November 19th, 2015
Merkezi solunum dürtüsü beyin sapında bulunur. İzole edilmiş bir beyin sapı-omurilikten spontan solunum motor çıkışı, dördüncü ventral kök üzerine bir elektrot yerleştirilerek kaydedilir. Bu deneysel yaklaşım, farmakolojik araştırmalar veya solunum zorluklarının ve ritmik motor davranış üzerindeki genetik manipülasyonların değerlendirilmesi için değerlidir.
Bu prosedürün genel amacı, farklı koşullarda periferik E'nin yokluğunda beyin sapı solunum çekirdeği tarafından üretilen ritmi kaydetmektir. Bu, önce beyin sapının bulunduğu sıçanın boynunun ve üst sırtının çıkarılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım, sinir sistemini izole etmek ve kafatası ve omur kemiklerini çıkarmaktır.
Ardından, elektrodu dördüncü ventral kökün üzerine yerleştirin ve kaydetmeye başlayın. Sonuçta, izole beyin sapı ve omurilik üzerindeki elektrofizyolojik kayıtlar. Beyin sapının çeşitli uyaranlara yanıt olarak oluşturduğu ritmi göstermek için hazırlıklar kullanılır.
Bu yöntem, molekülün ritimde rol oynayıp oynamadığı gibi solunum alanındaki önemli bir soruyu yanıtlamaya yardımcı olabilir. R kuşağı kontrolü, tıbbi ucun solunum çekirdeği üzerindeki etkisidir. Bu işleme anestezi uygulanmış yeni doğmuş bir fareyi bir tabağa koyarak başlayın.
Başın rostral tarafını hemen bgma seviyesinde, bir neşter ile koronal olarak çıkarın. Sonra vücudunu ön uzuvların altındaki Corona çıkarın. Ardından, kafatasının üzerindeki cilt kaslarını ve yağ dokularını çıkarın.
Bundan sonra, viskozu çıkarın ve sinir sistemine zarar vermemek için dikkatli olun. Ardından hazırlığı diseksiyon odasına aktarın. Diseksiyon odasını mikroskobun altına yerleştirin.
Daha sonra, preparatın dorsal tarafındaki preparatı oksijenlendirmek için bir şırınga kullanarak oksijenli A BOS'u uygulayın. Kafatasını orta eksen boyunca kesin ve sinir dokusunu ortaya çıkarmak için açın. Omurlar için de aynı işlemi yapın.
Daha sonra preparatı oksijenlendirmek için oksijenli A BOS'u uygulayın. Daha sonra, hazırlığı sırt tarafı aşağı bakacak şekilde konumlandırın. Preparasyonu yerinde tutarken sinirleri ve bağ dokusunu keserek beyni, gövdeyi ve omuriliği dikkatlice izole edin.
Sonra beyincik ve kalan rostral yapıları çıkarın. Oksijenli A BOS'u preparasyona uygulayın Bu prosedürde, sinir dokusunu ventral tarafı yukarı bakacak şekilde kayıt odasına yerleştirin. Omuriliğin en alt kısmındaki ve beyin sapının rostral kısmındaki pimlerle sabitleyin.
Bundan sonra, sinir dokusunun yüzeyini kaplayan ince bir doku olan araknoid zarı çıkarın. Sinir dokusunun p materyalini ve kan damarlarını çıkarmamaya dikkat edin. Ardından, elektrodu A BOS ile doldurun.
Bir mikro manipülatör kullanarak, elektrodu dikkatlice dördüncü ventral köke yakın bir yere yerleştirin. Şırıngayı kullanarak sinir kökünü nazikçe aspire edin. Daha sonra sinir kökü ile elektrodu omuriliğe karşı yerleştirin.
Daha sonra, normoksik koşullar altında sinir dokusu tarafından üretilen elektrofizyolojik aktiviteleri en az 20 dakika boyunca kaydedin. Preparatın temel parametrelerini belirlemek için, perfüzyon çözeltisini karbojenden, kabarcıklı A BOS'tan hipoksi uyaranı A CS'ye geçirin ve 15 dakika boyunca kaydedin. Bundan sonra, bolluk çözeltisini tekrar standart karbojene geçirin.
Kabarcıklı Bir CSF ve gösterilen kaydı bitirmeden önce en az 15 dakika daha kaydedin. İşte normoksik, hipoksik ve hipoksik sonrası iyileşme koşulları altında bir P four sıçanından beyin sapı omurilik hazırlığının C dört ventral kökünden kaydedilen solunum çıktıları. Bu entegre sinyaldir ve bu ham sinyaldir.
Ve işte büyütülmüş kayıtlar ve her koşul için tekli seri çekimler Geliştirmeden sonra. Bu yöntem, solunum alanındaki araştırmacıların yenidoğan solunum kontrolü ve oluşumunda rol oynayan nöronal grupları ve moleküler mekanizmayı keşfetmesinin yolunu açmaktadır.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Bu makale, izole edilmiş beyin sapı-omurilik preparasyonundan spontan solunum motor çıkışını kaydetmek için bir yöntem tanımlar. Teknik, solunum zorluklarının değerlendirilmesine ve farmakolojik araştırmalara olanak tanır.
This method enables direct interrogation of the central respiratory network in a controlled, reduced preparation, supporting mechanistic de-risking of respiratory targets in early discovery. By isolating brainstem-spinal cord circuits from newborn rodents, it provides a disease-relevant system for evaluating stimulus-response relationships without peripheral confounds. The approach enhances predictive confidence in target validation by linking molecular perturbations to quantifiable respiratory network output.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead identification, providing mechanistic insights that inform preclinical progression.