Name: Bir transmembran proteinin yeniden oluşturulması, Mikroskop ve yama kelepçe Çalışmaları Dev tek-katmanlı keseler içine Voltaj kapılı iyon kanalı, KvAP, (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 42 s
Description: Keşfedin voltaj kapılı iyon kanalı KvAP'ın dev tek katmanlı veziküllere yeniden oluşturulması ve yama kelepçe ölçümleriyle karakterizasyonu. Bu yöntem membran proteinleri biyofiziğinde fonksiyonel analizler sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Proteinlerin agaroz şişmesi ile yeniden oluşturulma olasılığını tartıştığı için Susanne Fenz'e, mevcut ölçümler için Feng Ching Tsai'ye ve destek ve yardım için Bassereau grubunun mevcut ve eski üyelerine teşekkür ederiz. Proje, Agence Nationale de la Recherche (hibe BLAN-0057-01), Avrupa Komisyonu (NoE SoftComp), Université Pierre et Marie Curie (FED21, Dynamique des Systèmes Complexes'ten hibe) tarafından finanse edildi. M.G., Institut Curie Uluslararası Doktora Bursu, S.A. tarafından Fondation pour la Recherche Médicale, G.E.S.T., Avrupa Komisyonu'ndan Marie Curie Gelen Uluslararası Bursu ve Université Pierre et Marie Curie'den bir hibe ile desteklenmiştir. Yayın ücretleri Labex 'CelTisPhyBio' (ANR-11-LABX0038) tarafından karşılandı.

1. Çözüm hazırlanması <ol><li> 5 mM KCI, 1 mM HEPES (pH 7.4) veya tris (pH 7.5) ve 2 mM trehaloz içeren &quot;SUV tamponu&quot; 5 ml hazırlayın. 0.2 um&#39;lik bir şırınga filtresi ile filtre tampon ve -20 ° C&#39;de muhafaza edilebilir, 1 ml&#39;lik porsiyonlar halinde böler. NOT: reaktif ve aletler için ek ayrıntılar malzemeleri listesinde verilmiştir. </li><li> Film rehidrasyon sırasında GUV içini dolduracak Şef &#39;Büyüme Tampon&#39; 40 ml hazırlayın. &#39;Düşük bir tuzu büyümesi için, 5 mM KCI, 1 mM HEPES (pH 7.4) ya da 1 mM TRIS (pH 7.5) ve ~ 400 mM sukroz birleştirir. Bir fizyolojik tuz &quot;büyüme için, 100 mM KCI, 5 mM HEPES (pH 7.4) veya 5 mM Tris (pH 7.5), ve yaklaşık 200 mM sukroz birleştirir. </li><li> 100 mM KCI, 5 mM HEPES (pH 7.4) veya 5 mM Tris (pH 7.5), ve yaklaşık 200 mM glukoz birleştirerek deney odası içinde dış çözüm &#39;Gözlem Tamponu&#39; 40 ml hazırlayın. NOT: Bu tamponlar sadece exa vardırörnek olarak şunlar verilebilir. Diğer deneyler için tamponlar adapte tartışma bakın. </li><li> Bir Osmometer ile büyüme ve gözlem tamponlarının osmolarities ölçün. GUVs lize ya da gözlem odasına büyüme odasına transfer katlanmayacak olmayacak şekilde% 1 içinde eşleştirmek için sakaroz veya glukoz ilave et. Not: sükroz, 1 mM (13.7, 40 ml başına mg), glikoz (40 ml başına 7.2 mg) ilave edildikten bu konsantrasyon aralığında, içinde yaklaşık 1 mOsm sureti ile osmolaritenin arttırır. </li><li> 0.2 um&#39;lik bir filtre ile büyüme ve gözlem tamponlar filtre edin ve bakteriyel büyümeyi inhibe etmek için 4 ° C&#39;de saklayın. </li><li> GUVs, sopa yaymak ve kayma olmayacak şekilde deney odası yüzeyleri pasifleştirilmesi için gerekli bir 5 mg / ml p-kasein çözelti oluşturmak için 20 mM TRIS (pH 7.5) tampon maddesi içinde 10 ml p-kazein 50 mg eritin. Beta-kazeın tamamen 0.5 mi alikotlar içinde, filtre (0.2 um) o (4 ° C&#39;de birkaç saat kadar) içinde çözülür sonra hızlı dondurulmuş ve saklanabildiğiDaha sonra kullanılmak üzere -20 ° C&#39;de (4 ° C&#39;de saklandı çözülmüş alikolar tipik olarak 1 hafta için kullanılabilir). </li></ol> 2. SUV Hazırlık <ol><li> Hazırlayın ve daha önce yayınlanmış detaylı protokolü 28 aşağıdaki proteo-SUV hacimde dondurma. KvAP floresan (kütlece) 01:10 lipid oranının bir protein DPhPC SUV içine yeniden Alexa-488 maleimid (10 mg / ml) ile etiketlenmiş kullanın. Not: Yabani-tür KvAP hücre içi C-terminali (amino asit 247) yer alır monomer için bir sistein ihtiva eder. </li><li> Floresan, Lipid-tek SUV: NOT: nitril eldiven ve koruyucu gözlük takan bir davlumbaz altında kloroform tutun. Kloroform onları çözülür gibi herhangi bir plastik kullanmaktan kaçının. Kloroform çözeltileri Teflon kapaklı ile amber cam viyaller içinde depolanmış ve cam şırınga kullanılarak aktarılabilir. Öncesi ve lipidler pipetle sonra kloroform ile en az 5 ila 10 kat, tüm cam durulama özen gösterin. <ol><li> 100 ul hazırlayınTexas Red-DPHE çözeltisinin 8.2 ul (1 mg / ml ile DPhPC çözeltisi 100 ul kloroform (10 mg / ml) ile karıştırmak suretiyle kırmızı flöresanlı lipid, Teksas Kırmızısı-DHPE, 0.5 mol% ihtiva eden, 10 mg / ml DPhPC SUV 1.5 ml amber cam şişe içinde) metanol. </li><li> Şişe döndürülerek kimyasal başlığı içinde bir azot akışı altında lipitleri kurutun. Film kuru göründüğünde, kalan solventin çıkması için 3 saat vakum altında lipit yerleştirin. </li><li> Lipidler SUV tampon 100 ul ekleyin ve vorteks şiddetle hiçbir lipit flakon duvarlarına yapışmış kalana kadar ve çözüm eşit süt olduğunu. </li><li> SUV oluşturmak üzere, lipid çözeltisi sonikasyon. Ultrason çoğu hareketi neden kadar flakon konumunu ayarlayın ve flakon içine akış ve gereksiz çözüm ısıtmak için değil umurumda almak. Zaman olası çözüm saydam hale gelene kadar devam edin sonikasyon, ya da, şeffaf (uç sonication için 2-5 dakika, ~ banyo sonication için 20 dakika). </li><li> Aliquot SUV (örneğin 10 ul veya 20 ul) ve dondurma (-20 ° C) daha sonra kullanmak. NOT: Yağlar, özellikle doymamış lipidler, kolayca arıza. Argon altında, 20 ° C (veya 80 ° C) mağazası lipit çözeltiler ve 6 ay içinde kullanın. Lipid yıkım ürünleri İnce Tabaka Kromatografisi ile tespit edilebilir. </li></ol></li></ol> Electroformation 3. GUV Büyüme <ol><li> Electroformation odasını hazırlayın. <ol><li> Odası temizlenmiş değilse, pencereleri kaldırmak tüm dolgu macunu ve yağ silin, teller ayıklamak ve durulayın ve su ve dönüşümlü etanol (≥70%) kullanarak bir dokuya sahip odasına fırçalayın. </li><li> Iyi teller Rub aseton teller ve odasına daldırın ve 5 dakika sonikasyon. Bir doku tekrar aseton kullanarak her şeyi silin. 5 dakika boyunca etanol ve sonikasyon odasına koyun. </li><li> Deliklerden kabloları takarak odasına monte, ve döndürmek ve ar emin olmak için teller silinE temiz. Damıtılmış su içinde odasına koyun, 5 dakika boyunca ultrasonik titremeye maruz bırakılır ve bir azot ya da hava akımı ile bölme kurutun. </li></ol></li><li> SUV tamponu içinde 3 mg / ml SUV süspansiyonu 30 ul hazırlayın. , Protein ihtiva eden GUVs meydana proteolitik-SUV 8 ul birleştirmek için (DPhPC 10 mg / ml KvAP 01:10), flüoresan SUV 2 ul (10 mg / ml DPhPC,% 0.5 mol TexasRed-DPHE) ve SUV 20 ul 12.5 ve 0.1 mol% &#39;si TexasRed-DHPE: 1 lipid (kütle) oranında bir nihai protein için bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde tampon eklendi. Şiddetle çözüm karıştırın. <ol><li> Alternatif olarak, sadece flüoresan SUV 10 ul birleştirme, lipid sadece SUV ile protokolü uygulama (10 mg / DPhPC ve% 0.5 mol TexasRed-DPHE mi), 20 | il SUV tamponu ile yıkandı. </li></ol></li><li> SUV Çözüm yatırın. <ol><li> Teller üzerinde SUV çözümün küçük (&lt;0.2 ul) damlacıkları yatırmak için 2 ul pipet veya 5 ul cam şırınga kullanın. Yaklaşık çözeltisi 1 ul boyunca damla bir dizi meydana getirmek üzere gerekli olanTel 1 cm. Damla yeterince küçük ve yeterince onlar dokunmak veya sigorta olmadığını aralıklı emin olun. </li><li> Yatırılan SUV açık havada 30 dakika ~ için kurumasını bekleyin. Tüm damla yerleşti zaman lipit mevduat mikroskop ile gözlemlemek kolay, böylece, tel döndürün. NOT: SUV yeterince kuru değil yoksa büyüme tampon eklendiğinde protein zarar verebilir çok kurutma sırasında, onlar sadece, teller kapalı yıkayabilirsiniz. Hava nem kurutma oranı, kuruma süresi ve / veya hava nemi etkiler nedeniyle optimum sonuçlar 30 ayarlanabilir. teller üzerinde lipid filmi mikroskop altında görünür olmalıdır. </li></ol></li><li> Odasına birleştirin. <ol><li> Oda Bottom Seal: Bir boşluk olmadan yapışır, böylece bölme alt mühür karşı üç kuyu etrafında odasının tabanına vakum gres sürün ve nazikçe bir 40 mm x 22 mm lamel basın bir şırınga kullanın. Odasının kenarlarına (teller çıkış) ile Sealmacun sızdırmazlık. Üç kuyu özetleyen odasının üstünde vakum gres sürün. </li><li> Her kuyu üstüne dolana kadar yavaşça büyüme tampon ekleyin. Bu elektrotlar kapalı lipit filmi şerit gibi kuyularda herhangi bir çözüm hızlı hareket kaçının. </li><li> Alt lamel çıkarmak için özen, gres üzerine hafifçe üst kapak slayt basarak odasına kapatın. Üst kapak kayma kenarlarında tampon herhangi bir damla kaldırmak için bir doku kullanın. NOT: Bu lipit film, teller üzerinde kalmıştır onaylamak için mikroskop altında odasını incelemek için iyi bir zaman. </li></ol></li><li> İki timsah klipleri kullanarak telleri sinyal jeneratörü bağlayın. Düşük / yüksek tuz tamponu için kare (Vrms) ortalama frekans (düşük / yüksek tuz tamponu için 10 Hz / 500 Hz sinüs dalga) ayarlayın ve ölçmek ve 0.7 / 0.35 V kök teller arasındaki gerilimi ayarlamak için bir multimetre kullanın. Işıktan florofor korumak için alüminyum folyo ile bölmesi kapağı. T bırakınO GUVs düşük tuz tamponu için 2 ila 3 saat, ve yüksek tuz tamponu için 12 saat veya O / N için büyümeye. </li><li> Jeneratörden odasına ayırın ve dikkatlice GUV büyümesini değerlendirmek için bir ters mikroskop üzerine yerleştirin. Erken teller GUVs ayırmak olabilir kuyularda yavaş, istikrarlı hareketleri veya sıvı akışını kullanın. NOT: her yerde tellerin alt yarısında GUVs epifluoresan ile görülebilir ise tel kenarlarında GUVs, faz kontrast (40X uzun çalışma mesafesi objektif) genellikle görebilir. Hiçbir GUVs görünür ise, üst yüzeye bakmak için teller döndürmeyi deneyin. GUVs birkaç gün boyunca bir büyüme odasında 4 ° C&#39;de saklanabilir. </li></ol> Jel-destekli Şişme tarafından 4. GUV Büyüme <ol><li> Saf 10 ml su ile agaroz 100 mg karıştırılmasıyla bir% 1 agaroz çözeltisi 10 ml hazırlayın. O ~ 20 sn için 480 W mikrodalga yerleştirerek kaynar kadar ısıtın. Agaroz tamamen eriyene emin olmak için karıştırın. NOT: Çözelti4 ° C&#39;de saklandı ve gerektiğinde yeniden ısıtılabilir. </li><li> Plazma-temiz (hava plazma) agaroz çözüm üzerinde güzel yayılır böylece 1 dakika için bir kapak-slayt. Plazma temizleme etkisi çabuk giyer sonraki 15 dakika içinde kapak-slaytlar kullanın. </li><li> Bütün yüzeyi ıslatır çözelti, böylece, her 22 x 22 mm, 2 slayt sıcak agaroz çözeltisi 200 ul uygulanır. Dikey slayt eğin ve aşırı sıvı kaldırmak ve slayt üzerinde agaroz sadece ince bir tabaka pürüzsüz bırakmak için bir dokuya alt kenarı dokunun. </li><li> 60 ° C&#39;de bir sıcak plaka ya da fırın slayt yerleştirin ve en az 30 dakika kurumaya bırakın. Agaroz filmi gözle zor görülür. Slaytlar RT soğumaya sonra, hemen bunları kullanmak veya 4 ° C&#39;de kapalı bir kapta kadar bir hafta saklayabilirsiniz. </li><li> Standart 3,5 cm Petri kabındaki agaroz kaplı lamel yerleştirin. </li><li> Bölüm 3.2&#39;de SUV çözelti hazırlanır ve uygulanır ~ SUV çözeltisi (3 mg / ml lipid) içinde 15 ul~ Agaroz yüzeyine 30 çok küçük damla yavaşça. Çok agaroz katmanı deforme etmemeye dikkat edin. </li><li> Yaklaşık 10-15 dakika boyunca hafif bir azot akımı altında slayt yerleştirin ve damlacıklar, kuru olarak gözle tampon buharlaşma takip edin. </li><li> En kısa sürede SUV kurutulmuş gibi, slayt yüzeyini kapsayacak şekilde büyüme tampon ekleyin. Küçük 3,5 cm Petri kabı kullanımı tampon ~ 1 ml için. </li><li> Şişme, 30 dakika daha devam ~ ve daha sonra faz-kontrast veya farklılık belirleyici kontrast (DIC), bir ters mikroskop kullanılarak odasında GUVs büyümesini incelemek için izin verir. NOT: Epifloresans gözlem, jel ve agaroz otomatik floresanstaki fluorophores güçlü bir arka plan zordur. </li></ol> 5. Hasat ve Gözlem GUVs <ol><li> Gözlem odasını (örneğin, küçük Petri veya cam lamel) GUVs batmıyor, böylece yayıldı ve oda altta patlama pasifleştiren. Cham Kapakber beta-kazeın çözeltisi ile alt, 5 dakika boyunca inkübe hava ya da bir azot akımı ile kuru saf su ile kazein solüsyonu çalkalamak ve son gözlem tampon eklemek (örneğin, ~ küçük bir petri 5 mm derinlik). </li><li> GUVs Hasat. Açılış büyük (~ 2 mm çapında) yani 100 ul pipet uçları sonuna kesin ve kolayca GUVs yok edebilir pipetleme kesme stres gibi yavaş yavaş talip. <ol><li> Elektro-oluşturulmuş GUVs için, yavaşça üst lamel kaldırarak büyüme odasına açın. GUVs ayırmak için tel boyunca pipet hareket ederken ~ her tel ve aspirat üzerinde doğrudan 50 ul pipet yerleştirin. NOT: Bu tel &quot;diğer tarafında&quot; GUVs toplamak için tel döndürmek için yardımcı olabilir. </li><li> &quot;Jel destekli şişme&quot; GUVs için, ilk GUVs lamel yüzeyinden ayırmak yardımcı olmak için birkaç kez petri yan dokunun. S ise 50 ul sadece lamel ve aspirat üzerinde pipet yerleştiringeri yüzeyi üzerinde ucu ulling. Doğrudan kadar 1 hafta boyunca 4 ° C&#39;de 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde bir gözlem odasına veya saklamak için hasat GUVs aktarın. </li></ol></li><li> , Bir ters mikroskop gözlem odasına yerleştirin gözlem odasına GUVs ekleyebilir ve GUVs odası altındaki yerleşmek için bir kaç dakika bekleyin. </li><li> Hızla pürüzsüz, küresel (&#39;kusur ücretsiz&#39;) &quot;GUV adayları&quot; bulmak için faz kontrast veya DIC ile odasına Anketi. Içinde yuvalanmış herhangi birini içeren küçük lipozomlar dışlamak için Epifloresans her &quot;GUV aday&quot; inceleyin. Son olarak, lipit floresan yoğunluğu tek bir zar (yani, tek katmanlı) ile homojen ve uyumlu olduğunu kontrol edin. NOT: faz kontrast ya da DIC görüntüler tek katmanlı görünür yüzden bazı bilamellar (ya da çok-tabakalı) kesecikler içinde zarlar çözülmesi için birbirine çok yakındır. Bununla birlikte, bu nesneleri, fiili unilame ayırt edilebilirİki kez (veya daha fazla) parlak lipit floresan tarafından llar GUVs. </li></ol> 6. Patch-sıkma GUVs <ol><li> Pipet çektirmesi için önerilen programı kullanarak standart borosilikat kılcal cam bir 1-2 mikron ucu çapı ile yama pipetler olun. NOT: yangın parlatma gibi özel tedaviler gerekli değildir, ve pipetler bir kapalı bir kutuda muhafaza edilir, eğer bunlar çekme sonucu birkaç gün sonra da kullanılabilir. </li><li> GUVs, uygun odası yüzeyleri üzerine yayıldı ve kopma yok olmasını sağlamak için bir beta-kazeın çözeltisi (5 mg / ml) ile inkübe edilerek bölmeyi pasifleştiren. 5 dakika sonra kazein durulayın. </li><li> , Toprak elektrot yerleştirin gözlem tamponu ile odasını doldurmak, adım 5.2 ve 5.3 açıklandığı gibi GUV süspansiyonu 10 ul transferi ve GUVs altındaki yerleşmek için bir kaç dakika bekleyin. </li><li> Solüsyon (gözlem tampon ya da başka bir iso-ozmotik çözelti) ile taze bir yama pipet doldurun veyama-kelepçe amplifikatör headstage üzerine monte edin. </li><li> Odasından aracılığıyla arama bölümünde 5.4 açıklandığı gibi bir &quot;hatasız&quot; Şef bulun ve floresan proteini içerdiğini kontrol etmek. </li><li> Sabit pozitif basınç uygulayın (&gt; 100 Pa, ya da kabaca 1 cm manometre H 2 O) temiz iç yama pipet tutmak ve odasına yama pipet eklemek için. , Görüş alanı içine yama pipet getir / ölçmek ofset ve direnç pipet gerilimini telafi ve ucu temiz olduğunu teyit floresan aydınlatma altında pipet incelemek için test darbeleri uygulayın. </li><li> GUV doğru yama pipet getir, ve gerekirse, aynı anda &quot;run away&quot; patron yapmaz yama pipet dışarıya doğru akışı, böylece pozitif basıncı azaltmak. Yama pipet GUV yakın olduğunda, yama pipet karşı patron çekmek için (5 cm H 2 O kadar) negatif basınç uygulayın. Olarak direnç Monitor &quot;; GUV membran dil &quot;yama pipet ve gigaseal formları girer. </li><li> Bir gigaseal formu olmasaydı, odasından yama pipet kaldırmak ve 6.4 adıma dönün. Membran yama gigaseal kurdu, ancak GUV pipet bağlı kalırsa, GUV sıyrılmış patlama patron odası dibine, ya da kısaca çözümün dışına pipet hareket ettirerek yama tüketim. </li><li> Iç-dış zar yama GUV çıkarıldı ve gigaseal stabil olmuştur, test darbeleri kapatmak ve Şekil 13&#39;te gösterilen gibi bir voltaj protokolü uygulanır. NOT: Şekil 13 Geçerli yama-elektrot akan &quot;olumlu&quot; olduğu bir iç-out yama için standart elektrofizyolojik kuralı izler ve V = V banyosu - V pipet. Negatif potansiyelde yama tutarak (örneğin, V = -100 mV) dinlenme durumunda ~ 30 sn yerleri KvAP için adımlar ise (10Daha olumlu potansiyeller (örneğin, V = 100 mV) sonra iletken (yani, açık) aktif devletler içine sürebilirsin 5 sn 0 msn). </li><li> Bir membran yama üzerinde ölçümler bittikten sonra, bir zap veya basınç darbesi ile yama kırmak ve yama elektrot ofset gerilimi sürüklendi olmadığını kontrol ediniz. Odasından yama pipet çıkarın ve 6.4 adıma dönmek. </li></ol>

<ol><li>Schwille, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bottom-Up+Synthetic+Biology%3A+Engineering+in+a+Tinkerer%E2%80%99s+World%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bottom-Up Synthetic Biology: Engineering in a Tinkerer’s World.</a> Science. 333 (6047), 1252-1254 (2011).</li>
<li>Aimon, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+Shape+Modulates+Transmembrane+Protein+Distribution%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Membrane Shape Modulates Transmembrane Protein Distribution.</a> Developmental Cell. 28 (2), 212-218 (2014).</li>
<li>Roux, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+curvature+controls+dynamin+polymerization%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Membrane curvature controls dynamin polymerization.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (9), 4141-4146 (2010).</li>
<li>Domanov, Y. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mobility+in+geometrically+confined+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Mobility in geometrically confined membranes.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (31), 12605(2011).</li>
<li>Sorre, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Curvature-driven+lipid+sorting+needs+proximity+to+a+demixing+point+and+is+aided+by+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Curvature-driven lipid sorting needs proximity to a demixing point and is aided by proteins.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 106 (14), 5622-5626 (2009).</li>
<li>Faris, M. D. E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+Tension+Lowering+Induced+by+Protein+Activity%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Membrane Tension Lowering Induced by Protein Activity.</a> Physical Review Letters. 102 (3), 038102(2009).</li>
<li>Streicher, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrin+reconstituted+in+GUVs%3A+A+biomimetic+system+to+study+initial+steps+of+cell+spreading%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta+%28BBA%29+-+Biomembranes%22%5BJournal%5D)">Integrin reconstituted in GUVs: A biomimetic system to study initial steps of cell spreading.</a> Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes. 1788 (10), 2291-2300 (2009).</li>
<li>Walde, P., Cosentino, K., Engel, H., Stano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+Vesicles%3A+Preparations+and+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Giant Vesicles: Preparations and Applications.</a> ChemBioChem. 11 (7), 848-865 (2010).</li>
<li>Liu, A. P., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+under+construction%3A+in+vitro+reconstitution+of+cellular+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Biology under construction: in vitro reconstitution of cellular function.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (9), 644-650 (2009).</li>
<li>Sens, P., Johannes, L., Bassereau, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysical+approaches+to+protein-induced+membrane+deformations+in+trafficking%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Biophysical approaches to protein-induced membrane deformations in trafficking.</a> Current Opinion in Cell Biology. 20 (4), 476-482 (2008).</li>
<li>Pautot, S., Frisken, B. J., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+Unilamellar+Vesicles+Using+an+Inverted+Emulsion%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Production of Unilamellar Vesicles Using an Inverted Emulsion.</a> Langmuir. 19 (7), 2870-2879 (2003).</li>
<li>Stachowiak, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unilamellar+vesicle+formation+and+encapsulation+by+microfluidic+jetting%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Unilamellar vesicle formation and encapsulation by microfluidic jetting.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (12), 4697-4702 (2008).</li>
<li>Reeves, J. P., Dowben, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+properties+of+thin-walled+phospholipid+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+Physiology%22%5BJournal%5D)">Formation and properties of thin-walled phospholipid vesicles.</a> Journal of Cellular Physiology. 73 (1), 49-60 (1969).</li>
<li>Angelova, M. I., Soléau, S., Méléard, P., Faucon, F., Bothorel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+giant+vesicles+by+external+AC+electric+fields.+Kinetics+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Colloid+and+Interface+Science+VI%22%5BJournal%5D)">Preparation of giant vesicles by external AC electric fields. Kinetics and applications.</a> Trends in Colloid and Interface Science VI. 89, 161-176 (1992).</li>
<li>Bagatolli, L. A., Pott, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+Unilamellar+Vesicle+Electroformation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Giant Unilamellar Vesicle Electroformation.</a> Methods in Enzymology. 465, 161-176 (2009).</li>
<li>Horger, K. S., Estes, D. J., Capone, R., Mayer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Films+of+Agarose+Enable+Rapid+Formation+of+Giant+Liposomes+in%5BTitle%5D)+AND+%22Solutions+of+Physiologic+Ionic+Strength.+Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Films of Agarose Enable Rapid Formation of Giant Liposomes in.</a> Solutions of Physiologic Ionic Strength. Journal of the American Chemical Society. 131 (5), 1810-1819 (2009).</li>
<li>Campillo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unexpected+Membrane+Dynamics+Unveiled+by+Membrane+Nanotube+Extrusion%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Unexpected Membrane Dynamics Unveiled by Membrane Nanotube Extrusion.</a> Biophysical Journal. 104 (6), 1248-1256 (2013).</li>
<li>Kwok, R., Evans, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermoelasticity+of+large+lecithin+bilayer+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Thermoelasticity of large lecithin bilayer vesicles.</a> Biophysical Journal. 35 (3), 637-652 (1981).</li>
<li>Mathivet, L., Cribier, S., Devaux, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shape+change+and+physical+properties+of+giant+phospholipid+vesicles+prepared+in+the+presence+of+an+AC+electric+field%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Shape change and physical properties of giant phospholipid vesicles prepared in the presence of an AC electric field.</a> Biophysical Journal. 70 (3), 1112-1121 (1996).</li>
<li>Weinberger, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gel-Assisted+Formation+of+Giant+Unilamellar+Vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Gel-Assisted Formation of Giant Unilamellar Vesicles.</a> Biophysical Journal. 105 (1), 154-164 (2013).</li>
<li>Dezi, M., Di Cicco, A., Bassereau, P., Levy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detergent-mediated+incorporation+of+transmembrane+proteins+in+giant+unilamellar+vesicles+with+controlled+physiological+contents%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Detergent-mediated incorporation of transmembrane proteins in giant unilamellar vesicles with controlled physiological contents.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (18), 7276-7281 (2013).</li>
<li>Kahya, N., Pecheur, E. I., de Boeij, W. P., Wiersma, D. A., Hoekstra, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+membrane+proteins+into+giant+unilamellar+vesicles+via+peptide-induced+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of membrane proteins into giant unilamellar vesicles via peptide-induced fusion.</a> Biophysical Journal. 81 (3), 1464-1474 (2001).</li>
<li>Doeven, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution%2C+lateral+mobility+and+function+of+membrane+proteins+incorporated+into+giant+unilamellar+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Distribution, lateral mobility and function of membrane proteins incorporated into giant unilamellar vesicles.</a> Biophysical Journal. 88 (2), 1134-1142 (2005).</li>
<li>Girard, P., Prost, J., Bassereau, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Passive+or+Active+Fluctuations+in+Membranes+Containing+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Passive or Active Fluctuations in Membranes Containing Proteins.</a> Physical Review Letters. 94 (8), 088102(2005).</li>
<li>Betaneli, V., Petrov, E. P., Schwille, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Role+of+Lipids+in+VDAC+Oligomerization%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">The Role of Lipids in VDAC Oligomerization.</a> Biophysical Journal. 102 (3), 523-531 (2012).</li>
<li>Ruta, V., Jiang, Y., Lee, A., Chen, J., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+an+archaebacterial+voltage-dependent+K%2B+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of an archaebacterial voltage-dependent K+ channel.</a> Nature. 422 (6928), 180-185 (2003).</li>
<li>Jiang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((X-ray+structure+of+a+voltage-dependent+K%2B+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">X-ray structure of a voltage-dependent K+ channel.</a> Nature. 423 (6935), 33-41 (2003).</li>
<li>Aimon, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+Reconstitution+of+a+Voltage-Gated+Potassium+Channel+in+Giant+Unilamellar+Vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Functional Reconstitution of a Voltage-Gated Potassium Channel in Giant Unilamellar Vesicles.</a> PLoS ONE. 6 (10), e25529(2011).</li>
<li>Lee, S., Zheng, H., Shi, L., Jiang, Q. -X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+a+Kv+Channel+into+Lipid+Membranes+for+Structural+and+Functional+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of a Kv Channel into Lipid Membranes for Structural and Functional Studies.</a> Journal of Visualized Experiments. (77), (2013).</li>
<li>Baykal-Caglar, E., Hassan-Zadeh, E., Saremi, B., Huang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+giant+unilamellar+vesicles+from+damp+lipid+film+for+better+lipid+compositional+uniformity%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta+%28BBA%29+-+Biomembranes%22%5BJournal%5D)">Preparation of giant unilamellar vesicles from damp lipid film for better lipid compositional uniformity.</a> Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes. 1818 (11), 2598-2604 (2012).</li>
<li>Suchyna, T. M., Markin, V. S., Sachs, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysics+and+Structure+of+the+Patch+and+the+Gigaseal%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Biophysics and Structure of the Patch and the Gigaseal.</a> Biophysical Journal. 97 (3), 738-747 (2009).</li>
<li>Hille, B. Ion Channels of Excitable Membranes. , Sinauer Associates, Inc. (2001).</li>
<li>Finol-Urdaneta, R. K., McArthur, J. R., Juranka, P. F., French, R. J., Morris, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+KvAP+unitary+conductance+and+gating+by+1-alkanols+and+other+surface+active+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Modulation of KvAP unitary conductance and gating by 1-alkanols and other surface active agents.</a> Biophysical journal. 98 (5), 762-772 (2010).</li>
<li>Schmidt, D., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-dependent+K%2B+channel+gating+and+voltage+sensor+toxin+sensitivity+depend+on+the+mechanical+state+of+the+lipid+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Voltage-dependent K+ channel gating and voltage sensor toxin sensitivity depend on the mechanical state of the lipid membrane.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (49), 19276-19281 (2008).</li>
<li>Quemeneur, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shape+matters+in+protein+mobility+within+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Shape matters in protein mobility within membranes.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2014).</li>
<li>Parc, A. L., Leonil, J., Chanat, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%CE%B1S1-casein%2C+which+is+essential+for+efficient+ER-to-Golgi+casein+transport%2C+is+also+present+in+a+tightly+membrane-associated+form%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">αS1-casein, which is essential for efficient ER-to-Golgi casein transport, is also present in a tightly membrane-associated form.</a> BMC Cell Biology. 11 (1), 1-15 (2010).</li>
<li>Garten, M., Toombes, G. E. S., Aimon, S., Bassereau, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+Voltage+Dependent+Proteins+with+Giant+Unilamellar+Vesicles+in+a+%E2%80%9CWhole+Cell%E2%80%9D+Configuration%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Studying Voltage Dependent Proteins with Giant Unilamellar Vesicles in a “Whole Cell” Configuration.</a> Biophysical Journal. 104 (2), 466a(2013).</li>
<li>Crowe, L. M., Reid, D. S., Crowe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+trehalose+special+for+preserving+dry+biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Is trehalose special for preserving dry biomaterials.</a> Biophysical Journal. 71 (4), 2087-2093 (1996).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Biomimetic model sistemler, protein ve membran özellikleri ve etkileşimler üzerinde çalışmak için önemli bir araçtır. BLMs veya desteklenen lipid zarlar gibi diğer sulandırılmış sistemlerle karşılaştırıldığında, GUV sistemlerini önemli membran bileşimi, gerilim ve geometri kontrolü yanı sıra gerçekten olmanın petrol-ücretsiz dahil olmak üzere mevcut birçok fırsatlar tabanlı. Bununla birlikte, GUVs içine, örneğin KvAP transmembran proteinleri içeren lipid sadece GUVs için bilinen protokoller önemli uyarlamaları gerektirm...

Canlı sistemleri yöneten fiziksel ilkeleri incelerken, aşağıdan yukarıya yaklaşımlar bir Deneyciler sistemi kompozisyon ve kolayca hücre tabanlı sistemler 1 manipüle olmayan diğer parametreleri kontrol etmenizi sağlar. 10 - bunlar mikroskop çalışmaları ve mikromanüplasyon 8 için uygun olarak 7 - membran bazlı işlemler için, Dev tek katmanlı veziküller (GUVs, çap ~ 1-100 um) çok yararlı biomimetik sistemi 2 olduğu kanıtlanmıştır. GUVs üretmek için birçok farklı protokoller olmakla birlikte, en fazla iki kategoriye ayrılır - 16 - bazlı emülsiyon, bir lipit filme 13 rehidrasyon dayalı 11,12 ve teknikleri yaklaşır. Emülsiyon bazlı yöntemlerde, GUV membran iç ve dış bildiriler su / yağ ara yüzlerinde lipit mono tabakaları arka arkaya monte edilir. Bu yaklaşım ile çözülebilir proteinlerin kapsüllenmesinde için idealdirGUVs olarak ve asimetrik yaprakçık lipit bileşimiyle GUVs oluşturulması için. Bununla birlikte, emülsiyonlar meydana GUVs zarın mekanik özellikleri 17 değiştirmek çözücünün izlerini tutabilen ve bu yaklaşım, trans-membran proteini yeniden için özellikle çok uygundur değildir. Film rehidrasyon yöntemleri (dehidratasyon), kurutma zarların çoklu katmanlı yığını oluşturmak için birçok lipit karışımları neden olduğu gerçeğine dayanır. Bu yığın daha sonra sulu bir tampon maddesi ile temas içinde yerleştirilir, yığındaki membranlar aralarında ve yığın yüzeyinde ayrı çözücü akışı hareket eder, ayrı ayrı membranlar GUVs 13,18 (aynı zamanda, gerçek bir hayvanat bahçesi oluşturmak üzere ayırabilirisiniz Diğer lipidik nesneler). Bununla birlikte, daha iyi bir tampon ve lipid bileşimleri için, bu klasik &quot;kendiliğinden şişme&quot; yöntemi hatasız GUVs nispeten düşük bir verime sahiptir. Hatasız GUVs verimini artırmak için yaygın olarak kullanılan bir yöntemdir &quot;electroformation olduğunuBir alternatif akım (AC) alanı film rehidrasyon esnasında uygulandığı 221 ;,. Mekanizma henüz tam olarak anlaşılamamış olsa da, &quot;electroformation&quot; Muhteşem GUV verimleri verebilir (&gt; olumlu koşullarda% 90), düşük tuz konsantrasyonu tamponlar için (&lt;5 mM) 14,19, ve hatta (~ 100 mM) fizyolojik tamponlar çalışabilir kullanarak bir yüksek frekans (10 Hz karşı 500 Hz), AC alanı ve platin elektrotları 15. Hatasız GUVs verimini artırmak için alternatif bir yaklaşım, lipid çözeltisi (örneğin, cam, PTFE), alt-tabakalar, klasik &quot;bir anda şişme kullanılan pasif değil, bir polimerik jel alt-tabaka üzerine biriktirilmektedir,&quot; jel destekli şişme &quot;bir &quot;. Elde edilen yağ / jel ince tabaka rehidrate zaman, GUVs bile hızlı bir fizyolojik tampon 16,20 için oluşabilir. Tüm bu yöntemler, örneğin zara bağlı olayları incelemek için kullanılabilir lipid tek GUVs üretebilirçözünür proteinler ve zarlar arasındaki etkileşimi kapsamaktadır. Bununla birlikte, GUVs bir trans-membran proteini birleştirmek için önemli değişiklikler proteinin yeniden oluşturma işlemi boyunca işlevsel bir durumda kalmasını sağlamak için gereklidir. Organik çözücüler (örneğin kloroform, sikloheksan) lipidlerin çözeltileri lipit film üretmek için idealdir birlikte, hidrofobik zar-ötesi domeni bir lipid iki-tabaka içinde gömülü ya da bir deterjan misel içine alındığında, trans-membran proteinleri tipik olarak, sadece kararlı olan ( Örneğin, protein saflaştırma sırasında). Bu nedenle, bir yeniden başlangıç ​​malzemesi tipik olarak deterjan çıkarılmasıyla oluşan doğal membran, bir deterjan çözeltisi içinde saflaştırılmış proteini ya da küçük tek lamelli protein içeren veziküller (proteolitik-SUV) ve / veya çok-lamelli veziküller (proteolitik-MLV&#39;ler) &#39;dir lipidlerin mevcudiyeti. GUVs içine bu zar proteinleri dahil çoğu yöntemleri üç kategoriye ayrılır. Doğrudan insertioN: deterjan içinde süspansiyon haline trans-membran proteini önceden oluşturulmuş, lipid sadece hafif deterjan çözündürülmüş GUVs ile karıştırılır ve daha sonra deterjan Biobeads 21 kullanılarak kaldırılır. Kavramsal olarak basit olmakla birlikte, bu yöntem çok yüksek bir deterjan konsantrasyonunun bir konsantrasyon proteini açığa veya agregat neden olabilir çok düşük ise GUVs eritmesi olarak, deterjan konsantrasyonunun hassas kontrolünü gerektirir. GUV / Proteo SUV Füzyon: proteolitik-SUV Protein, önceden oluşturulmuş, lipid sadece GUVs ile birleştirilir ve füzyon özel füzyojenik peptidler 22 veya deterjan 21 ile kolaylaştırılır. Tipik füzyon ölçüde düşük protein yoğunluğu ile GUVs lider kısıtlıdır. Dehidrasyon / Rehidrasyon: bir protein ihtiva eden lipid filmi kısmi bir proteolitik-SUV dehidrasyon (ya da proteolitik-MLV) çözeltisi ve GUVs oluşturduğu sonra saf bir lipit film için büyütülür. bariz zorluk kısmi dehydrati sırasında protein korumak25 - Adım 23, ancak yöntemi başarılı bir şekilde GUVs 7,23 içine örneğin bakteriyorodopsin, Kalsiyum-ATPaz, integrin ve SSVD&#39;de trans-membran proteinleri oluşturmak için kullanılan edilmiştir. Bu makalede, hiper-termofilik Archaea, Aeropyrum pernix voltaj kapılı potasyum kanal KvAP içeren GUVs için dehidratasyon / rehidrasyon protokollerini tasvir eder. KvAP ökaryotik voltaja bağımlı potasyum kanalları 26 homoloji derecesi yüksek ve bilinen bir kristal yapıya sahip olan 27 , gerilim yolluk mekanizması okuyan için iyi bir modeli yapma. Proteolitik-SUV üretimi, daha önce detaylı bir şekilde tarif edilmiş ve bu yazının 26,28,29 bir parçası değildir edilmiştir. Önemli olarak, KvAP proteolitik-SUV da uzun bir süre (&gt; 1 yıl), -80 ° C&#39;de küçük (örneğin, 10 ul) bölümler halinde saklanabilir gibi her GUV hazırlanması için imal edilmesi gerekmez. Electroformationya da jel destekli şişme sonra KvAP proteolitik-SUV&#39;lerden GUVs büyütmek için kullanılan (ya da proteolitik-MLV&#39;ler) olabilir. electroformation protokolü için temel aşamalar, Şekil 1 &#39;de tasvir edilmiştir. Protein içeren SUV solüsyonu damlalar (Şekil 2&#39;de gösterilmiştir) platin tellerden birikirler. SUV süspansiyonun kısmi dehidrasyon SUV füzyon yoluyla bir lipit, protein film tabakasının oluşmasına neden olur. Rehidrasyon esnasında, bir AC alanı GUVs delamine oluşturmak üzere, lipid tabakaları yardımcı olmak için elektrotlara uygulanır. &quot;Düşük tuz&quot; kullanılırken 10 Hz alanı iyi çalışıyor (&lt;5 mM) rehidrasyon tampon 28 ve GUVs birkaç saat sürebilir büyümeye. Buna karşılık, fizyolojik tamponlar düşük gerilim, 500 Hz AC alanı ile iyi çalışır, ancak gerektirir (tuz ~ 100 mM içeren) bir uzun (~ 12 saat) dönemi 15 şişlik. Bu yöntem İTO 24 slaytlar kullanarak bir önceki protokol dayalı, ama özel bir odası cont kullanırŞekil 2&#39;de görüldüğü gibi iki platin tel, geri kalan (basit tasarım detayları ve önerileriniz için tartışma bakın, odaları doğaçlama). Şekil 3, jel destekli şişme yöntemi göstermektedir. Protokol, fizyolojik tuz konsantrasyonlarına sahip tampon maddeler ile iyi çalışır hızlı ve daha homojen olan bir protein dağılımı GUVs üretir. Ancak, izole, görünüşe göre hatasız GUVs verimi (yani, GUV membran üniforma optik uzunluk-ölçeklerde ve herhangi bir nesne içine değil) bu yama-kelepçe ve mikro-manipülasyon deneyler için yeterli sayıda sağlamasına rağmen, düşük . Bu yöntem, lipid sadece GUVs 16 üretmek electroformation yöntemine göre daha az özel ekipman gerektirir agaroz jel kullanılarak bir protokole dayanmaktadır. floresan mikroskobu ile GUVs karakterizasyonu standart yama-kelepçe set-up kullanarak prosedürler yanı sıra, açıklanan&quot;inside-out&quot; in KvAP aktivitesini ölçmek membran yamaları çıkarıldı. Büyüyen protein ihtiva eden GUVs lipid tek GUVs daha zor olabilir. Özellikle, son GUV verimi membran yığını oluşturmak için tam olarak nasıl SUV çözümü yatırılır ve susuz üzerinde hassas güvenebilirsiniz. GUVs herhangi bir önceki deneyim, bir kimse için, ilk membran film, organik bir çözücü lipitleri biriktirilmesiyle oluşturulduğu bilinen bir protokol 15,16 aşağıdaki lipid tek GUVs büyümeye yardımcı olabilir. Geleneksel protokol iyi çalışıyor sonra, SUV biriktirme ve kısmi dehidratasyon sonra yeni bir lipit kompozisyonu için protokol ayarlarken de çok yararlı olan lipit sadece SUV&#39;lar kullanılarak hakim olabilir. GUVs lipid tek SUV ile ilgili güvenilir büyüdüklerinde, bu proteolitik-SUV protein ihtiva eden GUVs üretmek için sadece küçük bir adım daha sonra.

<table><tbody><tr><td>DPhPC (1,2-difitanoil-sn-glisero-3-fosfokolin)</td><td>Avanti Polar Lipidler&nbsp;</td><td>850356P</td><td></td></tr><tr><td>Yumurta PC L-&alfa;-fosfatidilkolin (Yumurta, Tavuk)&nbsp;</td><td>Avanti Polar Lipidler&nbsp;</td><td>840051P</td><td></td></tr><tr><td>Yumurta PA L-&alfa;-fosfatidik asit (Yumurta, Tavuk)</td><td>Avanti Polar Lipidler&nbsp;</td><td>840101P</td><td></td></tr><tr><td>18:1 (&Delta; 9- cis) PC (DOPC) 1,2-dioleoil- sn-glisero-3-fosfokolin</td><td>Avanti Polar Lipidler&nbsp;</td><td>850375P</td><td></td></tr><tr><td>Kolesterol (küçükbaş hayvan yünü, >%98)&nbsp;</td><td>Avanti Polar Lipidler&nbsp;</td><td>700000P</td><td></td></tr><tr><td>TRed-DHPE</td><td>Invirtogen</td><td>T-1395MP</td><td>etiketli lipid</td></tr><tr><td>BPTR-Seramid</td><td>Invirtogen</td><td>D-7540&nbsp;</td><td>etiketli lipid</td></tr><tr><td>Koloroform</td><td>VWR</td><td>22711.290</td><td>AnalaR Normapur</td></tr><tr><td>Aseton VWR</td><td></td><td>20066.296</td><td>AnalaR Normapur</td></tr><tr><td>Etanol</td><td>VWR</td><td>20821.330</td><td>AnalaR Normapur</td></tr><tr><td>Kimwipe</td><td>Kimtech</td><td>7552</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton şırıngaları&nbsp;</td><td>Hamilton Bonaduz AG</td><td></td><td>çeşitli</td></tr><tr><td>Amber şişeler ve Teflon kaplar</td><td>Sigma</td><td>SU860083 ve SU860076</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>VWR</td><td>291-1214</td><td></td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj tüpü</td><td>Eppendorf</td><td></td><td>çeşitli</td></tr><tr><td>Agaroz</td><td>Euromex</td><td>LM3 (1670-B, Tg 25.7C, Tm 64C)</td><td></td></tr> <tr><td>Sükroz</td><td>Sigma</td><td>84097-1kg</td><td></td></tr><tr><td>Glikoz&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G8270-1kg</td><td></td></tr><tr><td>Trehalose</td><td>Sigma</td><td>T9531-25G</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P9333-1kg</td><td></td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Sigma</td><td>H3375-100G</td><td></td></tr><tr><td>TRIS</td><td>Euromex</td><td>EU0011-A</td><td></td></tr><tr><td>Ozmometre</td><td>Wescor</td><td>Vapro</td><td></td></tr><tr><td>pH metre</td><td>Schott aletleri</td><td>Lab850</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Elmasonic</td><td>S 180 H</td><td></td></tr><tr><td>Şırınga filtresi 0.2 ve mikro; m</td><td>Sartorius steim</td><td>Minisart 16532</td><td></td></tr><tr><td>Fonksiyon üreteci</td><td>TTi</td><td>TG315</td><td></td></tr><tr><td>Platin teller</td><td>Goodfellow</td><td>LS413074</td><td>99.99+%, d = 0.5 mm</td></tr><tr><td>Politetrafloroetilen</td><td>Goodfellow</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dow Corning 'yüksek vakumlu gres'VWR</td><td></td> <td>1597418</td><td></td></tr><tr><td>sızdırmazlık macunu</td><td>Vitrex medical A/S, Danimarka</td><td>REF</td><td>140014 Sigillum</td></tr><tr><td>Mum Kapak kızakları 22 x 40 mm No1.5</td><td>VWR</td><td>631-0136</td><td></td></tr><tr><td>Kapak kızakları 22 x 22 mm No1.5</td><td>VWR&nbsp;</td><td>631-0125</td><td></td></tr><tr><td>Plazma temizleyici</td><td>Harrick</td><td>PDC-32G</td><td>airplasma, 'yüksek'</td></tr> <tr><td>ayarPetri kapları</td><td>Falcon BD</td><td>REF 353001</td><td>3,5 cm x 1 cm</td></tr><tr><td>yama kelepçesi amplifikatörü</td><td>Akson aletleri</td><td>Multiclamp700B</td><td></td></tr><tr><td>DAQ Kartı</td><td>Ulusal Aletler</td><td>PCI-6221</td><td></td></tr><tr><td>Labview</td><td>Ulusal Aletler</td><td>versiyonu 8.6</td><td></td></tr><tr><td>Cam pipetler boro silikat OD 1&nbsp; mm ID 0.58&nbsp; mm</td><td>Harvard Aparatı</td><td>GC100-15</td><td></td></tr><tr><td>Elektrot tutucu</td><td>Warner Instruments&nbsp;</td><td>Q45W-T10P</td><td></td></tr><tr><td>Mikromanipülatör</td><td>Sutter&nbsp;</td><td>MP-285</td><td></td></tr><tr><td>Pipet çektirme</td><td>Sutter&nbsp;</td><td>P-2000&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Kamera</td><td>ProSilica&nbsp;</td><td>GC1380</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss mikroskobu</td><td>Zeiss</td><td>Axiovert 135</td><td></td></tr><tr><td>Objektif</td><td>Zeiss</td><td></td><td>40X uzun çalışma mesafesi, Faz kontrastı</td></tr><tr><td>Objektif&nbsp;</td><td>Zeiss</td><td></td><td>100X Plan-Apochromat NA 1.3</td></tr><tr><td>Filtre Seti GFP (Alexa-488 için)</td><td>Horiba</td><td>XF100-3</td><td></td></tr><tr><td>Filtre Seti Cy3 (TexasRed için)</td><td>Horiba</td><td>XF101-2</td><td></td></tr><tr><td>beta-kazein</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>C6905-1G</td><td></td></tr><tr><td>Konfokal mikroskop</td><td>Nikon Eclipse TE 2000-E</td><td></td><td>D-Eclipse C1 konfokal kafa</td></tr><tr><td>Objektif</td><td>Nikon</td><td></td><td>Plan Fluor 100X NA 1.3</td></tr><tr>Görüntü <td>işleme ve mevcut izlerin analizi için</td> <td>Matlab</td><td>Mathworks</td><td></td></tr></tbody></table>

bir transmembran proteinin yeniden oluşturulması, mikroskop ve yama kelepçe Çalışmaları dev tek-katmanlı keseler içine voltaj kapılı iyon kanalı, kvap,

Reconstitution of a Transmembrane Protein, the Voltage-gated Ion Channel, KvAP, into Giant Unilamellar Vesicles for Microscopy and Patch Clamp Studies

Dev lamelli kesecikler (GUVs) membran ilişkili olayları incelemek için popüler bir biomimetic sistemi vardır. Ancak, genel olarak GUVs fonksiyonel transmembran proteinleri içeren GUVs oluşturmak üzere tadil edilmesi gerekmektedir büyümeye protokolleridir. Electroformation ve jel destekli şişme - - voltaj-kapılı potasyum kanalı, KvAP içeren GUVs oluşturmak için Bu makalede, iki dehidrasyon-rehidrasyon yöntemleri açıklanmaktadır. Her iki yöntemde de, protein ihtiva eden küçük tek lamelli vesiküller bir çözeltisi daha sonra bir rehidrasyon tamponu içinde şişmeye bırakıldı membran bir yığın oluşturmak üzere kısmen dehidre edilmiştir. AC alanı film rehidrasyon esnasında uygulanabilir ve böylece electroformation yöntemi için, film, platin elektrot üzerine bırakılır. Bunun tersine, jel destekli şişme yöntem filmi rehidrasyon geliştirmek üzere bir agaroz jel alt tabakayı kullanır. Her iki yöntem de (örneğin, 5 mM) ile, düşük ve fizyolojik (örneğin, 100 mM) tuzu konsantrasyonlarında GUVs üretebilir. Elde GUVs floresan mikroskobu ile karakterize edilir ve yeniden kanalların fonksiyonu iç-dış yama-kelepçe yapılandırmayı kullanarak ölçtü. Alternatif elektrik alanı (electroformation) mevcudiyetinde şişen hatasız GUVs yüksek bir verim sağladığını birlikte, jel destekli şişme yöntem daha homojen bir protein dağılımı sağlar ve herhangi bir özel ekipman gerektirir.

GUVs büyümesi hızlı bir şekilde bir mikroskop altında bir büyüme odası incelenerek değerlendirilebilir. Electroformation için GUVs Şekil 4&#39;te gösterildiği gibi, platin teli boyunca demet büyürler. Jel destekli şişme sırasında GUVs hızla büyümeye ve (Şekil 5), birbirine kaynaşmasına küresel yapılar olarak görünür. Hata içermeyen GUVs bilgilerin daha kolay tanımlanabildiği ve bir gözlem odasına transfer edildikten sonra değerlendirilir. Kalibrasyon ölçümle...

electroformation ve jel destekli şişme - dev tek tabakalı veziküller (GUVs) içine transmembran protein, KvAP, şifreden iki dehidrasyon-rehidrasyon yöntemleri için gösterilmiştir. Her iki yöntemde de, protein içeren küçük tek lamelli kesecikler, sonra, flüoresans mikroskopisi ve yama klempi elektrofizyoloji ile incelenebilir GUVs oluşturmak üzere bir araya birleştirilir.

Bir transmembran proteinin yeniden oluşturulması, Mikroskop ve yama kelepçe Çalışmaları Dev tek-katmanlı keseler içine Voltaj kapılı iyon kanalı, KvAP,

Giant Unilamellar Vesicles (GUVs) are a popular biomimetic system for studying membrane associated phenomena. However, commonly used protocols to grow ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, voltaj kapılı iyon kanallarını dev tek tabakalı veziküllere dahil etmek ve aktivitelerini patch clamp ölçümleriyle karakterize etmektir. Bu işlem, öncelikle KVAP iyon kanalını içeren küçük vezikül çözeltisinin kısmen dehidrate edilerek bir lipid-protein film oluşturulmasıyla gerçekleştirilir. Ardından, lipid filmi yeniden hidrate edilir; bu işlem, kanalı içeren hücre boyutunda dev ALR veziküllerinin veya GV'lerin oluşumuna ve büyümesine neden olur.Ardından GUV'ler kayıt odamıza aktarılır ve iyon akımlarını ölçmek için bir patch pipeti ile GUV membranından bir parça eksize edilir. Akım kayıtlarının analizi sonucunda, GUV membranındaki iyon kanallarının membran voltajındaki değişimlere yanıt olarak aktive olduğu görülür. Dev tek taraflı veziküller, biyofizik alanında membran protein etkileşimleriyle ilgili temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Örneğin, transmembran proteinlerin lipid membranının fiziksel özellikleriyle olan etkileşimi. Bu yöntem, voltaj kapılı potasyum kanalı KVAP'ın fonksiyonuna dair bilgi sağlayabilse de, diğer potasyum kanallarına, taşıyıcılara, pompalara ve genel olarak transmembran proteinlere de uygulanabilir. Dev veziküllerin manipülasyonunu içeren adımların önemi nedeniyle, bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi kritik önem taşımaktadır.Sadece makaleleri okuma yöntemi: KVAP içeren çözeltiler ve küçük tek katmanlı veziküller hazırlandıktan sonra. Metin protokolüne uygun olarak; öncelikle telleri deliklerden geçirip telleri döndürerek ve silerek temiz olduklarından emin olun, ardından azot veya hava akımı altında sonikasyon yapıp kurutarak elektro oluşum odasını hazırlayın. Metin protokolünde açıklandığı gibi, SUV tamponu içerisinde 3 mg/mL SUV süspansiyonundan 30 µL hazırlayın ve SUV çözeltisini yerleştirmek için çözeltiyi kuvvetlice karıştırın.SUV çözeltisinden küçük damlacıkları tellerin üzerine yerleştirmek için iki mikrolitrelik bir pipet veya beş mikrolitrelik cam şırınga kullanın. Damlaların yeterince küçük olduğundan ve birbirine değmeyecek veya birleşmeyecek kadar geniş aralıklarla yerleştirildiğinden emin olun. Depozite edilen SUV'ların açık havada yaklaşık 30 dakika boyunca kurumaya bırakın.Damlacıklar çöktüğünde, lipid birikintilerinin mikroskopla daha kolay gözlemlenebilmesi için teli döndürün. Ardından, bir şırınga kullanarak üç kuyucuğun etrafındaki hazne tabanına vakum gresi uygulayın ve hazne tabanını boşluk kalmayacak şekilde mühürlemek için 40 milimetre x 22 milimetrelik bir lamı üzerine nazikçe bastırın. Daha sonra, haznenin yanlarını mühürlemek için sızdırmazlık macunu kullanın ve üç kuyucuğun hattını takip ederek haznenin üst kısmına vakum gresi uygulayın.Her bir kuyucuk tamamen dolana kadar büyüme tamponunu yavaşça ekleyin. Kuyucuklardaki solüsyonun hızlı hareket etmesinden kaçının, çünkü bu durum elektrotlar üzerindeki lipid filminin sökülmesine neden olabilir.Üst kapak lamını gresin üzerine nazikçe bastırarak hazneyi kapatın. Bu sırada alt kapak lamının yerinden oynamamasına dikkat edin. Sinyal jeneratörünü tellere bağlamak için iki adet timsah ağzı klips kullanın.Frekansı, kullanılan tamponun tuz konsantrasyonuna göre ayarlayın ve teller arasındaki voltajı bir multimetre ile ölçüp düzenleyin. Ayrıca, tamponunuza bağlı olarak, flora fours'ları ışıktan korumak için hazneyi alüminyum folyo ile kaplayın. G UUV'leri düşük tuzlu tamponda iki ila üç saat, yüksek tuzlu tamponda ise 12 saat veya gece boyunca büyümeye bırakın.İnkübasyon sonrası, hücreyi jeneratörden ayırın ve dikkatlice ters mikroskop üzerine yerleştirin. GUV büyüme plazmasını değerlendirmek için, ARO çözeltisinin üzerinde düzgünce yayılması amacıyla bir lamı bir dakika boyunca temizleyin. Lamı temizledikten sonraki 15 dakika içerisinde, tüm yüzeyi ıslatacak şekilde, metin protokolüne göre hazırlanan 200 µL sıcak aro çözeltisi uygulayın.Lamı dikey olarak eğin ve fazla sıvıyı uzaklaştırmak için alt kenarını bir peçeteye değdirerek lam üzerinde ince ve pürüzsüz bir aros tabakası bırakın. Lamı 60 °C sıcaklıktaki bir ısıtıcıya veya fırına yerleştirin ve en az 30 dakika kurumaya bırakın. Ardından, AROS kaplı lameli standart 3,5 cm'lik bir petri kabına yerleştirin.Ardından SUV çözeltisini hazırladıktan sonra, yaklaşık 15 µL miktarı yaklaşık 30 çok küçük damla halinde aros yüzeyine nazikçe uygulayın. Aros tabakasını çok fazla bozmamaya dikkat edin. Lamı yaklaşık 10 ila 15 dakika boyunca hafif bir azot akımı altına yerleştirin ve tamponun buharlaşmasını gözle takip edin.SUV'ler kuruduktan hemen sonra, damlacıklar kururken lam yüzeyini kaplamak için yaklaşık bir mililitre büyüme tamponu ekleyin. Şişmenin yaklaşık 30 dakika boyunca ilerlemesine izin verin ve ardından büyüme odasındaki GU UUV'lerin büyümesini incelemek için faz kontrastlı veya DIC'li ters mikroskop kullanın. GU'ların yapışmasını, yayılmasını ve yırtılmasını önleyen beş miligram/mililitre beta-kaine çözeltisi ekleyerek odadaki GU UUV'lere yama klempi (patch clamp) uygulayın. Beş dakika boyunca inkübe edin ve durulayın, ardından toprak elektrodunu yerleştirin ve odayı doldurmak için gözlem tamponu kullanın.Ardından, elektroform GU UUV'ler için GU UUV'leri gözlem odasına aktarın. Üst örtü camını nazikçe kaldırarak büyütme odasını açın. Pipet ucunu her bir telin doğrudan üzerine yerleştirin ve jel destekli şişirme GU UUV'ler için, pipet ucunu tel boyunca hareket ettirirken GU UUV'leri ayırmak amacıyla yavaşça yaklaşık 10 µL aspire edin.Öncelikle, GU UUV'leri lamel yüzeyinden ayırmak için Petri kabının kenarına birkaç kez hafifçe vurun. Pipet ucunu lamelin hemen üzerine yerleştirin ve ucu yüzey üzerinden geri çekerken 10 µL aspire edin; toplanan GVS'leri doğrudan gözlem odasına aktarın. GVS'lerin patch clamp işlemi için dibe çökmesi amacıyla birkaç dakika bekleyin.Taze bir patch pipetini doldurmak için gözlem tamponu kullanın ve pipeti patch clamp başlık aşamasına monte edin. Kusursuz bir GUV bulmak için hücre içi alanı tarayın ve GUV'nin floresan protein içerdiğini kontrol edin; patch pipetinin iç kısmını temiz tutmak için 100 pascals'tan fazla sabit pozitif basınç uygulayın ve patch pipetini hücre içi alana yerleştirin.Patch pipeti görüş alanına getirin ve pipet voltaj ofsetini ve direncini ölçmek veya kompanse etmek için test darbeleri uygulayın. Ardından, ucun temiz olduğunu onaylamak için pipeti floresan aydınlatma altında inceleyin. Patch pipetini GUV'ye doğru yaklaştırın ve gerekirse, patch pipetten çıkan dış akışın GUV'yi sürüklemesini önlemek için pozitif basıncı eş zamanlı olarak azaltın.Yama pipeti GUV'ye yaklaştığında, GUV'yi yama pipetine doğru çekmek için negatif basınç uygulayın. GUV membranının dili yama pipetine girerken ve giga mühür oluşurken direnci izleyin. İç-dış membran yaması GUV'den ayrıldığında ve giga mühür stabilize olduğunda, test darbelerini kapatın ve metinde belirtilen voltaj protokolünü uygulayın.Bu şekil, kusursuz bir GUV'nin DIC ve epi floresan görüntülerini göstermektedir. GUV membranındaki tekdüze protein floresansı, KVAP'ın lipid filminde kalmak yerine GUV'ye dahil olduğunu ve agregatlar oluşturmadığını doğrulamaktadır. Üç yöntem kullanılarak üretilen GUV'ler burada görülmektedir. Floresan lipid ve protein sinyalleri aynı ortalama yoğunluğa göre ölçeklendirilmiştir; böylece düşük veya yüksek protein yoğunluğuna sahip GUV'ler üst üste bindirme görüntülerinde magenta veya yeşil tonlarda görünürken, ortalama protein yoğunluğuna sahip GUV'ler beyaz görünmektedir.Kusursuz izole G UUV'ler tanımlanmış ve GUV boyut dağılımı burada gösterilmiştir. Genellikle, elektro oluşum yöntemi jel destekli şişirmeye göre daha fazla kusursuz G UUV üretir, ancak elektro oluşumla üretilen GUS'lar daha küçüktür. Burada, GUV floresansından çıkarılan protein yoğunluğu dağılımı gösterilmektedir.Yüksek tuzlu tamponla gerçekleştirilen elektro oluşum, farklı protein yoğunluklarına sahip GU UUV'ler üretir. Düşük tuzlu tamponla yapılan elektro oluşumda yoğunluk çok daha az değişkenlik gösterir ve jel destekli şişirme ile üretilen GU UUV'lerin protein yoğunluğu, kesilen yamadaki protein konsantrasyonuna bağlı olarak dikkat çekici derecede homojendir. Akım izleri ya tekil kanalları ya da bir kanal topluluğunu gösterir.KVAP, voltaj bağımlı açılma göstermektedir. Bu prosedürü uygularken, dev veziküllerin makaslama ve osmotik strese dayanıklı olmayan hassas yapılar olduğunu hatırlamak önemlidir. Bu prosedürün ardından, proteinlerin eğrilik algılaması gibi ek soruları yanıtlamak için lipid nanotüpler çekilmesi gibi yöntemler uygulanabilir.Bu videoyu izledikten sonra, fonksiyonel olarak rekonstitüe edilmiş proteinler içeren GVS'lerin nasıl üretileceği konusunda kapsamlı bir anlayışa sahip olmalısınız.

reconstitution-transmembrane-protein-voltage-gated-ion-channel-kvap

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Yama-kelepçe elektrofizyoloji ile kombine edildiğinde tanımlanan kompozisyon dev lipozomlar içine fonksiyonel membran proteinleri yeniden kurgulamak güçlü bir yaklaşımdır. Ancak, geleneksel dev lipozom üretim protein istikrar ile uyumsuz olabilir. Biz saf lipidler veya iyon kanalları içeren küçük lipozomlar gelen dev lipozomlar üretmek için protokolleri tarif.

Görüntüleme ve Patch-Kelepçe Elektrofizyoloji için dev Liposome Hazırlık

Lipid membranlar bir prototip voltaj kapılı potasyum kanalı tam sulandırılması için prosedürler açıklanmıştır. Sulandırılmış kanallar biyokimyasal testler, elektrik kayıtları, ligand ve tarama elektron kristalografik çalışmalar için uygundur. Bu yöntemler, başka zar proteinlerinin yapısal ve fonksiyonel çalışmalar için genel uygulamalar olabilir.

Yapısal ve İşlevsel Araştırmalar için Lipid Membranlar bir Kv Kanal Sulandırma

Çoğu protein hücredeki hissediyorum ve membran eğriliği neden. Membran nanotüpler lipid veziküller eğri membranlar içinde vitroetkileşim proteinler veya herhangi bir eğrilik aktif molekül çalışmaya üzerinden çekmek için bir yöntem açıklanmaktadır.

Membran nanotüpler dev Unilamellar veziküller çekerek

Biz bir teknik veziküller, temassız embriyolardan için yerelleştirilmiş kalsiyum iyon degradeler kullanarak mevcut. Bir dev lipid vezikül, çevresinde bir kalsiyum iyon eriyik mikroenjeksiyon membran borulu çıkıntılar üretiminde kaynaklanan lipit membran yeni model için kullanılmaktadır.

Yanıt olarak lokalize kalsiyum iyon degradeler dev veziküller membran Remodeling

Bu yazıda, F-aktin sitoiskeletini dev unilamellar lipid veziküllerine (lipozomlar olarak da adlandırılır) kapsüllemek için deneysel teknikleri ve lipozom zarının iç broşüründe korteks-biyomimik yapan bir F-aktin tabakası oluşturma yöntemini göstereceğiz.

İn Vitro Aktin Hücre İskeletinin Dev Unilameller Veziküller İçinde Yeniden Sulandırılması

Bu protokol, bir model membran proteininin lipid çift tabakasına sentezinin ve dahil edilmesinin araştırılması için dev bir unilamellar vezikül (GUV) içinde bir hücresiz ekspresyon (CFE) sistemini kapsüllemek için kullanılan ters emülsiyon yöntemini tanımlar.

Bakteriyel Glutamat Reseptör Kanalının, Hücresiz Bir Ekspresyon Sisteminin Kapsüllenmesi ile Sulandırılması

Kaliks Patch Kelepçe Kapasitans Kayıtlar Yöntemleri

Bu Xenopus laevis oosit kelepçe kayıt yama için bir giriş olarak tasarlanmıştır. Vitellin membran, bir gigaohm mühür (gigaseal) oluşumu ve dış topoloji yama isteğe bağlı dönüşüm kapsar.

Xenopus Oosit ifade İyon Kanalları Patch Kelepçe Kaydı

Biz nasıl bir iyon kanalı fonksiyonu tek bir nokta mutasyonu etkisinin araştırılması gösterecektir.

İyon Kanalları ve Fonksiyonel Analiz Mutagenez Heterologously Memeli Hücreleri cinsinden ifade edilir

BK kanalları İyonik akım yama klemp teknikleri kullanılarak kaydedildi. BK kanalları ifade edilmiştir.

İyon Kanalları incelenmesi için yama Kelepçe ve Perfüzyon Teknikleri cinsinden ifade edilir Xenopus Oosit

Keşfedin voltaj kapılı iyon kanalı KvAP'ın dev tek katmanlı veziküllere yeniden oluşturulması ve yama kelepçe ölçümleriyle karakterizasyonu. Bu yöntem membran proteinleri biyofiziğinde fonksiyonel analizler sağlar.

Bir transmembran proteinin yeniden oluşturulması, Mikroskop ve yama kelepçe Çalışmaları Dev tek-katmanlı keseler içine Voltaj kapılı iyon kanalı, KvAP, (Video) | JoVE Journal

Bir transmembran proteinin yeniden oluşturulması, Mikroskop ve yama kelepçe Çalışmaları Dev tek-katmanlı keseler içine Voltaj kapılı iyon kanalı, KvAP,

Daha fazla video keşfet