-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Kırmızı Un Beetle Larva RNA Girişim, Tribolium castaneum
Kırmızı Un Beetle Larva RNA Girişim, Tribolium castaneum
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Larval RNA Interference in the Red Flour Beetle, Tribolium castaneum

Kırmızı Un Beetle Larva RNA Girişim, Tribolium castaneum

Full Text
16,763 Views
11:00 min
October 13, 2014

DOI: 10.3791/52059-v

David M. Linz*1, Courtney M. Clark-Hachtel*1, Ferran Borràs-Castells*1, Yoshinori Tomoyasu1

1Department of Biology,Miami University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

RNA enterferans (RNAi) tabanlı gen demonte teknikleri Tribolium araştırma özünde vardır. Burada, biz Tribolium castaneum'ların bizim larva RNAi tekniğinin bir bakış sağlar. Larva RNAi araştırmacılar farklı bağlamlarda gen fonksiyonlarını incelemek için izin, kayıp fonksiyon-fenotiplerine hızlı erişim sağlayan basit, ama güçlü bir tekniktir.

Bu prosedürün genel amacı, larva vücut boşluğuna çift sarmallı RNA çözeltisi enjekte ederek kırmızı çiçek böceği trium cadium'daki RNA girişimi yoluyla ilgilenilen bir geni parçalamaktır. Bu, ilk olarak kültür çiçeğini eleyerek ve larvaları bir tohum tavasında böceklerin diğer aşamalarından ayırarak larvaların uygun aşamasını kültürden izole ederek gerçekleştirilir. İkinci adım, iğnenin ucunu kırarak, bir iğne tutucuya yerleştirerek ve önden yüklemeli, istenen konsantrasyonda çift sarmallı RNA solüsyonunu iğneye yükleyerek bir enjeksiyon iğnesi hazırlamaktır.

Daha sonra, izole edilmiş larvaları yetkilendirin ve larvaları yapışkan bir cam slayt üzerine yerleştirin. Son adım, larvalara diseksiyon mikroskobu altında çift sarmallı bir RNA çözeltisi enjekte etmektir. Sonuçta, hedeflenen genin işlevini belirlemek için istenen aşamadaki RNAi ile ilişkili fenotipler analiz edilir.

Bu tekniğin nörojenez veya transgenez gibi mevcut yöntemlere göre ana avantajı, böceklerin vücut boşluğuna sadece basit bir çift sarmallı RNA çözeltisi enjeksiyonunun, bedo gelişiminin istenen herhangi bir aşamasında verimli ve uzun süreli gen yıkımını indükleyebilmesidir. Burada açıklanan protokol, bazı modifikasyonlarla trium castin larvalarına odaklanacak olsa da, enjeksiyon prosedürleri trium, castin ve diğer böceklerin diğer aşamalarına uygulanabilir. Genel olarak, bu yönteme yeni başlayan bireyler, iyi bir iğne yapmak ve larvaları öldürmeden uygun miktarda çift sarmallı RNA solüsyonu enjekte etmek ile mücadele edeceklerdir.

Bu tekniğin görsel gösterimi kritiktir, çünkü çift sarmallı RNA enjeksiyonu ve iğne hazırlama adımlarının tanımlanması zordur ve yalnızca gözlem ve uygulama kültürü yoluyla öğrenilebilir. Ekteki metin protokolünde ayrıntılı olarak açıklandığı gibi tercih edilen çay döküm türü. Böceklerin bir kültür şişesini hemen 25 numaralı bir elek üzerine boşaltın ve yaşlı larvaları, pupileri ve yetişkinleri toplamak için agresif bir şekilde eleyin.

Daha sonra böcekleri exus ile birlikte bir tohum tavasına aktarın ve böceklerin kaçmasını önlemek için hafifçe vurun. Şimdi, ekzusu ve çiçek parçacıklarını böceklerin yüzeyinden çıkarmak için tohum tavasının üzerine hafifçe üfleyin. Yerleşmek için tohum tavasına dokunun.

İçindekiler. Daha hareketli yetişkinlerin yığından çıkmasını bekleyin ve pupi açısını ayırmak için onları çıkarın, tava hafifçe aşağı bakacak şekilde. Pupi'yi yuvarlamak ve çıkarmak için hafifçe vurun, tohum tavasında sadece larvaları bırakın.

Şimdi izole edilmiş larvaları temiz bir Petri kabına yerleştirin. Mikroskop altında enjeksiyon için istenen larva aşamasını seçin ve yetkilendirmeye kadar bir Petri kabında tutun. Böceklerin kalan aşamalarını birleştirin ve tekrar bir kültür şişesine koyun.

Çekilmiş bir cam iğneyi bir cam mikroskoba takın. Diseksiyon mikroskobu altında kaydırın. Ucun büküldüğü yeri bulun.

Alanı hafifçe uç tarafına doğru tutun ve larva kütikülünün optimum penetrasyonu için kırmak için bükün, çapı yaklaşık 0,05 milimetre olan açılı bir açıklığa sahip bir iğne seçin. Şimdi iğne tutucunun ucunu sökün. İğnenin arka ucunu tutucu uca ve lastik contayı tutucu ucun altına yerleştirin.

Ardından, lastik contanın açıklığa yerleştirildiğinden emin olarak iğnenin arkasını tutucuya yerleştirin. Ucu tekrar tutucuya vidalayın. Şimdi monte edilmiş iğne tutucuyu iğne manipülatörüne yerleştirin.

Konumu, iğnenin ucu mikroskop görüş alanı altında ortalanacak şekilde ayarlayın. Enjeksiyondan hemen önce çift sarmallı RNA çözeltisini hazırlayın. 20 mikrolitrelik tek kullanımlık pipet ucunun ucunu kesin.

Şimdi 10 mikrolitre solüsyonu kesilmiş pipet ucuna pipetleyin. Karşı basınç sağlayarak sıvıyı uçta tutarken pipet ucunu pipetten dikkatlice çıkarın. Çift sarmallı RNA çözeltisi ile pipet ucunu mikroskop aşamasına yerleştirin.

Mikroskoptan bakarak, iğnenin ucu yüklenen pipet ucunun hemen içine ve çözeltinin içine gelene kadar yüklü ucu yavaşça iğneye doğru hareket ettirin. Ardından, iğneyi aşırı yüklemeden çözeltiyi iğneye yavaşça çekmek için enjeksiyon şırıngasının pistonunu yavaşça geri çekin. DS RNA çözeltisinin ucu iğnenin ucuna yaklaşırken, iğne tutucusuna hızlı bir şekilde alınmasını önlemek için iğnenin ucu havaya ulaşmadan önce çekme hızını yavaşlatın ve çözeltiyi yüklemeyi durdurun.

Enjeksiyon şırıngası ve iğne tutucusundan basıncı çıkarmak için durdurma musluğunu açın. Ardından pipet ucunu iğnenin ucundan uzaklaştırın. Şimdi iğneyi tablaya kaldırın ve boşalan pipet ucunu mikroskop tablasından çıkarın.

Larvaları e yetkilendirme sepetine yerleştirin ve ardından sepeti eter şişesine yerleştirin ve kapağı kapatın. Üç dakika sonra larvaların hareket edip etmediğini kontrol edin. Hala hareket ediyorlarsa, 30 saniye daha eter şişesine geri koyun.

E yetkili larvaları sepetten yapışkan bir cam sürgünün yapışmaz kenarına aktarın. Larvaları sırayla slayta aktarın. Her birini yanlamasına yerleştirin.

Forseps ile gövdeyi baştan kuyruğa hafifçe vurun ve larvaları slayta sabitlemek için hafifçe gerin. Şimdi hazırlanan slaydı mikroskop tablasına yerleştirin. Çift sarmallı RNA yüklü iğneyi, larvaları iğneye doğru hareket ettirmek için aşamayı kullanarak larvaların sırt tarafına nazikçe yerleştirin.

Ardından DS RNA için iğneyi hafifçe geri çekin. Larva vücut boşluğuna girmek için, larvalar yeşile dönene ve gergin ve dolu görünene kadar enjeksiyon şırıngasını hafifçe itin. Daha sonra, enjeksiyon şırıngasını hafifçe geri çekerken iğneyi larvalardan çıkarın.

Slayttaki tüm larvaları enjekte edin. Başarılı bir şekilde enjekte edilmeyen larvaları çıkardığınızdan emin olun. Enjekte edilen larvaları, tüm larvalar E yetkilendirmesinden kurtulana kadar bir kenara koyun.

Şimdi larvaları baştan kuyruğa nazikçe kaldırın, temiz bir Petri kabına aktarın ve enjeksiyon yarasının pıhtılaşmasına izin vermek için en az 10 dakika bırakın. Daha sonra kültür, enjekte edilen larvaları% 70 nem ile 30 santigrat derecede kültürleyin. RNAI fenotipleri için larvaları düzenli olarak gözlemleyin.

Bu örnekler, yeşil çift sarmallı RNA solüsyonu ile uygun boyutta bir enjeksiyon iğnesi ile son instar larvaya yapılan enjeksiyonların değişen başarı seviyelerini göstermektedir. İğne ucu larva kütikülüne minimum dirençle nüfuz eder ve yeşil DS RNA çözeltisi herhangi bir sızıntı olmadan larvalara akar. PU 11 suşunda, geliştirilmiş sarı floresan proteini, çift sarmallı RNA enjeksiyon deneyleri için iyi bir pozitif kontrol görevi görebilir.

Son larva aşamasında EYFP DS RNA enjekte edildiğinde, gelecekteki kanat ilkelinde EYFP sinyalinde önemli bir azalma, enjeksiyondan bir gün sonra gözlemlenebilir. EYFP ekspresyonunun yıkılması genellikle enjeksiyondan iki gün sonra gözlemlenebilir ve DS RNA konsantrasyonu yeterince yüksekse, öğrenci aşaması boyunca ve böceğin ömrü boyunca devam edecektir. EYFP endojen olmayan bir gen dizisi olduğundan, bu gen morfolojik veya fizyolojik bozulmalara neden olmaması gereken negatif bir kontrol olarak da kullanılabilir.

Bu deneyde, kritik bir kanat geni olan körelmiş çift sarmallı RNA, sondan bir önceki aşama larvalara enjekte edildi. Kanat yapılarının tamamen kaybının öğrenci aşamasında gözlenebileceğini unutmayın. Ortaya çıkan yetişkin ayrıca kanat yapılarından tamamen yoksundur.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bu prosedür sonrasında düzgün bir şekilde yapılırsa bu teknik iki saatten daha kısa sürede yapılabilir. Kantitatif gerçek zamanlı PCR, in situ hibridizasyon veya immünohistokimya gibi diğer yöntemler, hedeflenen gen tarafından hangi genlerin düzenlendiği gibi ek soruları yanıtlamak için gerçekleştirilebilir. Bu teknik, araştırmacıların karmaşık genetik teknikler kullanmadan traum kastında fonksiyon kaybı analizi ve embriyonik sonrası aşamaları gerçekleştirmelerinin yolunu açtı.

Bu yöntemin basit doğası, onu bir öğretim ortamına da oldukça uygulanabilir kılar. Bu videoyu izledikten sonra, enjeksiyon için uygun sevgi aşamasının nasıl seçileceğini, bir enjeksiyon iğnesinin nasıl yapılacağını ve çift standart RNA'nın izin verilen enjeksiyonunu başarıyla nasıl gerçekleştireceğinizi iyi anlamalısınız. Bu protokol, Gen'in işlevini Trium'daki RNI seviyesi aracılığıyla değerlendirmenize izin verecektir.

Explore More Videos

Moleküler Biyoloji Sayı 92 RNA interferans RNAi gen demonte kırmızı un böceği Tribolium castaneum Enjeksiyon çift kollu bir RNA fonksiyonel analiz eğitim laboratuvarları

Related Videos

Içinde Postembryonic Fenotiplerin Belirleme RNAi Tarama C. elegans

09:40

Içinde Postembryonic Fenotiplerin Belirleme RNAi Tarama C. elegans

Related Videos

17.8K Views

Nematod Vücut büyüklüğü Yönetmelik ilgilendim Genler için Ekran RNA-aracılı Girişim Besleme Strateji Kullanımı C. elegans

11:22

Nematod Vücut büyüklüğü Yönetmelik ilgilendim Genler için Ekran RNA-aracılı Girişim Besleme Strateji Kullanımı C. elegans

Related Videos

12.9K Views

C. elegans Beslemesi için RNAi Kaplama: E. coli'de Hedef dsRNA Ekspresyonunu İndüklemek İçin Bir Teknik

03:24

C. elegans Beslemesi için RNAi Kaplama: E. coli'de Hedef dsRNA Ekspresyonunu İndüklemek İçin Bir Teknik

Related Videos

6.6K Views

Yetiştirme ve Gizle böcek RNA aracılı gen demonte çift sarmallı, Dermestes maculatus

09:57

Yetiştirme ve Gizle böcek RNA aracılı gen demonte çift sarmallı, Dermestes maculatus

Related Videos

11.4K Views

Işık Levha tabanlı Floresan Yaşayanlar Mikroskopi veya Sabit ve Lekeli Tribullum castaneum Embriyolar

10:15

Işık Levha tabanlı Floresan Yaşayanlar Mikroskopi veya Sabit ve Lekeli Tribullum castaneum Embriyolar

Related Videos

11.1K Views

C. elegans bağırsak olarak bir Model hücreler arası Lumen morfogenez ve In Vivo polarize membran Biyogenez tek hücre düzeyinde için: etiketleme antikor boyama, işlev RNAi kaybı çözümleme ve görüntüleme

12:15

C. elegans bağırsak olarak bir Model hücreler arası Lumen morfogenez ve In Vivo polarize membran Biyogenez tek hücre düzeyinde için: etiketleme antikor boyama, işlev RNAi kaybı çözümleme ve görüntüleme

Related Videos

14.2K Views

Belirli Gelişimsel Zaman Noktalarında Gen İfadesi Manipüle Etmek Için Güçlü Bir Araç Olarak Su Böcekleri RNA Girişim

08:55

Belirli Gelişimsel Zaman Noktalarında Gen İfadesi Manipüle Etmek Için Güçlü Bir Araç Olarak Su Böcekleri RNA Girişim

Related Videos

8.3K Views

Bir Orman Ağaç Kurdundan Entomopatojenik Mantarların İzolasyonu, Davranışsal Tanımlama ve Patojenite Değerlendirmesi

06:58

Bir Orman Ağaç Kurdundan Entomopatojenik Mantarların İzolasyonu, Davranışsal Tanımlama ve Patojenite Değerlendirmesi

Related Videos

1.4K Views

Yumurta Parazitoidinde RNA Girişimi, Trichogramma dendrolimi Matsumura

05:29

Yumurta Parazitoidinde RNA Girişimi, Trichogramma dendrolimi Matsumura

Related Videos

1.9K Views

İpekböceği Bombyx mori'de Chitosan/dsRNA Nanopartikül Dağıtımı ile Larva RNA Girişimi

05:36

İpekböceği Bombyx mori'de Chitosan/dsRNA Nanopartikül Dağıtımı ile Larva RNA Girişimi

Related Videos

2.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code