Name: Oluşturma Anatomik Doğru ve İnsan Beyin Tümörleri Reproducible İntrakraniyal Ksenograftlar (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 14 s
Description: Öğrenin farelerde insan beyni tümörleri için tutarlı ve tekrarlanabilir ortotopik ksenograft modeli oluşturmayı. Bu hassas cerrahi teknik, yeni tedavi stratejilerinin test edilmesine olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dr Keating DOD hibe CA100335 tarafından finanse edilen ve bir Aziz Baldrick&#39;in Vakfı Scholar.

Tüm açıklanan prosedürleri gözden ve kurumsal hayvan bakımı ve kullanımı komitesi tarafından onaylanmıştır. 1. Plan Deney <ol><li> Hücreleri seçin enjekte edilecek. Yapışık hücre kültür soyları, genetik olarak modifiye edilmiş klonlar, neurosphere hücreler, primer kültürü ya da ayrıştırılmış tümörleri: çeşitli kaynaklardan gelen hücreler enjeksiyon için adaydırlar. Istenen modelin tipi enjeksiyon için en uygun sitesi tanımlayacaktır. <ol><li> Enjeksiyon için hücre sayısını belirlemek. Tümörler oluşturmak için gereken hücre sayısı, hücre soyu ile değişir ve ampirik olarak tespit edilmelidir; Tümör büyüme oranı, hücre tipi, hücre sayısı ve doku kültürü kanal adedi büyük ölçüde bağlıdır. 1 x 10 4 2 x 10 5 veya enjeksiyon başına daha fazla değişen hücre sayıları değişen büyüme oranları tümörleri üretmişlerdir. </li><li> Enjeksiyon için hacmini sınırlayın. Hücreler serum barındırmayan ortam veya fosfat tamponlu s en küçük hacminde süspansiyon haline olmalıdır26 G&#39;lik bir iğne içinden, pürüzsüz ve kolay geçişine olanak tanır dizilmek (PBS). Daha küçük olan hacmi aslında beyin içine teslim daha kesin ve elde edilen tümör tanımlandığı gibidir; en iyi sonuçlar 3 ila 6 ul arasında değişen hacimlerde enjekte edilmesi ile elde edilir. Doğru bir ölçüm, karıştırma ve numune alma sağlamak için, bağımsız olarak planlanan enjeksiyon sayısı, suspensiyon halindeki hücreler en az 50 ml&#39;lik bir son toplam hacmi hazırlamaktır planı. </li></ol></li><li> Modele uygun fareler seçin. İnsan tümörlerinin murin modelleri genellikle bağışıklık kaynaklı graft rejeksiyonu önlemek için, genç bağışıklık yetersizliği olan fareler kullanır. Uygun önlemler dekontaminasyon, dezenfeksiyon, malzeme ve ekipmanların sterilizasyonu dahil alınırsa çalışma biyolojik güvenlik kabini içinde yer almak için gerekli değildir. Burada gösterilen çalışma yaş 6 ve 12 hafta, erkek ve dişi atimik çıplak farelerde, yapılmıştır. Zor olabilir az 20 g ağırlığında Fareler olarak konumlandırmakve tereotaxic çerçeve hipotermiye daha duyarlı olabilir. </li></ol> 2. Ekipman birleştirin <ol><li> Elde edilir ve bir fareye stereotaksik çerçeve, hizalama konsolu ve fare gaz anestezi kafa tutucu, mikroenjektör pompa, ısı pedi, anestezi makinesi, fiber optik iş lamba ve değişken hız döner matkap dekontamine. Temizleyin ve tüm ekipmanı dezenfekte. </li><li> Şırınga pompasının çalışması için gerekli olan ve diğer değişkenlerin (oranı, oran birimleri, enjektör türü, akış enjeksiyon hacmi de dahil olmak üzere), enjeksiyon parametreleri programlamak. Her bir model için ayarlarını optimize eder. NOT: Ayarlar 3.000 nl örnekleri 25 ul şırınga (Aygıt Türü &quot;E&quot;) Non-Gruplanarak (&quot;N&quot;) modu kullanılarak (hızı birimleri &quot;M&quot;) 400 nl / dk hızında olan bu enjeksiyonları. </li><li> Son RI yaparken, bir steril deiyonize su ile pek çok kez durulanır 26 G iğne ile hassas mikroenjektör (diH 2 O) ve% 70 etanol (EtOH) temizleyindiH 2 O. ile nse Bazı ancak tüm modeller otoklava üzere tasarlanmıştır değildir. Piston hareketi düzgün ve ücretsiz olduğundan emin olun. </li><li> Anestezi uygulama ekipmanı edinin. Bu anestezi derinliğini ve süresini düzenleyen kolay olduğu gibi izofluran tercih anesteziktir. Stereotaksik birim fare anestezi gaz eki ile ve gerekli tüp ve konektörleri fare anestezi makineden gaz karışımını sunmak için yerinde olduğunu donanımlı olmasını sağlamak. </li><li> Ince uçlu (diş ile) makas, iki forseps / hemostatlarla dikilmesi için, orta boy makas, orta ve ince uçlu cımbız, ve en az iki adet 1 mm&#39;lik diş matkap dahil Otoklav cerrahi aletler,. % 70 EtOH, dezenfektan veya bir boncuk sterilizatör ile işlem sırasında temiz aletleri tutun. </li><li> Bir ikinci, izofluran, analjezik, oftalmik merhem / yağlayıcı maddenin, antibiyotik merhem, tuzlu su,% 30 hidrojen peroksit (H2O 2), antiseptik ve (arzu edilirse) kemik mumu elde edilirveteriner veya sağlık kaynağı. Steril diH 2 O ve% 70 EtOH hazırlayın. Böyle gazlı bez, steril pansuman, sütür, etanol bezlerden, pamuklu çubuklarla, steril cerrahi eldiven, cerrahi bıçaklar ve daha fazlası gibi Sarf malzemeler listesinde itemized. Kafatasını işaretleme için ince uçlu kalıcı marker dekontamine ve cerrahi kullanım için tahsis edilmelidir. </li></ol> 3. Enjeksiyon için Hücreleri hazırlayın <ol><li> Burada gösterilen deneylerde, ölümsüzleştirilmiş insan GBM hücre çizgisi seçin. Hücre sayısını (2 x 10 5) bağlıdır ve tecrübi olarak enjekte edilecek olan süspansiyon hacminin (3 ul) belirlenmesi; bilgilerini hücre türüne göre değişebilir. Hassas ölçüm, karıştırma ve enjeksiyon kolaylaştırmak için en azından 50 ul&#39;lik bir hacim kullanılır. </li><li> Medya veya PBS hücreleri ve tekrar süspansiyon Trypsinize. Hücre enjeksiyonu hemen önce aşağıdaki adımları uygulayın: <ol><li> Aspirasyon ile hücreleri medya çıkarın ve 100 mm plaka başına 10 ml PBS ile yıkayın; PBS kaldırmak. </li><li> ReklamHer 100 mm levha d 1 ml tripsin ve tek bir hücre süspansiyonu elde etmek için yeterince uzun, oda sıcaklığında inkübe edilir. </li><li> 5 tripsin aktivitesi durdurma mi Dulbecco Modifiye Eagle Ortamı (DMEM) +% 10, 100 mm plaka başına fetal sığır serumu (FBS). </li><li> 100 mm plaka başına ~ 5 ml serumsuz DMEM (SF-DMEM) içinde 450 x g&#39;de santrifüj ile tekrar süspansiyon Pelet hücreleri. </li><li> Hemasitometre ya da otomatik bir hücre sayacı kullanılarak canlı hücreler sayılır. </li><li> 2 x 10 5 hücre / 3 ul canlı hücre yoğunluğunu ayarlamak (veya deney ile belirlendiği gibi) hücreler tane haline SF-DMEM içinde yeniden süspanse edilerek. </li></ol></li><li> Buz veya soğuk paketi (hücre dondurma için izin vermez) üzerinde soğutulmuş hücreleri tutun. Parmak titreşmesinde hafifçe karıştırın. </li></ol> 4. anestezisi ve Cerrahisi Fare hazırlayın <ol><li> Anestezi ile ~% 5 izofluran (oksijen akışı ~ 2 L / dk) veya veteriner tarafından yönetilen Uyarmaktadır. Indüksiyon 2 3 dk almalıdır. Yeterli derinlikte fare koruyun~% 3 izofluran ile anestezi. <ol><li> , Ayak tutam tarafından anestezi derinliğini kontrol endikasyon varsa izofluran ayarlayın ve işlem boyunca solunum ve ayak tutam yanıt izlemeye devam. Isınmak için gazlı bez ile fare Kapak ve enjeksiyon hızına bağlı olarak, 1 saat 45 dakika sürebilir, süreç boyunca düzenli fare monitör. </li></ol></li><li> Dikkatle, dil üzerinde ve ağız içine damak çubuğunu kaydırarak stereotaktik çerçeve içinde fare yerleştirin. Diş deliğe ön kesici dişler kanca. Mümkün olduğunca yatay yakın olarak kulak-göz yüzeyi ile kafa stabilize etmek için kulak çubuklarını kullanın. Kulak kanalı içine çubukları zorlamayın. Bu güvenli baş pozisyonu önemlidir: nazikçe yan-yana ve yukarı-aşağı hareket edin. Uygun optimize etmek stereotaksik ünitesinin ayarlanabilir denetimlerini kullanın. </li><li> Oftalmik merhem ile gözleri yağlayın. Iki kez povidon-iodin dönüşümlü uygulamaları ile gözleri ve kulakları arasındaki cildi temizleyinE antiseptik ve% 70 EtOH. </li><li> Böğrüne seçilen analjezik subkutan (SQ) enjekte (ya da yönetti). </li></ol> 5. Enjeksiyon gerçekleştirin <ol><li> Enjeksiyon siteyi belirleyin. Enjeksiyon yeri ve boyutu fare soyunun ve hücrenin türüne göre değişiklik gösterebilir. Ventriküllere çok yakın enjekte hücreleri hastalığın kranyo-spinal yayılmasına yol açabilir. Çok sığ enjekte edilen hücrelerin iğne izi dışarı gelişebilir. Not: Burada gösterilen deneylerde, hedef korteksin ön bölge olarak tanımlanan bir Alanı 2.5 mm (sağ), 1.5 mm ön tarafı, ve bregmaya göre 3,5 mm ventral lateral seçildi (Şekil 1) üretilmesi 20 ila 30 g arasında değişen farelerde bir orta beyin tümörü. </li><li> Bregma ve enjeksiyon yerini ortaya çıkarmak için kafa derisindeki steril bir teknik kullanılarak küçük bir kesik (~ 8 mm uzunlukta) olun. Orta hat eksen ve sağ kulağına doğru sağ gözü (arasında bir noktadan bir çapraz kesim, <strong&gt; Şekil 2) Bregma ve enjeksiyon yerinde hem de erişim sağlar. </li><li> Cilt çekin ve kafatasının yüzeyini kurulamak için steril bir pamuklu çubuk kullanın. Bregma görselleştirmek için H 2 O 2 ile nemlendirilmiş bir bez ile kemik kurulayın. H 2 O 2 bregmada kesişir koronal ve sagital sütür boyunca beyaz köpük ince çizgiler bırakarak, oksijen kabarcıkları üretecek. </li><li> Micropump üzerine iğne ile boş bir şırınga kilitlemek ve doğrudan bregma üzerine iğne ucu manevra; set 0.0 mm lateral, 0,0 mm ön / arka, ve 0.0 mm ventral / dorsal için hizalama konsolda koordinatları. </li><li> Stereotaksik ünitesindeki kumanda düğmelerini kullanarak 2,5 mm yanal (sağda) ve bregmadan (veya istenilen yere) göre 1.5 mm anterior için iğne taşımak. Biraz şırınga kaldırın ve özel bir keçeli kalem ile kafatası tam konumunu işaretlemek. Kafatasının dış yüzeyi bregma (i olan bir seviye düzleminde emniyetle değilse.e., dorsal / ventral koordinat artık, sıfırlamak) sıfır okur ventral / dorsal 0.0 okuma enjeksiyon derinliği kaymıştır değil emin olmak için. </li><li> Adım 5.5 kalemle işaretlenmiş uygun yerinde steril bir diş ucu ile donatılmış bir el döner matkap ile kafatası içine küçük bir delik delin. Kafatasına bir açıyla matkap tutun ve çok yavaşça kemiğe ucuna dokunun. Gerektiği gibi tekrarlayın. Aslında kafatası bu tabaka nüfuz iğne bırakarak, kemik yoluyla neredeyse ancak tamamen değil delme, temiz enjeksiyon ile sonuçlanmaktadır. </li><li> PBS ya da tuzlu su nemlendirilmiş bir pamuklu çubukla kemik tozu kaldırmak. Pompaya şırınga dönün ve konumunu doğrulamak için düz aşağı çapak deliğe iğne düşük. Burr deliği iğne merkezli değilse, bu kapaklar açıldığında matkap için kullanın. </li><li> Yavaşça hücre süspansiyonu karıştırın ve pompa kontrolörü kullanarak şırıngaya hücreleri çizmek. Kabarcıklar ve yığınlarını önlemek ve iğne zekâ silinalkol tamponunu s dış yüzey üzerindeki kirletici hücreler ayıklandı. Şırınga / iğne tıkanmış ya da donmuş ise, kaldırmak ve steril su ve% 70 etanol ile hızlı bir şekilde temiz. </li><li> Kafatası yüzeyi seviyesine iğnesini (0,0 mm ventral / dorsal) indirin. Daha sonra yavaş yavaş (yaklaşık 1 dakika boyunca) kafatası tam kalınlığı boyunca delmek ve 4 mm ventrall derinliğe kadar nüfuz beyin iğne düşük. Ventral 3,5 mm yavaşça iğneyi çekin. Fare kafası stereotaksik biriminde güvenli bir şekilde yapılır ise, kafatası hemen hemen hiç hareket olmalıdır. </li><li> Doğru parametreler pompa kontrol girilir ki (Bölüm 2.2) ve basın &quot;Run / Stop&quot; Onayla (veya ürün kılavuzda belirtildiği gibi) hücreleri autoinject için. Fare izleyin ve endikasyon varsa izofluran ayarlayın. Şırınga izleyin ve piston namlu içinde hareket emin olun. Dondurulmuş veya tıkanmış hareket bükük / kırık dalgıç neden olabilir. </li><li> B iğne ile 2 dakika 1 bekleyinyağmur, daha sonra çok yavaş bir şekilde (3-4 dakika boyunca) dokudan iğnenin geri çekilmesi. Enjeksiyon tamamlandıktan sonra iğneyi kaldırmak için Toplam süresi 5 dk. Çapak delik çevresini örtecek bir pamuklu bir bez kullanın; Kemik kuruması için açık deri kenarlarını bırakın. </li><li> Pompadan şırınga çıkarın ve hızlı bir şekilde% 70 etanol ile, steril H 2 O ile 3x 3x yıkayın ve steril H 2 O ile 3 kata (veya üreticisi tarafından belirtildiği gibi). EtOH ile iğne silin ve bir kenara koyun. </li><li> Çapak delik (1 veya 2 ul eşdeğer) steril kemik balmumu uygulayın ve üzerine ve kemiğe balmumu bastırıp sıkıştırmak için steril bir pamuklu çubukla tahta ucunu kullanın. Yüzey yeterince kurutulmuş ise, sopa gerekir. </li><li> Fare ve çevredeki iş alanı üzerinde steril örtüyü yaymak ve kesi dikin; Üç ilmek yeterli olmalıdır. Seçenek olarak ise, cerrahi, yapışkan kullanılabilir. Topikal antibiyotik uygulayın. </li><li> % 0 izofluran azaltın ve c olmak stereotaksik biriminden fare kaldırmakDişleri korumak için areful. Kulaklar, ağız ve dil kontrol edin. </li><li> Yakından enjeksiyonun ardından fare izleyin. 5 ile 10 dakika boyunca bir ısı yastığı Yeri fare; sonra (ısı yastığı) kafes transfer ve fare uyanır ve ayaktan kadar gözlemlemek. O sternum recumbence korumak için yeterli bilince kavuşana kadar fare gözetimsiz bırakmayın. Tamamen iyileşene kadar diğer hayvanların şirkete fareyi iade etmeyin. Ağrı belirtileri fark ise ek analjezik kullanımını düşünün. </li></ol> 6. Finish ve Monitör Kurtarma ve Tümör Gelişimi <ol><li> % 70 EtOH, fareler arasında bir boncuk sterilizatör veya dezenfektan kullanarak temizleyiniz tüm alet ve ekipmanlar. </li><li> Ağrı, enfeksiyon veya diğer komplikasyonların belirtilerinin için işlem sonrası iki gün boyunca enjekte fareler izleyin. İşlemden sonra, 24 ve 48 saat (ya da belirtilen) bir analjezik enjekte edilir. Gerekirse, 7-10 gün sonra dikiş çıkarın. </li><li> Hastalık, paralysi klinik belirtileri için fareler değerlendirins, kilo kaybı, nöbetler, veya genel hastalığı aktivite azalmıştır. </li><li> [Vivo Görüntüleme Sistemleri İçinde manyetik rezonans görüntüleme (MRI), (IVIS), ve saire] uygun olan yöntem ile tümör gelişimini izlemek. </li></ol>

<ol><li>Heyer, J., Kwong, L. N., Lowe, S. W., Chin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-germline+genetically+engineered+mouse+models+for+translational+cancer+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Non-germline genetically engineered mouse models for translational cancer research.</a> Nature reviews. Cancer. 10, 470-480 (2010).</li>
<li>Yamada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+to+accurately+inject+tumor+cells+into+the+caudate%2Fputamen+nuclei+of+the+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22The+Tokai+journal+of+experimental+and+clinical+medicine%22%5BJournal%5D)">A method to accurately inject tumor cells into the caudate/putamen nuclei of the mouse brain.</a> The Tokai journal of experimental and clinical medicine. 29, 167-173 (2004).</li>
<li>Brooks, A. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducible+and+efficient+murine+CNS+gene+delivery+using+a+microprocessor-controlled+injector%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Reproducible and efficient murine CNS gene delivery using a microprocessor-controlled injector.</a> Journal of neuroscience. 80, 137-147 (1998).</li>
<li>Shankavaram, U. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+profiling+indicates+orthotopic+xenograft+of+glioma+cell+lines+simulate+a+subclass+of+human+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+cellular+and+molecular+medicine%22%5BJournal%5D)">Molecular profiling indicates orthotopic xenograft of glioma cell lines simulate a subclass of human glioblastoma.</a> Journal of cellular and molecular medicine. 16, 545-554 (2012).</li>
<li>Giannini, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient+tumor+EGFR+and+PDGFRA+gene+amplifications+retained+in+an+invasive+intracranial+xenograft+model+of+glioblastoma+multiforme%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro-oncology%22%5BJournal%5D)">Patient tumor EGFR and PDGFRA gene amplifications retained in an invasive intracranial xenograft model of glioblastoma multiforme.</a> Neuro-oncology. 7, 164-176 (2005).</li>
<li>Yi, D., Hua, T. X., Lin, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EGFR+gene+overexpression+retained+in+an+invasive+xenograft+model+by+solid+orthotopic+transplantation+of+human+glioblastoma+multiforme+into+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+investigation%22%5BJournal%5D)">EGFR gene overexpression retained in an invasive xenograft model by solid orthotopic transplantation of human glioblastoma multiforme into nude mice.</a> Cancer investigation. 29, 229-239 (2011).</li>
<li>Carty, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracranial+injection+of+AAV+expressing+NEP+but+not+IDE+reduces+amyloid+pathology+in+APP%2BPS1+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLos+ONE%22%5BJournal%5D)">Intracranial injection of AAV expressing NEP but not IDE reduces amyloid pathology in APP+PS1 transgenic mice.</a> PLos ONE. 8, e59626(2013).</li>
<li>Thaci, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacokinetic+study+of+neural+stem+cell-based+cell+carrier+for+oncolytic+virotherapy%3A+targeted+delivery+of+the+therapeutic+payload+in+an+orthotopic+brain+tumor+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+gene+therapy%22%5BJournal%5D)">Pharmacokinetic study of neural stem cell-based cell carrier for oncolytic virotherapy: targeted delivery of the therapeutic payload in an orthotopic brain tumor model.</a> Cancer gene therapy. 19, 431-442 (2012).</li>
<li>Ozawa, T., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+intracranial+brain+tumor+xenografts+with+subsequent+analysis+of+tumor+growth+and+response+to+therapy+using+bioluminescence+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Establishing intracranial brain tumor xenografts with subsequent analysis of tumor growth and response to therapy using bioluminescence imaging.</a> J. Vis. Exp. (41), (2010).</li>
<li>Valadez, J. G., Sarangi, A., Lundberg, C. J., Cooper, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+orthotopic+glioma+xenografts+recapitulate+infiltrative+growth+and+isocitrate+dehydrogenase+I+mutation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Primary orthotopic glioma xenografts recapitulate infiltrative growth and isocitrate dehydrogenase I mutation.</a> J. Vis. Exp. (83), (2014).</li>
<li>Baumann, B. C., Dorsey, J. F., Benci, J. L., Joh, D. Y., Kao, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stereotactic+intracranial+implantation+and+in+vivo+bioluminescent+imaging+of+tumor+xenografts+in+a+mouse+model+system+of+glioblastoma+multiforme%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Stereotactic intracranial implantation and in vivo bioluminescent imaging of tumor xenografts in a mouse model system of glioblastoma multiforme.</a> J. Vis. Exp. (67), (2012).</li>
<li>Iwami, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+of+intracranial+injection+via+the+postglenoid+foramen+for+brain+tumor+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A novel method of intracranial injection via the postglenoid foramen for brain tumor mouse models.</a> Journal of neurosurgery. 116, 630-635 (2012).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

İnsan beyin kanseri Ortotopik fare modelleri klinik tedavilerin etkinliğini değerlendirmek için mükemmel bir araç olabilir, ama beyin dokusunda hücrelerin yerleşimi optimize etmek için dikkat edilmesi gerekiyor olabilir. Çalışmalar aşırı kısım hacimleri, optimal enjeksiyon tekniği ve aceleci enjeksiyon oranları (tümör boyutu 2 sızdırma ve istenmeyen yerlere (karıncıklar, omurilik, epidural bölgelerde, vb.) Tümör hücrelerinin bir görünüm ve yüksek varyasyon kişisel gözlemlerini yol göstermiştir ). , H...

Beyin tümörü hücrelerinin in vitro çalışmalar büyüme, hayatta kalma, göç ve kanser hücrelerinin işgali sürüş moleküler mekanizmalar diseksiyon için paha biçilemez; kültürlü hücre deneyleri, sinyal yolları tanımlamak potansiyel terapötik hedefler önermek ve ilaç tedavisine hücresel yanıtı karakterize edilebilir. Fakat in vitro sistemler ilaca organizma cevabı tahmin için çok basit olduğunu; onlar fizyolojik tepkileri, bağışıklık yanıtlarını, hücre mikroortam, ve hayvan canlı sistemler genel heterojeniteyi yoksundur. Genetik mühendisliği modelleri, çok değerli mevcut olabilir, fakat moleküler farklılıkların klinik gözlem 1 hayvan modelleri karşılaştırırken önemli çelişkilere sonuçlanan insan süreçlerdeki olayları özetlemek hayvan türlerinde ve murin hücreleri arasında bulunmaktadır. Cenahlan deri altına, insan beyin tümörü hücre kuşaklarının subkutan (SQ) enjeksiyonunu içeren fare ksenograft modelleri gerçekleştirmek için kolayve ölçmek; onlar gen modifikasyonu ve ilaç idaresi / dağıtım, metabolizma ve toksisite etkileri gidermek için kullanılabilir. Önemli dezavantajları, ancak, SQ modellerinin kullanımını sınırlayan. Doğal olarak oluşan bir mikro-ortam beyin tümörü olduğu özetlemek değildir: çeşitli hücre tipleri ve dokuların etkileşimleri; beyne özgü yerel damar, ve sayısız diğer faktörler çoğaltılmış edilemez. Daha doğru bir doğal olarak oluşan bir beyin tümörü eşsiz ve ilaç ortamını yeniden müdahalelerin etkisini test etmek için, bir fare ortotopik bir model kullanılmalıdır. Bundan başka, genetik teknikleri ortotopik tümörü oluşumunda sonuçlanan ya da insan olmayan stroma hücreleri, modifiye edilmiş ve bir fare ilgili bölgesine enjekte edilir, insan primer kanserli olmayan hücrelerin (farklılaşmış veya progenitor) &#39;in genetik olarak inşa edilen bir yaklaşım bir parçası olarak da kullanılabilir benzer insanlarda 1&#39;de görülmektedir. Bu makaledebir metodoloji hassas ve tekrarlanabilir farelerde beyin tümörleri oluşturun. Bu tekniği kullanarak, kullanıcı doğru bir fare serebral korteksinin fronto-paryeto-temporal bölgenin belirli bir konuma süspanse edilen hücrelerin küçük bir kısım enjekte edebilir. Fare mortalite son derece düşük olduğunu; Bizim ellerde, hiçbir farenin 185 prosedürlerinden sonra cerrahi komplikasyonlar öldü. Elde edilen tümör özellikleri, tipik insan klinik tümörlerinin ile karşılaştırıldığında; örneğin: büyüme, nekroz derecesine, invazyon ölçüde, hücre tipi, mitotik hücrelerin varlığında, vb proliferasyon ve apoptozun, belirteçleri heterojenlik çabuklukla hücre çizgileri ya da ayrıştırılmış insan dokusu ya da tümör numuneleri, daha sonra ilgili kabiliyetleri bazında değerlendirilebilir gerçek klinik sunum simülasyonu. İlaç, hücre kültürü içinde performansına göre seçilmiş, çalışan bir metabolizma, dolaşım sistemi ve kan-beyin bariyeri bağlamında test edilebilir bir hayvan yükü wit var olduğuha tümör, ilgili mimari bağlamında bütün. Ayrıca, enjeksiyon için seçilmiş hücreler, genetik olarak, tümör büyümesi ve hayatta kalma gibi knock-in, mutasyonlar, belirli bir knockdowns, silmeler etkisini araştırmak için modifiye edilebilir. Çok sayıda yayın intrakranial çeşitli teknikler kullanılarak tümörler çalışmaları belgelemek. Yamada ve ark. Boya ve U87 hücrelerinin enjeksiyonu detaylı bir çalışma yaptım ve hacmi ve enjeksiyon oranını azaltması iyi tümör 2 ürettiğini bulundu. . Brooks ve arkadaşları bir mikro-işlemci kontrollü enjektörü ziyade viral vektörlerin teslim etmek için bir manuel yöntem kullanarak üstün tekrarlanabilirlik ve verimliliği bulundu; Optimal enjeksiyon parametreleri konularındaki sonuçlar hücre teslim 3 için geçerlidir. Shankavaram ve diğ. Beyin içine cl gen tanımlama profili değinmeyecek (manuel bir metot kullanılarak) habis beyin tümörü (GBM) hücre çizgileri ortotopikal enjekte gösterdiinical tümörler daha sık olarak ya da nitro ya da SQ ksenograftlarda, klinik öncesi çalışmalar 4 intrakranial modellerinin kullanımını destekler. Giannini ve ark. Ilave farelerin beyinlerinde içine seri pasaj edilmesi suretiyle çıplak farelerin yan yüzlerin orta kısmından sürekli olan insan cerrahi örneklerden hücreleri enjekte ettik ve bu yaklaşım modelde 5 hasta tümör geninin korunmuş değişiklikler gösterdi. Benzer sonuçlar Yi ve ark 6 tarafından rapor edilmiştir. Sterotaksik bir kurulum, dikkatlice tanımlanmış enjeksiyon bölgesini ve yavaş ve istikrarlı bir enjeksiyon hızı kullanılarak, bunlar tutarlı büyüme oranları ve yüksek (% 100) engraftmınt oranı ile tekrarlanabilir beyin tümörleri elde. Bu tekniğin geçerliliği nedenle de kurulmuştur; Bir literatür araştırması bu tekniğin uygulamaları geniş olduğunu göstermektedir. Carty et al. Başarılı bir transgeni ön korteksinde terapötik genlerin ifade eden viral vektörlerin sunmak için intrakranyal enjeksiyon ikinciAlzheimer hastalığı 7 c modeli. Taki ve diğ. Zaten ortotopikal enjekte GBM, tümör 8 taşıyan çıplak farelere, nöral kök hücre bazlı bir taşıyıcı içinde tedavi edici onkolitik adenovirüs sunmak için intrakranyal enjeksiyon kullanımını tanımlamıştır. Açıkçası, intrakranial enjeksiyonları klinik öncesi araştırma için çok yönlü ve etkili bir araçtır. Visualized Experiments Dergisi&#39;nde önceki yayınlar temel yaklaşımlar 9-11 tarif, ama biz-kolay-master teknolojisini kullanarak daha yüksek bir hassasiyet seviyesine intrakranial tümör enjeksiyonundan ve ortotopik modelleme kavramını alır.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>Dijital Ekranlı Küçük Hayvan Stereotaksik Aleti</td><td>Konsol Kopf</td><td>Model 940</td><td></td></tr><tr><td>Fare Gazlı Anestezi Baş Tutucu</td><td>Kopf</td><td>Model 923-B</td><td></td></tr><tr><td>Fare Kulak Çubukları</td><td>Kopf</td><td>Medel 922</td><td></td></tr><tr><td>Fiber Optik Aydınlatıcı</td><td>Fisher</td><td>12-562-36</td><td></td></tr><tr><td>UltraMicroPump III</td><td>WPI</td><td>UMP3</td><td></td></tr><tr><td>Micro4 mikroişlemci</td><td>WPI</td><td>UMC4</td><td></td></tr><tr><td>Değişken hızlı el tipi döner matkap</td><td>Dremel</td><td>Model 300</td><td></td></tr><tr><td>Dental matkap ucu, 1,0 mm</td><td>Spoelting</td><td>514554</td><td></td></tr><tr><td>Dental matkap ucu için adaptör: 3/32 inç pens</td><td>Dremel</td><td>481</td><td></td></tr><tr><td>Fareler için ısıtma yastığı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fareler için</td> <td>izofluran buharlaştırıcı sistemi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İzofluran buharlaştırıcıyı stereotaksik çerçeve</td><td></td> ile bağlamak için tıbbi boru ve konektörler<td></td><td></td></tr><td colspan="4">InstrumentsPrecision 25 &mu;<tr></td></tr><tr><td> l mikroşırınga</td><td>Hamilton & nbsp;</td><td>7636-01</td><td>Model 702, iğnesiz</td></tr><tr><td>Mikroşırınga iğneleri, 26s G</td><td>Hamilton&nbsp;</td><td>7804-04</td><td>RN, 25 mm nokta stili 2</td></tr><tr><td>İnce uçlu makas (düz, keskin/keskin)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Orta boy standart makas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Standart tırtıklı forseps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tırtıklı kanama durdurucular (2)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>İnce uçlu forseps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Supplies</ strong</td></tr><tr><td>>Sutürler 5-0 vicryl P-3 13 mm (Ethicon)</td><td>MWI</td><td>J463G</td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi bıçaklar # 10, paslanmaz (Tüy)</td> <td>Fisher</td><td>296 # 10</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran (Fluriso)&nbsp;</td><td>Veteriner Bir&nbsp;</td><td>NDC 13985-528-60</td><td>Ürün #502017. Sıvı inhalasyon anestezisi. Federal yasa, bu ilacın lisanslı bir veteriner tarafından veya onun emriyle kullanılmasını kısıtlar.</td></tr><tr><td>Carprofen (Rimadyl Enjekte Edilebilir 50 mg / ml)</td> <td>Pfizer</td><td>NDC 61106-8507-01</td><td>tuzlu su içinde seyreltin</td></tr><tr><td>Oftalmik merhem (yapay gözyaşları)</td> <td>Rugby</td><td>NDC 0536-6550-91</td><td></td></tr><tr><td>Topikal antibiyotik (AK-Poly-Bac)</td> <td>Akorn</td><td>NDC 17478-238-35</td><td></td></tr><tr><td>Povidon-iyot topikal antiseptik,% 10 (Betadine)</td> <td>Betadine</td><td>NDC 67618-150-04</td><td></td></tr><tr><td>Hidrojen peroksit, %30</td> <td>Balıkçı&nbsp;</td><td>Kafatası yer işaretlerini görselleştirmek için</td> <td>H325-100</td></tr><tr><td>Steril salin</td><td>VetOne&nbsp; &nbsp;</td><td>Çözeltileri seyreltmek, dokuyu temizlemek için</td> <td>NDC 13985-807-25</td></tr><tr><td>Kemik mumu</td><td>WPI</td><td>Ürün #501771</td><td></td></tr><tr><td>Steril örtüler</td><td>McKesson</td><td>25-517</td><td></td></tr><tr><td>Steril cerrahi eldivenler</td><td>McKesson</td> <td>(sığdırmak için)</td><td></td></tr> <tr><td>Steril gazlı bez pedleri, 2 x 2</td><td>Fisherbrand&nbsp;</td><td></td><td></td>22028556</tr><tr><td>Steril gazlı bez, 4 x 4</td><td>Fisherbrand&nbsp;</td><td>22-415-469</td><td></td></tr><tr><td>Alkol hazırlama pedleri (orta)</td><td>PDI</td><td>B603</td><td></td></tr><tr><td>Steril pamuk uçlu aplikatörler</td><td>Fisherbrand&nbsp;</td><td>23-400-114</td><td></td></tr><tr><td>Hücreler için kapaklı steril 0.5 ml vidalı kapaklı tüp</td><td>USA Scientific</td><td>1405-4700</td><td>Hücreler için</td></tr><tr><td>ayrı ayrı sarılmış steril dispo pipetler</td><td>İğne temizleme solüsyonları için</td><td>Fisher</td><td>BD 357575</td></tr><tr><td>iğneli BD insülin şırıngaları&nbsp;</td><td>Analjezik için</td> <td>Fisher</td><td>329461</td></tr><tr><td>Temizlik için</td><td>%70 Etanol</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril diH2O</td><td></td><td></td><td></td></tr> temizlik <tr>için iğne <td>temizleme solüsyonları</td><td></td><td></td> için<td>solüsyonları temizlemek için mikrofuj tüpleri</td></tr> <tr><td>Kafatasını işaretlemek için</td> <td>keçeli kalem (özel)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

oluşturma anatomik doğru ve İnsan beyin tümörleri reproducible İntrakraniyal ksenograftlar

Creating Anatomically Accurate and Reproducible Intracranial Xenografts of Human Brain Tumors

Özellikle beyin gibi eşsiz fizyolojik ve mimari nitelikleri ile sitelerin in vitro ve ektopik modelleri yapamam - Orthotopik tümör modelleri canlı hayvanın bağlamında, şu anda ve müdahalesi olmadan, bir tümör türü özelliklerini incelemek için en iyi yoldur. Bu damar, kan beyin bariyeri, metabolizma, ilaç dağıtım ve toksisite, ve diğer ilgili faktörlerin bir ev sahibi gibi özellikler oluşturmaktadır. Orthotopik modelleri de onların sınırlamaları var, ama ilgi uygun tekniği tümör hücreleri doğru dokuya engrafted edilebilir ile o insan beyninde en yakından taklit koşulları. Doğru tekrarlanabilir oluşturulabilir tutarlı oranı ve basınç, öngörülebilir büyüme oranları ile insan beyin tümörlerinin fare modelleri yerleri tanımlanmış hassas ölçülen miktarlar teslim ve çeşitli müdahalelerin güvenilir analiz için uygun yöntemler kullanılarak. Burada açıklanan protokol te odaklanırchnical başarılı ve tekrarlanabilir tümör büyümesini tasarımı ve intrakranial enjeksiyon için hazırlanması, ameliyat gerçekleştirmek ve sağlanması detayları ve farklı beyin tümörü modelleri bir dizi için özelleştirilebilir çeşitli koşullar için başlangıç ​​noktaları sağlar.

Güvenilir intrakranial ksenogratflardır bu açıklanan teknikle oluşturulabilir. Fare kafatası kritik yapılar (Şekil 1) belirlenmesi Bregma tanınması için izin ve kesin ve tekrarlanabilir enjeksiyon konuma araştırmacı rehberlik edecektir. Bu çalışmalarda, U251, ebeveyn doğrusu, lusiferaz (U251-Luc) veya U87 ile transfekte U251 insan GBM hücrelerinin doku kültürü hücreleri, SF-DMEM 4-6 ul içerisinde süspansiyon haline getirildi, ölümsüzleştirilmiş ve 2.5 mm (sağ) yan, 1,5 mm anterior enjekte ve bregmaya gö...

Beyin de in vitro veya ektopik analizler tarafından temsil edilmeyen nitelikleri ile benzersiz bir sitedir. Tekrarlanabilir bulunduğu yere ve büyüme özelliklerine sahip Ortotopik fare modelleri güvenilir bir stereotaksik tespit aracı ve bir düşük basınç şırınga pompası kullanılarak kafatası içine uygulanan enjeksiyonları ile oluşturulabilir.

Oluşturma Anatomik Doğru ve İnsan Beyin Tümörleri Reproducible İntrakraniyal Ksenograftlar

Orthotopic tumor models are currently the best way to study the characteristics of a tumor type, with and without intervention, in the context of a live ...

Bu prosedürün genel amacı, yeni terapötik stratejilerin doğru bir şekilde test edilmesi ve karşılaştırılması için kullanılabilecek tutarlı ve tekrarlanabilir bir insan beyni tümör modeli oluşturmaktır. Bu, hayvanı ameliyata hazırlayarak ve enjeksiyon için doğru bölgeyi bularak gerçekleştirilir. Yerleştirildikten sonra, kafatasında bir delik açılır ve uygun derinlikte bir şırınga indirilir.Tümör büyümesini elde etmek için, hücreler daha sonra yavaş kontrollü bir şekilde enjekte edilir, ardından iğnenin gecikmeli ve kademeli olarak geri çekilmesi takip edilir. Sonuç olarak, histopatolojik olarak insan durumuna benzer tümör büyümesine sahip tutarlı bir fare modeli geliştirilebilir ve büyüme oranları in vivo görüntülemeye dayalı Lucci ile ölçülebilir. Bu tekniğin hassasiyeti, insan beyni tümörleri için yeni terapötik stratejileri anlamak için hayati önem taşır.Tümör enjeksiyonunun değişken lokalizasyonu, mikro çevre, ilaç dağıtımı veya beynin farklı bölgeleri arasında büyük farklılıklar gösteren diğer şeylere bağlı olarak tümör büyümesinde değişikliklere yol açabilir. Bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi önemlidir, çünkü fare konumlandırma ve enjeksiyon bölgesi lokalizasyonunu içeren adımlar, yazılı veya grafik formatta kolayca tanımlanamayan üç boyutlu manipülasyonlar gerektirir. Başlamak için, bir fare stereotaksik çerçevesini ve ameliyat için gerekli diğer tüm ekipmanları temizleyin ve dekontamine edin.Model seçilen program için optimize edilmiş ayarları, enjeksiyon parametrelerini ve şırınga pompasının çalışması için diğer değişkenleri kullanma. Daha sonra, çalışma alanında otoklav cerrahi aletlerini düzenleyin, seri prosedürler için en az iki adet 1.0 milimetre diş matkap ucu ekleyin. Cerrahi aletleri% 70 etanol ile dezenfekte edin, ardından her hayvan arasında veya IACUC protokollerinizin önerdiği şekilde bir boncuk sterilizatöründe 30 saniye dezenfekte edin.Son olarak, gerekli tüm tıbbi malzemeleri ve tek kullanımlık malzemeleri bir araya getirin Kafatasını işaretlemek için ince uçlu, kalıcı bir işaretleyici dekontamine edilmeli ve cerrahi kullanım için ayrılmalıdır. Tripsin resüsünden sonra, hücreleri PBS'de askıya alın ve santrifüjleme Resüs ile pelet. Hücreleri 100 milimetre plaka başına yaklaşık beş mililitre serum serbest DMEM içinde askıya alın.Ardından, bir hemo, sitometre veya otomatik bir hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın. Saydıktan sonra, hücreleri peletleyerek ve bir SF dmm'yi askıya alarak canlı hücre yoğunluğunu ayarlayın. Hücreleri buz veya soğuk bir paket üzerinde soğuk tutun, ancak hücrelerin donmasına izin vermeyin.Parmak hareketiyle nazikçe karıştırın, hayvan anestezisini indükleyin ve yazma refleksi veya aktivite eksikliği olup olmadığını kontrol ederek hayvanın yeterince sakinleştirildiğini onaylayın. Anestezi uygulandıktan sonra, fareyi sıcaklık için gazlı bezle örtün ve prosedür boyunca hayvanı düzenli olarak izleyin. Ardından, fareyi stereotaksik bir çerçeveye yerleştirin.Palet çubuğunu ve kulak çubuklarını kullanarak, kulak ile göz yüzeyini mümkün olduğunca yatay tutmaya çalışın. Son olarak, gözleri oftalmik merhem ile yağlayın ve kulaklar ve gözler arasındaki cildi, povidon iyot, antiseptik ve% 70 etanolün alternatif uygulamalarıyla iki kez temizleyin. Deri altına bir analjezik enjekte ettikten sonra, ayak parmağı kıstırma refleksini kontrol ederek hayvanın tamamen uyuşturulduğunu onaylayın.Cilt kesisinden hemen önce, BMA'yı ve enjeksiyon bölgesini ortaya çıkarmak için küçük bir kesi yapın. Orta hat ekseni ile sağ göz arasındaki bir noktadan sağ kulağa doğru çapraz bir kesim, eksenin hem bgma'ya hem de enjeksiyon bölgesine gitmesine izin verir. Cildi geri çekin ve kafatasının yüzeyini kurutmak için steril bir pamuklu çubuk kullanın.Kemiği hidrojen peroksit ile nemlendirilmiş başka bir çubukla kurulayın. BGMA'yı görselleştirmek için, iğneli boş bir şırıngayı mikro pompaya kilitleyin ve ucu doğrudan bgma üzerinde hareket ettirin. Hizalama konsolundaki koordinatları sıfırlayın.İğneyi uygun şekilde 2,5 milimetre yanal ve 1,5 milimetre öne hareket ettirin. Torema. Stereotaksik ünite üzerindeki kontrol düğmelerini kullanarak şırıngayı hafifçe kaldırın ve kafatasının tam yerini özel bir keçe ucu ile işaretleyin. Kalem. Kafatasının dış yüzeyi dorsal düzlemde artık bgma ile aynı seviyede değilse, enjeksiyon derinliğinin doğru olduğundan emin olmak için dorsal ventral okumayı sıfıra sıfırlayın.Steril bir diş ucu ile donatılmış el tipi bir döner matkapla kafatasına küçük bir delik açın. Matkabı kafatasına doğru bir açıyla tutun ve ucunu kemiğe çok nazikçe dokundurun. Kemiği tamamen delmeyi bırakın.En az travma ile en temiz enjeksiyon elde edilir. Hücre enjeksiyonu sırasında kafatası şırınga iğnesi ile delindiğinde, PBS veya tuzlu su ile nemlendirilmiş bir pamuklu çubukla kemik tozunu alın. Şırıngayı pompaya geri koyun ve iğneyi doğrudan frez deliğine indirin.Konumu doğrulamak için, hücre süspansiyonunu yavaşça karıştırın ve hücreleri şırıngaya çekin. Pompa kontrol cihazını kullanarak kabarcıkları ve topakları önleyin ve iğneyi alkollü bir bezle silin. Dış yüzeydeki kirletici hücreleri çıkarmak için iğneyi kafatası yüzeyinin seviyesine indirin.Ardından iğneyi yavaşça indirin. Kafatasının tam kalınlığını delin ve iğneyi yavaşça 3,5 milimetre ventral alana çekmeden önce bir dakika boyunca dört milimetre ventral derinliğe kadar beyne nüfuz edin, doğru parametrelerin pompa kontrolörüne girildiğini onaylayın ve çalıştırın. Durmak. Hücreleri otomatik olarak enjekte etmek için şırıngayı izleyin ve pistonun namluya hareket ettiğinden emin olun.İğneyi dokudan çok yavaş bir şekilde çekmeden önce iğneyi bir ila iki dakika yerinde bırakın. İğne beş dakika boyunca çıkarılmalıdır. Frez deliğinin etrafındaki alanı temizlemek için pamuklu çubuk kullanın ve kemiğin kurumasını sağlamak için cildin kenarlarını açık bırakın.Şırıngayı pompadan çıkarın ve steril su ve etanol ile hızlı bir şekilde yeniden doldurun. Daha sonra, frez deliğine steril kemik mumu uygulayın ve mumu kemiğin üzerine ve içine sıkıştırmak için steril bir pamuklu çubuğun ahşap ucunu kullanın. Yüzey yeterince kurutulursa, yapışması gerekir Yarayı diktikten sonra, flor izini% 0'a düşürün ve fareyi stereotaksik üniteden çıkarın.Hayvanı ısıtılmış bir yüzeye yerleştirin ve tamamen iyileşene kadar gözlemleyin. Tüm alet ve ekipmanların %70 etanol ve boncuk sterilizatörü kullanılarak temizlenmesi veya her hayvan arasında dezenfekte edilmesi önemlidir. Enjekte edilen fareler, işlemden sonra ağrı, enfeksiyon veya diğer komplikasyon belirtileri açısından iki gün boyunca izlenmelidir.Fareleri istenen zamanda hastalık felci, azalmış aktivite, kilo kaybı, nöbetler veya genel hastalık klinik belirtileri açısından değerlendirin. Enjeksiyondan sonraki noktalar, manyetik rezonans görüntüleme veya in vivo görüntüleme sistemleri ile tümör gelişimini izler. Bu MRIT iki ağırlıklı görüntüler, U 87 hücrelerinden türetilen bir tümörü U2 51 hücrelerinden türetilen tümörle karşılaştırır.Zaman içinde çizilen tümör hacimleri, tüm deneylerde tutarlı olan tekrarlanabilir bir tümör gelişimi ve büyümesi penceresi gösterir. Çıplak farelere intrakraniyal enjekte edilen U2 51 lusifers Transdüksiyonlu GBM hücrelerinin bir IVIS görüntüsü, soldaki farenin başarılı bir şekilde enjekte edildiğini ve istenen yerde çok güçlü bir sesli sinyal gösterdiğini ortaya koyuyor. Sağdaki fare, yanlış enjeksiyon yeri veya tekniği nedeniyle başarısız bir sonuç gösterirken.Tümör boyutu, ilgilenilen beyin bölgesindeki lusifers aktivitesinden tahmin edilir ve zaman içinde çizilir. Mavi çizgi, başarılı bir intrakraniyal enjeksiyonla fareye karşılık gelirken, kırmızı çizgi, tümörün U 87 GBM hücrelerinden boyanmasından sonra h ve e'den sonra omurgaya tümör hücresi yer değiştirmesi olan fareye karşılık gelir, yoğun tümör büyümesi alanını ve malign hücrelerin mikroskobik istilası ile bitişik normal beyin dokusunu gösterir. U2 51 GBM hücrelerinden türetilen bir tümörün merkezinin bu bölümü, tipik insan GBM'sinde görülen çok çekirdekli malign hücrelerle tuhaf histopatolojiyi çok yakından kopyalar.Bu prosedürü denerken, tümör modelinin tekrarlanabilirliğinin, fare kafasının kesin ve güvenli bir şekilde konumlandırılmasına ve enjeksiyon bölgesinin tutarlı bir şekilde lokalizasyonuna bağlı olduğunu hatırlamak önemlidir. Ayrıca, kademeli bir oran ve tutarlı bir enjeksiyon basıncı gereklidir. Bu teknik, nöro-onkoloji alanındaki araştırmacıların, beyin tümörü hücresi enjeksiyonunun kesin olmayan lokalizasyonu ile birleşen değişkenliğin bir kısmını ortadan kaldırırken, insan beyin tümörleri için yeni terapötik stratejileri keşfetmelerine olanak tanır.

creating-anatomically-accurate-reproducible-intracranial-xenografts

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Lusiferaz modifiye insan beyin tümörü xenografts atimik farelerde tümör büyümesi ve biyoparlaklık görüntüleme kullanarak tedaviye yanıt daha sonraki izleme ile intrakranyal kurulmuş olabilir. Sağkalım analizi ile birlikte, biyoparlaklık izleme, beyin tümörlerinin tedavisi için düşünülen tedavilerin klinik öncesi test için önemli bir araştırma aracı.

Biyoparlaklık Görüntüleme kullanarak Tümör Büyüme ve Terapi yanıt sonraki Analizi ile İntrakranial Beyin Tümörü Xenografts kurulması

Glioma tedavisi için yeni tedavi paradigmalar değerlendirmek için, fizyolojik ilgili modeller gereklidir. Biz stereotaktik yaklaşımlar daha hızlı ve daha güvenli bir intrakranial xenograft modelleri kurulması için implante edilebilir bir kılavuz vida prosedürü kullanır.

Basit Fare İntrakranial Xenograftlarında Çalışmaları Kılavuzu Vida Yöntemi

Biz çıplak farelerin ve sonraki seri beyinlerine insan glioblastoma multiforme hücrelerinin hassas, stereotaktik implantasyon için tümleşik bir yöntem...

Stereotaktik intrakranial implantasyon ve<em&gt; In vivo</emGlioblastoma Multiforme bir Mouse Model Sistemde Tümör Xenografts arasında&gt; Bioluminescent Görüntüleme

Malign gliomalar, farklı klinik ve moleküler özelliklere sahip heterojen bir yüksek infiltive glial neoplazm grubunu oluşturur. Primer ortotopik ksinograftlar preklinik hayvan modellerinde malign glioma alt tiplerinin histopatolojik ve moleküler özelliklerini rekapitulate eder.

Primer Ortotopik Glioma Xenografts Infiltratif Büyüme ve İsocitrat Dehidrogenaz I Mutasyonu Rekapitulate

Biz, tümörün büyüme sırasında oynayan normal biyo-fiziksel kısıtlamalar tekrarıdır intravital iki foton mikroskopi için farelerde kortikal glioblastoma ortotopik bir model oluşturduk. Tümörün yukarıdaki kafatasını yerine bir kronik cam pencere, iki-foton mikroskobu ile zamanla tümörün ilerlemesinin takibini sağlar.

Ortotopik Glioblastoma Fare Modeli Beyin parankim fiziksel kısıtlamaları bakımı ve Intravital İki foton Mikroskopi için uygundur

Floklanmış, koşullu onkojenik alellerle tasarlanmış ve viral Cre aracılı rekombinasyon yoluyla transforme edilmiş farelerden toplanan fenotipik vahşi tip astrositler ve nöral kök hücreler, astrositom patogenezini modellemek için kullanılabilir in vitro ve in vivo dönüştürülmüş hücrelerin sinjeneik, bağışıklığı yetkin yavruların beyinlerine ortotopik enjeksiyonu ile.

Modelleme Astrositom Patogenez İn Vitro Ve In Vivo Kortikal Astrositler veya Şartlı, Genetiği fareler ile Nöral Kök Hücreler kullanma

Kök hücreler tümör tropizminden ötürü beyin tümörlerini tedavi etmek için terapötik taşıyıcıları umut vericidir. Non-invaziv intranazal kök hücre iletimi kan beyin bariyerini atlar ve klinik çeviri için güçlü bir potansiyel gösterir. Bu makale, glioma fare modelinde intranazal kök hücre sunumunun temel ilkelerini özetlemektedir.

Bir Fare Modelinde Tedavi Edici Kök Hücrelerin Glioblastomaya İntranazal Dağıtımı

Burada, orthotopic insan birincil beyin tümörü taşıyan immünyetmezligi farelerde hazırlık ve allojenik insan lenfosit stereotaksik yönetim için bir iletişim kuralı mevcut. Bu çalışmada bir kanıtı-of-concept fizibilite ve hücresel immunotherapies intrabrain teslim antitümör etkinliği için sağlar.

Orthotopic insan Glioblastoma Multiforme Xenografts fare modelleri sitotoksik bağışıklık hücrelerinin stereotaksik evlat edinen Transfer

Burada, genetiği değiştirilmiş fare modeli tümörlerinden türetilen hücrelerin intrakraniyal enjeksiyonu ile kurulan GBM için klinik öncesi bir ortotopik fare modelini tarif ediyoruz. Bu model, insan GBM'sinin hastalık özelliklerini gösterir. Translasyonel çalışmalar için, fare beyin tümörü in vivo MRG ve histopatoloji ile izlenir.

Glioblastoma multiforme'un Translasyonel Ortotopik Modelleri

Ortotopik pediatrik beyin tümörü modellerinin geliştirilmesi, kanser hücrelerini hassas bir şekilde implante etmek için stereotaksik bir cihaz kullanarak titiz bir hassasiyet gerektirir. Burada sunulan metodoloji, beyin tümörü hücrelerinin hazırlanması, intrakraniyal enjeksiyonların gerçekleştirilmesi ve beyin tümörü aşılanmasını değerlendirmek için ameliyat sonrası bir izleme sisteminin uygulanmasında yer alan adımları özetlemektedir.

Stereotaksik Cihaz Kullanılarak Beyin Tümörleri İçin Ortotopik Hasta Kaynaklı Ksenogreft Modellerinin Oluşturulması

Bu protokolün amacı, araştırmacılara intrakraniyal implantasyonlar için son derece tekrarlanabilir bir teknik sunmaktır.

Farelerde glioblastoma hasta kaynaklı ksenograft hücre hatlarının stereotaktik intrakranial implantasyonu

Öğrenin farelerde insan beyni tümörleri için tutarlı ve tekrarlanabilir ortotopik ksenograft modeli oluşturmayı. Bu hassas cerrahi teknik, yeni tedavi stratejilerinin test edilmesine olanak tanır.

Oluşturma Anatomik Doğru ve İnsan Beyin Tümörleri Reproducible İntrakraniyal Ksenograftlar

Daha fazla video keşfet