12 Mayıs 2015
Doğum sonrası beyincik gelişimi sırasında, germinal bölgeden köken alan olgunlaşmamış granül hücreleri, nihai hedeflerine ulaşmak ve nöronal ağlar kurmak için farklı göç yöntemleri sergilerler. Bu protokol, serebellar kesitlerin hazırlanmasını ve nöronal göçü düzenleyen faktörleri araştırmak için kullanılan konfokal makroskopik yaklaşımı tanımlar.
Bu prosedürün genel amacı, göç eden nöronları canlı beyin dilimlerinde görselleştirmektir. Bu, önce serebellumun bir P 10 sıçandan diseke edilmesiyle gerçekleştirilir. Sonraki adımlar, akut serebellar dilimler hazırlamak ve nöronları bir floresan prob ile etiketlemektir.
Daha sonra hızlandırılmış deney, makro konfokal görüntüleme veya konfokal mikroskopi ile gerçekleştirilir. Son adım, ortaya çıkan filmlerdeki nöronları izlemektir. Sonuç olarak, ex vivo mikroskopi, nöronal göçü düzenleyen endojen faktörlerin veya toksik maddelerin rolünü göstermek için kullanılır.
Bu tekniğin konfokal mikroskopi gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, makro konfokal görüntülemenin doğrudan kasık ekine yerleştirilen serebral sanat kesitlerinden çıkma hissini artırmasıdır. İlk olarak, konfokal mikroskopi deneyleri için serebral sanat dilimlerini transfer etmekte ve stabilize etmekte zorluk çektiğimde bu yöntem için fikrim vardı Kafası kesilmiş bir P 10 sıçan yavrusu kafasının kafatasına erişerek başlayın, ince iris makası kullanarak tabandan kafatasının rostral bölgesine hassas bir şekilde iki lateral kesi yapın. Daha sonra disseke edilmiş kafatasını iki numara üç forseps ile çıkarın ve beyin ile kafatası arasındaki herhangi bir yapışmayı kırın.
Şimdi, bir spatulanın kaşık ucuyla beyni çıkarın ve buz üzerinde iki mililitre soğuk HBSS ile 35 milimetrelik bir Petri kabına koyun. Şimdi, bir stereo mikroskop altında, iki numara üç forseps kullanarak beyinciği beyinden D laserasyonları ile izole edin. Beyincikleri buz gibi soğuk tamponlu yeni bir yemeğe koyun.
Daha sonra aynı aletleri kullanarak, kalan omuriliği ve soyma zarını çıkarın ve atın. 15 numara cerrahi bıçak ile üç numara sağlam bir neşter sapı hazırlayın. Bıçağı stereo mikroskop altında kullanarak, verus ile sağ hemisfer arasındaki beyinciği kesin.
Şimdi vibratoda, numune diskine bir damla siyanokrilat yapıştırıcı koyun ve beyinciği diske aktarmadan önce çözücü buharının dağılması için 15 ila 25 saniye bekleyin. Ardından, beyinciğin kenarını numune diskine sabitleyin ve 10 saniye bekleyin. Şimdi manipülatörü kullanarak, numune diskini, beyinciğin enine ekseni bıçak tutucusuna dik olacak şekilde tampon tepsisine yerleştirin.
Diski bir şap anahtarı kullanarak sabitlediğinizden emin olun. Daha sonra beyinciği dikkatlice HBSS ile örtün ve kırılmış buzu soğutma banyosuna yükleyin. Numuneyi dilimlemek için temizlenmiş bir bıçağı, kenarı numunenin arka kenarının hemen arkasında olacak şekilde yerleştirin.
Bunu buzlanma için başlangıç noktası olarak tanımlayın. Ardından, uç noktayı örneğin ön kenarının hemen yanından geçecek şekilde tanımlamak için forward komutunu kullanın. Şimdi dilim kalınlığını 180 mikron olarak ayarlayın.
Ardından kesit alma hızını 2,5'e ve frekansı sekize ayarlayın ve numuneyi kesitlere ayırmaya başlayın. Beyincik başına en fazla beş dilim toplayın. Kesik geniş bir yaban domuzu camı pipeti kullanarak her bölümü alın.
Bölümleri buz üzerinde soğuk HBSS içeren bir kaba aktarın. Dilimleri stereo mikroskop altında topladıktan sonra, iki numaralı beş forseps kullanarak meninksleri dikkatlice çıkarın. Ayrıca, daha iyi prob yüklemesi için LOE'leri nazikçe ayırın.
Numuneyi dilimledikten sonra, bunları bir miktar HBSS ile altı Kuyulu bir plakaya aktarmak için kesik bir geniş yaban domuzu pipeti kullanın, her bir oyukta üç dilime kadar yükleyin. Daha sonra, her yüklenen ortamdaki ortamı boşalttıktan sonra, numuneleri ışıktan korumak için 10 mikromolar floresan boya içeren beş mililitre yükleme çözeltisi ekleyin, plakayı folyo ile örtün. Ardından plakayı 35 RPM'ye ayarlanmış bir mutatöre koyun.
Boyanın hücreleri iyi etiketlemesine izin vermek için plakayı oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin. Şimdi dilimleri daha önce olduğu gibi üç mikron gözenekli bir transwell ekinin zarına aktarın. Ardından yükleme ortamını aspire edin ve sadece dilimleri bırakın.
Şimdi kuyuyu 1.9 mililitre DMEM ile doldurmak için eki ve dilimleri çıkarın. Ardından eki geri takın ve dokuları kaplamak için 100 mikrolitre daha DMEM ekleyin. Bu preparasyonu iki saat inkübe edin, ardından granül hücreleri görünür hale gelecektir.
Plakayı kapaksız olarak konfokal mikroskopta sabit gaz akışı olan bir çevre odasına aktarın. Ardından, hızlandırılmış deneyler için konfokal mikroskobun plaka ekine cam kapak yerleştirin. Devam etmeden önce hücrelerin odada iki saat daha kuluçkaya yatmasına izin verin.
Doku dilimlerinde göç eden granül hücrelerini görselleştirmek için, preparasyonu 488 nanometre ışıkla aydınlatın ve iki x kuru objektif kullanın. Görüntü J'yi kullanarak 500 ila 530 nanometre arasındaki floresan emisyonlarını tespit edin.Hızlandırılmış filmin her görüntüsü için, standart sapma modunu kullanarak bir Zack projeksiyonu gerçekleştirin, her görüntünün kontrastını ve parlaklık seviyelerini ayarlayın, böylece etiketli granül hücrelerinin görülmesi kolaylaşır. Şimdi, partikül analizi menüsünden manuel izleme eklentisini seçin.
Hızlandırılmış görüntü dizisi boyunca etiketlenmiş her hücre gövdesinin merkezi noktasına tıklamak için eklentiyi kullanın. Ardından, daha fazla analiz için ham izleme verilerini bir elektronik tabloya aktarın. Programı kullanarak her hücreyi ve ilişkili konumları tanımlayan akıllı bir ev yapımı araçla Görüntü J'den dışa aktarılan ham izleme verilerini yeniden düzenleyin.
Her hücre için toplam hareket mesafesini ve ortalama göç hızını hesaplayın. Doğum sonrası erken serebellumda, granül hücreleri farklı kortikal tabakaları geçerken göç modlarında ve hızlarında önemli değişiklikler gösterir. PM sıçan serebellar doku dilimlerinde CTG işaretli granül hücreleri incelendi.
Tarif edildiği gibi, granül hücreleri moleküler tabakada saatte ortalama 18 mikron hızla radyal olarak göç etti. Daha sonra göç oranını değiştirmesi beklenen ilaçların etkisini test etmek için başka bir preparat kullanıldı. Ödeme başlığının 38 kültür ortamına uygulanması, moleküler tabakadaki granül hücrelerinin% 79'luk bir hız düşüşüne, saatte 2.5 mikrona düşmesine neden oldu.
Endojen TPA'nın bir inhibitörü olan PI one'ın uygulanması, granül hücre göç hızını kontrol hızından saatte 4.2 mikrona% 78 oranında azalttı. Bu videoyu izledikten sonra, gelişmekte olan teori balonundaki hücrelerin nasıl izleneceğini iyi anlamış olmalısınız. Bu prosedürü denerken, hücre göçü için gerekli olan uygun ve sabit çevresel parametreleri sağlamayı unutmamak önemlidir.
Bu teknik, sinirbilim alanındaki araştırmacıların beyindeki olgu uyandırma süreçlerini keşfetmesinin yolunu açtı.
Bu çalışma, canlı beyin dilimlerindeki nöronal hareketi görselleştirmek için konfokal makroskobik bir yaklaşım kullanarak, postnatal serebellumdaki olgunlaşmamış granül hücrelerinin migrasyonuna odaklanmaktadır. Protokol, serebellum dilimlerinin hazırlanmasını ve nöronal migrasyonu etkileyen faktörleri özetlemektedir.
Bu yöntem, canlı beyin kesitlerinde nöronal migrasyonun gerçek zamanlı görselleştirilmesine olanak tanıyarak, nörogelişimsel hedef doğrulamasında mekanistik risklerin azaltılmasını destekler. Migrasyon hızını ve yolak dinamiklerini nicelleştirerek, bileşiklerin nöronal devreler üzerindeki etkilerini değerlendirmek için öngörücü bir güvenilirlik sağlar. Bu yaklaşım, keşif biyolojisi ile nöroaktif maddelerin preklinik değerlendirmesi arasında bir köprü kurar.
Göçü fonksiyonel bir son nokta olarak ölçme kapasitesiyle desteklenen bu yöntemi, hipotez testinden öncü bileşik tanımlamaya kadar olan keşif sürekliliği içindeki konumuna yerleştirir.