Name: Electroporated Chick Embriyonik Omurilik Diferansiyel Gen İfade RNA Sıra Analizi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: Keşfedin, tavuk embriyonik omuriliklerinde in ovo elektroporasyon sonrası RNA izolasyonu ve yüksek verimli dizileme ile gen ekspresyon analizi yapma yöntemini. Bu protokol, transkriptomik araştırmalar için güvenilir bir temel sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

CYIY, FAPESP (2012/14421-5) tarafından desteklenmektedir ve FMV, FAPESP (2009/53695-0) tarafından sağlanan bir burs tarafından desteklenmektedir. Bu çalışmada kullanılan RNA-Seq kütüphanelerinin hazırlanması ve dizilenmesi için Kaliforniya Üniversitesi, Davis'teki DNA Teknolojileri Merkezi'ne, yüksek verimli dizileme veri analizi araçları için mükemmel ve ücretsiz bir arayüz sağladığı için Galaxy ekibine ve laboratuvar alanında çekim yapmamıza izin verdiği için Dr. Marianne Bronner'a teşekkür ederiz.

1. electroporate HH12-13 Tavuk Embriyolar Sinir Tüpler ovo yılında İlgi Construct Bir transfeksiyon tatmin edici seviyelere sahip bireylerin hemen tespit edilmesini sağlamak için, tercihen bir bisistronik transkriptte, bir flüoresan raportör kullanarak ya da araya giren virüs 2a peptit 11 ile ilgi proteinine. NOT: Bu aşamada tipik inkübasyon süresi 37.8 ° C&#39;de yaklaşık 48 saat olduğunu. <ol><li> Bir 18 G x 1 1/2 iğne bağlanmış bir şırınga ile albümini 3 ml çıkardıktan sonra yumurta küçük bir pencere açar. Embriyo görünümünü geliştirmek için, embriyo 1-4 altında steril Ringer çözeltisi içinde 1:50 seyreltilmiş ve Hint mürekkebi az miktarda enjekte edilir. </li><li> Steril Ringer solüsyonu ile embriyo kat ettikten sonra, 2.5 ug nöral tüpün arka ucundan bir DNA doldurur kadar / ul ihtiva eden, 10 mM Tris-HCI, pH 8.2 ve% 0.1 bir gıda boyası (K, D &amp; C) çözelti enjekteBeyin bölgeye kadar. , Dış yan yüz bölgesi boyunca, 4 mm, 1 ile ayrılmış pozisyonlar platin elektrotları (çapı 0,5 mm) elektroporasyona ve bunların 4 ila 100 msn bir aralık ile 5 ila 50 ms arasında bakliyat ve 20 V sunmak. </li><li> Elektroporasyondan sonra, bu aşamada HH23 ulaşana kadar daha fazla 48 saat için manipüle embriyolar inkübe ve flöresanlı bir stereomikroskop altında dış yan yüz bölgesinde transfeksiyon yüksek düzeyde sunulması bireylerin belirlenmesi. Not: Elektroporasyondan sonra inkübasyon süresi Deneyin amacı bağlıdır. Electroporated plazmidler 2 saat sonra 2 anlamlı ifadesi düzeyleri oluşturabilirsiniz. İlgi erken başlangıçlı gen içinde ise Böylece sonrası elektroporasyon Kuluçka süresi azaltılabilir. </li></ol> 2. Hasat Başarıyla Embriyolar Geçiştirilmiş ve Electroporated Omurilik yarıları teşrih NOT: Bu işlem her 10 embriyo ve verimleri 1 2-3 saat sürer-2 Embriyo başına mikrogram toplam RNA. Nöral tüp diseksiyonu ince hareketlerini gerektirir ve bazı antremanları deneysel örnekleri uygulamadan önce gerekli olabilir. <ol><li> RNaz dekontaminasyon solüsyonu ya da 4 saat 12 boyunca 150 ° C&#39;de fırınlanması ile metalik diseksiyon araçları dekontamine ve DEPC ile muamele edilmiş PBS hazırlar. Sadece yeni sertifikalı RNazsız plasticware kullanın. NOT: Hasattan sonra, o diseksiyonu sırasında Rnase bulaşmasını önlemek için standart bakım takip etmek önemlidir. </li><li> Ince kesici bir makas ve bir elenmiş toplama kaşık kullanarak embriyoların hasat. 100 mm Petri kabındaki soğuk DEPC ile muamele edilmiş PBS içinde embriyolar tutun. </li><li> Ince bir cımbız ile, (ön bacak tomurcuk ve arka bacak tomurcuk ön sınırı posterior sınırı arasında) bütün yan bölgeyi kesip ve soğuk DEPC tedavi PBS içeren yeni bir çanak için bu bölümü aktarmak. </li><li> Üç farklı at delmek için iki ince cam iğneler kullanınnöral tüp ve paraksiyel mezoderm arasında embriyonun her dorsolateral tarafında işaret ediyor. </li><li> Merkez perforasyon iki cam iğneler tanıtmak ve yavaş yavaş nöral tüp ön-arka eksen boyunca onlardan birini uzağa taşıyın. İlk hareketlerin ulaştığı değil deliklerden için bu işlemi tekrarlayın. Ince bir cımbız ile müstakil paraksiyel mezoderm çıkarın. </li><li> Yanlara embriyo çevirin nöral tüp ve Notokordun arasında cımbız ipuçları yerleştirin ve iki yapıyı ayırmak için ön-arka eksen boyunca ters yönlerde kaydırın. Not: Bu aynı zamanda mezodermin çoğu hala nöral tüp takılı kaldırmanız gerekir. </li><li> Gerekirse, hafifçe cımbız başka bir çift nöral tüp tutarken bir çift cımbız ile çekerek bağlı kalır mesodermic dokusunun herhangi bir büyük parçaları çıkarın. Bittiğinde, yavaşça kullanılarak soğuk DEPC tedavi PBS içeren başka bir kaba nöral tüp transferiRNazsız cam Pasteur pipet manuel pipet pompasına bağlanmış ve tüm tüpler disseke kadar buz üzerinde tutmak. </li><li> Ikiye sinir tüpleri bölün. Bunun için, lümeninde cımbız kapalı bir çift keskin ucu takın ve içinden cımbız dışarı taşıyarak çatı plakasını açın. Bundan sonra, cımbız uçları ile taban plakasını keserek yarısını ayırmak. </li><li> Sıralama buz soğukluğunda DEPC ile muamele edilmiş, PBS ile doldurulmuş bir 1.5 ml&#39;lik tübe floresan bir diseksiyon kapsam ve transfer altında olmayan elektroporasyona yarıları elektroporasyona. Gerekirse, plastik duvarlarına bağlı herhangi bir dokuyu çıkarmak için ve bu tüplerin tortulaşmayı teşvik etmek için hafifçe mikrotüpler hafifçe vurun. </li><li> 3 sn 100 xg&#39;de Spin ve 1 ml mikropipet ile mümkün olduğu kadar PBS gibi çok yavaşça kaldırın. Herhangi bir embriyonik malzeme pipet emilir eğer izlemek için mikrotüpünden parlar bir ışık kaynağına bakarak bu süre yapmak; Bu olursa, yavaş yavaş deşarj ve centrifuga tekrarlayınyon. </li><li> Nöral tüp devre başına RNA ekstraksiyonu için lizis çözeltisinin 70 ul ekleyin ve içerikleri karıştırmak üzere tüp hafifçe vurun. Kuvvetli bir şekilde 5 dakika ve vorteks oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika inkübasyondan sonra, vorteks iki kez daha tekrarlayın. -80 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Bir sonraki aşama için yeterli bir verimi sağlamak için, numune başına en az sekiz nöral tüp yarıyı toplayın. Birkaç elektroporasyon / diseksiyon oturumları nöral tüp yeterli sayıda biriktirmek için gerekiyorsa daha küçük örnekler havuzu. Her durum için çiftleri veya üçlülerdeki için yeterli örnekleri saklamak. </li></ol> 3. Arındırıcı RNA ve Illumina dizinleri için Kütüphaneler hazırlayın <ol><li> -80 ° C&#39;de depolama ile ilgili örnekleri çıkarın ve 15-30 dakika boyunca buz üzerine yerleştirin. Tamamlanıncaya kadar oda sıcaklığında çözülme devam edin. </li><li> Girdap de ve 5 dakika için oda sıcaklığında bırakın. 1 dakika 15.000 xg&#39;de tekrar karıştırın ve santrifüj çözünmeyen malzeme peletlendi. </li><li> Yeni bir tüpe süpernatant aktarınve toplam RNA izolasyon kiti kullanım talimatlarına uygun olarak RNA ekstraksiyonu geçin. Konsantrasyonunu arttırmak için önerilen minimum hacimde Zehir. NOT: Temiz-up sonra DNaz tedavi RNA-Dizi veri kümelerinde genomik DNA dizilerinin potansiyel kontaminasyonu önlemek için tavsiye edilir. </li><li> Içerikleri karıştırmak ve kalite kontrol analizi için 5 ul nin uzaklaştırılması için boru hafifçe vurun. Kütüphane hazırlanana kadar -80 ° C de, geri kalan örnek Mağaza; Bu örneklerin RNA bozulmasını önlemek için sadece bir kez çözdürülmelidir. </li><li> RNA 6000 Nano kiti kullanarak Bioanalyzer enstrüman saflaştırılmış RNA çalıştırın; RIN değeri en az 7, yukarıda devam etmek gerekir. </li><li> Bir Illumina uyumlu bir RNA-Dizi kütüphane hazırlama kitini kullanarak kütüphaneleri oluşturmak ve tek okur 100 bp oluşturmak için ayarlanmış bir HiSeq aletinin bir şeritte 4 kütüphanelere kadar multipleks. Mümkünse, potansiyel teknik eserler en aza indirmek için aynı vadede tüm örnekleri yer alıyor. NOT: Bu 50 milyon r kadar verim gerekirçoğu genler 13 kapsama almak için fazlasıyla yeterli olduğunu numune başına EADS. </li></ol> 4. Galaxy Kamu Server 10 RNA-Dizi Veri Kümeleri karşılaştırın. NOT: Server depolama alanı sınırlı olduğu ve birçok örnekleri karşılaştırarak deneyler filtreleme adımda oluşturulan ara dosyaların silinmesini isteyebilir. <ol><li> (Galaxy kamu sunucusunda bir kullanıcı hesabı oluşturun <a href="https://usegalaxy.org/">https://usegalaxy.org</a> ) ve FTP fastq formatında Illumina veri setlerini yükleyin. </li><li> NGS altında FastqGroomer 14 aracı ile yüklenen dosyaları hazırlayın: QC ve manipülasyon menü; kalite puanları zaten Phred + 33 (Sanger) olarak kodlanmış ise, basitçe her veri kümesi için Öznitelikler altında fastqsanger için dosya türünü değiştirerek bu adımı atlayın. </li><li> QC ve manipülasyon beni: genel NGS altında FastQC aracını kullanarak her veri kümesi kalitesini analiznu. Not: Bu okur uçlarını düzeltmek için kullanılan parametreler için tahminler sağlayacak gibi özel dikkat, baz dizisi kalite başına ve her baz dizilimi içerik için çıkan grafik verilmelidir. </li><li> Trim &#39;3 atmak için okur aracını NGS altında fastq Kalite Giyotin 14 kullanılarak düşük kaliteli veri ile biter: QC ve manipülasyon menü. Sadece 3 &#39;20 altında kalite puanı biter işlemek için aracı ayarlayın. </li><li> Klip aracını kullanarak (okuduğunda adaptör dizilerinin kaldırmak <a href="http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/">http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/</a> QC ve manipülasyon menüsü: NGS altında). Az kalan 45 bp, giriş kullanılan adaptörün dizisi ile okur atmak ve hem de kısaltıldı olmayan kırkılmış dizileri ihtiva çıkışını seçmek için aracı ayarlayın. Ayrıca, en düşük kaliteli bazlar zaten son adımda çıkarıldı beri bilinmeyen üsleri ile dizileri atmak değil tercih. </li&gt; <li> Aracı Trim dizileri (kullanarak <a href="http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/">http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/</a> NGS altında): FastQC tarafından algılanan 5 &#39;dizisi önyargı (genellikle 10) kaldırmak için okur QC ve manipülasyon menüsü, ilk üsleri kırpın. NOT: Bu noktada, tekrar FastQC çalıştırın ve veri kümesi kalitesinin düzeldiği olmadığını belirlemek için önceki analizi ile karşılaştırmak için iyi bir fikirdir. </li><li> Download ve Illumina iGenomes gelen UCSC genom tarayıcı için son tavuk genom aksamını paketinden ( <a href="http://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/igenome.ilmn">http://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/igenome.ilmn</a> ) ve tüm genom Fasta biçimi dosyası ve genler açıklama GTF biçimi dosya upload Veri Al menüsü altında araç Dosya Yükle kullanarak Galaxy tarihine. </li><li> Harita altında hizalama TopHat2 15 kullanılarak tavuk genomunun her bir numune için okumaNGS: RNA Analizi menüsü. Tarih bir genomu kullanmayı tercih (adım 4.7 yüklenen Fasta dosyasını seçin). </li><li> RNA Analiz menüsünde: NGS altında Kol Düğmeleri 16 kullanılarak her bir örnek için bir tahmin transcriptome oluşturun. Bir rehber olarak referans notu kullanın (adım 4.7 yüklenen GTF dosyayı seçin) ve seçenekleri açmak (Tarih, adım 4,7 Fasta dosyadan) Eğilim Düzeltme gerçekleştirin ve çok okumak doğru kullanın seçin. </li><li> RNA Analiz menüsünde: NGS altında Cuffmerge 16 kullanan tüm örnekler için tahmin transcriptomes Birleştirme. (Tarih, adım 4,7 Fasta dosyasından) ve sekans verileri (adım 4,7 GTF dosyası) referans notu kullanın seçin. </li><li> RNA Analiz menüsünde: NGS altında Cuffdiff 16 kullanılarak her bir örnek için TopHat2 tarafından oluşturulan BAM dosyalarını karşılaştırın. Alan Kopyalarıyla de beni seçinrged transcriptome Cuffmerge tarafından oluşturulan ve seçenekleri (Tarih, adım 4,7 Fasta dosyadan) Eğilim Düzeltme gerçekleştirin açmak ve çoklu-okuma doğru kullanın. </li><li> Sıralama diferansiyel ifade Filtresi altında araç Sıralama kullanarak sayısal sütun 13 (q değeri) olarak artan tabloları test ve menü sıralayın. Not: Genler / düşük q değerlerinin sunacak deneysel koşullar arasında anlamlı bir diferansiyel ekspresyonu gösteren transkript. </li><li> Kapsama grafikler ile görsel olarak sonuçları kontrol etmek için, öncelikle aracı BEDTools menüsü altında genom kapsama 17 bir BedGraph kullanarak oluşturun bedGraph formatında BAM dosyalarını dönüştürebilirsiniz. Kapsama olmadan bölgelerin bildirimini devre dışı, farklı aralıklarla olarak eklenmiş girişleri tedavi ve tüm gerçekleştirmede karşılaştırılan için sıralama derinliği normalleştirir bir faktör tarafından kapsama ölçek seçin. </li><li> Kullanarak kodaman formatında çıkan bedGraph dosya dönüştürmearacı Peruk / BedGraph-to-kodaman ( <a href="http://www.genome.ucsc.edu/">http://www.genome.ucsc.edu/</a> ) Dönüştür Biçimleri menüsü altında. UCSC genom tarayıcı (özel parça olarak kodaman dosya upload <a href="http://www.genome.ucsc.edu/">http://www.genome.ucsc.edu/</a> galGal4 montaj için) ve veri kümelerinde kapsama görselleştirmek için ilgilenilen geni arayın. </li></ol>

<ol><li>Itasaki, N., Bel-Vialar, S., Krumlauf, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shocking%27+developments+in+chick+embryology%3A+electroporation+and+in+ovo+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Shocking' developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression.</a> Nat. Cell Biol. 1 (8), 207-20 (1999).</li>
<li>Krull, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+primer+on+using+in+ovo+electroporation+to+analyze+gene+function%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">A primer on using in ovo electroporation to analyze gene function.</a> Dev. Dyn. 229 (3), 433-439 (2004).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+ovo+electroporations+of+HH+stage+10+chicken+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In ovo electroporations of HH stage 10 chicken embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), 10-3791 (2007).</li>
<li>Sauka-Spengler, T., Barembaum, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gain-+and+loss-of-function+approaches+in+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Gain- and loss-of-function approaches in the chick embryo.</a> Methods Cell Biol. 87, 237-256 (2008).</li>
<li>Ghadge, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Truncated+wild-type+SOD1+and+FALS-linked+mutant+SOD1+cause+neural+cell+death+in+the+chick+embryo+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Truncated wild-type SOD1 and FALS-linked mutant SOD1 cause neural cell death in the chick embryo spinal cord.</a> Neurobiol. Dis. 21 (1), 205-20 (2006).</li>
<li>Megason, S. G., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mitogen+gradient+of+dorsal+midline+Wnts+organizes+growth+in+the+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A mitogen gradient of dorsal midline Wnts organizes growth in the CNS.</a> Development. 129 (9), 2087-2098 Forthcoming.</li>
<li>Swartz, M., Eberhart, J., Mastick, G. S., Krull, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sparking+new+frontiers%3A+using+in+vivo+electroporation+for+genetic+manipulations%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Sparking new frontiers: using in vivo electroporation for genetic manipulations.</a> Dev. Biol. 233 (1), 13-21 (2001).</li>
<li>Cloonan, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+transcriptome+profiling+via+massive-scale+mRNA+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Stem cell transcriptome profiling via massive-scale mRNA sequencing.</a> Nat. Methods. 5 (7), 613-619 (2008).</li>
<li>Mortazavi, A., Williams, B. A., McCue, K., Schaeffer, L., Wold, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+and+quantifying+mammalian+transcriptomes+by+RNA-Seq%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq.</a> Nat. Methods. 5 (7), 621-628 (2008).</li>
<li>Goecks, J., Nekrutenko, A., Taylor, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galaxy+Team.+Galaxy%3A+a+comprehensive+approach+for+supporting+accessible%2C+reproducible%2C+and+transparent+computational+research+in+the+life+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Galaxy Team. Galaxy: a comprehensive approach for supporting accessible, reproducible, and transparent computational research in the life sciences.</a> Genome Biol. 11 (8), 86(2010).</li>
<li>Trichas, G., Begbie, J., Srinivas, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+the+viral+2A+peptide+for+bicistronic+expression+in+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biol%22%5BJournal%5D)">Use of the viral 2A peptide for bicistronic expression in transgenic mice.</a> BMC Biol. 6, 40(2008).</li>
<li>Maniatis, T., Fritsch, E. F., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aManiatis%2C+T+%22Molecular+cloning.+A+laboratory+manual%22">Molecular cloning. A laboratory manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (1982).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+coverage+and+depth+of+transcriptome+by+RNA-Seq+in+chickens%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the coverage and depth of transcriptome by RNA-Seq in chickens.</a> BMC Bioinformatics. 12, 10-1186 (2011).</li>
<li>Blankenberg, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manipulation+of+FASTQ+data+with+Galaxy%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Manipulation of FASTQ data with Galaxy.</a> Bioinformatics. 26 (14), 1783-1785 (2010).</li>
<li>Kim, D., Pertea, G., Trapnell, C., Pimentel, H., Kelley, R., Salzberg, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TopHat2%3A+accurate+alignment+of+transcriptomes+in+the+presence+of+insertions%2C+deletions+and+gene+fusions%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">TopHat2: accurate alignment of transcriptomes in the presence of insertions, deletions and gene fusions.</a> Genome Biol. 14 (4), 36(2013).</li>
<li>Trapnell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcript+assembly+and+quantification+by+RNA-Seq+reveals+unannotated+transcripts+and+isoform+switching+during+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Transcript assembly and quantification by RNA-Seq reveals unannotated transcripts and isoform switching during cell differentiation.</a> Nat Biotechnol. 28 (5), 511-515 (2010).</li>
<li>Quinlan, A. R., Hall, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BEDTools%3A+a+flexible+suite+of+utilities+for+comparing+genomic+features%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">BEDTools: a flexible suite of utilities for comparing genomic features.</a> Bioinformatics. 26 (6), 841-842 (2010).</li>
<li>Vieceli, F. M., Simões-Costa, M., Turri, J. A., Kanno, T., Bronner, M., Yan, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcription+factor+chicken+Scratch2+is+expressed+in+a+subset+of+early+postmitotic+neural+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Expr.+Patterns%22%5BJournal%5D)">The transcription factor chicken Scratch2 is expressed in a subset of early postmitotic neural progenitors.</a> Gene Expr. Patterns. 13 (5-6), 189-196 (2013).</li>
<li>Chesnutt, C., Niswander, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmid-based+short-hairpin+RNA+interference+in+the+chicken+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Plasmid-based short-hairpin RNA interference in the chicken embryo.</a> Genesis. 39 (2), 73-78 (2004).</li>
<li>Katahira, T., Nakamura, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+silencing+in+chick+embryos+with+a+vector-based+small+interfering+RNA+system%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth.+Differ%22%5BJournal%5D)">Gene silencing in chick embryos with a vector-based small interfering RNA system.</a> Dev. Growth. Differ. 45 (4), 361-367 (2003).</li>
<li>Rao, M., Baraban, J. H., Rajaii, F., Sockanathan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+comparative+study+of+RNAi+methodologies+by+in+ovo+electroporation+in+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">In vivo comparative study of RNAi methodologies by in ovo electroporation in the chick embryo.</a> Dev. Dyn. 231 (3), 592-600 (2004).</li>
<li>Lu, Y., Lin, C., Wang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PiggyBac+transgenic+strategies+in+the+developing+chicken+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">PiggyBac transgenic strategies in the developing chicken spinal cord.</a> Nucleic Acids Res. 37 (21), 141(2009).</li>
<li>Simões-Costa, M., Tan-Cabugao, J., Antoshechkin, I., Sauka-Spengler, T., Bronner, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+analysis+reveals+novel+players+in+the+cranial+neural+crest+gene+regulatory+network%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Transcriptome analysis reveals novel players in the cranial neural crest gene regulatory network.</a> Genome Res. 24 (2), 281-290 (2014).</li>
<li>Trapnell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+gene+and+transcript+expression+analysis+of+RNA-seq+experiments+with+TopHat+and+Cufflinks%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks.</a> Nat. Protoc. 7 (3), 562-578 (2012).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Burada tavuk omuriliğin elektroporasyon sonra etkilerini analiz etmek için yönergeler sağlamak. DNA vektörlerine elektroporasyonu daha sık ilgi konusu bir geni fazla-sentezlemek üzere kullanılmasına rağmen, tek bir gen fonksiyonu yok etme koşulları 19-21 oluşturmak üzere siRNA&#39;lar dominant negatif, quimeric proteinler veya öncülerini kodlayan yapıları kullanabilir. Aslında, gain- ve kayıp fonksiyon-analiz hem kaynaklanan transcriptome profilleri karşılaştırılması farklı şekilde böylece potansiyel daha spe...

Ovo elektroporasyon DNA 1-5 yapıları ile kısmen in vivo embriyonik yapıların transfect için hızlı ve ucuz bir şekilde temsil ettiği için canlı organizmalar üzerinde genetik araştırmalar sık sık bir model olarak tavuk embriyo kullanın. Örneğin pCIG 6 veya 7 PMES gibi, ilgi konusu gen ile birlikte, bir flüoresan raportör ihtiva eden ve bir transkript şifreleyen bisistronik ekspresyon vektörleri, alt analizi için embriyolar işlemeden önce bir stereo mikroskop altında arzu edilen bir bölgede transfeksiyon kalitesinin hızlı doğrulama sağlar. DNA dizilimi son gelişmeler ile, RNA-seg 8,9 kullanılarak RNA örneklerinden dijital tüm transcriptome ifade profillerini elde etmek artık mümkün. Bu yüzden, bunun yerine örneğin, in situ hibridizasyon, immünohistokimya ve qPCR, cDNA kütüphanelerinin hazırlanması için olduğu gibi paralel olarak sadece birkaç gen ürünlerinin, analizine imkan veren zaman alıcı bir yöntemYüksek verimli sekanslama, tüm transcriptome bilgi sağlayabilir. Her bir genin ekspresyon seviyeleri üzerindeki deneysel etkilerinin gözlenmesi da kullanılan yapı tarafından değiştirilmiş yolları üzerinde güçlü bir anlayış temin edebilmektedir. Bu, kullanılan organizma için bir genomik montaj varsa özellikle kolaydır, böylece civciv embriyo yine uygun bir modeldir. Kullanıcı güvenilir bir genom dizileme merkezine erişimi varsa, ana konu yüksek kaliteli RNA örnekleri elde edilir. Bu çalışma, elde edilen veri setleri in silico analiz için RNA sekansına uygun transfekte sinir tüpleri, hem de alt adımları RNA örnekleri elde etmek için bir yöntemi gösterir. 48 saatlik bir inkübasyon takip HH12-13 de Elektroporasyon işleminden sonra, transfekte edilen gövde omurilik yarısı, ribonükleaz içermeyen koşullarda kesilmiş, hemen yok edilmekte ve daha fazla RNA saflaştırma işlemi ve kütüphane preparatın kadar ultra-düşük donma bozulmaya karşı korunaniyonu temsil etmektedir. Galaxy public server 10 yüksek verim sıralama verilerini analiz etmek için ücretsiz kaynaklara erişim sağlar. Kayıtlı kullanıcılar için sunulan alan miktarı böylece lokal hesaplama altyapısı için ihtiyacı ortadan kaldırarak, küçük deneyler için yeterli. RNA Dizi veri analizi filtreleme, uyum ve gen ekspresyonunun nicelendirilmesi / karşılaştırmayı içermektedir. RNA-Seq veri analizi için genel kurallar olmasına rağmen, filtreleme parametreleri dizileme kalitesine bağlı olacaktır ve ham verilerin kalite kontrol analizinden sonra tespit edilmelidir. Bu protokol almak ve in vivo transfekte tavuk embriyonik omurilik RNA-Dizi profillerini karşılaştırmak için adımları açıklar. Temsili bir sonucu olarak, bir boş vektör ile transfekte edilmiş iki farklı kontrol numunelerinden elde edilen veri setlerinin karşılaştırılması yöntem, yeniden üretilebilir ve farklı olarak Expres tanımlanmasına olanak gerektiğini gösterdiDeney örneklerindeki SED transkript. Bu nedenle, bu yöntemin uygulanması büyük ölçüde tek bir deneyde sonra keşiflerin sayısını artırmak ve böylece müteakip soruşturma için büyük bir veri kümesi sağlamak potansiyeline sahiptir.

<table><tbody><tr><td>Hint mürekkebi</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>18G x 1 1/2 iğne</td><td>BD</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>3 ml şırınga</td><td>BD</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>MP Biyomedikaller</td><td>819620</td><td></td></tr><tr><td>F D & C Blue 1</td><td>Spectra Colors Corporation</td><td>5.FC.0010P0</td><td>DNA enjeksiyonunu görselleştirmek için kullanılan Gıda Boyası</td></tr><tr><td>Ringer çözeltisi (1 L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 7.2 g NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9888</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0.37 g KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-4504</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0.225 g CaCl2&#8226; 2H < alt > 2 < / alt >O</td><td>Fisher Scientific</td><td>10043-52-4</td><td></td></tr> <tr><td>& nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0.217 g Na2HPO<>sub4.7H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9390</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0,02 g KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5379</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - ddH2O'yu 800 ml'ye çıkarın ve pH'ı 7.4&nbsp'ye</td><td></td><td></td><td></td> ayarlayın</tr><tr><td>; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - ddH2O ila 1 L</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - Filtre ve otoklav</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS (Fosfat Tamponlu Çözelti) (1 L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 8 g NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9888&</td><td></td></tr><tr><td>nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0.2 g KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-4504</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 1,15 g Na2HPO4&#8226; 7H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9390</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 0.2 g KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5379</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - ddH2O'yu 800 ml'ye kadar çıkarın ve pH'ı 7.2&2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp'ye ayarlayın; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - ddH2O ila 1 L ve filtre</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - 1 ml DEPC (Dietilpirokarbonat)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>D-5758</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - Kuvvetlice çalkalayın ve gece boyunca oda sıcaklığında</td><td></td><td></td><td></td> bekletin</tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; - Otoklav</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Elenmiş kaşık</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril 60 x 15 mm polistiren Petri kapları</td><td>Corning Yaşam Bilimleri</td><td>351007</td><td></td></tr><tr><td>RNaseZap RNase dekontaminasyon çözeltisi</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>AM9780</td><td></td></tr><tr><td>İnce nokta cerrahi makas</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Düz ince uçlu cımbız</td><td>Herhangi bir Tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1.1 x 75 mm cam kılcal borulardan yapılmış çekilmiş cam iğne</td><td>Kimble Chase</td><td>40A502</td><td></td></tr><tr><td>9 '' cam Pasteur pipeti</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manuel pipet pompası</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Şeffaf 1.5 ml mikrosantrifüj polipropilen tüpler</td><td>Corning Yaşam Bilimleri</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj</td> RNA stabilizasyonu için <td>herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNAlater çözümü</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>AM7020</td><td></td></tr><tr><td>RNAqueous toplam RNA izolasyon kiti</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>AM1912</td><td></td></tr><tr><td>Moleküler Biyoloji Sınıfı Etanol</td><td>Herhangi bir tedarikçi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNA 6000 Nano Kit</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-1511</td><td></td></tr><tr><td>2100 Elektroforez Biyoanalizör Cihazı</td><td>Agilent Technologies</td><td>G2939AA</td><td></td></tr><tr><td>Truseq RNA Numune Hazırlama Kiti v2</td><td>Illumina</td><td>RS-122-2001/RS-122-2002</td><td></td></tr></tbody></table>

electroporated chick embriyonik omurilik diferansiyel gen İfade rna sıra analizi

RNA-Seq Analysis of Differential Gene Expression in Electroporated Chick Embryonic Spinal Cord

Civciv nöral tüpünün in ovo elektroporasyonu, nöral gelişim sırasında gen fonksiyonunun tanımlanması için hızlı ve ucuz bir yöntemdir. Böyle bir deneysel manipülasyondan sonra diferansiyel olarak ifade edilen transkriptlerin genom çapında analizi, transfekte edilmiş yapının neden olduğu aşağı akış etkilerinin neredeyse eksiksiz bir resmini ortaya çıkarma potansiyeline sahiptir. Bu çalışma, elektroporasyon ve diferansiyel olarak ifade edilen transkriptlerin tanımlanması arasındaki tüm adımları içeren, transfekte edilmiş embriyonik omurilik örneklerinden transkriptomları karşılaştırmak için basit bir yöntemi açıklamaktadır. İlk aşama, elektroporasyon kılavuzları ve ribonükleaz içermeyen ortamda HH23 embriyolarından transfekte edilmiş omurilik yarılarının diseksiyonu ve transkriptom dizilimine uygun yüksek kaliteli RNA örneklerinin ekstraksiyonu için talimatlardan oluşur. Bir sonraki aşama, küçük ve orta ölçekli deneyler için yerel bir hesaplama yapısına olan ihtiyacı ortadan kaldıran, Galaxy genel sunucusundaki RNA-Seq veri kümelerinin filtrelenmesi ve karşılaştırılması için genel yönergelere sahip biyoinformatik analizdir. Temsili sonuçlar, diseksiyon yöntemlerinin yüksek kaliteli RNA örnekleri ürettiğini ve iki kontrol örneğinden elde edilen transkriptomların esasen aynı olduğunu, deneysel örneklerde diferansiyel ekspresyon genlerinin tespiti için önemli bir gereklilik olduğunu göstermektedir. Ayrıca, bir DNA yapısının deneysel aşırı ekspresyonunun kontrol numuneleri ile karşılaştırıldıktan sonra görsel olarak doğrulanabileceği bir örnek verilmiştir. Bu yöntemin uygulanması, omuriliğin erken gelişiminde rol oynayan nöral faktörlerin işlevi hakkında yeni keşifleri kolaylaştırmak için güçlü bir araç olabilir.

Anlatılan yöntem doğrulamak için, iki kontrol numuneleri, boş vektör PMES 7 ve uç tavuk SCRT2 18 çinko-parmak sahalarını kodlayan SCRT2-ZNF, yapıyı içeren aynı vektör ile transfekte edilmiş embriyolar, bir örnek ile elektropore edildi embriyolardan elde edilmiştir. Her 11-22 ug toplam RNA elde edildi Örnekler 8-12 embriyo havuzlarından elde edilmiştir. Her üç numune, yüksek kaliteli, RNA bu protokol ile elde edilebileceğini gösteriyor, Bioanalyzer cihazı (Şekil 1) ile yapılan kalit...

Bu video, in ovo elektroporasyon ile transfeksiyon sonrası diseke civciv embriyonik omurilik örnekleri üzerinde tüm transkriptom analizi yapmak için temel adımları göstermektedir.

Electroporated Chick Embriyonik Omurilik Diferansiyel Gen İfade RNA Sıra Analizi

In ovo electroporation of the chick neural tube is a fast and inexpensive method for identification of gene function during neural development. Genome ...

Bu prosedürün genel amacı, elektroporasyonlu civciv embriyonik omuriliklerinden alınan tüm genlerin ve örneklerin ekspresyon seviyelerini değerlendirmektir. Bu, ilk olarak ovo'da, erken embriyonik nöral tüplerin sağ tarafının gözeneklenmesi ve embriyoların istenen aşamaya kadar yeniden inkübe edilmesiyle gerçekleştirilir. Prosedürün ikinci adımı, başarılı bir şekilde transfekte edilmiş nöral tüp yarımlarını RNA içermeyen bir ortamda diseke etmek ve mümkün olan en kısa sürede lizise devam etmektir.Üçüncü adım, RNA'yı izole etmek ve numuneleri kütüphane hazırlığına ve yüksek verimli dizilemeye tabi tutmaktır. Son adım, sıralama yapılarını kaldırmak için veri kümelerini işlemektir. Irkları genomla eşleştirin ve her gene ekspresyon seviyeleri atayın.Sonuç olarak, sonuçlar, kontrol ve deneysel koşullarda ekspresyon seviyelerinin karşılaştırılması yoluyla diferansiyel olarak ifade edilen genleri gösterebilir. Bu yöntemin görsel gösterimi, nörotüp diseksiyonu için kritik öneme sahiptir. Adımları öğrenmek zordur çünkü embriyo manipülasyonuna aşinalık gerektirir.Bu gösteri için, embriyolar nöral tüpte GFP eksprese edici yapı ile dönüştürülmüştür. Embriyo başına bir ila iki mikrogram toplam RNA toplamak için 10 embriyoya kadar iki saat çalışmaya hazırlanın. RNA'lar altında, serbest koşullarda, ince diseksiyon makası kullanarak embriyoları toplayın ve bir SVE toplama kaşığı kullanarak her embriyoyu soğuğa aktarın.DEPC tedavi edildi. PBS, tüm nöral tüp izolasyon adımları için bir çözüm kullandı, bir embriyonun uzuv tomurcukları arasındaki tüm yan bölgesini çıkarmak için ince cımbız kullanarak ilerleyin. Bu bölümü, doku dorsal tarafı yukarı bakacak şekilde taze soğuk solüsyona taşıyın.Embriyonun her bir dorsal lateral tarafında nöral tüp ile parial mezoderm arasındaki üç noktayı delmek için iki ince cam iğne kullanın. Şimdi iki cam iğneyi merkezi perforasyona sokun ve AP ekseni boyunca birbirinden ayırın. Bunu, paral mezodermi nihayetinde ayırmak, bu dokuyu çıkarmak ve atmak için gerektiği gibi her delikten yapın.Daha sonra, embriyoyu yana doğru çevirin ve nöral tüp ile düğüm kordonu arasına iki cımbız ucunu yerleştirin. Yapıları bölmek için bunları AP ekseni boyunca kaydırın. Fazla mezodermi cımbızlarken cımbızla nazikçe sabitleyerek nöral tüpten daha büyük meder dokusu parçalarını çıkarmayı bitirin.Ardından nöral tüpü nazikçe taze soğuk solüsyona aktarın. Manuel pompalı bir cam pipet kullanarak, gerekli tüm nöral tüpleri toplayın ve devam etmeden önce buz üzerinde tutun. Şimdi, nöral tüplerin her birini iki yarıya bölün.Keskin uçlu cımbızları lümene sokun ve tavan plakasını yırtın. Daha sonra zemin plakasını kesmek ve dokuyu ikiye bölmek için cımbız kullanın. Bir floresan diseksiyon mikroskobu kullanarak, elektroporasyonlu olanları elektroporasyonlu olmayan yarımlardan ayırın.Sıralanan nöral tüp yarımlarını taze çözelti ile 1.5 mililitrelik bir tüpe aktarın. Tüm dokuyu dibe indirmek için bu tüpleri hafifçe vurun. Ardından, tüpleri birkaç saniye boyunca 100 GS'de döndürün.Sonra parlak aydınlatma altında çok dikkatli bir şekilde, kepçeyi aspire edin. Doku çekilirse, yavaşça çıkarın ve dönüşü tekrarlayın. Nöral tüp yarımları çözeltiden arındırıldıktan sonra, nöral tüp başına 70 mikrolitre, lizis tamponunun yarısını tüpe ekleyin.Tüpü hafifçe vurun ve her beş dakikada bir 15 dakika oda sıcaklığında inkübe edin, tüpü kuvvetlice girdaplayın ve RNA'yı saflaştırmak için RNA'yı toplamaya devam edin Sıralama için, numune başına en az sekiz nöral tüp yarısına sahip olun. Negatif 80 santigrat derecede saklanan diğer lise nöral tüp koleksiyonları koleksiyona dahil edilebilir. 15 ila 30 dakika buz üzerinde çözdürerek başlayın ve ardından çözdürme işlemini oda sıcaklığında tamamlayın.Çözüldükten sonra, tüm numuneleri kuvvetlice girdaplayın ve beş dakika bekletin. Daha sonra numuneleri tekrar vorteksleyin ve bir dakika boyunca 15.000 GS'de santrifüjleyin. Çözünmeyen malzemeden kurtulmak için, süpernatanı yeni bir tüpe aktarın ve ekstraksiyona devam edin.Bir RNA izolasyon kiti kullanarak, RNA'yı mümkün olan en yüksek konsantrasyonda atlatarak işlemi tamamlayın. Bu protokol, gerekli alan kotasını sağlamak için bir Galaxy web sitesi hesabı gerektirir. İlk olarak, kalite puanları zaten Shred artı 33'te kodlanmamışsa, FTP FASTQ dosyalarını siteye yükleyin.İlk olarak, NGS QC ve Manipülasyon menüsü altındaki FASTQ bakım aracını kullanarak yüklenen veri setlerini hazırlayın. Aksi takdirde, öznitelikler altında dosya türünü FASTQ sender olarak değiştirin. Ardından, NGS QC ve Manipülasyon menüsü altında, veri setlerinin genel kalitesini analiz etmek için FAST QC aracını kullanın.Düşük kalitedeki üç ana ucu atmak için aynı menü altında FASTQ kalite düzelticiyi seçin. 20 veya üzeri bir kalite puanı işlenmelidir. Şimdi aynı menü altındaki klip aracına gidin.Bu aracı, 45'ten az baz çifti içeren okumaları atacak şekilde ayarlayın. Adaptör sırasını girin. Bilinmeyen tabanlara sahip okumaları atma seçeneğini devre dışı bırakın ve kırpılmış ve kırpılmamış dizileri dahil etmek için çıktıyı seçin.Kırpma dizileri aracıyla devam edin. FAST qc tarafından algılanan beş asal dizi yanlılığını gidermek için okumanın ilk tabanlarını kırpmak için kullanın. Bir sonraki adım, Illumina I genom sitesinden en son tavuk genom düzeneğini indirmek ve paketinden çıkarmaktır.Ardından, tüm genom daha hızlı format dosyasını ve genin açıklama GTF format dosyasını Galaxy History'ye yükleyin. Şimdi, N-G-S-R-N-A analiz menüsüne erişerek ve üst şapka iki aracını seçerek her örnek için okumaları genomla eşleştirin. Referans genom olarak Galaxy Geçmişinden yüklenen fasta dosyasını seçin.Ardından, tahmini bir transkriptom oluşturmak için aynı menü altındaki kol düğmeleri aracını seçin. Her örnek için, referans açıklama kılavuzu olarak kullanılacak GTF dosyasını seçin. Dizi verileri için FASTA dosyasını kullanarak sapma düzeltmesi gerçekleştir'i seçin ve çoklu okuma düzeltmesini kullan seçeneğini etkinleştirin.Ardından, manşet birleştirme aracını kullanarak tüm birleştirme transkriptomlarını birleştirin. Bu araçla, referans ek açıklaması için GTF dosyasını ve dizi verileri için FASTA dosyasını seçin. Şimdi, hala RNA analizi menüsü altında bulunan manşet TIFF aracını kullanarak her örnek için üst şapka iki tarafından oluşturulan BAM dosyalarını karşılaştırın.Transkriptler alanında, manşet birleştirme tarafından oluşturulan birleştirme transkriptomunu seçin ve seçenekleri etkinleştirin. Çoklu okuma düzeltmesini kullanın ve dizi verileri için FASTA dosyasını kullanarak sapma düzeltmesi gerçekleştirin. Bir sonraki adım, diferansiyel tabloları sıralamaktır Q değeri sütununu kullanarak, filtre ve sıralama menüsünden sıralama aracını seçin.Deney koşulları arasında önemli fark olan diziler, sütun 13'te en düşük Q değerlerine sahip olacaktır. Şimdi kapsama grafiklerine bir göz atın. İlk olarak, seçeneklerin altındaki yatak araçları menüsü altındaki dönüştürme aracını kullanarak BAM dosyalarını yatak grafiği dosyalarına dönüştürün, kapsama alanı olmayan bölgelerin raporlanmasını devre dışı bırakın ve eklenmiş girişleri ayrı aralıklar olarak ele almayı seçin.Ayrıca kapsamı, deneydeki tüm kapsamları normalleştiren bir faktöre göre ölçeklendirin. Ardından, dönüştürme biçimleri menüsündeki aracı kullanarak ortaya çıkan yatak grafiği dosyasını büyük peruk formatına dönüştürün ve büyük peruk dosyasını özel bir parça olarak UCSE sunucusuna yükleyin. USCS genom tarayıcı sayfasında, RNA'ları için boş PS vektörlerini ifade eden nöral tüplerin açıklanan yöntemleri kullanarak veri setlerinin görsel kapsamı için GAL dört derlemesini ve gen aramalarını kullanın.Bu çift olarak yapıldı ve elde edilen RNA, beklendiği gibi 10'luk bir optimal RIN değeri ile çok yüksek bir kalitedeydi. Çoğaltılmış boş vektör kontrollerinin transkriptomlarının küresel karşılaştırması net bir fark göstermedi ve Pearson korelasyon katsayısı 99 idi. Ayrıca, çizik iki çinko parmak alanını ifade eden deneysel bir örnekte çizik iki gen dizisine eşlenen okuma sayısında belirgin bir artış oldu.Bu nedenle, yöntemler tahmin edilen zenginleşmeyi tespit edecek kadar hassastı. Bu videoyu izledikten sonra, embriyonik nöro tüpü izole edebilmeli ve protokolün dördüncü bölümündeki silikon analiz adımlarını izleyerek diferansiyel olarak ifade edilen genleri bulmak için IC veri setinin nasıl işleneceğini ve karşılaştırılacağını iyi bir şekilde anlamalısınız.

rna-seq-analysis-differential-gene-expression-electroporated-chick

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video nöronların genetik olarak tanımlanan gruplar aksonal yollar kullanarak embriyonik civciv omurilik görselleştirmek için nasıl...

Nöronlar, Genetik Tanımlı Gruplar Aksonal tanımında kullanılması Civciv Nöral Tüp Deşifre Ovo Elektroporasyon

Biz fare embriyonik doku doku-spesifik gen ekspresyonu başlangıcı sırasında veya sonrasında doku spesifik genlerin faktör etkileşimleri belirlemek için yöntem bir kromatin immunoprecipitation (ChIP) göstermektedir. Bu protokol, normal embriyonik gelişim sırasında ortaya çıkan doku-spesifik gen aktivasyon çalışması için yaygın olarak uygulanabilir olmalıdır.

Erken evre Fare Embriyolar kullanarak Doku özel Genler Kromatin Immunoprecipitation Testi

Işlevi ve orta beyin dopaminerjik nöron gelişimi sırasında genlerin düzenlenmesi değerlendirmek için, içeren bir yöntem...

Dopaminerjik Nöron Geliştirme Gen Fonksiyonunun Çalışılması için Chick orta beyin içinde ovo Elektroporasyon yılında

Nöral tüp içinde gen ekspresyonunu bir hücre tipine özgü, izlenebilir bir şekilde aşağı regüle olabilen göre bir yöntem tarif edilmektedir. Biz nasıl...

Open-kitap Hazırlıklarında Dii Enjeksiyon tarafından geliştirilmesi Nöral Tüp ve fenotipleri Değerlendirilmesinde miRNA tabanlı Plazmidler arasında ovo Elektroporasyon yılında

Gelişimsel nörobiyoloji temel bir soru nasıl nöron ağları embriyonik beyinde kurulan olmasıdır. Burada bu Cre / Lox-plazmid ve dorsal internöronlar etiket ve çeşitli gelişim aşamalarında kendi aksonal projeksiyonlar ve sinaptik hedefleri izlemek için kuş Beyin içinde piggyBac-aracılı DNA aktarılması sistemi olarak yeni genetik araçları ile bir elektroporasyon tekniği kombine.

Civciv Embriyo aksonal Yörüngeler ve Synaptic Hedefler Trace için Beyin elektroporasyon

İki ya da üç boyutlu bir embriyoit gövdeleri oluşturmak için fare embriyonik kök hücreleri kullanılarak bir tekniği açıklar. Daha sonra progenitör hücre işaretleyici immünofloresan ve immün farklılaşma hallerindeki analiz retinoik asit ve ne göre embriyoit vücut hücrelerinin sinir farklılaşmasını uyarmak üzere açıklar.

İki ve Üç boyutlu Embriyoid Oluşumu Fare Embriyonik Kök Hücreler Retinoik Asit kaynaklı sinir Farklılaşma analizi

Kuş ve memelilerin işitsel beyin sapı nöronları, normal işitme işlevleri için temel bir süreç olan hızlı sinirsel kodlama için uzmanlaşmıştır. Bu nöronlar, embriyonik arka bedenin belirgin öncüllerinden kaynaklanmaktadır. İşitme gelişiminde gen işlevini incelemek için tavuk embriyolarının arka bacasında genleri ifade etmek için elektroporasyon teknikleri sunuyoruz.

Tavuk İşitsel Beyinsapındaki Ovo Elektroporasyonunda

Burada, Kromatin immunoprecipitation (ChIP) ve ChIP-seq Kütüphane hazırlık Protokolü düşük-bereket tavuk embriyonik örnekleri küresel epigenomic profilleri oluşturmak için açıklar.

Kromatin Immunoprecipitation (ChIP) protokolü için düşük-bereket embriyonik örnekleri

Burada sunulan, CAS9-gRNA kompleksini omurilik merkezi kanalına enjekte ederek, akolotl spinal tellerinde zaman ve uzaya kısıtlı gen vuruş yapmak için bir protokoldür ve ardından Electroporation.

CAS9 protein-gRNA kompleksleri Electroporation yoluyla Axolotl omurilik nöral kök hücrelerinin doğrudan gen Knock-Out

Burada, omurgalı Xenopus laevis embriyosunda bilinen doku kaderlerine sahip hücre soylarının kütle spektrometrisine dayalı proteomik karakterizasyonu açıklanmaktadır.

Gelişmekte Olan (Kurbağa) Embriyoda Hücre-Soy Kılavuzlu Kütle Spektrometrisi Proteomikleri

Keşfedin, tavuk embriyonik omuriliklerinde in ovo elektroporasyon sonrası RNA izolasyonu ve yüksek verimli dizileme ile gen ekspresyon analizi yapma yöntemini. Bu protokol, transkriptomik araştırmalar için güvenilir bir temel sunar.

Electroporated Chick Embriyonik Omurilik Diferansiyel Gen İfade RNA Sıra Analizi

Daha fazla video keşfet