Name: Cerrahi Dokular İlköğretim İnsan Kolon Tümör Hücreleri İzolasyon ve Çekiş Sitometrinin Yumuşak Elastik Yüzeyler Doğrudan onları Kültürleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: Öğrenin cerrahi kolon tümör dokularından primer insan hücreleri izolasyonunu ve yumuşak elastik yüzeylerde çekiş sitometrisi ile analiz yöntemini. Bu teknik hücre mekaniği ve tümör biyolojisi araştırmalarında değerli veriler sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu proje, Ulusal Bilim Vakfı ECCS hibesi 10-02165 ve Disiplinlerarası İnovasyon Girişimi Programı, Illinois Üniversitesi hibesi 12035 tarafından finanse edilmiştir. M.Y.A., UIUC'de NIH Ulusal Kanser Enstitüsü Kanserde Nanoteknoloji İttifakı 'Midwest Kanser Nanoteknoloji Eğitim Merkezi' Hibe R25 CA154015A'den finanse edildi. İmmünnoboyama ve konfokal mikroskopi görüntüleme, UIUC Genomik Biyoloji Enstitüsü'nde (IGB) gerçekleştirildi. M.Y.A., UIUC'DEN B. J. Williams ile izolasyon deneyleri ile ilgili görüşmeleri kabul eder. M.Y.A., UIUC'DEN C. Nemeh ve Abdul Bhuiya'ya şematik ve malzeme listesi hazırlama konusunda yardım için teşekkür eder.

Aşağıda açıklanan protokol UIUC insan araştırma etik komitesinin kuralları izler. 1. Toplama ve Cerrahi Doku Örneği sindirimi <ol><li> Sağ kolon rezeksiyonu (Şekil 1A ve 1B) sonra tümör dokusu örneği toplayın. Hem de bitişik sağlıklı sitesinden doku toplayın. </li><li> 12 mi HBSS çözeltisi ihtiva eden 15 ml&#39;lik bir şişeye, hemen doku aktarın. Yalıtılmış bir köpük kutu içinde buz üzerinde şişe tutun. </li><li> 45 dakika içinde daha fazla işlem için bir doku kültürü başlık doku ihtiva eden şişe taşıma. Kaput içinde bir buz bloğu üzerinde şişe tutun. </li><li> Bir pipet kullanılarak HBSS çözeltisi 6-7 ml ihtiva eden bir 6 yuvalı plaka içine verilen doku dökün. Not: oyuk başına doku miktarı, bu durulama adımında kritik öneme sahip değildir. </li><li> Bir buz bloğu üzerine 6 plaka tutun. İki kez HBSS çözeltisi içinde doku durulayın. </li><li> Steril SCI&#39;larının ayrılmış bölüme temiz doku Kessor. Küçük bölümlere kıyma doku steril bir neşter bıçağı ile boyutunda 1-2 mm 3 daha büyük. </li><li> Doku transfer etmeden önce (% 0.1 tripsin solüsyonu 1 ml ihtiva eden), etiketlenmiş bir% 0.1 tripsin şişe tartılır. Bir pipet ile% 0.1 tripsin viallerin her birine ~ 20 mg doku aktarın. </li><li> Tripsin daha seyreltme önlemek için tripsin şişenin içine HBSS transferini en aza indirmek için deneyin. </li><li> Doku transferinden sonra tripsin şişeleri tartın; doku kitlesi olarak farkı belgelemek. </li><li> ~ 20 mg doku ve 24 yuvalı plakanın her oyuğuna tripsin 1 ml dökün. </li><li> 16-20 saat boyunca 4 ° C&#39;de buzdolabında çalkalayıcı üzerinde 24 oyuklu plaka koyun. Bu bekleme döneminde veya daha önceki bir zamanda, poliakrilamid jel malzemenin hazırlanması ve 3. bölümünde açıklandığı gibi ECM proteinleri ile işlerlik. </li></ol> 2. Enzimatik tek bir hücre süspansiyonu içine doku numunesinin aynşması ile ECM Fonksiyonel Elastik substrat üzerinde kültürlenmesi İzole hücreleres ve Sert polistiren Yemekleri <ol><li> Çalkalayıcı üzerinde 4 ° C &#39;de de tripsin inkübasyon 16-20 saat sonra, bir pipet kullanılarak, (tam büyüme ortamı 2-3 ml ihtiva eden), 4 ° C tam büyüme ortamı şişeye 4 ° C tripsin doku aktarın. Büyüme ortamı içine tripsin minimal transferini sağlamak. Not: tam büyüme ortamı formülasyonu aşağıdaki gibidir:% 10 ve penisilin-streptomisin toplam çözeltinin% 1 bir son konsantrasyona kadar at serumu ile takviye edilmiş RPMI 1640 taban ortamı. </li><li> 12-15 dakika boyunca 37 ° C&#39;de sıcak su banyosu içinde ortam flakon içeren doku yerleştirin. </li><li> Bir pipet kullanarak HBSS çözeltisi içeren 15 ml flakon doku aktarın, hafifçe sallayın. </li><li> 2.3 tekrarlayın. </li><li> HBSS çözeltisi ve 1 ml solüsyon içeren flakon (HBSS içinde) transferi% 0.1 kollajenaz çözüm doku çıkarın. Nemlendirilmiş bir hücre kültürü inkübatöründe 45 ° C&#39;de 37 dakika karıştırıldı ve% 5 CO2 ortamında inkübe edin. Bekleme süresi, sıcak growt sırasında15 ml h ortam su banyosu içinde 37 ° C &#39;de şişesine yerleştirilir. </li><li> Pipet minimize kollajenaz taşınmadan kaynaklanan içine tüm doku parçaları dışarı çekin. Önceden ısıtılmış kültür ortamı şişeleri içine sadece doku parçaları çıkarın. </li><li> 6 gözlü bir plakanın her bir oyuğuna 40 mikron iyi uç filtre yerleştirin. 1 ml hücre kültür ortamı ile filtreyi nemlendirin. </li><li> Doku tamamen ayrışmış kadar 10 ml&#39;lik bir cam pipet ile birkaç kez ortam içinde öğütün dokusudur. </li><li> Şişe tabanına mümkün olduğunca yakın pipet koruyun. </li><li> Enkaz ve ayrışmamış parçalarını kaldırmak için filtrenin üzerine çözüm yatırın. </li><li> Santrifüj oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 150 x g&#39;de medya hücre süspansiyonu filtre edildi. </li><li> Sonradan Süpernatantı ve 2 ml taze kültür ortamı ile hücre pelletini. </li><li> Hemasitometre (gerekirse) kullanarak hücreleri saymak. Tohum ekstrasellüler matriks (ECM) Fonksiyonlu jeller ve istenilen konsantrasyonda polistiren yemekleri birincil hücreler izole edilmiştir.</li></ol> 3. Hazırlama ve Farklı Sertlik Poliakrilamid (PA) jeller ve Polistiren Yüzeyler işlevselleştirilmesi Not: Bölüm 3 görsel gösteri için izleyiciler / okuyucular Visualized Experiments son Journal (vallahi) 17 nci adlandırılır. <ol><li> Benimseyen yayınlanmış protokoller 18, 19, 12 mm 2 cam kapak hidrojelin kovalent sağlamak için kimyasal olarak aktive fişleri. <ol><li> İlk olarak, tedavi cam kapak RT&#39;de 7 dakika 3- Aminopropyltrymethoxysilane (ATS) ile sığar. </li><li> DI su ile durulanmıştır tamamen ATS çıkarın ve tedavi kapağı (70% glutaraldehit stok çözeltisinden PBS içinde seyreltilmiş)% 0.5&#39;lik glütaraldehid, 30 dakika boyunca solüsyon ile kayar. </li></ol></li><li> / Hac akrilamid çözeltisi ve% 0.05, N, 10 mM HEPES-tamponlu salin 20 N &#39;-methylenebisacrylamide (bis) çözeltisine% 5 w karıştırılarak 2 kPa jel çözüm elde edilir. / V akrilamid ve 0.13 w% 8 kullanınN% 10 kPa jeli 20, 10 mM HEPES-tamponlu tuzlu su içinde N &#39;-methylenebisacrylamide (bis) çözeltisi eklendi. <ol><li> 200 amonyum persülfat (% 10 a / h) ile 1: Her iki durumda da, 1 kullanmak 2.000 N, N, N &#39;, N&#39;, sırasıyla, polimerizasyon işlemi için başlatma maddesi ve katalizör gibi tetrametiletilendiamin (TEMED). </li><li> Ayrıca, mutemet belirteçler 21, 22 olarak 2 kPa jel çözeltisine 100 ul floresan boncuk ekleyin. </li></ol></li><li> 20 ul 12 mm 2 aktive cam kapak slip üzerindeki pre-polimer PA jel çözümü bir damla yatırın. Damla başka 12 mm 2 normal cam kapak kayma yerleştirin. Düşmesi, kılcallık kapak fişleri arasında yayılır emin olun. 2 kPa jeller boncuk çoğu hücre kültürü yüzeyine yakın gelecek sağlamak için sandviç ters çevirin. </li><li> Oda sıcaklığında, 45 dakika süre ile PA jel Cure. </li><li> Tek bir kenar jilet kullanarak üst kapak kayma soyulabilir. Not: soyulması sırasında dekolmanı, bir kenarından devamsandviç. Jel aktif cam slayt yapışık kalır. </li><li> Kullanmadan önce, PBS çözeltisi içinde jeller saklayın. </li><li> 50 ug / ml yandaki yöntemlerin 23 arasında bir konsantrasyonda PA jeller ECM moleküllerinin insan fibronektin cam işlevselleştirilmesi. <ol><li> Kısaca, 2 ml saf hidrazin hidrat O / N ile yüzeylerde kuluçkaya yatmaktadır. </li><li> Hidrazin hidrat çıkarın ve DI su ile iyice durulayın yüzeylerde. </li><li> 30 dakika için% 5 asetik asit ile alt-tabakaların yıkayın. </li><li> Asetik asit çıkarın ve DI su ile iyice durulayın yüzeylerde. </li><li> 30 dakika boyunca DI suya batırılır substratlar tutun. </li><li> 50 ug / ml&#39;lik bir konsantrasyonda 35 dakika süreyle oksitlenmiştir fibronektin ile alt-tabakaların inkübe edin. </li><li> 10 dakika boyunca düşük devirde çalkalayıcı üzerinde PBS ile yüzeylerde durulayın. </li><li> Hücrelerin kaplama önce 30 dakika boyunca 2-3 ml kültür ortamı içinde 37 ° C &#39;de, tüm alt-tabakaların inkübe edin. Not: Plaka hücreleri seyrek populate içinded şekilde (1,000-3,000 hücre / cm 2). Her jel kaplı cam kayma 35 mm petri içerdiği gerekmektedir. Hücreler herhangi mikroskobu (en azından O / N) önce tamamen uyması izin verin. </li></ol></li></ol> 4. Çekiş Kuvvet Mikroskobu ve İmmünofloresan Mikroskopi Tahliller <ol><li> Traksiyon Kuvvet Mikroskobu Deneyi <ol><li> 10 dakika süre ile bir su banyosunda 37 ° C &#39;de sıcak bir% 0.25 tripsin-EDTA /% 10 SDS çözeltisi çekiş deneyleri başlamadan önce. </li><li> Bir defada hücre kültürü inkübatör tek jel çıkarın ve floresan ters mikroskop sahne (32X büyütme) üzerine yerleştirin. </li><li> Görüş alanında tek bir hücre bulun. Petri kabı kapağını çıkarın. </li><li> Hücrenin bir faz kontrast görüntü (örneğin Şekil 3) alın. </li><li> Floresans ve uygun filtreyi seçmek için görüntüleme moduna geçiş. Bu süre içinde mikroskop sahne veya örnek hareket ettirmeyin. </li><li> Floresan boncuk displac bir görüntü alınHücresel çekiş (Şekil 4C) tarafından ed. </li><li> Jelden hücre ayırmak için Petri kabı 1 ml tripsin / SDS çözeltisi ekleyin. Bu süre içinde mikroskop sahne veya örnek hareket ettirmeyin. Ayrıca, jelden tam olarak çıkarılmasının sağlanması için hücrenin bir kontrol resmi alır. </li><li> Hücre çıkarıldıktan sonra boncuklar referans (sıfır güç) görüntü almak. </li><li> Diğer tüm jeller için adımları yineleyin 4.1.2-4.1.8. </li><li> Her iki durum için adım 4.1.6 ve 4.1.8 elde iki görüntüleri ImageJ kullanarak bir görüntü yığını olun. Yığını Yığınları → Görüntüler → Görüntü: Görüntü yığını oluşturmak için görüntüleri açtıktan sonra ImageJ aşağıdaki komut dizisi kullanın. </li><li> . Deplasman alanını ve çekiş elde etmek için, yayınlanmış yöntemlere 21, 22 aşağıdaki ImageJ eklentileri kullanabilirsiniz alttaki linki kullanarak bu eklentileri kodları ve ayrıntılı öğreticiler edinin: <a href="https://sites.google.com/site/qingzongtseng/imagejplugins">https://sites.google.com/site/qingzongtseng/ima</a>gejplugins. <ol><li> &#39;Şablon Eşleştirme&#39; eklentisi kullanarak yığının görüntüleri hizalayın. → Tamam Yığın Eklentiler → Şablon Eşleştirme Hizala Dilimleri →: adım 4.1.10 oluşturulan görüntü yığını açtıktan sonra ImageJ komutların sırası aşağıdaki Kullanımı. Dolayısıyla görüntü yığını kaydedin. Aşağıdaki adımlarda, bu yeni görüntü yığını kullanın. </li><li> PIV (partikül görüntü velosimetri) eklentisi (Şekil 4D) kullanarak değiştirme alanını edinin. Adım 4.1.11.1 kaydedilen görüntü yığını açtıktan sonra komut dizisi aşağıdaki Kullanımı: Eklentiler → PIV → iteratif PIV (Temel) → → Tamam Tamam → bu PIV ve çıkış kabul edin. Orijinal görüntü yığınında aynı dizine PIV çıkışını kaydedin. Bir sonraki adımda girdi olarak kullanın. </li><li> Nihayet FTTC çekiş haritası (Şekil 4E) elde etmek için eklenti (Fourier sitometri çekiş dönüşümü) kullanın. Komutların kullanımı aşağıdaki dizisi: Eklentiler → FTTC → Insert malzeme özellikleri, yani Young modülü ve PA jel → OK → Poisson oranı → Tamam adımda 4.1.11.2 kaydedilen PIV çıktı dosyasını seçin. Kaydet FTTC görüntü yığını ve PIV çıktı aynı dizinde sonuçlanır. </li></ol></li></ol></li><li> İmmünofloresan Mikroskopi Tahliller <ol><li> Laminer kaput boyanmış olan substratlar alın ve kültür ortamı çıkarın. </li><li> PBS ile durulayın ve alt tabakaları oda sıcaklığında 20 dakika boyunca PBS içinde% 4 paraformaldehit ile hücrelerin tespit. </li><li> 3 kez (her biri 5 dakika süre) boyunca PBS ile alt-tabakaların yıkayın. Sonuç olarak, 30 dakika boyunca 500 ul sinyal arttırıcı ile alt-tabakaların inkübe edildi ve PBS ile durulayın. </li><li> Oda sıcaklığında 45 dakika boyunca PBS içinde 250 seyreltme: 1 monoklonal anti-vinkulin antikor ile inkübe hücreleri. 3 kez (her biri 5 dakika süre) boyunca PBS ile alt-tabakaların yıkayın. </li><li> 200 seyreltme: 1 ikincil antikor Alexa Fluor 488 keçi anti-fare IgG&#39;si ile inkübe edin30 dakika boyunca oda sıcaklığında PBS içinde. 3 kez (her biri 5 dakika süre) boyunca PBS ile alt-tabakaların yıkayın. </li><li> F-aktin yapı görselleştirmek için, TRITC oda sıcaklığında 45 dakika boyunca bir konsantrasyon 50 ug / ml&#39;de konjugatlar falloidinle hücreleri inkübe edin. 3 kez (her biri 5 dakika süre) boyunca PBS ile alt-tabakaların yıkayın. </li><li> Resim konfokal tarama laser mikroskop kullanılarak numuneleri (Şekil 5A - 5D). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Can+cancer+be+reversed+by+engineering+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Cancer+Biol%22%5BJournal%5D)">Can cancer be reversed by engineering the tumor microenvironment.</a> Semin. Cancer Biol. 18, 356-364 (2008).</li>
<li>Kumar, S., Weaver, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics%2C+malignancy%2C+metastasis%3A+the+force+journey+of+a+tumor+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Metastasis+Rev%22%5BJournal%5D)">Mechanics, malignancy, metastasis: the force journey of a tumor cell.</a> Cancer Metastasis Rev. 28, 113-127 (2009).</li>
<li>Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+elasticity+directs+stem+cell+lineage+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Matrix elasticity directs stem cell lineage specification.</a> Cell. 126, 677-689 (2006).</li>
<li>Yeung, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+substrate+stiffness+on+cell+morphology%2C+cytoskeletal+structure%2C+and+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Motil.+Cytoskeleton%22%5BJournal%5D)">Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion.</a> Cell Motil. Cytoskeleton. 60, 24-34 (2005).</li>
<li>Pelham, R. J., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+locomotion+and+focal+adhesions+are+regulated+by+substrate+%EF%AC%82exibility%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate ﬂexibility.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94 (25), 3661-3665 (1997).</li>
<li>Solon, J., Levental, I., Sengupta, K., Georges, P. C., Janmey, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+adaptation+and+stiffness+matching+to+soft+elastic+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Fibroblast adaptation and stiffness matching to soft elastic substrates.</a> Biophys. J. 93, 4453-4461 (2007).</li>
<li>Wang, H. B., Dembo, M., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+flexibility+regulates+growth+and+apoptosis+of+normal+but+not+transformed+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Cell.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Substrate flexibility regulates growth and apoptosis of normal but not transformed cells.</a> Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 279, 1345-1350 (2000).</li>
<li>Paszek, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tensional+homeostasis+and+the+malignant+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Tensional homeostasis and the malignant phenotype.</a> Cancer Cell. 8, 241-254 (2005).</li>
<li>Levental, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+crosslinking+forces+tumor+progression+by+enhancing+integrin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Matrix crosslinking forces tumor progression by enhancing integrin signaling.</a> Cell. 139, 891-906 (2009).</li>
<li>Tang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+force+affects+expression+of+an+in+vitro+metastasis-like+phenotype+in+HCT-8+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Mechanical force affects expression of an in vitro metastasis-like phenotype in HCT-8 cells.</a> Biophys. J. 99, 2460-2469 (2010).</li>
<li>Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+Stiffness+Mediated+Metastasis+Like+Phenotype+of+Colon+Cancer+Cells+is+Independent+of+Cell+to+Gel+Adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Mol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Substrate Stiffness Mediated Metastasis Like Phenotype of Colon Cancer Cells is Independent of Cell to Gel Adhesion.</a> Cell. Mol. Bioeng. , (2014).</li>
<li>Ali, M. Y., Chuang, C. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+cellular+phenotype+by+soft+collagen+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Reprogramming cellular phenotype by soft collagen gels.</a> Soft Matter. , (2014).</li>
<li>Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+traction+stresses+increase+with+increasing+metastatic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential.</a> PLoS ONE. 7 (2), e32572(2012).</li>
<li>Indra, I., Undyala, V., Kandow, C., Thirumurthi, U., Dembo, M., Beningo, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+correlation+of+mechanical+forces+and+metastatic+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Phys.+Biol%22%5BJournal%5D)">An in vitro correlation of mechanical forces and metastatic capacity.</a> Phys. Biol. 8 (1), (2011).</li>
<li>Alge, C. S., Hauck, S. M., Priglinger, S. G., Kampik, A., Ueffing, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+protein+profiling+of+primary+versus+immortalized+human+RPE+cells+identifies+expression+patterns+associated+with+cytoskeletal+remodeling+and+cell+survival%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Differential protein profiling of primary versus immortalized human RPE cells identifies expression patterns associated with cytoskeletal remodeling and cell survival.</a> J. Proteome Res. 5 (4), 862-878 (2006).</li>
<li>Oikonomou, E., Kothonidis, K., Zografos, G., Nasioulas, G., Andera, L., Pintzas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Newly+established+tumourigenic+primary+human+colon+cancer+cell+lines+are+sensitive+to+TRAIL-induced+apoptosis+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Newly established tumourigenic primary human colon cancer cell lines are sensitive to TRAIL-induced apoptosis in vitro and in vivo.</a> Br. J. Cancer. 97 (1), 73-84 (2007).</li>
<li>Knoll, S. G., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+localizing+reporter+fluorescent+beads+near+the+cell+culture+surface+for+traction+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A novel method for localizing reporter fluorescent beads near the cell culture surface for traction force microscopy.</a> J. Vis. Exp. (91), (2014).</li>
<li>Wang, Y. L., Pelham, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+a+flexible%2C+porous+polyacrylamide+substrate+for+mechanical+studies+of+cultured+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation of a flexible, porous polyacrylamide substrate for mechanical studies of cultured cells.</a> Methods in Enzymology. 298, 489-496 (1998).</li>
<li>Tang, X., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+technique+for+micro-patterning+proteins+and+cells+on+polyacrylamide+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">A novel technique for micro-patterning proteins and cells on polyacrylamide gels.</a> Soft Matter. 8, 3197-3206 (2012).</li>
<li>Tse, J. R., Engler, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+hydrogel+substrates+with+tunable+mechanical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Preparation of hydrogel substrates with tunable mechanical properties.</a> Current Protocols in Cell Biology. , 10-16 (2010).</li>
<li>Tseng, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+organization+of+the+extracellular+matrix+regulates+cell%E2%80%93cell+junction+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Spatial organization of the extracellular matrix regulates cell–cell junction positioning.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 109 (5), 1506-1511 (2012).</li>
<li>Chopra, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Augmentation+of+integrin-mediated+mechanotransduction+by+hyaluronic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Augmentation of integrin-mediated mechanotransduction by hyaluronic acid.</a> Biomaterials. 35 (1), 71-82 (2014).</li>
<li>Damljanovic, V., Lagerholm, B. C., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bulk+and+micropatterned+conjugation+of+extracellular+matrix+proteins+to+characterized+polyacrylamide+substrates+for+cell+mechanotransduction+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamide substrates for cell mechanotransduction assays.</a> Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).</li>
<li>Tilghman, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+rigidity+regulates+cancer+cell+growth+and+cellular+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype.</a> PLoS ONE. 5 (9), e12905(2010).</li>
<li>Ulrich, T. A., de Juan Pardo, E. M., Kumar, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mechanical+rigidity+of+the+extracellular+matrix+regulates+the+structure%2C+motility%2C+and+proliferation+of+glioma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">The mechanical rigidity of the extracellular matrix regulates the structure, motility, and proliferation of glioma cells.</a> Cancer Res. 69, 4167-4174 (2009).</li>
<li>Williams, B. J., Anand, S. V., Rajagopalan, J., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+self-propelled+biohybrid+swimmer+at+low+Reynolds+number%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">A self-propelled biohybrid swimmer at low Reynolds number.</a> Nat. Commun. 5, (2014).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Hücresel çekiş stres geçenlerde metastatik devletinin 13 potansiyel biyofiziksel göstergesi olarak ortaya çıkmıştır. Bununla birlikte, primer tümör hücreleri ile deneysel çekiş verileri güncel literatürde bulunmaktadır. Ayrıca, farklı sertlik poliakrilamid jeller doğrudan kültüre izole primer kolon hücreleri henüz bildirilmemiştir. Dolayısıyla, jeller ve polistiren (Şekil 2) bir optimize edilmiş primer kolon hücre kültürü şartlarını da belirlemektedir. Yumuşak jel hazırlanması sırasında hücre...

Mekanik mikro-ortamında, biyo-kimyasal faktörlerin yanı sıra, hücre fonksiyonlarını düzenlemede önemli bir rol oynadığını Son yıllarda giderek daha belirgin hale gelmiştir. Hücreler duyu ve 3-7 (2D kültüründe olduğu gibi) uyulması ya da (3D kültür gibi) çevrili olan substrat sertlik yanıt verebilir. Böyle yaparak, hücreler farklılaşma 3, morfolojisi 4, göç / motilite 5, biyo-fiziksel özelliklerini 6, büyümeyi 7 ve diğer işlemler modüle. Kanser hücreleri aynı zamanda bir yapışma reseptörlerinin koordine, hiyerarşik mekano kimyasal bileşimini ve ilgili sinyal iletim membran proteinleri, hücre iskeleti mimarisi ve moleküler motorlar 1, 2 kullanarak 2D ve 3D matris sertliği cevap. Örneğin, meme epitel hücreleri (MECs) 150 Pa yüzeylere kültüre zaman sertlik benzer normal asiner parankimi formuSağlıklı meme dokusunun. İlginç bir şekilde, bir tümör stromasında 8 sertliğini taklit katı substratlar (&gt; 5000 Pa) üzerinde kültürlenmiştir, yapısal ve transkripsiyonel hem gelişen tümör diğerlerinden ayıran, arzetmektedir. Buna ek olarak, başka bir deney, meme tümör oluşumu kolajen çapraz bağlama ECM 9 sertleştirme ile birlikte göstermektedir. Son deneyler onlar fizyolojik ilgili sertliği (20-47 kPa) olan 2B yüzeylerde kültürlü, ama (3.6 GPa) yüzeylerde çok sert değil, insan kolon karsinoma (HCT-8) hücreleri fenotip (MLP) gibi metastazı görüntüler olduğunu göstermektedir 10- 12 .Bu hücreler ilk bir şekilde tümör-benzeri hücre kümeleri ve daha sonra çevre başlayarak birbirinden ayırmak. Değişim onlar hücre-hücre ve hücre-ECM yapışma azaltmak ve göçmen olmak, çoğalırlar, meydana (R geçiş E) yuvarlak morfolojik bu epitel gibi. Bu sergilemeyen çok sert polistren yüzeylere HCT-8 hücre kültürlerindemalign özellikleri. Böylece HCT-8 hücre nedeniyle uygun mikro-çevre maruz kaldıkları metastatik hale öne sürülmüştür. Bu deneylerin primer insan kanser hücrelerinin ölümsüzleştirilmiş kanser hücresi çizgileri veya murin türetilmiş birincil hücreler, ile gerçekleştirilmektedir kayda değerdir. Yeni bir çalışmada, arttırılmış hücre bir gerilim metastatik hücreler 13 .The çalışma poliakrilamid jeller farklı insan kanser hücre çizgileri için çekme kuvveti ölçme içerir için potansiyel biyofiziksel imza olarak kullanılabilir önermektedir. Bu metastatik kanser hücrelerinin her durumda 13 metastatik olmayan hücreler ile karşılaştırıldığında önemli ölçüde daha yüksek bir gerilim meydana getirebilmektedir bulunmuştur. Ancak, bu sonuçlar direkt olarak fare kaynaklı meme kanseri hücre hatlarında 14 daha önce yayınlanmış bulgularını çelişmektedir. Ayrıca, yeni bir çalışma onların iskelet remodeling pro içinde immortal ve birincil insan hücreleri arasındaki dikkat çekici farklılıkları vurgulamaktadırtein profil ve hücre sağkalım protein ifadesi 15. Bu nedenle, birincil insan kanser hücreleri için çekiş dahil olmak üzere biyo-fiziksel deneyler birçok yeniden önemlidir. Birincil hücreler immortal kanser hücre hatları çekiş trendi özetlemek ister bu soruyu ele alacak. Burada açıklanan protokol ve yumuşak yüzeylerde (poliakrilamid hidrojeller) yanı sıra ilgili Petri kutularına bunları kültürlenmesi için (sağlıklı ve hem kanserli hem de): Primer insan kolon hücrelerin izolasyonu için optimize edilmiştir. Protokol sindirim ve tek bir hücre süspansiyonu 16 içine cerrahi doku örneğinin sonucu enzimatik ayrılma dayanmaktadır. Bildiğimiz kadarıyla, bu doğrudan sitometri çekiş için gömülü floresan mikro yumuşak hidrojel yüzeylerde izole primer kolon tümörü ve normal hücreleri kültür ilk göstergesidir. Şeffaf jel yüzeyler de immün izin verir. Bu deney ortaya F-aktin organizasyon ve farklılıklarYüzey sertliği değişiklikleri gibi birincil insan kolon hücrelerinde fokal yapışıklıklar. Bu hücre kültürü platformu kanser prognoz maddeleri için parametre olarak hücre sertliği ve çekiş olarak birincil insan hücrelerinin çeşitli biyofiziksel özelliklerini keşfetmek olasılığını açılır.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>14175-095</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Lonza</td><td>17-516F</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Worthington</td><td>LS003736</td><td></td></tr><tr><td>Kollajen</td><td>Worthington</td><td>LS004176</td><td></td></tr><tr><td>3- Aminopropiltrimetoksisilan (ATS)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>281778</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehit</td><td>Polibilimleri, Inc.</td><td>01201-5</td><td></td></tr><tr><td>Akrilamid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4058</td><td></td></tr><tr><td>N-metilenbisakrilamid (bis)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1533</td><td></td></tr><tr><td>HEPES tampon çözeltisi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>83264</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum persülfat</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0700</td><td></td></tr><tr><td>İnsan fibronektini</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>354008</td><td></td></tr><tr><td>Hidrazin hidrat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>18412</td><td>Tehlikeli</td></tr><tr><td>Asetik asit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6283</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit&nbsp;</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimleri</td><td>RT15710</td><td></td></tr><tr><td>Sinyal arttırıcı</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>I36933</td><td></td></tr><tr><td>Monoklonal anti vinkülin antikoru&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>V9131</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 keçi anti-fare IgG</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>A11001</td><td></td></tr><tr><td>TRITC phalloidin konjugatları&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>0.1 ve mikro; m fluroscent boncuklar</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>F8801</td><td></td></tr><tr><td>%0,25 Tripsin-EDTA</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Materials</td></tr><tr><td>12 mm2 cam kapak fişleri</td><td>Corning</td><td>2865-12</td><td></td></tr></tbody></table>

cerrahi dokular İlköğretim İnsan kolon tümör hücreleri İzolasyon ve Çekiş sitometrinin yumuşak elastik yüzeyler doğrudan onları kültürleme

Isolation of Primary Human Colon Tumor Cells from Surgical Tissues and Culturing Them Directly on Soft Elastic Substrates for Traction Cytometry

Kanser hücreleri, bir adezyon reseptörlerinin oluşan koordine, hiyerarşik bir mekano-kimyasal sistem ve ilişkili sinyal transdüksiyon zar proteinleri, hücre iskeleti mimarisini, ve moleküler motorlar, 1, 2 ile karmaşık bir şekilde, mekanik sertliği matris yanıt. Mechanosensitivity farklı kanser hücrelerinin in vitro olarak olmayan primer insan kanser hücrelerinin ölümsüzleştirilmiş hücre çizgileri veya murin türetilmiş birincil hücreler, öncelikle incelenmiştir. Bu nedenle, çok az, in vitro olarak, birincil insan kolon kanseri hücrelerinin mechanosensitivity şey bilinmektedir. Burada, optimize edilmiş bir protokol, sağlıklı ve kanserli cerrahi insan doku örnekleri primer insan kolon hücrelerinin izolasyonu açıklayan geliştirilmiştir. İzole kolon hücreleri daha sonra fibronektin (hücre dışı matris tarafından fonksiyonlandırılmış yüzeylerde poliakrilamid hidrojeller ve sert polistiren (~ 3.6 GPa sertlik) (10 kPa sertliği) (2 kPa sertliği), yumuşak ve sert başarıyla kültürebu durumda). Floresan mikro-hücre kültürü yüzeye yakın yumuşak jeller gömülür, ve çekiş tahlil özgür açık erişim yazılımı kullanarak hücresel kasılma stresleri değerlendirmek için yapılır. Buna ek olarak, farklı sertlik yüzeylerde immunofloresan mikroskopi substrat sertlik bir fonksiyonu olarak odak yapışıklıkların içeren birincil hücre morfolojisi, sitoskeleton organizasyon ve vinkülin hakkında yararlı bilgiler sağlar.

Yukarıda açıklanan protokol başarıyla kurumsal inceleme kurulu kuralları uyarınca dört farklı hastalarda birden fazla doku örnekleri (n = 12) için kullanılır. Şekil 1A sağ hücre kültürleri için doku kesitleri elde edildiği ameliyat sonrası temsili kolorektal tümör göstermektedir. Daha sonraki işlemler için laminer başlık transfer edildikten sonra HBSS çözeltisi içinde tipik bir doku kesiti Şekil 1B &#39;de gösterilmiştir. Sindirim ve tek bir hücre süspansiyonu içine cerrahi doku numunes...

Cerrahi kolon tümöründen ve normal dokulardan birincil insan hücrelerini çıkarmak için bir protokol tanımlanmıştır. İzole edilen hücreler daha sonra hücre dışı bir matris proteini tarafından işlevselleştirilen yumuşak elastik substratlar (poliakrilamid hidrojeller) üzerinde kültürlenir ve floresan mikro boncuklarla gömülür. Hücresel kasılma streslerini değerlendirmek için traksiyon sitometrisi yapılır.

Cerrahi Dokular İlköğretim İnsan Kolon Tümör Hücreleri İzolasyon ve Çekiş Sitometrinin Yumuşak Elastik Yüzeyler Doğrudan onları Kültürleme

Cancer cells respond to matrix mechanical stiffness in a complex manner using a coordinated, hierarchical mechano-chemical system composed of adhesion ...

Bu prosedürün genel amacı, cerrahi insan kolon tümöründen ve normal dokudan primer hücreleri izole etmek ve bunları analiz için farklı elastikiyete sahip substratlar üzerinde doğrudan kültüre etmektir. Bu işlem, öncelikle bir insan kolon tümöründen ve normal bir bölgeden cerrahi doku toplanarak gerçekleştirilir. Ardından, kıyılmış dokunun enzimatik disosiasyonu sonucunda çok sayıda tek hücre elde edilir.Son adım, izole edilen hücrelerin nanoboyutlu floresan boncuklar içeren yumuşak poliakrilamid hidrojellerde ve polistiren kaplarda kültüre edilmesidir. Nihayetinde, uzaysal bir hücresel traksiyon haritası elde etmek için traksiyon sitometrisi ve hücre iskeleti organizasyonlarını görselleştirmek için immünofloresan mikroskopi uygulanır. Bu tekniğin temel avantajı, cerrahi dokulardan izole edilen primer insan kolon hücrelerinin, traksiyon sitometrisi ve immünofloresan mikroskop analizleri için farklı sertlikteki substratlar üzerinde doğrudan kültüre edilebilmesidir.Bu yöntem, primer tümör hücresi kontraktilitesinin kanser prognozu için potansiyel bir belirteç olarak kullanılıp kullanılamayacağı sorusuna yanıt aramaya yardımcı olabilir. Başlamak için, metin protokolünde açıklandığı şekilde tümör doku örneğini toplayın. Ardından, dokuyu bir pipet kullanarak altı kuyucuklu ve içerisinde 6-7 mL Hank dengeli tuz çözeltisi veya HBSS bulunan bir plakaya aktarın.Altı kuyucuklu plakayı bir buz kalıbı üzerinde tutun ve dokuyu iki kez HBSS çözeltisi ile durulayın. Ardından, dokuyu steril makasla temiz bir şekilde ayrı bölümlere ayırarak kesin. Steril bir skalpel bıçağı ile dokuyu, boyutları 1 ila 2 mm³'ten büyük olmayacak şekilde daha küçük parçalara ayırın.Dokuyu aktarmadan önce, bir mililitre %0.1 trypsin çözeltisi içeren etiketli %0.1 trypsin flakonunu tartın. Ardından, bir pipet yardımıyla her bir trypsin flakonuna yaklaşık 20 miligram doku aktarın. Doku aktarımından sonra flakonları tekrar tartın ve aradaki farkı doku kütlesi olarak kaydedin.Şimdi, 24 kuyucuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna yaklaşık 20 milligrams doku ve bir milliliter tripsin dökün. 24 kuyucuklu plakayı dört degrees Celsius sıcaklıkta, 16 ila 20 saat boyunca bir çalkalayıcıya yerleştirin. Tripsin içinde 16 ila 20 saatlik inkübasyonun ardından, bir pipet kullanarak dokuyu dört degrees Celsius sıcaklıktaki iki ila üç milliliters komple büyüme ortamına aktarın.Flakonu 37 °C sıcaklıktaki bir su banyosunda 12 ila 15 dakika bekletin. Ardından, dokuyu HBSS çözeltisi içeren 15 mL'lik bir flakona aktarın. Bir pipet kullanarak ve hafifçe çalkalayarak bu adımı ikinci kez tekrarlayın.Ardından dokuyu HBSS çözeltisinden çıkarın ve bir mililitre %0,1 Collagenase çözeltisi içeren bir viyale aktarın. Nemlendirilmiş bir hücre kültürü inkübatöründe, 37 °C sıcaklıkta ve %5 karbondioksit ortamında 45 dakika boyunca inkübe edin. Bekleme süresi boyunca, 15 mililitrelik viyallerdeki büyüme besiyerlerini 37 °C'ye kadar ısıtın. Sonra, collagenase miktarını minimumda tutarak tüm doku fragmanlarını bir pipet ucuna çekin ve sadece doku fragmanlarını önceden ısıtılmış kültüre boşaltın.Besiyeri şişeleri. Ardından, altı kuyucuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna 40 mikronluk bir filtre yerleştirin ve filtreyi bir mililitre hücre kültürü besiyeri ile nemlendirin.Dokuyu, tamamen ayrışana kadar 10 mililitrelik cam pipetle besiyeri içerisinde birkaç kez yeniden askıya alın. Pipet ucunu vial tabanına mümkün olduğunca yakın tutun. Ardından, kalıntıları ve ayrışmamış parçaları uzaklaştırmak için çözeltiyi filtrenin üzerine boşaltın.Besiyerindeki filtrelenmiş hücre süspansiyonunu 150 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Oda sıcaklığında, ardından süpernatanı uzaklaştırın ve hücre peletini iki mililitre taze kültür besiyeri ile yeniden süspande edin. İzole edilen primer hücreleri, istenen konsantrasyonda hücre dışı matris veya ECM fonksiyonelleştirilmiş jeller ile polistiren kaplara ekimleyin.Traksiyon kuvveti mikroskobisi analizini gerçekleştirmek için, öncelikle %0,25 trips içeren %10 SDS'li EDTA çözeltisini bir su banyosunda 10 dakika boyunca 37 °C'ye ısıtın. Traksiyon deneylerinden önce, hücre kültürü inkübatöründen her seferinde bir jel çıkararak mikroskop tablasına yerleştirin. Görüş alanında tek bir hücre bulduktan sonra, Petri kabı kapağını kaldırın ve hücrenin faz kontrast görüntüsünü alın.Ardından, görüntüleme modunu floresansa getirin ve uygun filtreyi seçin. Bu süre zarfında mikroskop tablasını veya örneği hareket ettirmeyin. Daha sonra hücresel traksiyonla yer değiştiren floresan boncukların görüntüsünü alın.Şimdi, hücreyi jelden ayırmak için Petri kabına bir mililitre tripsin SDS çözeltisi ekleyin. Boncukların referans görüntüsünü alın. Hücre çıkarıldıktan sonra, immün boyama yapılacak substratları laminar akışlı kabine taşıyın ve kültür medyumunu uzaklaştırın. Ardından substratları fosfat tamponlu salin veya PBS ile durulayın ve hücreleri oda sıcaklığında 20 dakika boyunca PBS içinde %4 paraformaldehit ile sabitleyin. Substratları beşer dakikalık sürelerle toplam üç kez PBS ile yıkayın.Ardından, substratları 500 µL sinyal artırıcı ile 30 dakika inkübe edin ve ardından PBS ile durulayın. Sonra, hücreleri PBS içinde 1:250 dilüsyonundaki monoklonal anti-vanolin antikoru ile oda sıcaklığında 45 dakika inkübe edin. Daha sonra substratları PBS ile beşer dakika olmak üzere toplam üç kez yıkayın.Numuneleri, PBS içinde 1/200 dilüsyonda LOR 4 88 keçi anti-fare IgG sekonder antikoru ile oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. Ardından substratları PBS ile beşer dakika olmak üzere toplam üç kez tekrar yıkayın. f aktin yapısını görselleştirmek için hücreleri, mililitre başına 50 µL konsantrasyonda tetraetil rodamine phalloidin konjugatları ile oda sıcaklığında 45 dakika inkübe edin.Ardından substratları daha önce olduğu gibi tekrar yıkayın. Son olarak, örnekleri konfokal taramalı lazer mikroskobu kullanarak görüntüleyin; faz kontrastlı mikrograflar, primer insan kolon kanseri ve normal hücrelerin temsili morfolojisini göstermektedir. Substrat sertliğinin bir fonksiyonu olarak, primer kolon hücrelerinin polistiren kaplarda, poliakrilamid jellere kıyasla daha fazla yayıldığı açıkça görülmektedir.Traksiyon analizleri, patolojik hematoksilin ve eozin boyaması ile invaziv adenokarsinom onayı alındıktan sonra ECM kaplı yumuşak iki kilo pascal jeller üzerinde gerçekleştirilir. Burada, yer değiştirmiş ve referans boncuk görüntülerinden elde edilen, jel içine gömülü nano ölçekli floresan boncukların anlık görüntüsü gösterilmektedir. Yer değiştirme alanları, ImageJ particle image velocimetry eklentisi kullanılarak elde edilir.İnvaziv kolon tümör hücreleri tarafından iki kilo pascal'lık bir jel üzerinde oluşturulan temsili bir boncuk yer değiştirme alanı, elde edilen traksiyon stresi ile birlikte gösterilmiştir. Yer değiştirme alanına karşılık gelen Image J Fourier dönüşümü traksiyon sitometri eklentisi kullanılmıştır. Burada, yumuşak iki kilopascal'lık jeller ve sert polistiren alt tabakalar üzerindeki primer insan kolon hücrelerinin f-aktin ve cullin içeren fokal adezyonları gösterilmektedir.Yumuşak jeller üzerindeki daha az yayılmış hücrelerde aktin lifi bulunmamaktaydı. Ayrıca, yumuşak jellerde noktasal cullin içeren fokal adezyonlar mevcuttu. Buna karşılık, primer hücreler sert polistiren alt tabakalarda iyi yayılmış bir morfoloji, belirgin aktin ve stres lifleri ile ayrı, uzamış fokal adezyonlar göstermektedir.Bu prosedürün ardından, atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak hücre sertliği ölçümü gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, cerrahi dokudan enzimatik disosiasyon yoluyla kolon hücrelerinin nasıl izole edileceği ve ardından hücre kontraktilitesini değerlendirmek için bu hücrelerin doğrudan poliakrilamid hidrojeller üzerinde nasıl kültüre edileceği konusunda iyi bir anlayış kazanmış olmalısınız.

isolation-primary-human-colon-tumor-cells-from-surgical-tissues

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu videoda çekiş kuvveti mikroskobu testi açıklanmaktadır. Tahlil, gömülü floresan boncuklara sahip yumuşak elastik hidrojel üzerinde bulunan hücre dışı matris üzerindeki insan kolon kanseri hücrelerinin hücresel çekişini belirler. Floresan boncukların ortaya çıkan yer değiştirmesi, uygun bir yazılım kullanılarak ölçülür.

Traksiyon Sitometrisi Testi: Kanser Hücrelerinin ECM Üzerine Uyguladığı Traksiyon Kuvvetini Ölçmek İçin Bir Yöntem

Bu videoda, substrat sertliğine bağlı olarak varyasyonlarını anlamak için birincil insan kolon kanseri hücrelerinde hücre iskeleti ve fokal adezyonları inceleme tekniği açıklanmaktadır. Yumuşak ve sert substratlar üzerindeki bu kanser hücresi kültürü, kanser prognozu için çeşitli aşağı akış biyofiziksel ölçümlere izin verir.

Hücre İskeleti ve Fokal Adezyon Organizasyon Testi: Hücre Adezyonunu ve Substratlar Üzerine Yayılmasını İncelemek İçin İmmünofloresan Tabanlı Bir Yöntem

Primer fare kolon tümörü organoid kurmak için basit bir yöntem açıklanmıştır. Bu yöntem kolon tümör hücreleri hayatta kalmak ve epitel normal bir kolon yok ise, sınırlı büyüme faktörleri içeren ortamlarda organoids içine büyümeye bu özelliği kullanır.

Birincil Fare Colon Tümörler in vitro organoid Kültür

Miyofibroblast normal ve hastalık her iki durumda önemli fizyolojik işlemleri düzenleyen gastrointestinal sistemin etkili bir stromal hücresidir. Biz, fare ve in vitro deney için kullanılabilir insan kolon dokusu, hem birincil miyofibroblastlar izolasyonu sağlayan bir tekniği açıklar.

Fare ve İnsan Kolon Doku Primer miyofibroblastlar İzolasyonu

Sentetik, doku mühendisliği kolorektal kanser modelleri, lazer microdissected stroma hücreleri ve moleküler profil invaziv ön ve kanserle ilişkili stromal hücre tümör hücreleri arasındaki ara yüzeyde ayırt edici karakterize biyoloji ve incelemek için bir yeni ve manuel olarak kullanılabilen bir yaklaşımı temsil etmektedir.

Moleküler Kolorektal Kanser Hücrelerinin bir 3-Boyutlu Modeli İnvaziv tümör mikro Profili ve<em&gt; Ex vivo</em&gt; Fibroblastlar

Farelerin çekumuna tümör hücreleri veya organoidler enjekte edilerek ortotopik kolorektal tümörlerin oluşumunu ve ardından bu modelden dolaşımdaki tümör hücrelerinin (CTC'lerin) izole edilmesini açıklıyoruz.

Kolorektal kanserli bir Ortotopik Fare Modelinde Dolaşan Tümör Hücrelerinin İzolasyonu

Aşağıdaki iletişim kuralı hasta elde edilen yumuşak doku sarkomu (STS) birincil kültürünün kurulması üzerinde duruluyor. Bu model bize moleküler arka plan ve bu nadir maligniteler farmakolojik profil daha iyi anlamak için yardımcı ve daha fazla STS yönetimi iyileştirme amaçlı araştırma için bir başlangıç noktası temsil edebilir.

Hasta elde edilen yumuşak doku sarkomu birincil kültürünün kurulması

Tümör endotel hücrelerinin tümör microenvironment önemli belirleyicileri ve hastalığın seyrini vardır. Burada, saf ve uygun endotel hücre insan kolorektal karsinom ve uyuşturucu testi ve Patogenez araştırmalarda kullanılmak üzere normal kolon yalıtımı için bir protokol açıklanmıştır.

Yalıtım Normal kolon ve kolorektal Karsinom - gelişmiş bir iletişim kuralı üzerinden insan endotel hücrelerinin

Bu protokol, primer kanser hücrelerinden 3D tümör kültürü modelleri oluşturmayı ve hücre canlılık testleri ve mikroskobik incelemeler kullanarak ilaçlara duyarlılıklarını değerlendirmeyi açıklamaktadır.

Hasta Kaynaklı Tümör Örneklerinden 3 Boyutlu Sferoidlerin Oluşturulması ve İlaçlara Duyarlılıklarının Değerlendirilmesi

Tümör organoidleri, kanser araştırmalarında ve kişiselleştirilmiş tıp yaklaşımında devrim yarattı. Araştırmacıların klinikte tümörden bir adım önde olmalarını sağlayan klinik olarak ilgili bir tümör modelini temsil ederler. Bu protokol, taze pankreas tümör dokusu örneklerinden ve pankreas adenokarsinomu kökenli hasta kaynaklı ksenogreftlerden tümör organoidlerini oluşturur.

Taze dokudan pankreas kanseri kaynaklı tümör organoidlerinin ve fibroblastların oluşturulması

Protokol, etkileşimlerini ve terapötik potansiyellerini incelemek için tümör infiltre eden lenfositler (TIL'ler) ile birlikte kültürlenmiş, hasta kaynaklı bir kolorektal kanser (CRC) organoid modeli oluşturmak için bir yöntemi açıklar. Bu model, tümör mikroçevresindeki immün yanıtları araştırmak ve kişiselleştirilmiş KRK tedavisi için TIL bazlı tedavinin etkinliğini tahmin etmek için klinik öncesi bir platform sağlar.

Hasta Kaynaklı Kolorektal Tümör Organoidleri ve Tümör İnfiltre Eden Lenfositlerden (TIL'ler) Oluşan Bir Ko-Kültür Sisteminin Kurulması

Öğrenin cerrahi kolon tümör dokularından primer insan hücreleri izolasyonunu ve yumuşak elastik yüzeylerde çekiş sitometrisi ile analiz yöntemini. Bu teknik hücre mekaniği ve tümör biyolojisi araştırmalarında değerli veriler sağlar.

Cerrahi Dokular İlköğretim İnsan Kolon Tümör Hücreleri İzolasyon ve Çekiş Sitometrinin Yumuşak Elastik Yüzeyler Doğrudan onları Kültürleme (Video) | JoVE Journal

Cerrahi Dokular İlköğretim İnsan Kolon Tümör Hücreleri İzolasyon ve Çekiş Sitometrinin Yumuşak Elastik Yüzeyler Doğrudan onları Kültürleme

Daha fazla video keşfet