Name: Omurilik Yaralanması Deneysel Kontuzif Modelinde Sinir Kök Hücre Nakli (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 56 s
Description: Öğrenin, farelerde omurilik yaralanması kontüzyon modeli oluşturmayı ve sinir kök hücre nakli yapmayı. Bu yöntem, rejeneratif tıp ve nörobilim araştırmalarında hücre davranışlarını incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, FAIP (Federazione Associazioni Italiane Paraplegici), "Neurogel-en-Marche" Vakfı (Fransa), Fondazione "La Colonna" tarafından sağlanan ekonomik desteği kabul ederler.

NOT: Tüm işlemler Milan Üniversitesi Gözden Geçirme Komitesi tarafından onaylanan ve Avrupa Toplulukları Yönergesi tarihli November 1986 (86/609 / EEC) ile uyumlu Laboratuvar Hayvanları İtalyan Kuralları karşılandı. Transplantasyon için hücrelerin hazırlanması 1. NOT: 5. ve bu deneyler için kültür 9. geçit arasında kullanın nöral kök hücreler; Transplantasyon için etiketli önce çoğalması ve farklılaşması yeteneği kültürleri test edin. 12 immünsitokimya ile farklılaşma derecesini belirleyin. <ol><li> 1 x 10 6 hücre / 150 ul (nakli fare başına 1 x 10 6 hücre) bir konsantrasyona kadar yeniden süspanse hücreleri. Hücrelerin bir aşırı şırınga yükleme amaçları için gerekli olduğu için, fare başına en az 1,2 x 10 6 hücre hazırlayın. </li><li> 10 ml&#39;lik bir konik şişe içinde hücreler, nöral kök hücre ortamı 13 ile 3 kez yıkayın. Her birindeYıkama adımı, santrifüj ile çökelti hücreleri (500 x g 5 dakika, RT). </li><li> Son sıkma önce hücreleri saymak. </li><li> Hücrelerinin (5 dakika için 500 x g) santrifüj ve daha sonra herhangi bir hücrelerin çıkarılması için dikkatli olmak ancak yüzer en fazla 25 ul bırakarak süpernatan aspire. </li><li> Hafif pipetle hücre peleti tekrar süspansiyon seyreltici C 1 ml ilave etmek suretiyle bir 2 x hücre süspansiyonu hazırlanır. </li><li> Bir tüp içinde Seyreltici C 1 ml PKH26 etanol boya çözeltisi 4 ul ekleyerek Seyreltici C - (6 M, 4 x 10) ve dağıtmak için iyice karıştırın hemen boyama önce, 2x boya çözeltisi hazırlanır. </li><li> Hızla 2x Boya çözeltisi, 1 ml 2x hücre süspansiyonu 1 ml ilave edilir ve hemen (mi, 1.2 x 10 7 hücre / ve 2 x 10 olacak nihai hücre yoğunluğu - 6M PKH26) pipetleme örnek karıştırın. </li><li> 1-5 dakika boyunca hücre / boya süspansiyonu inkübe edin. </li><li> (Eşit hacmi eklenerek 2 boyama durdurunmi) HBSS içinde% 1 BSA çözeltisi ile 1 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Santrifüj hücreleri (500 xg az 10 için) ve dikkatle süpernatant kaldırmak. </li><li> HBSS ve santrifüj (5 dakika için 500 x g), 10 ml içinde süspanse hücre topağı. </li><li> Serbest boyanın temizlenmesi için tam ortam, 10 ml hücre pelletini 2 kez daha yıkanır. </li><li> Hücre kurtarma, hücre canlılığı ve floresan yoğunluğu değerlendirmesi için tam ortam, 10 ml hücre pelletini. Hücre transplantasyonu için gerekli olan ise, yıkama ve 3.3 x 10 5 hücre / 50 ul bir konsantrasyonda bir steril fizyolojik çözelti içinde tekrar süspansiyon haline getirin. </li></ol> Cerrahi için 2. Hazırlık <ol><li> Temiz ve sterilize cerrahi cihaz. </li><li> Aseptik madde ile silerek cerrahi alanını hazırlayın. IH Darbeli aygıtını kurun. </li><li> Anestezi ekipmanı hazırlayın: VetScav Filtre, sürekli akış İndüksiyon Odası, Oksijen Gen Cihazı Tartı ile Aktif Gaz Çöpçüesyasi, Fareler Düşük Akış O 2 Metre. Indüksiyon odasına ve ameliyat sırasında kullanılan maske temizleyin. </li><li> % 2.5 oksijen (h / h) izofluran (1 l / dk) hayvanlara anestezi ve ilaç etkili olması için akış indüksiyondan sonra 5 dakika bekleyin. Bıyıkları seğirmesi olup olmadığını kontrol edin veya Kapkaççı kısma yanıt yavaş arka bacak çekme varsa. Ameliyat sırasında,% 2.0 oksijen (h / h) izofluran (1 l / dk) izofluran konsantrasyonu azaltır. </li></ol> Cerrahi ve Transplantasyon için Fareler 3. Hazırlık <ol><li> Standart koşullarda deneyler (22 ± 2 ° C,% 65 nem ve 8:00-8:00 arasında yapay ışık) önce en az 3 gün boyunca erkek yetişkin CD1 fareler (25-30 gr) tutun. NOT: sütür cerrahi hazırlık tüm prosedür yaklaşık 40 dakika sürer. <ol><li> Hayvan belirlemek için, su geçirmez, renkli mürekkep ile kuyruk işaretleyin. </li></ol></li><li> Bir Electr kullanınic kesme bel bölgesine, yaklaşık T2 düzeyinde, boyun fare dorsal saç kesmek için. </li><li> Iyodür çözeltisi ve etanol (steril su içinde% 70) ile hazırlanmış alan sterilize edin. </li><li> Bir 200 alt deri (sc) enjeksiyon ul gentamisin (steril tuzlu su çözeltisi içinde, 1 mg / ml) ile bir hayvan tedavi edin. </li><li> Buprenorfin kurumasını önlemek ve enjekte etmek için, her iki hayvan gözlere oftalmik yağlayıcı (deri altından, 0,03 mg / kg), ağrının hafifletilmesi için. </li></ol> 4. Laminektomi <ol><li> Ameliyat sırasında hipotermi sorunu önlemek için sıcak bir slayt üzerinde fare yerleştirin. Dorsal yüzü yukarı bakacak şekilde yerleştirin hayvan. </li><li> T7&#39;nin T12 ilgi bölge üzerinde bir neşter, dikey bir kesi yapmak. </li><li> (Genellikle göğüs sırt süreçleri inci 5 inci ve 6 arasındaki boşlukta bulunan) standart forseps kullanarak cilt ve yüzeyel yağ yastığı tutun. </li><li> T6 olarak teknenin altında işlem Sayısısonra T7 taşımak. </li><li> Omurganın eğrilik artırmak için fare ventral tarafında biraz altında yatağı yerleştirin. Graefe forseps ile bloke ederek omurilik hareketsiz. </li><li> Lamina temas neşter ucu dorsal yüzeyine kadar neşter kullanılarak T7 ve T10 vertebra seviyesinden bilateral paravertebral kaslar kesin. </li><li> T10 kadar T7&#39;nin kavşak kapalı kene neşter kullanın. T8 ve T9 dikenli çıkıntılar arasındaki boşlukta durdurun. Mikro makas ile T8-T9 T9-T10 arasındaki dokuları kesin. <ol><li> T9 sürecini kaldırmak için Rongeur kullanın. Dikkatle mikro makas ile kas tabakası kazınarak ile kavşak Açığa. Kemik maruz kadar devam edin. </li></ol></li><li> Lamina kasları kaldırmak ve omurlar arasındaki küçük bir boşluk açmak için forseps kullanın. Yavaşça, kemik altında mikro makas eklemek her iki tarafta lamina kesmek ve forseps ile bu kısmını kaldırın. </li><li> F lamina kaldırorceps kablosunu ortaya çıkarmak. Arkasında herhangi bir ücretsiz veya pürüzlü kemik parçaları bırakmamaya emin olun; Rongeur ile bunları kaldırmak. </li><li> Kesi yakın olabilecek periost yanı sıra herhangi bir kemik parçaları veya kasları kaldırmak için küçük bir ipucu forseps kullanın. </li><li> T9 dorsal sürecinin üst yarısını çıkarın ve IH Darbeli cihaz protokolüne devam edin. </li></ol> 5. IH Darbeli Cihaz Protokolü (Kontüzyon) <ol><li> IH Darbeli cihazın istikrar platformu ortasında fare yerleştirin. </li><li> İki ortak konumlandırma kollarından stabilizasyon platformu ile bağlanmış iki diş forseps ile hayvan (torakal vertebra için sol kol, servikal vertebra için sağ kolu) engelleyin. </li><li> Rostralinde vertebra gövdesinin (T8) yanal kenarını kavramak rostralinde kol kullanın. </li><li> T10 vertebra vücudu kavramak için aynı şekilde kaudal kolunu işleyin. </li><li> Ucu cihazın istikrar platformu yerleştirin ve alt (çap 0.75mm) dokunmadan mümkün olduğunca kord kadar yakın. </li><li> Etkisini başlatmadan önce uca üç tam döner kaldırın. </li><li> 100 mm / sn 60 kdyn bir kuvvet verecek şekilde ayarlandı impactor ile ezilme gerçekleştirin. </li></ol> 6. Dikişler ve Post-bakım <ol><li> Bir 4/0 emilebilir dikiş ipliğinin ile kesi sütür. Kaldırıldı lamina yerinde maruz omurilik Kapak; küçük bir iğne vasıtasıyla kesme uçlarında doku dikiş. Hemen yukarıda ve spinal kord maruz sitenin altında iki dikiş koyun. </li><li> Altta yatan kasları kapalı kısma olmadan iki veya üç Refleks klipleri kullanarak cilt kapatın. </li><li> Alt sırt enjekte tuzlu su çözeltisi, deri altından 2 ml fare ameliyat sonrasında hidratı. </li><li> Cerrahi kurtarma sırasında hipotermi önlemek için geri önceden ısıtılmış kafeste fare yerleştirin. Isıtma pedleri yerleştirin kafesleri. </li><li> Kontrol ederek akut faz sonrası yaralanma sırasında fareler Monitörboyut mesane, dikiş ve hayvan ağırlığı günde iki kez. Yavaşça (kanlı, bulutlu ya da herhangi içeren çökeltilerin olabilir idrar) idrar yolu enfeksiyonları önlemek için en mesane (7 gün boyunca günde iki kez) sıkın. </li><li> Ve antibiyotik (iki gün ameliyat sonrası sc enjeksiyonu için 2 ml) içinde bir tuzlu su çözeltisi enjeksiyon ile günde bir kez fareler tedavi (gentamisin 0.2 mi; deri altından enjeksiyon), beş gün boyunca yaralanma sonrası. </li><li> Buprenorfin ile ameliyat sonrası analjezi için fareler tedavi (0.1 mg / kg, günde iki kez), 3 gün boyunca yaralanma sonrası. </li></ol> Hücreler 7. kuyruk damarından Not: Bir sonraki adımda kuyruk venine hücreleri enjekte edilmesi için prosedür gösterilmektedir. Hücreler ayrıca, bir stereotaksik çerçeve 15-16 kullanarak, intraspinal nakli ile birlikte uygulanabilir, veya cisterna magna 17 içine edilebilir. Bu diğer hücre tipleri, mezenkimal stromal hücreleri gibi, bu yöntemle nakledilen olabilir dikkate alınması önemlidir(Örneğin, kemik iliği mezenkimal kök hücreleri, yağ kaynaklı kök hücreler, amniyotik sıvı hücreler). Ayrıca, bu tür nanoparçacıklar gibi diğer tedavi yöntemleri, omurilik yaralanması sonrası kuyruk damarından enjekte edilebilir. <ol><li> Kullanmadan önce iğne temizlemek için% 70 etanol ve PBS kullanın. Iğne ve sadece steril eldiven ile şırınga tutun. </li><li> 0.3 ml şırınga (29 G iğne ve 0.33 cc şırınga) içine deney tüpü ve yük hücreleri 75 ul hücrelerin tekrar. </li><li> Kabarcıklar hücre süspansiyonu içinde mevcut olduğundan emin olun. Hücre sedimantasyon önlemek için yatay bir pozisyonda şırınga tutun. </li><li> Kuyruk damarları genişletmek için ısı lambası altında fare yerleştirin. </li><li> Dar mavi hat olarak yanal kuyruk damarı görselleştirmek için fare süzgeç içine yavaşça çekin fareyi tut ve. </li><li> Alkollü bir bezle temizleyin kuyruk. Ven görüntülenmiştir sonra, sol elin orta parmağı ve başparmak arasında kuyruk ven kapmak. </li><li> Ufukta bir 15 ° açıyla yüzeye iğneyi getirin ve konik kadar olduğundan emin olun. </li><li> 0,33 ul / sn bir hızda hücrelere 50 ul enjekte edilir. Enjeksiyon sonrası, 10 saniye ile iğne geri çekilmesini geciktirmek. Yavaş yavaş iğne geri çekin ve hücre süspansiyonu olası efflux dikkat. </li><li> Yükler arasındaki adım 7.1 olarak şırınga temizleyin. </li></ol> 8. Davranış Testleri ve Hind Ekstremite Fonksiyon <ol><li> Açık alanda fare yerleştirin. </li><li> Basso fare ölçeği (BMS) 18 göre açık alan testi ile kontüzyon sonrası lokomotor fonksiyonunu ve arka bacak kurtarma değerlendirin. Not: nörolojik fonksiyon 4 hafta 18 yaralanma sonrası gün 3, periyodik olarak değerlendirmek gerekir. </li></ol> 9. Perfüzyon <ol><li> Deneysel periyodun sonunda, sodyum pentobarbital intraperitonal enjeksiyonu (65 mg / kg) ile hayvanlar anestetize. Değerlendirme, için ayak Kıstırmaları kullanıne anestezi düzeyi fare zararlı uyaranlara tepkisiz sadece sonra devam ve. </li><li> Bir ameliyat uçakta bir yatar pozisyonda hayvan kısıtlamaktadır. </li><li> Sadece göğüs kafesinin altında integument ve karın duvarı kesti. Karaciğerden diyaframı ayırın. </li><li> Plevra boşluğu ortaya çıkarmak için diyaframı kesmek için makas kullanın. </li><li> Yaka kemikler kadar göğüs kafesinin kenarlarını kesin. </li><li> Kılıç şeklinde kıkırdak kelepçe ve başının üzerinde hemostat yerleştirmek için hemostat kullanın. </li><li> Forseps ile bir çapraz uçakta kalp alt üçte tutun. Sol ventrikül içine iğne takın. </li><li> Kalp kelepçe bir hemostat kullanın. Bu iğneyi sabitleyen ve sızıntıyı önler. </li><li> Sağ atrium kesmek için makas kullanın. </li><li> PBS hayvan ile (18 ml / dk) pompa izin verin. (Yaklaşık 70 ml PBS karşılık gelen 3-4 dakika) tampon infüzyon süresince bu basıncı koruyun. Kalp temiz olana kadar devam edin.</li><li> Pompa boyunca tespit edici (distile su içinde% 4 paraformaldehid,% 4 PFA) izin vermek için musluğunu geçin. % 4 PFA yaklaşık 8-10 dakika boyunca (300 mi) hayvan pompalanması izin verin. Yavaş yavaş / dakika, 30 ml &#39;lik bir maksimum ulaşmak için basınç artar. Bir sertleştirilmiş karaciğer başarılı bir perfüzyon iyi göstergesidir. </li></ol> 10. Doku Toplama ve İşleme, Histoloji ve Iimmunohistochemistry <ol><li> T5 gelen L1 spinal kablolarını parçalara ayır. Sonra (4 ° C&#39;de O / N)% 4 PFA 6 ml doku sonrası düzeltmek. </li><li> Kriyo koruma ve donma sırasında kristallerin oluşumunu önlemek için, 4 ° C&#39;de 72 saat boyunca% 30 sukroz ile bir çözelti içinde, aynı doku koyun. </li><li> Hızlı kuru buz kullanarak kablosunu dondurma ve -80 ° C&#39;de saklayın. </li><li> 15 um kalınlığa sahip bir kriyostat ile bölüm ve cam slaytlar üzerine bölümleri toplamak ve bağışıklık devam eder. </li><li> Her saniye için 200 ul PBS ile bölümleri durulayınhalojenür ile (3 kez, her biri 5 dakika, OS). </li><li> 200,% 10 NGS ul ve oda sıcaklığında 1 saat için PBS içinde% 0.2 Triton X-100 ile her bir slayt geçirgenliği. </li><li> Her bir sürgü için 200 ul PBS (, 5 dakika her biri, OS 3 kez) bölümleri durulayın. </li><li> (PBS içinde% 0.1 Triton X-100,% 5 NGS), 30 dakika (RT) slaytın bloklama çözeltisi 200 ul spesifik olmayan sitesi bloke eder. </li><li> 4 ° C &#39;de O / N birincil antikor, 200 ul her bir slayt inkübe (% 5 NGS antikor seyreltik, PBS içinde% 0.1 Triton X-100). </li><li> Her bir sürgü için 200 ul PBS ile yıkayın bölümleri ile (3 kez, her biri 5 dakika, RT) yapıldı. </li><li> Oda sıcaklığında 2 saat süre ile, uygun sekonder antikor ile inkübe edin. </li><li> Her bir sürgü için 200 ul PBS ile yıkayın bölümleri ile (3 kez, her biri 5 dakika, RT) yapıldı. </li><li> 4 &#39;, 6-diamidin-2-phenilindole (DAPI) (ug / ml nihai konsantrasyon 1 ug, oda sıcaklığında 10 dakika), 200 ul Leke çekirdekleri. </li><li> FluorSave Reaktif kullanarak monte ve konfokal mikroskobu ile analiz. NOT: InKontrol belirlemeleri, birincil antikorlar çıkarılır ve aynı alt sınıfın olmayan IgG konsantrasyonuna denk konsantrasyonlar ile değiştirilmesi gerekir. Mikrotübüle bağlı protein 2 birincil antikor kullanıldı. </li></ol>

<ol><li>Cord Injury Statistical Center: spinal cord injury facts and figures at glance. , 
 
 <a target="_blank" href="https://www.nscisc.uab.edu/PublicDocuments/fact_figures_docs/Facts%202013.pdf">https://www.nscisc.uab.edu/PublicDocuments/fact_figures_docs/Facts%202013.pdf</a> (2013).</li>
<li>Yip, P. K., Malaspina, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+trauma+and+the+molecular+point+of+no+return%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Neurodegeneration%22%5BJournal%5D)">Spinal cord trauma and the molecular point of no return.</a> Molecular Neurodegeneration. 7, 6(2012).</li>
<li>Fehlings, M. G., Cadotte, D. W., Fehlings, L. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+systematic+reviews+on+the+treatment+of+acute+spinal+cord+injury%3A+a+foundation+for+best+medical+practice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">A series of systematic reviews on the treatment of acute spinal cord injury: a foundation for best medical practice.</a> J Neurotrauma. 28 (8), 1329-1333 (2011).</li>
<li>Furlan, J. C., Noonan, V., Cadotte, D. W., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Timing+of+decompressive+surgery+of+spinal+cord+after+traumatic+spinal+cord+injury%3A+an+evidence-based+examination+of+pre-clinical+and+clinical+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Timing of decompressive surgery of spinal cord after traumatic spinal cord injury: an evidence-based examination of pre-clinical and clinical studies.</a> J Neurotrauma. 28 (8), 1371-1399 (2011).</li>
<li>Sekhon, L. H., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology%2C+demographics%2C+and+pathophysiology+of+acute+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Spine%22%5BJournal%5D)">Epidemiology, demographics, and pathophysiology of acute spinal cord injury.</a> Spine. 26 (24), 2-12 (2001).</li>
<li>Gorio, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+human+erythropoietin+counteracts+secondary+injury+and+markedly+enhances+neurological+recovery+from+experimental+spinal+cord+trauma%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Recombinant human erythropoietin counteracts secondary injury and markedly enhances neurological recovery from experimental spinal cord trauma.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (14), 9450-9455 (2002).</li>
<li>Windle, W. F., Clemente, C. D., Chambers, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+formation+of+a+glial+barrier+as+a+means+of+permitting+a+peripheral+nerve+to+grow+into+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Inhibition of formation of a glial barrier as a means of permitting a peripheral nerve to grow into the brain.</a> J Comp Neurol. 96 (2), 359-369 (1952).</li>
<li>Young, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+contusion+models%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Spinal cord contusion models.</a> Prog Brain Res. 137, 231-255 (2002).</li>
<li>Stokes, B. T., Noyes, D. H., Behrmann, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+electromechanical+spinal+injury+device+with+dynamic+sensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">An electromechanical spinal injury device with dynamic sensitivity.</a> J Neurotrauma. 9 (3), 187-195 (1992).</li>
<li>Jakeman, L. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traumatic+spinal+cord+injury+produced+controlled+contusion+in+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Traumatic spinal cord injury produced controlled contusion in mouse.</a> J Neurotrauma. 17 (4), 299-319 (2000).</li>
<li>Sahni, V., Kessler, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+therapies+for+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurol%22%5BJournal%5D)">Stem cell therapies for spinal cord injury.</a> Nat Rev Neurol. 6, 363-372 (2010).</li>
<li>Marfia, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+neural+precursors+isolated+from+post+mortem+brain+yield+mostly+neurons%3A+an+erythropoietin-dependent+process%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">Adult neural precursors isolated from post mortem brain yield mostly neurons: an erythropoietin-dependent process.</a> Neurobiol Dis. 43 (1), 86-98 (2011).</li>
<li>Gritti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotent+neural+stem+cells+reside+into+the+rostral+extension+and+olfactory+bulb+of+adult+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Multipotent neural stem cells reside into the rostral extension and olfactory bulb of adult rodents.</a> J Neurosci. 22 (2), 437-445 (2002).</li>
<li>Whetstone, W. D., Hsu, J. Y., Eisenberg, M., Werb, Z., Noble-Haeusslein, L. J. J Neurosci Res. 74 (2), 227-239 (2003).</li>
<li>Gonzalez-Lara, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+cellular+magnetic+resonance+imaging+to+track+the+fate+of+iron-labeled+multipotent+stromal+cells+after+direct+transplantation+in+a+mouse+model+of+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">The use of cellular magnetic resonance imaging to track the fate of iron-labeled multipotent stromal cells after direct transplantation in a mouse model of spinal cord injury.</a> Mol Imaging Biol. 13 (4), 702-711 (2010).</li>
<li>Ottobrini, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+imaging+of+stem+cell+transplantation+in+injured+mouse+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+R4%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance imaging of stem cell transplantation in injured mouse spinal cord.</a> Cell R4. 2 (3), e963(2014).</li>
<li>Janowwski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotransplantation+in+mice%3A+The+concorde-like+position+ensures+minimal+cell+leakage+and+widespread+distribution+of+cells+transplanted+into+the+cistern+magna%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+Letter%22%5BJournal%5D)">Neurotransplantation in mice: The concorde-like position ensures minimal cell leakage and widespread distribution of cells transplanted into the cistern magna.</a> Neuroscience Letter. 430 (2), 169-174 (2008).</li>
<li>Basso, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basso+Mouse+Scale+for+locomotion+detects+differences+in+recovery+after+spinal+cord+injury+in+five+common+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains.</a> J Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).</li>
<li>Hofstetter, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allodynia+limits+the+usefulness+of+intraspinal+neural+stem+cell+grafts%3B+directed+differentiation+improves+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Allodynia limits the usefulness of intraspinal neural stem cell grafts; directed differentiation improves outcome.</a> Nat Neurosci. 8 (3), 346-353 (2005).</li>
<li>Bottai, D., Madaschi, L., Di Giulio, A. M., Gorio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viability-dependent+promoting+action+of+adult+neural+precursors+in+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Viability-dependent promoting action of adult neural precursors in spinal cord injury.</a> Mol. Med. 14 (9-10), 634-644 (2008).</li>
<li>Bottai, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cells+promote+motor+recovery+and+affect+inflammatorycell+infiltration+in+spinal+cord+injured+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cells promote motor recovery and affect inflammatorycell infiltration in spinal cord injured mice.</a> Exp Neurol. 223 (2), 452-463 (2010).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali ilgi beyan.

Bu yazıda (şiddetli) 70 Kdyne bir kuvvet bir Sonsuz Impactor ile travmatik omurilik yaralanması tekrarlanabilir bir model elde etmek için bir yöntem tarif. Daha büyük bir kuvvet paradigma (80 Kdyne) kullanarak, maalesef yüksek fareler mortalite ile ilişkili bir daha ciddi yaralanmalara neden olabilir. Bu sorunu önlemek için, biz bunlara fonksiyonu ve alt mortalite kademeli toparlanma ile tekrarlanabilir lezyon ilişkili bir orta kuvvet paradigma (70 Kdyne) seçin. Bu darbe platformda hayvanın doğru tespit özellikle dikkat...

Bir omurilik yaralanması (SKY), spor ve şiddet 1, motorlu taşıtlar kaza gibi yüksek enerjili travma nedeniyle en sık yaralanma olduğunu düşer. Şiddetli SCI, yaralanma kuvvet nörolojik fonksiyon ani kaybına neden nöral dokuyu tahrip eder veya zarar. Travmatik SKY yaş 10 ve 40 yaş arası genç erişkinlerde sık görülür. Büyük ölçüde hastanın ruhsal ve fiziksel durumu etkiler ve topluma 2 büyük ekonomik etkisi neden olur. Akut fazda tedavi yaklaşımı genellikle muhtemelen daha fazla zarar 3-4 azaltmak için kortikosteroid, cerrahi stabilizasyon ve dekompresyon yüksek doz sınırlıdır, ancak SKY sonrası lokomotor kurtarma bu yöntemlerin rolleri hala tartışmalıdır. Akut doku kaybı, travmatik yaralanma ve çok sayıda hücre tipinde 5-6 dejenerasyonu neden demiyelinasyon ve ölüm ikincil mekanizmaların harekete ek olarak. fonksiyonun geri derecesi edebilirsinizOn yaralanma yerinde 7 de bağışladı beyaz cevher ölçüde ilişkili. SCI hayvan modelleri yaralanma dokunun biyolojik yanıtları araştırmak ve potansiyel tedavileri test etmek için de olabilir. Ayrıca, bir insan patolojisinde yararlı bir hayvan modeli sadece bu durum bazı yönlerini üretmek için olan, aynı zamanda doğrudan klinik gözlem ve deney daha fazla avantajlar sağlar gerekir. Spinal kord yaralanması en yaygın kullanılan modeller cerrahi maruz omurilik 8 teslim kontüzyon veya sıkıştırma yaralanma içerir. kontrollü kilo bırak kontüzyon yaralanma gelişimi SKY araştırma tarihinin önemli bir kilometre taşını temsil etmektedir. Ohio State University, omurilik araştırma merkezi bir bilgisayar 9 tarafından kontrol etkisi parametreleri ile omurilik belirli bir sıkıştırma uyarılması için kullanılabilecek bir cihazın teknolojik zorluk izlemiştir. Bu aslında kullanım wi için tasarlanmıştırinci sıçanlar; Daha sonra farelerde 10 doğru uygulamak için modifiye edildi. Bu yaklaşım içinde avantajları yaralanma biyomekanik daha derinlemesine incelenebilir ve yaralanma parametreleri yeniden üretilebilen deneysel bir model elde etmek amacıyla, daha ayrıntılı bir şekilde tarif edilebilir ki, bu nedenle etkilerinin daha hassas olarak değerlendirilmesine imkan veren fonksiyonel iyileşme süreci üzerinde test tedaviler. Birçok çalışma SKY modellerinde 11 kök hücrelerin çeşitli nakli etkilerini değerlendirdik. Biz son zamanlarda fare donör 12-13 ölümünden sonra Alt-Ventriküler Bölgesi (SVZ) birkaç saat yetişkin nöral kök hücreler izole var. Bu prosedür SCI kür için bir rejeneratif tıp yaklaşımı avantajlı görünmektedir nöral kök hücreler olarak adlandırılan ölüm sonrası nöral öncüleri (PM-NPC), nüfusu sağlar. Bu yazıda ortaya koyacak: i) hayati izleyici PKH26 hücre etiketleme için protokol, ii) edicinik prosedür travmatik omurilik yaralanması gerçekleştirmek ve etiketli hücrelerin iii) intravenöz (iv) idaresi. Ayrıca, bu çalışmada biz nakledilen hücrelerin omurilik lezyon sitelerine göç ve mikrotübül ilişkili protein (MAP) 2 pozitif hücrelerin içine çoğunlukla ayırt olduğunu göstermektedir. Ayrıca, farklılaşma arka bacak fonksiyonunun sabit bir kurtarma teşvik eşlik eder.

<table><tbody><tr><td>PKH26GL-1KT&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>091M0973</td><td></td></tr><tr><td>Sonsuz ufuk (IH) Çarpma tertibatı&nbsp;</td><td>Hassas Sistemler ve Enstrümantasyon, LLC</td><td>Model 0400 Seri 0171</td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin 10 mg / ml</td><td>Euroclone</td><td>ECM0011B</td><td>steril salin solüsyonunda 1 mg / ml</td></tr><tr><td>Isoflurane-Vet 250 ml</td><td>Merial</td><td>B142J12A</td><td></td></tr><tr><td>Blefarolin POM OFT 10 g</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sürgü Isıtıcı</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>HB101-sm-402</td><td></td></tr><tr><td>Neşter, boyut 10</td><td>Lance Paragon</td><td>26920</td><td></td></tr><tr><td>Küçük Graefe Forseps</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>11023-14</td><td></td></tr><tr><td>Rongeur</td><td>Medicon Aletleri</td><td>07 60 07</td><td></td></tr><tr><td>Mikro makas</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>15000-00</td><td></td></tr><tr><td>Emilebilir sütürler (4/0)</td><td>Safil Quick</td><td>C0046203</td><td></td></tr><tr><td>Hemostat</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>13014-14</td><td></td></tr><tr><td>Refleks 7 yara klipsi aplikatörü</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>12031-07</td><td></td></tr><tr><td>7 mm Refleks yara klipsleri</td><td>2Biyolojik Aletler</td><td>12032-07</td><td></td></tr><tr><td>NGS</td><td>Euroclone</td><td>ECS0200D</td><td></td></tr><tr><td>Triton X 100</td><td>Merck Millipore</td><td>1086431000</td><td></td></tr><tr><td>Anti Mikrotübül Assocoated Protein&nbsp; (HARİTA) 2</td><td>Millipore</td><td>AB5622</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488</td><td>Invitrogen</td><td>A11008</td><td></td></tr><tr><td>FluorSave Reaktifi&nbsp;</td><td>Calbiochem</td><td>345789</td><td></td></tr><tr><td>Nöral kök hücre ortamı</td><td></td><td></td><td>2 mm l-glutamin (Euroclone), %0.6 glikoz (Sigma-Aldrich), 9.6 gm/ml putresin (Sigma-Aldrich), 6.3 ng/ml progesteron (Sigma-Aldrich), 5.2 ng/ml sodyum selenit (Sigma-Aldrich), 0.025 mg/ml insülin (Sigma-Aldrich), 0.1 mg/ml transferrin (Sigma-Aldrich) ve 2 &mu içeren DMEM-F12 ortamı (Euroclone); g/ml heparin (sodyum tuzu, derece II; Sigma-Aldrich), bFGF (insan rekombinant, 10 ng/ml; Yaşam Teknolojileri) ve EGF (insan rekombinant, 20 ng/ml; Yaşam Teknolojileri)&nbsp;</td></tr><tr><td>DMEM-F12</td><td>Euroclone</td><td>ASM5002</td><td></td></tr><tr><td>l-glutamin</td><td>Euroclone</td><td>ECB3000D</td><td></td></tr><tr><td>glikoz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8270-100G</td><td></td></tr><tr><td>putresin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5780-25G</td><td></td></tr><tr><td>progesteron</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6149-1MG</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum-selenit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9133-1MG</td><td></td></tr><tr><td>transferrin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T 5391</td><td></td></tr><tr><td>İnsülin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1882</td><td></td></tr><tr><td>Heparin sodyum tuzu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0200000</td><td></td></tr><tr><td>bFGF</td><td>Yaşam Teknolojisi</td><td>PHG0024</td><td></td></tr><tr><td>h-EGF</td><td>Yaşam Teknolojisi</td><td>PHG6045</td><td></td></tr><tr><td>Şırınga 0.33 cc 29 G</td><td>Terumo</td><td>MYJECTOR&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>buprenorfin</td><td>Schering Pulluk SpA</td><td>TEMGESIC</td><td></td></tr><tr><td>göz jeli</td><td>Bausch & Lomb</td><td>LİPOSİK</td><td></td></tr></tbody></table>

omurilik yaralanması deneysel kontuzif modelinde sinir kök hücre nakli

Neural Stem Cell Transplantation in Experimental Contusive Model of Spinal Cord Injury

Omurilik yaralanması nörolojik işlev bozukluklarının bir kompleks ile karakterize bir klinik yıkıcı durumdur. Spinal kord yaralanması hayvan modelleri yaralanma biyolojik yanıtları araştırmak ve potansiyel tedavilerin test etmek hem de kullanılabilir. Ameliyatla açığa omuriliğe verilen kontüzyon veya Sıkıştırma yaralanması patoloji en yaygın olarak kullanılan modeldir. Bu raporda deneysel kontüzyon özel yaralanma parametrelerinin tanımı ile bir tekrarlanabilir yaralanma hayvan modelinin oluşturulmasını sağlar Sonsuz Horizon (İH) Darbeli cihazı kullanılarak yapılır. Kök hücre nakli genellikle bu zayıflatıcı durumu kür için bir potansiyel olarak yararlı bir strateji olarak kabul edilir. Çeşitli çalışmalar kök hücre nakli çeşitli etkileri değerlendirilmiştir. Burada CD1 farelerinden hücre kuyruk damarı enjeksiyonu takiben, omurilik yaralanması için adapte edilmiş bir yöntemi göstermektedir. I) hücre etiketleme wi: Kısacası, biz prosedürleri sağlamakhayati izleyicinin inci, ii) farelerin ameliyat öncesi bakım, bir Kontuzif omurilik yaralanması iii) yürütme, ve ölüm sonrası nöral öncüleri iv) intravenöz. Bu çürük modeli rejeneratif tıp yaklaşımı etkinliğini ve kök hücre nakli güvenliğini değerlendirmek için kullanılabilir.

nakledilen hücrelerin toplam sayısı 1 x 10 6 hücre olup, kuyruk damarından birbirini takip eden üç enjeksiyon bölündü. Bu fosfat tampon çözeltisi içinde 50 ul (PBS) içinde 3.3 x 10 5 hücre tatbik. İlk enjeksiyon ikinci 6 saat sonra, yaralanma sonrası 30 dakika içinde yapılan ve lezyon sonrası son 18 saat oldu. AM-NPC uygulanması için omurilik yaralanması sonrasında 18 saatlik bir süre seçimi şu anda 14 ile kan-beyin bariyerinin geçirgenliğinin en iyi belirlenmiştir. Kök hücreler enjekte ...

Omurilik yaralanması ciddi morbidite ve mortalitesi yüksek bir neden travmatik bir durumdur. Bu çalışmada detaylı olarak nöral kök hücrelerin bir nakli ardından farelerde omurilik yaralanması bir kontüzyon modelini tarif.

Omurilik Yaralanması Deneysel Kontuzif Modelinde Sinir Kök Hücre Nakli

Spinal cord injury is a devastating clinical condition, characterized by a complex of neurological dysfunctions. Animal models of spinal cord injury can ...

Bu prosedürün genel amacı, farelerde omurilik yaralanmasının bir kontüzyon modelini ve ardından nöral kök hücrelerin naklini ayrıntılı olarak tanımlamaktır. Bu, ilk olarak postmortem, nöral öncü hücreler veya PM NPC'lerin hayati izleyici PKH 26 ile etiketlenmesiyle gerçekleştirilir. Daha sonra, fare üzerinde bir dorsal kesi yapılır ve omurilik ortaya çıkarılır.Daha sonra omurilik üzerinde bir lezyon oluşturmak için sonsuz ufuk veya IH çarpma cihazı kullanılır. Son olarak, PKH 26 etiketli PM ve PC'ler farenin kuyruk damarına enjekte edilir. Sonuç olarak, lezyon bölgesindeki engrafte PKH 20 18:00 ve PC'lerin kaderi takip edilir.Yaralanma modeli, omurilik yaralanması olan adamı kopyalar. Primer mekanik yaralanmayı, hücresel ve farmakolojik tedavinin çalışıldığı ilerleyici sekonder dejenerasyon takip eder. Açıklanan uygulamalar, inanç hakkında daha fazla bilgi edinmek için metodolojik bir temel sağlayabilir.Dejenerasyon ve enflamatuar olaylar meydana gelirken omuriliğe nakledilen kök hücrelerin indüksiyonu. Lezyonu gösteren laboratuvarda doktora öğrencisi Dr.Tony Laja Longo olacak. Kuyruk enjeksiyonu, laboratuvarda doktora sonrası araştırmacı olan Dr.Ache tarafından gerçekleştirilecek olsa da, metin protokolünde açıklanan kriterleri karşılayan nöral kök hücrelerle başlayarak.Resus, hücreleri 150 mikrolitre başına 10 ila altı hücre arasında bir konsantrasyona kadar askıya alır. Pipeti yüklemek için yeterli hücreye sahip olmak için fare başına en az 1,2 kez 10 ila altı hücre hazırlayın. Nöral kök hücre ortamı ile, hücreleri 10 mililitrelik konik bir şişede üç kez yıkayın, hücreleri peletlemek için oda sıcaklığında beş dakika boyunca 500 kez G'de döndürün.Her yıkamadan sonra, son sıkma sayımından önce, hücreler daha sonra döndükten sonra, süpernatanı aspire eder ve herhangi bir hücrenin aspire edilmesini önlemek için yaklaşık 25 mikrolitre sıvı bırakır. Ardından, hücre damağına bir mililitre seyreltici C ekleyerek iki X süspansiyonu hazırlayın ve hemen yeniden süspanse etmek için hafif pipetleme kullanın. Boyamadan önce, bir tüpte bir mililitre seyreltici C'ye dört mikrolitre PKH 26 etanol D çözeltisi ekleyerek seyreltici C'de iki x boya çözeltisi hazırlayın ve iyice karıştırın.Hızlı bir şekilde dağıtmak için, bir mililitre iki x hücreli süspansiyonu bir mililitre iki XD çözeltisine ekleyin ve numuneyi hemen pipetleyerek karıştırın. Hücre kalıbı süspansiyonunu bir ila beş dakika inkübe ettikten sonra, HBSS'ye eşit hacimde% 1 BSA çözeltisi ekleyerek boyamayı durdurun ve bir dakika inkübe edin. Daha sonra hücreleri 10 dakika boyunca 500 kez G'de santrifüjleyin ve süpernatanı dikkatlice çıkarın.Hücre geri kazanımının, hücre canlılığının ve floresan yoğunluğunun değerlendirilmesi için hücre peletini yeniden süspanse etmek için 10 mililitre tam ortam kullanın. Hücreleri santrifüjleyin, süpernatanı atın ve hücre peletine 10 mililitre HBSS ekleyin. HBSS ile iki kez yıkayın ve hücreleri steril bir fizyolojik çözelti içinde yeniden süspanse edin.Cerrahi alanı ve bir fareyi metin protokolüne göre hazırladıktan sonra, ameliyat sırasında hipotermiyi önlemek için bir neşter ile hayvanın sırt tarafı yukarı bakacak şekilde bir slayt ısıtıcısına yerleştirin, forseps kullanarak T yediden T 12'ye kadar olan ilgili bölge üzerinde dikey bir kesi yapın. Beşinci ve altıncı torasik süreçler arasındaki boşluk arasında bulunan cildi ve yüzeysel yağ yastığını stereo mikroskop altında tutun. Kan damarı altındaki işlemi T altı olarak sayın, ardından T yediye geçin.Ardından, omurganın eğriliğini artırmak için farenin ventral tarafının altına küçük bir yatak yerleştirin ve omurgayı hareketsiz hale getirmek için grof forseps kullanın. Daha sonra, laminanın sırt yüzeyi neşter ucuna temas edene kadar vertebral seviyede vertebral seviyede T yediden T 10'a kadar olan vertebral kasların parasını iki taraflı olarak kesmek için bir neşter kullanın. Ardından, laminanın dorsal yüzeyi neşter ucuna temas edene kadar vertebral seviyede T yediden T 10'a kadar olan bağlantıyı işaretlemek için bir neşter kullanın, T sekiz ve T dokuz minik çıkıntılar arasındaki boşlukta durun.Daha sonra dokuyu T sekiz ile T dokuz ve T dokuz ile T 10 arasında kesmek için mikro makas kullanın. Şimdi T dokuz işlemini kaldırmak için rongeur'u kullanın. Kas tabakasını dikkatlice kazımak için mikro makas kullanarak kavşağı ortaya çıkarın.Kemik açığa çıkana kadar devam edin. Kasları laminadan çıkarmak ve omurlar arasında küçük bir boşluk açmak için forseps kullanın. Ardından mikro makası nazikçe kemiğin altına sokun.Laminayı her iki taraftan kesin ve çıkarmak için forsepsleri kullanarak kordonu açığa çıkarın. Geride kalan serbest veya pürüzlü kemik parçalarını çıkarmak için ron jour'u kullanın. Ardından T dokuz dorsal işleminin üst yarısını çıkarın.IH çarpma cihazı protokolünü takip ettikten sonra, metindeki yönergelere göre, önce çıkarılan lamina bölgesinde açıkta kalan omuriliği kaplayarak insizyonu kapatmak için dört oh emilebilir sütür kullanın. Altta yatan kasları sıkıştırmamaya dikkat edin. Cildi kapatmak için iki veya üç refleks klipsi kullanın.Deri altından alt sırta iki mililitre salin enjekte edin ve fareyi kurtarmak için bir ısıtma yastığı üzerindeki ön ısıtma kafesine yerleştirin. Hücrelerin kuyruk damarı enjeksiyonunu gerçekleştirmek için. Test tüpündeki hücreleri yeniden askıya alın ve 75 mikrolitreyi 0.3 mililitrelik bir şırıngaya yükleyin, böylece hücre süspansiyonunda kabarcık bulunmadığından emin olun.Hücre sedimantasyonunu önlemek için şırıngayı yatay konumda tutun. Kuyruk damarlarını genişletmek için fareyi ısı lambasının altına yerleştirin. Ardından, dar mavi bir çizgi olarak görünen yanal kuyruk damarını görselleştirmek için fareyi yavaşça sınırlayıcının içine çekin.Kuyruğu temizlemek için alkollü bir bez kullanın ve damar görüntülendikten sonra, kuyruk damarını orta parmak ile sol elin başparmağı arasında tutun. Bu videoda gösterilen T dokuz kontüzyonu, yaralanmadan 30 dakika, altı saat ve 18 saat sonra gerçekleştirilen üç enjeksiyonda arka bacak fonksiyonunun üç kez 10 ila beşinci hücrelere geçici kaybına neden oldu veya PBS kuyruk damarına enjekte edildi. Burada gösterildiği gibi, iki ila üç hafta içinde, PBS yaralıları tedavi etti, fareler iyileşti ve arka bacak fonksiyonu üç nokta bazal fare ölçeğine ulaştı veya PM.NPC'lerle tedavi edilen BMS fareleri, ancak daha yüksek bir iyileşme gösterdi ve burada görüldüğü gibi 4.5 BMS puanına ulaştı, çoğu aşılanmış pm NPC'leri PKH 26 ile etiketlenmiş, lezyonun kenarlarında biriken kümeler oluşturur.Uygulamadan kısa bir süre sonra, nakledilen hücreler lezyon kenarları boyunca ve nöronlara farklılaştıkları daha dağınık bir şekilde göç etti. Lezyon ve transplantasyondan 30 gün sonra, pm NPC'lerin hücre gövdesi boyut olarak artmış ve çoğu hücrede, dendritik benzeri süreçler belirgindi, haritalanacak spesifik antikorlar tarafından tamamen immün leke Bu pro prosedürü elde ederken, daha yüksek kuvvetlerin daha ciddi yaralanmalar nedeniyle hayvanda mortaliteyi artırabileceğini hatırlamak önemlidir. Bu nedenle, daha tekrarlanabilir bir iyileşme süreci tarafından takip edilen lezyon paradigmamızı kullanmayı öneriyoruz.Bu videoyu izledikten sonra, sonsuz ufuk çarpma tertibatını kullanarak farede travmatik omurilik yaralanmasının tekrarlanabilir deneysel bir modelinin nasıl elde edileceğini iyi anlamış olmalısınız.

neural-stem-cell-transplantation-experimental-contusive-model-spinal

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Sinir habercisi nakli, korunması ve / veya spinal kord yaralanması (SCI) ve motor nöron bozukluğu, amiyotrofik lateraller skleroz (ALS) kaybettim / işlevsiz servikal frenik motor nöronların yerini gelecek vaat eden bir strateji. Biz, ALS ve SKY kemirgen modellerinde servikal omurilik ventral boynuz hücre teslimat için bir protokol sağlar.

Amyotrophic Lateral Sclerosis ve Travmatik Spinal Kord Yaralanması Servikal Ventral Horn Hedefleme intraspinal Hücre Transplantasyonu

Kaynak: Lakshman, N.,  et al. Minimal Omurilik Yaralanması Fare Modelinde Endojen Nöral Kök Hücre Aktivasyonunu Değerlendirmek İçin Bir Nörosfer Testi. J. Vis. Uzm. (2018). Bu video, bir fare omurilik yaralanması modelinde nöral kök hücrelerin (NSC'ler) aktivasyonunu ve göçünü göstermektedir. Omuriliği ortaya çıkarmak için, anestezi uygulanmış bir fareden omurganın torasik bölgesinden bir omur çıkarılır. Daha sonra omuriliğin beyaz maddesinde, merkezi kanalı koruyan bükülmüş bir iğne...

 Nöral kök hücre aktivasyonu ve göçünü incelemek için minimal bir omurilik yaralanması modeli

Ciddi omurilik yaralanması bir kontüzyon modeli açıklanmıştır. Ayrıntılı ameliyat öncesi, ameliyat ve ameliyat sonrası adımları tutarlı bir model elde etmek açıklanmıştır.

Sıçanlarda Şiddetli Spinal Kord Yaralanması bir bere modeli

Büyüme faktörlerini içeren fibrin matrisi tam omurilik kesisi sitelerine aşılı nöral kök hücrelerini korumak için kullanılmıştır. Aşılı hücreler tamamen lezyon boşluğu doldurdu ve uzun mesafelerde konak omuriliğe aksonlarını uzatıldı nöronlar da dahil olmak üzere birden fazla nöral hücre tipleri, ayrışmıştır.

Şiddetli Spinal Kord Yaralanması sonra fibrin ve Büyüme Faktörü kokteyller ile Nöral Kök Hücre Survival ve Farklılaşma Tanıtım

Servikal omurilik yaralanmasını hem kendi kendine birleşen peptitler (SAP) hem de nöral öncü hücreler (NPC) ile tedavi etmek, büyüme faktörleri ile birlikte, rejenerasyon ve iyileşmeyi teşvik etmek için umut verici bir yaklaşımdır. Kontüzyon/kompresyon anevrizması klip sıçan servikal SKY modeli ve SAP enjeksiyonu ve NPC transplantasyonunu içeren kombine tedavi oluşturuldu.

Deneysel Servikal Spinal Kord Yaralanmalarında Sinir Öncü Hücreler ve Öz-montaj Peptitler sinerjik Kullanımı

Ciddi omurilik yaralanmaları sıklıkla doku defektlerine neden olur. Akut yaralanmadan sonra ve tam omurilik transeksiyonundan beş hafta sonra mekanik bir mikrokonektör sisteminin implantasyonu yoluyla sıçanlarda doku adaptasyonunu, rejeneratif yanıtları ve fonksiyonel iyileşmeyi teşvik etmek için bu tür boşlukları başarılı bir şekilde kapatmak için iki olasılık tanımlanmıştır.

Deneysel Stratejileri Akut ve Kronik Lezyon sonra Yaralı Omurilik Büyük Doku boşlukları doldurmak için

Bu makalenin tam transeksiyon sonra spinal kord kütükleri ve dolgu Schwann hücreleri (SCs) ve köprü ve akson rejenerasyon arasında boşluk teşvik için enjekte edilebilir membran matris ile arasında içi boş bir kanal eklemek için bir teknik anlatılmaktadır.

Nakli Schwann hücreleri kopuk sıçan Spinal Kord kütükleri arasında boşluk Axon rejenerasyon teşvik için köprü için PVDF-TrFE borular içinde

Burada, biz orta kanal niş konut endojen sinir kök hücreleri (NSCs) yedek bir yetişkin fare en az omurilik yaralanma modelinde performansını göstermek. Neurosphere tahlil harekete geçirmek ve yaralanma takip kesin ve ilkel NSCs geçirilmesi ölçmek için nasıl kullanılabileceğini göstermektedir.

Endojen nöral kök hücre etkinleştirme en az Medulla Spinalis Yaralanmalarında, fare modeli değerlendirmek için bir Neurosphere tahlil

Bu protokol, Açık kafatası travmatik beyin hasarı ve kültür insan kaynaklı pluripotent kök hücre türeyen hücrelerin transplantasyonu için bir fare modeli için metodolojileri yaralanma sitesine gösterir. Bu prosedürlerden gelen sonuçların davranışsal ve histolojik testleri de kısaca açıklanmıştır.

Insan kaynaklı pluripotent kök hücre türetilen nöral hücrelerin terapötik transplantasyonu ile fare beyin yaralanması kontrollü Kortiik darbe modeli

Bu yazıda, hücresel replasman tedavilerini test etmek için ex vivo bir model olarak nöral kök hücrelerle nakledilen uzun süreli omurilik organotipik dilimleri oluşturmak ve sürdürmek için tekrarlanabilir bir yöntem sunuyoruz.

Omurilik Yaralanmasında Hücre Transplantasyonunu Doğrulamak için Bir Platform Olarak Uzun Süreli Fare Omurilik Organotipik Dilim Kültürü

Bu çalışmada, omurilik yaralanması onarımı için adipoz kaynaklı kök hücrelerin pro-rejeneratif davranışını araştırmak ve bunlardan yararlanmak için kullanılabilecek sinir-mimetik kompozit hidrojeller geliştirilmiş ve karakterize edilmiştir.

Kök Hücre Dağıtımı Kullanılarak Omurilik Yaralanması için Kombinatoryal Terapötiklerin Geliştirilmesi

Öğrenin, farelerde omurilik yaralanması kontüzyon modeli oluşturmayı ve sinir kök hücre nakli yapmayı. Bu yöntem, rejeneratif tıp ve nörobilim araştırmalarında hücre davranışlarını incelemek için kullanılır.

Omurilik Yaralanması Deneysel Kontuzif Modelinde Sinir Kök Hücre Nakli

Daha fazla video keşfet