2 Haziran 2016
Bu el yazması kapsül enfarktüs bir modelleme tekniği anlatılmaktadır. Burada ön ameliyat hedef haritalama sonra ışık düşük yoğunluğu ile modifiye Fototrombotik tekniği kullanılmıştır. Bu tekniği kullanarak, biz kalıcı motorlu bozukluğu olan bir sınırlı kapsül infarkt modeli yarattı.
Bu tekniğin genel amacı, fototrombotik teknik kullanarak kalıcı bir motor bozukluğu olan sınırlı bir kapsüler enfarktüs modeli oluşturmaktır. Kapsül enfarktüsü oluşturmadan önce, motor korteksin ön ayak alanına GFP eksprese eden adeno ilişkili bir virüs ekleyerek iç kapsüldeki ön ayak alanını tanımlamak gerekir. Anestezi uygulanmış bir fareyi stereotaksik bir çerçeveye yerleştirerek başlayın.
Daha sonra farenin başını tıraş edin ve% 70 alkol ve povidon ve iyot çözeltisi kullanarak kafa derisini sterilize edin. Ameliyat içi ağrıyı azaltmak için, amaçlanan kafa derisi kesisi alanında kafa derisinin altına% 2 lidokain hidro klorür enjekte edin. Gözlerin kurumasını önlemek için oftalmik merhem sürün.
Ve hayvanın üzerine steril bir örtü yerleştirin. Kafa derisinde iki santimetrelik bir orta hat kesisi yaptıktan sonra, stereotaksik koordinatlara göre motor korteksin ön ayak alanını belirlemek için stereotaksik kolu konumlandırın. Bu konumda bir giriş deliği açın.
İğneyi delinmiş deliğe doğru hareket ettirin ve iğneyi duradan bir milimetre geçirin ve motor kortekse indirin. Bir mikro litre virüsü yavaşça enjekte etmek için yüksek hassasiyetli bir mikro pompa kullanın. İğne yolundan geri akışı önlemek için iğneyi 10 dakika daha yerinde bırakın.
10 dakika geçtikten sonra iğneyi yavaşça geri çekin. Ameliyat bölgesini tuzlu su ile temizledikten sonra yarayı 3-0 naylon sütür ile sabitleyin. Daha sonra fareyi stereotaksik çerçeveden serbest bırakın ve izleme için bir kurtarma odasına aktarın.
Ameliyat sonrası ağrı kontrolü için analjezik uygulayın. İki ila üç hafta sonra, fareyi onaylanmış yöntemlere göre kurban edin ve kriyo korumalı beyni bölümlere ayırın. GFP için boyamadan sonra, bir floresan mikroskobu ile iç kapsüldeki AAV-GFP transdüksiyonlu aksonları gözlemleyin.
Transdüksiyonlu aksonların stereotaksik koordinatlarını doğru bir şekilde belirlemek için floresan görüntüde görüldüğü gibi transdüksiyonlu aksonların konumlarını sıçan beyin atlası ile karşılaştırın. Optik nöral arayüzü hazırlamak için, önce içinde stile bulunan 27 gauge omurga iğnesinin yaklaşık dört santimetresini kesmek için bir kesme matkabı kullanın. Ardından, bir optik fiberin kılıfının 10 santimetresini soyun.
Optik fiberin kılıfsız parçasını metal bir tüpe yerleştirin. Ve tüpü fiberin etrafına sıkıştırın. Ardından, metal borunun alt 1 / 2'sini iki kez sıkıştırmak için bir pres kullanın.
Metal tüp, optik fiber ile omurilik iğnesinin göbeği arasındaki boşluğu doldurur. Optik fiber üzerine ısıyla sertleştirilebilir epoksi uygulayın. Göbekteki boş alana ek epoksi uygulayın.
Ve optik fiberi omurilik iğnesine yerleştirin. Stabil sabitleme için epoksiyi 100 santigrat derecede 20 dakika kürleyin. Sertleştikten sonra, omurga iğnesinden dışarı çıkan optik fiberi ayırın ve ardından omurilik iğnesinin ucundaki optik fiberi parlatmak için elmas alıştırma levhaları kullanın.
Son olarak, yama kablosunun FCPC konektör kısmını yeşil lazer sisteminin kuplörüne bağlayın. Ardından, doğru ışık emisyonunu sağlamak için optik fiberin ucundan gelen ışık yoğunluğunu ölçmek için bir dijital optik güç ve enerji ölçer kullanın. Ameliyat düşünülürse, vücut ısısını 37.5 santigrat derecede tutmak için hayvanın vücudunun altına bir ısı yastığı yerleştirin.
Fareyi daha önce olduğu gibi anestezi altına alarak ve ameliyata hazırlayarak başlayın. İki santimetrelik bir orta hat kesisi yaptıktan sonra, Bregma ve Lambda aynı seviyede hizalanana kadar burun klempinin yüksekliğini ayarlayın. Doğru hizalama, iç kapsülü doğru bir şekilde hedeflemek için kritik öneme sahiptir.
Fototromboz bölgesini bulmak için stereotaksik kolu konumlandırın. Ardından bu noktada iki milimetrelik bir delik açın. Ardından, ONI'nin fiber optik ucunu cilalayın ve temizleyin, ardından bükmeden stereotaksik çerçeveye sabitleyin.
Temiz ve sağlam olduğundan emin olmak için ONI'nin ucunu kontrol edin. Optik arayüzün sıçan beyninin hedef bölgesine yerleştirilmesinden önce optik fiberin ucundan gelen lazer yoğunluğunu ölçün. Optik fiberin ucunda lazer yoğunluğunu 3,5 miliwatt'a ayarlayın.
Şimdi, protokolün ilk bölümünde belirlenen dorsoventral koordinatı kullanarak ONI'yi iç kapsülün hedef alanına indirin. Ardından, kuyruk damarından kilogram Rose Bengal başına iki miligram enjekte edin ve ardından bir dakikaya ayarlanmış bir geri sayım sayacı başlatın. Dakika geçtiğinde, enfarktüsü oluşturmak için 532 nano metre yeşil lazeri 90 saniye boyunca açın.
Bir radyasyondan sonra, ONI'yi beyinden yavaşça çıkarın. Ameliyat bölgesini temizledikten sonra yarayı 3-0 naylon dikiş ile sabitleyin. Daha sonra fareyi stereotaksik çerçeveden çıkarın ve bir kurtarma odasına aktarın.
Bu görüntü, fototrombotik lezyondan iki hafta sonra iki miliwatt'tan beş miliwatt'a kadar değişen lazer ışığı yoğunluklarında enfarktüs lezyonlarının derecesini göstermektedir. Oklar enfarktüs lezyonunu gösterir. Bu deney ortamında optik ışık yoğunluğunun üç miliwatt ile dört miliwatt arasında olduğu düşünülmektedir.
Sonraki iki görüntü, fototrombozdan üç hafta sonra kapsül enfarktüsünün mikroskobik görünümünü göstermektedir. Sıçan beyninin bu koronal bölümünde, ok başları, talamusta ve iç kapsüle kadar optik fiberi içeren iğnenin yolunu gösterir. Bu seri iç içe boyanmış kesitler, iç kapsüldeki enfarktüs lezyonunun derecesini gösterir.
Oklar enfarktüs lezyonunu gösterir.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu el yazması, değiştirilmiş bir fototrombotik teknik kullanarak kapsüler infarktın modellenmesi tekniğini açıklar. Bu yaklaşım, kalıcı motor bozukluğu ile sonuçlanan çevrelenmiş kapsüler infarkt modelinin oluşturulmasına izin verir.
This photothrombotic technique enables precise modeling of white matter stroke by selectively targeting the internal capsule while sparing adjacent gray matter. The resulting circumscribed capsular infarct produces persistent motor deficits, providing a disease-relevant system for mechanistic de-risking of neurotherapeutic candidates. The model supports target validation and preclinical assessment of interventions aimed at white matter pathology, addressing a critical gap in stroke research.
The method integrates into the discovery continuum from target identification through preclinical efficacy testing, enabling iterative refinement of neurotherapeutic strategies.