Name: Timus Karakterizasyonu kullanma Fare Embriyo atalarıdır Settling In Vivo Ve In Vitro Tahliller (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 56 s
Description: Öğrenin fare embriyolarından timik yerleşen öncü hücreleri karakterize etmeyi ve T hücre soylarının gelişimini in vivo ve in vitro analizlerle incelemeyi. Bu yöntem, bağışıklık araştırmalarında önemli bilgiler sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Pasteur Enstitüsü, INSERM, Agence Nationale de Recherche ANR (Grant &#39;lenfopoiezis&#39;), REVIVE Gelecek Yatırım Programı ve &quot;contre le Kanser La Ligue&quot; tarafından desteklenir.

Etik deyimi: Bütün deneyler Fransız Tarım Bakanlığı tarafından onaylanmış Pasteur Enstitüsü Etik Şartı göre gerçekleştirilen ve AB direktiflerine bulundu. Fransa Tarım Bakanlığı tarafından onaylı küçük kemirgen cerrahisi eğitimi olan bir manipülatör, tüm cerrahi müdahaleler yapar. NOT: 5 aşamalı planı prosedürünü gösteren Ek Tablo 1&#39;de bakın. Embriyolar 1. Seçim <ol><li> 36 C57BL / 6 CD45.2 kadın, 12 kadın CD45.1, 12 C57BL / 6 CD45.1 erkek ve 12 C57BL / 6 CD45.2 erkekler kullanın. Erkek genotip ile ya kadın Geçiş embriyolar CD45.1 / 2 ve CD45.1 alıcı timik lobların bir kaynak olarak kullanılabilir veya TSP CD45.2 bir kaynak olarak kullanılabilir üretecektir. Ev tek bütün erkekler. </li><li> , E18 TSP izolasyonu için embriyolar elde 21 gün aşılama deneyden önce 06:00, az bir erkek CD45.1 ile bir kafes içinde 2 kadın yerleştirmek için. Öğleden önce, ertesi gün bir vajinal fiş varlığını kontrol edin. Sepatakılı kadın oranı. </li><li> E14 embriyolar elde etmek için TSP tarafından kolonize edilmesi, 17 gün aşılama deneyden önce erkek CD45.2 kullanarak, (1.2) Yukarıdaki işlemi tekrarlayın. </li><li> E13 TSP izole etmek için embriyolar elde etmek için, 16 gün aşılama deneyden önce, erkek C57BL / 6 CD45.1 kullanarak, (1.2) Yukarıdaki işlemi tekrarlayın. </li></ol> Bir yatay Laminar Flow Hood altında Embriyolar 2. diseksiyonu NOT: aşılama deneyden önce iki gün. <ol><li> Bir doyurarak kapalı bir odada, en az 5 dakika boyunca, servikal dislokasyon ile veya CO2 gazı aşamalı uygulama hamile kadın Kurban. Kardiyo-solunum hareketlerinin kesin tutuklama ile ölüm sağlayın. % 70 etanol ile karın ıslak. </li><li> Orta hat karın derisinde uzunlamasına bir kesi yapmak ve birbirinden cilt çekerek açın. Sindirim sistemi dokunmadan forseps ve makas ile periton açın. Bifid uter çekinBizim makas ile vajinadan ayırmak ve. </li><li> 40-50 ml DPBS içeren 90 x 15 mm Petri kabındaki rahim yerleştirin ve her embriyonun desidua arasında enine kesti. </li><li> Ince uçlu makas çifti ve ince forseps ile rahim kas membran kaldırmak plasenta ve yolk kesesi arasındaki kesim tarafından embriyoların almak ve embriyoların istinat olduğu amnios kaldırmak. </li><li> Petri kabı embriyolar yerleştirin HBSS +% 1 fetal buzağı serumu içeren 90 x 15 mm (FCS) üretildi. E15 daha embriyolar yaşlı için, başka diseksiyonu önce bir makas ile kafaları çıkarın. </li></ol> Thymus 3. İzolasyonu <ol><li> Binoküler büyütücü mercek altında, ıslak bir gazlı yatak üzerinde, yatar pozisyonda (ventral görünüm) yatan, embriyo yerleştirin. </li><li> Uzunlamasına sternum kıkırdak boyunca bir forseps yerleştirin çimdik ve göğüs ızgara açın. Kavisli bir forseps ile t görselleştirmek için bir kenara göğüs duvarı çekintrakea her iki tarafında hymic loblar. </li><li> Dikkatle ince bir forseps ile altında sıkıştırılarak her lob tutun ve 1 ml HBSS +% 1 FCS içeren bir Petri kabındaki koyun. Lobları yalıtmak ve kapsül zarar vermeden, iki 1 ml şırınga + 26 G ⅜ &quot;iğneler ile çevresindeki bağ dokusu çıkarın. </li><li> Kan hücrelerinin ortadan kaldırmak için HBSS +% 1 FCS, 3 ml loblar yıkayın. Not: E15 önce, timik loblar iki-lob organı teşkil etmek ortasında trakea ve daha sonra sigorta her iki tarafında yer almaktadır. </li></ol> 4. Hücre süspansiyonları <ol><li> HBSS +% 1 FCS 1 ml şırınga üzerine monte edilen iki 26 G iğne ile, binoküler büyütücü mercek altında lobları ayrı kızdırmak. Bir naylon örgü ile hücre süspansiyonu Filtre. </li></ol> Floresan Antikor ve Hücre Sorting 5. Boyama NOT: Tüm antikorlar daha önce nüfus optimal tanımı (titrat elde etmek için titre ediliriyon) antikor, parti ile değişebilir. <ol><li> Soy pozitif hücreleri boyamak için biyotinile edilmiş antikorların bir karışımı içinde bir 100 ul ile 4 ° C sıcaklıkta, 15-30 dakika boyunca timositleri (E13 ya da E18) inkübe (anti-CD19, anti-Gr1 anti-Ter119 anti-NK1.1 , anti-CD11c, anti-CD3, anti-CD4, anti-CD8, anti-CD25). </li><li> Antikorlar 7 dakika boyunca 280 xg&#39;de 4 ml HBSS +% 1 FCS tüpler aşağı spin uzakta fazlalığının yıkamak için, süpernatant ortadan kaldırmak ve yeniden askıya taze HBSS +% 1 FCS pelet. Santrifüj tekrarlayın. </li><li> 4 ° C&#39;de 15 dakika boyunca streptavidin ile mikro E18 biyotin-etiketli hücreler inkübe ve iki kez HBSS% 1 FCS hücreleri yıkayın. 2 ml HBSS +% 1 FCS hücreleri yeniden askıya. En E13 timositleri soy negatif ve bu nedenle hücre sıralama öncesinde MACS zenginleştirme gerekmez. </li><li> Üreticinin talimatlarına göre, LS sütun üzerinde hücrelere geçerler. Tüm hücre süspansiyonu girdiğinde sütun 2 ml HBSS +% 1 FCS ekleyin. KurtarmakSütun 4 ml 280 x g&#39;de, 7 dakika boyunca hücreler akmasına ve santrifüjlenir. </li><li> Yeniden askıya tükenmiş E18 ya TSP antikor karışımı, 50 ul (anti-CD117 APC, anti-CD135 PE, anti-CD127 PECy7, anti-CD24 FITC, anti-CD44 APCCy7 ve streptavidin Pacific Blue toplam E13 timositlerin ya pelet ) ve karanlıkta 4 ° C&#39;de 20 dakika inkübe edilir. </li><li> 4 ml HBSS +% 1 FCS ve hücreleri yıkayın 1 ml HBSS propidium iyodür ile +% 1 FCS hücreleri yeniden askıya. </li><li> Sıralama TSPs Lin - 200 ul komple ortam +% 20 FCS içeren bir 1.5 ml tüpler üzerine (4 lazerler ile) FACS CD44 + CD117 + CD24 düşük CD127 + CD135 + hücreler. FSC ve SSC kanallarda boyutu ve ayrıntı gibi kapı İlk hücre. (Propidyum iyodür ile boyama), ölü hücreleri, kapı dışarı çiftleri ortadan kaldırmak ve üstel ölçeklerde floresan puan. 100 civarında veya 600 TSPs bir E13 ya da bir E18 timus, respectiv elde edilebilirely. </li></ol> Progenitörlerin 6. Kolonizasyon E14 ve Timik lobları: Asma Bırak Tekniği <ol><li> (30 Griler = 30 Gy) CD45.2 embriyolardan E14 timik lobları, kültür önce 3 saat ışın tedavisi. NOT: E14 veya E15 timik loblar başarılı bir şekilde, T hücresi soylarının alıcı olarak kullanılmıştır. Erken gebelik günlerde timik lob kötü geliştirmek ise muhtemelen epitel hücrelerinin eksik gelişimine nedeniyle organın büyük boyutuna erken nekroz sonraki gebelik günler sonuçlarının alıcı timus lobları kullanma. </li><li> Santrifüj TSPs ve yeniden askıya hücreleri kültür ortamında (% 10 FCS ile OPTI-MEM tam ortam, penisilin (50 birim / ml), streptomisin (50 ug / ml) ve 2β-merkaptoetanol (50 uM)) kriteri şekilde 35 ul 500 TSP içerir. </li><li> 60 de Terasaki plakanın her sıra hücre süspansiyonu, 35 ul damla yerleştirin. NOT: bitişik kuyular yerleştirilir eğer 35 ul damla sigorta olabilir. </li><li> Her damla yüzeyinde biri ışınlanmış lobunu yerleştirin. Terasaki plakasını kapatın ve hücreler yerçekimiyle damla apikal kutbu ulaşmak izin ters plaka çevirin. </li><li> Hit yavaşça ters plakanın üst tarafı damla apikal kenarına slayt lobları zorlamak için. 37 ° C ila +% 5 CO2 seviyesinde 48 saat boyunca nemlendirilmiş bir kuluçka makinesi içinde ters Terasaki tabağı inkübe edin. Bir alıcı yetişkin fare 8 böbrek kapsülü altında kolonizasyon ya kültür E14 FTOC 7 Thymi veya greft sonra. </li></ol> 7. Fetal Timik Organ Kültürü <ol><li> 35 mm Petri tabağına tam ortam 3 ml yerleştirin. Ortam üzerinde yüzen bir isopore zar filtresi yerleştirin. Forseps (bir membran üzerinde en fazla 8 lob) zarın kenarında yeniden loblar yerleştirin. </li><li> Su sağlama 2. ml içeren, kapaksız, bir 35 mm çanak ile birlikte, bir 90 mm Petri kabı içinde timik lobu içeren Petri kapları yerleştirinr, uygun nem sağlamak. 37 ° C ila +% 5 CO2 seviyesinde 12 gün inkübe edilir. </li></ol> Steril Koşullarda Böbrek Kapsül altında 8. Greftler Not: Böbrek parenşiması bir kapsül oluşturan bağ dokusu ile çevrilidir. Alt kapsül bölge kan ve böylece greft gelişmesi için uygun bir ortam (örneğin timik lobları, pankreas adacıkları veya yenidoğan kalpleri) sağlayan lenfatik damarlarda özellikle zengindir. Doğru böbrek daha erişilebilir olduğundan greftler genellikle sol böbrek yapılır. CD3 - / - erkek fareler E15 önce cinsiyet belirleme kolaylıkla yapılabilir çünkü alıcılar böylece nedeniyle Y kromozomu bağlantılı küçük doku uygunluk antijenleri konakçı tepkimesiyle kaçınarak olarak kullanılmıştır. <ol><li> Aletleri sterilize ve ameliyat boyunca steril eldiven giyin. Ketamin 10 mg / ml + Ksilazin, 1 mg içeren bir çözeltiye içi enjeksiyonu ile fare anestezisi /ml PBS içinde seyreltilmiş (10 g vücut ağırlığı başına 50-100 ul), bir 1 ml şırınga ile. Interdijital reflekslerin eksikliğini kontrol ederek anestezi doğrulayın. Anestezi sırasında kurumasını önlemek için her gözün üzerine hidro-Optimune jel damla yerleştirin. NOT: Çözelti ekstemporane şekilde hazırlanır ve enjeksiyondan önce oda sıcaklığında ısıtılmalıdır. Anestezi en az 20 dakika sürer. Anestezi derecesi, tüm ameliyat boyunca kontrol edilmelidir. Anestezi, her 20 dakikada bir doz devre içi enjeksiyonu ile uzatılabilir. </li><li> Yatay lamina akış kaputu altında, onun sağ tarafta fare yerleştirin. % 70 etanol ve% 10 iyodid dermal çözeltisi ile cerrahi alanında sterilize edin. Bir forseps kısmı ile sadece arka bacak eklem üzerinde 2 cm uzunluğu boyunca fare saç. Cerrahi alan tıraş. </li><li> Bir neşter ile, makas kas dokusu kesim daha sonra, ilk olarak, cilt dokusuna bir insizyon 1.5 cm uzunluğunda tercih. Kesi her iki taraf için hafif bir basınç uygulayın, Karın boşluğu dışında böbrek zorlar hangi. </li><li> Nemli böbreği korumak için pamuk tomurcuğu ile tuzlu su uygulayın. Eğer organa açığa zorluklar varsa, böbrek bağlı olduğu çevredeki adiposit doku çekerek düz forseps kullanabilir. Organın altına yerleştirilen bir pamuklu çubukla ile retroperitoneal boşluğundan dışarı böbrek koruyun. </li><li> İki ince forseps ile, (kanamayı önlemek için parankimi dokunmaktan kaçının) kapsül içinde 2-3 mm&#39;lik bir delik yapmak. Bütün cerrahi işlem sırasında sürekli olarak nemli maruz böbrek kapsülü tutun. </li><li> Açılan kapsülün duvarı koruyarak, böbrek kapsülü altında dikkatlice lobları yerleştirin ve kenar kutup doğru kapsülün altında greft kaydırın. Böbrek başına 6 lobları kadar yerleştirin. </li><li> Retro periton boşluğuna böbrek değiştirin. Kas aponörozlar, bireysel cerrah knot daha sonra deriyi dikin. % 10 iyodür povidon solüsyonu ile yarayı ıslatın. Isıtmalı pa üzerinde fare yerleştirin37 ° C &#39;de, d. </li><li> Kalp, solunum ve bıyık hareketler, kendi tarafından görülen toplam kurtarma hareketleri içeriyordu kadar mukozal renklerin kontrolü ile anesteziden tam iyileşme kadar nakledilen fare Anketi. NOT: Biz sadece cerrahi sonrası analjezik solüsyonu (Buprenorphin, 0.1 mg / kg) içi kas enjeksiyonu tavsiye ve 2 gün ameliyat sonrası ağrıyı önlemek için ameliyat takip. </li><li> Tamamen iyileşene kadar tecrit işletilen hayvan tutun. Doğrulamak ve enfeksiyonu önlemek için her geçen gün yara dikiş kontrol edin. Bu prosedür takip yara enfeksiyonu gözlendi asla. NOT: CD3, periferal kan hücrelerinin haftalık analizi - / - aşılanmış farenin bize toplumlarında CD45 allotipik işaretleyici ve T hücre soyu spesifik antikorlar (Şekil 3) kullanılarak E13 ya da E18 progenitörlerinin ya kaynaklanan timus algılamasını sağlar. </li></ol> Akış Sitometrisi ile TSP döl 9. Analizi <ol><li&gt; tek hücre süspansiyonları (protokol Bölüm 4&#39;e bakınız) elde etmek için tek tek FTOCs Tease. </li><li> Bir antikor karışımı CD45.1 PECy7, CD45.2 AmCyan CD4 APCCy7 CD8 APC, CD3 Pacific Blue, Vγ5 FITC, PE Vδ1 tanıyan antikorları içeren ve bölüm 5&#39;de tarif edildiği gibi inkübe bireysel loblar Leke hücre süspansiyonları. </li><li> HBSS +% 1 FCS + propidyum iyodür hücreleri yeniden askıya alma ve (Şekil 2&#39;de B deki sonuçlara bakınız), bir akış sitometresiyle analiz. </li></ol>

<ol><li>Rodewald, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymus+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymus organogenesis.</a> Annu Rev Immunol. 26, 355-388 (2008).</li>
<li>Takahama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Journey+through+the+thymus%3A+stromal+guides+for+T-cell+development+and+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Journey through the thymus: stromal guides for T-cell development and selection.</a> Nat Rev Immunol. 6, 127-135 (2006).</li>
<li>Anderson, G., Jenkinson, E. J., Moore, N. C., Owen, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MHC+class+II-positive+epithelium+and+mesenchyme+cells+are+both+required+for+T-cell+development+in+the+thymus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">MHC class II-positive epithelium and mesenchyme cells are both required for T-cell development in the thymus.</a> Nature. 362, 70-73 (1993).</li>
<li>Douagi, I., Andre, I., Ferraz, J. C., Cumano, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+T+cell+precursor+activity+in+the+murine+fetal+thymus%3A+evidence+for+an+input+of+T+cell+precursors+between+days+12+and+14+of+gestation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Characterization of T cell precursor activity in the murine fetal thymus: evidence for an input of T cell precursors between days 12 and 14 of gestation.</a> Eur J Immunol. 30, 2201-2210 (2000).</li>
<li>Calderon, L., Boehm, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic%2C+context-dependent%2C+and+hierarchical+functions+of+epithelial+components+in+thymic+microenvironments%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Synergistic, context-dependent, and hierarchical functions of epithelial components in thymic microenvironments.</a> Cell. 149, 159-172 (2012).</li>
<li>Adolfsson, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+Flt3%2B+lympho-myeloid+stem+cells+lacking+erythro-megakaryocytic+potential+a+revised+road+map+for+adult+blood+lineage+commitment%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of Flt3+ lympho-myeloid stem cells lacking erythro-megakaryocytic potential a revised road map for adult blood lineage commitment.</a> Cell. 121, 295-306 (2005).</li>
<li>Kondo, M., Weissman, I. L., Akashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+clonogenic+common+lymphoid+progenitors+in+mouse+bone+marrow%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of clonogenic common lymphoid progenitors in mouse bone marrow.</a> Cell. 91, 661-672 (1997).</li>
<li>Bhandoola, A., von Boehmer, H., Petrie, H. T., Zuniga-Pflucker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commitment+and+developmental+potential+of+extrathymic+and+intrathymic+T+cell+precursors%3A+plenty+to+choose+from%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Commitment and developmental potential of extrathymic and intrathymic T cell precursors: plenty to choose from.</a> Immunity. 26, 678-689 (2007).</li>
<li>Ramond, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+waves+of+distinct+hematopoietic+progenitor+cells+colonize+the+fetal+thymus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Two waves of distinct hematopoietic progenitor cells colonize the fetal thymus.</a> Nat Immunol. 15, 27-35 (2014).</li>
<li>Allison, J. P., Havran, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immunobiology+of+T+cells+with+invariant+gamma+delta+antigen+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The immunobiology of T cells with invariant gamma delta antigen receptors.</a> Annu Rev Immunol. 9, 679-705 (1991).</li>
<li>Anderson, G., Jenkinson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+thymus+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Fetal thymus organ culture.</a> CSH Protoc. , (2007).</li>
<li>Schmitt, T. M., Zuniga-Pflucker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+T+cell+development+from+hematopoietic+progenitor+cells+by+delta-like-1+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Induction of T cell development from hematopoietic progenitor cells by delta-like-1 in vitro.</a> Immunity. 17, 749-756 (2002).</li>
<li>Barbee, S. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skint-1+is+a+highly+specific%2C+unique+selecting+component+for+epidermal+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Skint-1 is a highly specific, unique selecting component for epidermal T cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 3330-3335 (2011).</li>
<li>Douagi, I., Colucci, F., Di Santo, J. P., Cumano, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+earliest+prethymic+bipotent+T%2FNK+progenitor+in+murine+fetal+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Identification of the earliest prethymic bipotent T/NK progenitor in murine fetal liver.</a> Blood. 99, 463-471 (2002).</li>
<li>Malissen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+T+cell+development+in+mice+with+a+targeted+mutation+of+the+CD3-epsilon+gene%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Altered T cell development in mice with a targeted mutation of the CD3-epsilon gene.</a> EMBO J. 14, 4641-4653 (1995).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarını olduğunu beyan ederim.

İki temel deneyler T hücre farklılaşmasını ex vivo olarak analiz etmek için kullanılabilir. En son bildirilen 1 veya 4 12 gibi Noth1 ligandlar, delta ifade BM stromal hücreler, OP9 ile hematopoetik atalarıdır ko-kültür. Bu 2 D tahlili de analiz sağlayan, son derece verimli ve hassas gerçekleştirmek kolay Tek hücreli seviyesi. Ancak, ne timik epitel ile doğrudan etkileşimleri gerektiren her ikisi de DP aşamasında ne γδ DETC 13 nesil ötesinde T hücre gelişimini destekler. <p class="jove_...

T lenfositleri, αβ ya γδ T hücresi reseptörü (TcR) taşıyan, özel bir organ timus ayırt eder. tam gelişmiş timus iki ayrı bölgeye düzenlenmiştir: verimli TcR β ve α zincir genleri yeniden timositleri programlanmış ölüm (pozitif seleksiyon olarak bilinen bir süreç) kurtarıldı olan timik ataları geliştirmek korteks ve; ve öz-ligantlarına çok güçlü reaktivitesi olan timositleri seçilen medulla, (negatif seleksiyon) 1,2 silinir. timus sonra mezenkimal hücreler 3 ile çevrilidir üçüncü faringeal kese endodermal tabakasının kaynaklanır. Bu tarihten sonra, sürekli işe normal T hücre gelişimi 4 için gerekli olan embriyonik gün E12 ve başlayan hematopoetik atalarıdır tarafından kolonize edildi. Timik göçmenler sıkıca düzenlenmiş bir program başlatılan ve mai tarafından orkestra, ardışık gelişim aşamalardan gelişmeye4 gibi bir ligandı ile etkileşimi üzerine timositler ile Çentik sinyal yolunun aktivasyonu, delta ile ntained, timik epitelial hücreler (Tecs) üzerinde eksprese 5. Timosit geliştirme sözde CD4 başlar - CD8 - çift negatif (DN) aşamaları. , DN2 (CD25 + CD44 +), DN3 (CD25 + CD44 -) ve DN4 (CD25 - CD44 -) - DN timositleri, daha DN1 (CD44 + CD25) içerisine CD25 ve CD44 ekspresyonu göre bölünebilir. CD24 (HSA) ve CD117 (c-Kit) daha DN1a b erken timik atalarıdır (ETP) karşılık 5 alt içine DN1 bölmesi subdivides. Timositleri DN aşamada TcR δ, β ve α zincirleri yeniden düzenlemek ve pre-TcR seçimi (DN3-DN4 aşamaları) tabi. TcR α zincir pozitif ve negatif sele öncesinde yeniden düzenler CD4 + CD8 + çift pozitif (DP) bölmeye Onlar daha geçişction. Bu aşamada en timositleri ortadan kalkar ve sadece küçük bir yüzdesi (% 3-5) CD4 + ulaşmak veya CD8 + T hücre bölmesini olgun. lenfoid farklılaşma yolu multipotent atalarıdır (MPP) ve eritrosit ve megakaryosit 6 potansiyel kayıp lenfoid hazırlanmış multipotent atalarıdır (LMPP) oluşturmak HKH&#39;lerin aşamalarında ilerler. , C-Kit (CD117) ekspresyonunu, Sca-1 ve Flt3 / flk2 (CD135) ve interlökin saptanamaz düzeylerde yokluğunda (- LMPP fenotipik (soy negatif Lin) farklılaşmış kan hücresi belirleyicilerinin olmaması ile tanımlanır IL) -7 zincir α reseptörü (IL-7rα veya CD127). LMPPs ayrıca bu aşamada tarafından miyeloid hücreleri üretmek için kapasite kaybetmiş ortak lenfoid atalarıdır (CLP) 7 ayırt. CLP lenfosit (B ve T hücresi), NK hücre, DC ve doğal lenfoid hücre (LAK) potansiyelini korumak ve CD1 ifadesi ile LMPP farklılık27 ve Sca-1, yüksek düzeyde olmaması. Timik yerleşme atalarıdır (TSP) doğası yoğun 8&#39;e tartışılan olmasına rağmen, son zamanlarda belli oldu bu gelişme 9 boyunca TSP değişim fenotip, farklılaşma potansiyeli ve fonksiyon. Biz E13 (ilk dalga) ya da E18 (ikinci dalga) arasından sıralama FACS hücre tarafından izole TSP karakterize in vitro ve in vivo deneyler gerçekleştirildi. Eşit E13 ve E18 progenitörlerinin numaraları, farklı alotipik belirteçleri taşıyan tarafından kolonize benzer gelişimsel ortamda döl aşağıdaki izin ve atalarıdır her iki tip arasındaki farklı hücre içsel özellikleri, ortaya ışınlanmış timik loblar fetal timus organ kültürleri (FTOC). E13 veya E18 TSP biri tarafından kolonize timik lob nedeniyle her iki atalarıdır arasındaki rekabete seçim olmadan gelişmesini sağladı. Kolonize timik lobların in vivo nakli daha göstermiştir ki, aynı zamanda tO E13 olgun döl ve E18 TSP in vivo olarak farklı biyolojik özelliklere sahip. Ilk dalganın gelen TSPs hızlı bir şekilde T hücreleri oluşturmak ancak αβ ve γδ T hücrelerinin sayısının az neden olmaktadır. İkincisi arasında biz bir değişmez TcR&#39;ler, onlar yara iyileşmesinde bir işlev uygulamayın ve sadece embriyonik gelişim sırasında 10 üretilen epidermis göç var Vγ5Vδ1 dendritik epitel T hücrelerini (DETC), algıladı. Buna karşılık, TSP ikinci dalga gelen TcR + T hücrelerinin yüksek sayıda üretmek için uzun zaman alabilir ve DETC üretmek mümkün değildir.

<table><tbody><tr><td>90 x 15 mm ve 35 x 15 mm plastik doku kültürü Petri kapları.</td><td>TPP</td><td>T93100/T9340</td><td>Numune Alma</td></tr><tr><td>26 g & frak38; » İğneli 0,45 x 10 mm şırıngalar</td><td>BD Plastipak</td><td>300015</td><td>Hücre süspansiyonu</td></tr><tr><td>Naylon örgü cıvatalama bezi sterilize edilmiş 50/50 mm parçalar.</td><td>SEFAR NITEX</td><td>03-100/32</td><td>Hücrelerin filtrasyonu</td></tr><tr><td>Etanol %70.</td><td>VWR</td><td>83801.36</td><td>Sterilite eylemleri</td></tr><tr><td>İyodür Povidon %10 (Betadine)</td><td>MEDA Pharma</td><td>314997.8</td><td>Sterilite eylemleri</td></tr><tr><td>Ketamin 100 mg/ml (stok solüsyonu)</td><td>MERIAL</td><td></td><td>Anesthesic</td></tr><tr><td>Xylazine 100 mg/ml PBS içinde (stok solüsyon)</td><td>Sigma</td><td>X1251-1G</td><td>Anestezik ve kas gevşetici</td></tr><tr><td>Buprenorfin 0.3 mg/ml stok çözeltisi</td><td>AXIENCE</td><td></td><td>Morfinik analjezik</td></tr><tr><td>Oftalmik jel (% 0.2 siklosporin)</td><td>Schering-Plough Hayvan Sağlığı</td><td></td><td>Göz koruması</td></tr><tr><td>DPBS (+ CaCl2, MgCl2)</td><td>GIBCO Life Technology</td><td>14040-174</td> embriyoları <td>izole etmek için</td></tr><tr><td>HBSS Hanks'in Dengeli Tuz Çözeltisi (+ CaCl2, MgCl2)</td> kanı yıkamak için <td>GIBCO Life Technology</td><td>24020-091</td> ve <td> embriyoları inceleyin</td></tr><tr><td>OPTI-MEM I GlutaMAX I</td><td>GIBCO Life Technology</td><td>51985-026</td><td>Kültürler için ortam</td></tr><tr><td>Fetal buzağı serumu</td><td>EUROBIO</td><td>CVFSVF00-0U</td><td>kültürler için katkı maddesi</td></tr><tr><td>Penisilin ve streptomisin</td><td>GIBCO Life Technology</td><td>15640-055</td><td>Kültürler için antibiyotikler</td></tr><tr><td>2-Merkaptoetanol</td><td>GIBCO Yaşam Teknolojisi</td><td>31350010</td><td>kültürler için katkı maddesi</td></tr><tr><td>LEICA MZ6 Diseksiyon mikroskobu</td><td>LEICA</td><td>MZ6 10445111</td><td>Oküler W-PL10x/23</td></tr><tr><td>Soğuk lamba kaynağı</td><td>SCHOTT VWR</td><td>KL1500 kompakt</td><td>İki kaz boynu lifi uyarlanmış</td></tr><tr><td>Silikon elastomer</td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>SYLG184</td><td>Diseksiyon Pedi</td></tr><tr><td>Kaşık, yuvarlak ve delikli</td><td>Güzel Bilim Araçları</td><td>10370-18</td><td>Diseksiyon aletleri</td></tr><tr><td>İnce iris makası</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>14090-09</td><td>Diseksiyon aletleri</td></tr><tr><td>Vannas yaylı makas</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>15018-10</td><td>Diseksiyon aletleri</td></tr><tr><td>Forseps: Dumont #5/45 Inox 11 cm</td><td>FST</td><td>11253-25</td><td>Diseksiyon aletleri</td></tr><tr><td>, 2 çift ince düz saatçi forseti, Dumont #5, 11 cm ince uçlar.</td><td>Güzel Bilim Araçları</td><td>11295-20</td><td>Diseksiyon aletleri</td></tr><tr><td>İğneli poliamid iplik 6-0 C-3 3/8c</td><td>Sütürler için</td><td>ETHICON</td><td>F2403</td></tr><tr><td>İğne tutucu</td><td>MORIA/F.S.T.</td><td>12060-02</td><td>dikişler için</td></tr><tr><td>Isıtma yastığı</td><td>VWR</td><td>100229-100</td><td>Anestezi sırasında fare sıcaklığını korumak için</td></tr><tr><td>Membran İzopor RTTPO2500</td><td>DUTSCHER</td><td>44210</td><td>FTOC</td></tr><tr><td>Terasaki için 60 kuyu plakası</td><td>FISHER</td><td>1x270 10318801</td><td>Asmak için Damla tekniği için</td></tr><tr><td>Gazlı bez çubukları steriller 7,5 x 7,5 cm</td><td>Hydrex</td><td>11522</td><td>Dezenfekte edici solüsyon uygulamak için</td></tr><tr><td>Floresan veya biyotin işaretli antikorlar</td><td>BD Biosciences, Biolegend veya e-Biocsiences&nbsp;</td><td>Klon Numarası: aşağıdaki tabloya bakınız</td>: <td>Boyama hücreleri</td></tr><tr><td>, MACS Sütunları/Streptavidin Mikro boncukları</td>, <td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401/130-048-101</td>, <td>Hücre tükenmesi</td>:</tr><tr><td>Fareler</td>, <td>Charles Rivers Laboratories (CD45.1) ve Janvier Labs&nbsp; (CD45.2)</td><td>C57BL / 6 CD45.1 VEYA CD45.2</td><td>Hücre ve timik lobların kaynağı</td></tr><tr><td>Fareler</td><td>CDTA Orl&eacute; ans, Fransa</td><td>CD 3 epsilon Ko CD45.2</td><td>Aşılama deneyi</td></tr></tbody></table>

timus karakterizasyonu kullanma fare embriyo atalarıdır settling<em&gt; in vivo</em&gt; ve<em&gt; in vitro</em&gt; tahliller

Characterization of Thymic Settling Progenitors in the Mouse Embryo Using In Vivo and In Vitro Assays

Timik çökelme progenitörlerin karakterize lenfopeni hastada T hücresi değiştirilmesi için stratejiler geliştirmek için gerekli T hücresi gelişiminin önceden timik aşamaları anlamak önemlidir. Biz in vitro tamamlayıcı iki ile fare embriyonik gün 13 ve 18 Thymi gelen atalarıdır yerleşme timus okudu ve in vivo tekniklerin, hem &quot;asılı damla&quot; yöntemine dayalı. Bu yöntem, E13 ve / veya E18 onların soyu takip böylece CD45 alotipik belirteçler ve ayırt timik ataları ile ışınlanmış fetal timus lobları kolonize izin verdi. Nüfusu ile ya kolonizasyon olası rekabet seçici baskıları kaldırır ise karışık nüfusa sahip kolonizasyon atalarıdır biyolojik özelliklerinde hücre özerk farklılıkları analiz sağlar. kolonize timik lobları aynı zamanda t nüfus dinamikleri olarak in vivo olgun T hücre soyu analizi sağlayan bağışık yetmezliği erkek alıcı fareler, aşılı olabilirO bağışıklık sistemini ve farklı doku ve organlarda kolonizasyonu periferik. Fetal timik organ kültürleri E13 ataları içine tüm hızla gelişmiştir CD3 + hücreleri olgun ortaya ve dendritik epitel T hücreleri olarak bilinen kurallı γδ T hücre alt kümesi, doğurdu. Buna karşılık, E18 ataları gecikmiş farklılaşma ve dendritik epitel T hücrelerini oluşturmak için koyamadık. / - - timus aşılı CD3 periferik kan izleme farelerin daha E18 timik çökelme ataları, zamanla, kısa vadeli fetal timus takdir edilemedi bir özellik onların E13 muadillerine göre daha olgun T hücrelerinin büyük sayılar üretmek olduğunu gösterdi organ kültürleri.

Kolonize atalarıdır iyi gelişmesini sağlayan endojen timositlerin timus lobları tüketmek için bir yöntem seçmek için, biz ışınlama sonrası kolonize timik loblarda T hücre sulandırma seviyelerini veya 5 günlük deoksi-guanozin (d-Gua) tedavisi karşılaştırıldı. Sonuçlar kültür 9. günde fark varken, ışınlanmış loblar Böylece 12. gün ile ışınlama sonra T hücresi gelişimini elde etmek üzere D-Gua tedaviden daha uygun olduğunu, d-Gua ile tedavi edilenlerden daha fazla T hücrelerini içerdiğini gösterdi timus kolonizasyon <stron...

Bu makale, T hücresi soylarının nesil, fenotip ve sayı kinetiğinin analizi ile timik çökelme öncüllerini karakterize etmek için in vivo ve in vitro metodolojiyi açıklamaktadır.

Timus Karakterizasyonu kullanma Fare Embriyo atalarıdır Settling<em&gt; In Vivo</em&gt; Ve<em&gt; In Vitro</em&gt; Tahliller

Characterizing thymic settling progenitors is important to understand the pre-thymic stages of T cell development, essential to devise strategies for T ...

Bu prosedürün genel amacı, E 13 veya E 18 timik yerleşim progenitorleri tarafından üretilen T hücrelerinin sayılarını ve fenotip kinetiğini analiz etmektir. Bu işlem, öncelikle E 13, E 14 ve E 18 fare embriyolarından timik lobların izole edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adımda, E 14 timik lobları ışınlanır ve ardından asılı damla yönteminde 48 saat boyunca akış sitometrisi ile ayrıştırılmış E 13 veya E 18 hücreleri ile kolonize edilir.Son adımda, kolonize olmuş loblar yetişkin CD3 nakavt farelerin böbrek kapsülü altına greftlenir. Nihayetinde, kimera hayvanların kanında E 13 ve E 18 timik yerleşme progenitör progeny'lerinin varlığını değerlendirmek için akış sitometrisi kullanılabilir. Bu tekniğin, ine so hücreleri üzerinde in vitro T hücresi kültürü gibi mevcut yöntemlerimize göre temel avantajı; tanımlanmış progenitörlerden üç boyutlu bir analizde tam T hücresi olgunlaşmasına izin veren yöntemleri, timik organ kültürlerinin sağlam alıcı farelere greftlenmesiyle birleştirerek, timik dilim progenitörlerinin ve progeny'lerinin farklılaşmasının ve fonksiyonunun değerlendirilmesine olanak sağlamasıdır.Kemirgen cerrahisi konusunda uzman bir araştırma mühendisi olarak, greftleme deneyinden iki gün önce laminer akışlı kabinde gerçekleştirilecek prosedürü göstereceğim; gebe bir dişi farenin karnını %70 ethanol ile temizleyin ve orta hattaki deride boyuna bir insizyon yapın, insizyonu açmak için deriyi kenara çekin ve ardından sindirim sistemine dokunmadan peritonu açmak için pens ve makas kullanın. Ardından, bifid uterusu dışarı çıkarın ve vajinadan ayırmak için makas kullanın. Daha sonra uterusu 40 ila 50 mililitre DPBS içeren 90 x 15 milimetrelik bir Petri kabına yerleştirin ve her embriyonun decidua bölgesi arasından transvers olarak kesin.Plasenta ile vitellus kesesi arasından keserek her bir embriyoyu çıkarmak için ince uçlu bir makas ve ince pens kullanılarak uterusun kas membranı uzaklaştırılır. Ardından, embriyoları muhafaza ederek amniyon kaldırılır ve embriyolar %1 FCS içeren HBSS bulunan yeni bir Petri kabına yerleştirilir. Timusu izole etmek için embriyolar, binoküler büyüteç altında tek tek sırt üstü pozisyona getirilir.Ardından, sternum kıkırdağı boyunca boylamsal olarak bir pens yerleştirin ve eğri pens kullanarak torasik kafesi sıkıştırıp açın. Trakeanın her iki yanındaki timus loblarını görüntülemek için göğüs duvarını yana çekin. Daha sonra, her bir lobu dikkatlice çıkarmak için timusun alt kısmını ince bir pens ile sıkıştırın ve lobları 1 mL HBSS artı %1 FCS içeren bir Petri kabına yerleştirin.Ardından, loblara zarar vermeden çevre bağ dokusunu temizlemek için iki adet ince pens kullanın. Daha sonra, fetal timik organ kültürü ışınlamasına başlamak üzere, eritrositleri uzaklaştırmak için lobları 3 mL HBSS artı %1 FCS içerisinde yıkayın. E 14 timik lobları, az önce gösterildiği gibi CD 45.2 embriyolarından izole edilmiştir.Lobları yaklaşık üç saat boyunca dinlendirin. Ardından, yeni ayrıştırılmış E 13 veya E 18 timik yerleşim öncüllerini santrifüjleyin. Peleti, 35 microliter ortam başına 500 hücrelik bir nihai konsantrasyona ulaşacak şekilde kültür ortamında yeniden süspande edin.Ardından, 60 kuyucuklu bir terasaki plakanın her iki kuyucuğuna 35 µL hücre süspansiyonu damlası yerleştirin ve her damlanın yüzeyine bir adet ışınlanmış lob ekleyin. Plakayı kapatın ve hücrelerin yerçekimi yardımıyla damlanın apikal kutbuna ulaşmasını sağlamak için ters çevirin; lobların damlanın apikal kenarına kaymasını zorlamak için ters çevrilmiş plakanın üst kısmına hafifçe vurun. Daha sonra ters çevrilmiş plakayı nemlendirilmiş bir inkübatörde 48 saat boyunca 37 °C ve %5 CO2 koşullarında inkübe edin.Timus lobları kolonize edildikten sonra, alıcı hayvanın anestezi seviyesini refleks yanıtının yokluğuyla doğrulayın. Ardından, her göze bir damla göz pomadı sürün ve fareyi laminer akışlı kabin altında sağ yanına yatırın. Daha sonra, arka bacak ekleminin hemen üzerindeki cerrahi alanı tıraş edin.Ardından, bir çift steril eldiven giyin ve cerrahi alanı %70 etanol ve %10 povidon iyot çözeltisi ile sterilize edin. Kutanöz doku boyunca 1,5 santimetrelik bir insizyon yapmak için bir skalpel kullanın ve bunu kas dokusu boyunca yapılan bir insizyonla takip edin. Şimdi, böbreği abdominal kaviteden dışarı çıkarmak için insizyonun her iki yanına hafif bir basınç uygulayın ve böbreği salin çözeltisi ile nemli tutun.Böbreği, retroperitoneal boşluğun dışında bir pamuklu çubukla sabit tutun ve kapsülde iki ila üç milimetrelik bir delik açmak için iki adet ince pens kullanın. Ardından, kapsül duvarını açık tutarak altı adede kadar timik lop greftini dikkatlice böbrek pol kenarına doğru kaydırın ve böbreği tekrar retroperitoneal boşluğa yerleştirin. Kasları tek tek cerrahi düğümlerle dikin ve ardından deri dikişini gerçekleştirin.Ardından yarayı %10 povidone iyodür çözeltisi ile ıslatın ve fareyi 37 °C sıcaklıktaki bir ısıtma pedine yerleştirerek, kolonize olan progenitörlerin gelişimi için endojen timositlerin tüketilmesindeki en iyi yöntemi belirlemek amacıyla hayvan ve cerrahi yara tamamen iyileşene kadar izleyin. Bu deneyde, radyasyon veya beş günlük deoxy guine tedavisi sonrası kolonize edilmiş bir timik lobdaki T hücresi yeniden oluşum düzeyleri karşılaştırılmıştır. Kültürün dokuzuncu gününde kolonize olan lenfosit sayısında herhangi bir fark görülmezken, 12. günde ışınlanmış lobların deoxy guine ile tedavi edilenlere göre daha fazla T hücresi içerdiği saptanmış ve bu durum, timik kolonizasyon sonrası T hücresi gelişimini kolaylaştırmak için radyasyonun tercih edilen tedavi olmasını sağlamıştır; burada E 13 ve E 18 timik yerleşim progenitörlerinin gelişim potansiyelini incelemek için, E 14 ışınlanmış timik loblar gözlemlendiği üzere her iki progenitör tipinden eşit sayıda ile kolonize edilmiş ve E 13 timik yerleşim progenitörlerinin, E 18 timik yerleşim progenitörlerine kıyasla daha az timosit ve çift pozitif T hücresi oluşturtuğu görülmüştür.Ancak, olgun CD3 pozitif hücrelerin frekansı artmıştı ve dendritik epitelyal T hücrelerinin üretimi sadece E 13 timik yerleşim progenitörlerinin soyunda tespit edildi; E 13 ve E 18 timik yerleşim progenitörlerinin in vivo potansiyelini analiz etmek için, her bir progenitör tipiyle kolonize edilmiş timik loblar, CD3 nakavt alıcıların böbrek kapsülü altına greftlendi. Az önce gösterildiği gibi, beklendiği üzere, E 13 timik yerleşim progenitörleri T hücrelerini E 18 progenitörlerinden daha hızlı oluşturdu, ancak dolaşımdaki T hücrelerinin sayısı genel olarak E 13 timik yerleşim progenitörü ile kolonize edilmiş hayvanlarda önemli ölçüde daha düşüktü. Gelişiminin ardından bu teknik, gelişimsel immünoloji alanındaki araştırmacıların, bazıları kesin olarak embriyonik kökenli olan T hücresi alt kümelerinin özelliklerini bir memeli modelinde keşfetmelerinin yolunu açtı.Bu videoyu izledikten sonra, Timex çökelme progenitörlerinin ve bunların progenilerinin diferansiyel ve fonksiyonel yolaklarının hem doğal bir ortamda hem de rekabetçi koşullar altında nasıl izleneceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

characterization-thymic-settling-progenitors-mouse-embryo-using-vivo

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Yenidoğan kimeralar üretimi yanı sıra 2-Foton Mikroskopi diseksiyonu ve ex vivo görüntüleme için timus hazırlanması için adım adım talimatlar sunuyoruz.

2-Foton Mikroskop kullanarak Fare Thymus in situ Görüntüleme

Biz roman laboratuar araçları ve timus intravital görüntü elde etmek için protokoller geliştirdik. Bizim tekniği T hücre gelişimi oluşur timus içinde "nişler" belirlenmesinde yardımcı olacaktır.

2-Foton Mikroskopi kullanarak Fare Thymus intravital Görüntüleme

Bu video, üç boyutlu bir timik kültür sistemi kullanarak iPSC'den türetilmiş olgunlaşmamış T hücrelerinden fonksiyonel antijene özgü T hücreleri oluşturmak için bir protokolü gösterir. iPSC'den türetilmiş olgunlaşmamış T hücrelerinin endojen lenfosit tükenmiş fareler fetal timik loblarla birlikte kültürlenmesi, T hücrelerinin CD8αβ + MHC sınıf I + iPSC'den türetilmiş timik göçmenler (iTE'ler) oluşturmak üzere başarılı bir şekilde olgunlaşmasıyla sonuçlandı.

iPSC'den türetilmiş timik göçmenler oluşturmak için üç boyutlu timik kültür sistemi

Fare embriyonik kök hücreleri, OP9-DL1 ko-kültür sistemi kullanılarak in vitro olarak T hücrelerine farklılaştırılabilir. Bu prosedürde başarı, reaktif/hücre bakımına ve tekniğe duyarlı temel adımlara dikkat edilmesini gerektirir. Burada bu kritik parametreleri tartışıyor ve bu teknolojinin benimsenmesini teşvik etmek için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz.

T hücrelerinin türetilmesi İn Vitro Fare Embriyonik Kök Hücreleri

Medüller timik epitel hücrelerinin in vitro olarak incelenmesi, mevcut 2D kültür sistemleri in vivo senaryoyu taklit etmediği için büyük ölçüde başarısız olmuştur. Burada tarif edilen 3D kültür sistemi - modifiye edilmiş bir cilt organotipik kültür modeli - mTEC proliferasyonunu, farklılaşmasını ve rastgele gen ekspresyonunun sürdürülmesini özetlemede üstün olduğu kanıtlanmıştır.

Medüller Timik epitel hücre proliferasyonu, farklılaşması ve Promiscuous Gen İfade Destekleme 3D Organotipik Co-kültür Modeli

Bu protokol Fare preimplantasyon embriyolar soy özellikleri çalışma protein ekspresyonu in situ analiz kantitatif, tek hücreli gerçekleştirmek için bir yöntem sunmaktadır. blastosist toplanması için gerekli işlemler, proteinlerin immunofluorescent algılama tüm montaj, bir konfokal mikroskop ve nükleer segmentasyon ve görüntü analizi örneklerin görüntüleme açıklanmıştır.

Protein İfade Kantitatif Analiz Fare Preimplantasyon Embriyolar Lineage Şartname Eğitim için

Süzülen makrofajlar dolaşımdaki öncüllerden yetişkin dokulara sürekli olarak işlenirken, yerleşik makrofajlar, gelişme sırasında dokularını tohumlamakta ve burada progenitörlerden başka girdiler almadan korunmaktadırlar. Yerleşik makrofajların öncüleri yakın zamanda tanımlandı. Burada, yerleşik makrofaj öncüllerinin genetik kader haritalaması için yöntemleri sunuyoruz.

Akım Sitometresi ile Fare Embriyosunda Eritromiyeloid Progenitörlerin Ve Döllerinin Belirlenmesi

Bu yazıda, biz T-bağımlı ve T-bağımsız immünglobulin (Ig) izotip yanıt ELISA kullanarak farelerde karakterize için bir protokol tanımlamak. Bu yöntem tek başına veya kullanılabilir akış ile birlikte sitometresi araştırmacılar T-bağımlı ve bağımsız T antijen bağışıklama takip farelerde B hücre-aracılı Ig izotip yanıtlarında farkları belirlemek için izin verir.

Timus bağlı ve timus bağımsız immünglobulin izotip yanıt Immunosorbent Assay enzim bağlı kullanarak farelerde karakterizasyonu

Lazer fare gözün ön odasında timik implantlar mikroskobu tarama timositleri boyuna intravital gerçek zamanlı izleme göstermek için protokol hedefidir. Kornea saydamlığını ve vaskülarizasyon greft sürekli progenitör hücre işe alım ve olgun T hücreli çıkış kaydetmek için izin verir.

Gerçek zamanlı timositleri mikroskobu tarama lazer göz ön odasında Vivo içinde Takibi

Bu makalede, üç boyutlu (3D) timik kültür sistemi tarafından tümör antijene özgü indüklenen pluripotent kök hücre kaynaklı timik göçmenler (iTE) oluşturmak için yeni bir yöntem açıklanmaktadır. iTE, proliferasyon, hafıza oluşumu ve tümör baskılanması kapasitesine sahip naif T hücreleri ile yakından ilişkili T hücrelerinin homojen bir alt kümesidir.

Üç boyutlu Timik Kültür Sistemi Murine indüklenen Pluripotent Kök Hücre kaynaklı Tümör Antijen-spesifik Timik Emigrants oluşturmak için

Bu makalede embriyonik dokulardan saf formu ex vivo chimeric organları için bir araya getirilebilen bıldırcın ve tavuk embriyolar izole etmek için bir yöntem sağlar.

Yalıtım embriyonik doku ve timus örnek kullanarak bıldırcın-tavuk Chimeric organ oluşumu

Öğrenin fare embriyolarından timik yerleşen öncü hücreleri karakterize etmeyi ve T hücre soylarının gelişimini in vivo ve in vitro analizlerle incelemeyi. Bu yöntem, bağışıklık araştırmalarında önemli bilgiler sunar.

Timus Karakterizasyonu kullanma Fare Embriyo atalarıdır Settling

Daha fazla video keşfet