Name: Modelleme Kemoterapi Dayanıklı Lösemi İn Vitro (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Keşfedin kemoterapi dirençli akut lenfoblastik lösemi modellemesi için in vitro ko-kültür yöntemini. İnsan kemik iliği stromal hücreleri kullanarak klinik olarak dirençli lösemi hücreleri üretin ve yeni tedavileri değerlendirin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ulusal Sağlık Enstitüleri (NHLBI) R01 HL056888 (LFG), Ulusal Kanser Enstitüsü (NCI) RO1 CA134573NIH (LFG), P30 GM103488 (LFG), WV CTR-IDEA NIH 1U54 GM104942, Alexander B. Osborn Hematopoetik Malignite ve Transplantasyon Programı ve WV Araştırma Güven Fonu tarafından desteklenmektedir. NIH S10-OD016165 ve Ulusal Sağlık Enstitüleri NIH Genel Tıp Bilimleri Enstitüsü'nden (CoBRE P30GM103488 ve INBRE P20GM103434) Kurumsal Gelişim Ödülü (IDeA) tarafından desteklenen Dr. Kathy Brundage'ın ve West Virginia Üniversitesi Akış Sitometrisi Çekirdek Tesisi'nin desteği için minnettarız.

1. Gelişmiş Hazırlık <ol><li> dekstran G10 parçacıklarının hazırlanması. <ol><li> 10 g G10 parçacıklarına PBS 1X 50 ml ekleyerek G10 bulamaç hazırlanır. tersine çevirerek karıştırın ve G10 4 ° CO / N fosfat tamponlu salin (PBS) üzerinden yerleşmek için izin verir. </li><li> G10 sütun ayrılık günü, yerleşmiş G10 parçacıklar aspirat PBS ve 50 ml taze PBS ekleyin. tersine çevirerek karıştırın. Kullanıma hazır olana kadar 4 ° C&#39;de yerleşmiş G10 parçacıklar ve saklamak için 50 ml taze PBS eklenerek, iki kez tekrarlayın. </li></ol></li><li> BMSC ve OB Kültürleme. <ol><li> % 90 kaynaşma elde edilene kadar% 6 CO2 ve 10 cm doku kültürü plakaları üzerinde büyütülmüş, 37 ° C &#39;de BMSC veya OB hem koruyun. </li><li> Yeni 10 cm plakalar üzerine 2: Trypsinize BMSC veya OB hücreleri ve 1 ayrıldı. lösemi ko-kültür için gerekli olana kadar hücreleri bu standartlara göre yetiştirilir. </li></ol></li></ol> 2. oluşturulması ve Co-kültür bakımı <ol><li> 5-20 x 10 6 lösemi hücreleri ekleyin in,% 80-% 90 konfluent BMSC veya OB plakasına tümöre özgü kültür ortamı 10 mi. NOT: Lab daha% 1 ila% 7 16-18 arasındadır gösterilmiştir kemik iliği mikro-özetlemek için,% 5 O2, 37 ° C &#39;de ko-kültürler tutar. Ancak, bu oksijen gerilimi ile ortak kültürlerini koruyarak üç lösemi alt popülasyonlar kurulması için kritik değildir ve laboratuar takdirine bağlıdır. </li><li> Her 4. gün (süspansiyon lösemik hücreler de dahil olmak üzere), 1 ml&#39;lik ortam, ancak kaldırmak ve 9 ml taze lösemi kültür ortamı ile değiştirin. plakadan medya 9 ml çıkarırken, BMSC veya OB yapışık katman rahatsız etmemek için dikkatli olun. <ol><li> plaka köşesinde yan ve aspirat medya plaka eğerek ortamı çıkarın. Taze medya ekleyerek, ayrıca, BMSC veya OB yapışık tabakanın en az kesintiye sağlamak için yan duvar karşı plaka köşesinde damla damla eklemeyi unutmayın. </li></ol></li><li> Ko-kültür 12. günün ardından, yaklaşık 5 ila 10 kat çanak up kültür ortamı ve aşağı pipetleme hafifçe çanak üzerinde tarafından BHYK veya OB katmanından lösemik hücreleri yıkayın ve daha sonra 15 ml konik tüp içinde toplamak. aşama 2.1 &#39;de tarif edildiği gibi, yeni% 80-% 90 konfluent BHYK veya OB plaka üzerine reseed. NOT: BMSC veya OB tek tabaka bozmadan S ve PB lösemi hücreleri kaldıracak adım 2.3 açıklandığı gibi ko-kültür yumuşak durulama. Bu, sadece tümör hücreleri aşağıdaki ko-kültür plakasına aktarılır sağlar. Bu 12 gün döngüsü kullanıcı ihtiyaçlarına göre gerektiğinde kadar birçok kez tekrar edilebilir. </li></ol> 3. Hazırlanması G10 Boncuk Sütunlar NOT: Steril aşağı analiz veya kültür G10 sütun ayrılması aşağıdaki gerekiyorsa aşağıdaki adımlar steril tekniği kullanılarak yapılmalıdır ve G10 sütunları steril biyolojik kaputu kurulum olmalıdır. <ol><li> Ön-WARM hücre kültür ortamı, su banyosu içinde 37 ° C (~ 30 mi kolon başına). 10 ml&#39;lik tek kullanımlık şırınga kullanarak, kaldırmak ve pistonu atın. şırınga, cam yünü ekleyin. </li><li> cımbız kullanarak, ince gevşek ipliklerini içine cam yünü dışında çekin. Şırınga 2/3 cam yünü ile dolana kadar şırınga hafifçe dolu cam yünü çoklu katmanlar ekleyin. NOT: cam yünü lösemik hücre toplama kirletmesini gevşek G10 partikülleri önlemek için çok önemlidir. Emin cam yünü G10 parçacıkları desteklemek için yeterli dolu, ama çok yoğun sütun aracılığıyla medya akışını engellemek için dolu değil emin olun. </li><li> kapalı konumda bir şırınganın ucu 1 yollu valf ekleyin. </li><li> halkaya Kelepçe şırınga sütunu yani 50 ml konik tüp (toplama tüp) musluk altına yerleştirilebilir yeterince yüksek duruyor. şırınga sütununda toplama tüpü yerleştirin. </li><li> 10 ml&#39;lik bir pipet üstünde sütun PBS içinde yeniden süspansiyon haline getirildi, G10 parçacıkları ekleme damla damla kullanılmasıcam yünü. cam yünü üzerine G10 partikülleri form (şırınga mezuniyet ile ölçülen) bir p 2 mi pelet kadar G10 parçacıklarının eklenmesi devam edin. </li><li> önceden ısıtılmış medya ile G10 sütun dengeye. <ol><li> sütununa önceden ısıtılmış ortam 2 ml ilave edilir. Bu kadar açık musluk vana yavaş medya damla damla sütunun dışarı akar. </li><li> önceden ısıtılmış ortam 10 ml&#39;lik bir toplam kadar adımı tekrar 3.6.1 sütun karşılaşıncaya edilmiştir. Not: G10 partikülleri toplama tüpü boyunca akış görülen ya 1) + G10 parçacıklarının eklenmesi durumunda ek bir G10 taneciklerinin kolona kaçmasına emin ~ 2 mi pelet korumak ya da 2) kullanılmayan bir ve tekrar ile sütun yerine 3.4-3.6.1 adımları. </li><li> sütunundan önceden ısıtılmış medya tahliye ettikten sonra, stopcock kapatın ve içinden akışı ile toplama tüpü atın. sütununda yeni koleksiyonu tüp ekleyin. Kolon ortamı + hücre karışımı ile yüklenebilir hazırdır. NOT: Kolonlarhemen kullanılmıştır ve kurumaya izin verilmelidir. </li></ol></li></ol> 4. Co-kültür içinde 3 alt popülasyonlar ayırmak <ol><li> Süspansiyon (S) tümör ICSI&#39;nin toplanması. <ol><li> ko-kültür plaka aspire medya pipet ile ve yavaşça plaka yıkayın ve bir 15 ml konik tüp lösemi hücreleri içeren medya toplamak için aynı medya uygulamak yeniden. Toplanan lösemili hücreler S ICSI&#39;nin vardır. </li></ol></li><li> Faz Parlak (PB) tümör ICSI&#39;nin toplanması. <ol><li> ko-kültür plaka üzerine geri 10 ml taze medya ekleyin. yapışık lösemi hücreleri ancak yapışık BMSC / OB bileşeni çıkarmak için yeterince sert değil kaldırmak için yukarı ve aşağı yaklaşık 5 kat eklendi medya pipetleme kuvvetlice çalkalayın. </li><li> pipet ile aspire ve 15 ml konik tüp medya toplamak. Toplanan hücreler PB ICSI&#39;nin vardır. </li></ol></li><li> Faz Dim (PD) tümör ICSI&#39;nin toplanması. <ol><li> rem 1 ml PBS ile durulayın plakaove kalan ortam. 5 dakika için 37 ° C inkübatör içine 3 mi tripsin ve yeri ile tripsinize ko-kültür plakası. </li><li> yapışık BMSC / OB çıkarmak için plakanın kenarlarına dokunun yavaşça inkübatör dışına plakasını çıkarın ve. </li><li> dışında büyük hücre agrega kırmak için 1 ml fetal sığır serumu (FBS) ve pipet yukarı ve aşağı 3-5 kez ekleyin. </li><li> 15 ml konik tüp hücrelerin medyayı toplayın. Bu hücreler de BMSC / OB ile arıtılmamış PD ICSI&#39;nin vardır. </li></ol></li><li> Santrifüj 3 7 dakika boyunca 400 x g&#39;de subpopülasyonunun izole edilmiştir. Aspire ve atın yüzer madde daha sonra tek tek 1 ml önceden ısıtılmış medya pelet tekrar süspansiyon. Hücreler G10 kolona yüklendi hazırdır. </li></ol> G10 Sütun üzerine 5. Yükleme Co-kültür Hücreleri NOT: Emin stopcock olun tamamen G10 sütun medya içeren hücreleri eklemeden önce kapatılır. Ayrıca, her subpopülasyonu introduc öyle değil ayrı bir G10 kolonu üzerinde koştu olmalıdıraşağı analizde nüfus arasında herhangi bir önyargı e. <ol><li> 1.000 ul pipet kullanarak, damla damla ayrı bir G10 sütuna önceden ısıtılmış medya her hücre alt populasyonun 1 ml ekleyin. hücreleri içeren medya üstünde veya G10 pelet içinde kalmasını sağlamak. Hücreler, oda sıcaklığında 20 dakika boyunca G10 pelet üzerinde inkübe izin verin. NOT: musluğu inkübasyon süresince kapalı kalır. </li></ol> 6. G10 Sütun lösemik hücreler Toplama <ol><li> Her G10 sütun 1-3 ml önceden ısıtılmış ortam ekleyin. Açık musluk vana ve medya yavaş yavaş kolon damla damla çıkmak için izin verir. NOT: sütun veya sütun yıkayın ve izole lösemi hücreleri kirletebilir BMSC / OB içeren G10 pelet yavaş akış hızını korumak için çok önemlidir. </li><li> 15 ila 20 ml arasında bir toplam kadar G10 kolonuna küçük artışlarla (1-2 mL) içinde önceden ısıtılmış ortam eklemeye devam sütun içinden geçen ve elde edilmiştir. Yakın musluk valve ve kapak toplama tüpü. NOT: Bir G10 parçacık pelet toplama tüpün dibinde görülürse, yavaşça G10 parçacık pelet rahatsız ve yeni bir tüpe transfer bırakarak tüpten ortamı çıkarın. </li><li> Santrifüj oda sıcaklığında 7 dakika boyunca 400 x g&#39;de medyayı topladı. Süpernatantı ve alt uygulama için uygun tampon hücre pelletini. </li><li> Hücreler artık BHYK veya OB kirlenme serbest lösemi hücrelerinin saf nüfus ve kullanıcı takdirine aşağı uygulamalara uygulanacak hazırız. NOT: G10 sütunlar aracılığıyla hücrelere geçerken lösemi hücre canlılığı değişmeden kalmalıdır. </li></ol>

<ol><li>Ayala, F., Dewar, R., Kieran, M., Kalluri, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+bone+microenvironment+to+leukemogenesis+and+leukemia+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia%22%5BJournal%5D)">Contribution of bone microenvironment to leukemogenesis and leukemia progression.</a> Leukemia. 23 (12), 2233-2241 (2009).</li>
<li>Coustan-Smith, E., Sancho, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+importance+of+minimal+residual+disease+in+childhood+acute+lymphoblastic+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Clinical importance of minimal residual disease in childhood acute lymphoblastic leukemia.</a> Blood. 96 (8), 2691-2696 (2000).</li>
<li>Gaynon, P. S., Qu, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+after+relapse+in+childhood+acute+lymphoblastic+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Survival after relapse in childhood acute lymphoblastic leukemia.</a> Cancer. 82 (7), 1387-1395 (1998).</li>
<li>Kikuchi, M., Tanaka, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+significance+of+minimal+residual+disease+in+adult+acute+lymphoblastic+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Hematol%22%5BJournal%5D)">Clinical significance of minimal residual disease in adult acute lymphoblastic leukemia.</a> Int. J. Hematol. 92 (3), 481-489 (2010).</li>
<li>Krause, D. S., Scadden, D. T., Preffer, F. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hematopoietic+stem+cell+niche-home+for+friend+and+foe%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+B+Clin.+Cytom%22%5BJournal%5D)">The hematopoietic stem cell niche-home for friend and foe?</a> Cytometry B Clin. Cytom. 84 (1), 7-20 (2013).</li>
<li>Meads, M. B., Hazlehurst, L. A., Dalton, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Bone+Marrow+Microenvironment+as+a+Tumor+Sanctuary+and+Contributor+to+Drug+Resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">The Bone Marrow Microenvironment as a Tumor Sanctuary and Contributor to Drug Resistance.</a> Clin. Cancer Res. 14 (9), 2519-2526 (2008).</li>
<li>Nguyen, K., Devidas, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+Influencing+Survival+After+Relapse+From+Acute+Lymphoblastic+Leukemia%3A+A+Children%27s+Oncology+Group+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Leuk.+Off.+J.+Leuk.+Soc.+Am.+Leuk.+Res.+Fund+UK%22%5BJournal%5D)">Factors Influencing Survival After Relapse From Acute Lymphoblastic Leukemia: A Children's Oncology Group Study.</a> Leuk. Off. J. Leuk. Soc. Am. Leuk. Res. Fund UK. 22 (12), 2142-2150 (2008).</li>
<li>Szczepanek, J., Styczyński, J., Haus, O., Tretyn, A., Wysocki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relapse+of+Acute+Lymphoblastic+Leukemia+in+Children+in+the+Context+of+Microarray+Analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Immunol.+Ther.+Exp.+%28Warsz.%29%22%5BJournal%5D)">Relapse of Acute Lymphoblastic Leukemia in Children in the Context of Microarray Analyses.</a> Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.). 59 (1), 61-68 (2011).</li>
<li>Boyerinas, B., Zafrir, M., Yesilkanal, A. E., Price, T. T., Hyjek, E. M., Sipkins, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion+to+osteopontin+in+the+bone+marrow+niche+regulates+lymphoblastic+leukemia+cell+dormancy%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Adhesion to osteopontin in the bone marrow niche regulates lymphoblastic leukemia cell dormancy.</a> Blood. 121 (24), 4821-4831 (2013).</li>
<li>Bradstock, K., Bianchi, A., Makrynikola, V., Filshie, R., Gottlieb, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+survival+and+proliferation+of+precursor-B+acute+lymphoblastic+leukemia+cells+on+human+bone+marrow+stroma%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia%22%5BJournal%5D)">Long-term survival and proliferation of precursor-B acute lymphoblastic leukemia cells on human bone marrow stroma.</a> Leukemia. 10 (5), 813-820 (1996).</li>
<li>Clutter, S. D., Fortney, J., Gibson, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MMP-2+is+required+for+bone+marrow+stromal+cell+support+of+pro-B-cell+chemotaxis%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Hematol%22%5BJournal%5D)">MMP-2 is required for bone marrow stromal cell support of pro-B-cell chemotaxis.</a> Exp. Hematol. 33 (10), 1192-1200 (2005).</li>
<li>Manabe, A., Murti, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion-dependent+survival+of+normal+and+leukemic+human+B+lymphoblasts+on+bone+marrow+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Adhesion-dependent survival of normal and leukemic human B lymphoblasts on bone marrow stromal cells.</a> Blood. 83 (3), 758-766 (1994).</li>
<li>Mudry, R. E., Fortney, J. E., York, T., Hall, B. M., Gibson, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+cells+regulate+survival+of+B-lineage+leukemic+cells+during+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Stromal cells regulate survival of B-lineage leukemic cells during chemotherapy.</a> Blood. 96 (5), 1926-1932 (2000).</li>
<li>Tesfai, Y., Ford, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+between+acute+lymphoblastic+leukemia+and+bone+marrow+stromal+cells+influence+response+to+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Leuk.+Res%22%5BJournal%5D)">Interactions between acute lymphoblastic leukemia and bone marrow stromal cells influence response to therapy.</a> Leuk. Res. 36 (3), 299-306 (2012).</li>
<li>Hathcock, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depletion+of+Accessory+Cells+by+Adherence+to+Sephadex+G-10%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Depletion of Accessory Cells by Adherence to Sephadex G-10.</a> Curr. Protoc. , (2001).</li>
<li>Berniakovich, I., Giorgio, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+oxygen+tension+maintains+multipotency%2C+whereas+normoxia+increases+differentiation+of+mouse+bone+marrow+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Mol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Low oxygen tension maintains multipotency, whereas normoxia increases differentiation of mouse bone marrow stromal cells.</a> Int. J. Mol. Sci. 14 (1), 2119-2134 (2013).</li>
<li>Chow, D. C., Wenning, L. A., Miller, W. M., Papoutsakis, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+pO%282%29+distributions+in+the+bone+marrow+hematopoietic+compartment.+II.+Modified+Kroghian+models%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Modeling pO(2) distributions in the bone marrow hematopoietic compartment. II. Modified Kroghian models.</a> Biophys. J. 81 (2), 685-696 (2001).</li>
<li>Holzwarth, C., Vaegler, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+physiologic+oxygen+tensions+reduce+proliferation+and+differentiation+of+human+multipotent+mesenchymal+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Low physiologic oxygen tensions reduce proliferation and differentiation of human multipotent mesenchymal stromal cells.</a> BMC Cell Biol. 11, (2010).</li>
<li>O'Leary, H., Akers, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VE-cadherin+Regulates+Philadelphia+Chromosome+Positive+Acute+Lymphoblastic+Leukemia+Sensitivity+to+Apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Microenviron.+Off.+J.+Int.+Cancer+Microenviron.+Soc%22%5BJournal%5D)">VE-cadherin Regulates Philadelphia Chromosome Positive Acute Lymphoblastic Leukemia Sensitivity to Apoptosis.</a> Cancer Microenviron. Off. J. Int. Cancer Microenviron. Soc. 3 (1), 67-81 (2010).</li>
<li>Wang, L., Chen, L., Benincosa, J., Fortney, J., Gibson, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-induced+phosphorylation+of+Bcl-2+influences+B+lineage+leukemic+cell+response+to+apoptotic+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia%22%5BJournal%5D)">VEGF-induced phosphorylation of Bcl-2 influences B lineage leukemic cell response to apoptotic stimuli.</a> Leukemia. 19 (3), 344-353 (2005).</li>
<li>Wang, L., Coad, J. E., Fortney, J. M., Gibson, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-induced+survival+of+chronic+lymphocytic+leukemia+is+independent+of+Bcl-2+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia%22%5BJournal%5D)">VEGF-induced survival of chronic lymphocytic leukemia is independent of Bcl-2 phosphorylation.</a> Leukemia. 19 (8), 1486-1487 (2005).</li>
<li>Jing, D., Fonseca, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cells+in+co-culture+with+mesenchymal+stromal+cells--modeling+the+niche+compartments+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cells in co-culture with mesenchymal stromal cells--modeling the niche compartments in vitro.</a> Haematologica. 95 (4), 542-550 (2010).</li>
<li>Jing, D., Wobus, M., Poitz, D. M., Bornhäuser, M., Ehninger, G., Ordemann, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen+tension+plays+a+critical+role+in+the+hematopoietic+microenvironment+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Oxygen tension plays a critical role in the hematopoietic microenvironment in vitro.</a> Haematologica. 97 (3), 331-339 (2012).</li>
</ol>

Yazarların birbiriyle rekabet eden hiçbir mali çıkarı yoktur.

Hastalığın nüks katkıda minimal rezidüel hastalık (MRD) HEPSİ agresif refrakter tedavisinde önemli bir klinik sorundur, yanı sıra, diğer hematolojik maligniteler bir ev sahibi olmaya devam ediyor. Kemik iliği mikro TÜM 3,8 nüks en sık sitedir. Bu nedenle, kemik iliği mikro modeli modelleri kemoterapi maruziyeti sırasında lösemili tümör hücre canlılığı ve MRD bakımı ile ilgili hipotezleri test etmek için hayati araçlardır. fare modelleri uyuşturucu etkinliği ile ilgili test soruları için altın standart tanımla...

Açıklanan yöntemin genel amacı, kemoterapiye maruz kalma sırasında lösemik hücrelerin kemik iliği destekli sağkalımının altında yatan mekanizmaların araştırılmasını destekleyen verimli, uygun maliyetli bir in vitro yaklaşım sağlamaktır. Tedaviden sonra devam eden hayatta kalan kalıntı tümör hücrelerinin, genellikle tanı sırasındakinden daha agresif olan ve genellikle daha az etkili bir şekilde tedavi edilen hastalığın nüksetmesine katkıda bulunduğu iyi belgelenmiştir1-8. Terapötik yaklaşımların test edilmesi için yalnızca ortamdaki hücre kültürüyle sınırlı olanlar gibi izolasyonda lösemik hücreleri içeren modeller, bu kritik sinyalleri veya niş hücrelerle çok spesifik etkileşimlere sahip tümör hücresi alt popülasyonlarının gelişmiş koruma elde ettiği niş türetilmiş ipuçlarının mevcudiyetine yanıt olarak ortaya çıkan hastalığın heterojenliğini hesaba katmaz. Kemik iliğinden türetilmiş stromal hücreleri ve lösemik hücreleri birlikte kültürleyen standart 2D ko-kültür modelleri, kemik iliği nişinin katkısını bir şekilde ele almış ve kemik iliği mikroçevre hücreleri ile etkileşimin kemoterapiye dirençlerini arttırdığını ve büyüme özelliklerini değiştirdiğini göstermiştir9-14. Bununla birlikte, bu modeller genellikle tümör hücrelerinin uzun süreli sağkalımını özetlemekte başarısız olur ve MRD'ye katkıda bulunan en dirençli lösemik hücre popülasyonları ile ilişkili sonuçları doğru bir şekilde bilgilendirmez. İn vivo modeller kritik olmaya devam etmekte ve klinik çalışmalardan önce yenilikçi tedavilerin araştırılması için "altın standardı" tanımlamaktadır, ancak genellikle dirençli tümörler ve hastalığın nüksetmesi ile ilgili hipotezleri test etmek için gereken zaman ve maliyet ile karşı karşıya kalmaktadırlar. Bu nedenle, daha bilgilendirici 2D modellerin geliştirilmesi, sonraki murin tabanlı klinik öncesi tasarımın tasarımını daha iyi bilgilendirmek için pilot araştırmalar için faydalı olacaktır. 
Bu raporda sunulan 2D in vitro model, gerçek in vivo mikroçevrenin karmaşıklığından yoksundur, ancak tümör hücrelerinin kemorezit alt popülasyonunun zenginleşmesine özel olarak katkıda bulunan mikroçevre ile tümör etkileşimlerini sorgulamak için uygun maliyetli ve tekrarlanabilir bir araç sağlar. Bu ayrım değerlidir, çünkü tüm tümör hücresi popülasyonunun değerlendirilmesi, en önemli hedefi oluşturan tedaviye dirençli tümör hücrelerinin küçük bir grubunun fenotipini maskeleyebilir. Ek bir avantaj, modelin ilgi analizine uyacak şekilde ölçeklenebilirliğidir. Tümör hücrelerinin önemli ölçüde geri kazanılmasını gerektiren analizler için toplu kültürler oluşturulabilirken, çok kuyucuklu plakalardaki küçük ölçekli ko-kültürler PCR tabanlı analiz veya mikroskopi tabanlı değerlendirmeler için kullanılabilir. 
Bu ihtiyaca dayanarak, B-soy akut lenfoblastik löseminin (ALL) karakteristiği olan hastalığın heterojenliğini ele almak için bir in vitro model geliştirdik. Sağlıklı muadilleriyle birçok ortak özelliği paylaşan ALL hücrelerinin, BMSC veya OB ko-kültürünün farklı bölmelerine lokalize olduğunu gösteriyoruz. Terapötik yanıtın araştırılması için değerli olan farklı fenotiplere sahip üç tümör hücresi popülasyonu üretilir. Spesifik olarak, ko-kültürün "faz dim" (PD) popülasyonundan geri kazanılan (ALL) hücrelerin, sitotoksik ajanlara maruz kalmamış tümör hücrelerine yaklaşan sağkalım ile tedaviye tutarlı bir şekilde dirençli olduğunu gösteriyoruz. Bu ALL hücreleri, yerleşik hücre hatlarından veya birincil hasta örneklerinden, yapışık stromal hücrelerin veya osteoblast katmanlarının altına göç eder, ancak kültürlerin tripsinizasyonu ve jel tip 10 çapraz bağlı dekstran (G10) partikül kolonları15 kullanılarak hücre tiplerinin ayrılmasının ardından yakalanabilir. 
Burada, kemik iliği mikroçevresi, stromal hücreler (BMSC/OB) ve lösemik hücreler arasındaki etkileşimleri modellemek için kullanılabilecek bir 2B ko-kültür kurulumu sunuyoruz. Lösemik hücrelerin stromal hücre tek tabakasına göre üç uzamsal alt popülasyon oluşturduğu ve PD popülasyonunun BMSC veya OB ile etkileşimi nedeniyle kemoterapiye dirençli bir tümör popülasyonunu temsil ettiği gözlemi özellikle önemlidir. Ayrıca, lösemik hücre popülasyonlarının G10 sütunları ile nasıl etkili bir şekilde izole edileceğini gösteriyoruz. Dikkat çekici bir şekilde, bu alt popülasyonların izolasyonunun, kemik iliği mikroçevresi, stromal hücreler veya osteoblastlar ile etkileşimleri nedeniyle bu hücrelere verilen potansiyel direnç modlarını belirlemek için en dirençli PD popülasyonunun aşağı akış analizine izin verdiğini bulduk. Bu ko-kültür ve izolasyon modelinin alt akışında kullandığımız teknikler arasında akış sitometrik değerlendirmesi, proteomik analiz ve hedefe yönelik protein ekspresyon değerlendirmesinin yanı sıra daha yakın zamanda geliştirilen lazer ablasyon elektrosprey iyonizasyonu (LAESI) ve metabolik profilleri değerlendirmek için Denizatı analizi yer almaktadır. Bu modelin yukarıdaki tekniklerle birlikte kullanılmasıyla, lösemik hücrelerin PD popülasyonunun, yalnızca ortamda kültürlenen lösemik hücrelerle veya aynı ko-kültürdeki diğer alt popülasyonlardan geri kazanılan hücrelerle karşılaştırıldığında benzersiz olan kemoterapiye dirençli bir fenotipe sahip olduğunu bulduk. Bu nedenle, bu model, kemik iliği mikroçevresi ile etkileşim yoluyla dirençli fenotiplerini türeten kemoterapiye dirençli lösemik hücreleri hedef alan stratejileri test etmek için daha titiz bir değerlendirmeye elverişlidir.

<table><tbody><tr><td>G10 sephadex boncuk</td><td>Sigma</td><td>G10120</td><td>El yazmasında jel tipi 10 çapraz bağlı dekstran parçacıkları</td></tr><tr><td>10 ml steril şırınga</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>Cam yünü</td><td>Pyrex</td><td>3950</td><td></td></tr><tr><td>1 musluklar</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>14054-10</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik santrifüj tüpleri</td><td>Dünya Çapında Tıbbi Ürünler</td><td>41021039</td><td>Toplama tüpü olarak kullanılır</td></tr><tr><td>15 ml konik santrifüj tüpleri</td><td>Dünya Çapında Tıbbi Ürünler</td><td>41021037</td><td>Hücre toplama için kullanılır</td></tr><tr><td>Fetal Sığır</td><td>Serumu Sigma</td><td>F6178</td><td></td></tr><tr><td>%0.05 Tripsin&nbsp;</td><td>Medya Teknolojisi, Inc.</td><td>25-053-CI</td><td></td></tr><tr><td>100 x 20 mm Hücre Kültürü Kapları</td><td>Greiner Bio-One</td><td>664160</td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Kültür ortamı</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>osteoblast kültür ortamı&nbsp;</td><td>PromoCell</td><td>C-27001</td><td>İnsan osteoblast ortamı için&nbsp;</td></tr><tr><td>RPMI 1640 medya</td><td>Mediatech, Inc.</td><td>15-040</td><td>Tümör besiyeri hazırlığı için&nbsp;</td></tr><tr><td><güçlü > Hücre hatları< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>< güçlü > Bağlı Hücreler: < / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>İnsan Osteoblastları</td><td>PromoCell</td><td>C-12720</td><td>İnsan osteoblastı tedarikçiye göre kültürlendi s önerileri.&nbsp;</td></tr><tr><td>İnsan Kemik Morrow Stromal Hücreleri</td><td>WVU Biyonumune Çekirdeği</td><td></td><td>Tanımlanmamış birincil insan lösemisi ve kemik iliği stromal hücreleri (BMSC), Mary Babb Randolph Kanser Merkezi (MBRCC) Biyonumune İşleme Çekirdeği ve West Virginia Üniversitesi Patoloji Bölümü Doku Bankası tarafından sağlandı. BMSC kültürleri daha önce tarif edildiği gibi kuruldu (*)</td></tr><tr><td><güçlü>Lösemik Hücreler: </güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>REH</td><td>ATCC</td><td>ATCC-CRL-8286</td><td>REH hücreleri tedarikçinin s önerileri ve önerilen medya.&nbsp;</td></tr><tr><td>SD-1</td>, <td>DSMZ</td>, <td>ACC 366</td>, <td>SD-1, tedarikçinin özelliklerine göre kültürlendi. s önerileri ve önerilen medya.&nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4">(*) Gibson LF, Fortney J, Landreth KS, Piktel D, Ericson SG, Lynch JP. Kemik iliği stromal hücre fonksiyonunun etoposid tarafından bozulması. Biol Kan İliği Nakli J Soc Kan İliği Nakli. 1997 Ağustos; 3(3):122&ndash;32.</td></tr></tbody></table>

modelleme kemoterapi dayanıklı lösemi<em&gt; İn vitro</em

Modeling Chemotherapy Resistant Leukemia In Vitro

Kemik iliği mikroçevresinin, bu bölgede hem başlayan hem de ilerleyen hematopoetik hastalıklar için benzersiz bir sığınak alanı sağladığı iyi bilinmektedir. Mevcut raporda sunulan model, insan primer kemik iliği stromal hücrelerini ve osteoblastları, tümör hücresi fenotipini etkileyen kemik iliği nişinden iki temsili hücre tipi olarak kullanmaktadır. Bu birincil niş bileşenlere sahip insan lösemik hücreleri için tarif edilen in vitro ko-kültür koşulları, çeşitli tekniklerle analiz için kültürden verimli bir şekilde geri kazanılabilen kemorezent bir tümör hücresi alt popülasyonunun oluşumunu destekler. Besin akışlarını önlemek için sıkı bir beslenme programı, ardından jel tip 10 çapraz bağlı dekstran (G10) partikülleri, yapışık kemik iliği stromal hücrelerinin (BMSC) veya osteoblastların (OB) altına göç etmiş tümör hücrelerinin popülasyonunun geri kazanılması, bir "faz dim" (PD) tümör hücresi popülasyonu oluşturur, saflaştırılmış tedaviye dirençli lösemik hücreler için tutarlı bir kaynak sağlar. Klinik olarak anlamlı bu tümör hücresi popülasyonu, apoptotik, metabolik ve hücre döngüsü düzenleyici yolakları araştırmak için standart yöntemlerle değerlendirilebilir ve ayrıca minimal rezidüel hastalığı hedefleyen klinik öncesi araştırmalardan önce yeni terapötik stratejileri test etmek için daha titiz bir hedef sağlar.

Bu ko-kültür modeli Başarılı kurulum ve kültür. Yapışık BMSC veya OB tek tabaka göre lösemik hücrelerin 3 alt popülasyonlarının kurulması neden 1 BMSC tek tabaka içine numaralı seribaşı ALL hücreleri başlangıçta askıya olarak yalnızca tek bir nüfusa nasıl görüneceği göstermektedir olacak lösemi hücreleri. lösemik hücreler lösemi hücrelerinin 3 mekansal alt-popülasyonunu oluşturulması için BHYK etkileşime 4 gün boyunca ((süspansiyon s), faz parlak (PB), v...

Mevcut rapor, kemik iliği mikroçevre nişinin lösemik hücreler üzerindeki etkisini, en kemodirençli alt popülasyonun zenginleştirilmesine vurgu yaparak modellemek için kullanılabilecek bir protokolü özetlemektedir.

Modelleme Kemoterapi Dayanıklı Lösemi<em&gt; İn Vitro</em

It is well established that the bone marrow microenvironment provides a unique site of sanctuary for hematopoietic diseases that both initiate and ...

Bu prosedürün genel amacı, dirençli akut lenfoblastik lösemiyi (ALL) in vitro ortamda daha iyi modellemektir. Bu yöntem, kemik iliği mikroçevresinin ALL hücrelerinin kemoterapötik direncini nasıl etkilediğine dair refrakter ALL tedavisindeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajları, refrakter ALL hücreleri üzerinde ilaç etkilerini incelemek için geleneksel hayvan modelleri kullanmaktan önemli ölçüde daha ucuz ve daha az zaman alıcı olmasıdır.100 mm'lik bir plakadaki %80 ila %90 konfluensle büyütülmüş kemik iliği stromal hücreleri veya osteoblastlar üzerine, 10 mL tümöre özgü kültür ortamındaki 5 ila 20 × 10⁶ lökemik hücreyi ekerek başlayın. Her dördüncü günde, plağı yan tarafa eğerek adherent hücre tabakasını rahatsız etmemeye dikkat ederek ortamın 1 mL'den geri kalanını aspire edin. Ardından, adherent hücrelerin minimum düzeyde etkilenmesini sağlamak için, taze lökemik hücre kültür ortamının 9 mL'sini plağın kenarındaki köşeye damla damla dikkatlice ekleyin.12 günlük ko-kültürün ardından, yüzen lösemik hücreleri toplamak için kültür ortamını plaka üzerinde yaklaşık beş ila 10 kez nazikçe pipetleyerek aşağı yukarı hareket ettirin. Ardından hücreleri 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Daha sonra, hücreleri az önce gösterildiği gibi, %80 ila %90 konfluen kemik iliği stromal hücreleri veya osteoblastlar içeren yeni bir plakaya yeniden ekleyin.Dördüncü güne gelindiğinde, süspansiyon halindeki lösemik hücrelerin ortamda serbestçe yüzdüğü üç lösemik hücre alt popülasyonu oluşmuş olacaktır. Phase Bright lösemik hücreler, adherent hücre monolayerinin yüzeyine tutunurken, Phase Dim lösemik hücreler monolayerin altına göç etmiştir. G10 boncuk kolonlarını hazırlamak için, önce kolon başına 30 mililitre hücre kültürü ortamını bir su banyosunda 37 degrees Celsius sıcaklığa kadar yeniden ısıtın.Ardından, cam yününü ince ve gevşek şeritler haline getirmek için cımbız kullanın. Gereken her bir kolon için, bir adet 10 mililitre şırıngaya hafifçe sıkıştırılmış birden fazla şerit katmanı ekleyin. Şırınga 2/3 oranında dolduğunda, ucuna kapalı konumda tek yönlü bir musluk takın ve şırıngayı, musluğun altına 50 mililitre konik toplama tüpü yerleştirilebilecek kadar yüksek bir halka standına sabitleyin.Şimdi, şırınga kolonunun altına bir toplama tüpü yerleştirin. Ardından, cam yününün üzerine PBS içinde süspanse edilmiş G10 partiküllerini damlatmak için 10 mililitrelik bir pipet kullanın. İki mililitrelik bir pelet oluşana kadar G10 partiküllerini eklemeye devam edin.Ardından, önceden ısıtılmış ortamdan iki mililitrelik alikotları kolona ekleyin. Ortamın kolondan damla damla akmasını sağlamak için musluk vanasını yavaşça açın. 10 mililitrelik ortam tamamen kolon boyunca süzüldüğünde musluğu kapatın.Akış sıvısını atın ve kolonun altına yeni bir toplama tüpü yerleştirin. Askıdaki tümör alt popülasyonunu toplamak için, lösemik hücre ko-kültür plağındaki besiyerini aspire edin ve plağı bir kez nazikçe durulamak için aynı besiyerini kullanın. Ardından, yüzen süspansiyondaki lösemik hücre alt popülasyonunu 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın.Phase Bright tümör alt popülasyonunu toplamak için, ko-kültür plağına 10 mililitre taze besiyeri ekleyin. Ardından, yapışık hücre monokatmanını yerinden oynatmadan, yapışık lösemik hücreleri uzaklaştıracak yeterli şiddette yaklaşık beş kez durulama yapın. Daha sonra, Phase Bright alt popülasyonunu kendisine ait 15 mililitrelik konik tüpe aktarın.Phase Dim tümör alt popülasyonunu toplamak için, kalan medyumu bir mililitre PBS ile durulayarak uzaklaştırın. Ardından hücreleri 37 °C'de üç mililitre tripsin ile ayırın. Beş dakika sonra, yapışık hücreleri yerinden oynatmak için plağın kenarlarına hafifçe vurun ve enzimatik reaksiyonu durdurmak için bir mililitre FBS ekleyin.Ardından, büyük hücre agregalarını parçalamak için serumu üç ila beş kez durulayın. Ve saflaştırılmamış Phase Dim alt popülasyonunu yeni bir 15 mililitrelik konik tüpe aktarın. Tüm alt popülasyonlar toplandığında, hücreleri santrifüj ederek çöktürün.Ve pelletlerin her birini bir mililitre önceden ısıtılmış ortamda yeniden süspande edin. Musluk tamamen kapalıyken, her bir alt popülasyon için, 1.000 mikrolitrelik bir pipet kullanarak bir mililitre hücre hacminin tamamını, hücrelerin G10 pelletinin üzerinde veya içinde kaldığından emin olarak, hazırlanmış G10 kolonlarından birinin üzerine damla damla ekleyin. Hücrelerin G10 pelletinde oda sıcaklığında 20 dakika boyunca inkübe edilmesini sağlayın.Ardından, kolona bir ila üç mililitre taze, önceden ısıtılmış besiyeri ekleyin. Besiyerinin kolondan yavaşça, damla damla çıkması için musluğu açın. Kolonlara, bir ila iki mililitrelik artışlarla önceden ısıtılmış besiyeri eklemeye devam edin.Toplam 15 ila 20 mililitre lökemik hücre toplandığında, musluğu kapatın ve toplama tüpünü kapakla kapatın. Ardından, hücreleri santrifüjle çöktürün ve peleti uygun alt analiz tamponunda yeniden süspanse edin. Adheran hücre tabakasının tripsinizasyonunu takiben, ileriye saçılma ile yan saçılma analizi ile iki farklı hücre popülasyonu gözlenir.G10 ayrıştırmasının ardından, saf bir ALL hücresi popülasyonu geri kazanılır. Özellikle, kemik iliği stromal hücresi veya osteoblast ko-kültürlerinden geri kazanılan tüm Faz Dim hücreler, sitotoksik kemoterapiye maruz kaldıklarında çok az ölüm sergiler veya hiç ölüm göstermezler. Bu prosedürler uygulanırken, lösemik hücrelerde meydana gelebilecek fenotipik değişiklikleri azaltmak için bu adımların mümkün olduğunca doğru şekilde gerçekleştirilmesinin önemli olduğunu unutmamak gerekir.Bu teknik, lösemi araştırmaları alanındaki araştırmacıların, kemoterapiye dirençli lökemiyi kemik iliği mikroçevresine daha yakın bir in vitro modelde modellemeleri için bir yol sunmaktadır.

modeling-chemotherapy-resistant-leukemia-in-vitro

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu videoda, kemik iliği mikroçevresi ile etkileşimlerini incelemek için lösemi hücrelerinin kemik iliği stromal hücreleriyle uzun süreli 2D ko-kültür tekniği açıklanmaktadır. 2D kokültür modeli, akut lenfoblastik lösemi hücrelerini ve tümör hücresi fenotipini etkileyen kemik iliği stromal veya osteoblastlarını kullanır. Bu çalışma, kemoterapi maruziyeti sırasında lösemik hücrelerin kemik iliği destekli sağkalımının altında yatan mekanizmaların araştırılmasını destekleyecektir.

Lösemik Hücrelerin BMSC'lerle 2 Boyutlu Ko-kültürü: Lösemik Hücrelerin Alt Popülasyonlarını Elde Etmek İçin Bir Yöntem

Bu videoda, üç lösemik hücre alt popülasyonunun uzamsal olarak ayrılması için bir yöntem açıklanmaktadır: ortamda serbestçe yüzen asılı lösemik hücreler, mezenkimal stromal hücre tek tabakasının yüzeyine yapışan faz parlak lösemik hücreler ve 2D ko-kültürden mezenkimal stromal hücre tek tabakasının altına göç eden faz karartılmış lösemik hücreler.

Lösemik Alt Popülasyon Hasadı: Lösemik Hücre Alt Popülasyonlarının 2D Ko-kültürden Mekansal Olarak Ayrılması İçin Bir Yöntem

Reseptör tirozin kinazlar, ektopik bir çok kanser olarak ifade edilmiştir ve akut lösemi terapötik hedefler olarak tespit edilmiştir. Bu makale, akut lösemi tedavisinde tirosin kinaz inhibitörlerinin klinik öncesi değerlendirilmesi için etkin bir strateji tarif etmektedir.

Akut lösemi tedavisi için Tirosin Kinaz İnhibitörleri klinik öncesi değerlendirilmesi

Primer multipl miyelom hücreleri için yüksek verimli bir ilaç duyarlılık testi tanımlıyoruz. Çok kuyulu plakalarda kemik iliği mikro çevresinin (hücre dışı matriks ve stroma dahil) yeniden yapılandırılmasından ve hücre canlılığının uzunlamasına ölçülmesi için invaziv olmayan bir yöntemden oluşur.

Primer Multipl Miyelom Hücrelerinin İlaç Duyarlılık Karakterizasyonu için bir Organotipik Yüksek Verimli Sistemi

Burada katı tümörler ve hematolojik malignitelerde ilaç direnci üzerinde anormal yapıştırma etkisini araştıran amaçlayan bir protokol açıklar. Bu hedefe, biz RNA seq ile ebeveyn ve in vitro dirençli modellerin transkriptomik profillerini analiz ve aday genler doğrulamak için bir QRT-PCR tabanlı bir yöntem kurdu.

İlaç Direnci İlgili Roman Splice türevlerini algılamak için RNA sıralamayı kullanarak<em&gt; İn Vitro</em&gt; Kanser Modelleri

Burada, c-Fos ve Dusp1 genetik ve kimyasal doğrulama uyuşturucu hedef olarak tüp bebek ve içinde vivo genetik ve insanlaşmış fare modelleri kullanarak lösemi için iletişim kuralları açıklar. Bu yöntem, herhangi bir hedef için genetik doğrulama ve terapötik geliştirme için uygulanabilir.

C-Fos rolü ve Dusp1 onkogen bağımlılığı değerlendirme yöntemleri

Bir lentiviral shRNA havuzu kullanılarak yüksek verimli RNA girişimi (RNAi) taraması, malignitelerde terapötik olarak ilgili sentetik ölümcül hedefleri tespit etmek için bir araç olabilir. Akut miyeloid lösemide (AML) epigenetik efektörleri araştırmak için havuzlanmış bir shRNA tarama yaklaşımı sunuyoruz.

Bir İlaç Direnci Fenotipini Modüle Eden Faktörleri Tanımlamak için Havuzlanmış shRNA Kütüphanesi Taraması

Bu protokol, geçici olarak bağışıklığı baskılanmış zebra balığı embriyolarında hücre hatlarından ve taze hasta materyalinden insan akut lenfoblastik lösemi (ALL) ksenogreftlerinin oluşturulması ve sorun giderilmesi için adım adım talimatların yanı sıra akış sitometrisi kullanılarak ilaç yanıtı değerlendirmesi için kılavuzlar sağlar. Deneysel boru hattı katı tümörler için de uyarlanabilir.

Zebra Balığı Embriyolarında Lösemi Hücre Greftleri Kullanılarak Hızlı İn Vivo İlaç Yanıtı Tahmini

Bu protokol, enjeksiyondan 4 gün sonra meydana gelen, hasta kaynaklı B ve T akut lenfoblastik lösemi (ALL) hücrelerinin in ovo ksenogreftlemesini tanımlar.

Burada: Ovo Hasta Kaynaklı Akut Lenfoblastik Lösemi (ALL) Hücrelerinin Ksenogreftlenmesi (PDX-ALL)

Protokol, indüksiyon kemoterapisine yanıtın dinamiklerine dayalı olarak akut lenfoblastik löseminin nüksetmesine neden olan bir fare modelini tanımlamayı amaçlamaktadır.

Akut Lenfoblastik Lösemi için İndüksiyon Kemoterapisine Nüks Löseminin Murin Modeli

Keşfedin kemoterapi dirençli akut lenfoblastik lösemi modellemesi için in vitro ko-kültür yöntemini. İnsan kemik iliği stromal hücreleri kullanarak klinik olarak dirençli lösemi hücreleri üretin ve yeni tedavileri değerlendirin.

Modelleme Kemoterapi Dayanıklı Lösemi

Daha fazla video keşfet