Name: Kimerik fare modellerinde Rekombinant Grip aşıların burun içinde yoluyla mukozal bağışıklık Okumak (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 39 s
Description: Öğrenin, rekombinant canlı zayıflatılmış grip aşıları ile kemik iliği kimerik fare modellerinde mukozal bağışıklık yanıtlarını nasıl değerlendireceğinizi. Bu yöntem, aşıların erken bağışıklık mekanizmalarını anlamanıza yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Fare deneylerinde mükemmel teknik destek için Sergio Gómez-Medina'ya teşekkür ederiz. Bu çalışma, Leibniz Derneği ve Leibniz Enfeksiyon Merkezi'nden gelen fonlarla desteklenmiştir. A.L., Leibniz Graduate School'dan doktora öncesi burs almıştır.

Hayvan deneyleri onaylanmış protokollere ve Alman hayvan koruma yasasının yönergeleri izleyerek göre gerçekleştirilmiştir. Hayvan deneyleri yürüten tüm personel kategori B veya Avrupa Laboratuar Hayvan Bilimi Dernekleri Federasyonu C&#39;ye göre eğitim programları geçti. Ters Genetik tarafından Rekombinant Canlı Atenüe Grip Aşıları 1. Nesil NOT: ters genetik rekombinant influenza virüslerinin nesil için detaylı bir protokol önceki çalışmalarda 5 tarafından açıklanan ve bu raporun kapsamı dışında olmuştur. Kısaca, soğuk adapte influenza aşıları (CAV) kurtarma biyogüvenlik seviyesinin altında bir biyogüvenlik sınıf II kabini içinde 2 (BSL2) çevreleme yapılması ve aşağıda ayrıntılı adımları içerir edilir. transfeksiyon ve enfeksiyon protokolü izler Martinez-Sobrido ve ark. 5. <ol><li> Bir reassortant soğuk adapte influenza üretarka plan olarak soğuğa uyarlanmış suş A / Ann Arbor / 6/60 (H2N2), hem de hemaglütinin (HA) ve bir tadil edilmiş nöraminidaz (NA) A / PR / 8/34 (H1N1) suşuna ait (kullanarak aşı Şekil 1A). NA geni modifikasyon tavuk ovalbümin (OVA) -türevi peptid SIINFEKL&#39;yi (Şekil 1B) kodlayan kısa bir cDNA dizisi protein sap (kalıntılar 65-72), bir korunmuş sekans bir PCR-esaslı yerine konmalıdır. SIINFEKL peptiti C57BL / 6 farelerine 12 tepkisini I-kısıtlamalı lH-2b MHC sınıf bağlamında son derece immünodominant peptittir. </li><li> % 1 penisilin / streptomisin (P / E) ile desteklenmiş DMEM,% 10 fetal sığır serumu (FBS) ile 6 oyuklu plakalar içerisinde oyuk başına Levha 10 6 293T hücreleri. </li><li> Plazmid transfeksiyon karışımı hazırlayın: Ekle NA kodlayan PB2, PB1, PA, NP, E, NS influenza A / Ann Arbor / 6/60 soybaşı için cDNA ve plasmidlerin 1 ug kodlayan plazmidlerin her biri 1 ug -SIINFEKL veİnfluenza A / PR / 8/34 HA. (/ Oyuk 100 ul bir son hacim için 15 ul) OptiMEM önceden ısıtılmış ekleyin. </li><li> Oda sıcaklığında 30 dakika süre ile transfeksiyon karışımı inkübe edin. </li><li> De / transfeksiyon karışımı 100 ul ilave edin ve 37 ° C&#39;de 16 saat% 5 CO2 inkübe edin. </li><li> 5 saat CO 2 33 ° C&#39;de DMEM% 0.3 BSA% 1 P / E hücre ortamı değiştirmek ve% 5. </li><li> L-1-tosilamid-2-feniletil klorometil keton (TPCK-tripsin) ile muamele büyükbaş hayvan pankreasından tripsin 1 ug / ml ihtiva eden DMSO içerisinde 10 6 influenza permisif MDCK hücreleri ekleyin. 33 ° C&#39;de 3 gün% 5 CO2 - 2, 293T-MDCK ko-kültürler koruyun. </li><li> 5 dakika boyunca 260 x g&#39;de santrifüj ile MDCK 293T hücresi ko-kültürler süpernatantlar ve net toplayın. </li><li> Steril şartlarda 10 gün eski tavuk embriyonlu yumurta - 9 aşılamak. Martinez-Sobrido ve arkadaşları tarafından gösterildiği gibi, bunun için, yumurta kabuğu üzerine bir delik açın. 5. </li><li> Yumurta kabuğu zekâ Kapakh bir pamuklu çubuk kullanarak ve 33 ° C&#39;de 3 gün boyunca aşılanmış tavuk yumurtası inkübe balmumu erimiş. </li><li> Enfekte embriyolu yumurtaların alantoik akışkan hasat:% 70 etanol ile yumurta kabuklarını yıkayın. Çok yavaşça üst kısmında çatlak ve steril forseps kullanarak allantoik membran kaldırmak bir ile yumurta açın. (- 10 ml, tipik olarak 6) mümkün olduğu kadar çok sıvıyı toplamak için bir 10 ml&#39;lik bir pipet kullanın. 4 ° C&#39;de 10 dakika boyunca 260 x g&#39;de santrifüj ve yeni tüplere alantoik temizlenmiş sıvı transferi. </li></ol> 2. İzleme Aşı özgü Bağışıklık <ol><li> Peptid taşıyan dendritik hücrelerin İzleme (DC) <ol><li> Fare aşılama için, hassas buharlaştırıcı kullanılarak oksijen içinde% 5 izofluran ile fareler uyutmak. Fare burun doğrudan damlacıkları yoluyla SIINFEKL peptiti eksprese eden aşı 10 3 plak oluşturucu birim (pfu) ihtiva eden PBS içinde 50 ul yönetmek için bir 200 ul bir pipet kullanın. </li><li> Post-aşılama, euthaniz Üç günizofluran anestezi ile E fareler, servikal dislokasyon ile takip etti. </li><li> Sadece forseps ile göğüs kafesi altındaki orta hatta fare cildi kaldırın ve makas ile deri yoluyla küçük bir kesi kesti. 5 cm uzunluğunda her iki ucundan yanal orta hattan sonra, baş ve kuyruk hem doğru deri yoluyla iki 2 cm&#39;lik kesiler kesti - kesi açısından, 3 yapmak. Peel geri cilt periton ve toraks boşlukları ortaya çıkarmak için. Dikkatle toraks maruz periton çevreleyen zarların kesti. </li><li> Mediasten DIAFRAGMA ve kafes kaburga alt kesti erişmek için. Biraz dorsal ve ventral trakea kenarına yakın, brakiyosefalik arterin medial bitişik timus yanal bitişik, bulun ve 2 mediastinal lenf düğümleri (mLNs) çıkarın. </li><li> MLNs kavisli bir forseps kullanmak hasat. Lenf düğümleri altına forseps yerleştirin ve yavaşça onları yukarı çekin. DMEM 1 ml ihtiva eden bir 6-yuvalı plaka içinde, lenf düğümleri yerleştirin ve bir bağlant kaldırmave veya yağ dokusu düğümü çevreleyen. <ol><li> 1 ml &#39;lik şırıngaya iliştirilmiş iki 26 G iğne ile iyice her bir örnek alay. Diğer iğne ile lenf nodu açık kırarak lenf nodu alay için, bir iğne ile basılı tutun. Bu doğru yapıldığında, lenf düğümünden patlama konsantre hücreleri kolayca medyada görülmektedir. Tek hücre süspansiyonları elde etmek için bir 70 um naylon filtre vasıtasıyla tüm doku materyali geçirin. </li></ol></li><li> Soğutuculu santrifüj 260 x g&#39;de 10 dakika boyunca santrifüj tek hücre süspansiyonları. Kırmızı kan hücrelerinin lize kırmızı kan hücresi Parçalama (rbcL) Tamponu 2 ml hücre pelletini. Liziz oda sıcaklığında 3 dakika boyunca ilerlemesine izin verir. </li><li> Buz soğukluğunda PBS 2 ml santrifüj ve hücre yeniden süspanse ile rbcL tamponu nötralize. </li><li> Levha hücreler 100 ul nihai hacim içinde 10 7 hücre / ml bir konsantrasyonda 96 oyuklu plakaları U-şekillidir. </li><li> Analiz, blok hücre Fc-reseptörleri akış sitometrisi kullanılarakBuz üzerinde 15 dakika boyunca 10 6 hücre başına anti-fare CD16 / CD32 antikorlarının 1 ug. </li><li> Santrifüj plakalar ve plaka Flicking tarafından süpernatantlar atın. Tercih edilen yüzey antikoru kombinasyonu ile, ayrı ayrı kuyuların inkübe edin. Tipik haliyle, lenf düğümleri dendritik hücrelerin saptanması için, antikor kokteyli içermelidir: 0.25, anti-CD11c ug, CD11b, 0.25 ug, MHC sınıf II, 0.5 ug, CD103, 0.25 ug ila 100 arasında bir nihai hacim içinde CD8α 0.15 ug ul. </li><li> Negatif gating, anti-CD3, CD19, NK1.1 veya nesilli kokteyli (Şekil 2A), 0.25 ug ekleyin. Alternatif yolluk stratejileri yanı sıra birden fazla floresan boyalar uygun tazminat protokolleri immünolojik Genom Projesi&#39;nin web sitesinde bulunabilir. Tercih edilen yüzey belirteçleri ek olarak, kokteyl SIINFEKL bağlı lH-2K B&#39;ye karşı bir antikorun 1 ug ekleyin. Bu piyasada mevcut antikor DC&#39;lerin i görselleştirme sağlayacakSIINFEKL peptid MHC sınıf I yüzey bağlı olduğu N </li><li> Buz üzerinde 30 dakika boyunca yüzey antikorlar ile inkübe hücreleri. Işıktan plaka koruyun. 260 x g&#39;de santrifüjleyin plakalar 5 dakika boyunca PBS ile iki kez 2 ml ile yıkanır. Analiz için sitometri tüpleri akış hücreleri aktarın. </li></ol></li><li> Aşı-spesifik T hücresi çoğalmasının değerlendirilmesi <ol><li> Ticari olarak temin edilebilen TCR-transgenik farelerden (OT-I fare) donör T hücrelerinin elde edilir (C57BL / 6-Tg (TCR aTcrb) 1100Mjb / J) içinde üretilen tüm CD8 T hücreleri ve SIINFEKL peptiti için spesifik olan. Servikal dislokasyon izofluran anestezi fareler öldürülür. Karın boşluğunda bir kesi yaparak Hasat dalak. DMEM / dalak 2 ml dalak / s yerleştirin ve bağ ve yağ doku kaldırmak. </li><li> 2.1.2 ve 2.1.3 tarif edilen prosedür takip edilerek dalak tek hücre süspansiyonları oluşturmak. </li><li> Ayrıca T hücreleri üzerindeki tek bir hücre süspansiyonu zenginleştirmek için, manyetik boncuk ayırma protokolleri uygulamakpozitif veya negatif seleksiyon prosedürleri 12 kullanarak. Alıcı hücrelerinden donör ayırt donör T hücreleri CD45.2 12 ifade ederken, örneğin alıcı fareler lökosit işaretleyici CD45.1 ifade böylece konjenik fareler kullanın. </li><li> T hücreleri etiketlemek için, 5 x 10 6 hücre / ml&#39;lik bir optimum hücre yoğunluğunda carboxyfluorescein süksinimidil ester (CFSE) 5 uM ihtiva eden 1 ml PBS içinde inkübe. Işığa maruz korunmaktadır, 37 ° C&#39;de 20 dakika süreyle inkübe hücreleri. İnkübasyondan sonra, 3 ml cenin sığır serumu (FBS) içinde, 5 dakika, ıskarta yüzer, ve tekrar süspansiyon hücreleri için 260 x g&#39;de santrifüj hücreleri CFSE etkisiz hale getirir. </li><li> PBS yeterli hacmi içinde, 10 dakika ve tekrar süspansiyon içinde 260 x g&#39;de santrifüjleyin hücreleri çözeltisinin 100 ul 2 x 10 6 hücre içerir, böylece. 2 x 10 6 hücre / retroorbital sinüs enjeksiyon yoluyla 13 fare ile alıcı konjenik fareler infüze. </li><li> Günler 3, 4 ve 5 Direk- de alıcı fareler Euthanizeservikal dislokasyon tarafından takip Izofluran anestezi kullanılarak aşılama. Lenf düğümleri hasat ve 2.1.2-2.1.5 belirtildiği üzere akış sitometrisi için tek hücre süspansiyonlarının hazırlanması. </li><li> Ihtiva eden bir antikor kokteyli 100 ul tek hücre süspansiyonları boyama ile donör hücrelerin belirlenmesi: anti-fare CD3, CD4 ve CD8 antikorları, 0.25 ug; Anti-fare CD45.1 ya CD45.2 antikoru (donör hücrelerin fenotipi bağlı olarak) 0.5 ug. CFSE 12 (Şekil 2B) seyreltme profilini belirlemek için, açık (FITC) akış sitometresi FL-1 bir kanal bırakın. </li></ol></li></ol> Gen-özgü aşı Yanıt incelemek için 3. Kimerik fareler Not: DTR tabanlı fare modelleri kullanılarak rekabetçi bir kemik iliği kimeralar üretilmesi aşılara bağışıklık yanıtı sırasında hücreye özel fonksiyonların ayırt edilmesini sağlar. Burada hangi kombinasyonu ile donör c DTR-ifade ek bir strateji göstermekknockout farelerde izni alınan hücrelerle arşın spesifik hücre bölümlerinde bağışıklık sırasında gen özel fonksiyonları incelemek için. Örnekte Langerin + CD103 + DCler Toll-benzeri reseptör 3 (TLR3) spesifik delesyonu ile fareleri üretmek. <ol><li> Kemik iliği donör hücrelerin hazırlanması <ol><li> Bir biyogüvenlik düzeyi II kabinin altında çalışmak. Münhasıran Otoklavlanmış araçları kullanarak kirlenmesini önlemek. </li><li> , Kemik iliği kimerik fareler üretmek alıcı olarak konjenik CD45.1 + C57BL / 6 dişi fareleri kullanabilir ve TLR3 tarafından kullanmak için - / -, Langerin- DTR / EGFP veya wt fareler bağışçılar olarak CD45.2 + dile getirdi. Konjenik donör ve alıcı fareler kullanılarak akış sitometrisi ile, verici ve alıcı hücrelerin farklılaşmasını sağlar ve melezleme değerlendirilmesini mümkün kılar. </li><li> Donör kemik iliği hücreleri elde servikal dislokasyon tarafından takip izofluran anestezi ile donör fareler euthanize. Keskin makas ayak bilekleri civarında kesiler yerine birlikte m kiouse kas maruz kalmaktadır. </li><li> O bacak kasları görünür, böylece kullanılması künt forseps kalça doğru ayak bileği hafifçe fare deri ve kürk çekin. </li><li> Keskin bir makas ile kalça hizasında ve femur başının üstünde fare bacaklarını kesti. </li><li> Bir petri tabağına ve buz üzerinde bacakları yerleştirin. Hızlı çalışın ve kemikleri açığa çıkarmak için tüm kasları kaldırın. </li><li> Ayrı femur ve tibia. Mümkün olan bakterileri yok ve serum içermeyen DMEM 5 ml ihtiva eden bir petri kabı hemen yerleştirmek için 5 dakika boyunca% 70 etanol çözeltisi içinde kemik yerleştirin. Kesme kemik DMEM içine kemik iliği keskin bir makas kullanarak ve floş biter. 5 ml şırıngaya takılı 26 G&#39;lik bir iğne sokarak kemik içine, bu nedenle DMEM hizada 1 ml yapmak için. Kemikler yıkamadan sonra beyaz (boş) bakmak emin olun. </li><li> DMEM, 10 ml donör farelerden gelen tüm kemik iliği hücreleri toplamak. 70 mikron hücre süzgecinden geçirerek hasat kemik iliği hücrelerinden tek hücre süspansiyonları oluşturun. </li><li> Clsoğutuculu santrifüj içinde 4 ° C&#39;de 10 dakika boyunca 260 x g&#39;de santrifüj ile kemik iliği hücrelerinin kulak tek hücre süspansiyonları. 10 ml PBS içinde tekrar süspansiyon hücre peleti. 2.1.3 ve 2.1.4 de açıklandığı gibi rbcL çözümünü kullanarak kırmızı kan hücreleri İncelten. </li><li> Hemasitometre veya otomatik bir hücre sayacı kullanarak, kemik iliği hücreleri sayın. Tripan mavisi 13 üzerinden ölü hücrelerin belirlenmesi ile hücre canlılığını değerlendirmek. En uygun olarak, en azından% 80 bir canlılığı tek hayvan verimi yaklaşık 3 x 10 7, beyaz kan hücreleri / fare. </li><li> - / - Veya ağırlıkça donör hücrelerin toplam kemik iliği kimeralar durumunda, TLR 3 hazırlar. 100 ul PBS içinde 2 x 10 6 hücre transplantasyonu için kullanılacağından uygun hücre konsantrasyonu 2 x 10 7 hücre / ml &#39;dir. Derhal kullanılmadığı takdirde,% 10 DMSO ile yavaş dondurma teknikleri ve FBS kullanılarak -80 ° C&#39;de donör hücreleri korur. Karışık kimerik model için, Langerin- DTR-donör hücreleri ve mix TLR3 - / - </sup&gt; 75:25 oranında donör hücreleri. Kontrol fareleri üretmek için kemik iliği hücreleri wt: 25 Langerin- DTR: 75 bir karışımını hazırlayın. </li></ol></li><li> Fare ışınlama ve nakli <ol><li> Bir Sezyum-137 kaynak irradiator yaş 8 hafta - 6 arası dişi farelerin ışın tedavisi. Farelere ayrı 550 rad 4 saat iki doz verin. Bölünmüş ışınlama akut karaciğer toksisitesini azaltır ve dolayısıyla ışınlama protokol gereği fare ölümcül azaltır. </li><li> Işık verilmesinden sonra, iki hafta içinde antibiyotik ile tedavi edilen fareler tutun. Baytril / kg 5 mg - 2.5 içme suyu ile antibiyotik verin. </li><li> 2 - İkinci ışınlama 4 saat sonra damar içine vericinin kemik iliği hücreleri ile nakil fareler. 2 x 10 6 hücre ihtiva eden 100 ul PBS maksimum hacmi kullanılarak retro-orbital sinüs enjeksiyonu 13 üzerinden ve izofluran anestezi altında donör hücrelerin enjeksiyonu gerçekleştirin. </li><li> Dört hafta naklinden sonra, 100 numunesinde bütünleşmesini değerlendirilmesien az iki renge okuyabilecek bir makine kullanılarak akış sitometrisi ile periferal kan ul. Ticari olarak temin edilebilir floresan etiketli CD45.1 ve 1/100 ve 1/200 arasındaki seyreltileri kullanılarak CD45.2 anti-fare antikorları kullanarak, verici ve radyo dirençli alıcı hücrelere ayırt etmek. Donör hücrelerin optimal melezleme periferal kandaki toplam hematopoietik hücrelerin en az% 80&#39;i olmalıdır. </li></ol></li><li> Aşılama ve hedeflenen tükenmesi <ol><li> Burun yoluyla rekombinant canlı zayıflatılmış grip aşısı ile aşılanmalıdır fareler. Fare aşılama için, hassas buharlaştırıcı kullanılarak oksijen içinde% 5 izofluran ile fareler uyutmak. Aşının 10 3 plak oluşturucu birim (pfu) ihtiva eden PBS 50 ul yönetmek için bir 200 ul bir pipet kullanın. </li><li> Nihai fare modeli oluşturmak için, burun içinden PBS 50 ul seyreltilmiş DT 50 ng fare tedavi. 3.3.1 anlatıldığı gibi anestezi farelerin burun delikleri doğrudan damla damla DT yönetin. Sağlıgı migün 2 sonrası aşılama (Şekil 3B) kadar aşılama gün önce -2 tedaviye başlayan günlük dozlarda ce. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Bevan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understand+memory%2C+design+better+vaccines%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Understand memory, design better vaccines.</a> Nat. Immunol. 12, 463-465 (2011).</li>
<li>Gaucher, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yellow+fever+vaccine+induces+integrated+multilineage+and+polyfunctional+immune+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Yellow fever vaccine induces integrated multilineage and polyfunctional immune responses.</a> J. Exp. Med. 205, 3119-3131 (2008).</li>
<li>Querec, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systems+biology+approach+predicts+immunogenicity+of+the+yellow+fever+vaccine+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Systems biology approach predicts immunogenicity of the yellow fever vaccine in humans.</a> Nat. Immunol. 10, 116-125 (2009).</li>
<li>Banchereau, J., Steinman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+the+control+of+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and the control of immunity.</a> Nature. 392, 245-252 (1998).</li>
<li>Martínez-Sobrido, L., García-Sastre, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+recombinant+influenza+virus+from+plasmid+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Generation of recombinant influenza virus from plasmid DNA.</a> J Vis Exp. 3, (2010).</li>
<li>Haniffa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Tissues+Contain+CD141hi+Cross-Presenting+Dendritic+Cells+with+Functional+Homology+to+Mouse+CD103%2B+Nonlymphoid+Dendritic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Human Tissues Contain CD141hi Cross-Presenting Dendritic Cells with Functional Homology to Mouse CD103+ Nonlymphoid Dendritic Cells.</a> Immunity. 37, 60-73 (2012).</li>
<li>Haniffa, M., Collin, M., Ginhoux, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ontogeny+and+functional+specialization+of+dendritic+cells+in+human+and+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Ontogeny and functional specialization of dendritic cells in human and mouse.</a> Adv. Immunol. 120, 1-49 (2013).</li>
<li>Jung, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+depletion+of+CD11c%2B+dendritic+cells+abrogates+priming+of+CD8%2B+T+cells+by+exogenous+cell-associated+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">In vivo depletion of CD11c+ dendritic cells abrogates priming of CD8+ T cells by exogenous cell-associated antigens.</a> Immunity. 17, 211-220 (2011).</li>
<li>Lahl, K., Sparwasser, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+depletion+of+FoxP3%2B+Tregs+using+the+DEREG+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">In vivo depletion of FoxP3+ Tregs using the DEREG mouse model.</a> Methods Mol. Biol. 17, 211-220 (2011).</li>
<li>Duffield, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+depletion+of+macrophages+reveals+distinct%2C+opposing+roles+during+liver+injury+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Selective depletion of macrophages reveals distinct, opposing roles during liver injury and repair.</a> J. Clin. Invest. 115, 56-65 (2005).</li>
<li>Meredith, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+zinc+finger+transcription+factor+zDC%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Expression of the zinc finger transcription factor zDC.</a> J. Exp. Med. 209, 1153-1165 (2012).</li>
<li>Girón, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mucosal+Polyinosinic-Polycytidylic+Acid+Improves+Protection+Elicited+by+Replicating+Influenza+Vaccines+via+Enhanced+Dendritic+Cell+Function+and+T+Cell+Immunity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mucosal Polyinosinic-Polycytidylic Acid Improves Protection Elicited by Replicating Influenza Vaccines via Enhanced Dendritic Cell Function and T Cell Immunity.</a> J. Immunol. 193, 1324-1332 (2014).</li>
<li>Freshney, R. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+animal+cells%3A+a+manual+of+basic+technique%5BTitle%5D)+AND+%22bib.usb.ve%22%5BJournal%5D)">Culture of animal cells: a manual of basic technique.</a> bib.usb.ve. , (1983).</li>
<li>Cox, R. J., Brokstad, K. A., Ogra, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influenza+virus%3A+immunity+and+vaccination+strategies.+Comparison+of+the+immune+response+to+inactivated+and+live%2C+attenuated+influenza+vaccines%5BTitle%5D)+AND+%22Scand.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Influenza virus: immunity and vaccination strategies. Comparison of the immune response to inactivated and live, attenuated influenza vaccines.</a> Scand. J. Immunol. 59, 1-15 (2004).</li>
<li>Gowdy, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+CD8%28%2B%29+T+cell+immunity+after+allogeneic+bone+marrow+transplantation+leads+to+persistent+and+severe+respiratory+viral+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Impaired CD8(+) T cell immunity after allogeneic bone marrow transplantation leads to persistent and severe respiratory viral infection.</a> Transpl. Immunol. 32, 51-60 (2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bu çalışmada, aşıyla indüklenen bağışıklık fizyolojik ve moleküler mekanizmaları aydınlatmak için kullanılabilir kadar karşıt genetik ve kimerik fare modelleri açıklanmaktadır. Grip ters genetik birçok laboratuvarda kurulan ve grip patogenezi, çoğaltma ve iletim 17 anlamada bir baş rol oynamıştır. Bizim protokolde önemli bir nokta, yabancı epitopları ifade soğuk uyarlanmış influenza aşılarının kurtarma olduğunu. Nöraminidaz sap içinde kısa cDNA&#39;ları sokulması stratejisi birçok grup ile tarif edilmiş olmak...

hastalığın yokluğunda immünolojik bellek üretimi etkili bir aşı 1 fizyolojik temelidir. Son zamanlarda, sistem biyolojisi-bazlı yaklaşımlar, sarı humma aşı olarak başarılı bir şekilde aşılar, sırayla, kurşun antijen aktivasyonunu multilineage doğuştan gelen bağışıklık tepkilerinin ve dendritik hücreler (DC), birkaç alt takımından aktivasyon kuvvetli bir uyarımının neden olduğunu ortaya koymuştur Belirli T hücreleri 2,3. DH&#39;ler, antijene özel T hücrelerinin naif 4 aktive etme kabiliyetine sahip, sadece bağışık hücre popülasyonu olduğu için, aşılama sırasında fonksiyonunun çalışması aşılara bağışıklık tepkilerini anlamak ve zorlu patojenlere karşı gelecek stratejilerini tasarımı için çok önemlidir. Aşılara bağışıklık tepkilerinin sırasında farklı DCler alt kümelerinin izleme sağlayan bir sistem sağlamaktır, bu nedenle lenfoid dokulara DC göç doğru bir kinetik oluşturulması için arzu edilebilir, ve olurAşı özgü adaptif bağışıklık başlatılmasından sorumlu fizyolojik mekanizmaların içgörü. Genetik temelli Ters yaklaşımlar, olasılık modifiye oluşturmak için bu amaçla deneysel kullanılabilecek canlı zayıflatılmış aşılar sunuyoruz. İnfluenza araştırma uygulanması için, plazmid bazlı ters genetik yaygın LAIVs de dahil olmak üzere rekombinant influenza suşları oluşturmak için kullanılmıştır. Standart protokolleri (rekombinant influenza virüsleri gibi Madin-Darby köpek böbrek gibi hoşgörülü sistemde yükseltilmesi yanı sıra sekiz grip viral segmentleri içeren ambisens plazmid ile son derece transfectable hücre hatları (pozitif ve negatif anlamda RNA hem üreten) multi-transfeksiyonunu gerektiren kurtarmak için MDCK) hücreleri ve / veya tavuk embriyo haline getirilmiş yumurtalar 5. Bununla birlikte, aşı, bağışıklık mekanizmaları incelemek amacıyla moleküler araçlar üretmek için ters genetik uygulama keşfedilmemiştir. nesilDC&#39;lerle dahil bağışıklık hücre alt, spesifik tükenmesi izin yeni fare modellerinin, aşı tetiklenen koruma altında yatan temel bağışıklık mekanizmaları anlamak için yeni olanaklar açtı. farelerde ve insanlarda DC alt fonksiyonları arasında karşılaştırması büyük ölçüde, fare ve insan DH&#39;leri güçlü, homolog işlevsel bu bulgular 6,7 olan fare modellerinin geliştirilmesi kararlı halde DC&#39;lerin belirli bir tükenmesi izin düşündürmektedir ortaya koymuştur ve iltihaplı koşullar sırasında, insanlarda DC tepkilerinin fizyolojisini anlamak için hizmet edebilir. Son yıllarda, fare modelleri bir kaç İlgi 8,9 arasında bir genin promotör bölgesinin kontrolü altında simian difteri toksini (DT) reseptörü (DTR) eksprese eden transgenler taşıyan üretilmiştir. Fare dokuları doğal DTR ifade olmadığından, bu modeller DT ile fare inokülasyon üzerine ilgi hedeflenen genini taşıyan hücre alt koşullu tükenmesi izin verir. Böylece, abilifizyolojik işlemler sırasında in vivo özel DCler ve diğer lökosit tüketmek ty, büyük DTR-tabanlı ro gelişmesi ile geliştirilmiştir. Bu transgenik fare modelleri, immün sistemin ontogenezini anlamak için yaygın olarak kullanılmaktadır ancak bununla birlikte, aşı gelişimi için uygulama pek test edilmiştir. Burada, grip ters genetik ve DTR-temelli rekabet kemik iliği kimeralar birleştirerek, biz in vivo aşılara bağışıklık yanıtları sırasında aşı bağışıklık yanı sıra bireysel gen fonksiyonu kinetiğini incelemek için bir yöntem öneriyoruz. zorlu bulaşıcı hastalıklara karşı yeni aşıların klinik öncesi değerlendirilmesi için bu teknolojinin uygulama aşı tasarımı rasyonalize etmek ve in vivo aşı adayları test etmeye yardımcı olabilir.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&akut; s Modifiye Eagle Medium (DMEM 1x)</td> <td>Gibco RL-Life Technologies</td><td>41965-039</td><td></td></tr><tr><td>OptiMEM</td><td>Gibco RL-Life Technologies</td><td>31985-047</td><td></td></tr><tr><td>Lipofektamin 2000</td><td>Invitrogen-Life Technologies</td><td>11668-027</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin (10.000 U / ml)</td> <td>PAA</td><td>p11-010</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serumu Albümini</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Embriyonlu yumurtalar</td><td>Valo biomedia Gmbh</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS (1x)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>70 & M Naylon Filtreler</td><td>Greiner-Biorad</td><td>542-070</td><td></td></tr><tr><td>Kırmızı Kan Hücresi Parçalama tamponu (RBCL) 10x</td><td>BD Bioscience</td><td>555899</td><td></td></tr><tr><td>CD16 / CD32 Fare BD Fc Blok (2.4G2)</td> <td>BD Pharmigen</td><td>553142</td><td></td></tr><tr><td>APC-Anti-fare SIINFEKL-H2kb (25 D1.16)</td> <td>Biolegend</td><td>141605</td><td></td></tr><tr><td>PE-Anti-fare CD11c (HLA3)</td> <td>BD Biosciences</td><td>553802</td><td></td></tr><tr><td>eFluor 450-Anti-fare MHCII (MD/114.15.2)eBioscience</td><td></td> <td>48-5321-82</td><td></td></tr><tr><td>Pe-Cy7-Anti-fare CD11b (M1/70)</td><td>Biolegend</td><td>101216</td><td></td></tr><tr><td>PerCp/Cy5.5-Anti-fare CD103 (2E7)</td><td>Biolegend</td><td>121416</td><td></td></tr><tr><td>PE-Anti-fare CD45.1 (A20)</td><td>eBioscience</td><td>12-0453-82</td><td></td></tr><tr><td>V500-Anti-fare CD45.2 (1O4)</td><td>BD Bioscience</td><td>562130</td><td></td></tr><tr><td>PerCp-eFluor710 -Anti-fare CD8a (53-6.7)</td><td>eBioscience</td><td>46-0081-80</td><td></td></tr><tr><td>APC-Cy7-Anti-fare CD3 ve epsilon; (145-2611)</td><td>Biolegend</td><td>100325</td><td></td></tr><tr><td>eFluor450-Anti-fare CD4 (GK 1.5)eBioscience</td><td></td> <td>48-0041-80</td><td></td></tr><tr><td>CFSE Proliferasyon boyası</td><td>eBioscience</td><td>65-0850-85</td><td></td></tr><tr><td>Baytril 2.5%</td><td>Bayer</td><td>65-0850-85</td><td></td></tr><tr><td>Dymethil-Sülfoksit (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumin&nbsp;</td><td>Moleküler problar&nbsp;</td><td>O23020</td><td></td></tr><tr><td>Difteri Toksini (DT)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>D0564</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin-TPCK</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1426</td><td></td></tr><tr><td>BD FAC'lerCanto II Akış sitometresi</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FlowJo hücre analiz yazılımı 9.5</td><td>Flowjo inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tripan Mavi Leke (% 0.4)&nbsp;</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>T10282</td><td></td></tr><tr><td>Kontes Otomatik Hücre Sayacı</td><td>Invitrogen-Life Technologies</td><td>C10227</td><td></td></tr></tbody></table>

kimerik fare modellerinde rekombinant grip aşıların burun içinde yoluyla mukozal bağışıklık okumak

Intranasal Administration of Recombinant Influenza Vaccines in Chimeric Mouse Models to Study Mucosal Immunity

Aşılar, insanlığın en büyük başarılarından biridir ve geçen yüzyılda milyonlarca hayat kurtarmıştır. Paradoksal olarak, belki de aşı bağışıklığının moleküler ve fizyolojik mekanizmalarına olan ilgiyi azaltan aşılamanın genel başarısı nedeniyle, aşılara karşı bağışıklık tepkilerine aracılık eden fizyolojik mekanizmalar hakkında çok az şey bilinmektedir. Bununla birlikte, influenza virüsü de dahil olmak üzere bazı önemli insan patojenleri aşılama için hala bir zorluk teşkil etmektedir ve bağışıklık temelli stratejilerden fayda sağlayabilir. 
İnfluenza ters genetiği, canlı zayıflatılmış influenza aşılarının (LAIV'ler) üretilmesine başarılı bir şekilde uygulanmış olsa da, aşılamanın kinetiğini in vivo olarak takip etmek için aşı preparatlarına izleyici bileşenler gibi moleküler araçların eklenmesi ele alınmamıştır. Ek olarak, kinetik çalışmalar sırasında lökositlerin spesifik olarak tükenmesine izin veren yeni nesil fare modelleri, aşı kaynaklı korumanın altında yatan temel bağışıklık mekanizmalarını anlamak için bir fırsat penceresi açmıştır. Burada, ters genetik ve kimerik fare modellerinin kombinasyonunun, örneğin rekombinant, soğuğa uyarlanmış, canlı zayıflatılmış bir grip aşısı (LAIV) kullanarak, aşıların fizyolojik ve moleküler seviyelerde nasıl çalıştığına dair yeni bilgiler sağlamaya nasıl yardımcı olabileceğini açıklıyoruz. Aşı bağışıklığının erken kinetiğini ve aşıya özgü adaptif bağışıklığın başlatılmasından sorumlu ana fizyolojik mekanizmaları belirlemek için hücre izleyicileri barındıran laboratuvar tarafından üretilen LAIV'lerin yanı sıra rekabetçi kemik iliği kimeralarını (BMC'ler) kullandık. Ek olarak, bu tekniğin, aşılara karşı bağışıklık tepkileri sırasında tek hayvanlarda gen fonksiyon çalışmalarını nasıl kolaylaştırabileceğini gösteriyoruz. Bu tekniğin, örneğin grip, HIV, Plazmodyum ve Ebola virüsü gibi hemorajik ateş virüsleri gibi acil tıbbi önlemlere ihtiyaç duyulan patojenlere karşı mevcut profilaktik stratejileri geliştirmek için uygulanabileceğini öneriyoruz.

Rekombinant canlı-zayıflatılmış influenza aşılarının üretilmesi iki yönlü promoterlerin 5 kontrolü altında grip virüsü sekiz segmentleri kodlayan plasmidlerin transfeksiyonu ile elde edilebilir. Soğuk adapte influenza aşısı genellikle soğuğa uyarlanmış suşu olarak hem de tercih edilen influenza suşunun HA ve NA (örneğin, H1N1) (Şekil 1A) altı segmentleri içerir. Soğuk adaptasyon prensibi 33 ° C, farelerde ve insanlarda 14 üst solunum yollarının (URT) sıcaklıkta virüs sınır...

Aşıların nasıl çalıştığı hakkında genel bir bilgi eksikliği var. Burada, dendritik hücrelere ve T hücresi bağışıklığına özel olarak odaklanarak, aşılara karşı erken konak bağışıklık tepkileri hakkında fikir edinmek için ters genetik ve kemik iliği kimerik farelerin birlikte kullanılmasını öneriyoruz.

Kimerik fare modellerinde Rekombinant Grip aşıların burun içinde yoluyla mukozal bağışıklık Okumak

Vaccines are one of the greatest achievements of mankind, and have saved millions of lives over the last century. Paradoxically, little is known about the ...

Bu prosedürün genel amacı, aşının spesifik adaptif immünitesinin fizyolojik başlangıcını değerlendirmek için bir sistemi tanımlamaktır. Bu işlem, öncelikle ters genetik kullanılarak belirli bir immünojenik peptit içeren canlı, atenüe influenza aşılarının üretilmesi ve ardından virüsü çoğaltmak için bir tavuk embriyosunun kullanılmasıyla gerçekleştirilir. Daha sonra, aşılanmış farelerin lenf düğümlerinden hücreler toplanır ve dendritik hücre göçünü takip etmek için FACS analizi kullanılır.Bir sonraki analizde, immünojenik peptide karşı reaktif olan CD 8 pozitif T hücreleri işaretlenip aşılanmış farelere enjekte edilir ve ardından bu hücrelerin proliferasyonunu ölçerek bağışıklık yanıtını daha ayrıntılı analiz etmek için FACS analizi yapılır. Radyasyon uygulanmış konjenik farelere difteri toksin reseptörü eksprese eden kemik iliği hücrelerinin infüzyon yapılması ve ardından farelerin difteri toksinine maruz bırakılmasıyla kompetitif bir kemik iliği kimerası oluşturulur. Başarılı bir deplesyonun ardından fare aşılanır ve CD 8 pozitif T hücrelerini tanımlamak için işaretli antikorlar ve tetramerler kullanılır.Spesifik peptidin tanımlanması. Bu yöntem, bir aşının nörolojik düzeyde nasıl çalıştığı, aşının temel hücresel ve moleküler hedeflerinin neler olduğu ve en önemlisi mevcut profilaktik stratejileri nasıl geliştirebileceğimiz gibi vaksinoloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Prosedürü Sanmen Medina uygulamalı olarak gösterecektir.Laboratuvar yöneticimiz ve ben, bu protokol için soğuğa adapte A Ann Arbor 6 60 suşunu arka plan olarak kullanarak, A PR 8 34 suşunun hemaglütinin ve modifiye nöraminidazını içeren yeniden sıralanmış soğuğa adapte bir influenza aşısı hazırladık.Neuraminidase geninin protein sap dizisinin bir kısmı, tavuk peptit syn fecal'i kodlayan kısa bir CDNA dizisi ile değiştirilmiştir. Bu peptit, H iki BMHC sınıfında oldukça immünodominanttır. C 57 black six farelerinin kısıtlı bir yanıtı olup izlenebilir bir element olarak işlev görür.Plaka 1'e başlamak için, altı kuyucuklu bir plakanın her kuyucuğuna %10 fetal bovine serum ve %1 pen strep içeren DMEM ile 1.000.002 93 T hücresi ekleyin. Ardından, kuyucuk başına 100 microliters olacak şekilde yeterli plazmit transfeksiyon karışımı hazırlayın. Her bir plazmitten bir microgramı birleştirin ve başka bir tüpteki tüpü önceden ısıtılmış opti MEM hücre besiyeri ile 50 microliters'e tamamlayın.Transfekte edilecek toplam plazmid miktarına karşılık gelen hacmin iki katı kadar lipectomy 2000 ekleyin ve transfeksiyon karışımını hücrelere eklemeden önce tüpü opti MEM ile 50 microliters hacme tamamlayın. Oda sıcaklığında 30 dakika bekletin. Ardından her kuyucuğa 100 microliters transfeksiyon karışımı ekleyin ve plakayı 16 saat süreyle bir inkübatöre yerleştirin.Ertesi gün, besiyerini %0,3 BSA ve %1 pen strep içeren DMEM ile değiştirin. Ardından hücreleri 5 saat boyunca %5 karbondioksit içeren 33 °C'ye taşıyın. Beş saat sonra.Tripsin takviyeli DMEM içinde bir milyon influenza geçirgen MDCK hücresinden oluşan bir katman ekleyin. Virüsü üretmek ve çoğaltmak için ko-kültürleri 33 °C inkübasyon rejiminde iki ila üç gün boyunca sürdürün. Daha sonra, beş dakikalık 260 G santrifüjle kalıntıları temizleyin. Ardından süpernatanları toplayın ve steril koşullar altında 9-10 günlük tavuk embriyosu ekilmiş yumurtalara inoküle edin.Bunu yapmak için, yumurta kabuğunun üst kısmında bir delik açın ve virüsü 100 x 10 x veya bir x dilüsyonunda ekleyin. Yumurta kabuğunu bir pamuklu çubuk kullanarak eritilmiş balmumu ile kapatın ve inoküle edilmiş tavuk yumurtalarını üç gün boyunca 33 °C'de inkübe edin. Daha sonra, enfekte yumurtalardan allantoik sıvıyı hasat edin.Yumurta kabuklarını %70 etanol ile yıkayın. Yumurtayı üst kısmından çok nazikçe çatlatarak açın ve steril pens kullanarak allantois membranını çıkarın. Mümkün olduğunca fazla sıvı toplamak için 10 mililitrelik bir pipet kullanın.Genellikle altı ila 10 mililitre. Sıvıyı 4 °C'de 10 dakika boyunca 260 gs ile santrifüj edin ve berraklaşmış allantois sıvısını yeni tüplere aktarın. Donör fareyi anestezi altına alıp mediastinuma cerrahi olarak eriştikten sonra, lenf düğümlerini kavisli pensler kullanarak toplayın.Lenf nodlarını, bir mililitre DMEM içeren altı kuyucuklu bir plakaya aktarın. Lenf nodunu çevreleyen bağ veya yağ dokusu temizlendikten sonra, lenf nodunu bir iğne ile sabitleyin ve diğer iğne ile açın. Bu işlem, hücrelerin toplanması için lenf nodundan besiyerine doğru patlayarak çıkmasını sağlamalıdır.İlk olarak, santrifüj için hazır bir hücre süspansiyonu elde etmek amacıyla tüm doku materyalini 70 mikronluk bir naylon filtreden geçirin. Hücre peletini iki mililitre RBC Lizleme tamponunda yeniden süspanse edin. Liz reaksiyonunun oda sıcaklığında üç dakika boyunca sürmesine izin verin ve reaksiyonu iki mililitre buz soğukluğunda PBS ekleyerek sonlandırın; ardından metin protokolüne göre hücrelerin boyama işlemine geçin.Antikor inkübasyonundan önce süpernatantı uzaklaştırmak ve atmak için plaka flicking yönteminin kullanıldığından emin olun. Ticari olarak temin edilen TCR transgenik farelerden alınan donör T hücrelerini etiketleyin; 5 milyon hücreyi bir mililitre PBS içerisinde beş mikromolar CFSE ile inkübe edin. İnkübasyonu 37 °C'de, karanlıkta 20 dakika boyunca sürdürün.Ardından hücreleri 100 µL PBS başına 2 milyon olacak şekilde toplayın ve alıcı konjenik farelere retroorbital sinus enjeksiyonu yoluyla 100 µL bolus infüzyonu yapın. Üç ila beş gün sonra fareleri ötanize edin, mediastinal lenf düğümlerini hasat edin ve daha önce belirtildiği gibi akış sitometrisi için tek hücre süspansiyonu hazırlayın.Ardından, tek hücre süspansiyonlarını bir antikor kokteyli ile boyayarak donör hücreleri tanımlayın. Analiz için, CFSE dilüsyon profilini belirlemek amacıyla akış sitometresinin FL 1 kanalını boş bırakın.Ötanazi uygulanmış bir farenin tibiae ve femur kemikleri çıkarılıp sanitize edildikten sonra, bunlar bir DMEM kabına toplanır. Kemik uçları keskin bir makasla kesilir ve kemik iliği DMEM içerisine boşaltılır. Daha sonra standart yöntemler kullanılarak, altı ila sekiz haftalık dişi fareler bir sezyum 137 kaynaklı iradyatör ile ışınlanır. Fareler ışınlandıktan iki ila dört saat sonra, fareler anestezi altına alınır ve 100 microliters PBS içerisinde 2 milyon hücrenin retroorbital sinüs enjeksiyonu yoluyla donör kemik iliği hücreleri nakledilir. Sonraki iki hafta boyunca, farelerin içme sularına kilogram başına 2,5 ila beş milligrams Baal eklenir.Aşılamadan iki gün önce başlayarak, 50 µL PBS içinde seyreltilmiş 50 nanogram DT'yi anestezi altındaki farelerin burun deliklerine damla damla uygulayın. Bu işleme aşılamadan sonra üç gün boyunca devam edin. Nihai fare modelini oluşturmak için ayrıntılar için metin protokolüne bakınız.Anestezi altında, fareleri rekombinant canlı atenüe influenza ile intranazal enjeksiyon yoluyla aşılayın. 50 µL PBS içerisinde 1000 PFU aşıyı, 200 microliter pipet kullanarak uygulayın; rekombinant canlı atenüe influenza aşılarının üretimi, influenza virüsünün sekiz segmentini kodlayan plazmidlerin çift yönlü promotörlerin kontrolünde transfeksiyonu ile gerçekleştirilebilir. Soğuğa adapte bir influenza aşısı, genellikle soğuğa adapte bir suşun altı segmentinin yanı sıra, H1N1 gibi seçilen influenza suşunun HA ve NA proteinlerini içerir.Soğuk adaptasyonu, farelerde ve insanlarda üst solunum yolu sıcaklığı olan 33 °C'de virüsün sınırlı replikasyonuna izin verirken, alt solunum yolunda replikasyona izin vermez; bu nedenle pnömoni füzyonu ile sonuçlanamaz. Viral nöraminidazın gövdesindeki korunmuş bir bölgenin izlenebilir OVA türevli bir peptit ile değiştirilmesi için PCR kullanılmıştır. İzlenebilir peptit modeli, aşılama sonrası üç ila altı gün arasında farelere inoküle edilmiştir.İzlenebilir protein syn fecal, akciğer drenaj lenf düğümlerinde tespit edildi. Aşı kaynaklı antijen sunumunu gerçek zamanlı olarak nicelleştirmek için multiparametrik akış sitometrisi kullanıldı. Benzer şekilde, syn fecal spesifik T hücrelerinin infüzyonu, aşılama sırasındaki gene spesifik fonksiyonları değerlendirmek amacıyla aşıya spesifik CD eight T hücresi yanıtlarının nicelleştirilmesine olanak sağladı.DTR teknolojisi ve kompetitif kemik iliği kimerasını birleştiren bir fare modeli kullanılmıştır. Böylece, aşılama sonrası immün yanıtlar süresince gen fonksiyon kaybının belirli hücre bölmelerine hedeflenmesi sağlanmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, konakçıda aşı ile indüklenen immünitenin modülasyonunda yer alan moleküler ve fizyolojik yolakların nasıl analiz edileceği konusunda iyi bir anlayış kazanacaksınız.Ayrıca, bu teknik aşının hücre hedeflerinin belirlenmesinde yeni bir bakış açısı sağlayacak ve böylece yeni aşı platformlarının değerlendirilmesine katkıda bulunacaktır.

intranasal-administration-recombinant-influenza-vaccines-chimeric

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Kaynak: Lenhard, A. ve diğerleri. Streptococcus pneumoniae'nin viral eş-enfeksiyon sonrası kolonizerden patojene geçişi için fare modeli, yaşa bağlı hastalığı özetliyor. J. Vis. Exp. (2022)Bu video, grip virüsünün Streptococcus pneumoniae'nin kolonizatordan patojene geçişini tetiklediği bir fare ortak enfeksiyon modelini gösteriyor. Bakteriyel kolonizasyon, viral enfeksiyon ve hastalık ilerlemesiyle ilgili adımları özetler.

Viral Ortak Enfeksiyon Sonrası Streptococcus pneumoniae'nin Patojenik Geçişini İnceleyen Fare Modeli

Source: Wang, M., et al, Evaluation of T Follicular Helper Cells and Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice. J. Vis. Exp. (2020).This video demonstrates intranasal infection of a mouse with a pathogenic influenza virus to establish a respiratory tract infection. The procedure outlines the administration of the virus into the nasal cavity. The virus enters host cells, replicates, and activates the immune system.

Intranasal Infection of a Mouse with a Pathogenic Influenza Virus

Bu video, farelerde intranazal BCG bağışıklamasını gösterir, hem doğuştan gelen hem de adaptif bağışıklık tepkilerini aktive eder, akciğerde yerleşik bellek T hücrelerinin ve efektör B hücrelerinin gelişmesine yol açar ve böylece Mycobacterium enfeksiyonlarına karşı korumayı artırır.

Bir Fare Modelinde BCG ile İntranazal Bağışıklama

Video, soğuğa uyarlanmış rekombinant influenza virüsleri oluşturmak için bir yöntem gösteriyor. İnsan hücrelerinin çift yönlü plazmitlerle transfekte edilmesini, ardından daha sıcak koşullarda azaltılmış replikasyon ile karakterize edilen aşı üretimine uygun virüsler elde etmek için daha düşük sıcaklıkta inkübasyonun inkübasyonunu içerir.

Aşılar için Rekombinant Canlı Zayıflatılmış İnfluenza Virüslerinin Üretilmesi

Haemophilus influenzae'nin farelerin alt solunum yollarına intra-trakeal inokülasyon prosedürünü gösteriyoruz. Bu, fare modellerinde hava yolu iltihabını düzenleyen sinyal yollarını incelemek için çok kullanışlı bir araçtır.

intra-trakeal İdaresi<em&gt; Haemophilus influenza</em&gt; Fare Modelleri Havayolu inflamasyonu Eğitim için

Grip A virüs (IAVs) önemli insan solunum patojenler vardır. İnsan fizyolojisi taklit hayvan modelleri IAVs patojenitesi anlamak ve preklinik roman aşı yaklaşımlar sınamasını gerçekleştirmek için gereklidir. Burada, biz IAV Patogenez, humoral yanıt ve enfeksiyon bir fare modeli kullanarak aşı etkinliğini değerlendirmek için teknikler açıklanmaktadır.

Grip A virüs enfeksiyonu bir fare modeli çalışmalarda

Bu çalışmada, biz iki fotonlu intravital görüntüleme ve hücre etkileşim fare trakeal mukoza grip virüsü ile enfeksiyon sonra çözümlemesi için bir protokol mevcut. Bu iletişim kuralı bağışıklık hücre dynamics sırasında solunum yolu enfeksiyonları eğitim araştırmacılar için ilgili olacaktır.

İki fotonlu Intravital mikroskobu kullanılarak grip virüsü enfeksiyonu sırasında trakeal mukozasında görüntüleme hücre etkileşimi

Burada etkinliği ve ana bilgisayar bağışıklık yanıtı aşı vivo içinde değerlendirilmesi için zarif bir iletişim kuralı mevcut. Bu iletişim kuralı eğitim viral, bakteriyel aşı modelleri veya paraziter patojenler için adapte edilebilir.

Ana bilgisayar-patojen yanıt ve aşı etkinliği farelerde değerlendirilmesi

Bu makalede, influenza virüs enfeksiyonunun fare modelinde Tfh ve GC B yanıtını değerlendirme protokolleri açıklanmaktadır.

Farelerde grip A Virüs Enfeksiyonu Sırasında T Foliküler Yardımcı Hücrelerin ve Germinal Merkez Yanıtının Değerlendirilmesi

Bu protokol, IAV'nin intranazal uygulaması ve fare akciğer hasarının aşağı akış analizi ve akciğer hücre tiplerinde ilişkili transkripsiyonel değişiklikler için talimatlar sağlar.

İnfluenza Enfeksiyonu Sonrası Displastik ve Fonksiyonel Akciğer Alveoler Onarımının Modellenmesi

Öğrenin, rekombinant canlı zayıflatılmış grip aşıları ile kemik iliği kimerik fare modellerinde mukozal bağışıklık yanıtlarını nasıl değerlendireceğinizi. Bu yöntem, aşıların erken bağışıklık mekanizmalarını anlamanıza yardımcı olur.

Kimerik fare modellerinde Rekombinant Grip aşıların burun içinde yoluyla mukozal bağışıklık Okumak

Daha fazla video keşfet