Name: Yenidoğan Kemirgenler İzole Beyin Sapı-spinal Kordon Müstahzarlar Elektrofizyoloji Sinir Solunum Ağı Çıktı Kayıt verir (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 28 s
Description: Öğrenin, izole beyin sapı-spinal kord müstahzarlarında elektrofizyolojik kayıt yöntemiyle yenidoğan kemirgenlerde solunum ritmini nasıl inceleyebilirsiniz. Bu teknik farmakolojik araştırmalar için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, Kanada Sağlık Araştırmaları Enstitüleri MOP 130258 ve Star Çocuk Sağlığı Araştırmaları Vakfı'na, Molly Towell Vakfı'na araştırma tesisinin sağlanması ve mali destek için içtenlikle teşekkür eder. Yazarlar ayrıca el yazması redaksiyonu ve tavsiyesi için Dr. Kinkead Richard'a içtenlikle teşekkür eder.

Bu yöntem, Laval Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi (protokol # 2012-170) tarafından izin verilen hayvan deneklerin kullanımını gerekli. 1. Kurulum ve Hazırlık <ol><li> Çözümler <ol><li> Aşağıdaki tarifleri 7,17 göre aCSF stok çözümleri hazırlayın. Konsantrasyon varyasyonları ile diğer yemek tarifleri literatürde mevcuttur. En fazla bir ay süreyle 4 ° C&#39;de saklayın stok çözeltileri. <ol><li> Tuz çözüm: NaCl 75,39 g (129 mM nihai) ekleyin; KCl 2,5 g (3,35 mM nihai); NaH2PO4, 0.81 g (0.58 mM nihai); MgCl2 2.33 g (1.15 mM nihai); CaCl2 1.85 g (1.26 mM). Daha sonra damıtılmış su ile 1 L damıtılmış su içinde dolgu 800 ml içinde çözülür. </li><li> Bikarbonat çözeltisi: NaHCO 3 (21 mM nihai) 17.65 g ekleyin. Daha sonra damıtılmış su ile 1 L damıtılmış su doldurun 900 ml içinde çözülür. Bikarbonat konsantrasyonunun varyasyonlar pH varyasyonları ile sonuçlanacaktır. </li><li> Glikoz çözüm: 54.06 ekleyinglikoz g (30 mM nihai). Daha sonra damıtılmış su ile 500 ml&#39;ye kadar damıtılmış su doldurun 400 ml içinde çözülür. </li></ol></li><li> Tuz çözeltisi 100 ml, bikarbonat çözeltisi, 100 ml damıtılmış su, 1 L glikoz solüsyonu 50 ml seyreltilerek aCSF hazırlayın. Kullanılana kadar 4 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Isınma ve kopana kadar bir cam tüp gererek cam elektrot hazırlayın. Kullanmadan önce ucu aşağı Kum. Elektrot sürece temiz kalır gibi birçok zaman yeniden kullanılabilir. </li></ol></li><li> Deneysel kurulum Not: kurulum detayları Şekil 2&#39;de sunulmuştur. <ol><li> Ortalaması alınmış, veri toplama sistemi, sıcaklık kontrolörü ve pompayı hareketli, amplifikatörü açın. Ve ham sinyal (2.5 kHz) dijital dönüşüm analog örnekleme oranını, sinyal amplifikasyon (= 10,000 kazanç), filtrasyon (yüksek eşik, 5 kHz düşük eşik, 10 Hz) kontrol edin. </li><li> ACSF ve karbojen (% 95 O 2 ile kabarcık onu bir şişe doldurun </sub&gt;% 5 CO2). / Dakika 4 ml&#39;de kayıt odasına (hacim 5 mL) &#39;de bir bubbled- ve ısıtılmış aCSF akış neden. ° 26 de kayıt bölümü içinde sıcaklığı (± 1) tutun. pH, bu standart koşullarda 7,4 olmalıdır. </li><li> Diseksiyon odasının yakınında, bir 50 ml şırınga içinde, oda sıcaklığında ve karbojen-kabarmış aCSF 50 ml tutun. </li><li> Bilgisayarı açın ve kayıt yazılımı başlatın. </li></ol></li></ol> 2. Diseksiyon <ol><li> Tartılır ve görsel hayvanın cinsiyeti belirlemek (kadın kısa ano-genital mesafe varken erkek, uzun bir ano-genital mesafe var; kadın genital pembe iken genital genellikle koyu erkeklerin). </li><li> Aşağıdaki seçeneklerden birine göre yeni doğmuş kemirgenler anestezisi: cryoanesthesia (tam 4 buz içinde hayvan daldırın - 5 dakika 18) (4 ml / kg equitensine), enjeksiyon, uçucu anestezikler (izofluran 20 veya eter 21) 19 ya da inhalasyon. Confirm Bir pençe geri çekme refleksinin yokluğu ile anestezi yeterli bir uçak. </li><li> Aşağı bankta hayvan, ventral yüzü koyun. Bölüm (deri ve kafatası yoluyla görülebilir) Bregma düzeyinde bir neşter ile koronal başın rostral parçası. Hayvan anestezi hemen sonra bu adımı gerçekleştirin. </li><li> Bölüm vücut koronal anterior üyeleri altında bir neşter ile. </li><li> Cerrahi ve ince makas ve pense ile cilt, kaslar, yağ doku ve organ çıkarın. Kemikler bu yaşta yumuşak olduklarından, sinir sistemine zarar değil dikkatli olun. Bankta bu adımı gerçekleştirin. </li><li> Diseksiyon odasında hazırlık yerleştirin. Preparasyonunu oksijen şırınga saklanan aCSF kullanın. Kaydın sonuna Bu açıdan bakıldığında, bir mikroskop kullanılır. </li><li> Hazırlık dorsal yüzünde, cerrahi ve ince makas ve pense ile orta eksen boyunca kaudal kısmına rostral gelen kafatası ve vertebralar kesti. Kesim kafatası açınve sırayla omurganın sinir dokusunun ortaya çıkarmak. Preparasyonunu oksijen olması enjektördeki strored aCSF kullanın. </li><li> Pense ile Araknoid membran, sinir dokusunun yüzeyini örten ince bir doku çıkarın. Sinir dokusunun karşı pia mater ve kan damarlarını korur. Preparasyonunu oksijen şırınga saklanan aCSF kullanın. </li><li> Dorsal ile hazırlık yüzü aşağı gelecek şekilde ve dikkatle yerine hazırlık tutarken makasla sinirleri ve bağ dokusu kesilerek beyin sapı ve omurilik aşağı getirmek yerleştirin. Bir dorsal yaklaşım da mümkündür. Mümkün olduğunca uzun kökleri ve sinirleri tutun. Beyin sapı ve omurilik izole etmek için kemikleri çıkarın. Preparasyonunu oksijen şırınga saklanan aCSF kullanın. </li><li> Beyincik çıkarın ve neşter ile kesit ile rostral yapıları kalan. Preparasyonunu oksijen iğne saklanan aCSF kullanın. </li><li> İsteğe bağlı olarak experimen bağlı olaraktal tasarım, alt serebellar arterin 22 koronal kesit ön tarafından neşterle pons kaldırın. Bütün pons tutarak sıçanlarda ritmi yavaşlatmak ve tam farelerde bunu inhibe unutmayın. Pons sadece kaudal bölümünü içerir hazırlıklar C4 kökünde istikrarlı bir frekans ile solunum benzeri aktivite gösterirler. </li></ol> 3. Kayıt <ol><li> Kayıt odası, ventral yüzü yukarı hazırlık yerleştirin. Omurilik ve beyin sapında rostral-çoğunlukla en alt kısmında yer pimleri ile hazırlık sabitleyin. </li><li> Kısmen aCSF ile elektrot doldurmak için, şırınga pistonu çekerek: - (225 mikron 150 cam ucu çapı) olan iğne ile elektrot bağlanan bir şırınga kullanarak, elektrot bir depresyon neden olur. </li><li> Bir mikromanipülatör kullanarak, dikkatle dördüncü ventral köklerin birine yakın elektrot yerleştirin. Diğer ventral kökleri de solunum benzeri aktivite (e sunabilir.g., XII kranial sinir, C1 ventral kök). </li><li> Yavaşça sinir kökçük aspire için pistonu çekerek şırıngayla elektrot tankında bir depresyon neden olur. Sonra dikkatlice omurilik karşı uygulamak için elektrot taşıyın. Not: İdeal olarak ince kök boyutu elektrot açıklığının boyutu ile eşleşen ve böylece elektrot iç ve dış bölümler arasında bir sızdırmazlık sağlar. Diferansiyel amplifikatör genellikle bu tür kayıtlar için kullanılan bu yana, elektrodun iç ve kayıt odasının arasında herhangi bir açıklık sinyalinin kalitesini düşürür ve zor arka plan gürültüsünü ortadan kaldırmak için yapar. </li><li> Kayda başlayın. </li><li> Normoksik koşullar altında hazırlanması tarafından üretilen ritmi kaydedin (örneğin, aCSF karbojen ile fokurdatıldı:% 95 O2 ve% 5 CO2), en az 20 dakika Preparat başlangıç ​​parametrelerini belirlemek için. </li><li> Için karbojen-kabarmış aCSF gelen perfüzyon Anahtarıuyaran CSF (yani,% 95 N2 ve% 5 hipoksi uyarıcı CO2 ile kabarcıklandırılmış) 15 dakika karıştırıldı. Deneysel protokol bağlı pozlama süresini değiştirin. Kayıt ve hayvan veri sayfasında pozlama süresini kaydedin. ACSF şişe ve tüp dışına gaz difüzyonu önlemek için mümkün olduğunca odasına arasındaki paslanmaz çelik borular kullanın. </li><li> Kurtarma kayıt için en az 15 dakika süreyle standart karbojen-kabarmış aCSF geri perfüzyon geçin. Kayıt ve hayvan veri sayfasında bu kaydedin. </li><li> Kaydı bitirmek. </li></ol> 4. İstatistiksel Analiz <ol><li> Entegre sinyal, (patlamaları / dak olarak ifade edilmiştir) Dakikada patlamaları sayısı sıklığı, başlangıç ​​ve (mV) olarak ifade patlama tepe arasındaki fark olarak genlik gelen süresi olarak patlama süresini hesaplamak (s) olarak ifade patlama sonuna başlangıcı, cur altındaki alan olarak patlama alanı(mV cinsinden ifade edilmiştir · s), entegre bir sinyal (Şekil 3) kaymasının ettik. </li><li> Her durum için kayıtların son 5 dakika ortalama olarak frekans, genlik, patlama süresi ve patlama alanı normoksik altında (başlangıç), hipoksik (uyaran) ve post-hipoksik (post-uyaran) kurtarma koşullarını hesaplayın. Kayıt odasına perfüzyon ve aCSF homojenizasyon anahtarlama arasında bir gecikme olduğundan, her durumda ilk kısmını analiz etmeyin. </li><li> İlgili kayıt için temel değerlerinin bir yüzdesi olarak daha sonra uyaran (örneğin, hipoksi) ve post-uyaran (örneğin, post-hipoksik) kurtarma değerleri ifade eder. SD ± aracı olarak sonuçları Express </li></ol>

<ol><li>Feldman, J. L., Del Negro,, A, C., Gray, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+the+rhythm+of+breathing%3A+so+near%2C+yet+so+far%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Understanding the rhythm of breathing: so near, yet so far.</a> Annu Rev Physiol. 75, 423-452 (2013).</li>
<li>Taylor, A. C., Kollros, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+in+the+normal+development+of+Rana+pipiens+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec+%28Hoboken%29%22%5BJournal%5D)">Stages in the normal development of Rana pipiens larvae.</a> Anat Rec (Hoboken). 94, 7-13 (1946).</li>
<li>Takeda, R., Remmers, J. E., Baker, J. P., Madden, K. P., Farber, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postsynaptic+potentials+of+bulbar+respiratory+neurons+of+the+turtle%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol%22%5BJournal%5D)">Postsynaptic potentials of bulbar respiratory neurons of the turtle.</a> Respir Physiol. 64, 149-160 (1986).</li>
<li>Bouverot, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+breathing+in+birds+compared+with+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Control of breathing in birds compared with mammals.</a> Physiol Rev. 58, 604-655 (1978).</li>
<li>Adrian, E. D., Buytendijk, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+changes+in+the+isolated+brain+stem+of+the+goldfish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Potential changes in the isolated brain stem of the goldfish.</a> J Physiol. 71, 121-135 (1931).</li>
<li>Suzue, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+rhythm+generation+in+the+in+vitro+brain+stem-spinal+cord+preparation+of+the+neonatal+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat.</a> J Physiol. 354, 173-183 (1984).</li>
<li>Fournier, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gestational+stress+promotes+pathological+apneas+and+sex-specific+disruption+of+respiratory+control+development+in+newborn+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Gestational stress promotes pathological apneas and sex-specific disruption of respiratory control development in newborn rat.</a> J Neurosci. 33, 563-573 (2013).</li>
<li>Caravagna, C., Kinkead, R., Soliz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-natal+hypoxic+activity+of+the+central+respiratory+command+is+improved+in+transgenic+mice+overexpressing+Epo+in+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Post-natal hypoxic activity of the central respiratory command is improved in transgenic mice overexpressing Epo in the brain.</a> Respir Physiol Neurobiol. 200, 64-71 (2014).</li>
<li>Onimaru, H., Arata, A., Homma, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+mechanisms+of+respiratory+rhythm+generation%3A+an+approach+using+in+vitro+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Neuronal mechanisms of respiratory rhythm generation: an approach using in vitro preparation.</a> Jpn J Physiol. 47, 385-403 (1997).</li>
<li>Onimaru, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+of+the+respiratory+center+using+isolated+brainstem-spinal+cord+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Studies of the respiratory center using isolated brainstem-spinal cord preparations.</a> Neurosci Res. 21, 183-190 (1995).</li>
<li>Ballanyi, K., Onimaru, H., Homma, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+network+function+in+the+isolated+brainstem-spinal+cord+of+newborn+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Respiratory network function in the isolated brainstem-spinal cord of newborn rats.</a> Prog Neurobiol. 59, 583-634 (1999).</li>
<li>Viemari, J. C., Burnet, H., Bevengut, M., Hilaire, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perinatal+maturation+of+the+mouse+respiratory+rhythm-generator%3A+in+vivo+and+in+vitro+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Perinatal maturation of the mouse respiratory rhythm-generator: in vivo and in vitro studies.</a> Eur J Neurosci. 17, 1233-1244 (2003).</li>
<li>Rybak, I. A., Abdala, A. P., Markin, S. N., Paton, J. F., Smith, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+organization+and+state-dependent+mechanisms+for+respiratory+rhythm+and+pattern+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Spatial organization and state-dependent mechanisms for respiratory rhythm and pattern generation.</a> Prog Brain Res. , 165-201 (2007).</li>
<li>Hilaire, G., Viemari, J. C., Coulon, P., Simonneau, M., Bevengut, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+the+respiratory+rhythm+generator+by+the+pontine+noradrenergic+A5+and+A6+groups+in+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Modulation of the respiratory rhythm generator by the pontine noradrenergic A5 and A6 groups in rodents.</a> Respir Physiol Neurobiol. 143, 187-197 (2004).</li>
<li>Okada, Y., Kawai, A., Muckenhoff, K., Scheid, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+the+pons+in+hypoxic+respiratory+depression+in+the+neonatal+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol%22%5BJournal%5D)">Role of the pons in hypoxic respiratory depression in the neonatal rat.</a> Respir Physiol. 111, 55-63 (1998).</li>
<li>Voituron, N., Frugiere, A., Gros, F., Macron, J. M., Bodineau, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diencephalic+and+mesencephalic+influences+on+ponto-medullary+respiratory+control+in+normoxic+and+hypoxic+conditions%3A+an+in+vitro+study+on+central+nervous+system+preparations+from+newborn+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Diencephalic and mesencephalic influences on ponto-medullary respiratory control in normoxic and hypoxic conditions: an in vitro study on central nervous system preparations from newborn rat.</a> Neuroscience. 132, 843-854 (2005).</li>
<li>Somjen, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ion+regulation+in+the+brain%3A+implications+for+pathophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscientist%22%5BJournal%5D)">Ion regulation in the brain: implications for pathophysiology.</a> Neuroscientist. 8, 254-267 (2002).</li>
<li>Danneman, P. J., Mandrell, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+five+agents%2Fmethods+for+anesthesia+of+neonatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Evaluation of five agents/methods for anesthesia of neonatal rats.</a> Lab Anim Sci. 47, 386-395 (1997).</li>
<li>Formenti, A., Zocchi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Error+signals+as+powerful+stimuli+for+the+operant+conditioning-like+process+of+the+fictive+respiratory+output+in+a+brainstem-spinal+cord+preparation+from+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Error signals as powerful stimuli for the operant conditioning-like process of the fictive respiratory output in a brainstem-spinal cord preparation from rats.</a> Behav Brain Res. 272, 8-15 (2014).</li>
<li>Bierman, A. M., Tankersley, C. G., Wilson, C. G., Chavez-Valdez, R., Gauda, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perinatal+hyperoxic+exposure+reconfigures+the+central+respiratory+network+contributing+to+intolerance+to+anoxia+in+newborn+rat+pups%5BTitle%5D)+AND+%22J+App+Physiol%22%5BJournal%5D)">Perinatal hyperoxic exposure reconfigures the central respiratory network contributing to intolerance to anoxia in newborn rat pups.</a> J App Physiol. 116, 47-53 (2014).</li>
<li>Umezawa, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orexin-B+antagonized+respiratory+depression+induced+by+sevoflurane%2C+propofol%2C+and+remifentanil+in+isolated+brainstem-spinal+cords+of+neonatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Orexin-B antagonized respiratory depression induced by sevoflurane, propofol, and remifentanil in isolated brainstem-spinal cords of neonatal rats.</a> Respir Physiol Neurobiol. 205, 61-65 (2015).</li>
<li>Ruangkittisakul, A., Secchia, L., Bornes, T. D., Palathinkal, D. M., Ballanyi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dependence+on+extracellular+Ca2%2B%2FK%2B+antagonism+of+inspiratory+centre+rhythms+in+slices+and+en+bloc+preparations+of+newborn+rat+brainstem%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Dependence on extracellular Ca2+/K+ antagonism of inspiratory centre rhythms in slices and en bloc preparations of newborn rat brainstem.</a> J Physiol. 584, 489-508 (2007).</li>
<li>Cayetanot, F., Bodineau, L., Frugiere, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-HT+acting+on+5-HT%281%2F2%29+receptors+does+not+participate+in+the+in+vitro+hypoxic+respiratory+depression%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">5-HT acting on 5-HT(1/2) receptors does not participate in the in vitro hypoxic respiratory depression.</a> Neurosci Res. 41, 71-78 (2001).</li>
<li>Onimaru, H., Homma, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+cell+recordings+from+respiratory+neurons+in+the+medulla+of+brainstem-spinal+cord+preparations+isolated+from+newborn+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Archiv+%3A+European+journal+of+physiology%22%5BJournal%5D)">Whole cell recordings from respiratory neurons in the medulla of brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats.</a> Pflugers Archiv : European journal of physiology. 420, 399-406 (1992).</li>
<li>Paton, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythmic+bursting+of+pre-+and+post-inspiratory+neurones+during+central+apnoea+in+mature+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rhythmic bursting of pre- and post-inspiratory neurones during central apnoea in mature mice.</a> J Physiol. 502 (Pt 3), 623-639 (1997).</li>
<li>Morin-Surun, M. P., Boudinot, E., Kato, F., Foutz, A. S., Denavit-Saubie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Involvement+of+NMDA+receptors+in+the+respiratory+phase+transition+is+different+in+the+adult+guinea+pig+in+vivo+and+in+the+isolated+brain+stem+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Involvement of NMDA receptors in the respiratory phase transition is different in the adult guinea pig in vivo and in the isolated brain stem preparation.</a> J Neurophysiol. 74, 770-778 (1995).</li>
<li>Otsuka, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+volatile+anesthetics+on+respiratory+activity+and+chemosensitivity+in+the+isolated+brainstem-spinal+cord+of+the+newborn+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Hokkaido+Igaku+Zasshi%22%5BJournal%5D)">Effects of volatile anesthetics on respiratory activity and chemosensitivity in the isolated brainstem-spinal cord of the newborn rat.</a> Hokkaido Igaku Zasshi. 73, 117-136 (1998).</li>
<li>Gestreau, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Task2+potassium+channels+set+central+respiratory+CO2+and+O2+sensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Task2 potassium channels set central respiratory CO2 and O2 sensitivity.</a> PNAS. 107, 2325-2330 (2010).</li>
<li>Caravagna, C., Soliz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PI3K+and+MEK+molecular+pathways+are+involved+in+the+erythropoietin-mediated+regulation+of+the+central+respiratory+command%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">PI3K and MEK molecular pathways are involved in the erythropoietin-mediated regulation of the central respiratory command.</a> Respir Physiol Neurobiol. 206C, 36-40 (2014).</li>
<li>Tree, K., Caravagna, C., Hilaire, G., Peyronnet, J., Cayetanot, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anandamide+centrally+depresses+the+respiratory+rhythm+generator+of+neonatal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Anandamide centrally depresses the respiratory rhythm generator of neonatal mice.</a> Neuroscience. 170, 1098-1109 (2010).</li>
<li>Arata, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+activity+of+the+neonatal+dorsolateral+pons+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Respiratory activity of the neonatal dorsolateral pons in vitro.</a> Respir Physiol Neurobiol. 168, 144-152 (2009).</li>
<li>Onimaru, H., Homma, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+functional+neuron+group+for+respiratory+rhythm+generation+in+the+ventral+medulla%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A novel functional neuron group for respiratory rhythm generation in the ventral medulla.</a> J Neurosci. 23, 1478-1486 (2003).</li>
<li>St-John, W. M., Paton, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizations+of+eupnea%2C+apneusis+and+gasping+in+a+perfused+rat+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterizations of eupnea, apneusis and gasping in a perfused rat preparation.</a> Respir Physiol. 123, 201-213 (2000).</li>
</ol>

Yazarların ifşa edecek herhangi bir rakip mali çıkarı veya çıkar çatışması yoktur.

Solunum aktivitesinin doğru miktar zor olabilir. Nitekim, nefes otomatik ve gönüllü hem de olabilecek bir fonksiyondur ve bu ortamda, vücudun ihtiyaçlarına duygusal durumu ve davranış göre modüle edilir. Bu tekniğin avantajı, solunum komutu üretmekten sorumlu nöral elemanların izolasyondur. Bu nedenle, beyin sapı-omurilik preparatları ve pletismografi elektrofizyolojik ölçümler sırasıyla in vitro ve in vivo olarak bütün nöronal solunum ağ çalışma tamamlayıcı tekniklerdir. Beyin sapı-omurilik hazırlık patch-kele...

Solunum dioksijen (O 2) alımı ve karbondioksit (CO 2) eliminasyon izin beyin tarafından kontrol edilen karmaşık ve hayati faaliyeti vardır. Merkezi solunum sürücü hem memelilerde 1 beyin sapı bulunan karmaşık bir ağ, amfibiler 2, sürüngenler 3, kuşlar ve balıklar 4 5 tarafından oluşturulur. Nefes çalışma in vivo olarak işlenebilir bile, hassas mekanik araştırmalar solunum kontrolü ağına doğrudan erişim gerektirir. Bu amaçla, Adrian ve Buytendijk beyin yüzeyi kayıt solungaç havalandırma 5 ile bağlantılı üretilmiş bir ritm yerleştirilmiş elektrodlar olan bir düşük akvaryum balığı hazırlama, geliştirdi. Bu yaklaşım sonradan doğan kemirgenler kullanılmak üzere 1984 yılında 6 Suzue tarafından uyarlandı. Bu hazırlık gelişi solunum nörobiyoloji önemli ilerlemelere yol açmıştır. Bu, nispeten basit olduğundan, bu teknik h sunulmaktadırere ritmik motor davranışlar ve yenidoğan kemirgenlerde kökenleri temel araştırmaların geniş bir mükellef olduğunu. Bu yöntemin genel amacı inspiratuar aktivite nöral korelasyonu kaydetmek için, bir solunum benzeri ritim solunum ağı tarafından üretilen kurgusal nefes çağırdı. Bu yöntem, hem de vahşi tip 7 ve transjenik 8 hayvan solunum varyasyonlar ve farmakoloji inspiratuar yanıtları hedef araştırma amaçları geniş bir aralığında kullanılabilmektedir. Kaydedilen sinyalin fizyolojik alaka ilgili deneyler duyusal aferentlerde olmadan, düşük bir sıcaklıkta gerçekleştirilir ve aCSF içinde glikoz ve O 2 konsantrasyonları yüksek olduğu koşullarda, sorular gündeme getirilmiştir göz önüne alındığında. In vivo ve in vitro koşullarda arasında belirgin farklılıklar olmakla birlikte (örn., Inspiratuar patlamaların sıklığı) gerçeği varlığı kalırSolunum ağının 6 temel unsurları mümkün hayati homeostatik işlevi 9,10 ilişkili sağlam bir ritim eğitimi yapmak. Geliştirilmesi ve bu tekniğin kullanılması ardındaki mantık, özellikle yenidoğanlarda, in vivo pek erişilebilir solunum şebekenin beyin sapı elemanları, doğrudan erişim kolaylaştırmaktır. Beyin sapı sıkı kontrol koşulları altında yerleştirilir: kaydedilen ritim akciğerlerde veya karotid organları periferik afferent girdiler modüle değil, çalışma merkezi solunum sürücünün kendisini 11 odaklanmasını sağlar. Bu nedenle, bu erişim uyaranlara uygulanır ve çıkış sinyalini kaydetmek için kullanılır. Kayıtları, pletismografi aksine, solunum ritminde vücut boyunca tüm bileşenleri ile modüle (örn., Akciğer şişliği, periferal chemosensors), zor hassas uyaranlara uygulamak adrestir. Bir Inewborn sıçan, protokol yapay beyin-omurilik sıvısı (aCSF) muhafaza izole bir beyin sapında dördüncü ventral kök sinyali ve bir kesik omuriliği, kayıt oluşmaktadır. Beyin-omurilik preparasyonlar tarafından oluşturulan ritim inspiratuar sinyali 9 bağlanmış, tek tek ağır patlamaları oluşmaktadır. 7 - İzole beyin sapı-omurilik hazırlıkları kolayca 4 (P4 P0) post-natal 0. günden sıçanlarda kaydedilebilen vardır. Bu yaklaşım, genellikle, solunum ağın hipoksik yanıtı ve aynı zamanda hiperkapni, asidoz ve ilaçlara yanıtını değerlendirmek için kullanılır. Akut hipoksi protokol sunulmuştur. Bu uyarım aCSF içinde O 2 çekilmesi ile elde edilir; Bu yaklaşım genellikle hipoksiktir hoşgörü ve yanıt değerlendirmek için kullanılır. Protokol hipoksi maruziyeti sonunda (Şekil 1) 12 kadar ilk dakikadan itibaren bir ritim depresyon neden olur. Bu depresyon tersine çevrilirPost-hipoksik iyileşme 12&#39;ye sırasında. Deneysel tasarım ile ilgili, beyin sapı rostral kısmında bulunan pons, ritim jeneratörü 8 üzerinde inhibitör etkiye sahip olduğunu fark etmek önemlidir. Böylece, tam beyin sapı ve rostral omurilik hazırlıklar daha düşük bir ritim gösterir. Kayıt için izole numunede pons dahil edilmesi Deney 13 hedefine göre belirlenir; soğanilik ağdaki pons etkisi çalışma sonuçlarını 14 karşılaştırmak pons olan ve olmayan kayıtları gerektirecektir. Ayrıca, bu tekniğin avantajlarından biri, mezensefalik ve / veya diensefalik bölgeleri 15,16 dahil hazırlık rostral bir kısmının etrafında uzanan mümkün ponto-medüller solunum ağda bu bölgelerin etkisini değerlendirmek için yapma imkanı vardır.

<table><tbody><tr><td>Sylgard</td><td>Sigma Aldrich</td><td>761036-5EA</td><td>Kaput altında kullanım</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Bioshop</td><td>SOD002</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Bioshop</td><td>POC888</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Bioshop</td><td>CCL444</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Bioshop</td><td>MAG510</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Bioshop</td><td>SOB999</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Bioshop</td><td>SPM306</td><td></td></tr><tr><td>D-glikoz</td><td>Bioshop</td><td>GLU501</td><td></td></tr><tr><td>Karbojen</td><td>Linde</td><td>343-02-0006&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Sıcaklık Kontrol Cihazı</td><td>Warner Instruments, Hamden, CT, ABD</td><td>TC-324B</td><td></td></tr><tr><td>Emme elektrodu</td><td>Sistemleri, Everett, WA, ABD</td><td>modeli 573000</td><td></td></tr><tr><td>Diferansiyel AC amplifikatörü</td><td>Sistemleri, Everett, WA, ABD</td><td>modeli 1700</td><td></td></tr><tr><td>Hareketli ortalama</td><td>CWE, Ardmore, PA, ABD</td><td>modeli MA-821</td><td></td></tr><tr><td>Veri toplama sistemi</td><td>Dataq Instruments, Akron, OH, ABD</td><td>modeli DI-720</td><td></td></tr><tr><td>LabChart yazılımı</td><td>ADInstruments, Colorado Springs, CO, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Prizma yazılımı</td><td>Graphpad, La Jolla, CA, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon odası</td><td>Plastik kutu (örneğin petri kutusu) yapacak</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kayıt odası</td><td>Ev yapımı</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Base</td><td>Kanetec, Bensenville, IL, ABD</td><td>MB</td><td></td></tr><tr><td>Mikromanipülatör</td><td>Dünya Hassas Alet A.Ş., Sarasota, FL, ABD</td><td>UÇURTMA-R</td><td></td></tr><tr><td>Üssü</td><td>Kanetec, Bensenville, IL, ABD</td><td>MB</td><td></td></tr><tr><td>Peristaltik pompa</td><td>Gilson, Middleton, WI, ABD</td><td>MINIPULS 3</td><td></td></tr><tr><td>Faraday Kafesi</td><td>Ev yapımı</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bilgisayar</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

yenidoğan kemirgenler İzole beyin sapı-spinal kordon müstahzarlar elektrofizyoloji sinir solunum ağı Çıktı kayıt verir

Electrophysiology on Isolated Brainstem-spinal Cord Preparations from Newborn Rodents Allows Neural Respiratory Network Output Recording

Merkezi solunum dürtüsünün beyin sapında yer aldığı iyi bilinmesine rağmen, temel işlevinin, gelişiminin ve uyaranlara verdiği yanıtın çeşitli yönleri tam olarak anlaşılmayı beklemektedir. Tüm hayvanda beyin sapına erişim zorluğunun üstesinden gelmek için, beyin sapının ve omuriliğin bir kısmının izolasyonu gerçekleştirilir. Bu hazırlık, gazların, konsantrasyonların ve sıcaklığın kontrol edildiği ve izlendiği yapay beyin-omurilik sıvısında tutulur. Solunum ağından gelen çıkış sinyali, dördüncü ventral kök üzerine yerleştirilen bir emme elektrodu ile kaydedilir. Bu şekilde, uyaranlar doğrudan beyin sapına uygulanabilir ve etki doğrudan kaydedilebilir. Kaydedilen sinyal, frenik sinir yoluyla diyaframa gönderilen inspiratuar sinyale bağlıdır ve patlamalar (dakikada yaklaşık 8 patlama) olarak tanımlanabilir. Bu patlamaların analizi (frekans, genlik, uzunluk ve eğrinin altındaki alan), solunum ağı üzerindeki uyaran etkisinin kesin karakterizasyonuna izin verir. Bu yöntemin ana sınırlaması, preparatın doğum sonrası erken aşamaların ötesinde uygulanabilirliğidir. Bu nedenle, bu yöntem, yenidoğan sıçanındaki periferik girdiler olmadan tüm ağın çalışmasına büyük ölçüde odaklanmaktadır.

Girişte belirtildiği gibi, bu tekniğin en önemli avantajlarından biri beyin sapı doğrudan erişim çeşitli uyaranlara uygulamaktır. Bir örnek olarak, hipoksi burada uygulandı. Şekil 1. AB hem normoksik ve hipoksik koşullarda, bir tam protokolü kayıt gösterir. Şekil 1.CE yani normoksik koşullar (kaydedilen ritmi görüntüler aCSF% 95 O2 ve% 5 ile kabarcıklandırılmış 26 ° C&#39;de CO2). Daha önce tam olarak bu hazırlama 11 de gösterildiği gibi, frekan...

Merkezi solunum dürtüsü beyin sapında bulunur. İzole edilmiş bir beyin sapı-omurilikten spontan solunum motor çıkışı, dördüncü ventral kök üzerine bir elektrot yerleştirilerek kaydedilir. Bu deneysel yaklaşım, farmakolojik araştırmalar veya solunum zorluklarının ve ritmik motor davranış üzerindeki genetik manipülasyonların değerlendirilmesi için değerlidir.

Yenidoğan Kemirgenler İzole Beyin Sapı-spinal Kordon Müstahzarlar Elektrofizyoloji Sinir Solunum Ağı Çıktı Kayıt verir

While it is well known that the central respiratory drive is located in the brainstem, several aspects of its basic function, development, and response to ...

Bu prosedürün genel amacı, farklı koşullar altında periferik girdi yokluğunda beyin sapı solunum çekirdekleri tarafından üretilen ritmi kaydetmektir. Bu işlem, öncelikle beyin sapının bulunduğu sıçan boyun ve üst sırt bölgesinin çıkarılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım ise sinir sisteminin izole edilmesi ve kraniyal ve vertebral kemiklerin uzaklaştırılmasıdır.Ardından, elektrodu dördüncü ventral köke yerleştirin ve kayda başlayın. Nihayetinde, izole beyin sapı ve omurilik üzerindeki elektrofizyolojik kayıtlar, çeşitli uyarılara yanıt olarak beyin sapı tarafından oluşturulan ritmi göstermek için kullanılır.Bu yöntem, molekülün ritimde rol oynayıp oynamadığı gibi solunum alanındaki temel bir sorunun yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Generation R kontrolleri, tıbbi uçların solunum çekirdeği üzerindeki etkileridir. Bu prosedüre, anestezi uygulanmış yeni doğan bir sıçanı bir kaba yerleştirerek başlayın.Başın rostral tarafını, bgma seviyesinden koronal olarak bir bistüri ile hemen çıkarın. Ardından, gövdesini ön üyelerin altından koronal olarak çıkarın. Sonra, kafatasının üzerindeki deri kaslarını ve yağ dokularını temizleyin.Ardından, viskoz maddeyi uzaklaştırın ve sinir sistemine zarar vermemeye dikkat edin. Daha sonra preparatı diseksiyon haznesine aktarın. Diseksiyon haznesini mikroskobun altına yerleştirin.Ardından, preparasyonun dorsal tarafını oksijenlendirmek için bir şırınga yardımıyla oksijenli A CSF uygulayın. Kafatasını orta eksen boyunca kesin ve sinir dokusunu açığa çıkarmak için açın. Aynı prosedürü omurlar için de uygulayın.Ardından, preparatı oksijenlendirmek için oksijenlenmiş A CSF uygulayın. Sonrasında, preparatı dorsal tarafı aşağı bakacak şekilde konumlandırın. Preparatı sabit tutarak sinirleri ve bağ dokusunu keserek beyni, gövdeyi ve omuriliği dikkatlice izole edin.Ardından serebellumu ve geri kalan rostral yapıları çıkarın. Hazırlığa oksijenlenmiş A CSF uygulayın. Bu prosedürde, sinir dokusunu ventral tarafı yukarı bakacak şekilde kayıt odasına yerleştirin. Omuriliğin en alt kısmından ve beyin sapının en rostral kısmından pinlerle sabitleyin.Ardından, sinir dokusunun yüzeyini örten ince bir doku olan araknoid membranı çıkarın. Pia materi ve sinir dokusunun kan damarlarını çıkarmamaya dikkat edin. Sonrasında, elektrodu A CSF ile doldurun.Bir mikro manipülatör kullanarak elektrodu dikkatlice dördüncü ventral kökün yakınına yerleştirin. Şırıngayı kullanarak sinir kökçüğünü nazikçe aspire edin. Ardından, sinir kökçüğü ile birlikte elektrodu spinal kordun üzerine yerleştirin.Ardından, normoksik koşullar altında sinir dokusu tarafından üretilen elektrofizyolojik aktiviteleri en az 20 dakika boyunca kaydedin. Preparasyonun bazal parametrelerini belirlemek için perfüzyon çözeltisini karbogen ile havalandırılmış A CSF'den hipoksi stimülasyon A CSF'sine geçirin ve 15 dakika boyunca kayıt yapın. Bundan sonra, perfüzyon çözeltisini tekrar standart karbogene geri döndürün.CSF'ye kabarcıklar gönderin ve gösterilen kaydı bitirmeden önce en az 15 dakika daha kayıt almaya devam edin. Burada, normoksik, hipoksik ve hipoksi sonrası toparlanma koşulları altındaki bir P dört sıçanın beyin sapı omurilik preparasyonunun C dört ventral kökünden kaydedilen solunumsal çıktılar yer almaktadır. Bu entegre sinyaldir ve bu da ham sinyaldir.Ve burada, gelişim sonrası her bir koşul için büyütülmüş kayıtlar ve tekil patlamalar yer almaktadır. Bu yöntem, solunum alanındaki araştırmacıların, yenidoğan solunum kontrolü ve üretimi ile ilgili nöronal grupları ve moleküler mekanizmaları keşfetmelerine olanak sağlar.

electrophysiology-on-isolated-brainstem-spinal-cord-preparations-from

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Elektrofizyolojik çalışmalar için yenidoğan fare omurilik izolasyonu bir gösteri.

Omurilik Elektrofizyoloji

Yenidoğan kemirgen omurilik elektrofizyolojik kayıtlar ölçmek için kullanılan ekstraselüler emme elektrot üretimi ve kullanımı bir...

Omurilik Elektrofizyoloji II: Ekstrasellüler Emiş Elektrot İmalatı

Bu video, yenidoğan kemirgenlerinden izole edilmiş beyin sapı-omurilik preparatlarının elektrofizyolojik kayıtlarını göstermektedir. Preparat bir kayıt odasına yerleştirilir ve beyin sapından gelen inspiratuar patlamalar, omurilikteki dördüncü ventral sinir kökü kullanılarak oksijenli ve oksijensiz koşullar altında kaydedilir.

Yenidoğan Bir Kemirgenden Beyin Sapı-Omurilik Preparatlarının Elektrofizyolojik Kayıtları

Bir cerrahi yöntem, yeni doğmuş sıçanlarda ventral kafatasını açığa çıkarmak için tarif edilmektedir. Bu yaklaşımı kullanarak bu anestezi yavruların beyin sapı akut elektrofizyoloji ve iki-foton mikroskopi deneylerini gerçekleştirmek için bir kraniotomi açmak mümkündür.

Yenidoğan Kemirgenlerin Ventral Kafatası kranyotomi olun Bir Yöntem

Bu prosedür bir izoelektrik beyin devlet sonuçlanan fizyolojik ilgili beyin durumlarında ve devam eden elektrik faaliyetlerinin tam kaldırılmasından sonra tek nöronların uzun ömürlü in vivo hücre içi kayıtları gerçekleştirir. hayvanın fizyolojik sabitleri dikkatle yapay komada durumuna geçiş sırasında izlenir.

Bir izoelektrik Beyin Devlet indüksiyon Nöronal Eksitabilite üzerinde Endojen Sinaptik Faaliyet etkisini araştırmak için<em&gt; İn Vivo</em

Biz genç farelerde omurilik eğik dilim nasıl hazırlanacağını göstermektedir. Bu preparat, ventral köklerin uyarılması için izin verir.

Ventral Kök Stimulation için eğik Omurilik Dilimleri hazırlanması

Burada, serbestçe hareket eden neonatal epileptik yavrulara elektroensefalografiyi (EEG) kaydetmek ve prosedürlerini, özelliklerini ve uygulamalarını tanımlamak için tasarlanmış yeni bir teknik sunuyoruz. Bu yöntem, EEG'yi 1 haftadan daha uzun süreyle kayıt ettirmenizi sağlar.

Yeni Bir Yöntemi Kullanarak Serbest Dolaşan Yenidoğan Sıçanlarında EEG Kaydı

Bu çalışmada, üretan anestezi altında hiperdirect yolaktan çoklu saha in vivo elektrofizyolojik kayıtların nasıl gerçekleştirileceği üzerine metodoloji sunulmuştur.

Akut<emIn vivo</em&gt; Anestezi Uygulanan Sıçanlarda Hiperdirect Pathway&#39;den Lokal Alan Potansiyellerinin Elektrofizyolojik Kayıtları ve Çoklu Ünite Aktivitesi

Bu çalışmada yerel alan potansiyelleri beyin, Elektrokardiyogram, electromyograms aynı anda kayıt ve sinyalleri serbestçe hareket sıçan nefes bir yöntem sağlar. Deneysel maliyetlerini azaltır ve veri analizi kolaylaştırır, bu tekniği, beyin ve periferik organlarda arasındaki etkileşimler anlayış katkıda bulunacaktır.

Kortikal yerel alan potansiyelleri, Elektrokardiyogram, Electromyogram ve ritim serbestçe hareket bir sıçan gelen nefes eşzamanlı kayıt

Bu iletişim kuralı hem görsel olarak beyin-omurilik hazırlık iletişim kurar ve beyin sapı enine dilimleri hazırlanması kapsamlı adım adım bir şekilde açıklar. Bu tekrarlanabilirlik artırmak ve beyin solunum bölgelerinden sinir çıkış kayıt için uygun, uzun ömürlü, ritmik aktif dilimleri elde etme olasılığını artırmak için tasarlanmıştır.

Ritmik aktif hazırlanması Vitro yenidoğan kemirgen beyin-omurilik ve ince dilim

Bu protokol, kafasına sabitlenmiş farelerin beyin sapından in vivo, yüksek yoğunluklu tek nöron kayıtları elde etmek için bir yöntemi açıklar. Bu yaklaşım, genel anestezi öncesinde ve sırasında Hızlı Göz Hareketi (REM) uykusu sırasında aktif olmayan bir beyin sapı bölgesi olan ventrolateral periakuaduktal grideki nöronların aksiyon potansiyel ateşlemesini ölçmek için kullanılır.

Kafası Sabit Farelerin Beyin Sapından Akut Tek Üniteli Çoklu Elektrot Kayıtları

Öğrenin, izole beyin sapı-spinal kord müstahzarlarında elektrofizyolojik kayıt yöntemiyle yenidoğan kemirgenlerde solunum ritmini nasıl inceleyebilirsiniz. Bu teknik farmakolojik araştırmalar için değerlidir.

Yenidoğan Kemirgenler İzole Beyin Sapı-spinal Kordon Müstahzarlar Elektrofizyoloji Sinir Solunum Ağı Çıktı Kayıt verir

Daha fazla video keşfet