Name: İnsan Palatine Bademcikler B ve T Lenfosit için Verimli İzolasyon Protokolü (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 9 s
Description: Öğrenin, insan palatine bademciklerinden B ve T lenfositleri hızlı bir şekilde izole etmek için bu etkili protokolü. Bu yöntem, viral bademcik iltihabının patogenezindeki bağışıklık hücreleri rollerini incelemek için araştırmacılara yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, İsveç Kanser Derneği (11 0253, 13 0469), İsveç Araştırma Konseyi (K2012-99X-21959-01-3), Marcus Borgströms Vakfı ve İsveç Araştırma Konseyi tarafından Uppsala RNA Araştırma Merkezi'ne (2006-5038-36531-16) yapılan bir hibe yoluyla desteklenmiştir. FACS analizinde çok yardımcı oldukları için Uppsala Üniversitesi'ndeki BioVis çekirdek tesisine borçluyuz.

Protokol, insan hasta malzemeden lenfoid hücrelerin izolasyonu açıklar ve bu nedenle etik onayı gerekiyor. Bu çalışmada yapılan çalışmalar Uppsala Etik Değerlendirme Kurulu (DNR. 2013/387) tarafından verildi. İnsan Palatine Bademcikler dan Mononükleer Hücreleri (ÇUŞ) 1. İzolasyonu UYARI: kan, doku veya vücut sıvıları gibi insan kaynaklı tüm elenmemiş malzeme potansiyel enfekte materyal olarak kabul edilmelidir. Bu nedenle, insan dokuları işlemek için önerilen biyogüvenlik uygulamaları takip edilmelidir. Not: kontaminasyonunu önlemek için, her çözeltiler ve hücre kültürü ekipmanları steril olması gerekmektedir. Tüm tamponlar ve solüsyonlar önceden soğutulmuş ve buz üzerinde tutulmalıdır. Tonsil dokular ve izole hücreler tutulur ve buz üzerinde tutulmalıdır. <ol><li> Tonsillektomi veya tonsillotomy (Şekil 2) uygulanan hastalarda taze bademcikler edinin. Doku clum Plunge% 5 fetal sığır serumu (FBS), 10 mM Glutamin, 0,05 mg / gentamisin ve% 1 antibiyotik antimikotik karışımı ml (penisilin buz soğukluğunda steril Hanks ile dengelenmiş tuz çözeltisi (HBSS) ile dolu bir 50 ml&#39;lik santrifüj tüpüne ps Streptomisin ve Amfoterisin B). </li><li> Buz üzerinde her zaman batık bademcik dokusu örnekleri ile tüpleri tutun. En kısa sürede bademcik işlemek için çalışın, ve en geç cerrahi müdahaleden sonra 3 saat daha. </li><li> Buz üzerinde 60 mm plastik hücre kültür plaka üzerinde bademcik yerleştirin ve HBSS ile nemlendirilmiş doku tutun. Bademcik yüzeyinden temiz bir forseps ile görünür kan pıhtılarını, yağlı ve bağ dokuları çıkarın. </li><li> 5 ml HBSS içeren yeni 60 mm hücre kültürü plakası kullanın. Makas ve / veya bir neşter steril bir çifti kullanılarak 3-10 mm parçalara bademcik dokusu yığın kesin. </li><li> HBSS 10 ml içeren yeni 60 mm hücre kültürü tabak hazırlayın ve HBSS çözeltisi içinde 100 mikron plastik hücre süzgeç yerleştirin. </li><li> Diss aktarınSteril forseps ile hücre süzgecinden içine yansıtılmaktadır bademcik fragmanları. Plastik şırınga pistonu ucunu kullanarak, sorunsuz hücre süzgecinden doku parçaları sıkın. Bademcik fragmanları tamamen HBSS dalmış emin olun. </li><li> Doku kalıntıları hücre süzgecinden atın ve bir 50 ml plastik bir santrifüj tüpüne 60 mm hücre kültür plakasından elde edilen hücre süspansiyonu aktarın. Adımlar 1.8 ve 1.9 ile devam ederken buz üzerinde tüp bırakın. </li><li> Büyük bademcikler durumunda, boyutu 2 cm&#39;den büyük (Şekil 2), süzgeç örgü tıkanmasını önlemek için iki hücre süzgeçler de bademcik parçaları sıkın. </li><li> Hücre süspansiyonu 35 ml&#39;lik nihai hacim elde edilir. Not: Bu aşamada, dondurarak saklama (bakınız bölüm 2) hücre süspansiyonu hazırlamak mümkündür. </li><li> Yeni bir 50 ml santrifüj tüpüne Ficoll gibi yoğunluk gradyan çözeltisi 10 ml ekleyin. Yavaşça hücre Suspens bindirmeİyon yoğunluk gradyan çözeltisi üzerine (aşama 1,9). Hücre süspansiyonu ve yoğunluk dereceli çözeltisinin karıştırılması kaçının. Not: yoğunluk gradyan çözeltisi, oda sıcaklığına kadar ılıtıldı gerekir. </li><li> Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca 700 xg&#39;de bir salıncak-out rotor hücre süspansiyonu santrifüjleyin. Degrade bozabilir hızlı frenleme olarak santrifüj fren işlevini etkinleştirmek etmeyin. Ayrıca, santrifüj mevcut olan en düşük ivme işlevini kullanın. Not: Bu santrifüj aşamasından sonra, tüpün alt kısmında tortu bir ara yüzeyde kabarık beyaz tabaka ve kırmızı kan hücrelerinin (RBC), fibroblastlar ve hücre kalıntıları olarak ÇUŞ&#39;larına dikkate alınmalıdır. </li><li> Dikkatlice 10 ml pipet kullanarak ÇUŞ&#39;ları katmanı toplamak. Yeni bir 50 ml santrifüj tüpüne hücre süspansiyonu yerleştirin. </li><li> Hücre süspansiyonuna buz soğukluğunda PBS 25 ml ilave edilir ve 4 ° C &#39;de dışarı salınan bir rotor 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de tüp spin. </li><li> 25 ml&#39;lik bir pipet kullanarak süpernatantıve hücre pelet yıkama adımı iki kez daha tekrarlayın. Son olarak, PBS, 15 ml hücre pelletini. Not: Son yıkama aşamasından sonra, hücre süspansiyonu (bakınız bölüm 2) cryopreserve mümkündür. </li><li> Hemositometre hücre sayım bölmesi içinde hücre süspansiyonu 10 ul uygulayın ve bir mikroskop altında hücre sayısını. Hücreler uygun miktarda dağıtın (örneğin, 2-3 x 10 7) takip eden manyetik boncuk ayrılması için bir 15 ml&#39;lik santrifüj tüpüne. Adım 3.2 kadar buz üzerinde bu kısım tutun. </li></ol> Tonsil Hücre 2. Kryoprezervasyon <ol><li> Donma orta (% 90 FBS ve% 10 DMSO) hazırlayın ve buz üzerinde tutmak. Uzun süreli depolama için -20 ° C&#39;de donma medyayı tutmak. </li><li> Bir hemositometre hücre sayım odasını (adım 1.15) ile hücrelerin toplam sayısını belirler. İstenen donmuş hücre yoğunluğuna göre dondurma orta gerekli miktarını hesaplayın (örneğin, 10 7 hücres dondurma ortamı / ml). </li><li> 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de hücre süspansiyonu santrifüjleyin. Hücre topaklarını bozmadan süpernatantı boşaltacaktır ve (aşama 2.1) buz gibi soğuk dondurma ortamı içinde hücre pelletini. </li><li> Sıvı nitrojen içinde uzun süreli depolama için tasarlanmış steril şişelere hücre süspansiyonu 1 ml&#39;lik numuneler koyun. Bir izopropanol odasında şişeleri dondurun ve -80 ° CO / N saklayın. Uzun süreli korunması için depolama tankı veya -140 ° C hücre dondurucu içeren bir sıvı azot içine şişeleri aktarın. </li><li> Dondurulmuş hücreler şişeleri çözülme için, 37 ° C su banyosu içinde hızla onları sıcak. Çözülmüş hemen zaman (takviyeleri ile 1.1 adım a) önceden ısıtılmış HBSS 10 ml hücre süspansiyonu dispers 15 ml santrifüj tüpüne. (1.1 adım takviyeleri ile), 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de tüp Spin HBSS çıkarın ve HBSS, istenen hücre yoğunluğuna hücre pelletini. Not: ÇUŞ af canlılığınıter çözme Ölü hücrelerin varlığı saflaştınldı B ve T lenfositleri nihai verim düşecektir, önem taşımaktadır. Not: hücre izolasyon verimi azaltacaktır hücre canlılığı az% 80 daha sonra bizim deneyim göre. </li></ol> Tonsil ÇUŞ&#39;larının T Lenfosit Nüfus 3. Pozitif Seçimi Not 1: Bu protokol, CD3 antikoru bağlanmış manyetik boncuklar kullanılarak Tonsiller çok uluslu insan CD3 + T lenfositlerinin pozitif seçimi dayanmaktadır. Taze (Bölüm 1) veya dondurulmuş (Bölüm 2) çok uluslu şirketler bu bölümü başlatmak mümkündür. Not 2: 3 x 10 7 uluslu şirketler ile başlayın. Ayırma sütunları tıkayabilir ve bu izolasyon verimi azaltacaktır çünkü, bu hücre sayısı aşmayın. Daha fazla hücre ele alınacak olursa büyük sütunları kullanın. Bu protokolde kullanılan hacimleri deneysel hücrelerin bize sayısı için optimize edilmiştirBizim deneysel kurulum ed. <ol><li> Ayırma tamponu [PBS (pH 7.2),% 0.5 sığır serum albümini (BSA) ve 2 mM EDTA] hazırlayın. 4 ° C&#39;da bir 0.45 um filtre ve mağaza boyunca ayırma tamponu filtre. </li><li> 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de ÇUŞ&#39;ları süspansiyonu (basamak 1,14) dönerler. Buz soğukluğunda ayırma tamponu 240 ul ile sonuçlanan hücre pelletini (10 7 hücre başına 80 ul) yeniden süspanse edin. Steril 2 ml&#39;lik bir tüp içine hücre süspansiyonu aktarın. </li><li> Hücre çözeltisine, CD3 manyetik antikorun 20 ul ekle. Süspansiyon içinde bulunan hücrelerin durumda tutmak için sürekli hafifçe karıştırılarak, 4 ° C &#39;de 1 saat süre ile inkübe edin. </li><li> Hücreleri yıkamak için 5 mi, buzla soğutulmuş ayırma tamponu ihtiva eden 15 ml&#39;lik bir tüp içine hücre süspansiyonu her aktarın. </li><li> Dışarı salınan bir rotor, 4 ° C &#39;de 10 dakika boyunca 300 x g&#39;de santrifüjleyin tüp. </li><li> Bu arada manyetik ayırıcı ve sütun kurdu. Stand manyetik ayırıcı takın ve Separ sütun yerator. Buz soğukluğunda ayırma tamponu 500 ul uygulayarak sütun yıkayın. Akışını atın. </li><li> Sütunun altında yeni bir 15 ml toplama tüpü yerleştirin. Buz üzerinde toplama tüpü bulundurun. </li><li> Pipet ile süpernatantı (adım 3.5) atın ve yavaşça 500 ul ayırma tampon içinde hücre pelletini. Önceden yıkanmış sütunun üstüne hücre süspansiyonu uygulayın ve içinden çalıştırın. Not: Hücre kümeleri sütun yapışmasına neden olabilir ve bu şekilde akış hızını azaltabilir. Bu sorunu önlemek için, kolonun tepesinde bir 40 um plastik hücre süzgeci yerleştirin. Bu örgü sayesinde hücreleri Passing çok bu yöntemin etkinliğini artıracaktır. </li><li> Ayırma tamponu, 1.5 ml (10 7 hücreleri için 500 ul) ile sütun 4 kez yıkayın. Bir sonraki yıkama adımı uygulamadan önce (hiçbir sıvı sütununda dikkat edilmelidir) boş sütun rezervuar bekleyin. Not: B lenfosit kısmıyla olarak kabul CD3 etiketsiz hücreleri elde, oldukları gibitoplama tüpüne yıkandı. </li><li> Yeni 15 ml toplama tüpüne ayırıcı ve yerden sütun çıkarın. Pipet kolonuna ayırma tamponu 2 mi. T lenfosit fraksiyonu olarak kabul edilmektedir olumlu seçilmiş T lenfositleri, Zehir sütununda verilen piston kullanma. </li><li> Saflaştırılmış hücreler (adım 1.15) Gerekirse sayısını belirler. Hücre süspansiyonları, artık aşağı doğru deneyler için hazırdır. </li></ol> İzole 4. Akım Sitometri Analizi Tonsil B ve T Lenfositler DİKKAT: Paraformaldehit çözüm tahriş edici ve kanserojen olabilir. Çalışırken uygun koruyucu giysi, eldiven ve göz / yüz koruyucusu kullanın. Not 1: Bu protokol (FACS) analizi Kontrol THP izole edilmiş B ve T hücrelerinin doğrudan boyanması için bir yöntemi tarif etmektedir. Bu adımın amacı popülasyonları af izole hücre saflığını değerlendirmek içinter CD3 manyetik antikor ayırma. Bu amaçla kurulan B ve T hücre belirteçleri için fluorofor konjuge monoklonal antikorlar CD20-FITC ve CD2-APC kullanılır. Ayrıca izotip kontrol antikorları dahil yüksek CD2 ve CD20 antikorlarının (adım 4.8) arasında spesifik olmayan bağlanma &quot;arka plan&quot; ayırt önerilir. Not 2: Bu boyama zamanına kadar 4 ° C &#39;de bir% 1 paraformaldehid içinde karanlıkta (PFA) çözeltisi saflaştırılmış hücre fraksiyonları tutmak mümkündür (örneğin, ertesi gün).. Boyama ve FACS analizi arasında bir zaman boşluğu olduğu takdirde de aynı prosedür uygulanabilir. Her iki durumda da hücreler PBSA lekelenme veya FACS analizi öncesinde tamponu (PBS% 0.2 BSA ihtiva eden) ile düzgün yıkanmalıdır unutmayın. <ol><li> Adım 3.10 aşama 3.9 ve T lenfosit fraksiyonu, B lenfosit kısmını (önceki sütuna uygulamadan) aşama 1.15 den çok uluslu şirketler 6 x 10 6 hücre çıkar. </li><li> Hücreyi Spindışarı salınan bir rotor kullanılarak 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de süspansiyonlar. </li><li> Pipetle Süpernatantı ve buz gibi soğuk PBSA&#39;da 1 ml ile bir kez hücre pelet yıkayın. 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de hücre süspansiyonları dönerler. Pipetle Süpernatantı ve tekrar süspansiyon buz soğukluğunda PBSA tampon 600 ul hücre. </li><li> FACS tüpün alt hücre süspansiyonu 100 ul ekle. </li><li> PBS, her tüpe,% 10 ısı ile inaktive edilmiş insan serumu ihtiva eden 100 ul eklenir, iyice karıştırılır ve oda sıcaklığında ~ 1 dakika veya buz üzerinde 20 dakika inkübe edilir. Not: B lenfositleri Fc reseptörleri taşıyan. Fc bloke etmek için saflaştırılmış hücre fraksiyonları% 10 ısı ile inaktive edilmiş insan serumu ile inkübe edilir reseptörleri. Insan serumu, 1 saat boyunca 56 ° C&#39;de inkübe edilerek inaktive ısıdır. -20 ° C&#39;de dondurulur, küçük kısımlar ve mağaza, ısı ile inaktive edilmiş serum bölün. </li><li> Bir sw 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de santrifüj hücre süspansiyonuing-out rotor. </li><li> Pipetle Süpernatantı ve 1 ml PBSA&#39;da hücre pelet yıkayın. Santrifüj (4 ° C &#39;de 5 dakika süre ile 300 x g) tekrarlayın. </li><li> Buz üzerinde, her bir tüpe 100 ul PBSA ekleyin. Üreticinin tavsiyesine göre, florofor konjuge monoklonal antikorun uygun miktarda ekleme (örneğin, anti-CD20 20 ul ve / veya albümin 100 ul anti-CD2 antikorlarının 5 ul). Not: FACS analizi için yeterli kontrol tüpleri atamak unutmayın. Bu protokol, aşağıdaki kontroller dahil edilmelidir: ayrı ayrı anti-CD2 ve anti-CD20 antikorlar ile boyandı 1) hücreler, ek olarak bireysel olarak, anti-CD2 ve anti-CD20 izotip kontrol antikorları ve 3) hücreleri ile boyanmış 2) hücreleri Antikorların. </li><li> Kısaca tüp vorteks ve karanlıkta 4 ° C&#39;de 30 dakika inkübe edilir. </li><li> PBSA&#39;da 2 kez yıkayın. Örnekler 1,% PFA çözeltisi 2 ml ilave edilir. Hücreler 4 ° C&#39;de PFA çözeltide kalır edelim76; FACS analizi zaman kadar karanlıkta C. </li><li> Hemen FACS makinesinde örnekleri çalıştırmadan önce, (4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 x g), albümin ile hücreler 2 kez yıkayın. 1 ml PBS ile yeniden süspanse Numuneler akış sitometresi üzerinde ayırma, ışıktan korunan, 4 ° C&#39;de (ya da buz üzerinde) tutmak. </li><li> Üretici sitometresi akışından protokolü aşağıdaki FACS sıralama yapın. </li></ol> İzole Tonsil B ve T Lenfositlerindeki Adenovirüs DNA&#39;nın 5. PCR Algılama Not 1: adeno virüs hekson geni primerleri AdRJC1 (5&#39;-GACATGACTTTCGAGGTCGATCCCATGGA-3 &#39;) ve AdRJC2 (5&#39;-CCGGCTGAGAAGGGTGTGCGCAGGTA-3&#39;), 11. Bu primerler, 139 bp&#39;lik bir amplikon üretir. Ev sahibi 18S rRNA gen primerler tp206 (5&#39;-CCCCTCGATGCTCTTAGCTG-3 &#39;) ve tp207 (5&#39;-TCGTCTTCGAACCTCCGACT-3&#39;) ile tespit edilebilir. Beklenen Amplikon boyutu 300 bp olduğunu. Not 2: Her PCRÇalışma bir negatif kontrol (damıtılmış H2O) ve insan adenovirüs tip 5 12 ile enfekte edilmiş insan B hücre çizgisi (BJAB) elde edilen bir DNA pozitif kontrolü içerir. <ol><li> Silika membran bazlı kolon arıtma yöntemi kullanılarak (en az 1 x 10 6 hücre, adım 3.11) DNA ayıklayın. Fenol ve guanidin izotiyosiyanat çözeltisi 13 kullanarak, RNA yı ekstrakte edin. </li><li> 1x HF tamponu, deoksinükleotid trifosfat karışımı 0.2 mM (dNTP), 0.25, her bir primerden uM ve 20 ul bir toplam hacim içinde Yüksek Fidelity DNA polimeraz 1 U ihtiva eden bir reaksiyon karışımına, B ve T lenfositleri 100 ng DNA ekleyin. </li><li> Aşağıdaki çevrim koşulları altında PCR amplifikasyonu yapın: 10 sn, 67 ° C (hekson) ya da 58 ° C (18S rRNA) 30 sn için ve 72 ° C sıcaklıkta 98 ​​° C 30 döngü, ardından 98 ° C&#39;de 30 saniye denatürasyon, 30 sn. PCR reaksiyonu, 72 ° C&#39;de 7 dakikalık son bir uzatma aşaması ile sona erdirildi. </li><li> Elde edilen PCR amplif Ayrı1x TBE içinde% 1.5 agaroz jeli üzerinde ication ürünleri tampon ve nükleik asit boyası ile boyandı, beklenen şeritleri görselleştirmek. </li></ol>

<ol><li>Nave, H., Gebert, A., Pabst, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphology+and+immunology+of+the+human+palatine+tonsil%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Embryol+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Morphology and immunology of the human palatine tonsil.</a> Anat Embryol (Berl). 204, 367-373 (2001).</li>
<li>Perry, M., Whyte, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunology+of+the+tonsils%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology+today%22%5BJournal%5D)">Immunology of the tonsils.</a> Immunology today. 19, 414-421 (1998).</li>
<li>Alkhalaf, M. A., Guiver, M., Cooper, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+and+quantitation+of+adenovirus+DNA+from+human+tonsil+and+adenoid+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Virol%22%5BJournal%5D)">Prevalence and quantitation of adenovirus DNA from human tonsil and adenoid tissues.</a> J Med Virol. 85, 1947-1954 (2013).</li>
<li>Brandtzaeg, P., Halstensen, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunology+and+immunopathology+of+tonsils%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">Immunology and immunopathology of tonsils.</a> Adv Otorhinolaryngol. 47, 64-75 (1992).</li>
<li>Imai, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epstein-Barr+virus+%28EBV%29-carrying+and+-expressing+T-cell+lines+established+from+severe+chronic+active+EBV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Epstein-Barr virus (EBV)-carrying and -expressing T-cell lines established from severe chronic active EBV infection.</a> Blood. 87, 1446-1457 (1996).</li>
<li>Veen, J., Lambriex, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+of+adenovirus+to+lymphocytes+in+naturally+infected+human+tonsils+and+adenoids%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Relationship of adenovirus to lymphocytes in naturally infected human tonsils and adenoids.</a> Infect Immun. 7, 604-609 (1973).</li>
<li>Friedman, M., Wilson, M., Lin, H. C., Chang, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Updated+systematic+review+of+tonsillectomy+and+adenoidectomy+for+treatment+of+pediatric+obstructive+sleep+apnea%2Fhypopnea+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Otolaryngol+Head+Neck+Surg%22%5BJournal%5D)">Updated systematic review of tonsillectomy and adenoidectomy for treatment of pediatric obstructive sleep apnea/hypopnea syndrome.</a> Otolaryngol Head Neck Surg. 140, 800-808 (2009).</li>
<li>Garnett, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Latent+species+C+adenoviruses+in+human+tonsil+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Latent species C adenoviruses in human tonsil tissues.</a> J Virol. 83, 2417-2428 (2009).</li>
<li>Garnett, C. T., Erdman, D., Xu, W., Gooding, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+and+quantitation+of+species+C+adenovirus+DNA+in+human+mucosal+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Prevalence and quantitation of species C adenovirus DNA in human mucosal lymphocytes.</a> J Virol. 76, 10608-10616 (2002).</li>
<li>Perez, M. E., Billordo, L. A., Baz, P., Fainboim, L., Arana, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+memory+B+cells+isolated+from+blood+and+tonsils+are+functionally+distinctive%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Human memory B cells isolated from blood and tonsils are functionally distinctive.</a> Immunol Cell Biol. 92, 882-887 (2014).</li>
<li>Cooper, R. J., Yeo, A. C., Bailey, A. S., Tullo, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus+polymerase+chain+reaction+assay+for+rapid+diagnosis+of+conjunctivitis%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Adenovirus polymerase chain reaction assay for rapid diagnosis of conjunctivitis.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 40, 90-95 (1999).</li>
<li>Zhang, Y., Huang, W., Ornelles, D. A., Gooding, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+adenovirus+latency+in+human+lymphocyte+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Modeling adenovirus latency in human lymphocyte cell lines.</a> J Virol. 84, 8799-8810 (2010).</li>
<li>Chomczynski, P., Sacchi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-step+method+of+RNA+isolation+by+acid+guanidinium+thiocyanate-phenol-chloroform+extraction%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+biochem%22%5BJournal%5D)">Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction.</a> Anal. biochem. 162, 156-159 (1987).</li>
<li>Watanabe, T., Yoshizaki, K., Yagura, T., Yamamura, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+antibody+formation+by+human+tonsil+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">In vitro antibody formation by human tonsil lymphocytes.</a> J Immunol. 113, 608-616 (1974).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bu protokolün sonucunu etkileyen en önemli faktörlerden biri başlangıç ​​malzemesi olarak taze tonsil malzeme kullanılmasıdır. Bu nedenle, bademcik örnekleri ameliyat sonrası 3 saat içinde işlenmelidir. Bademcikler yetişkinler hem de çocuklar elde edilebilir. Çocuklar bademcik malzeme nedeniyle bademcik (tonsillotomy) kısmi cerrahi olarak çıkarılması genellikle küçüktür. Bu nedenle, çok uluslu sayısı az tonsillektomi örneklerinde (1 x 10 8 -2 x 10 9) karşılaştırılır tonsillotomy örneklerinde (1 x 1...

Bademcikler, üst aero-sindirim sistemindeki epitelin altında ve onunla temas halinde olan, tam olarak kapsüllenmemiş lenfoid doku koleksiyonlarıdır. Genellikle "bademcikler" terimi, farenksin oral kısmının yan duvarlarında yer alan palatin bademcikleri ifade eder. Eşleştirilmiş palatin bademcikler, nazofaringeal bademcik (adenoid), eşleştirilmiş tubal bademcikler ve lingual bademcikler ile birlikte "Waldeyer halkası" olarak adlandırılır. Sonuncusu, solunan veya yutulan patojenler ile aerosindirim sisteminin lenfoid dokuları arasındaki ilk temastan sorumludur1,2. Gerçekten de, çok sayıda rapor, palatin bademcik dokusu örneklerinde2-6 hem bakteriyel hem de viral antijenlerin tespit edilebileceğini göstermiştir.
Palatin bademcikler, tabakalı skuamöz, keratinize olmayan bir epitel ile kaplı yoğun lenfoid dokudan oluşur. Bademcikler, parankimmaya nüfuz ederek yüzey alanını artıran çok sayıda kript, epitel istilasına sahiptir. Histolojik olarak, palatin bademcikler, B hücresi olgunlaşması ve farklılaşması (B hücresi alanları) bölgeleri olan germinal merkezlere sahip çok sayıda lenfoid folikül içerir. Benzer şekilde, palatin bademcikler, esas olarak ekstrafoliküler bölgelerde (T hücresi alanları) bulunan T hücrelerini kapsar. B ve T hücrelerine ek olarak, palatin bademciklerde çeşitli foliküler dendritik hücreler de tespit edilebilir1,2. 
Anatomik yerleşimleri nedeniyle palatin bademciklere cerrahi müdahalelerle kolayca ulaşılabilir durumdadır. Örneğin, tonsillektomi olarak bilinen bademciklerin cerrahi olarak çıkarılması dünya çapında rutin olarak yapılmaktadır7. Bademcik hiperplazisi olan çocuklarda, bazen bademciklerin kısmi cerrahi olarak çıkarılması (tonsillotomi) kullanılır ve bu da hastalara ameliyat sonrası daha az ağrıya neden olur. Bademciklerde çeşitli patojenlerin birikimi göz önüne alındığında, cerrahi olarak çıkarılan bademcikler, viral ve bakteriyel ajanların bademcik lenfosit fonksiyonları üzerindeki etkisini incelemek için eşsiz bir fırsat sağlar2,8. Ayrıca, bazı patojenlerin belirli hücre alt popülasyonlarında bulunmayı tercih edip etmediğini incelemek mümkündür9. Ek olarak, bademcikler B lenfositleri açısından zengin bir kaynak olduğundan, izole edilmiş bademcik B lenfositleri, farklı B hücresi alt popülasyonlarının aktivitesini incelemek için verimli bir şekilde kullanılabilir10. Bununla birlikte, palatin bademcikler hücre tiplerinin bir karışımını içerdiğinden, farklı hücre alt popülasyonlarını ayırmak için etkili bir yönteme ihtiyaç vardır. 
Burada, manyetik olarak aktive edilen hücre ayırma tekniği kullanarak insan palatin bademciklerinden tonsiller B ve T hücre popülasyonlarının verimli ve hızlı bir şekilde izole edilmesi için basit bir yöntemi açıklıyoruz (Şekil 1). Burada açıklanan yöntem, palatin bademcikler gibi insan lenfoid organlarında farklı enfeksiyöz ajanların rolünü değerlendirmek isteyen bilim adamları için yararlıdır.

<table><tbody><tr><td>Hanks dengeli tuz çözeltisi (HBSS)&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>14175-053</td><td>%5 fetal sığır serumu (FBS), 10 mM Glutamin,&nbsp; &nbsp; &nbsp; içerir; 0.05 mg/ml Gentamisin ve %1 Antibiyotik-Antimikotik karışımı</td></tr><tr><td>Donma ortamı</td><td></td><td></td><td>%90 FBS ve %10 DMSO</td></tr><tr><td>MACS tamponu</td><td></td><td></td><td>PBS (pH 7.2), %0.5 BSA ve 2mM EDTA</td></tr><tr><td>PBSA&nbsp;</td><td></td><td></td><td>%0.2 BSA içeren PBS</td></tr><tr>,<td>PFA</td><td></td><td></td><td>%1 paraformaldehit (PFA) içeren PBS. Taze yap. PFA'nın kanserojen olduğundan şüphelenilir. Eldiven ve gözlük takın.</td></tr><tr><td>Antibiyotik-Antimikotik karışımı</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>60 mm Petridish</td><td>Nunc</td><td>150326</td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon foreceps</td><td>Fisher Scientific</td><td>1381241</td><td></td></tr><tr><td>Düz iris makası&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>12912055</td><td></td></tr><tr><td>tek kullanımlık neşterler</td><td>Swann-Morton</td><td>REF 0501</td><td></td></tr><tr><td>100 & m plastik hücre süzgeci</td><td>Corning Yaşam Bilimleri</td><td>352360</td><td></td></tr><tr><td>40 &mu; M Plastik Hücreli Süzgeçler&nbsp;</td><td>Corning Yaşam Bilimleri</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>2 ml plastik şırınga</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td></td><td></td>300185</tr><tr><td>15 ml konik santrifüj tüpleri</td><td>SARSTEDT</td><td>62554502</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik santrifüj tüpleri</td><td>SARSTEDT</td><td>62547254</td><td></td></tr><tr><td>Sabit açılı veya döner kova rotorlu düşük hızlı santrifüj</td><td>Thermo Scientific Heraeus Megafuge 16R</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ficoll&ndash; Hypaque</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F5415-50ML</td><td>Ficoll çözeltisi</td></tr><tr><td>Fetal buzağı serumu</td><td>Biyolojik endüstriler</td><td>040071A</td><td></td></tr><tr><td>Dimetil sülfoksit (DMSO)</td> <td>SIGMA</td><td>D2650-5X5ML</td><td></td></tr><tr><td>MACS MS sütunları&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td><td></td></tr><tr><td>MACS insan CD3 Mikro Boncuklar</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-092-881</td><td></td></tr><tr><td>MACS ayırıcı (Octo MACS)</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-109</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serum Albümini (BSA)</td><td>Merck Millipore 1120180100</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>AnalaR NORMAPUR</td><td>20302.293</td><td></td></tr><tr><td>CD2 allofikosiyanin ( CD2-APC)&nbsp;</td><td>BD Biyobilimler & nbsp;</td><td></td><td></td>560642</tr><tr><td>CD20, floresein izotiyosiyanat (CD20-FITC) ile konjuge edilmiştir.</td><td>BD Biyobilimler & nbsp;</td><td></td><td></td>556632</tr><tr><td>İnsan serumu&nbsp;</td><td>Rockland İmmünokimyasallar</td><td>D119-0100</td><td></td></tr><tr><td>Phusion Yüksek Sadakatli DNA Polimeraz</td><td>Thermo Scientific</td><td>F-530L</td><td></td></tr><tr><td>FACS tüpleri</td><td>BD Falcon</td><td>352003</td><td></td></tr><tr><td>Kriyotüp</td><td>SARSTEDT</td><td>72379</td><td></td></tr><tr><td>BD LSRII akış sitometresi</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD FACSDiva 4.1 yazılımı</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nükleospin Kanı&nbsp;</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740951.50</td><td>DNA izolasyon kiti</td></tr><tr><td>TRIzol&nbsp; reaktif</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>15596</td><td>RNA izolasyon reaktifi</td></tr><tr><td>Hemositometre</td><td>Paul Marienfeld GmbH & Co. KG</td><td>0610030</td><td>hücresi sayma cihazı</td></tr><tr><td>GelRed</td><td>Biotium</td><td>41003</td><td>Nükleik asit jel boyası&nbsp;</td></tr></tbody></table>

İnsan palatine bademcikler b ve t lenfosit için verimli İzolasyon protokolü

Efficient Isolation Protocol for B and T Lymphocytes from Human Palatine Tonsils

Bademcikler, solunan patojenlere karşı ilk savunma hattını sağlayan bağışıklık sisteminin bir parçasını oluşturur. Genellikle "bademcikler" terimi, farenksin oral kısmının yan duvarlarında yer alan palatin bademcikleri ifade eder. Cerrahi olarak çıkarılan palatin bademcikler, yabancı patojenler ve konakçı bağışıklık sistemi arasındaki etkileşimi incelemek için uygun ve erişilebilir bir B ve T lenfosit kaynağı sağlar. Bu video protokolü, cerrahi olarak çıkarılan insan palatin bademciklerinin diseksiyonunu ve işlenmesini, ardından aynı doku örneğinden tek tek B ve T hücre popülasyonlarının izolasyonunu açıklar. Bu çalışmada, tonsiller B ve T lenfositlerini antikora bağımlı bir afinite protokolü kullanarak etkili bir şekilde ayıran bir yöntem sunulmaktadır. Ayrıca, insan adenovirüsünün özellikle bademcik T hücresi fraksiyonunu enfekte ettiğini göstermek için bu yöntemi kullanıyoruz. Oluşturulan protokol, tonsiller immün yanıtlarda farklı patojen türlerinin rolünü incelemek için tonsiller B ve T hücre popülasyonlarını verimli ve hızlı bir şekilde izole etmek için genellikle uygulanabilir.

B ve T lenfositlerinin yüksek oranda saflaştırılmış alt popülasyonlannda tonsil uluslu şirketlerin sonuçların verimli bir ayırma. Bu B ve T lemfosit popülasyonları sırasıyla (Şekil 3A) tespit etmek için bir anti-CD20 ve anti-CD2 antikorları kullanılarak FACS analizi ile teyit edilmiştir. Bunun aksine, B ve T lenfosit alt (Şekil 3B) hem de bir hücre karışımı hücre fraksiyonlarında uluslu şirketlerin sonuçların etkisiz bir ayrılması. İzole bademciği B ve T lim...

Palatin bademcikler B ve T lenfositleri açısından zengin bir kaynaktır. Burada, B ve T lenfositlerini insan palatin bademciklerinden izole etmek için kolay, verimli ve hızlı bir protokol sunuyoruz. Açıklanan yöntem, bademcik iltihabı olarak bilinen bademcik iltihabının viral etiyolojisi üzerine yapılan çalışmalar için özel olarak uyarlanmıştır.

İnsan Palatine Bademcikler B ve T Lenfosit için Verimli İzolasyon Protokolü

Tonsils form a part of the immune system providing the first line of defense against inhaled pathogens. Usually the term &#8220;tonsils&#8221; refers to ...

Bu prosedürün genel amacı, insan tonsil örneklerinden BNT lenfosit fraksiyonları elde etmektir. Bu yöntem, cerrahi olarak çıkarıldıktan sonraki üç saat içinde gerçekleştirildiğinde, viral hastalıkların patogenezinde BT lenfosit fraksiyonlarının rollerinin neler olduğu gibi viroloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Tonsil dokusunu, takviyeler içeren buz gibi soğuk, steril HBSS ile doldurulmuş 50 mililitrelik bir santrifüj tüpü içerisinde laboratuvara nakledin.Ardından, insan dokusuyla çalışmak için önerilen uygun biyogüvenlik prosedürleri uygulanır. Doku, HBSS içeren taze takviye ile nemlendirilir ve bademcikler buz üzerinde 60 milimetrelik plastik bir hücre kültürü plağına aktarılır. Pens kullanılarak görünen tüm kan pıhtıları veya yağlı ve bağ dokuları temizlenir ve ardından bademcikler, takviyeli 5 ml HBSS içeren yeni bir 60 milimetrelik plağa aktarılır.Ardından, bademcik dokusu kümesini 3 ila 10 milimetrelik parçalara bölün; ardından bu parçaları, plastik bir şırınganın piston ucunu kullanarak, 10 mililitre takviyeli taze HBSS içeren yeni bir 60 milimetrelik hücre kültürü plağındaki 100 mikrometrelik plastik hücre süzgecine nazikçe aktarın. Bademcik parçalarının HBSS içinde tamamen daldırılmış olduğundan emin olarak, doku parçalarını hücre süzgecinden bastırarak geçirin; tüm doku masere edildiğinde süzgeci atın ve elde edilen hücre süspansiyonunu buz üzerinde 50 mililitrelik plastik bir santrifüj tüpüne aktarın.Hücre çözeltisini, takviyeler içeren taze HBSS ile 35 mililitre son hacme getirin ve ardından birkaç 50 mililitre konik tüpe oda sıcaklığında 10 mililitre yoğunluk gradyanı çözeltisi ekleyin. Çözeltileri karıştırmamaya dikkat ederek hücre süspansiyonlarını yoğunluk gradyanlarının üzerine nazikçe ekleyin ve ardından hücreleri santrifüjle ayırın. Mononükleer hücreler, eritrositler, fibroblastlar ve hücre kalıntılarının tüpün dibindeki çökelmede yer aldığı arayüzde, kabarık beyaz bir tabaka şeklinde ayrılacaktır.10 mililitrelik bir pipet kullanarak, mononükleer hücre tabakasını dikkatlice toplayın ve mononükleer hücreleri yeni bir 50 mililitrelik tüpe aktarın. Ardından, hücreleri her yıkama için 25 mililitre buz gibi soğuk PBS ile üç kez yıkayın ve son peleti 15 mililitre PBS içinde yeniden süspande edin. Canlı hücre sayısını belirledikten sonra, manyetik boncuk ayrıştırması ile tonsil T hücrelerini izole etmek için hücreleri buza yerleştirin.Mononükleer hücre süspansiyonunu santrifüjleyin ve peleti, her 1x10⁷ hücre için 80 µL buz gibi soğuk ayırma tamponunda yeniden süspanse edin. Ardından hücre süspansiyonunu steril bir 2 mL tüpe aktarın ve hücreleri süspansiyonda tutmak için sürekli nazik karıştırma ile 4 °C'de bir saat boyunca 20 µL CD3 manyetik antikoru ile inkübe edin. İnkübasyonun sonunda, hücreleri 5 mL buz gibi soğuk ayırma tamponu içeren 15 mL'lik bir tüpe aktarın ve yıkayın. Yıkama sırasında, manyetik ayırıcıyı standa sabitleyin ve mıknatıs üzerine bir kolon yerleştirin.Kolonu 500 µL buz gibi soğuk ayırma tamponu ile yıkayın ve ardından kolonun üzerine 40 µm'lik bir süzgeç yerleştirin. Şimdi hücre pelletini 500 µL taze ayırma tamponu içinde yeniden süspanse edin ve hücreleri süzgeç aracılığıyla kolona yükleyerek B hücresi içeren EIT'yi 15 mL'lik konik tüpe toplayın. Tüm hücreler toplama tüpüne geçtiğinde hemen buza koyun.Kolonu, her bir 10⁷ hücre için 500 µL ayırma tamponu ile dört kez yıkayın ve bir sonraki yıkama işlemine geçmeden önce kolon rezervuarının boşalmasını bekleyin. Son yıkamanın ardından, kolonu yeni bir 15 mL toplama tüpüne aktarın. Daha sonra, CD3 pozitif T hücresi fraksiyonunu toplamak için kolon pistonunu kullanarak 2 mL ayırma tamponunu kolon üzerinden tüpe itin.İzole edilen B ve t tonsor hücre fraksiyonlarını analiz etmek için, CD3 pozitif ve CD3 negatif hücre fraksiyonlarını peletleyin ve ikinci santrifüjden sonra her iki hücre setini 0.2%BSA takviyeli 1 mL PBS veya PBSA ile yıkayın. Hücrelerin ve PBSA'nın 100 µL'lik alikotlarını FACS etiketleme için uygun sayıda tüpe dağıtın ve her tüpe uygun miktarda fluoro 4 konjuge monoklonal veya kontrol antikoru ekleyin. Ardından tüpleri kısa süreli vorteksleyin ve 4 °C'de karanlıkta 30 dakika boyunca inkübe edin.Tüpleri iki kez taze PBSA ile yıkayın ve ardından hücrelerdeki adenovirüs DNA varlığını PCR ile tespit etmek için hücre boyamasını %1 paraformaldehit ile sabitleyin. PCR amplifikasyonunu uygun döngü koşulları altında gerçekleştirin ve elde edilen PCR amplifikasyon ürünlerini %1,5 AGROS jel ve interestate EDTA tamponunda ayırın. Son olarak, ortaya çıkan bantları uygun bir nükleik asit boyası ile görselleştirin.Standart protokollere göre, tonsil mononükleer hücrelerinin başarılı bir şekilde ayrıştırılması, sırasıyla B ve T lenfosit popülasyonlarını tespit etmek için anti CD 20 ve anti CD 2 antikorları kullanılarak yapılan akış sitometrik analizle doğrulandığı üzere, yüksek derecede saflaştırılmış B ve T lenfosit alt popülasyonları ile sonuçlanır. Buna karşılık, mononükleer hücrelerin yetersiz ayrıştırılması, hem B hem de T lenfosit alt popülasyonlarından oluşan hücre karışımları şeklinde hücre fraksiyonları ile sonuçlanır. Az önce gösterildiği gibi, sonraki analizler için manyetik boncukla ayrıştırılmış B ve T lenfositlerinden DNA ve RNA ekstrakte edilebilir.Örneğin burada, PCR ile tespit edilen TONSOR T lenfositlerinde adenovirüs DNA'sının spesifik tespiti sitoplazmik kaliteyle gösterilmiştir. İzole edilmiş tonsor B NT lenfositlerinden de RNA ekstraksiyonu yapılabilir. Teknik düzgün bir şekilde uygulandığında, bir kezde iki tonsil örneği altı saat içinde işlenebilir.Bu prosedürü uygularken, tonsil örneklerini mümkün olan en hızlı şekilde işlemek önemlidir. Yıkama adımlarının sayısı ve yıkama tamponunun hacmi de iyi bir sonuç için kritik parametrelerdir. Bu prosedürün ardından, viral DNA ve mRNA'nın kantitatif varlığına dair ek soruları yanıtlamak için QPCR ve R-T-Q-P-C-R gibi diğer yöntemler uygulanabilir.Bu teknik, viroloji alanındaki araştırmacıların farklı viral türlerin insan lenfoid dokularındaki patogenezini ve latansını incelemelerinin yolunu açmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, insan tonsil örneklerinden BT lenfosit fraksiyonlarının nasıl izole edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Kan ve dokular gibi taranmamış insan kaynaklı materyallerle çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın.Bu nedenle, uygun güvenlik uygulamalarına uyulmalıdır.

efficient-isolation-protocol-for-b-t-lymphocytes-from-human-palatine

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Miltenyi MAC kiti kullanılarak lenfositlerin İzolasyon tüm lenfoid doku homojenatlarında hücreleri arındırmak için güvenilir bir yol. Miltenyi sistemini kullanarak saflaştırılmış Hücreler genellikle ≥% 96 saf. Burada, CD4 + T hücreleri, Miltenyi tarafından sunulan birçok kitleri biri izole etmek için atılan adımları göstermektedir.

CD4 İzolasyon Miltenyi MACS Arıtma Fare lenf düğümleri + T hücreleri

Bu yazıda, tümör infiltre lökositlerin oldukça saflaştırılmış nüfusu izole edilmesi için bir protokol tanımlamaktadır. Bu protokol, karmaşık tümör doku hücreleri izole edilmesi için, verim ve saflıkta geliştirmek için Miltenyi Biotech protokolü uyarlanmıştır.

Primer Tümörler gelen Bağışıklık Hücre İzolasyonu

Bu videoda, B olmayan hücrelere özgü biyotinile antikorlar ve streptavidin konjuge manyetik mikro boncuklar kullanarak B hücrelerinin insan periferik kanından izolasyonunu gösteriyoruz.

İnsan Periferik Kanından B Hücrelerinin İzolasyonu ve Saflaştırılması

Diğer T hücresi alt kümelerinin farklı efektör işlevleri ile, Th17 hücreleri merkezi inflamatuar otoimmün implike edilmiştir. Bu in vitro Th17 farklılaşma protokolü naif CD4 + T lenfositleri Th17 hücrelerine ayırt edebilir, ve daha fazla otoimmün ve konak cevabı rollerini incelemek belirlemek için bir araç sağlar.

İzolasyon ve naif CD4 T Lenfositler Th17 Farklılaşma

Bu protokol, antijen yoğunluğuna tek bir hücre süspansiyonu santrifüj ve ilgi hücre popülasyonlarının son olarak manyetik ve / veya FACS ayıklama, ardından doku enzimatik sindirimi farklı adımları ile insan timus hücreleri sunan izole etmek için bir yöntem göstermektedir.

İnsan Thymus ile myeloid dendritik hücreleri ve epitel hücreleri İzolasyonu

Burada, yakın zamanda gösterdiğimiz gibi, ekstratimik bir αβ T hücresi progenitörü olan periferik Vδ1+CD4+ T hücrelerinin kıt T hücresi varlığının izolasyonu ve klonlanması için optimize edilmiş bir protokol sunuyoruz. Bu teknik, bu hücrelerin ex vivo kültürde kantitatif olarak izole edilmesine, klonlanmasına ve verimli bir şekilde genişletilmesine izin verir.

İzolasyon ve<em&gt; Ex Vivo</emVδ1 of&gt; Kültür<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt; γδ T hücrelerinin bir Extrathymic αβT hücre Progenitör

İnsan periferik kanı, humoral immün yanıtın değerlendirilmesi için yaygın olarak kullanılır. Burada, insan B hücrelerini periferik kandan izole etme, insan B hücrelerini kültürde antikor (Ab) salgılayan B hücrelerine (ASC'ler) ayırma ve bir ELISpot testi ile toplam IgM ve IgG-ASC'leri numaralandırma yöntemleri açıklanmaktadır.

İzolasyon, Farklılaşma ve Niceleme İnsan Kanı B Hücreleri Antikor salgılayan: ELISPOT Hümoral Bağışıklık bir Fonksiyonel Göstergesi&#39;nin olarak

Lenfositler, adaptif immün yanıtlarda ana oyunculardır. Burada, in vitro ve in vivo lenfosit aktivasyonunda istenen moleküllerin fizyolojik fonksiyonlarını belirlemek için bir lenfosit saflaştırma protokolü sunuyoruz. Açıklanan deneysel prosedürler, kontrol ve genetik olarak değiştirilmiş lenfositler arasındaki fonksiyonel kapasiteleri karşılaştırmak için uygundur.

İzolasyon ve murin lenfositlerin aktivasyonu

Burada biz lenfositler gut ilişkili lenfoid doku Peyer's yamalar ve boşaltma Mezenterik lenf düğümleri de dahil olmak üzere İndüktif sitelerinden ve lamina propria dahil efektör mekanları ekran koruyucu yalıtım için detaylı bir protokol tanımlamak ve bağırsak epitel küçük bağırsak bağışıklık sisteminin.

Lenfositler fare küçük bağırsak bağışıklık sistemi yalıtma

Bu çalışmada, biz bir roman ve lenfositlerin izolasyonu için etkili iletişim kuralı Peyer's yamalar (PPs), daha sonra in vivo ve in vitro fonksiyonel deneyleri için hem de akış sitometrik çalışmalar foliküler t kullanılabilir sunmak yardımcı ve germinal Merkez B hücreleri.

Humoral bağışıklık çözülen anahtar oyuncular: gelişmiş ve lenfosit yalıtım antikorundan Peyer's yamalar iletişim kuralından en iyi duruma getirilmiş

Bu protokolde, kısmi cerrahi tonsillektomi uygulanan sağlıklı insanlardan bademcikler mononükleer hücrelerin invazyon asyonunu inceleyip mukozal dokularda viral enfeksiyonu taklit etmek için nasıl kolayca işleyip kültürlendirilebileceğimizi açıklıyoruz.

Bademcikler Mononükleer Hücrelerin İzolasyon Ex Vivo Doğuştan Gelen Bağışıklık Yanıtları Bir İnsan Mukozal Lenfoid Doku Çalışma

Öğrenin, insan palatine bademciklerinden B ve T lenfositleri hızlı bir şekilde izole etmek için bu etkili protokolü. Bu yöntem, viral bademcik iltihabının patogenezindeki bağışıklık hücreleri rollerini incelemek için araştırmacılara yardımcı olur.

İnsan Palatine Bademcikler B ve T Lenfosit için Verimli İzolasyon Protokolü

Daha fazla video keşfet