sıvı olan poli akrilamid jelin üzerine nazikçe yerleştirin. Bunu takiben, floresan nanopartiküller üzerindeki yerçekimi etkilerinden kaçınmaya yardımcı olmak için tüm Petri kaplarını ters çevirin. Poli akrilamid jelin daha düşük seviyelerine polimerize olur.Polimerizasyondan sonra, Petri kaplarını tekrar ters çevirin ve BS ile doldurun. Kapak fişinin çevresini kazımak için cımbız kullanarak Petri kabının cam kısmı ve kapak fişinin dış kısmı ile dikkatlice temas edin. Birkaç kazıma döngüsünün ardından. Kapak fişini çıkarın ve uygun bir kesici-delici atık kabına atın.Tüm kapak fişlerini çıkardıktan sonra, Petri kabı kapağını her bir kabın üzerine yerleştirin ve dört santigrat derecede saklayın. Poli akrilamid jeller oda sıcaklığına kadar ısındıktan sonra, jelleri içeren cam alt tabaklardan tüm PBS'yi çıkarmak için biyolojik bir başlıkta bir vakum pompası kullanın, önceden hazırlanmış pipet solüsyonunu jel tamamen suya batırılacak şekilde her bir jelin üzerine ıslatın. Oda sıcaklığında en az bir saat inkübe edildikten sonra, jel yüzeyini kaplamak için önceden hazırlanmış bir H-S-E-D-C çözeltisinden 150 ila 250 mikrolitre ekleyin ve Petri kabının cam alt kuyusunu doldurun.Daha sonra jelleri oda sıcaklığında karanlıkta 30 dakika inkübe edin. N-H-S-E-D-C çözeltisi vakumla uzaklaştırıldıktan sonra, her jele 150 mikrolitre önceden hazırlanmış bir fibronektin çözeltisi ekleyin. Bir kez daha, fibronektinin bağlanmasına izin vermek için oda sıcaklığında 35 dakika inkübe edin.Bu noktada, hücre ortamı PBS ve tripsin'i bir su banyosunda 37 santigrat dereceye kadar ısıtın. Jelleri steril deiyonize su ile beş kez durulayın. Durulamalar arasında suyu aspire ederek, jelleri örtün ve davlumbazda bırakın.Hücreleri içeren şişeye 25 santimetre kare başına bir mililitre tripsin ekleyin. Hücreler şişeden kaldırıldıktan sonra, tripsini hücre ortamı ile seyreltin. Daha sonra jel yüzey alanına bağlı olarak bir hemo sitometre kullanarak hücreleri sayın.Santimetre kare başına 3000 hücrelik bir nihai hücre oturma yoğunluğu için jel başına gereken hücre sayısını belirleyin, süspansiyonu 150 mikrolitre hücre ortamı karışımı bu sayıda hücre içerecek şekilde seyreltin veya konsantre edin. Daha sonra her bir jelin üzerine 50 mikrolitre hücre süspansiyonu sürün. Bu yeri takiben, 30 dakika boyunca bir inkübatörde hücreler içeren Petri kapları.Petri kaplarını inkübatörden dikkatlice çıkardıktan sonra, Petri kabının geri kalanını, kabın yüzeyi tamamen suya batırılacak şekilde yaklaşık iki mililitre ortamla doldurun. Petri kaplarını, görüntü elde edilene kadar inkübatöre geri koyun. Görüntüleme için hazırlandığında, Petri kaplarından birini mikroskop tablasına nazikçe yerleştirin.DIC görüntüleme için Petri kabı kapağını çıkardıktan sonra, tek bir hücreyi bulun ve mikroskop aşamasını hareket ettirmeden DIC'de hücrenin tek bir hareketsiz görüntüsünü yakalayın. Görüntüleme modunu floresan olarak değiştirin. Floresan mikro küreciklere odaklanın ve mikro küreciklerin bir görüntüsünü kaydedin.Hücre ortamını pipetle Petri kabından dikkatlice çıkarın ve% 0.05 tripsin EDTA ekleyin. Hücrenin şimdi ayrıldığı jeli göstermek için DIC görüntüsüne odaklanın. Ardından, hücreler ayrıldıktan sonra hücrenin altındaki mikro küreleri görüntüleyin.Boncukların jel yüzeyinin altında olduğunu belirlemek ve kesin konumlarını ölçmek için konfokal görüntüleme kullanıldı, jelin içindekilerden farklı boyut ve dalga boyuna sahip floresan boncukların yüzeye yerleşmesine izin verildi. Çökelmiş boncukların konumu, hücrelerin yapışma üzerine kuvvet uyguladığı jelin üst yüzeyi için bir referans görevi görür. Konfokal görüntülemeyi takiben, gömülü floresan nanopartiküller ile yüzeydekiler arasındaki mesafe hesaplandı.Bu mesafe, jel içindeki boncukların kesin derinliğini belirledi. Burada gösterilen, boncuk uzamsal dağılımı ve YZ düzleminde öngörülen görünümdür. Merdiven, jel yüzeyinden tüm boncukların derinliklerini sağlar.0.1 mikron boncukların ortalama derinliği, sertlik poli akrilamid jelleri için sırasıyla 619 nanometre, 467 nanometre, 278 nanometre, bir 10 ve 40 kilopaskaldır. Bir mikron çapındaki boncuklar için karşılık gelen derinlikler 40 kilopaskal jellerde eksi 20 nanometre, 10 jelde 12 nanometre ve bir kilopaskal jelde 1.255 nanometredir. Jel boyunca dağılan boncukların derinliği ölçüldü ve derinliklerle karşılaştırıldı.Sunulan tekniği kullanarak. Geleneksel üretim yöntemleri kullanılarak bir poli akrilamid jelin derinliği içindeki boncuk dağılımı değişkenliği burada gösterilmektedir. Bir fibroblast hücresi ve karşılık gelen floresan boncuk tabakası için yer değiştirme alanı burada gösterilmiştir.Görüntünün çevresine yakın boncuklar biraz odak dışında görünür, bu da suya daldırma objektifi nedeniyle optik bir efekttir. Tripsin ilavesi üzerine, hücre yüzeyden salınır ve deforme olmuş poli akrilamid jel yüzeyinin orijinal durumuna geri dönmesine neden olur. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu PHL üretim ve işlevselleştirme tekniği, düzgün bir şekilde gerçekleştirilirse altı saat içinde yapılabilir.Bu videoyu izledikten sonra, hücre kültürü yüzeyine yakın jel derinliği içinde bilinen bir yerde lokalize edilmiş floresan mikro küreler ile poli akrilamid jellerin nasıl üretileceğini iyi anlamış olmalısınız. Hücre çekiş kuvvetlerinin daha doğru bir şekilde hesaplanması için.

a-novel-method-for-localizing-reporter-fluorescent-beads-near-cell

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu videoda çekiş kuvveti mikroskobu testi açıklanmaktadır. Tahlil, gömülü floresan boncuklara sahip yumuşak elastik hidrojel üzerinde bulunan hücre dışı matris üzerindeki insan kolon kanseri hücrelerinin hücresel çekişini belirler. Floresan boncukların ortaya çıkan yer değiştirmesi, uygun bir yazılım kullanılarak ölçülür.

Traksiyon Sitometrisi Testi: Kanser Hücrelerinin ECM Üzerine Uyguladığı Traksiyon Kuvvetini Ölçmek İçin Bir Yöntem

Bu video, hücre-hücre temaslarında hücre yüzeyi proteinleri arasındaki etkileşimi tespit etmek için floresan dalgalanma spektroskopisinin kullanımını göstermektedir. Bir floresan proteini ile etiketlenmiş ilgilenilen transmembran yapışma reseptörünü eksprese ederek ve spektral olarak ayrılmış iki floresan etiketi barındıran iki farklı hücre popülasyonunu karıştırarak, farklı renkli floresan ile iki komşu hücrenin reseptörleri arasındaki trans-etkileşim, floresan yoğunluğundaki dalgalanmalardaki...

Hücre Temaslarında Protein Etkileşimini İncelemek için Floresan Dalgalanma Spektroskopisi

Tek bir T lenfositinde kuvvet regülasyonlu tek reseptör-ligand bağlanma kinetiğini ve kalsiyum sinyalinin gerçek zamanlı görüntülemesini aynı anda ölçmek için bir teknik açıklıyoruz.

Floresan biyomembran Kuvvet Probe: Tek Hücre üzerinde Reseptör-ligand Kinetiklerinin Eşzamanlı kantitasyonu ve Bağlama kaynaklı Hücre içi Sinyal

mekanik gerilim iletmek ve doku homeostazında ve geliştirme dahil sinyal yollarını başlatmak gibi hücre yüzey yapışıklıklar, mechanotransduction merkezi bulunmaktadır. Burada, ligand kaplı manyetik mikroboncukları ve yapışma reseptörlerine kuvvet uygulaması ile, gerilim cevap olarak aktive edilir biyokimyasal yollar kesme için bir protokol mevcut.

Manyetik Boncuk Kullanarak Mekanik Gerilim Cevabı Hücre Yüzey Yapışma Modelleme Analizi

Burada, bir protokol Förster rezonans eşzamanlı kullanımı için protein yük ve floresan kurtarma kuvvet duyarlı ölçüm etkinleştirme protein dynamics ölçmek için photobleaching sonra ölçmek için enerji transferi tabanlı gerilim sensörler mevcut canlı hücreler içinde protein dinamiği.

Kuvvet duyarlı Protein Dynamics floresan teknikleri bir arada kullanarak canlı hücrelerdeki ölçümü

Bu protokol, referanssız, çekiş kuvveti mikroskobu olarak kullanılmak üzere poli (etilen glikol) bazlı hidrojellere gömülü üç boyutlu floresan fidüyal belirteçdizilerini imal etmek için multifoton litografinin uygulanması için talimatlar sağlar. Platform. Bu talimatlar kullanılarak, 3B malzeme gerinimölçümü ve hücresel çekişlerin hesaplanması, yüksek iş gücü kuvveti ölçümlerini teşvik etmek için basitleştirilmiştir.

Referanssız Çekiş Kuvveti Mikroskopi Platformunun İmalatı ve Uygulanması

Gelişimkolektif hücre göçü, yara iyileşmesi, ve kanser metastazı genellikle büyüme faktörleri veya sinyal moleküllerinin gradyanları tarafından yönlendirilir. Burada açıklanan bir mikroakışkan sistem ve biyokimyasal gradyan altında kolektif göç mekaniği ölçmek için nasıl bir gösteri ile çekiş mikroskobu birleştiren deneysel bir sistemdir.

Kemotaktik Kolektif Göç için Mikroakışkanlarla Entegre Çekiş Mikroskobu

Burada B hücreleri üzerinde çekiş kuvveti mikroskobu deneyleri yapmak için kullanılan bir protokol salıyoruz. Yumuşak poliakrilamid jellerin hazırlanmasını ve işlevselleştirilmesinin yanı sıra mikroskopta veri toplama ve veri analizinin bir özetini anlatıyoruz.

B Lenfosit Aktivasyonunu Incelemek Için Çekiş Kuvveti Mikroskobu

Bu protokol, hızlı hücre yuvarlaması yapışması sırasında yapışma olaylarını görüntüleyene kadar yapışma ayak izi testini gerçekleştirmek için deneysel prosedürleri sunar.

Yapışma Ayak İzi Tahlili ile Hücre Yuvarlanmasında Görüntüleme Moleküler Yapışması

UV'ye yakın litografi ve çekiş kuvveti mikroskopisi, mikropatterned hidrojeller üzerindeki hücresel kuvvetleri ölçmek için birleştirilir. Tek hücrelerin hedeflenen ışık kaynaklı salınımı, aynı numune üzerinde yüksek sayıda ölçüm sağlar.

Çekiş Kuvveti Mikroskopisinde Uygulamalar için Hidrojel Desenleme Teknikleri Kullanılarak Hücre Yapışıklıklarının Kontrolü

İlerlemek için, büyüme konileri dış ortama karşı çekiş kuvvetleri uygulamalıdır. Çekiş kuvvetlerinin üretimi akin dinamiklerine ve debriyaj kavramasına bağlıdır. Bu çalışmada büyüme konisi ilerlemesi için akin dinamiklerini, debriyaj kavramasını ve çekiş kuvvetlerini analiz etme yöntemleri açıklanmaktadır.

Büyüme Konisi İlerlemesi için Actin Dynamics, Debriyaj Kavrama ve Çekiş Kuvveti Analizleri

Öğrenin, çekme kuvveti mikroskopisi için poliakrilamid jellerde floresan mikroküreleri hücre kültürü yüzeyine yakın yerleştirme yöntemini. Bu teknik, hücre mekaniği çalışmalarında daha hassas kuvvet hesaplamaları sağlar.

Çekme Kuvveti Mikroskopi Hücre Kültürü Yüzey civarında yerelleştirme raportör flöresan Beads için Yeni Bir Yöntem

Daha fazla video keşfet