Name: Adım Adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek Mikrocerrahi eğitim yöntemi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 25 s
Description: Öğrenin, tavuk uyluk ve kanat modelleri kullanarak mikrocerrahi eğitim yöntemini. Bu teknik, canlı hayvan kullanmadan damar dikisi becerileri kazandırır ve cerrahların klinik uygulamalara hazırlanmasını sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarların teşekkür hakkı yok.

1. Hazırlama: <ol><li> 45x zoom bir değişken 3,5 x ile, bir masa stereo mikroskop edinin, 200 mm çalışma mesafesi, 55-75 mm değişken arası pupiller mesafe ve bir aksesuar halkası led ışık. Herhangi benzer mikroskop küçük bir masanın üzerine kurulabilir, yeterli ve son derece pahalı değildir. </li><li> Toplayın ve iki mikrocerrahi manyetikler, tek kesme makas, ve bir iğne sürücü ile mikrocerrahi aletleri bir dizi hazırlamak; Bu gereken en düşük, bu uygulama aracı olan ve yüksek son kaliteli araçlar gerekli değildir dikkate alınmalıdır. </li><li> Tüm uygulamalar için 9/0 monofilament mikro sütür kullanın. Yerel süpermarkette tavuk uyluk ya da kanatları ve gıda renklendirici piyasadan temin satın alın. </li><li> A 20 G anjiyo-kateter tavuk femoral arterler üzerindeki açıklık testleri için kullanılır. Brakiyal arterler için daha ince 27 G kateter gereklidir. Bunlar yerel Eczacılık internet üzerinden elde edilebilir ya daset enstrümanlarla. Gıda renklendirici enjekte etmek için piyasada mevcut şırınga al. </li></ol> 2. Makroskopik diseksiyon teknikleri: <ol><li> femoral damarların yaklaşım basittir. Tavuk uyluk için, bir künt diseksiyon tekniği sadece femur şaft medial gerçekleştirmek kemik femur kas ayırmak ve femoral arter, ven ve sinir maruz kalmaktadır. Sinir ayrıca sinir onarım uygulamalarının farklı türleri için iki ayrı fasiküller halinde disseke edilebilir. </li><li> Kanat ucuna kadar olan omuzdan, bir makas ile uzunlamasına deri, tavuk kanatları tavuk brakiyal arter erişmek kesilirken için. Biceps ve triseps brachii&#39;nin arasında çalışan arter gözlemleyin. </li></ol> 3. Önerilen eğitim rejimi: <ol><li> Femoral arter ile Eğitim. NOT: Eğitim rejiminde ilk adım tavuk femoral arter ile uygulama olduğunu. </li></ol><ol><li> Mikroskop altında parça yerleştirin ve mikrocerrahi diseksiyon başlar. Altta yatan dokulardan femoral arter özgür; ve yatay olarak bölmek. Bir adventicectomy gerçekleştirin. Arteriyel lümen örten herhangi adventicia trim mikro manyetikler ve mikro-makas kullanın. Düzenli musluk suyuyla iç lümen durulayın. Başlangıç ​​saati bir yere yazın </li><li> Anastomoz uçtan uca bir gerçekleştirin. <ol><li> Operatöre karşı tarafında arter arka duvarda başlatın. İlk dikiş yerleştirin; dikey çalışma ise alt tarafta, yatay çalışma ise sol tarafta başlayacak. Arterin dışına lümeninden sonra lümenin doğru arterin dışından iğne geçirin ve. </li><li> , Dikiş Kravat ilk çift düğüm gerçekleştirmek ve sonra iki tek alternatif yön atar. Yukarıda tarif edilen tekniği ile tüm arka duvarını tamamlayın. </li><li> Eğer wo iseniz yatay çalışan ya da üst tarafı ise sağ tarafta başlayarakdikey rking dışarıya lümenden daha sonra lümen dışında tek bir dikiş koyun. Yukarıda açıklandığı gibi düğüm. 3.1.2.2 açıklanan yordamı yinelenen ön duvarı tamamlayın. </li><li> Bu bir zaman kaydını tutmak sağlayacak nihai zaman bir yere yazın, böylece ilerleme kontrol edebilirsiniz. NOT: Yazarlar tek yönlü yukarı tekniği tercih; ancak mikrocerrahi sütür her türlü prova edilebilir. O diğer klinik senaryolar deneyebilirsiniz önce stajyer bu şekilde yaklaşık 25 mikrocerrahi anastomoz tamamlar önerilebilir. Bu damar arter boşluklar aşılama sinir onarım uç uca ve sinir boşluklar tedavisi için damar boruları kullanımını içerir. Bu eğitim yöntemi ile öğrenilebilir mikrovasküler cerrahi önemli bir tekniktir, olmadan 3.1.2.1 gibi dikiş gerçekleştirmeye devam 3.1.2.1 olarak bu tekniği stajyer gelirleri gerçekleştirmek ancak stich kesmek değil, sürekli ya da devamlı sütür olduğunu Onlara u kesmentil Eğer bütün sütür tamamlamak ve sonunda orijinal dikiş kravat. </li></ol></li></ol><ol start="2"><li> Brakial arter ile Eğitim <ol><li> Mikroskop altında parça yerleştirin. Femoral arter için yukarıda tarif edilen prosedür tamamlayın. NOT: Tek fark boyutudur. Brakiyal arter femoral arter çok daha küçüktür ve anastomoz çok daha zordur. </li></ol></li><li> Açıklık testleri <ol><li> Birlikte hem damar duvarlarını dikilmesi dikiş kaynaklanan engellerden kontrol etmek için, anastomoz yoluyla pürüzsüz 20 veya 27 G anjiyo-kateter çapraz. </li><li> Jet sızıntı testi için artere boya anjiyo-kateterin ucuna ticari gıda renklendirici ile bir şırınga uygulanır ve serpmek </li><li> Dikiş, kendi paralelliği ve alınan duvarın miktarını görselleştirmek için uzunlamasına arter açın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+events+on+development+of+experimental+microsurgical+organ+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Yonsei+Med+J%22%5BJournal%5D)">Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation.</a> Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).</li>
<li>Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+model+in+microsurgery+education%3A+classical+exercises+and+new+horizons%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons.</a> Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).</li>
<li>Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cadaveric+infusi%C3%B3n+model+for+neurosurgical+training%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Neurol%22%5BJournal%5D)">Human cadaveric infusión model for neurosurgical training.</a> Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).</li>
<li>Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsilicone+anastomoses%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsilicone anastomoses.</a> Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).</li>
<li>Gluer, N. M., Rao, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Canniesburn+%E2%80%9Cever-ready%E2%80%9D+model+to+practise+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery.</a> Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).</li>
<li>Hino, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Training+in+microvascular+surgery+using+a+Chicken+wing+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery.</a> Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).</li>
<li>Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+the+Chicken+thigh+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training the Chicken thigh model.</a> Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).</li>
<li>Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+with+fresh+chicken+legs+and+their+histological+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics.</a> Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).</li>
<li>Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+regimen+with+nonliving+chicken+models%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training regimen with nonliving chicken models.</a> Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).</li>
<li>Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+using+a+pulsatile+membrane+pump+and+chicken+thigh%3A+A+new%2C+realistic%2C+practical%2C+nonliving+educational+model%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model.</a> Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).</li>
<li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant%22%5BJournal%5D)">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Mikrocerrahinin klinik pratiği, sürekli bir uygulama ve yüksek düzeyde uzmanlık gerektirir; Uygulamaları arasında serbest flepler, replantasyon ve revaskülarizasyon prosedürleri, beyin cerrahisi prosedürleri için intrakraniyal – ekstrakraniyal anastomozlar, periferik sinir cerrahisi ve diğerleri yer alır. Mikrocerrahi teknikler gerektiren çok çeşitli prosedürlere rağmen, bazıları birçok merkezde nadiren uygulanmaktadır. Bu nedenle cerrahların bazen ameliyatları farklı uygulama modellerinde prova etme becerilerini koruma...

Hem temel hem de ileri mikrocerrahi becerilerin öğrenilmesi ve sürdürülmesi için çok çeşitli eğitim modelleri tanımlanmıştır. Bunlar arasında canlı hayvanlar1,2, insan kadavra örnekleri3, inert modeller4,5 ve cansız hayvan modelleri6-9 bulunur. Canlı hayvan modelleri, özellikle sıçanları kullananlar, mikrocerrahi öğretiminde yaygın olarak kullanılmıştır 1,2; Ve mevcut altın eğitim standardı olarak kabul edilirler. Dikkate değer öğretici değerlerine rağmen, yoğun veya uzun süreli bir eğitim gerektiğinde; Ekonomik ve etik kaygılar pratik kullanımlarını engelleyebilir. 
Kadavra modelleri3, gerçek klinik duruma benzer bir ortamda pratik yapma fırsatı sunar; ne yazık ki anatomi laboratuvarları ve benzeri olanaklarla sınırlıdır, laboratuvarda da bir mikroskop bulunması gerekir; bu nedenle bu modeller yaygın olarak bulunmaz. Kauçuk tüpler veya eldivenler4,5 gibi inert modeller ucuzdur ve kolay erişilebilirdir, uygulamaları için gerekli ekipman minimumdur. Bununla birlikte, klinik bir duruma benzerlik zayıftır; Ve uygulamaları genellikle, kursiyer fareler üzerinde pratik yapmaya başlamadan önce, eğitimin giriş aşamalarıyla sınırlıdır. Bildiğimiz kadarıyla, Hino6, klinik mikrocerrahi becerilerin geliştirilmesi ve sürdürülmesi için canlı olmayan tavuğun kullanılmasını öneren ilk kişiydi. Modeli, ticari tavuk kanatlarından tavuk brakiyal arterinin çıkarılmasına ve ardından kullanılmasına dayanmaktadır. Bu yaklaşım, kurum inceleme kurulu onayı, kemirgen anestezisi, laboratuvar teknisyenleri veya ameliyat sonrası bakım gerektirmez. 
Hino'nun tavuk kanadı arter modelini tanımlamasının ardından çok sayıda başka cansız hayvan modeli yayınlandı. Ticari tavuk butlarının kullanımı ilk olarak femoral arter, ven ve sinirin didaktik amaçlarla kullanıldığını bildiren Marsh ve ark.7 tarafından önerilmiştir. Bu özel model, arterlerden farklı yapılar dahil olmak üzere eğitim olanaklarını genişletir; Kursiyerin damar greftleri, sinir greftleri veya fasiküler onarımlar gibi çeşitli karmaşık prosedürleri gerçekleştirmesine izin verir. Jeong ve ark.8 Marsh'ın tavuk budu modelini ve bunun asistan doktorların öğretimine uygulamalarını daha fazla incelediler. Yazarlar tavuk dokusu örneklerini histolojik olarak analiz ettiler ve insan dokularına benzerlikler gösterdiğini buldular. Kursiyer tarafından anastomoz yapma süresi, çalışmalarındaki uygulama ile önemli ölçüde azaltılmıştır. "Femoral nörovasküler tavuk demetlerinin mikrocerrahi öğretimi ve uygulaması için uygun ve etkili bir model olduğu" sonucuna vardılar. 2013 yılında meslektaşlarım ve ben9, hem tavuk budu hem de tavuk kanadı modellerini birleştiren bir mikrocerrahi eğitim rejimi yayınladık; Bu yaklaşım, tavuk butlarının çok yönlülüğünden ve daha ileri düzeydeki kursiyerler için femoral damarlardan daha fazla zorluk teşkil edebilen tavuk kanadı arterinin sınırlı boyutundan yararlanır. 
Mevcut el yazması üzerinde bir mikrocerrahi uygulama istasyonu kurma sürecini adım adım anlatıyoruz; gerekli materyalleri, her modelin nörovasküler yapılarının nasıl diseke edileceğini ve eğitim rejiminin nasıl etkili bir şekilde uygulanacağını anlatıyoruz.

<table><tbody><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Amscope</td><td>SM-1BX</td><td>Mikroskop</td></tr><tr><td>Led ışık</td><td>Amscope</td><td>LED-80S-YA</td><td>aydınlatma sistemi</td></tr><tr><td>Mikrocerrahi aletler seti</td><td>Chen tavuk mikrocerrahi aletleri</td><td>HC-X803-1</td><td>Mikrocerrahi aletler</td></tr><tr><td>Mikrocerrahi sütürler</td><td>S/T mikrocerrahi</td><td>9/0</td><td>Sütür Sütürler</td></tr></tbody></table>

adım adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek mikrocerrahi eğitim yöntemi



Step By Step: Microsurgical training method combining two nonliving animal models

Mikrocerrahi tekniklerin öğrenilmesi ve mikrocerrahi becerilerin sürdürülmesi geleneksel olarak canlı hayvanların, özellikle de laboratuvar farelerinin kullanımına dayanmaktadır. Bu yöntem, son derece değerli olmasına rağmen, hem cerrah hem de sponsor kurum için ekonomik açıdan zorlayıcı olabilir; Ayrıca, her zaman mevcut veya erişilebilir olmayabilecek özel eğitim tesisleri gerektirir. Ayrıca, etik kaygılar, canlı hayvanların eğitim amaçlı kullanımını sınırlayabilir. İnert tüpler ve eldivenler gibi alternatif eğitim yöntemleri, klinik bir duruma benzer bir deneyim sunmadıkları için cerrahlar arasında popülerlik kazanmamıştır. Canlı olmayan hayvan modelleri arasında tavuk budu ve kanatlarının kullanımı; Önemli ölçüde klinik bir duruma benzeyen bir uygulama deneyimi sunarlar. Bu tür bir eğitim nispeten ucuzdur ve kolayca temin edilebilir. Gerekli mikroskop ve aletler internet üzerinden temin edilebilir ve tavuk parçaları yerel süpermarketten satın alınabilir.
Bu yaklaşım, motive olmuş bir kursiyerin makul bir maliyetle farklı türdeki cerrahi teknikleri birkaç kez prova etmesine olanak tanır ve daha karmaşık tesisler mevcut değilse cerrahi uzmanlığını geliştirmeye veya sürdürmeye yardımcı olur. Mevcut el yazmasında, küçük bir uygulama istasyonunun nasıl kurulacağını, örneklerin nasıl inceleneceğini ve hem tavuk butları hem de tavuk kanatları ile aşamalı bir şekilde nasıl pratik yapılacağını açıklıyoruz. Bu yaklaşım, tavuk budu modelinin çok yönlülüğünden ve tavuk kanadı Brakiyal arterinin küçük boyutundan yararlanır.

Yazarlar, bu eğitim yöntemi ile kere chronometered ve anlamlı üçüncü haftanın sonunda bir femoral arter için anastomoz sürelerini azaltmak için bunu gördük. stajyer onun kez onun açıklık yüzdeleri ve dikiş uyum kontrol ederek onun tekniği iyileştirmeler kontrol edebilirsiniz. Bu yazıda anlatılan sistem, bir masa mikroskop ve mikrocerrahi aletleri bir dizi içerir Şekil 1&#39;de gösterilmiştir. makroskopik disseksiyonları, Şekil 2 ve 3, bir femoral arter mikro anastomoz bir örneği gösterilmiştir 4. Şekil 5, brakiyal arter...

Burada küçük bir mikrocerrahi uygulama istasyonunun nasıl kurulacağını ve canlı olmayan hayvan modelleriyle mikrocerrahi eğitimi için basit ve ucuz bir yöntemin nasıl kurulacağını anlatıyoruz.

Adım Adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek Mikrocerrahi eğitim yöntemi

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, iki cansız hayvan mikrosuerjikal modelini birleştirerek bir mikrosuerjikal eğitim yöntemi geliştirmektir. Daha önce mikrosuerjikal deneyimi olmayan bir eğitimci için, öncelikle femoral arter, ven ve siniri açığa çıkarmak amacıyla ticari olarak temin edilebilen bir tavuk budağının mikroskobik diseksiyonu önerilir. Ardından, istenen mikrosuerjikal tekniği uygulamak için doku mikroskop altına yerleştirilir.Örneğin, tavuk femoral arterinin uç uca sütürü. Kursiyer uyluk dokusuyla çalışmaya alıştıktan sonra, prosedür ticari olarak temin edilen tavuk kanatlarında bulunan daha küçük bir brakiyal arter ile pratik edilebilir. Nihayetinde, tavuk femoral ve brakiyal arterleri ile bu mikrocerrahi tekniklerin mükemmelleştirilmesi, nörocerrahı daha küçük canlı hayvan modellerinde ve klinik senaryolardaki çalışmalara hazırlayabilir.Bu tekniğin, sıçanlarla yapılan Mikrocerrahi eğitimi gibi mevcut diğer yöntemlere göre temel avantajı, anestezinin gerekmemesi ve özel tesislere ihtiyaç duymamasıdır; bu durum ekonomik maliyetleri ve hayvan kaybını minimize eder. Tavuk uyluğunun femoral damarları ve siyatik siniri, femoral şaftın hemen medialinden parmakla geçilerek kolayca açığa çıkarılabilir. Ardından, tavuk femoral arteri üzerinde tek yönlü teknikle uç uca anastomosis pratiği yapmak için, femoral şafta paralel konumdaki diseksiyon düzleminin yakınında femoral baş gözlemlenebilir.Ardından dokuyu mikroskop altına yerleştirin. Femoral arter, ven ve siyatik sinirin konumu artık gözlemlenebilir olmalıdır. Arteri altındaki dokulardan ayırın ve yatay olarak kesin.Ardından, mikro pensetler ve mikro makaslar kullanarak arter lümeninin üzerindeki adventisyayı temizleyin ve ardından iç lümeni normal musluk suyu ile durulayın. Zaman tutuluyorsa başlangıç saatini kaydedin; ardından ilk dikişi femoral arterin dokunun uzak tarafındaki arka duvarından başlayarak atın, iğneyi arterin dışından lümene doğru, ardından lümenden arterin dışına doğru geçirerek dikişi bağlayın. Önce çift bir düğüm atın, ardından dönüşümlü yönlerde iki tek atış yapın.Ardından, iğneyi az önce gösterildiği gibi ileri geri geçirerek tüm arka duvarı tamamlayın. Sonra, damarın ön duvarına dışarıdan lümene ve ardından lümenden dışarıya doğru tek bir dikiş atın. Ardından, az önce gösterildiği gibi düğümü atın ve ön duvarı, daha önce açıklanan şekilde tek dikişler kullanarak tamamlayın.Ve bitişi kaydedin. Tavuk brakiyal arteri üzerinde pratik yapma zamanı. İlk olarak, makas kullanarak cildi omuzdan kanat ucuna kadar boylamsal olarak kesin.Arter artık ok uçlarıyla gösterildiği gibi biceps ve triceps brachii kasları arasından geçerken gözlemlenebilir. Her iki mikrocerrahi prosedürün açıklığını test etmek için, tıkanıklıkları kontrol etmek amacıyla anastomozdan düz bir 20 veya 27 gauge anjiyo kateteri geçirin. Ardından, kateterin ucuna ticari gıda boyası yüklü bir şırınga takın ve sızıntı testi yapmak için boyayı artere perfüze edin.Son olarak, dikişleri, paralelliklerini ve buradan alınan duvar miktarını görselleştirmek için arteri boylamasına açın. Az önce gösterildiği gibi tekli dikişlerle tek yönlü yukarı teknikle gerçekleştirilen bir femoral arter uç uca sütürünün mikroskobik görüntüsü gösterilmektedir. Bu görüntüde ise, bir tavuk brakiyal arterinin temsili uç uca sütürü sunulmuştur.Brakial arter, femoral arterden çok daha küçüktür ve bu durum prosedürü teknik olarak çok daha zor hale getirir. Tavuk uyluğu modeli oldukça çok yönlüdür ve farklı tipte uygulama egzersizlerine olanak tanır. Nitekim, bu temsili deneyde, femoral venden alınan bir ven grefti ile femoral arter onarımı gerçekleştirilmiştir.Bu videoyu izledikten sonra, uç uca arter anastomozu veya tavuk femoral veya radial arter anastomozu yapma konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Ayrıca, sonuçlarınızın başarısını nasıl değerlendireceğinizi öğrenmiş olmalısınız.

step-step-microsurgical-training-method-combining-two-nonliving

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bir fare abdominal aort bir bölüm sadece bir allojenik veya sinjenik alıcı olarak renal arterler aşağıda orthotopically transplante edildiği bir yöntem açıklanmaktadır. Bu teknik, birörnek büyük arter nakli avantajlı olarak kabul edilir olan çalışmalarda yararlı olabilir.

Damar Hastalığı Çalışmaları Farelerde Ortotopik Aort Nakli

Bu video, tümör nekroz faktörü ile ilişkili apoptoza neden olan ligand veya TRAIL'i eksprese eden genetik olarak tasarlanmış mezenkimal kök hücreler veya MSC'ler ile tohumlanmış bir biyo-iskelenin görüntü kılavuzluğunda tümör rezeksiyonu ve implantasyonu için cerrahi prosedürü sunar. Bu terapötik MSC'ler beyin tümörlerinin tedavisinde potansiyele sahiptir.

Murin Modelinde Floresan Eşliğinde Tümör Rezeksiyonu ve MSC Tohumlu İskele İmplantasyonu: Fare Modelinde Terapötik Mezenkimal Kök Hücrelerin Beyin Tümörü Rezeksiyon Boşluğuna Verilmesi İçin Cerrahi Bir İşlem

Kombine katı organ ve vaskülarize kompozit allotransplantasyonu incelemek için, servikal dikişsiz manşet tekniği kullanarak farelerde yeni bir heterotopik en blok göğüs duvarı, timus ve kalp nakli modelini açıklıyoruz.

Farelerde A Novel Mikrocerrahi Heterotopik Modeli, En Bloku Göğüs Duvarı, Thymus ve Kalp Nakli

Formaldehit sabit insan Kadavra beyin cerrahı elektrot dizilerin implantasyon yeni korteksimiz insan beyninin içine için eğitim yardımcı olmak için kullanılan bir yordam dizayn ettik.

Bir insan Kadavra formaldehit sabit modeli kullanarak Neocortical elektrot dizilerin implantasyonu için cerrahi eğitim

Burada domuz üstün epigastrik arter perforator flap baş ve boyun mikrovasküler yeniden inşası için bir öğrenme modülü olarak kullanmak için bir iletişim kuralı mevcut.

Baş ve boyun mikrovasküler rekonstrüksiyon için bir eğitim modülü olarak domuz

Bu makalenin amacı, anatomik ve cerrahi bilgi ve becerileri geliştirmek amacıyla uygun fiyatlı ve yakından benzer hayvan laringeal modellerinde laringeal cerrahi için tekrarlanabilir bir laboratuvar düzenlemektir.

Diseksiyon Laboratuvarında Modern Laringeal Cerrahi Öğrenme

Bu yazıda heterotopik vaskülarize kardiyak transplantasyon için modifiye edilmiş bir teknik, güncel aseptik teknik, analjezi ve anestezi anlatılmaktadır.

Çağdaş Aseptik Teknik, Anestezi ve Analjezi Standartlarına Uygun Modifiye Murin Heterotopik Kalp Nakli Protokolü

Enjeksiyondan sonra bir fare modelinde intrakarotis arterin onarımı, enjekte edilen materyalin dağılımını olumsuz etkilemeden kan akışını artere geri döndürür. Enjeksiyon bölgesi onarımı, aynı arterden sonraki enjeksiyonları kolaylaştırır ve tam bir Willis Çemberi olmayan fare suşlarında serebral iskemiyi önler.

Fare Modellerinde Tekrarlanan İntrakarotis Enjeksiyonlarının Yeni Bir Enjeksiyon Alanı Onarım Tekniği ile Kolaylaştırılması

Bir fare modelinde floresan etiketli demir oksit nanopartiküllerinin glioblastoma tümör iletiminin iki foton mikroskobu için yeni bir yaklaşım sunuyoruz.

Bir Murin Modelinde Glioblastomun İki Fotonlu İntravital Mikroskobu

Bu protokol, floresan polistiren mikrosferler kullanılarak in vivo iki foton mikroskopi görüntüleme için optimize edilmiş kronik kraniyal pencere ve mikrovasküler embolizm fare fare modeli için adım adım yaklaşımın ayrıntılı bir açıklamasını içerir.

Floresan Polistiren Mikrosferleri Kullanarak In Vivo İki Foton Mikroskopi İçin Mikrovasküler Embolizm Fare Modeli

Heterotopik arka uzuvdan boyuna vaskülerize kompozit allotransplantasyonlu tekrarlanabilir bir fare modeli sunuyoruz. Bu süpermikrocerrahi protokol, 0,3-0,5 mm damar anastomozlarını içerir ve naylon filament yönlendirmesi ile venöz kelepçeleme ile birleştirilir. Vaskülerize kompozit allotransplantasyonda tolerans, iskemi-reperfüzyon hasarı ve immünolojik mekanizmalar üzerine translasyonel çalışmalar için güvenilir bir platform sağlar.

Farede Heterotopik Arka Uzuvdan Boyuna Nakil: Vaskülerize Kompozit Allotransplantasyonun Süpermikrocerrahi Modeli

Öğrenin, tavuk uyluk ve kanat modelleri kullanarak mikrocerrahi eğitim yöntemini. Bu teknik, canlı hayvan kullanmadan damar dikisi becerileri kazandırır ve cerrahların klinik uygulamalara hazırlanmasını sağlar.

Adım Adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek Mikrocerrahi eğitim yöntemi

Daha fazla video keşfet