Name: Şekilde, mikro Tekniği Sıçan mezenter mikrodamar geçirgenliği Yönetmelik Araştırma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 48 s
Description: Öğrenin sıçan mezenterindeki mikrodamarların hidrolik iletkenliğini ölçmek için modifiye Landis tekniğini. Bu yöntem, mikrovasküler geçirgenlik ve transvasküler sıvı değişimini kontrollü koşullarda araştırmak için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Sağlık yardımları HL44485 ve HL28607 Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmiştir.

Etik Beyanı: Tüm prosedürler gözden geçirilecek ve Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından kabul edildi. Mikropipetler, kısıtlayıcılara ve Bloke 1. Ön Fabrikasyon <ol><li> Çekildiğinde, tüpün uzatılmış kısmı yaklaşık 1 cm uzunluğunda ve iki yarısı biraz simetrik olmasıdır, böylece düzeltilmiş bir elektronik çektirmenin kullanarak yarısında birkaç temiz borosilikat cam kapiller tüpler çekin. . Konik Şekil 1&#39;de boyutları ile uyumlu olduğundan emin olun mikropipetler, kısıtlayıcılara ve blokerler için iki yarısı kullanın. <ol><li> Konik suyla yıkanıyor 0,5 mikron zımpara kağıdı ile hava tahrikli taşlama 30 ile mikropipetler. Yatay yaklaşık 30 derece olacak şekilde mikropipet tutucu açısını ayarlayın. </li><li> İyice yıkayın ve bahşiş yoluyla ve şaft temizlemek aseton çekmek için emme kullanarak mikropipetler kurutun. (Mikropipetler inceleyinBir timsah klip mikropipet tutucu ve bir mercek dürbün ağı ile donatılmış 4 × 40 × hedefleri ile küçük bir dik mikroskop kullanılarak Şekil 1A). </li><li> Kimin uzunluk / genişlik oranı 3.1 ila 3.5 ve mezenterinde sert kollajen lifleri nüfuz yardımcı olan bir keskin konik noktası olan bir eğim ile yaklaşık 50 mikron uzunluğunda ucu açılması ile seçin mikropipetler. </li><li> Tozsuz bir kutuda hafifçe farklı boyutlarda 15-20 mikropipetler saklayın. </li></ol></li><li> Adım 1.1 hazırlanan çekti kılcal tüpler) kullanarak kısıtlayıcılara olun. Kör bir uç (Şekil 1B) oluşturulması için bir microflame yakın kısa çekilmiş bir cam kılcal tüp tutun. Tozsuz bir kutuya birkaç saklayın. </li><li> Adım 1.1 hazırlanan çekti kılcal tüpler) kullanarak microoccluders olun. Eğmek hafifçe microflame altında çekti kılcal tüp tutun ve (bir boru adaptörü, örneğin kullanarak., 23G) ince uçlu (ucundan yaklaşık 4 mm) miline 120 dereceye yakın bir açı yapmak ( <strong&gt; Şekil 1C). Marka ve çeşitli saklayın. </li></ol> 2. Hayvan Hazırlama ve Cerrahisi <ol><li> Pentobarbital sodyumla erkek (350-450 g) ya da dişi Sprague-Dawley sıçanları (200-300 g) anestezisi (80-100 mg / kg, Sigma-Aldrich, P3761) deri altı enjeksiyon yoluyla; intraperitoneal kullanarak değil mezenterin korur. </li><li> Cerrahi prosedürler ve deney protokolleri boyunca, gerektiği gibi ilave enjeksiyonlar (30 mg / kg) ile anesteziye devam ediniz. Ayak tutam veya kornea refleksi ile anestezi derinliği belirler. Deney prosedürünün tamamlanmasından sonra, pentobarbital dozda ya da anestezi altında, doymuş potasyum klorid intrakardiyak enjeksiyonu ile sıçan euthanize. </li></ol> 3. Akış Markers olarak kullanılmak üzere Çözümleri ve eritrositler hazırlayın <ol><li> Superfusate ve kontrol perfüzyon çözeltisi (tipik olarak memeli 10 mg içeren Ringer çözeltisi / ml yağ asidi için memeli Ringer çözeltisi hazırlayıniçermeyen sığır serum albumini, BSA). <ol><li> 0.2 mikron şırınga filtreler aracılığıyla filtre Perfüzat mikropipet ucu engelleyebilir minik parçacıkları çıkarmak için; küçük, temiz bir kap içine süzün. </li></ol></li><li> 0,05 ml heparin (1000 U / ml) ihtiva eden küçük bir şırınga, bir 20G iğne içine anestezi uygulanmış sıçan kuyruk damarından 0.2 ml kan alınarak eritrositleri hazırlayın ve yaklaşık 14 ml, memeli Ringer çözeltisi ihtiva eden bir çözelti, 15 ml bir santrifüj tüpüne transfer . <ol><li> Santrifüj yavaşça (7 dakika boyunca maksimum 200 × g) hakkında kırmızı hücrelerin paketi. Süpernatant çizin ve Ringer çözeltisi içinde kırmızı hücrelerin yeniden askıya. </li><li> Santrifüj ve çıkarılmasından sonra süpernatan üç kez daha sonra kullanılmak üzere, tüpün alt paketlenmiş kırmızı hücreleri bırakın. Bu işlem normal seviyelerde 31 daha az,% 0.1 son Perfüzatlar trombositleri azaltır unutmayın. </li></ol></li></ol> 4. Animal üzerine Doku YerleştirTepsi <ol><li> Kılıç şeklinde sürecine göbek altından anestezi sıçan karın Tıraş. Saç de doku dışarı superfusate çekmek için bir fitil teşkil etmeyecek şekilde traş alanı (sağ tarafına yerleştirilmiş sıçan) sağ tarafında etrafında uzanır emin olun. Bir ıslatılmış gazlı bezle veya mendille kesilmiş tüyleri temizleyin. <ol><li> Künt bir dişli forseps ile cildi tutun ve sağlam bir makas kullanarak deri yoluyla bir merkez-line kesi (2-3 cm uzunluğunda) yapmak. Para cezası Kullanma (iris) makas gut zarar görmesini önlemek için tırtıklı forseps ile karın duvarı kaldırarak, linea alba boyunca benzer bir kesi yapmak. </li><li> Hayvan tepside yan hayvan ile hafifçe Ringer solüsyonu ve künt dişli forseps batırılmış pamuk uçlu aplikatörler (ahşap sopa) kullanarak karın boşluğundan bağırsak çekin. Mezenter mezenter dokunmamak için özen mikroskop aracılığıyla (Pote görüntülemek için ayağı üzerinde bol dökümlü böylece iyi dokuda gut düzenleyinntially forseps veya pamuk ya da birlikte) mikrodamarlar zarar. Not: Hayvan tepsisi (Şekil 2A) Pleksiglas inşa ve optik berrak ayağı, (yaklaşık 3 mm derinliğinde) (örneğin cilalı bir kuvars yaklaşık 2 cm&#39;lik dia ve 5 mm yüksek.) Iyi bir ısınma pad bir doku gerektirir Hayvanın sıcaklığı muhafaza edecek şekilde ayarlanır. Ayağı kalınlığı hedefi çalışma mesafesi aşmamalıdır. </li></ol></li><li> Mezenter göz mercekleri ile görünür böylece mikroskop sahnede hayvan tepsisini yerleştirin. </li><li> Sürekli 35-37 ° C de muhafaza memeli Ringer solüsyonu ile mezenter superfuse yerçekimi beslemeli damla hattı yerleştirin. Yerinde gut tutun nemi korumak yardımcı ve yüzeyden fazla Ringer çözeltisi fitil gazlı bez kullanın. Akışını ayarlamak ve tutarlı bir superfusate kalınlığı korumak için atık aspire. </li><li> Olan hedef venüler mikrodamarlar belirlenmesiyakınsak akışı, gerçek kılcal uzak bir ya da iki şube aşağı dallanmamış kesimleri. Dallanmamış gemiyi bul (ideal, uzunluğu 600 ila 1,000 mikron) tempolu kan akımını ve damar duvarına yapışmasını beyaz hücrelerin serbest olması. </li><li> Mikroskop alanının merkezinde test mikrodamar yerleştirin ve seçilen kanulasyon yakın pozisyona koruyucularını taşıyın. </li></ol> 5. Yuvaya Mikropipet ve Dağı Dolgu <ol><li> Sadece kanüle önce, perfüzat kırmızı hücrelerin askıya. Temiz bir borosilikat test tüpünde 0.5 ml perfüzat için eritrosit 7 ul ekleyin. Not:% 1-3 miktarda hematokrite, kullanılabilir, fakat tutarlı hematokrit kırmızı hücrelerden salınan bir maddelerin tutarlı bir perfüzat konsantrasyonlarına neden olur. </li><li> Bir 23G tüp adaptörü ve PE 50 boru (5-15 cm uzunluğunda) ile 1 ml şırınga takın. Şırıngaya perfüzat / kırmızı hücre karışımı çizin. Karıştırın ve tüp tüm kabarcıklar sınırdışı şırınga ters çevirin veadaptörü. Ve deney başlamadan önce birkaç şırınga verimlilik artışı, uygun boru için tozsuz kutu veya plastik torba içinde saklayın. </li><li> O konik bölgeyi dayandığı kadar mikropipet büyük ucunu boru ilerleterek mikropipet doldurun. Mikropipet ucu doldurmak için şırınga pistonu hafif bir hızlı itme uygulayın. Not: Bir küçük akarsu veya damlacık tam dolum kanıtlamak için ucunda görünür olmalıdır. </li><li> Yavaşça pistonu iterek mikropipet milin geniş kısmını doldurmak için ise boru geri çekin. Dikkatlice mikropipet mili hafifçe vurarak geniş şaft küçük kabarcıklarını çıkarın. Not: benzer bir prosedür 32 resmedilmektedir. </li><li> Bir su manometre sürekli bir sıvı bağlantısı sağlayan bir yan portu ile bir pipet tutucu içine mikropipet yerleştirin. Emin olun mikropipet çok ince ilerlemesini kontrol etmek için kullanılan bir hidrolik sürücü takılı tutucu, hafif bir açıyla olduğunu (15-25 °)yatay mikropipet konik kenar gut veya tepsiyi isabet etmez ki. </li><li> Test kabına (Şekil 2) yakın uyum sağlamak için x, y ve z sürücüler vardır hareketli bir mikromanipülatör, hidrolik sürücü bağlama. </li><li> 40 cmH 2 mezenter üzerinde O&#39;ya manometre su sütunundaki sıvı yüksekliğini değiştirmek için bir şırınga ya da suda dolgulu kauçuk ampul kullanılarak mikropipet sıvıya uygulanan hidrostatik basıncı ayarlar. </li><li> Pipet doldurduktan sonra en kısa sürede mikrodamar cannulate; Bu yaklaşık 40 dakika sonra çok az kırmızı hücrelerin damar içine akacak, böylece kırmızı hücreler, pipet altına yerleşirler. </li></ol> 6. Microcannulation ve Mikrovasküler Basınç Ölçümü <ol><li> Mikroskop altında doldurulmuş mikropipet yerleştirmeden önce, yumuşak kavrama doku yeterli bir kuvvet uygulamak mikro damarın yakınındaki doku üzerine koruyucularını basın. BeraberlikMezenterik kollajen liflerde gerilmeler gemi ile aynı hizaya gelecek şekilde hafifçe mikrodamarlarda doğrultusunda doku germe, geri süzgeç. <ol><li> Gemi ile mikropipet hizalayın ve göz mercekleri ile görünüm içine indirin. Seçilen kanulasyon sadece üst ucu yerleştirin ve kısmen geminin içindeki akışını engeller, böylece doku üzerine indirin, ama tıkamaz. </li></ol></li><li> Hidrolik sürücüyü kullanarak damar lümenine yavaşça pipet sürerek gemiyi cannulate. Geminin alt tarafında aracılığıyla itmek için dikkatli olun. Not: mikropipet lümen girerken, Perfüzat hızla lümen dışında geminin kan yıkar ve perfüzat serbestçe aşağı damarlarda normal kan perfüzyon bazı displacing test mikrodamarlarda hayvanın dolaşım distalinde akar. </li><li> Belirtildiği gibi (kanda kadar manometre ayarlayarak perfüzyon basıncını düşürmekperfüze segmentine geri çekilir) hayvanın kırmızı hücreleri tarafından; Bu, kırmızı hücrelerin yavaşça damar lümeni salınım mikrodamar segmentinin uzak ucunda hidrostatik mikrodamar basıncı (P c) ölçen bir denge basıncı belirler. Bu denge basıncının üzerindeki tüm basınçlarında gemi perfüzyon koruyun. </li></ol> 7. Microocclusion ve Veri Toplanması <ol><li> İsteğe bağlı adım: ucu tekrarlanan mikro sırasında deneysel gemi koruyan doku ince ped birikir o ana kadar herhangi bir gemiden mezenterinde olmayan bir kullanım alanına doku bastırın, gemi engellemek için mikro-tıkayıcı kullanmadan önce tıkanıklıklar. </li><li> Mikroskop alanının alt kenarına yakın perfüze geminin üstünde engelleyici yerleştirin. </li><li> Video ve ses ile aşağıdaki kaydedilir. <ol><li> Sözlü blok sitenin konumu ve mercek retikül görüldüğü gibi düşük ekran kenarını kaydedin. </li><li> Ucu ilesadece mikro damarın üzerine yerleştirilen bloker, geminin akım tıkalı kadar yavaşça engelleyici düşürmek için mikromanipülatör ince z denetimini kullanın. Ses üzerine manometre basıncı (P c) unutmayın. 3-10 saniye tipik tıkanıklığı uygulayın ve daha sonra serbest perfüzyon geri, bırakın. , Zamana dayalı 5-10 mikron adımlarla (&gt; bir yerinde ilk bloktan sonra 5 dakika), tıkanıklığı sayısı (3-5) pipet doğru geminin yukarı blok siteyi taşı blok yerinde damar duvarı hasarı önlemek için . </li></ol></li></ol> Veri ve L p Ölçümü 8. Analizi (Su Geçirgenliği) <ol><li> Video oynatımı sırasında, bir sahne mikrometre ve görüntüleri bilinen pozisyonların bir görüntünün kullanımı ile tıkanıklığı sitesine işaretleyici kırmızı hücreden ilk mesafeyi (ℓ 0) belirler. Kaydedilen görüntülerin 3-10 sn boyunca çeşitli çerçevelerde konumundan işaretleyici hücrenin ilk hızı (dℓ / dt) belirleyin. CaydırmakMaden tıkanıklığı (Şekil 3) sırasında çekilen görüntülerden damar yarıçapı (r). </li><li> Hesapla J v / S (dℓ / dt) × (1 / ℓ 0) × (r / 2) Her tıkanıklığı için. Sürüş basıncı bölü (J v / S) olarak sabit basınçta L p hesaplayın (mikrovasküler basıncı - Etkili kolloid osmotik basınç, Tartışma bakın). </li></ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Gemi serbestçe perfüze iken transvasküler sıvı hareketi meydana rağmen L p hesaplamaları Detayları., Böyle bir değişim damar perfüzyon oranının% 0.01&#39;den az, genellikle, çünkü serbest perfüzyon sırasında ölçülecek kadar çok küçük. Perfüzyon geçici mikrodamar, transvasküler akışını kapatılmasıy durdurulur Ancak, (yani, filtrasyon) &#39;de gösterildiği kısaltır gibi işaretleyici kırmızı hücre ve tıkanma sitenin arasında sıvı sütun olarak lümeninde işaretleyici kırmızı hücrelerin hareketi ö...

Damar sisteminde sayılı Şekilde, mikro çapı genellikle 40 um den az bir kan damarının bir mikropipet vasıtasıyla bilinen bir bileşimin, yapay bir perfüzat akışını kontrol kuran gerektirir. Perfüze gemi normal doku ortamında kalır ve Kanülasyonu zaman hayvanın kanı yukarı ile perfüze. In situ sayılı Şekilde, mikro video görüntüleme veya florometrik bir dizi teknik ile bağlantılı olarak kullanıldığında bu akışları için itici güçler bilinmektedir ve vasküler duvarın geçirgenlik özellikleri olabilir koşullar altında mikro damarların duvarları arasında, su ve çözünmüş madde akımlarının ölçümü sağlar doğrudan değerlendirildi. Bundan başka, doku mikrodamar (perfüze ve superfusate), çevreleyen sıvı bileşimlerini kontrol ederek, mikrovasküler geçirgenliğin ve değişim düzenlenmesi e maruz bırakılmış olan mikrodamar duvarı oluşturan endotelial hücreler sağlayarak araştırılabilirXperimental koşullar zaman tam ölçülen süreler (saat sn) için (agonistler, modifiye perfüzyon koşulları, floresan göstergeler içi kompozisyon ve sinyalizasyon ölçmek için). Buna ek olarak, bariyer düzenleyen önemli hücresel molekül yapılarının ultrastrüktürel ya sitokimyasal değerlendirmeler geçirgenliği ile doğrudan ölçüldüğü aynı Mikro damarların içinde araştırılabilir. Yaklaşım ve böylece kültürlü endotel hücre mono tabakaları ve bozulmamış mikrodamarlar soruşturma endotel bariyer fonksiyonunu değiştirmek için hücresel ve moleküler mekanizmalar soruşturma arasında bir köprü oluşturmaktadır. Daha fazla değerlendirme 1-6 aşağıdaki bakın. Şekilde, mikro bir sınırlaması, sadece ince, saydam ve bir cam mikropipet ile kanülasyon mümkün kılmak için yeterli yapısal bütünlüğe sahip mikrovasküler yatak kullanılabilir olmasıdır. Erken araştırmalar mezenter ve ince deri pektoris m kurbağa mikrodamarlar kullanılır iken7,8 uscle, bugüne kadar memeli modellerinde en sık kullanılan hazırlama sıçan mezenter 9-15 olduğunu. Çoğu araştırmalar 1-4 saatlik sürelerde çalışılan damar geçirgenliği akut değişiklikler üzerinde duruldu, ama daha yeni araştırmalar bir başlangıç ​​perfüzyon 12,16 sonra bireysel damarlarda ölçümler 24-72 saat genişletilmiştir. Bu iletişimde açıklanan yöntemleri etkinleştirmeniz gerekir vasküler geçirgenlik yönetmelik 17 eğitim için daha genetiği değiştirilmiş fare modelleri kullanılabilir hale getirmek için söz yeni geliştirilen CRISPR teknolojisi, bu yeni ve önemli sıçan modellerinde mezenterin venüler mikrodamarlar uygulanacak. Yöntem perfüze gemiye yakın ve geminin bir perfüzyon mikropipet hizalamak için pozisyon microtools için kullanılan hayvan hazırlama ve en az üç mikromanipülatörler hem alacak kadar büyük bir özel inşa mikroskop aşaması ile donatılmış bir inverted mikroskop gerektirirlümen. Örneğin, bir xy mikroskop sahnede (yaklaşık 90 × 60 cm) için özel bir platform pas geçirmez kaplama ile 1 cm kalınlığında çelik levha imal edilebilir. Sahne, bir mühendislik dizin tablosunun veya yatay düzlemde hareket için Teflon sütunlar ya da Bilya üzerinde dik açılarda monte edilir ve desteklenen iki kırlangıç ​​kuyruğu slaytlar takılır. Tipik bir teçhizat (Şekil 2), vasküler düz tek damar kan akışını ve hematokrit, kan perfüze mikrodamarlar yerel oksijen teslimat, yönetmelik ölçmek için böyle olanlar gibi intravital mikrodolaşım deneyler bir dizi için kullanılan mikroskop ve micropositioning ekipmanları ile ortak çok şey var kas tonu, ve bütün dolaşıma enjekte floresan izleyiciler yerel mikrovasküler birikimi. 18-26 Tekniğin temel yönü mikrodamar duvarının belirlenmiş bir yüzey alanı (S) boyunca hacimsel akış (J v) ölçülmesidir. BaşarmakBu, burada açıklanan modifiye Landis tekniği ile basit bir ters mikroskop yeterlidir. Küçük bir video kamera ilave bir zaman baz ile, bir video monitöründe gösterildi ve bir bilgisayara bir dijital formda veya bir video kayıt cihazı üzerinde dijital veya analog bir sinyal olarak kaydedilebilirler, görüntü portu ve video sinyali üzerine monte edilir. Mikrodamar kanüle sonra kamera görülebilir mikro damarın kısmı kanülasyonu bozmadan bir birim olarak sahne ve manipülatörler taşıyarak değiştirilebilir. Transvasküler akımlarının ölçümü aynı zamanda, çözünmüş madde geçirgenliği, sitoplazmik kalsiyum ya da diğer hücresel mekanizmaları ve konfokal görüntüleme 6,12,13 floresan oranı izleme ölçümleri için kullanılan donanımları olarak uygun filtreler ile gelişmiş bir floresans mikroskobu kullanılarak daha ayrıntılı inceleme ile birleştirilebilir 27. Tüm Şekilde, mikro yaklaşımların önemli bir avantajı, aynı gemide tekrarlanan tedbirleri yapabilme yeteneği olduğunuGibi hidrostatik ve onkotik basınçları, ya da iltihabi durumların damar yanıtlarında kaynaklı değişim olarak itici güç kontrollü değişim altında. En yaygın tasarım, ikinci bir pipet ile, daha sonra bir taban çizgisi geçirgenliği durumunu tesis eden ilk bir kontrol perfüzat ve eritrosit süspansiyonu ile doldurulmuş bir mikropipet ile perfüze gemi ile aynı kap üzerinde ölçülen hidrolik iletkenliği (L p), bir çift karşılaştırmasıdır Test maddesi ile perfüzat ilave edildi. Birden kanülasyonlar kontrol pipet ile reperfüzyon sonra tekrar çevrimi ile mümkündür. Bu protokol, mikrodamar duvarı boyunca su akıları kayıt ve damar duvarının L p, sağlam boyunca su ve çözünen maddelerin ortak yolunun geçirgenliği yararlı bir kırılma indeksinin ölçülmesi için sıçan mezenter bir venüler kabın kanül ve Şekilde, mikro göstermektedir endotel bariyer. Prosedür modifiye Landis techniq adlandırılırue, çünkü 28 korunur bloke perfüzyona başlanmasından transvasküler sıvı alışverişi bir ölçüsü olarak, kırmızı hücrelerin göreceli hareketlerini kullanarak orijinal Landis prensibi ancak deneysel koşullar aralığı (örneğin, mikro-damar duvarı boyunca hidrostatik albumin onkotik basınç farkları) Şekilde, mikro sonra kullanılabilir uncannulated kan perfüze mikrodamarlar 8,29 oranla çok daha fazladır.

<table><tbody><tr><td>MİKROSKOP, MASA ve SAHNE video</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>için trinoküler başlı ters mikroskop (metalurjik tip): örnek</td><td>Olympus</td><td>CK-40</td>, <td>göz merceklerini sahneye göre daha yükseğe yerleştirmeye çalışın - araya giren mikromanipülatörler üzerinden sahnenin tepesine ulaşırken göz merceklerine bakmanız gerekir</td></tr><tr><td>ters mikroskop (metalurjik tip) video için trinoküler kafalı: örnek</td><td>Leica</td><td>DMIL</td>, <td>göz merceklerini sahneye göre daha yükseğe yerleştirmeye çalışın - araya giren mikro manipülatörler üzerinden sahnenin tepesine ulaşırken göz merceklerine bakmanız gerekir,</td></tr><tr><td>dar çap, uzun çalışma mesafesi Amaç: örnek:</td><td>Nikon</td><td>Nikon E Plan 10 kez; / 0.25 LWD</td><td></td></tr><tr><td>sahne platformu - 1/2 inç veya 1 cm çelik sac</td><td>kaynak atölyesi</td><td></td>, <td>titreşimi</td></tr> <tr><td>azaltmak için bu ağır olmalıdırUnislide xy tablosu: güvercin kuyruğu kızakları</td><td>Velmex</td><td>AXY4006W1</td><td></td></tr><tr><td>VIDEO</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CCD video kamera: örnek</td><td>Pulnix</td><td>TM-7CN (artık mevcut değil)</td> <td>renk gerekmez</td></tr><tr><td>Sesli video yakalama sistemi - genel</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>video oynatma sistemi (tamamen hareketsiz kare, tek kare hareketi)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>küçük mikrofon</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MİKROMANİPÜLATÖRLERİ, TUTUCULAR</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>mikromanipülatör, XYZ (3)</td><td>Öncesi/Çalınması (artık mevcut değil)</td><td></td>ince <td>Z ve kaba tahriklerde daha geniş hareket aralığı arayın konumlandırma kolaylığı için</td></tr><tr><td>hidrolik prob tahriki, tek yönlü</td><td>FHC</td><td>50-12-1C'nin</td><td>manuel tahrik veya elektronik tahrik</td></tr><tr><td>manuel tambur tahrik satın alması gerekir&nbsp;</td><td>FHC</td><td>50-12-9-02</td><td></td></tr><tr><td>veya hidrolik tahrik, 3</td><td>Siskiyou Corporation</td><td>MX610 (1 yönlü) veya MX630 (3)</td> <td>kısa kollar için harika, su dolu ve yeniden doldurma için geri gönderilmelidir ~ her 2 yılda bir</td></tr><tr><td>konektörler / çubuklar / tutucular</td><td>Siskiyou Corporation</td><td>MXC-2.5, MXB vb.</td><td></td></tr><tr><td>pin mengene</td><td>Starrett</td><td>162C</td><td>tutucu pipet tutucuyu tutmak için</td></tr><tr><td></td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>MPH3</td><td></td></tr><tr><td>su manometresi ~ 120 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MİKROSKOP TEPSİSİ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>hayvan için</td><td></td><td></td><td></td>mikroskop tepsisi için şeffaf Pleksiglas</tr><tr><td>3/4 inç cilalı kuvars disk ~ 1/4 inç boyunda</td><td>Kuvars Bilimsel A.Ş.</td><td>özel</td><td>&nbsp;( veya cilalı pleksiglas, cam); yüksekliğin objektifin çalışma mesafesinden daha az olduğundan emin olun</td></tr><tr><td>Pleksiglas yapıştırıcı (Kaynak 4: DİKKAT KANSEROJEN)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>doku kuyusu için tıbbi yapıştırıcı</td><td>NuSil</td><td>MED-1037</td><td></td></tr><tr><td>Çok amaçlı silikon kauçuk ısı matı, 5 "L x 2" W</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-03125-20</td><td>mikroskop tepsisi için ısıtıcı - kablo ve kontrolör gerektirir - 240V versiyonu mevcuttur</td></tr><tr><td>Kapton Isıtıcılar ve Kitler için Güç Kablosu Adaptörü, 6 ft, 120 VAC</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-03122-75</td><td></td></tr><tr><td>STACO 3PN1010B Değişken Voltaj Kontrol Cihazı, 10 A; 120 V Giriş, 0-140 V Çıkış</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-01575-00</td><td></td></tr><tr><td>PIPET ÜRETIMI</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>dikey pipet çektirmesi</td><td>Sutter Instrument Company</td><td>P-30, nikrom filamentli</td><td></td></tr><tr><td>1,5 mm OD ince duvarlı kılcal boru</td><td>Sutter Instrument Company</td><td>B150-110-10</td><td></td></tr><tr><td>pipet öğütücü hava taşı ve diseksiyon mikroskobu - metindeki</td><td></td><td></td> referansa bakın <td>veya Sutter Instruments veya World Precision Instruments'tan bir paket satın alın</td></tr><tr><td>RX Honlama Makinesi, Sistem II</td><td>RX Honlama Makinesi Şirketi</td><td>MAC-10700 Rx System II Hava</td><td>taşı için makine alternatifi, açılı</td></tr> <tr><td>olarak monte edilmiş bir diseksiyon mikroskobu ile kullanın&nbsp; &nbsp; seramik bileme diski ile</td><td>RX Honlama Makinesi Corporation</td><td></td><td>"olduğu gibi" kullanın veya alıştırma filmi</td></tr><tr><td>alıştırma filmi levhaları, 0,3 veya 0,5 um</td><td>3M</td><td>parça no. 051144 80827</td><td>268X Arkası yapışkanlı imparatorluk alıştırma filmi levhaları - Amazon'dan satın alınabilir</td></tr></tbody></table>

Şekilde, mikro tekniği sıçan mezenter mikrodamar geçirgenliği yönetmelik araştırma

Microperfusion Technique to Investigate Regulation of Microvessel Permeability in Rat Mesentery

Bireysel perfüze mikrodamarlar geçirgenlik özelliklerini ölçmek için deneyler kültürlü endotel hücre mono tabakaları ve tüm mikrovasküler yatak fonksiyonel değişim özelliklerinde damar geçirgenliğini düzenleyen moleküler ve hücresel mekanizmaların araştırılması arasında bir köprü oluştururlar. Kanül ve sıçan mezenter venüler mikrodamarlar serpmek mikrodamar duvarının hidrolik iletkenliği ölçmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Gerekli temel ekipmanları üç farklı microtools konumlandırmak için mikromanipülatörler destekleyen büyük bir modifiye sahne ile bir intravital mikroskop içerir: (1) bir eğimli cam mikropipet cannulate ve mikrodamar serpmek için; (2) bir cam mikro-tıkayıcı geçici perfüzyon blok ve ölçülü bir hidrostatik basınçta transvasküler su akış hareketinin ölçülmesine olanak tanıyan, ve (3) kör bir cam çubuk kanül yerinde mezenterik doku dengelenmesi için. Modifiye Landis mikro oklüzyon technique mikrodamarlar karşısında bu kadar deneysel koşullar değiştiğinde akımları ve hidrostatik ve kolloid osmotik basınç farkı tekrarlanan ölçümler titizlikle kontrol edilir kılar da transvasküler sıvı hareketinin belirteçleri olarak yapay perfüzat içinde asılı kırmızı hücreleri kullanır ve. Sonra ilk deneme Perfüzatlar aynı mikro damarın yeniden kanülasyondan sonra, bir kontrol perfüzyon kullanarak hidrolik iletkenlik ölçümleri bu iyi kontrollü koşullar altında mikrovasküler yanıt karşılaştırmalar eşleştirilmiş etkinleştirin. Vasküler geçirgenliği değiştirmek için beklenen genetik değişiklikler ile farelerin mezenterinde mikrodamarlar yöntemi genişletmek için girişimleri nedeniyle fare mezenterinde uzun düz ve dalsız mikrodamarlar yokluğu ciddi sınırlı, ama benzer genetik değişikliklerle sıçanların son durumu kullanarak CRISPR / Cas9 teknolojisi burada tarif edilen yöntemler uygulanabilir soruşturmanın yeni alanlar açılması bekleniyor. </p&gt;

Şekil 4, dört Perfüzatlar art arda kanüle mikro damarın venüler bir sıçan L p değişikliklerin zaman sürecini ölçmek sonuçlarını gösterir. 33 sabit bir basınçta hesaplanan L p büyüklüğü mikrodamar duvarı geçirgenliği değişikliklerin bir ölçüsü olarak kullanılmıştır, ilk olarak gemi 10 nM Bk içeren ikinci bir mikropipet kullanılarak enflamatuar ajan bradikinin (Bk) maruz kalmıştır sonra% 1 sığır serum albümini ihtiva eden bir perfüzat ile birlikte kontrol aşamasında. Bradi...

Modifiye edilmiş Landis tekniği, mikroperfüzyon teknikleri kullanılarak kontrol ve test koşulları altında normal ve genetik olarak modifiye edilmiş sıçanların mezenterindeki tek tek mikro damarların hidrolik iletkenliğinin eşleştirilmiş ölçümünü sağlar. Fizyolojik koşullar altında mikrodamar geçirgenliğini ve transvasküler değişimi düzenleyen mekanizmaları değerlendirmek için uygun bir yöntem sağlar.

Şekilde, mikro Tekniği Sıçan mezenter mikrodamar geçirgenliği Yönetmelik Araştırma

Experiments to measure the permeability properties of individually perfused microvessels provide a bridge between investigation of molecular and cellular ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, kontrollü deneysel koşullar altında sıçan mezenterindeki ular mikrodamarlarının duvarlarının hidrolik iletkenliğinin veya su geçirgenliğinin tekrarlı ölçümlerini yapabilmektir. Bu, lümendeki onkotik ve hidrostatik basınçların ayarlanabilmesini ve perfüzyon sıvısının kimyasal bileşiminin hassas bir şekilde kontrol edilmesini sağlamak amacıyla bir ular mikrodamarının kanülasyonu ile gerçekleştirilir. Ardından, damar tıkanır ve perfüzyon sıvısı içinde süspansiyon halindeki, akış belirteçleri olarak görev yapan alyuvarların, transvasküler sıvı değişiminin göstergeleri olarak lümende hareketleri gözlemlenebilir.Ardından, işaretleyici kırmızı hücrelerin konumu ve hızı, ya tıkanıklık bölgesine doğru ya da tıkanıklık bölgesinden uzağa doğru kaydedilir. Son olarak, tıkanıklık giderilir ve ek ölçümler için işlem tekrarlanır veya damar yeniden kanüle edilerek ölçümler değiştirilmiş koşullar altında tekrarlanır.Nihayetinde, mikrodamarların geçirgenliğini düzenleyen faktörlerin en doğrudan şekilde araştırılabilmesi için kontrol ve test koşulları altında eşleştirilmiş hidrolik iletkenlik ölçümleri yapılabilir. Kılcal damar geçirgenliğinin düzenlenmesini incelemek için modifiye Landis tekniğinin bir avantajı, perfüzyon adımıdır. Mikroperfüzyon; perfüzyon sıvısı bileşiminin, değişim yüzey alanının ve mikrodamar basıncının tamamının doğrudan kontrol edildiği koşullar altında, mikrodamar duvarının geçirgenliğinin ölçülmesine olanak tanır.Bu yöntem, sağlam organları temsil eden mikrodamlarlarda geçirgenlik düzenlemesinin hücresel ve moleküler mekanizmalarına ilişkin soruları yanıtlayabilir ve genellikle moleküler mekanizmaların detaylarını araştırmak için kullanılan kültürlenmiş endotelyal monokatmanlardan elde edilen sonuçlarla karşılaştırma imkanı sağlayabilir. Protokolümüzü laboratuvar yöneticimiz Joyce Clark uygulamaktadır. Joyce, buradaki laboratuvar yöneticiliği görevi süresince bu protokole getirilen birçok geliştirmenin sorumlusu olmuştur.Başlamak için, hava tahrikli bir taşlama tekerleği, su ile ıslatılmış 0,5 mikronluk bir aşındırıcı kağıt ve yatay pah açısına göre 30 derecelik bir açıyla ayarlanmış bir mikro pipet tutucu kullanarak, elektronik bir çekici ile birkaç temiz borosilikat cam kapiler tüpü, her birinin uç uzunluğu yaklaşık bir santimetre olacak şekilde konik yarımlara dönüştürerek mikro pipetleri oluşturun. Mikro pipetleri metin protokolüne göre yıkayıp kuruttuktan sonra, açıklığı yaklaşık 50 mikron uzunluğunda ve pah uzunluğunun genişliğine oranı 3,1 ile 3,5 arasında olan mikro pipetleri seçin. Ayrıca, mezenterdeki sert kolajen liflere nüfuz etmeye yardımcı olacak keskin konik bir uca sahip olmalıdırlar.Sınırlayıcıları hazırlamak için, ucu eğimsiz çekilmiş cam bir kılcal boruyu, küt bir uç oluşturacak şekilde kısa bir süre mikro alevin yanında tutun. Birkaç sınırlayıcı yapmak için işlemi tekrarlayın ve bunları tozsuz bir kutuda saklayın. Ardından, ucu eğimsiz çekilmiş bir kılcal boruyu mikro alevin altında belirli bir açıyla tutarak mikro oklüzyonlar oluşturun ve bir boru adaptörü veya kırık bir mikro pipet kullanarak boruyu uçtan yaklaşık dört milimetre uzaklıkta, 120 dereceye yakın bir açıyla nazikçe bükün.Mil ile ilgili olarak, ucun ne alevde mühürlenmiş ne de kırılmış olması önemlidir. Bir sıçanı anestezi altına alıp mezenter dokusunu ve bağırsağı metin protokolüne göre düzenledikten sonra, mezenter okülerler aracılığıyla görülecek şekilde hayvan tepsisini mikroskop tablasına yerleştirin. Sürekli perfüzyon sağlamak için memeli ringer çözeltisi içeren yerçekimi destekli bir damla hattı konumlandırın.Ardından mezenter için, bağırsağı sabit tutmak, nemi korumaya yardımcı olmak ve yüzeydeki fazla Ringer çözeltisini emdirmek amacıyla gazlı bez pedler kullanın; sabit bir Ringer tabakası sağlamak için akışı ayarlayın ve efllüenti aspire edin; yakınsak akışın aşağısındaki dallanmamış segmentler olan ve gerçek kılcal damarların distalinde bir veya iki dal bulunan hedef mikrodamarları belirleyin. Kan akışının hızlı olduğu ve damar duvarına yapışmış beyaz hücrelerin bulunmadığı dallanmamış bir damar bulun. Test mikrodamarlarını mikroskop alanının merkezine konumlandırın ve tutucuyu seçilen kanülasyon bölgesinin yakınına getirin.Mikropipeti doldurmak için, metin protokolüne göre hazırlanan bir şırıngaya perfuse eight ve yıkanmış eritrositleri çekin; tüplerde hava kabarcığı kalmadığından emin olun. Tüpü, konik bölgeye dayanana kadar mikropipetin geniş ucuna doğru ilerletin. Mikropipet ucunu doldurmak için şırınga pistonuna nazik ve hızlıca bastırın.Dolduğunda, ucunda küçük bir akıntı veya damla belirecektir. Tüpü geri çekerken, mikro pipet şaftını doldurmak için pistonu nazikçe itin. Ardından, şafttaki küçük hava kabarcıklarını şafta hafifçe vurarak giderin.Ardından mikropipeti, bir su manometresine sürekli sıvı bağlantısı sağlayan yan portlu bir pipet tutucuya yerleştirin. Hidrolik sürücüye ve mikromanipülatöre bağlı olan tutucunun, mikropipet konisinin kenarının bağırsağa veya tepsiye çarpmaması için hafif bir yatay açıda ayarlandığından emin olun. Bir şırınga veya suyla doldurulmuş kauçuk pompa kullanarak, manometrenin su sütunundaki sıvı yüksekliğini mezenterin yaklaşık 40 santimetre üzerine çıkarıp indirerek mikropipetteki sıvıya uygulanan hidrostatik basıncı ayarlayın.Dolu mikro pipeti mikroskobun altına yerleştirmeden önce, dokuyu kavrayacak yeterli kuvvet uygulayarak sabitleyiciyi mikro damarların yakınındaki dokunun üzerine nazikçe bastırın, ardından dokuyu mikro damarlarla aynı hizaya gelecek şekilde hafifçe geriye çekerek gerin; böylece mezenterik kolajen liflerindeki gerilmeler damarla hizalanmış olur. Mikro pipeti damarla hizalayın ve okülerler aracılığıyla görüş alanına indirin. Pipet ucunu seçilen kanülasyon bölgesinin hemen yukarısına yerleştirin ve damar içindeki akışı tamamen engellemeyecek ancak kısmen kısıtlayacak şekilde dokunun üzerine indirin.Hidrolik sürücüyü kullanarak, pipet ucunu damar lümenine yavaşça iterek damarı kanüle edin; bu sırada ucun damarın karşı duvarını delip geçmemesine dikkat edin. Mikro pipet lümene girdiğinde, perfüzyon sıvısı kanı damar lümeninden hızla yıkayacak ve dolaşıma girecektir. Kırmızı hücreler damar lümeni içinde hafifçe salınana kadar manometreyi ayarlayarak perfüzyon basıncını düşürün.Bu işlem, mikrodamarlar segmentinin distal ucundaki hidrostatik mikrodamarlar basıncını veya PC'yi ölçen denge basıncını belirler. Mikro oklüzyonu gerçekleştirmek için damar perfüzyonunu bu denge basıncının üzerinde tutun. Video ve ses yardımıyla, tıkayıcıyı mikroskop alanının alt kenarına yakın, perfüze edilen damarın üzerine yerleştirin.Bloklama bölgesinin konumunu, I parçasındaki kırmızı renkte görüldüğü şekilde sözlü olarak kaydedin. Bloklama bölgesi 57'dir; bloklayıcının ucu mikro damarın hemen üzerine yerleştirilir. Damardaki akış tıkanana kadar bloklayıcıyı nazikçe aşağı indirmek için mikromanipülatörün hassas Z kontrolünü kullanın.Manometre basıncını kaydetmek için ses kaydı kullanın. Basınç 50'dir. Ardından, üç ila 10 saniye boyunca oklüzyon uygulayın ve serbest bırakın.Serbest perfüzyonu geri sağlamak için, blok bölgesini damar boyunca pipet ucuna doğru beş ila 10 mikronluk adımlarla ilerletin; blok bölgesindeki damar duvarı hasarını önlemek için her konumda üçten beşe kadar daha fazla tıkanma gerçekleştirmeyin. Verileri metin protokolüne göre analiz edin. Bu zaman seyri, dört perfüze kollarla başarıyla kanüle edilmiş sıçan ular mikrodamarlarındaki hidrolik iletkenlik veya LP değişikliklerini ölçer.Mikro damarlardaki değişimleri ölçmek için sabit basınçtaki LP büyüklüğü kullanılmıştır. Kontrol grubu olarak %1BSA ile perfüzyon yapıldığında duvar geçirgenliği ile 10 molar inflamatuar ajan Bradikinin veya bk ile perfüzyon yapıldığındaki geçirgenlik karşılaştırılmıştır. Burada gösterildiği gibi, BK, 10 ila 15 dakika içinde kontrol seviyelerine dönen geçici bir LP artışına neden olmuştur.%1BSA 10 nanomolar ile bazal seviyeler yeniden oluşturulduktan sonra, BK, bir mikromolar pH scene one phosphate veya S one P ile birlikte yeniden perfüze edildi. Sonuçlar, S one P'nin bk'ya verilen yanıtı önemli ölçüde azalttığını göstermektedir. Bazı deneysel tasarımlarda, hem bir makromolekül için solut yansıma katsayısının hem de lp'nin tahmin edilmesi önemlidir.Bu işlem, her bir mikro damarda birden fazla basınçta JV ölçülerek en iyi şekilde gerçekleştirilir. Bu deney, mikro damarları çevreleyen dokuda albümin bulunmadığı durumda, PERFUSE sekizinde hem LP'yi hem de %5 albüminin etkili onkotik basıncını tahmin etmiştir. S üzerinden JV üç farklı basınçta ölçülmüş ve burada grafiğe dökülmüştür.LP, JV/S ile basınç arasındaki ilişkinin eğimidir ve basınç eksenindeki kesişim noktası, damar duvarı boyunca oluşan efektif onkotik basınç farkını temsil eder. İmmünofloresan işaretleme ve konfokal mikroskopi, hatta transmisyon elektron mikroskopisi gibi diğer tekniklerle birleştirildiğinde, mikroperfüzyon, geçirgenliği bilinen damarlar kullanılarak mikrovasküler endotel ve fonksiyonun güçlü bir analizini sağlar. Bu videoyu izledikten sonra, kontrollü deneysel koşullar altında sıçan mezenterindeki kılcal damarların hidrolik iletkenliğinin veya su geçirgenliğinin tekrarlı ölçümlerinin nasıl yapılacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Bu yaklaşımı şu an mevcut olan sıçan modellerinde kullanabilirsiniz, ancak özellikle CRISPR Cas nine teknolojisi ile erişilebilir hale gelecek yeni genetiği değiştirilmiş sıçanlarda kullanılabilme olasılığıyla ilgileniyorum ve bu şekilde genişletilmesini umuyorum.

microperfusion-technique-to-investigate-regulation-microvessel

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Fizyolojik anjiyogenez ve yoksun Normal erişkin vaskülarize memeli doku çalışma için kullanılan cerrahi müdahaleye maruz kalmamış: (i) başlatılması ve test ajanların intraperitoneal uygulanması aşağıdaki anjiyogenez geliştirilmesi; ve sistemik uygulanması aşağıdaki (ii) anjiyogenez değişiklik Test ajanlar seçilir.

Rat mezenter Anjiyogenez Testi

Bu makale sıçan mezenter anjiogenezisi teşvik için basit bir model tanımlamaktadır. Modeli aşağı tek hücre düzeyine kadar tüm mikrovasküler ağlarının yüz görselleştirme tr sağlayan bir doku nispeten kısa bir süre boyunca kılcal filizlenmesi, damar alanı ve damar yoğunluğu dramatik artış üretir.

Sıçan mezenter eksteriorizasyon: Anjiogenez ilgilendim Hücresel Dinamikler araştırılması için Bir Model

Basınç myography basınçlı zaman sürekli daralma geliştirmek küçük arterlerin vazoaktiviteye değerlendirmek için kullanılır. Bu yazıda sıçanların, vazoaktiviteye ve damar çapı intraluminal basıncın etkisi küçük mezenterik arterler izole segmentlerinde değerlendirmek için ayrıntılı bir protokol sağlar.

Basınç myography kullanma Direnç Mezenterik Arter ise andMyogenic Tepkisi ve vazoaktiviteye Değerlendirilmesi

İzole edilmiş perfüze akciğer kan hazırlama akciğer yüzeyindeki mikro damar ağları görselleştirmek için bu mümkün kılar. Burada, gerçek zamanlı flüoresan görüntüleme kullanılarak izole edilmiş akciğerlerde bir mikro damarların geçirgenliğini ölçmek için bir yaklaşımı tarif eder.

İzole Kan-perfüze Sıçan Akciğer Hazırlık Tek Mikrodamar Geçirgenliği miktarının

Farelerde mezenter damarlarının intravital mikroskopisinin bu basitleştirilmiş uygulaması, lökosit-endotel ve trombosit-lökosit etkileşimlerini gözlemlemek için farklı inflamasyon modellerinde kullanılabilir.

Farelerde mesenteriumda Damarlardaki intravital Mikroskopi Lökosit-endotelyal ve Trombosit-lökosit Etkileşimleri

Anjiyogenez, fizyolojik olarak ilgili bir ortamda araştırılması gereken çok hücreli, çok sistemli etkileşimleri içerir. Bu çalışmanın amacı, sıçan mezenter kültürü modelinin, anjiyogenez sırasında sağlam mikrovasküler ağların hızlandırılmış karşılaştırmalarını yapma yeteneğini göstermektir.

bir<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Yöntem kültürlü Rat Mezenterik Mikrovasküler Ağları Time-Lapse Görüntüleme için

Bu el yazması sıçan beyin direnç arterlerin vasküler işlevinde değerlendirilmesinde vitro video mikroskobu iletişim kurallarını açıklar. El yazması da microvessel yoğunluğu fluorescently etiketli lektin ve doku perfüzyon lazer Doppler Flowmetry kullanarak değerlendirmek için teknikler açıklanır.

Sıçan izole direnç arter Video mikroskobu kullanan vasküler kontrol mekanizmalarının değerlendirilmesi

Bu protokolde, submandibuler bezin (SMG) endotel bariyer fonksiyonu, iki fotonlu lazer taramalı mikroskop altında test hayvanı modellerinin açısal damarlarına in vivo olarak farklı moleküler ağırlıklı floresan izleyiciler enjekte edilerek değerlendirilmiştir.

İn Vivo Fare Submandibuler Bezinde Vasküler Geçirgenlik Tespiti

Bu protokol, mezenterik iskemi-reperfüzyon hasarını indüklemek ve mezenterik venüllerde nötrofil hücre dışı tuzakları (NET'ler) intravital mikroskopi kullanarak görüntülemek için bir yöntem sunar. Superior mezenterik arterdeki kan akışı 1 saat boyunca kısıtlandı, ardından reperfüzyon yapıldı ve lökosit yapışması ve NETosis'in doğrudan ölçülmesine izin verildi.

Mezenterik İskemi-Reperfüzyon Yaralanması Sonrası Mezenterik Venüllerde Nötrofil Hücre Dışı Tuzakların İntravital Mikroskopi ile Görüntülenmesi

Bu video, diseksiyon ve fetal timus çıkarılması de 2-dGuo ile tedavi edilen timus ex vivo kültürlerin hazırlanmasında gösteriyor.

2-dGuo Boyalı Thymus Organ Kültürleri hazırlanması

Öğrenin sıçan mezenterindeki mikrodamarların hidrolik iletkenliğini ölçmek için modifiye Landis tekniğini. Bu yöntem, mikrovasküler geçirgenlik ve transvasküler sıvı değişimini kontrollü koşullarda araştırmak için kullanılır.

Şekilde, mikro Tekniği Sıçan mezenter mikrodamar geçirgenliği Yönetmelik Araştırma

Daha fazla video keşfet