Name: Periferik Kan İnsan alloantijen-özgü T hücrelerinin üretilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: Öğrenin, periferik kandan alloantijen-özgü insan T hücrelerini izole etme ve klonlama yöntemini. Yoğunluk gradyanı santrifüjasyon, manyetik ayrıştırma ve akış sitometrisi kullanılarak spesifik immün yanıtlar incelenir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazar, tetramer üretimi için NIH Tetramer Çekirdek Tesisine teşekkür eder. Yazar ayrıca, hücre sıralamasına yardımcı oldukları için UCSD İnsan Embriyonik Kök Hücre Çekirdek Tesisi akış sitometrisi laboratuvarından E.D. O'Connor ve K.E. Marquez'e teşekkür eder. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri hibe K08AI085039 (GPM) tarafından finanse edilmiştir.

NOT: Bu protokol, insan gönüllülerden periferal kan örneklerinin kullanılmasını gerektirir. Insan denekler ile tüm araştırma gözden ve Helsinki Bildirgesi (2013) ve Sağlık Sigortası Taşınabilirliği ve 1996 Sorumluluk Yasası ile uyumu sağlamak üzere bir İnsan Araştırmaları Kurumsal Değerlendirme Kurulu tarafından onaylanmış olması gerekir. Tüm kan T-hücrelerinin 1. izolasyonu <ol><li> Başlamadan önce, oda sıcaklığına kadar yoğunluk gradyan orta ısıtın. Kısım 2-4 steril 15 ml konik santrifüj tüplerine yoğunluk gradyan ortamının 4 ml (1 tüp her biri, 10 ml seyreltilmiş kan hacmi için kullanılacaktır). </li><li> 1-2 sodyum heparin sprey kan 10-20 ml kaplı (yeşil-üst) venöz kan alma tüpleri edinin. Eğitimli bireylerin gözetiminde insan numuneleri toplamak ve Kurumsal Değerlendirme Kuruluna göre protokolünü onayladı. </li><li> % 70 etanol ile, tüplerin dış silin. Dikkatle fi üstleri kaldırmaktoplama tüpleri doldurulmayan, steril bir 50 ml santrifüj tüpüne kan süzün. </li><li> Her bir kan toplama tüpüne 10 ml steril fosfat tamponlu tuz (PBS) ekleyin. , PBS toplamak decanted tam kan eklemek ve hafifçe karıştırın. </li><li> 25 ul insan T hücresi zenginleştirme Kokteyl / 2 mL toplam hacim. 20 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Yavaşça yoğunluk gradyan ortamının üstte 1 seyreltilmiş kan: 10 ml&#39;lik bir pipet kullanılarak, 1, 10 ml kadar katman. Yoğunluk gradyan ortamın yüzeyini bozmak için dikkatli olun. </li><li> 20 o C&#39;de santrifüj katmanlı kan ve yoğunluk gradyan orta 20 dakika boyunca 1200 x g&#39;de </li><li> Yoğunluk gradyan orta ve yoğunluk gradyan orta ve seyreltilmiş plazma arasındaki ara yüzde lökosit tabakası arasındaki ara yüzü bozmayacak dikkat ederek, santrifüj tüpleri çıkarın. 5 ml&#39;lik bir pipet kullanarak dikkatli bir şekilde lökosit faz toplanır ve yeni bir steril 50 ml konik küvet transferör. </li><li> 50 ml toplanan PBL hacmini getirmek ve hafifçe karıştırmak için PBS ekleyin. </li><li> 20 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 600 x g&#39;de santrifüj Durusu. </li><li> Süspanse tamponu (steril filtre edilmiş PBS% 1 BSA ihtiva eden) ayırma sitometrisi 10 ml&#39;lik steril bir akış hücreleri topak. Örnek hücre süspansiyonu, 10 ul, 1:10 seyreltilmiş bir hemositometre kullanılarak hücre sayısı tripan mavisi (90 ul ekle) (beklenen verim 1-4 x 10 6 hücre tam kan / tüp). <ol><li> 5 ml&#39;lik bir tüpe transfer 1 ml lik bir çıkarın ve tetramer etiketli olmayan T hücrelerinin analizi için buz üzerinde tutulur. Buz üzerinde hücre süspansiyonu tutun. </li></ol></li></ol> Alloantijen-spesifik T hücrelerinin 2. Manyetik zenginleştirilmesi <ol><li> 1 Alloantijen pMHC tetramerini sulandırmak: 100 steril sıralama tamponunda. </li><li> Santrifüj Hücre süspansiyonu, 20 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 600 x g&#39;de (adım 1.11 9 mi) Durusu. </li><li> Peletlendi için pMHC tetramer Alloantijen seyreltilmiş 50 ul ekleyinHücreler (10 7 hücreleri kadar). Nazik pipetleme karıştırın. Steril bir 5 ml tüp aktarın. Oda sıcaklığında 30 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Sıralama tampon 2 ml ekleyin. 20 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 600 x g&#39;de santrifüj Durusu. </li><li> 100 ul sıralama tamponunda süspanse hücreler. 10 ul Biotin seçimi kokteyl ilave edilir ve oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edilir. </li><li> 5 ul manyetik nanopartikülleri ilave edilir ve oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edilir. </li><li> 2.5 ml sıralama tampon ve pipetleme hafifçe karıştırın ekleyin. 5 ml tüp aktarmak, 100 ul kısım çıkarın ve ön zenginleştirme hücrelerin analizi için buz üzerinde tutmak. </li><li> Hücre ayrılma mıknatıs hücre süspansiyonu ihtiva eden 5 ml&#39;lik tüp yerleştirin. Bu kapak, tüpün üstüne gevşek olması gerekmektedir. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Yavaşça tüpten kapağı çıkarın. Birlikte tüp ve mıknatıs tutma, taze 5 ml tüp içine tüp içeriğini süzün. Dokunun veya tüp içeriğini sallamayınsıvının son damla çıkarın. </li><li> Mıknatıstan tüpü çıkarın. 2 ml soğuk sıralama tampon ekleyin ve pipetle hafifçe karıştırın. 2, bir hemositometre kullanılarak hücrelerin sayısı tripan mavisi (10 ul ekle): Örnek hücre süspansiyonu, 10 ul, 1 seyreltin. </li></ol> Tek hücreli Sitometrisi hücre sıralama için T hücrelerinin 3. hazırlanması <ol><li> Hücrelerin tüm tüplere soğuk sıralama tampon ekleme (tetramer etiketlenmemiş, tetramer etiketli zenginleştirilmiş un, tetramer ve etiketli zenginleştirilmiş) 3 ml hacim getirmek. </li><li> 4 o C&#39;de 5 dakika boyunca 600 xg&#39;de Santrifüj ve decant tampon hücreleri kurtarmak için. </li><li> 25 ul soğuk tür tampon pelet hücreleri tekrar süspansiyon. 5 ul insan Fc blok ekleyin. 20 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. </li><li> Akış sitometri sıralama için antikorlar hazırlayın. 15 ul sıralama tampon, 15 ul anti-CD5, 15 ul anti-CD14, ve 15 ul anti-CD19 karıştırın. </li><li> Hücrelerin her biri tüp antikor karışımı 20 ul ekle. 20 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. </li><li> Her tüpe soğuk çeşit tampon 2 ml ekleyin. </li><li> 4 o C&#39;de 5 dakika boyunca 600 xg&#39;de Santrifüj ve decant tampon hücreleri kurtarmak için. </li><li> Sıralama tampon maddesi içinde 1 -2 x 10 6 hücre / ml&#39;lik bir konsantrasyonda tekrar süspansiyon hücreleri. </li><li> Insan T hücre kültür ortamının kısım 100 ul (Iscove DMEM, 2 mM Glutamax, 10 mM HEPES, 50 ug / ml gentamisin, 50 uM 2-merkaptoetanol,% 10 ısı ile inaktive edilmiş insan AB serumu, ve 2.5 ng / ml rekombinant insan ile desteklenmiş IL-2), 96 oyuklu tabanı yuvarlak hücre kültürü plakasının her oyuğuna. Buz üzerinde tutun. </li></ol> Tek hücreli Sitometrisi Sorting tarafından Tetramer-etiketli T hücrelerinin 4. İzolasyonu <ol><li> Alloantijen pMHC tetrameri etiketli T hücreleri (Şekil 2.a) tanımlamak için yolluk parametrelerin akım sitometri kurmak. B hücreleri ve CD14 ifade CD19 hariç, lenfositlerin ikilileri, kapıyı ortadan kaldırmak için stratejiler yolluk kurmak için ön zenginleştirme tetrameri etiketli kısmını kullanınmonositler ifade ve CD5 ifadesi ile, T hücreleri tanımlar. (Tetramer etiketli olmayan örnekten hücreler bu kapıdan giren ve - - CD19, CD5 + CD14 0%) ile tetramer bağlanması T hücrelerin belirlenmesine yolluk kurmak için bir floresan gibi tetrameri eksi bir kumanda ile işaretli olmayan örnek kullanın . Not: aşırı kısıtlayıcı yolluk stratejileri izole edilen T hücrelerinin sayısını azaltırken, antijene özel niteliği olmayan, T hücreleri veya T hücrelerinin izolasyonu ile sonuçlanır yeterince sıkı değildir stratejileri yolluk. </li><li> Tek hücre sıralama için plaka parametreleri programlamak. CD19 - - Her kuyuda tetramerini + hücreyi 1 CD5 + CD14 yerleştirmek için sıralayıcı yönlendirin. Her satırda (Şekil 2.S iyi (hücreler - CD19 - - tetrameri 100 CD5 + CD14) de 1 negatif kontrol (hücreleri kuyunun içine sıralanır) ve 1 pozitif kontrol içerecek şekilde ayarlanan plakayı yönlendirin </strong&gt;). </li><li> Ayırıcı stratejisi ve plaka kurulumu sitometrisi düzenlenen akım kullanarak, doğrudan bir akış sitometrik hücre ayırıcıyla 96 oyuklu bir plakaya bireysel tetramer bağlanması T hücreleri izole etmek. </li></ol> 5. Kültür ve alloantijen-özgü T hücresi klonlarının Genişleme <ol><li> 20 ° C&#39;de, hücre sınıflandırılması; 5 dakika boyunca 600 x g&#39;de santrifüj plaka tamamlanmasından sonra, % 6 CO 2 inkübatör 37 o C yerleştirin kültür plakası. </li><li> 30 saniye vorteksleyin uyarıcı, anti-CD3 / anti-CD28 mikro boncuklar boncuklar tekrar süspansiyon. </li><li> Toplanan T hücrelerinin uyarılması için gerekli olan aktivatör boncuk hacmi (aktivatörünün mikro-/ oyuk 0.5 ul) hesaplayın. Steril bir 5 ml tüp uyarıcısı boncuk hesaplanan hacim aktarın. 1 ml insan T hücre kültür ortamı ve vorteks ekleyin. </li><li> Mıknatıs microbead süspansiyonu ile tüp yerleştirin. Bu kapak, tüpün üstüne gevşek olması gerekmektedir. Oda sıcaklığında 2 dakika süreyle inkübe edin. </li><li> Yavaşça çıkarıntüpten kabı. Taze 5 ml tüp içine, birlikte decant tüp içeriği tüp ve mıknatıs tutma. Dokunun veya tüp içeriğini sallamayın. </li><li> Mıknatıstan tüpü çıkarın. Insan T hücre kültür ortamı ilave edin (mikrotaneciklerin, 100 ul ortam / 0.5 ul, başlangıçta ilave edildi). </li><li> Kısım 96 oyuklu plakanın her oyuğuna aktivatör boncuk süspansiyonu 100 ul. % 6 CO 2 inkübatör 37 o C kültür plaka inkübe. </li><li> Mikroskobik inceleme ile günlük hücre büyümesini izleyin. 7 günlük bir kültürden (Şekil 3a) - çoğalan hücrelerin küçük kümeler 5 sonra mikroskopla gözlenebilir. Not: bu noktada T hücresi kültürlerinin Görselleştirme zor olabilir, ve bu aşamada gözlemlenebilir hücre kümelerinin olmaması artan bir T hücresi eksikliği olmayabilir. </li><li> Hücre izolasyonu 14 gün sonra, dikkatli bir şekilde kültür üst kapalı ve ortam 100 ul çıkararak besleme kültürleri 100 μ ile değiştirinL, taze insan T hücre kültürü ortamı. % 6 CO 2 inkübatör 37 o C kültür plaka kuluçkaya devam edin. </li><li> Mikroskopik inceleme ve kültür ortamının rengi değerlendirilmesi günlük hücre büyümesini izlemek. 3 gün orta değişiklikten sonra - Büyük hücre kümeleri mikroskobik 2 görünür olmalıdır. Makroskobik olarak, hücre topakları ortam değişikliği takiben 14 gün boyunca görünür hale gelmelidir. </li><li> Hücre izolasyonunu takiben 28 gün, mikroskobik inceleme ile büyüyen klonları tanımlamak. 200 ul insan T hücre kültür ortamı içeren 48-çukurlu bir doku kültür plakasının her bir gözeneğine büyüme pozitif 96 oyuklu plaka kültürlerin 200 ul hacim aktarın. </li><li> Uyarıcı, anti-CD3 / anti-CD28 mikro boncuklar 12.5 ul içeren 100 ul ekle (- 5.6 bölümlerde 5.2 &#39;de tarif edildiği gibi hazırlanmıştır). % 6 CO 2 inkübatör 37 o C kültür plaka inkübe. </li><li> Mikroskobik eski tarafından günlük kültür büyümesini izlemekaminasyon ve kültür ortamının rengi değerlendirilmesi. T hücresi kültürü&gt; 2x10 6 / ml&#39;ye ulaştığı zaman (tipik olarak 3-5 gün tekrar uyarma işleminden sonra, ortam başladığı gün ile tahmin edilebilir saman-sarı renk), 24 oyuklu doku kültürü plakası, bir oyuğuna transfer kültürü ve 500 ul, insan T hücre ortamı ilave edin. </li><li> 10-14 gün pMHC tetramerinin analizi bağlama (bölüm 3 ve 4.1 açıklanan etiketleme ve yolluk stratejisini kullanarak) flow sitometri ile Alloantijen özelliğinin değerlendirilmesi T hücre kültürünün 200 ul toplamak, yeniden uyarma izleyin. </li></ol> 6. Uzun süreli yeniden uyarma ve Kültür T hücresi klonlarının <ol><li> Sürekli her 14 günde bir olabilir, arzu edilen özellikteki klonal T hücresi kültürlerini yeniden canlandırmak ve genişletmek. Son anti-CD3 / CD28 mikroboncuk uyarımını takiben 14. günde, steril bir 5 ml&#39;lik bir tüp içine T hücresi kültürlerini toplayın. 2,5 ml&#39;lik bir hacme, tek tüp içinde, aynı T hücresi klonunun birden fazla kuyu birleştirin. </li&gt; <li> 2.5 ml nihai hacme getirmek ve pipetleme hafifçe karıştırmak için orta ekleyin. </li><li> Kültürden eski, mikro çıkarmak için bir hücre ayırma mıknatıs T hücresi kültürü içeren 5 ml&#39;lik tüp yerleştirin. Bu kapak, tüpün üstüne gevşek olması gerekmektedir. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Yavaşça tüpten kapağı çıkarın. Birlikte tüp ve mıknatıs tutma, taze 5 ml&#39;lik bir tüp içine hücre süspansiyonu süzün. Dokunun ya da sıvının son damla kaldırmak için tüp içeriği sallamayın. </li><li> 4 ml nihai hacmi getirmek için orta ekleyin. Örnek 10 ul Hemasitometre kullanarak hücreleri saymak için. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 600 x g&#39;de santrifüj ile T hücrelerinin yeniden elde etmek. </li><li> Durusu süpernatant. 10 6 hücre / ml insan T hücre kültürü ortamında yeniden süspanse T hücreleri. Aktarım 1, 24 oyuklu doku kültür plakasının her bir oyuğuna ml&#39;lik eş payları. </li><li> Uyarıcı, anti-CD3 / a 12.5 ul ihtiva eden 100 ul ortam eklenerek T hücrelerini uyarmak YenidenYüzgeç CD28 microbeads (- 5.6 gibi bölümlere 5.2 açıklanmıştır). % 6 CO 2 inkübatör 37 o C&#39;de inkübe edilir. </li></ol>

<ol><li>Smith-Garvin, J. E., Koretzky, G. A., Jordan, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">T cell activation.</a> Annu. Rev. Immunol. 27 (1), 591-619 (2009).</li>
<li>Morris, G. P., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+the+TCR+balances+sensitivity+and+specificity+for+the+recognition+of+self+and+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">How the TCR balances sensitivity and specificity for the recognition of self and pathogens.</a> Nat. Immunol. 13 (2), 121-128 (2012).</li>
<li>Arstilla, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+direct+estimation+of+the+human+%CE%B1%CE%B2+T+cell+receptor+diversity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A direct estimation of the human αβ T cell receptor diversity.</a> Science. 286 (5441), 958-961 (1999).</li>
<li>Robbins, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+assessment+of+T-cell+receptor+%CE%B2-chain+diversity+in+%CE%B1%CE%B2+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Comprehensive assessment of T-cell receptor β-chain diversity in αβ T cells.</a> Blood. 114 (19), 4099-4107 (2009).</li>
<li>Alanio, C., Lemaitre, F., Law, H. K. W., Hasan, M., Albert, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enumeration+of+human+antigen-specific+naive+CD8%2B+T+cells+reveals+conserved+precursor+frequencies%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Enumeration of human antigen-specific naive CD8+ T cells reveals conserved precursor frequencies.</a> Blood. 115 (18), 3718-3725 (2010).</li>
<li>Suchin, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+frequency+of+alloreactive+T+cells+in+vivo%3A+new+answers+to+an+old+question%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Quantifying the frequency of alloreactive T cells in vivo: new answers to an old question.</a> J. Immunol. 166 (2), 973-981 (2001).</li>
<li>Felix, N. J., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+of+T-cell+alloreactivity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Specificity of T-cell alloreactivity.</a> Nat. Rev. Immunol. 7 (12), 942-953 (2007).</li>
<li>Morris, G. P., Ni, P. P., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alloreactivity+is+limited+by+the+endogenous+peptide+repertoire%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Alloreactivity is limited by the endogenous peptide repertoire.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 108 (9), 3695-3700 (2011).</li>
<li>Suri, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+APCs%2C+the+autologous+peptides+selected+by+the+diabetogenic+I-Ag7+molecule+are+unique+and+determined+by+the+amino+acid+changes+in+the+P9+pocket%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">In APCs, the autologous peptides selected by the diabetogenic I-Ag7 molecule are unique and determined by the amino acid changes in the P9 pocket.</a> J. Immunol. 168 (3), 1235-1243 (2002).</li>
<li>Yssl, H., Spits, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+and+maintenance+of+cloned+human+T+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Generation and maintenance of cloned human T cell lines.</a> Curr. Protoc. Immunol. 7, (2002).</li>
<li>Altman, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+analysis+of+antigen-specific+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes.</a> Science. 274 (5284), 94-96 (1996).</li>
<li>Moon, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Naive+CD4%2B+T+cell+frequency+varies+for+different+epitopes+and+predicts+repertoire+diversity+and+response+magnitude%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Naive CD4+ T cell frequency varies for different epitopes and predicts repertoire diversity and response magnitude.</a> Immunity. 27 (2), 203-213 (2007).</li>
<li>Chicz, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+and+promiscuity+among+naturally+processed+peptides+bound+to+HLA-DR+alleles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Specificity and promiscuity among naturally processed peptides bound to HLA-DR alleles.</a> J. Exp. Med. 178 (1), 27-47 (1993).</li>
<li>Ni, P. P., Allen, P. M., Morris, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ability+to+rearrange+dual+TCRs+enhances+positive+selection%2C+leading+to+increased+allo-+and+autoreactive+T+cell+repertoires%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The ability to rearrange dual TCRs enhances positive selection, leading to increased allo- and autoreactive T cell repertoires.</a> J. Immunol. In press, (2014).</li>
<li>Morris, G. P., Uy, G. L., Donermeyer, D., DiPersio, J. F., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+receptor+T+cells+mediate+pathologic+alloreactivity+in+patients+with+acute+graft-versus-host+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Transl.+Med%22%5BJournal%5D)">Dual receptor T cells mediate pathologic alloreactivity in patients with acute graft-versus-host disease.</a> Sci. Transl. Med. 5 (188), (2013).</li>
<li>Altman, J. D., Reay, P. A., Davis, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+functional+peptide+complexes+of+class+II+major+histocompatibility+complex+proteins+from+subunits+produced+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Formation of functional peptide complexes of class II major histocompatibility complex proteins from subunits produced in Escherichia coli.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 90 (21), 10330-10334 (1993).</li>
<li>Sabatino, J. J., Huang, J., Zhu, C., Evavold, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+prevalence+of+low+affinity+peptide-MHC+II+tetramer-negative+effectors+during+polyclonal+CD4%2B+T+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">High prevalence of low affinity peptide-MHC II tetramer-negative effectors during polyclonal CD4+ T cell responses.</a> J. Exp. Med. 208 (1), 81-90 (2011).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir rakip mali çıkar beyan etmemektedir.

T hücresi alloreaktivitesi uzun süredir araştırılmış ve klinik olarak anlamlı bir olgudur. T hücrelerinin allojenik stimülasyona karşı güçlü proliferatif ve efektör tepkileri, periferik kan T hücrelerinin inaktive edilmiş allojenik hücrelere karşı nispeten basit karışık lenfosit reaksiyonları yoluyla in vitro insan T hücresi yanıtlarının kapsamlı analizlerini mümkün kılmıştır. Bununla birlikte, bu birincil alloreaktif T hücresi yanıtları, spesifik alloantijenlere yanıt veren çok sayıda bireysel T hücresinden olu...

T lenfositleri adaptif bağışıklık sisteminin önemli bileşenleridir. T hücreleri, sadece doğrudan değil, efektör çeşitli mekanizmalar aracılığıyla patojenlere karşı koruyucu bir immün yanıtlara aracılık değil, aynı zamanda aktif kendini immünolojik toleransı muhafaza edilmesi ve bağışıklık sisteminin diğer hücrelerinin tepkileri yönlendirilmesi için sorumludur. Bu işlevler, bir T hücresi reseptörü (TCR) bağlanması, sitokinler ve kemokinlerin ve metabolitleri dahil olmak üzere 1, entegre sinyalleri, bir dizi içine yönlendirilir. Adaptif bağışıklık T hücre rolü tanımlayan karakteristik spesifisite sağlamaktadır Bu sinyaller arasında, TCR, özel bir önem taşır. TCR, T hücre efektör işlevi başlatmak sinyallerini temin etmek üzere bir çok özel ve hassas bir şekilde MHC (insan ortologu HLA) molekülleri (pMHC kompleksleri) tarafından sunulan lineer peptid antijen ile etkileşime girer. PMHC ligandlar ile TCR etkileşimleri biyokimyasal parametreleri T özgüllük sadece sağlarHücre aktivasyonu, aynı zamanda daha sonra T-hücresi işlevinin 2 niteliksel etkisi vardır. Bu nedenle, eğitim T hücre fonksiyon, genellikle tanımlanmış antijenik özgünlüğe sahip klonal T hücrelerinin tepkileri incelenmesi gerekir. 10 8 farklı αβTCRs 3-4 - yaklaşık 10 ila 12 αβ hücresi içeren insan T hücresi bölmesi, tahminen 10 7 içerir. Bu farklı repertuar koruyucu bağışıklık için bir T hücre yanıtını gerektirecek potansiyel patojenlerin peptidlerin geniş bir dizi tanınması için bir fırsat sunuyor. Bu antijene 5 önce bağışıklık yanıtının yokluğunda 10 -7 - kendi kendine MHC tarafından sunulan belirli bir yabancı antijene yanıt olarak T hücrelerinin frekansı 10 -4 mertebesinde olduğu tahmin edilmektedir. Naif T hücre repertuar peptid antijenleri ve sınır tepki gösteren öz-MHC tanıma yeteneğini sağlamak için timus seçimi ile şekillenmektedirkendinden peptit antijenlerine karşı ivity koruyucu bağışıklığı 2 aracılık potansiyel kullanımını maksimize edilmesidir. Bu ihlali reaktifliği, göreceli olarak büyük bir frekans, 10 -3 tasarlanmış Bununla birlikte, - İmmünolojik olarak naif bulunan bireylerden alınan T hücrelerinin, 10 -4, yabancı MHC moleküllerini hem de onlar mevcut endojen peptidler hem de göz önünde bulundurarak, farklı genetik yapıdaki hücreler ile uyarılmaya yanıt 6. Allojenik pMHC ligandların tanınması, bireysel MHC tarafından sunulan yabancı antigenlerin tanınmasına yapısal olarak benzer olduğu; TCR, allojenik MHC molekülü hem de sunulan peptit 7 her iki kritik biyokimyasal etkileşimleri yapar. PMHC çeşitliliğine allojeneik stimülasyonu sonucunda T hücrelerinin yanıtı sağlam yapısı farklı genetik yapıdaki hücreler, 8 yüzeyi üzerinde mevcut olan kompleksler. Bu, her bir MHC yaklaşık 2 x 10 4 farklı endojen peptit antijenlerini 9 sunulur olduğu tahmin edilmektedir. Bu bAllojenik stimülasyona yanıt readth T hücre alo-tepkiselliği sonuçlanan, host hastalığı (GVHD) alograft reddi veya doku yaması gibi klinik olarak ilgili patolojisi arasında önemli bir yönüdür. Insan T hücresi alloreaktif yanıtlarının Çalışma, geleneksel olarak allojenik hücreleri ile stimüle edilmesini müteakkip bir hassas T hücreleri poliklonal tepkilerin test üzerine yaslanmaktadır. Sınırlayıcı seyreltme ile birlikte aynı allojeneik hücre hattı ile tekrarlı uyarım allojenik HLA 10 tanımlanan tanınması klonal T hücrelerinin üretme yeteneğine sahiptir analiz eder. Endojen pMHC en büyük ve farklı bir repertuar HLA T-hücrelerinin geniş bir repertuar uyaran belirli bir alogeneik kapsamayabilir kompleksleri Ancak, bu yaklaşım tek tek allojenik pMHC ligandlarına yanıtları incelenmesi için sorunludur. Bu toplu popülasyon uyarılması ve sınırlayıcı seyreltme yaklaşım arzu edilen Reacti T hücreleri izole etmek için klonların çok sayıda tarama gerektirecektirTek pMHC bağına karşı vite. Buna ek olarak, tek bir allojenik pMHC liganda yanıt T hücrelerinin frekansı, belirli bir antijene tepki veren, insan T hücresi klonlarının verimli üretimi için bir engel sunulur naif T hücresi popülasyonları arasında nispeten düşüktür. Tanımlama ve poliklonal popülasyonlarından antijen-spesifik T hücrelerinin elde edilmesi fluoroforla işaretlenmiş pMHC multimerlerinin 11 geliştirilmesi ile sağlanmıştır. Bu yaklaşım, bir streptavidin-işaretli flüorofor bağlanarak etiketli rekombinant çözünür biyotinile MHC molekülleri, yüklenen özel peptit antijenlerini kullanmaktadır. PMHC bir multimerizasyon çözünür pMHC ligandlar için TCR&#39;nin bünyesinde düşük bir düzeyde (uM) bir afinite telafi avidite artırır. Etiketlenmiş hücreler tanımlanır ve akış sitometrisi ile izole edilebilir. Bununla birlikte, bu yaklaşım, halen tipik olarak naif T hücresi popülasyonları arasında, antijen-spesifik T hücrelerin, en düşük frekans ile sınırlıdırEn akış sitometrelerinde doğru tanımlama ve tayin sınırından daha az büyüklükte siparişleri. Bu sınırlama gidermek için, tetramer-etiketli hücreler için pMHC tetramer etiketleme ve daha sonra manyetik boncuk zenginleştirmek için bir yöntem, 12 geliştirilmiştir. Bu yöntem, güvenli bir tespit numaralandırma ve düşük frekanslı antijen-spesifik T hücrelerinin elde edilmesi göstermiştir. Bu protokol, spesifik olarak bireysel allojenik pMHC-ligantlarına tepki veren, insan T hücresi klonlarının oluşturulması için etkili bir protokolü tarif eder. Bu protokol, tek kriteri hücrelerinden T hücresi klonlarının üretimini (etkinleştirmeniz sıralama hücre bağlanımını akış sitometrisiyle ve insan T hücrelerinin in vitro kültürü için güçlü bir yöntemle Alloantijen özgü insan T hücrelerinin izolasyonu için multimer, etiketleme ve zenginleştirme pMHC (HLA) &#39;nin uygulandığı Şekil 1&#39;de genel bakış).

<table><tbody><tr><td>Sodyum heparin venöz kan alma tüpü 16 x 100 mm</td><td>Becton, Dickenson ve Şirketi</td><td>366480</td><td></td></tr><tr><td>Lymphoprep</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>7801</td><td></td></tr><tr><td>Rozet Sep İnsan T Hücresi Zenginleştirme Kiti</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>15061</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco'nun PBS'si, Ca veya Mg Corning</td><td></td><td>21-031-CV</td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td> <td>olmadan 1xSigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E6635</td><td></td></tr><tr><td>Florofor etiketli pMHC tetramer</td><td>NIH Tetramer Tesisi</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>EasySep Biotin Seçim Kiti</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>18553</td><td></td></tr><tr><td>EasySep Seçim mıknatısı</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>18000</td><td></td></tr><tr><td>TruStain FcX İnsan Fc engelleme çözümü</td><td>Biolegend</td><td>422301</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD5 PE-Cy7 (klon UCHT2)</td><td>Biolegend</td><td>300621</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD14 FITC (klon HCD14)</td><td>Biolegend</td><td>325603</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD19 FITC (klon HIB19)</td><td>Biolegend</td><td>302205</td><td></td></tr><tr><td>Iscove'un DMEM'i, b-ME veya L-glutamin olmadan</td><td>Corning</td><td>15-016-CV</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Corning</td><td>25-060-CI</td><td></td></tr><tr><td>b-Merkaptoetanol&nbsp;</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>21985-023</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>35050061</td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin sülfat (50 mg/ml)</td><td>Omega Scientific</td><td>GT-50</td><td></td></tr><tr><td>İnsan AB serumu, erkek donör</td><td>Omega Scientific</td><td>HS-30</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant insan IL-2</td><td>Peprotech</td><td>AF 200-02</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads İnsan T-Aktivatör CD3/CD28</td><td>Yaşam Teknolojiler</td><td>11131D</td><td></td></tr><tr><td>Medya</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hücresi ayırma tamponu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS, pH 7.4</td><td>1 L</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>10 g</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0.5 M)</td><td>2 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İnsan T Hücre Kültürü Ortamı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Iscove's DMEM</td><td>351.6 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isı ile inaktive edilmiş insan AB serumu</td><td>40 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1 M)</td><td>4 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glutamax (100x)</td><td>4 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin (50 mg/ml)</td><td>0.4 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>b-merkaptoetanol (14.3 M)</td><td>1.4 ml</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant insan IL-2 (1 mg/ml)</td><td>1 ml</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

periferik kan İnsan alloantijen-özgü t hücrelerinin üretilmesi

Generation of Human Alloantigen-specific T Cells from Peripheral Blood

İnsan T lenfosit biyolojisinin incelenmesi genellikle aktive edici ligandlara verilen yanıtların incelenmesini içerir. T hücreleri, T hücresi reseptörü (TCR) aracılığıyla MHC (insan ortolog HLA) molekülleri tarafından sunulan işlenmiş peptit antijenlerini oldukça hassas ve spesifik bir şekilde tanır ve yanıt verir. T hücrelerinin birincil işlevi, self-MHC tarafından sunulan yabancı antijenlere karşı koruyucu immün yanıtlara aracılık etmek iken, T hücreleri allojenik dokulardaki antijenik farklılıklara güçlü bir şekilde yanıt verir. Alloantijenlere karşı T hücresi yanıtları, doğrudan veya dolaylı alloreaktivite olarak tanımlanabilir. Alloreaktivitede, T hücresi hem sunulan peptidin hem de MHC molekülünün oldukça spesifik bir şekilde tanınması yoluyla yanıt verir. T hücrelerinin allojenik stimülasyona verdiği güçlü oligoklonal yanıt, allojenik dokularda bulunan çok sayıda potansiyel olarak uyarıcı alloantijeni yansıtır. Alloreaktif T hücresi yanıtlarının genişliği, greft versus host hastalığı ve allogreft reddi gibi biyolojik olarak ilgili alloreaktif yanıtlarla ilişkili patolojinin başlatılmasında ve aracılık edilmesinde önemli bir faktör olsa da, allojenik ligandlara karşı T hücresi yanıtlarının analizini engelleyebilir. Bu amaçla, bu protokol, bilinen peptid-MHC (pMHC) alloantijenlerine yanıt veren saf insan periferik kan lökositlerinden (PBL) alloreaktif T hücreleri üretmek için bir yöntemi tanımlar. Protokol, alloantijene özgü T hücresi klonlarının oluşturulması için tek hücreli in vitro kültür yöntemlerine pMHC multimer etiketlemesi, manyetik boncuk zenginleştirme ve akış sitometrisi uygular. Bu, allojenik stimülasyona yanıt veren T hücrelerinin biyokimyası ve fonksiyonu üzerine çalışmalara olanak tanır.

Strateji sıralama Akış sitometrisi, bir manyetik tanecik zenginleştirme ve tek hücreli akışı aracılığı ile özgüllük Alloantijen tanımlanmış olan bu protokol, klonal insan T hücre kültürlerinin üretimini tarif eder. 1, sürecin bir özeti verilmektedir Şekil. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/52257/52257fig1highres.jpg" /> Şekil 1: Protokol genel protokolü, burada açıklandığı periferal kandan ...

Bu makale, tanımlanmış bir alloantijene spesifik olarak yanıt veren insan T hücresi klonlarının üretilmesi ve yayılması için bir yöntemi açıklar. Bu protokol, çeşitli peptit-MHC ligandlarına özgü insan T hücrelerinin klonlanması için uyarlanabilir.

Periferik Kan İnsan alloantijen-özgü T hücrelerinin üretilmesi

The study of human T lymphocyte biology often involves examination of responses to activating ligands. T cells recognize and respond to processed peptide ...

Bu prosedürün genel amacı, tanımlanmış bir allo antijen özgüllüğü ile insan T hücrelerini tanımlamak, izole etmek ve klonlamaktır. Bu, ilk olarak yoğunluk gradyan santrifüjleme ile tüm periferik kandan T lenfositlerin izole edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci aşamada, allo antijen spesifik T hücreleri, Fluor dört konjuge peptit, HLA, tetramerler ile işaretlenir ve manyetik ayırma ile zenginleştirilir.Daha sonra, etiketli T hücreleri, tek hücre akış sitometrisi hücre sıralaması ile izole edilir. Son olarak, tek hücre kültürleri anti CD üç ve anti CD 25 antikorları ile uyarılır. Sonuç olarak, antijene özgü T hücrelerinin allo reaktivitesi akım sitometrik analiz ile değerlendirilebilir.Bu tekniğin toplu lenfosit stimülasyonu ve sınırlayıcı seyreltme gibi diğer tekniklere göre ana avantajı, bu tekniğin iyi tanımlanmış allo antijenlerine spesifik reaktiviteye sahip T hücresi klonlarının oluşturulmasını sağlamasıdır. Genel olarak, bu yönteme yeni olan kişiler, T hücresi klonlarının kültürlenmesinde ve genişletilmesinde zorluk çekebilirler. Bu, işleme başlamadan önce kültürlerin dikkatli bir şekilde günlük olarak izlenmesini gerektirir.Dört mililitre oda sıcaklığında yoğunluk gradyanını iki ila dört steril 15 mililitrelik konik santrifüj tüplerine alikot, sağlıklı bir gönüllüden kan içeren bir ila iki doldurulmuş yeşil üst kan alma tüpünün dışını silmek için% 70 etanol kullanır ve daha sonra üst kısımları dikkatlice çıkarın, kanı steril bir 50 mililitre santrifüj tüpüne boşaltın, ve daha sonra her bir toplama tüpünü 10 mililitre PBS ile yeniden canlandırın. Yıkamaları boşaltılmış tam kanla birleştirin ve bir çözeltiyi nazikçe karıştırın, ardından hücreleri, seyreltilmiş kanın toplam iki mililitre hacmi başına 25 mikrolitre insan T hücresi zenginleştirme kokteyli ile inkübe edin. 20 dakika sonra, 10 mililitrelik bir pipet kullanarak, gradyanın yüzeyini bozmamaya dikkat ederek, yoğunluk gradyan ortamının üzerine 10 mililitreye kadar kanı nazikçe katmanlayın.Hücreleri 10 dakika boyunca santrifüjleyin ve daha sonra lökosit tabakasını yoğunluk gradyanının arayüzünden ve seyreltilmiş plazmayı steril 50 mililitrelik konik bir tüpe dikkatlice aktarmak için beş mililitrelik bir pipet kullanın. Toplanan periferik kan lenfositlerinin hacmini PBS ile 50 mililitreye getirin ve hücre süspansiyonunu yavaşça karıştırın. Sonra hücreleri sayın ve analiz için bir mililitrelik bir alikotu çıkarın.Daha sonra, hücrelerin resüsünü döndürdükten sonra, peletleri bir mililitre akış sitometrisi tamponunda askıya alın ve 50 mikrolitre seyreltilmiş allo antijen peptidi MHC tetramerini hücre süspansiyonuna karıştırın. Hücreleri steril beş mililitrelik bir tüpe aktarın ve 30 dakika sonra hücreleri iki mililitre tür tampon resüs içinde yıkayın. Damağı 100 mikrolitre sıralama tamponunda askıya alın ve ardından hücreleri 10 mikrolitre biyotin seçim kokteylinde 15 dakika inkübe edin.Daha sonra, hücreleri 10 dakika boyunca beş mikrolitre manyetik parçacık içinde inkübe edin ve ardından hücre süspansiyonunu 2.5 mililitre sıralama tamponu ile hafifçe karıştırın. Ön zenginleştirme hücrelerinin 100 mikrolitrelik bir analiz alikotunu çıkarın ve ardından tüpü hücre ayırma mıknatısına yerleştirin. Beş dakika sonra, tüpü ve mıknatısı bir arada tutun ve içindekileri beş mililitrelik yeni bir tüpe boşaltın.Daha sonra tüpü mıknatıstan çıkarın ve hücreleri iki mililitre sıralama tamponunda yıkayın, peleti soğuk sıralama tamponunda yeniden süspanse edin ve hücreleri numune tipi başına iki mililitre soğuk sıralama tamponunda alikot edin. Numuneleri tekrar döndürdükten sonra, peletleri 25 mikrolitre soğuk sıralama tamponunda yeniden askıya alın ve hücreleri 20 dakika boyunca buz üzerinde beş mikrolitre insan FC bloğunda inkübe edin. Daha sonra, tüpleri 20 mikrolitre uygun antikor kokteyli ile inkübe edin.20 dakika sonra, hücreleri iki mililitre daha soğuk sıralama tamponunda yıkayın ve peletleri mililitre başına bir ila 2 milyon hücrede yeniden süspanse edin. Daha fazla tamponda, daha sonra 100 mikrolitre insan T hücre kültürü ortamını 96 kuyucuklu yuvarlak alt hücre kültürü plakasının her bir oyuğuna alikot edin ve sıralama tamamlanana kadar plakayı buz üzerinde saklayın. Ayırma işleminden sonra, plakayı santrifüjleyin ve ardından hücreleri 37 santigrat derecede% 6 CO2 inkübatöre yerleştirin.Daha sonra, uygun hacimdeki aktivatör boncuklarını girdaplayarak karıştırın ve uygun hacimdeki boncukları steril beş mililitrelik bir tüpe aktarın. Boncukları mıknatıs üzerinde yıkadıktan sonra, yıkama solüsyonunu boşaltın ve tüpe 0,5 mikrolitre mikro boncuk başına 100 mikrolitre insan T hücresi kültürü ekleyin. Daha sonra 100 mikrolitre aktivatör boncuk süspansiyonunu 96 oyuklu plakanın her bir oyuğuna alikot edin ve hücreleri inkübatöre geri koyun.Küçük çoğalan hücre kümeleri, hücre izolasyonundan 14 gün sonra, beş ila yedi günlük kültürden sonra mikroskobik olarak gözlemlenebilir. Kültürlerin üst kısmındaki 100 mikrolitre besiyerini dikkatlice 100 mikrolitre taze insan T hücresi kültürü ile değiştirin. Orta büyüklükteki hücre kümeleri, beslenmeden iki ila üç gün sonra mikroskobik olarak görünür olmalıdır: makroskopik olarak, hücre peletleri ortam değişimini takip eden 14 gün boyunca görünür hale gelmelidir.Hücre izolasyonunu takiben 28 gün sonra, büyüme pozitif kültürlerin 200 mikrolitrelik hacminin tamamını, 200 mikrolitre insan T hücresi kültürü ortamı içeren 48 oyuklu bir doku kültürü plakasının ayrı kuyucuklarına aktarın. Daha sonra 100 mikrolitre insan T hücresi kültür ortamına 12.5 mikrolitre uyarıcı anti CD üç, anti CD 28 mikroboncuk ekleyin ve plakayı yeniden uyarmadan üç ila beş gün sonra inkübatöre geri koyun. Ortam, saman sarısına dönmeye başlamalıdır.Bu noktada, kültürleri 24 oyuklu bir doku kültürü plakasının ayrı oyuklarına aktarın ve her kültüre 500 mikrolitre insan T hücresi ortamı ekleyin. Son olarak, yeniden stimülasyonu takip eden 10 ila 14 gün sonra, peptitlerinin akış sitometrisi analizi ile allo antijen özgüllüklerini değerlendirmek için her bir T hücresi kültüründen 200 mikrolitre toplayın. MHC Tetramer bağlanması: Allo antijen spesifik T hücrelerinin beklenen verimi, vericiye, kullanılan allo antijenine ve vericideki karşılık gelen reaktif T hücrelerinin sıklığına bağlı olacaktır.Örneğin, ortalama sağlıklı bir donör, mililitre kan başına 4.500.000 ila 10 milyon lökosit bulundurur ve bunların yaklaşık% 20'si T lenfositleridir. Bu nokta grafikleri, T hücrelerinin bir HLAD dört negatif donörden spesifik bir allo antijenine bağlanmasının ölçülmesinin sonuçlarını göstermektedir. Örneğin, bu deneyde, 4'te bir, 776 allo antijen spesifik T hücresinin frekansı, bu başlangıç hücresi popülasyonundan 20 milyon lökositlik bir başlangıç sayısından sayıldı.88 ayrı temer etiketli T hücresi izole edilebildi, daha sonra iki tur mikroboncuk stimülasyonu ve kültüründen sonra, mikroskobik bir inceleme ile iki büyüme pozitif kültür tanımlandı ve bunların allo antijen özgüllüğü, A 2 30 48 HLA DR'ye bağlanmaları incelenerek değerlendirildi. Dört tetramer. Bu prosedürü denerken, hücre ölümünü ve kültürlerin aşırı büyümesini önlemek için hücre kültürlerini günlük olarak izlemeyi unutmamak önemlidir. Bu prosedürü takiben, T hücresi klonları, allojenik ligand tanımanın biyokimyasının incelenmesi ve bunun etkili bağışıklık tepkilerine nasıl dönüştüğü gibi ek soruları yanıtlamak için kullanılabilir.

generation-of-human-alloantigen-specific-t-cells-from-peripheral-blood

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Bu yazıda, insan periferik kan mononükleer hücrelerinde alloantigen özel anerji ikna etmek için basit bir teknik anlatılmaktadır. Tekniği olmayan alloreactive donör hücreleri oluşturmak için klinik olarak uygulanabilir. İnfüzyon bu hücrelerin bağışıklık sulandırıldıktan geliştirmek ve allojeneik hematopoietik kök hücre transplantasyonu sonrası toksisite azaltabilir.

Co-uyarıcı Sinyal Abluka Alloantigen Uyarım İnsan periferik kan mononükleer hücreleri içinde Alloantigen özel anerji indüksiyonu

Biz tek bir insan kan bağışında düzenleyici, bellek ve naif T hücreleri oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Polarize Tregs sonra da burada ayrıntılı bir bastırma testi dahil olmak üzere genetik homojenlik ile genetik ve fonksiyonel uygulamalar çeşitli diğer komutlara göre olabilir.

İlköğretim İnsan naif ve Bellek T Hücreleri gelen İsteyerek Düzenleyici T Hücreleri Üretimi

Biz potansiyel greft reddi yüksek riski olmadan nakli sonrası immünsüpresyonun sonlandırmaya karar için kullanılabilecek değerli bir tanı testi açıklar. Tahlil Gecikmeli Tip Aşırı duyarlılık ilkelerini kullanır ve alıcılar tarafından monte hem donör özel efektör ve düzenleyici immün yanıtın doğru bir değerlendirme sağlar.

Antijen Özgül Düzenleme için Trans-vivo Gecikmeli Tip Aşırı Duyarlılık Testi

Burada, basit bir manuel protein çökeltme adımı ve çevrimiçi kolon ekstraksiyonu kullanarak kurutulmuş kan lekelerinde immünosupresan takrolimusun miktarını belirlemek için yüksek performanslı bir sıvı kromatografisi-tandem kütle spektrometresi (HPLC-MS/MS) testini açıklıyoruz.

LC-MS / MS kullanarak Kurutulmuş Kan Spotlar Immünosupresan Tacrolimus Niceleme

Burada, bir murin modelinde otoimmün artritin immünoterapisi için indüklenmiş pluripotent kök hücrelerden (iPSC'ler) fonksiyonel antijene (Ag) özgü düzenleyici T hücreleri (Treg'ler) geliştirmek için bir yöntem sunuyoruz.

Otoimmünite karşı Kök Hücre türetilmiş antijen-özgü düzenleyici T hücrelerinin gelişimini

Bu kağıt sitometrisi görüntüleme akışı kullanarak T hücrelerinin karışık bir popülasyonda alloreaktivitesini ölçülmesi için bir yöntemi tarif etmektedir.

Görüntüleme Akım Sitometri Kullanımı T Hücresi alloreaktivitesini Ölçümü

Burada, hoşgörü Ekiminde teşvik ve içinde in vitro ve in vivo değerlendirmek için bir protokol farklı hücre alt kümeleri alıcıdan gelen süpresif kapasitesi ve donör veya eksojen antijenleri doğru alıcının bağışıklık durumu mevcut.

Vitro ve In Vivo değerlendirme T, B ve Myeloid hücrelerin süpresif etkinlik ve nakli alıcılardan gelen Humoral yanıt

Bu makalede, OP9/DLL1 co-kültür sistemini kullanarak fonksiyonel tümör antijene özgü indüklenen pluripotent kök hücre türetilmiş CD8αβ+ tek pozitif T hücreleri oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır.

Tümör Antijene Özgü T Hücrelerinin Üretimi için İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücrelerin Kullanılması

Bu protokol, insan kimerik antijen reseptörü düzenleyici T hücreleri (CAR Treg'ler) oluşturmak ve test etmek için kolaylaştırılmış bir iş akışı sağlar.

İnsan kimerik antijen reseptörü düzenleyici T hücrelerinin üretimi

Farmakolojik ajanların naif monosit türevli dendritik hücrelerden in vitro olarak tolerojenik dendritik hücreler üretme kapasitesini değerlendirmek ve otolog düzenleyici T hücresi üretimi ile potansiyellerini doğrulamak için bir prosedür tanımladık.

İnsan CD14+ Monositlerinden Tolerojenik Dendritik Hücrelerin Üretilmesi için İmmünomodülatör Ajanları Test Etmek İçin Basit ve Etkili Bir Yöntem

Öğrenin, periferik kandan alloantijen-özgü insan T hücrelerini izole etme ve klonlama yöntemini. Yoğunluk gradyanı santrifüjasyon, manyetik ayrıştırma ve akış sitometrisi kullanılarak spesifik immün yanıtlar incelenir.

Periferik Kan İnsan alloantijen-özgü T hücrelerinin üretilmesi

Daha fazla video keşfet