Name: Ticari Mikroskop Canlı Hücre Zarları Moleküler Difüzyon Kanunu Hızlı Floresans Görüntüleme Gönderen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 10 s
Description: Öğrenin, canlı hücre zarlarında lipit ve protein difüzyonunu ticari mikroskopla ölçme yöntemini. TIRF mikroskobisi ve Gauss uyumuyla moleküler dinamikleri analiz edin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma kısmen NIH-P41 P41-RRO3155 ve NIH P50-GM076516 (EG'ye hibe) ve Fondazione Monte dei Paschi di Siena (FB'ye hibe) tarafından desteklenmektedir.

1. Sistem Kalibrasyon <ol><li> Nokta yayılma fonksiyonu (PSF) kalibrasyon <ol><li> Damıtılmış su içinde 90 ul, 30 ile floresan boncuk çözeltisi (yaklaşık 5 uM), 10 ul seyreltilir ve daha sonra 20 dakika boyunca ultrasonik titremeye maruz bırakılır çözeltisi. Bir kare (1 cm x 1 cm) agaroz jeli (% 3) ve depozit jel üstündeki çözeltisinin 10 ul parça kesin. 2 cm Petri kabı alt camına jel parçası devirmek ve camına damla sıkın. </li><li> , Satın alma kurulum açın tutucuya örnek koymak, kamera pozlama ve EMgain set (100 msn ve 1000 sistemine göre iyi parametrelerdir ama optimize) ve kamera soğumasını bekleyin. </li><li> 100 milisaniye, 1,000 kamera EMgain, edinim moduna ayarlayın kamera pozlama ayarı kaydetmek Transferi, 100 tekrarı ve otomatik Frame. </li><li> Jelin sınırında mercek ve iletilen ışık odaklama kullanılarak ve daha sonra, jel merkezine amacı hareket odaklanma ve sta ayarlamaklazer hizalama prosedürü rt (LAS AF, &#39;TIRF kurulum&#39; seçin ve otomatik hizalama prosedürünü izleyin). </li><li> Bir referans olarak (ki genellikle boncuk bütünü temsil) parlak noktaya odaklanmak doğru, izole tek noktalar ile bir görüş alanı bulun 100 kare kazanmak ve birkaç tek noktalar kazanmak için adımı 5-6 kez tekrarlayın. </li><li> Bir veri işleme programına edinilen serisi İthalat ve zaman içinde (Şekil 1A) yığını ortalama ve tek bir izole boncuk seçin. Parçacık agrega önlemek için küçük olanları seçmek için özen gösterin. </li><li> (Matlab Malzemelerinde ICS-Matlab araçları) komutu &quot;gaussfit&quot; kullanarak bir Gauss fonksiyonu ile seçilen yoğunluk dağılımı (tek boncuk profilinin bir örneğini Şekil 1B sunulmuştur) takınız. Elde edilen artıklar inceleyerek uyum iyiliğini doğrulayın (gelen artıklar ile donatılmış Gauss profilinin bir örneği i sunulmuşturn Şekil 1B). </li></ol></li><li> Kamera kalibrasyonu <ol><li> Kamerayı açın ve kamera soğumasını bekleyin. Set kamera alma ayarı, (yani, kullanılan kamera için biz 0.5 msn, 1.000 kamera EMgain, Kesilmiş Modu, 32 x 128, 10.000 tekrarlar için ROI boyutu edinim moduna pozu ayarlamak) ve kamera arka alımı başlatabilirsiniz sinyali. </li><li> İthalat bir veri işleme programı çerçeve serisi satın aldı. Hesaplayın ve kamera arka çipin seçilen bölgede yaklaşık düz olduğunu doğrulamak için her pikselin ortalama yoğunluğunu kontrol edin. Kamera plan genellikle sınır hatlarında önyargılı çünkü kırpılmış modunda, her çerçeve için ilk ve (ROI boyutuna bağlı olarak 3-10) son birkaç yatay satırları kaldırın. </li><li> Değerlerinin histogramı oluşturun (Matlab komut &#39;hist&#39; kullanarak) yığını elde edilen görüntü (aynı zamanda Dijital Seviye DL tanımlanan) ve logaritmasını arsafrekansını sonuçtaki (Matlab semiloloji komutunu kullanarak). Kamera arka DL dağılımının bir örneği, Şekil 2&#39;de gösterilmiştir. NOT: kamera iyi çalışıyorsa, komplo üslü (log ölçekli negatif eğimli bir çizgi izledi sıfır foton ilişkili değerlerin dağılımını temsil eden yaklaşık Gauss tepe (log-ölçekte bir parabolik profili) gösterecektir ) foton 1 (Şekil 2) ile ilişkili değerlerinin dağılımını temsil eder. Üstel kısmının çürümesi sürekli tek tek her foton kamera tarafından atanan DL bir tahmin temsil ederken, özellikle merkezi ve Gauss fonksiyonunun varyans, sırasıyla, ofset kamera ve hata temsil eder. Matlab malzemeleri destekleyen Script bölümünde &quot;CalibrateCamera&quot; kullanın. </li><li> Tüm seçilen Kamera EMGain ve Kazancı için işlemi tekrarlayın. </li></ol></li></ol> 2. EtiketliHücre Hazırlanması <ol><li> (1,2-dioleoyl- SN -glisero-3-fosfoetanolamin), lipid dahil 36 için gerekli olan lipozomları hazırlamak DOPE ayrı ayrı olarak 1 mg giderilmesi, DOTAP (1,2-dioleoil-3-trimetilamonyum propan-), 1 mg, ve kloroform, 1 ml PPE ATTO488 1 mg. 24 saat boyunca vakum altında bir araya 0,5 DOPE solüsyonu, DOTAP çözeltiden 0.5 ml ve PPE ATTO488 çözeltisi 25 ul kuru karıştırılır. 40 ° C&#39;de 15 dakika boyunca ultrasonik titremeye maruz bırakılır ve 15 dakika boyunca 20 mM HEPES tamponu, 0.5 ml, vorteksleyin. </li><li> , Hücre hazırlanması PBS ile birleşik CHO-K1 (Çin Hamsteri Yumurtalığı) bir p 100 tabak 3 kez yıkama, 5 dakika boyunca inkübatör içinde tripsin ve mağaza 1 ml ekleyin. % 10 FBS ile desteklenmiş DMEM / F12 ortamında 9 ml ilave müstakil hücrelerin süspansiyonu ve aynı ortamın 800 ul ihtiva eden bir Petri kabındaki hücre çözeltisinin 150 ul tohum. </li><li> 37 ° C&#39;de 24 saat boyunca kuluçka makinesi içinde depolayın ve% 5 CO2. Lipid eklenmesi için, 500 hücre orta yerineserumsuz ortam ul; 30 dakika sonra, lipozomlar çözeltisi 2 ul; ve PSB 15 dakika yıkamadan sonra görüntüleme için yeni DMEM / F12 orta ekleyin. </li><li> Transfaksiyon için, transfect hücreler görüntüleme önce inkübatör TfR-GFP plazmid ve mağaza 24 saat kullanarak Lipofektamin protokolü (Üretici talimatları) göre. </li></ol> 3. Veri Toplama <ol><li> Kurulum hazırlığı <ol><li> Mikroskop termostat amacıyla, deneyden önce 24 saat kuluçka açın. </li><li> Hızlı ulaşılabilir edinimi süresi uygulamak amacıyla, Kesilmiş Sensör Modu iş (giriş) ve hücre (kamera 2) seçmek için görüntüleme (kamera 1) ve ikinci kamera için bir ilk kamera kullanmak. Kurulum yapılandırmasına bir şeması Ek Şekil S1 sunulmuştur. Ardından, mikroskop iki kamera dönüşü uyum ve kameralar soğumasını bekleyin. </li><li> Iki kamera iletilen ışık görüntüleme parametreleri ayarlamak (yani </em&gt;, Pozlama süresi, EM Kazancı için 1) ve Aydınlık Alan modunda mikroskop koymak için 20 msn. </li><li> Sadece (burada 32 x 32 piksel ROI) hücre görüntüleme için kullanılan ROI ışık sağlayan yarıklar hafifçe itin tutucu örnekleri koyun ve mercek kullanarak odak, fotoğraf makinesi 1 ışık göndermek ve. </li><li> Seçilen bölgedeki bir hücreyi taşımak ve kamera 2 ışık göndermek, sonra bir başvuru olması için kamerayı 2. kontrol yazılımı bir ROI çizin. </li></ol></li><li> Görüntüleme (Şekil 3A) <ol><li> Öncelikle, sizin kurulum prosedürüne göre TIRF lazer hizalama. Bizim kurulumunda, &#39;TIRF kurulum&#39; seçin ve otomatik hizalama işlemini başlatmak. Lazer hizalandığında (yaklaşık 70 °) penetrasyon derinliği 70 nm ayarlayın. </li><li> Hem kamera 1 ve kamera 2 100 EMGain 70 msn ve pozlama süresi ayarlayın; Daha sonra, kamera 1 kullanarak bir hücreyi seçin, ardından kamera 2 ışık göndermek ve doğru hücre zarı odaklanın. Ca üzerinde asgari pozu ayarlamakmera 2, 1000 EMGain, Kesilmiş Sensör Modu, 10 5 tekrar ve set kaydetme dosyaları (Esnek Görüntü Nakil Sistemi, kolayca yönetilen bir biçimi) uygun olarak. </li><li> Görüntü serilerini kaydetmek için satın alma başlayın. Kazanç ve sonra, yeni bir hücre almadan önce sıcaklık stabilizasyonu sağlamak 8-10 hücrelerini elde etmek için son iki adımları tekrarlayın kırpılmış Modu bırakın. </li></ol></li></ol> Imaging&#39;e Mean Square Yerinden 4. Hesaplama (i MSD) Not: Aşağıdaki protokol, doğrudan ham verilere uygulanabilir. Aynı zamanda, tüm protokol Matlab ve SimFCS hem de simüle edilmiş veri satın alma için de geçerlidir. Gelen öğreticiler için bağlantı &#39;Malzeme&#39; bölümünde bulunabilir. <ol><li> Matlab ile Hesaplama <ol><li> ImportImageSeries script kullanarak Matlab&#39;a edinilen serisi aktarın. Co kullanarak zaman içinde her görüntünün ortalama yoğunluğunu hesaplamakmmand ilk 2 boyutlarına ortalama ve elde edilen vektör görmek için arsa kullanın. </li><li> Photobleaching% 10&#39;dan fazla varsa, dizi atmak veya onların ilk kısmını kaldırın. Daha düşük ise, 37 önce gösterildiği gibi, her bir görüntü için ortalama yoğunluğunu çıkarılarak korelasyon fonksiyonu üzerinde etkisini düzeltmek için çalışın. </li><li> Üçüncü boyut ortalamasını kullanarak her pikselin ortalama yoğunluğunu hesaplamak ve çıkan görüntü görüyorum. NOT: Özellikle dikkat artifaktüel korelasyon önlemek için gereklidir. Aslında, daha önce benzer teknikler 38, hücre sınırları yanı sıra odaklama veziküllerin üzerinden gösterildiği gibi bir güçlü bir korelasyon getirebilir. Ortalama görüntünün muayene hücre sınırları veya odak kesecikler dışında ortaya çıkarsa, aksi takdirde satın atmak dahil bölgeyi dışlamaya çalışıyorlar. Bu hareketsiz yapıların etkisini düzeltmek için her piksele 39 dan ortalama zamansal yoğunluğunu çıkarmak. </li><li> T hesaplayınişlevini CalculateSTICScorrfunc kullanarak o zamanmekansal korelasyon (G (ξ, χ, τ)). G (ξ, χ, 0) nedeniyle, düşük ışık rejimi atış gürültü korelasyon G hakim çünkü (0,0,0) sökün; nedeniyle detektöre korelasyon ölçülen bel artırarak τ = 0 g (ξ, χ, τ) deforme olabilir, bu süre boyunca G (± 1,0,0), ve parçacık hareketi hakimdir (bu etki, τ kaybolur &gt; 0) 34. </li><li> Daha sonra Malzeme desteklenmesinde &quot;LogBinStack&quot; fonksiyonunu kullanarak gürültüyü azaltmak ve bir logaritmik zaman-bin kullanılarak Ortalama G (ξ, χ, τ&gt; 0) (ξ, χ, τ) fonksiyonu kullanılarak &quot;gaussfit doğan&quot; G sığdırmak Malzemelerinde ICS-Matlab araçları i MSD (çıkan dizinin ikinci sütun) kurtarmak için. </li><li> Zamanın bir fonksiyonu olarak elde edilen bel σ (τ) 2, (i MSD) çizilir. Veri çok gürültülü ise, Edinim sayısını artırmak için çalışınIRED çerçeveler, birlikte lazer gücünü, ortalama daha fazla G (ξ, χ, τ) artırmak. </li></ol></li><li> SimFCS tarafından Hesaplama <ol><li> ImageJ BioFormat ithalatçı eklentisi kullanarak edinilen dosyalarını açın ve TIFF dizisi olarak iktisap dizi kaydedebilirsiniz. </li><li> Aç SimFCS seçin RICS aracı seçin ve Dosya&gt; İçe Çoklu Görüntüler (Ek Şekil S2). </li><li> Uygun pencereyi (Ek Şekil S3), Fit seçin doğru toplama parametreleri yerleştirin ve kapatın. </li><li> Ekran&gt; Ortalama Yoğunluk&gt; CH1 seçin ve photobleaching varlığını (Ek Şekil S4) doğrulayın. </li><li> Photobleaching% 10&#39;dan fazla mevcut ATIN serisi ise veya mümkün tekrar yük serisinin ilk bölümünü kaldırarak görüntü dizisi ise. </li><li> Ağartılması daha düşük% 10 Araçlar&gt; Eğer i MSD&gt; Set Parametreleri, sol bir on ROI panelinde set, &#39;kullan hareketli ortalama&#39; kontrolmuhabir zaman karakteristik difüzyon zaman daha yüksek olduğunu hareketli ortalama ödeme İlginiz için çerçeve koyu kahverengi (1 mikron 2 sn hareketli parçacık için -1 10 saniyelik bir zaman iyi bir hareketli ortalama) </li><li> Araçlar&gt; iMSD&gt; i MSD (Ek Şekil S5) ve zinde hesaplayın ve bloknot gelen i MSD ihracat (Ek Şekil S6). </li></ol></li></ol> I MSD gelen Difüzyon Kanunu 5. Hesaplama <ol><li> Kesişim (σ 0 2) hesaplamak için ilk birkaç puan Fit (5 puan genelde yeterli olur ama daha fazla puan onlar doğrusal bir davranış gösterir eğer takılabilir) ve daha önce ölçülen PSF 2 ile bu değeri karşılaştırın. Onlar karşılaştırılabilir iseniz, izole Flüoroforlann dinamikleri takip edilmektedir. Buna karşılık, σ 0 2 &gt;&gt; PSF 2 denemek sağlamak için daha hızlı elde etmek için isehiçbir gizli dinamikleri 34 mevcuttur. </li><li> Belirgin yayılımını (D app) denklem ve 3 ve 4 (bkz) kullanılarak, ortalama yer değiştirme (R) hesaplayın. </li><li> 12 FCS (Şekil 3D) göre yer değişimi ölçülür ile karşılaştırılabilir bir difüzyon kanunu elde etmek üzere Rl bir fonksiyonu olarak Arsa M app. </li></ol>

<ol><li>Engelman, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membranes+are+more+mosaic+than+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Membranes are more mosaic than fluid.</a> Nature. 438 (7068), 578-580 (2005).</li>
<li>Vereb, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((yet+structured%3A+The+cell+membrane+three+decades+after+the+Singer-Nicolson+model%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">yet structured: The cell membrane three decades after the Singer-Nicolson model.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 100 (14), 8053-8058 (1073).</li>
<li>Ishihara, A., Hou, Y., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Thy-1+antigen+exhibits+rapid+lateral+diffusion+in+the+plasma+membrane+of+rodent+lymphoid+cells+and+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The Thy-1 antigen exhibits rapid lateral diffusion in the plasma membrane of rodent lymphoid cells and fibroblasts.</a> 84 (5), 1290-1293 (1987).</li>
<li>Axelrod, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lateral+motion+of+fluorescently+labeled+acetylcholine+receptors+in+membranes+of+developing+muscle+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Lateral motion of fluorescently labeled acetylcholine receptors in membranes of developing muscle fibers.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 73 (12), 4594-4598 (1976).</li>
<li>Jacobson, K., Derzko, Z., Wu, E. S., Hou, Y., Poste, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+the+lateral+mobility+of+cell+surface+components+in+single%2C+living+cells+by+fluorescence+recovery+after+photobleaching%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Supramol.+Struct%22%5BJournal%5D)">Measurement of the lateral mobility of cell surface components in single, living cells by fluorescence recovery after photobleaching.</a> J. Supramol. Struct. 5 (4), 10-1002 (1976).</li>
<li>Kusumi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paradigm+shift+of+the+plasma+membrane+concept+from+the+two-dimensional+continuum+fluid+to+the+partitioned+fluid%3A+high-speed+single-molecule+tracking+of+membrane+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biophys.+Biomol.+Struct%22%5BJournal%5D)">Paradigm shift of the plasma membrane concept from the two-dimensional continuum fluid to the partitioned fluid: high-speed single-molecule tracking of membrane molecules.</a> Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 34, 351-378 (2005).</li>
<li>Kusumi, A., Ike, H., Nakada, C., Murase, K., Fujiwara, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+tracking+of+membrane+molecules%3A+plasma+membrane+compartmentalization+and+dynamic+assembly+of+raft-philic+signaling+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Single-molecule tracking of membrane molecules: plasma membrane compartmentalization and dynamic assembly of raft-philic signaling molecules.</a> Semin. Immunol. 17 (1), 3-21 (2005).</li>
<li>Schwille, P., Korlach, J., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+correlation+spectroscopy+with+single-molecule+sensitivity+on+cell+and+model+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Fluorescence correlation spectroscopy with single-molecule sensitivity on cell and model membranes.</a> Cytometry. 36, 176-182 (1999).</li>
<li>Gielen, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+of+sphingomyelin+and+myelin+oligodendrocyte+glycoprotein+in+the+membrane+of+OLN-93+oligodendroglial+cells+studied+by+fluorescence+correlation+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22C.+R.+Biol%22%5BJournal%5D)">Diffusion of sphingomyelin and myelin oligodendrocyte glycoprotein in the membrane of OLN-93 oligodendroglial cells studied by fluorescence correlation spectroscopy.</a> C. R. Biol. 328 (12), 1057-1064 (2005).</li>
<li>Weiss, M., Hashimoto, H., Nilsson, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anomalous+protein+diffusion+in+living+cells+as+seen+by+fluorescence+correlation+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Anomalous protein diffusion in living cells as seen by fluorescence correlation spectroscopy.</a> Biophys. J. 84, 4043-4052 (2003).</li>
<li>Wawrezinieck, L., Rigneault, H., Marguet, D., Lenne, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+correlation+spectroscopy+diffusion+laws+to+probe+the+submicron+cell+membrane+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Fluorescence correlation spectroscopy diffusion laws to probe the submicron cell membrane organization.</a> Biophys. J. 89 (6), 4029-4042 (2005).</li>
<li>Lenne, P. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+molecular+confinement+in+the+plasma+membrane+by+microdomains+and+the+cytoskeleton+meshwork%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Dynamic molecular confinement in the plasma membrane by microdomains and the cytoskeleton meshwork.</a> EMBO J. 25 (14), 3245-3256 (2006).</li>
<li>Ries, J., Schwille, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+slow+membrane+dynamics+with+continuous+wave+scanning+fluorescence+correlation+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Studying slow membrane dynamics with continuous wave scanning fluorescence correlation spectroscopy.</a> Biophys. J. 91 (5), 1915-1924 (2006).</li>
<li>Ruan, Q., Cheng, M. A., Levi, M., Gratton, E., Mantulin, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial-temporal+studies+of+membrane+dynamics%3A+scanning+fluorescence+correlation+spectroscopy+%28SFCS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Spatial-temporal studies of membrane dynamics: scanning fluorescence correlation spectroscopy (SFCS).</a> Biophys. J. 87 (2), 1260-1267 (2004).</li>
<li>Berland, K. M., So, P. T., Chen, Y., Mantulin, W. W., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+two-photon+fluctuation+correlation+spectroscopy%3A+particle+counting+measurements+for+detection+of+molecular+aggregation%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Scanning two-photon fluctuation correlation spectroscopy: particle counting measurements for detection of molecular aggregation.</a> Biophys. J. 71, 410-420 (1996).</li>
<li>Heinemann, F., Betaneli, V., Thomas, F. A., Schwille, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+lipid+diffusion+by+fluorescence+correlation+spectroscopy%3A+a+critical+treatise%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Quantifying lipid diffusion by fluorescence correlation spectroscopy: a critical treatise.</a> Langmuir. 28 (37), 13395-13404 (2012).</li>
<li>Cardarelli, F., Lanzano, L., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capturing+directed+molecular+motion+in+the+nuclear+pore+complex+of+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Capturing directed molecular motion in the nuclear pore complex of live cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109 (25), 9863-9868 (2012).</li>
<li>Sanchez, S. A., Tricerri, M. A., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laurdan+generalized+polarization+fluctuations+measures+membrane+packing+micro-heterogeneity+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Laurdan generalized polarization fluctuations measures membrane packing micro-heterogeneity in vivo.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109 (19), 7314-7319 (2012).</li>
<li>Cardarelli, F., Lanzano, L., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+correlation+spectroscopy+of+intact+nuclear+pore+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Fluorescence correlation spectroscopy of intact nuclear pore complexes.</a> Biophys. J. 101 (4), 27-29 (2012).</li>
<li>Di Rienzo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unveiling+LOX-1+receptor+interplay+with+nanotopography%3A+mechanotransduction+and+atherosclerosis+onset%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Unveiling LOX-1 receptor interplay with nanotopography: mechanotransduction and atherosclerosis onset.</a> Sci. Rep. 3, 10-1038 (2013).</li>
<li>Unruh, J. R., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+molecular+concentration+and+brightness+from+fluorescence+fluctuation+data+with+an+electron+multiplied+CCD+camera%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Analysis of molecular concentration and brightness from fluorescence fluctuation data with an electron multiplied CCD camera.</a> Biophys. J. 95 (11), 5385-5398 (2008).</li>
<li>Kannan, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+multiplying+charge-coupled+device+camera+based+fluorescence+correlation+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Electron multiplying charge-coupled device camera based fluorescence correlation spectroscopy.</a> Anal. Chem. 78 (10), 3444-3451 (2006).</li>
<li>Jones, S. A., Shim, S. H., He, J., Fast Zhuang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((three-dimensional+super-resolution+imaging+of+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">three-dimensional super-resolution imaging of live cells.</a> Nat. Methods. 8 (6), 499-508 (2011).</li>
<li>Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sub-diffraction-limit+imaging+by+stochastic+optical+reconstruction+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy.</a> 3 (10), 793-795 (2006).</li>
<li>Betzig, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+intracellular+fluorescent+proteins+at+nanometer+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.</a> Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).</li>
<li>Hess, S. T., Girirajan, T. P., Mason, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultra-high+resolution+imaging+by+fluorescence+photoactivation+localization+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Ultra-high resolution imaging by fluorescence photoactivation localization microscopy.</a> Biophys. J. 91 (11), 4258-4272 (2006).</li>
<li>Manley, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-density+mapping+of+single-molecule+trajectories+with+photoactivated+localization+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">High-density mapping of single-molecule trajectories with photoactivated localization microscopy.</a> Nat. Methods. 5 (2), 155-157 (2008).</li>
<li>Hell, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Far-field+optical+nanoscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Far-field optical nanoscopy.</a> Science. 316 (5828), 1153-1158 (2007).</li>
<li>Klar, T. A., Hell, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subdiffraction+resolution+in+far-field+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Opt.+Lett%22%5BJournal%5D)">Subdiffraction resolution in far-field fluorescence microscopy.</a> Opt. Lett. 24 (14), 954-956 (1999).</li>
<li>Eggeling, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+observation+of+the+nanoscale+dynamics+of+membrane+lipids+in+a+living+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct observation of the nanoscale dynamics of membrane lipids in a living cell.</a> Nature. 457 (7233), 1159-1162 (2009).</li>
<li>Hedde, P. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulated+emission+depletion-based+raster+image+correlation+spectroscopy+reveals+biomolecular+dynamics+in+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Stimulated emission depletion-based raster image correlation spectroscopy reveals biomolecular dynamics in live cells.</a> Nat. Commun. 4, Forthcoming.</li>
<li>Hebert, B., Costantino, S., Wiseman, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatiotemporal+image+correlation+spectroscopy+%28STICS%29+theory%2C+verification%2C+and+application+to+protein+velocity+mapping+in+living+CHO+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Spatiotemporal image correlation spectroscopy (STICS) theory, verification, and application to protein velocity mapping in living CHO cells.</a> Biophys. J. 88 (5), 3601-3614 (2005).</li>
<li>Brown, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+integrin-actin+linkage+using+high-resolution+protein+velocity+mapping%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Probing the integrin-actin linkage using high-resolution protein velocity mapping.</a> J. Cell Sci. 119, 5204-5214 (2006).</li>
<li>Di Rienzo, C., Gratton, E., Beltram, F., Cardarelli, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+spatiotemporal+correlation+spectroscopy+to+determine+protein+lateral+diffusion+laws+in+live+cell+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Fast spatiotemporal correlation spectroscopy to determine protein lateral diffusion laws in live cell membranes.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 110 (30), 12307-12312 (2013).</li>
<li>Mueller, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STED+nanoscopy+reveals+molecular+details+of+cholesterol-+and+cytoskeleton-modulated+lipid+interactions+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">STED nanoscopy reveals molecular details of cholesterol- and cytoskeleton-modulated lipid interactions in living cells.</a> Biophys. J. 101 (7), 1651-1660 (2011).</li>
<li>Kleusch, C., Hersch, N., Hoffmann, B., Merkel, R., Csiszar, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+lipids%3A+functional+parts+of+fusogenic+liposomes+and+tools+for+cell+membrane+labeling+and+visualization%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Fluorescent lipids: functional parts of fusogenic liposomes and tools for cell membrane labeling and visualization.</a> Molecules. 17 (1), 1055-1073 (2012).</li>
<li>Ries, J., Chiantia, S., Schwille, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accurate+determination+of+membrane+dynamics+with+line-scan+FCS%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Accurate determination of membrane dynamics with line-scan FCS.</a> Biophys. J. 96 (5), 1999-2008 (2009).</li>
<li>Kolin, D. L., Wiseman, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+image+correlation+spectroscopy%3A+measuring+number+densities%2C+aggregation+states%2C+and+dynamics+of+fluorescently+labeled+macromolecules+in+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Advances in image correlation spectroscopy: measuring number densities, aggregation states, and dynamics of fluorescently labeled macromolecules in cells.</a> Cell Biochem. Biophys. 49 (3), 141-164 (2007).</li>
<li>Digman, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+fast+dynamics+in+solutions+and+cells+with+a+laser+scanning+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Measuring fast dynamics in solutions and cells with a laser scanning microscope.</a> Biophys. J. 89 (2), 1317-1327 (2005).</li>
<li>Ritchie, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+non-Brownian+diffusion+in+the+cell+membrane+in+single+molecule+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Detection of non-Brownian diffusion in the cell membrane in single molecule tracking.</a> Biophys. J. 88 (3), 2266-2277 (2005).</li>
<li>Voie, A. H., Burns, D. H., Spelman, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthogonal-plane+fluorescence+optical+sectioning%3A+three-dimensional+imaging+of+macroscopic+biological+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microsc%22%5BJournal%5D)">Orthogonal-plane fluorescence optical sectioning: three-dimensional imaging of macroscopic biological specimens.</a> J. Microsc. 170, 229-236 (1993).</li>
<li>Huisken, J., Swoger, J., Del Bene,, Wittbrodt, F., J,, Stelzer, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+sectioning+deep+inside+live+embryos+by+selective+plane+illumination+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical sectioning deep inside live embryos by selective plane illumination microscopy.</a> Science. 305 (5686), 1007-1009 (2004).</li>
<li>Wohland, T., Shi, X., Sankaran, J., Stelzer, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+plane+illumination+fluorescence+correlation+spectroscopy+%28SPIM-FCS%29+probes+inhomogeneous+three-dimensional+environments%5BTitle%5D)+AND+%22Opt.+Express%22%5BJournal%5D)">Single plane illumination fluorescence correlation spectroscopy (SPIM-FCS) probes inhomogeneous three-dimensional environments.</a> Opt. Express. 18 (10), 10627-10641 (2010).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Tek parçacık izleme (SPT) moleküler dinamiklerini incelemek için en yaygın stratejilerden birini temsil ve parçacık yörüngeleri ölçüm büyük bir avantaja sahiptir. Bu da karmaşık bir sistemde bile birkaç etiketli parçacıkların davranışlarını sondalama sağlar. Bununla birlikte, tipik haliyle SPT sistemi ve çok parlak bir etiket düşük yoğunluklu ihtiyacı bu avantajı ulaşmak için. Sisteme, üretim, etiketleme ve yerleştirme karmaşık bir prosedür gerekli bu durumda: Özellikle, yüksek temporal çözünürlük (mikro saniye olduğu a...

Singer ve Nicolson tarafından orijinal "sıvı mozaik" modeli başlayarak, hücre plazma zarı resim sürekli iskeleti ve lipit etki 1,2 yükselen rolünü kapsayacak şekilde son yıllarda güncellendi. İlk gözlemler membran proteinlerinin önemli bir kısmı 3-5 hareketsiz olduğunu (sıkı bağlamak) açıklanması photobleaching sonra floresan iyileşme elde edilmiştir. Bu öncü çalışmalar, çok bilgilendirici olmasına rağmen, sıkı bağlamak kurulumları nispeten zayıf alan (mikron) olarak çözünürlük ve zaman (saniye) muzdarip. Ayrıca, bir topluluk ortalama ölçümü olmak, sıkı bağlamak tek molekül davranışı hakkında bilgi veren yoksun. Bu bağlamda, spesifik olarak bir olasılık (aynı anda bir difüzyon işlemi bir molekülün çalışma sağlayan) çok parlak etiketleri ile tek bir molekül etiketlemek için oldukça başarılı olmuştur. Özellikle, iterekve mikrosaniye zaman çizelgesi, Kusumi, büyük ölçüde membran fizyolojisi 6 aktin esaslı membran iskeletinin rolünün tanınması katkıda lipid ve protein dinamikleri bilinmeyen özellikleri ark. kazandı erişim için Tek Parçacık Takibi (SPT) yaklaşımı zaman çözünürlüğü , 7. Bu bulgular, lipid ve protein difüzyon aktin bazlı bir iskelet tarafından ayarlandığı, "kazık ve çit" modeli olarak adlandırılan oluşturulur. Ancak, SPT birçok deneysel konularda sağlanan bilgilerin büyük miktarda erişimi için ele alınması gerekir. Özellikle, etiketleme prosedürü genellikle sisteme etiketli türlerin üretimi, saflaştırılması ve tanıtım gibi birçok adımlarla oluşur. Ayrıca, büyük bir etiket, kuantum noktaları veya metal nanopartiküller gibi, çoğu zaman alt-milisaniye süreler ve bir çok durumda önlenebilir edilemeyen etiket ile hedef moleküllerinin çapraz bağlanmasını ulaşmak için gereklidir. Son olarak, birçok yörüngelerİstatistiksel kriterlerine uygun kaydedilecek olan ve eş zamanlı olarak etiketin bir düşük yoğunluklu izleme izin vermek için gereklidir. SPT ile karşılaştırıldığında, bu sakıncaları birçok üstesinden flüoresan korelasyon spektroskopisi (FCS), moleküler dinamiklerini incelemek için çok umut verici bir yaklaşımı temsil etmektedir. Aslında, FCS geçici transfekte hücrelerinde floresan protein etiketli moleküllerinin dinamiklerini incelemek sağlayan, loş ve yoğun etiketleri ile iyi de çalışıyor. Ayrıca, zaman sınırlı bir miktarda yüksek istatistikleri ulaşan verir. Son olarak, etiket "yüksek" yoğunluğuna rağmen FCS tek molekülleri bilgi sağlar. Tüm teşekkürler, bu özelliklere FCS çok düz bir yaklaşımı temsil etmektedir ve yoğun bir model membranlar ve canlı hücreler 8-10 hem lipid ve protein dinamikleri üzerinde çalışmak için uygulanmıştır. Birçok farklı yaklaşımlar moleküler difüzyon ayrıntılarını ortaya çıkarmak için FCS yeteneğini artırmak için önerilmiştir. Örneğin, sh wasKendi farklı büyüklükteki gözlem alanları FCS gerçekleştirerek bir molekül hareketlerinin 11,12 bir "FCS difüzyon yasası" aydınlatıcı gizli özellikleri tanımlayabilirsiniz. Boyutu değişmiştir olmanın yanı sıra, odak alanı da, 13 yinelenmiş oldu hızlı kameralarla 21,22 hatlarda 14-20 veya konjuge boyunca uzayda taşındı. Bu 'uzay-zamansal' korelasyon yaklaşımlar kullanılarak, çeşitli membran bileşenlerinin ilgili biyolojik parametreler nicel modeli membranlar ve gerçek biyolojik olanlar, membran mekansal organizasyon haline tutulmakta ve böylece içgörü hem tarif edildi. Ancak, tüm FRAP ve FCS uygulamalarda şimdiye kadar tarif edilen fokal alanının boyutu aşılamayan uzamsal çözünürlüklü bir sınırı temsil eder. Çeşitli süper çözünürlüklü görüntüleme yöntemleri son zamanlarda bu sınırı aşmak için geliştirilmiştir. Bazıları böyle Stokastik optik yeniden mikroskobu (STORM) gibi, yerelleştirme hassas dayanmaktadır &lt;sup&gt; 23,24, foto-aktifleştirme lokalizasyon mikroskobu (PALM) 25, flöresanlı PALM (FPALM) 26 ve tek parçacık izleme PALM (sptPALM) 27: her anlık gerekli foton nispeten büyük miktarda bununla birlikte, zaman çözünürlüğü sınırlar En az birkaç milisaniye için bu yöntemler, bu nedenle in vivo olarak uygulanabilirliğini engellemektedir. Buna karşılık, süper çözünürlük görüntüleme için umut verici bir alternatif mekansal uyarılmış emisyon tükenmesi yöntemleri (STED'in veya geri dönüşümlü doyabilen optik floresan geçişler (RESOLFT)) 28,29 ile floresan emisyonu modüle tarafından açılmıştır. Bu yaklaşımlar hızlı tarama mikroskopları ve algılama sistemleri kullanmaya imkanı ile gözlem hacminin şekillenmesini çok altında kırılma sınırını birleştirir. Flüoresan iniş-çıkışlarını analizi ile birlikte, doğrudan mikroskopi STED'in lipidler ve p nano uzaysal dinamikleri prob bırakıldıcanlı hücre membranları içinde 30,31 roteinler. STED'in bazlı mikroskopi aynı fiziksel miktarlar Canlı hücrelerdeki floresan etiketli zar proteinleri ve / veya lipidler dinamiklerinin çalışma için uygun modifiye edilmiş bir uzay-zaman görüntü korelasyon spektroskopisi (H TATİSTİKLERİ 32,33) yöntemi ile elde edilebilir ve ticari bir mikroskop ile. Burada sunulan deneysel protokol birkaç adımda oluşur. Birincisi, zar üzerinde ilgili bölgenin hızlı bir görüntüleme gerektirir. Daha sonra, elde edilen görüntülerin yığın ortalama uzaysal ve zamansal ilişki işlevleri hesaplamak için kullanılır. Bağıntı fonksiyonlarının bir dizi montaj olarak, molekül "difüzyon kanunu 'belirgin bir difüzyon (D uygulaması) şeklinde görüntüleme şirketinden elde edilebilir - -Ortalama değiştirme grafiğinin. Bu komplo eleştirel molekülleri tarafından keşfedilmeyi ortama bağlıdır ve doğrudan gerçek difüzyon modları tanıma sağlarilgilenilen lipit / protein elde edilir. Daha önce 34 görüldüğü gibi ayrıntılı olarak, elde edilen görüntü serisi uzay-zamansal otomatik korelasyon fonksiyonu eleştirel toplanan resim serisi hareketli moleküllerin dinamiklerine bağlıdır (Aynı mantık bir hat satın uygulanabilir lütfen unutmayın Uzayda sadece tek boyut) olarak kabul edilir burada. Özellikle, korelasyon fonksiyonu olarak tanımlar: <img fo:content-width="2.3in" src="/files/ftp_upload/51994/51994eq1.jpg" width="230"> (1) nerede <img fo:content-width=".5in" src="/files/ftp_upload/51994/xyt.jpg" width="50"> , x konumuna, ölçülen floresans yoğunluğu temsil etmektedir, y-ve t de, <img fo:content-width=".08in" src="/files/ftp_upload/51994/e.jpg" width="8"> ve <img fo:content-width=".1in" src="/files/ftp_upload/51994/x.jpg" width="10"> temsil x mesafe vesırasıyla y yönlerinde, <img fo:content-width=".1in" src="/files/ftp_upload/51994/t.jpg" width="10"> zaman aralığını temsil eder ve <img fo:content-width=".2in" src="/files/ftp_upload/51994/brackets.jpg" width="20"> ortalamasını temsil eder. Bu fonksiyon, şu şekilde ifade edilebilir: <img fo:content-width="2.3in" src="/files/ftp_upload/51994/51994eq2.jpg" width="230"> (2) 'N', gözlem alanında moleküllerin ortalama sayısı temsil ettiği, <img fo:content-width=".10in" src="/files/ftp_upload/51994/circlex.jpg" width="10"> Uzayda büklüm operasyon temsil eder ve <img fo:content-width=".5in" src="/files/ftp_upload/51994/ex.jpg" width="50"> enstrümantal bel otokorelasyonu temsil eder. Bu ikinci durum optik / kayıt kurulum için tek bir emitörün fotonlar uzayda yayılır nasıl bir önlem olarak yorumlanabilir (sözde Noktası Yayılması Fonksiyonu, PSF, geniyi) bir Gauss fonksiyonu tarafından yaklaşık ralli. Son olarak, <img fo:content-width=".5in" src="/files/ftp_upload/51994/ext.jpg" width="50"> bir mesafede bir parçacık bulmak için olasılığını temsil eder <img fo:content-width=".10in" src="/files/ftp_upload/51994/e.jpg" width="10"> ve <img fo:content-width=".10in" src="/files/ftp_upload/51994/x.jpg" width="10"> bir süre geçtikten sonra <img fo:content-width=".10in" src="/files/ftp_upload/51994/t.jpg" width="10"> . Biz parçacıkların her yöne rastgele hareket ve net tozları mevcut olmayan hangi bir uzadıya dinamikleri, düşünürsek, bu fonksiyon da iyi varyans hareketli parçacığın ortalama Meydanı Tehcirine (MSD) olarak tespit edilebilir bir Gauss fonksiyonu ile yaklaşılır . Bu durumda, korelasyon fonksiyonunun bel (ayrıca şu şekilde de ifade <img fo:content-width=".3in" src="/files/ftp_upload/51994/2t.jpg" width="30"> ), Partikül İskelet toplamı ve enstrümantal bel olarak tanımlanabilir ve bir Gauss uyum ile ölçülebilirHer bir zaman gecikmesi için bağıntı fonksiyonunun anyonlar olabilecektir. Ölçülen ı MSD hareket eden moleküllerin belirgin bir yayılma hesaplamak için kullanılabilir <img fo:content-width=".4in" src="/files/ftp_upload/51994/dappt.jpg" width="40"> ve bir ortalama yer değiştirme <img fo:content-width=".4in" src="/files/ftp_upload/51994/rt.jpg" width="40"> gibi: <img fo:content-width="1.7in" src="/files/ftp_upload/51994/51994eq3.jpg" width="170"> (3) <img fo:content-width="1.7in" src="/files/ftp_upload/51994/51994eq4.jpg" width="170"> (4) Aşağıdaki bölümlerde boyunca okuyucuya rehberlik Kullanılan deney düzeneği üzerinde birkaç hususlar. Seçici ticari bir TIR floresan kullanarak, bir toplam iç yansıma (TIR) ​​aydınlatma kullanacak yaşayan hücrelerin bazal membran üzerinde florosforlar heyecanlandırmak için (TIRF) mikroskop (detaylar malzeme bölümünde bulunabilir). Ayrıca, sırayla th toplamakE floresan bir yüksek büyütmeli objektif kullanın ve (çip 16 mikron üzerinde piksel fiziksel boyutu) bir EMCCD kamera (100X NA 1.47, yüksek sayısal açıklık TIRF aydınlatma için gereklidir). 100 nm piksel boyutu ulaşmak için biz 1.6x ek bir büyütme merceği geçerlidir. Aşağıda tartışıldığı gibi, 1 ms altında bir zaman çözünürlüğü doğru 100 nm altında hızlı bir membran lipidlerinin dinamiklerini tanımlamak için gerekli olacaktır. Bu zamansal çözünürlüğe ulaşmak için biz kamera (512 x 512) bütün çip daha küçük faiz (ROI) bir bölgeyi seçmeniz gerekir. Bu şekilde, kamera zaman çözünürlüğü artırmak satır, daha az sayıda okuyacaktır. Ancak, bu okuma rejimde çerçeve zaman kamera üzerinde okuma çip maruz ücretleri değişiklikleri için gerekli ve 512 x 512 piksel EMCCD için milisaniye sırayla genellikle zaman ile sınırlı olacaktır. Bu sınırı yenmek için, gelişmekte olan bir teknoloji w, ROI-hatları, sadece yerine tüm çerçeveyi edilebiliyor(bizim EMCCD kırpılmış Sensör Modu denir) maruz çip boyutu bir pratik ve etkili azalma ITH. Bu yapılandırma, etkili olması için, dış ROI çip, optik bir yoldaki monte edilmiş delikli bir çift ile örtülmesi gerekir. Bir zaman çözünürlüğü aşağı 10 -4 saniye bu kurulum sayesinde elde edilebilir. 'Tartışma' bölümünde açıklandığı gibi bu yaklaşım, birçok farklı deney düzeneklerinin ile birleştiğinde olabilir, ancak unutmayın. Yöntemin Gösterme GFP- bir ATTO488 etiketli hem 1-palmitoil-2-hidroksi-SN -glisero-3-fosfoetanolamin (ATTO488-PPE) ve transferrin alıcı bir GFP-etiketli varyantı kullanarak (canlı hücrelerde sağlanacaktır TfR). Daha önce 30,35 bildirildiği gibi ATTO488-KKD'nin durumunda bu yaklaşım başarılı bir çoğunlukla ücretsiz difüzyon gösteren ortalama değiştirmesinin bir fonksiyonu olarak neredeyse sabit bir D uygulaması kurtarabilirsiniz. Buna karşılık, TfR-GFP azalan D göstermektedir <suk s dif>6 düşündüren ortalama değiştirmesinin bir fonksiyonu olarak b&gt; app. Ayrıca, ikinci durumda yerel difüzyon katsayısına ve membran düzlem üzerindeki pek çok mikrona kadar ortalama bir sınırlama alanını ölçmek mümkündür. </suk>

<table><tbody><tr><td>iXon Ultra 897</td><td>Andor</td><td>DU-897U-CS0</td><td></td></tr><tr><td>Solis</td><td>Andor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CHO-K1</td><td>ATCC</td><td>CCL-61</td><td></td></tr><tr><td>ATTO 488 etiketli PPE</td><td>ATTO-TEC GmbH</td><td>AD 488-151</td><td></td></tr><tr><td>DOPE</td><td>Avanti Polar Lipids, Inc.</td><td></td><td></td>850725</tr><tr><td>DOTAP</td><td>Avanti Polar Lipidler, Inc.</td><td>890890</td><td></td></tr><tr><td>100x Penisilin-Streptomisin-Glutamin</td><td>Gibco</td><td>10378-016</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12</td><td>Gibco</td><td>21331</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>10082147</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco</td><td>15630-106&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>SimFCS 3.0</td><td>Globals Yazılımı</td><td></td><td>Yazılım buradan indirilebilir: http://www.lfd.uci.edu/globals/</td></tr> <tr><td>DMI6000 TIRF modülü ile</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LAS AF</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Lipofectamine</td><td>11668019</td><td></td></tr><tr><td>Matlab</td><td>MathWork</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>C-terminal GFP etiketli Tranferrin Reseptörü</td><td>OriGene</td><td>RG200980</td><td></td></tr><tr><td>Agar</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A5306</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Sigma Aldrich</td><td>528730</td><td></td></tr><tr><td>Lateks boncuklar, floresan sarı-yeşil, 30 nm</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L5155</td><td></td></tr><tr><td>SONICA Ultrasonik Temizleyiciler</td><td>SOLTEC</td><td>ETH S3</td><td></td></tr><tr><td>Petri Kapları</td><td>Willco</td><td>GWSt-3522</td><td></td></tr><tr>Matlab <td></td><td></td><td>http://www.openmicroscopy.org/site/support/bio-formats5/users/matlab/</td> ICS-MatLab Araçları<td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td></td><td>için Biyo-Format ithalatçısı<a href="https://www.cellmigration.org/resource/imaging/software/ICSMATLAB_28-02-06.zip">https://www.cellmigration.org/resource/imaging/software/ICSMATLAB_28-02-06.zip</a></td></tr><tr><td>Matlab Eğitimi</td><td></td><td></td><td></td></tr> ile <tr><td>Simülasyon https://www.cellmigration.org/resource/imaging/icsmatlab/ICSTutorial.html SimFCS Eğitimi ile Simülasyon</td><td></td><td></td><td>https://www.cellmigration.org/resource/imaging/ppt-pdf/RICS%20Simulations.ppt</td></tr></tbody></table>

ticari mikroskop canlı hücre zarları moleküler difüzyon kanunu hızlı floresans görüntüleme gönderen

From Fast Fluorescence Imaging to Molecular Diffusion Law on Live Cell Membranes in a Commercial Microscope

Bu uzaysal dağılımı ve lipit ve protein gibi zar bileşenlerinin hareketi pek çok hücresel fonksiyonlarının düzenlenmesinde önemli bir etken olduğu giderek daha belirgin hale gelmiştir. Bununla birlikte, hızlı dinamikleri ve ilgili küçük yapılar için, çok yüksek uzay-zaman çözünürlüklü moleküllerin gerçek davranışlarını yakalamak için gereklidir. Burada yüksek uzaysal çözünürlüklü Canlı hücrelerdeki floresan etiketli plazma zar proteinleri ve lipidler dinamiğini çalışmak için deneysel protokol mevcut. Özellikle, bu yaklaşım, her bir molekülün izlendiği gerek yoktur, fakat zarın belirli bir bölgedeki tüm molekülleri kullanılarak nüfus davranışı hesaplar. Başlangıç ​​noktası, zar üzerinde belirli bir bölgenin hızlı görüntülenmesidir. Daha sonra, tam bir uzay-zaman otomatik bağıntı kurma fonksiyonu, örneğin, her biri 2, 3, n, tekrarları zaman gecikmeleri arttırmayı alınan görüntüleri ilişkilendirilmesi hesaplanır. Bu genişlik göstermek mümkündürdifüzyona bağlı parçacık hareketinin bir fonksiyonu olarak zaman gecikmesini arttırmayı mekansal otokorelasyon fonksiyonu artar pik. Bu nedenle, otokorelasyon fonksiyonların dizi montaj gerçek protein burada ortalama yer değiştirme karşı belirgin yayılma biçiminde, görüntüleme (iMSD) için ortalama kare deplasman elde etmek için olanak sağlar. Bu nanometre hassasiyetle tek moleküllerin ortalama dinamiklerinin kantitatif bir görünüm verir. Etiketli Transferin Reseptör (TfR) ve ATTO488 bir GFP etiketli varyantı kullanarak 1 Palmitoyl- 2-hidroksi sn -glisero-3-fosfoetanolamin (KKE) o üzerinde protein ve lipit difüzyon Spatiotemporal düzenlenmesini gözlemlemek mümkündür mikro kadar mili saniyelik bir zaman aralığında um boyutlu zar bölgeleri.

Protokol aşama 1.1 'de tarif edildiği gibi etkili bel kalibre etmek için, tek bir floresan nano boncuk görüntü ölçü olabilir. Bu tür boncukların tipik floresan görüntü, Şekil 1 'de sunulmuştur. 2B Gauss fonksiyonuyla yoğunluğu dağılımının uygun olarak geri artıkları verir ve 270 nm'de ölçülmesi etkili bel verir. Bu değer Rayleigh denklemi tahmin beklenen kırılma sınırı ile iyi bir anlaşma olduğunu. Bu kalibrasyon parçacık dinamiği ölçümü için gerekli değildir, ancak bu durum, görünür parçacık boyutunu ö...

Plazma zarı proteinlerinin ve lipitlerinin mekansal dağılımı ve zamansal dinamikleri biyolojide sıcak bir konudur. Burada bu sorun, kavramsal olarak tek parçacık izlemenin aynı fiziksel miktarlarını sağlayan bir uzaysal-zamansal görüntü dalgalanma analizi ile ele alınmaktadır, ancak küçük moleküler etiketler ve standart mikroskopi kurulumları kullanır.

Ticari Mikroskop Canlı Hücre Zarları Moleküler Difüzyon Kanunu Hızlı Floresans Görüntüleme Gönderen

It has become increasingly evident that the spatial distribution and the motion of membrane components like lipids and proteins are key factors in the ...

Bu prosedürün genel amacı, bunu yapmak için canlı hücre zarlarındaki lipitlerin ve proteinlerin difüzyon yasasını ölçmektir. İlk olarak, mikroskobun nokta yayılma işlevi, nanoskopik floresan boncukların görüntülenmesiyle kalibre edilir. Daha sonra, floresan olarak etiketlenmiş bir ilgilenilen molekül de dahil olmak üzere lipozom bazlı vektörler hazırlanır ve transfeksiyon veya doğrudan dahil etme yoluyla canlı hücrelere verilir.Canlı hücre plazma zarının hızlı görüntülenmesi, toplam iç yansıma floresan mikroskobu ile gerçekleştirilir. Son olarak, korelasyon fonksiyonu hesaplanır ve moleküler difüzyon yasası Gauss uydurma ile çıkarılır. Elde edilen veriler.İncelenen lipid veya proteinin hareket modunu tanımlayın. Bu tekniğin, foto ağartma yaklaşımı sonrası konvansiyonel floresan geri kazanımı veya klasik tek nokta floresan korelasyon spektroskopisine göre en büyük avantajı, moleküler difüzyon yasasının ölçülmesine izin vermesidir. Sistemin öncelikli bir bilgisini biliyoruz.Ayrıca klasik tek parçacık izleme metodolojilerinin aksine. Burada, mular yer değiştirme, parçacık yörüngelerini çıkarmaya gerek kalmadan ölçülür. Sonuç olarak, bu metal, örneğin genetik olarak kodlanmış floresan proteinler gibi nispeten kabul edilen ve yoğun molekül ile kombinasyon halinde kolayca kullanılabilir.Genel olarak, bu yöntem, protein veya lipid hareketinin plazma zarı yapısını ve fonksiyonel organizasyonu nasıl düzenlediği gibi hücresel moleküler biyoloji alanındaki kilit soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir ve bunlara ve ilgili sorulara verilen yanıtlar herkese açık hale getirilecek ve sadece ticari bir mikroskop kullanılarak, genel prosedürün gösterilmesi zo tarafından gerçekleştirilecektir. laboratuvardan bir doktora öğrencisi. Bu protokole, görüntüleme sisteminin nokta yayılma işlevini kalibre ederek başlayın. Daha önce 500 mikrolitrelik bir santrifüj tüpüne eklenen 90 mikrolitre damıtılmış su içinde 10 mikrolitre floresan boncuk çözeltisini seyrelterek başlayın.Bir neşter kullanarak bir sauna ikram banyosunda çözeltiyi 20 dakika boyunca sonikleştirin, bir santimetre karelik bir parça %3 AGA gül jeli kesin ve bir Petri kabına koyun. Jelinin üstüne 10 mikrolitre seyreltilmiş floresan boncuk çözeltisi koyun. Daha sonra forseps kullanarak, jel parçasını iki santimetrelik bir cam Petri kabında ters çevirin.Yine forseps kullanarak. Damlayı dağıtmak için jel parçasını aşağı doğru bastırın. Bir sonraki adım, ticari bir toplam iç yansıma floresan mikroskobundan oluşan satın alma kurulumunu açın.Bir uygulama paketi, gelişmiş floresan yazılımı ve/veya Solis görüntü elde etme yazılımı çalıştıran bir bilgisayara bağlı bir inkübatör ve hızlı bir EMCCD kamera ile donatılmıştır. Numuneyi, I parçasını ve iletilen ışığı kullanarak mikroskop tablasındaki tutucuya yerleştirin. Jelin sınırına odaklanın.Ardından jeli objektifin üzerinde ortalayın ve Leica uygulama paketinde lazer hizalama prosedürünü başlatmak için odağı ayarlayın, gelişmiş floresan yazılımı otomatik hizalamayı seçin ve otomatik hizalama prosedürünü izleyin. Lazer, ve/veya Solis edinme yazılımında hizalandıktan sonra, ayarlar düğmesine tıklayın. Bir pencere açılacaktır.Kamera pozlamasını 100 milisaniyeye, kazanılan EM'yi 1000'e, tekrarı 100'e ayarlayın ve kare aktarımı onay kutusunu işaretleyin. Ardından otomatik kaydetme penceresine tıklayın ve deneyin adını girin. İzole edilmiş tek noktalarla bir görüş alanı bulun.Genellikle bir boncuk agregasını temsil eden parlak bir noktaya odaklanın. Ardından 100 kare elde edin. Birkaç tek noktanın görüntüsünü elde etmek için bu adımı beş ila altı kez tekrarlayın.Elde edilen seriyi MATLAB gibi bir veri işleme programına aktarın ve yığının zaman içinde ortalamasını alın. Ardından ölçülen ortalama yoğunluk görüntüsünü görüntüleyin. Parlak, küçük bir floresan noktayı yakınlaştırın ve merkezi kabaca noktanın en parlak pikseli olarak tanımlayın.Son olarak, parçacığın etrafına çizmek istediğiniz ilgilendiğiniz bölgenin boyutunu, bir Gauss fonksiyonu ile seçilen yoğunluk dağılımına uymak için tipik olarak bir mikron yanında seçin. gause fit komutunu seçin. Uyumun iyi olduğunu doğrulamak için elde edilen kalıntıları inceleyin.Son olarak, kamerayı ekteki belgede açıklandığı gibi kalibre edin. Sistem kalibre edildikten sonra, görüntü elde etmek için hücreleri etiketlemenin zamanı gelmiştir. Lipid infüzyonu için gerekli lipozomları, her biri bir mililitre kloroform içeren ayrı bir mikro santrifüj tüpünde bir miligram DOPE, bir miligram D-O-T-A-P ve bir miligram PPE ADO 4 88'i çözerek hazırlamaya başlayın.Daha sonra, DOPE ve D-O-T-A-P çözeltilerinin her birini 0,5 mililitre 25 mikrolitre PPE ATO 4 88 çözeltisi ile birleştirin. Tüpü santrifüjlü bir buharlaştırıcıya koyun ve 280 gs'de dönüşü başlatın. Vakum pompasını çalıştırın ve 24 saat dönmesine izin verin.Ertesi gün, tüpe 0,5 mililitre 20 milimolar heis tamponu ekleyin ve 15 dakika boyunca girdaplayın. Daha sonra tüpü sonik bir yemek banyosuna yerleştirin ve 40 santigrat derecede 15 dakika boyunca sonikat yapın. Hücreleri hazırlamak için, bir P 100 kabını birleşik Çin hamster yumurtalığını yıkayın veya bir hücreyi 10 mililitre PBS ile üç kez CHOK'layın.Sonra bir mililitre tripsin ekleyin ve beş dakika boyunca 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksitte inkübe edin. İnkübasyondan sonra, hücrelerin bu hücre içeren çözeltinin 150 mikrolitre tohumunu askıya almak için% 10 FBS ile desteklenmiş dokuz mililitre D-M-E-M-F 12 ekleyin. Aynı ortamdan 800 mikrolitre içeren 22 milimetre cam tabanlı bir Petri kabında.Hücreleri 24 saat boyunca 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksitte inkübe edin. Lipid katılımı için, hücre ortamını 500 mikrolitre serum içermeyen ortamla değiştirin ve 30 dakika inkübe edin. İnkübasyondan sonra, iki mikrolitre lipozom çözeltisi ekleyin ve 15 dakika daha inkübe edin.Ardından hücreleri PBS ile yıkayın ve yeni DM EMF 12 ekleyin. Deneyden en az 12 saat önce görüntülemeden önce, mikroskop aşamasını ve optik bileşenleri deney sıcaklığına getirmek için mikroskop inkübatörünü açın. Bu prosedürün en zor adımı bu edinimdir.Başarıyı sağlamak için, sistem için her alım parametresini optimize ettiğinizden emin olun. Çalışılıyor. Deney günü mikroskobu açın, kameraların çalışma sıcaklığına ulaşmasını bekleyin.Deneyi gerçekleştirmek için iki kamera kullanacağız. Birinci kamera görüntüleme için, ikinci kamera ise hücreyi seçmek için kullanılacaktır. Bu yapılandırma, yazılımda elde edilebilecek en hızlı edinme süresine izin verecektir.İletilen ışık görüntüleme parametrelerini ayarlamak için. 20 milisaniye girin Pozlama süresi için, her iki kamera için EM kazancı için bir milisaniye girin. Ardından yazılımda kontrast modu penceresini açın ve sola dönün.Parlak alan seçeneğini seçmek için BF'ye tıklayın. Numuneyi göz merceklerinden görüntülerken numuneleri tutucuya koyun. Numuneyi odak noktasına getirin.Ardından ışığı manuel olarak birinci kameraya gönderin ve yarıkları hafifçe itin, böylece yalnızca görüntülenecek yatırım getirisi aydınlatılır. Ardından, bir hücreyi seçilen bölgeye taşıyın ve yazılımı kullanarak ışığı ikinci kameraya gönderin. Ardından yazılımda, bir referans oluşturmak için bir yatırım getirisi çizin.İlk olarak, lazeri yazılımla hizalamak için otomatik hizalamayı seçin. Ardından otomatik hizalama prosedürünü başlatmak için kolimatörü etkinleştir'i seçin. Ardından üstteki inkübatörü açın ve lazer ışınını toplayın.Lazer, yazılım penceresinin sol alt köşesinde hizalandığında, penetrasyon derinliğini 70 nanometre olarak ayarlamak için 70 düğmesine tıklayın. Bu, Leica uygulama paketinde lazerin alt cam üzerindeki yaklaşık 70 derecelik bir geliş açısına karşılık gelecektir. Gelişmiş floresan yazılımı maruz kalma süresi metin kutusu.EM kazancı metin kutusuna 70 milisaniye girin. Aynısını ikinci kamerada da yapmak için 1000 girin. Ayarlar penceresini açın ve ilgili metin kutularına aynı numaraları girin.Ardından, canlı düğmesine tıklayın. Floresan birinci kameraya gönderilecek ve numunenin bir görüntüsü ekranda görünecektir. Bir floresan hücre ilgilenilen referans bölgesine ulaşana kadar numuneyi hareket ettirin.Ardından, ışığı ikinci kameraya göndermek için mikroskop gövdesinin önündeki düğmeye basın ve ve/veya taban yazılımındaki hücre zarına odaklanmak için Z konum tekerleğini doğru bir şekilde hareket ettirin. Ayarlar penceresini açın ve elde edilebilecek minimum pozlama süresi olan 1000 EM kazanç kırpılmış sensör modunu 10 beşinci tekrara ayarlayın ve görüntü serisini almaya başlamak için otomatik kaydetme seçeneğini ayarlayın. Yazılımın kamera simgesine tıklayın ve satın alma işleminin bitmesini bekleyin.Ardından ayarlar penceresini açın, EM kazancını devre dışı bırakın ve kırpılmış mod seçeneğinden kontrolü kaldırın. Çekim sırasında, kameranın sıcaklığı genellikle yaklaşık iki ila üç derece artar. Bu nedenle, yeni bir hücreden görüntü almadan önce, optimum çalışma sıcaklığına ulaşılana kadar bekleyin.Yine, görüntüleme tamamlandıktan sonra, ilgilenilen molekülün floresan olarak etiketlenmiş bir varyantını elde etmek için görüntülemeden ortalama kare yer değiştirmeyi hesaplamak için ekteki belgedeki talimatları izleyin. CHOK bir hücreleri ya ADO 4 88 PPE ile etiketlendi ya da reseptör veya T-F-R-G-F-P'de bir transfer ile transfekte edildi ve bu videoda tarif edildiği gibi TIRF ile görüntülendi. Burada görülebileceği gibi, ADO 4 88 PPE için ölçülen difüzyon yasası düzdür, daha önce uyarılmış emisyon tükenmesi floresansı, korelasyon spektroskopisi veya T-F-R-G-F-P ile transfeksiyonu takiben sabit FCS ölçümleri ile gösterildiği gibi çoğunlukla serbest bir difüzyonu gösterir, T-F-R-G-F-P için ölçülen difüzyon yasası başlangıçta düzdür ve saniyede yaklaşık 0,7 mikron karelik bir ortalama görünür difüzyon katsayısı ile ortalama moleküler yer değiştirmenin 100 nanometrenin altında kalır.Bunu, görünür yayılımda saniyede 0,2 mikron kareye kadar hızlı bir azalma izler. Tipik olarak kırınım sınırlı FCS ile ölçülen değer. Bu son örnekte gösterildiği gibi, mevcut yaklaşımın, GFP gibi nispeten loş ve yoğun etiketler kullanarak bile birkaç on nanometrelik bir çözünürlükle ortalama moleküler yer değiştirmeyi kolayca ölçebileceğini belirtmek ilginçtir.Ayrıca, görünür difüzyon katsayısının azalmaya başladığı uzamsal ölçek, önceki tahminlere uygun olarak, zar iskeleti tarafından protein kısmi hapsedilmesinin karakteristik boyutunu yaklaşık 120 nanometre olarak belirler. Veri analizi prosedürüne hakim olduktan sonra bu edinim birkaç dakika içinde gerçekleştirilebilir. Bu tekniğin, hücresel ve moleküler biyoloji alanındaki araştırmacıların, yaşam örneklerinde protein ve lipid difüzyonunun uzay-zamansal düzenlemesini kolay ve nicel olarak keşfetmelerinin önünü açacağına inanıyoruz.

from-fast-fluorescence-imaging-to-molecular-diffusion-law-on-live

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Burada izlenir ve sayısal, fonksiyonel moleküler kompleksler tespit sağlamak için canlı bakteri hücreleri tek-molekül floresan mikroskopi gerçekleştirmek için protokolleri göstermektedir.

Tek Moleküler Kompleksleri görselleştirme In Vivo Gelişmiş Floresan Mikroskopi

Flüoresans Ömrü Görüntüleme (flim) görüntü ortamı ve spesifik proteinlerin ve canlı hücreler boyaların etkileşimi önemli bir teknik olarak ortaya çıkmıştır. Floresan moleküler rotor flim canlı hücreler viskozitenin haritalama sağlar.

Yaşayan Hücreler Moleküler Rotorlar arasında Flüoresans Ömrü Görüntüleme

Yaşayan hücrelerin plazma membranında flüoresan proteinlerin lipid sal bölümleme araştırmak için bir yöntem tarif edilmiştir. Bu lipid sallar içinde veya dışında bulunan proteinlerin difüzyon zamanlarda eşitsizlik yararlanır. Kazanım kontrol koşullarda ya da ilaç eklenmesinden sonra dinamik olarak gerçekleştirilebilir.

Lipid Raft belirlenmesi Flüoresan Korelasyon Spektroskopisi (FCS) tarafından Yaşayan hücreler içinde floresan etiketli Soruşturmasının Bölümleme

Çoklu Hedef İzleme canlı hücrelerinin plazma membranı içinde ayrı ayrı işaretli moleküllerin izlenmesi için geliştirilen ev yapımı bir algoritma. Verimli, tespit nano ölçekli membran dinamiğini incelemek için kullanıcı dostu, kapsamlı bir araç sağlamak, yüksek yoğunluklu zaman içinde moleküller tahmin ve izleme.

Çoklu Hedef İzleme (MTT) tarafından Plazma Membran Moleküler Difüzyon Haritalama

Biyomoleküllerin in vivo çalışmaları, biyolojik bağlamda moleküler işlevi anlamak için çok önemlidir. Burada, DNA veya proteinler gibi floresan biyomoleküllerin canlı mikroorganizmalara içselleştirilmesine izin veren yeni bir yöntemi açıklıyoruz. Floresan mikroskobu ile kaydedilen in vivo verilerin analizi de sunulmakta ve tartışılmaktadır.

Elektroporasyon yoluyla Yaşam Mikroorganizmalar içinde içselleştirilmesi ve Floresan biyomoleküllerin Gözlem

Floresan korelasyon spektroskopisi (FCS) kullanılarak primer immün hücrelerin zarlarında protein difüzyonunu ölçmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yazıda, floresan etiketleme için antikorların kullanımı gösterilmektedir.

Flüoresan Korelasyon Spektroskopisi Ölçülen İlköğretim Lenfositler Plazma Membranlarda moleküler difüzyon

Bakterilerde temel süreçleri işlevini anlamak zordur. Floresans mikroskobu hedef özel boyalar ile mikrobiyal hücre büyüme ve hücre döngüsü ilerleme içine anahtar anlayışlar sağlayabilir. Burada, Agrobacterium tumefaciens yöntemleri canlı hücre görüntüleme için gerekli işlemleri karakterizasyonu için vurgulamak için bir model bakteri kullanılmaktadır.

Temel işlemler sırasında mikrobiyal hücre büyümesini gözlemlemek için hücre Floresans mikroskobu canlı

Burada, tek parçacık kantitatif değerlendirilmesi Difüzyon katsayıları, Floresans mikroskobu tarafından algılanan tek parçacıkların hareket ve küme boyutları türleri sağlar görüntü analizi izleme için bir iletişim kuralı mevcut.

Görüntü membran reseptörleri Floresans mikroskobu tarafından küme boyutunu ve Difüzyon analizi için protokol işleme

3D tek moleküllü lokalizasyon mikroskopisi, yaşayan bakteri hücrelerinde floresan olarak etiketlenmiş proteinlerin mekansal konumlarını ve hareket yörüngelerini araştırmak için kullanılır. Burada açıklanan deneysel ve veri analizi protokolü, sitosolik proteinlerin havuzhalinde ki tek moleküllü yörüngelere dayalı yaygın diffüzif davranışlarını belirler.

Tek Moleküllü İzleme Mikroskobu - Sitosolik Moleküllerin Diffüz Durumlarını Belirlemede Bir Araç

Bu makale, canlı hücrelerin plazma zarındaki moleküler difüzyonu ölçmek için nokta varyasyonu Floresan Korelasyon Spektroskopisi (svFCS) mikroskobunun nasıl oluşturulacağına dair bir protokol sunmayı amaçlamaktadır.

Canlı Hücrelerin Plazma Membranında Moleküler Difüzyonun Analizi için Spot Varyasyon Floresan Korelasyon Spektroskopisi

Burada, takip çok parametreli canlı hücre mikroskobu gerçekleştirmek için farklı çok hücreli sferoid oluşturma yöntemlerini açıklıyoruz. Floresan ömür boyu görüntüleme mikroskobu (FLIM), hücresel otofloresan, boyama boyaları ve nanopartiküller kullanılarak, canlı üç boyutlu (3D) kanser ve kök hücre türevli sferoidlerde hücre metabolizması, hipoksi ve hücre ölümünün analizi için yaklaşım gösterilmiştir.

Çok Hücreli Sferoidlerin Üretimi ve Çok Parametreli Canlı Hücre Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu (FLIM)

Öğrenin, canlı hücre zarlarında lipit ve protein difüzyonunu ticari mikroskopla ölçme yöntemini. TIRF mikroskobisi ve Gauss uyumuyla moleküler dinamikleri analiz edin.

Ticari Mikroskop Canlı Hücre Zarları Moleküler Difüzyon Kanunu Hızlı Floresans Görüntüleme Gönderen

Daha fazla video keşfet