Name: Ölümsüzleştirdi Multipotent Otic Progenitor Hücrelerde Farklılaşma başlatılıyor (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 17 s
Description: Öğrenin iMOP hücrelerinin iç kulak hücre tiplerine farklılaşmasını. Bu yöntem işitme rejenerasyonu ve koklear saç hücreleri gelişimi araştırmalarında değerli bir in vitro model sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Çalışma kısmen Duncan ve Nancy MacMillan Fakülte Geliştirme Kürsüsü Bağış Fonu (K.Y.K.), Busch Biyomedikal Araştırma Bursu (K.Y.K.) ve Rutgers Fakülte Geliştirme Hibesi (K.Y.K.) tarafından desteklenmiştir.

1. IMOP Hücrelerde Öz yenileme bakımı <ol><li> Kültür ortamı iMOP hazırlayın: DMEM / F12, 1X B27 ek, 25 ug / ml ve 20 carbenecillin ng / ml bFGF. Steril reaktifler kullanılarak iMOP kültür ortamı 50 ml sağlayın. 37 ° C bir su banyosu içinde 50 ml konik DMEM / F12 49 ml kadar ısıtın. <ol><li> Çözülme 50X B27 takviyesi ve 37 ° C su banyosu içinde 5 dakika süre ile filtre ile sterilize edilmiş 100 mg / ml carbenecillin alikotları. RT&#39;de 100 ug / ml bFGF kısım çözülme. Ekle 1 mi 50X B27, 100 ug / ml bFGF 10 ul DMEM / F12 içinde 100 mg / ml carbenecillin 12.5 ul. </li></ol></li><li> Kültürleme iMOP hücreleri için 60 mm doku kültürü çanağı içinde ortam 3 ml kullanın. Medya hacmini iki katına çıkararak her gün kültürlere taze medya ekleyin. BFGF o konsantrasyonu 5 ng / ml altına düşmeyecek emin olun. <ol><li> Aşağıdaki adımları listelenen kültürdeki 7 günden - 5 sonra% 5 CO 2. Geçiş hücreleri ile 37 ° C &#39;de kültür iMOP hücreleri. Bir 15 Aktarım kültürü10 ml&#39;lik bir pipet kullanarak ml konik. </li></ol></li><li> HBSS 50 ml 0,5 M EDTA, pH 8.0, 0.1 ml seyreltilmesi ile HBSS 1 mM EDTA sağlayın. Ön Sıcak 1 mM EDTA, 37 ° C su banyosu içinde HBSS içinde yapılır. </li><li> Yerçekimi çökelme veya 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj ile hasat hücreleri. oda sıcaklığında karıştırıldı. 10 dakika - yerçekimi çökelme için, 5 37 ° C kuluçka makinesi içinde kültürleri içeren 15 ml&#39;lik konik yerleştirin. Bu süreden sonra, otospheres 15 ml konik altında toplanır gözlemleyin. NOT: Aşırı merkezkaç kuvveti hücre hasarına neden olabilir. </li><li> Dikkatlice aspire hücre pelet bozmadan pipet aspirasyon bir 2 ml kullanarak ortam geçirdi. Pelet hücre önceden ısıtılmış 1 mM EDTA HBSS çözeltisi 0,5 ml ilave edilir. P1000 pipet kullanarak, yavaşça yukarı pipetlemeyin ve aşağı 2-3 kez. 37 ° C &#39;de konik yerleştirin ve tek hücre ayrışmasını kolaylaştırmak için &lt;5 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Yavaşça otospheres ayrışmış olup olmadığını belirlemek için hücre çözümü girdap. No Oto Eğerküreler konik altına tortu, hücreler ayrışmış edilir. Inkübasyon süresi değişebilir. Not: EDTA ile uzun süreyle kuluçkalanması aşırı hücre ölümüne neden olur. </li><li> , 37 ° C ila hücreleri çıkarın EDTA nötralize etmek ve sulandırmak için ortam 2 ml ekleyin. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj ile hücreler toplanır. Aspire dışarı 2 ml aspirasyon pipet kullanarak ve hücreleri yıkamak için 1X PBS 5 ml ekleyin EDTA seyreltilmiş. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 xg&#39;de hücreleri aşağı Spin ve 2 ml aspire pipet kullanarak 1X PBS dışarı aspire. 3 kez - hafifçe aşağı 2 yukarı pipetleme tarafından iMOP kültür ortamı, 0.5 ml P1000 pipet kullanarak hücreleri tekrar. </li><li> Uygun kasetler 28 ile mikroakışkan parçacık sayacı kullanarak hücreleri saymak. IMOP hücrelerin birleşik plaka ~ 6 x10 6 hücre içerecektir. Medyada 100 ve sayım için kaset içine hücre çözeltisi 75 ul ekleyin: hücrelerini 1 seyreltilir. IMOP kültürlerdeki 6 cm tabak Plaka 1 x 10 6 hücreMedya yeniden (~ 1: 10 seyreltme). Passage iMOPs her 5-7 gün. NOT: Büyük otospheres oluşturacak veya ayırt edecek doku kültürü çanak alt eklemek Hücreler. Kültürler konfluent yaşın üzerinde iseniz hücreler de ölecektir. </li></ol> 2. Donma ve Çözülme IMOP Hücreleri <ol><li> Eritilmiş ve dondurmadan önce hücrelere 4 ° C&#39;ye kadar çözüm dengeye sentetik dondurma ortamı hazırlayın. </li><li> IMOP hücrelerinin konfluent 6 cm çanak hücreleri toplamak. 15 ml konik içine - (8 x 10 6 hücre ~ 6) 10 ml pipet ve transfer hücreleri kullanın. </li><li> Yerçekimi çökelme veya oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj ile hasat hücreleri. Otospheres küçükse, hücreler yerçekimi sedimantasyon razı olmaz. İsteğe bağlı: toplam hücre numaralarını belirlemek için adım 1.9 kullanarak hücreleri saymak. </li><li> Aspire arkasında gevşek hücre pelet bırakarak pipet aspirasyon bir 2ml kullanarak medya geçirdi. </li><li> Ce tekrar süspansiyon sentetik donma medya 0.25 ml ekleyin~ 5 x 10 5 6 10 x 3 hücre / ml bir yoğunlukta lls. Yavaşça P1000 pipet ile hücreleri pipetle. Ucu süzülmüş 1 ml P1000 pipet kullanarak kriyojenik flakon hücre süspansiyonu aktarın. </li><li> Bir alkol serbest dondurma kapta şişeleri yerleştirin ve sıcaklık ulaşıncaya kadar -80 ° C, dakikada 1 ° C düşürmek için -80 ° C&#39;de dondurma kap yerleştirin. </li><li> Hücrelerin uzun süreli depolama için bir sıvı azot depolama tankının gaz fazına şişeleri aktarın. Kültür hücreleri çözülme, -80 ° C donmuş hücreleri içeren kriyojenik flakon dengeye. </li><li> 37 ° C su banyosunda Öncesi sıcak iMOP kültür ortamı. </li><li> 37 ° C su banyosu içinde şişenin alt dönen tarafından hızlı bir şekilde dondurulmuş şişe çözülme. Son buz kristali ortadan kalktığı anda çözülmüş hücrelere önceden ısıtılmış iMOP kültür ortamı 1 ml ilave edilir. Transferi 15 ml konik içine hücreleri ve iMOP kültür ortamı ilave 4 ml ekleyin </li><li> 15 ml co Spin5 dakika boyunca nical. 200 xg harcanan medya aspire ve. 6 cm tabak iMOP kültür ortamı ve plaka hücreleri 2 ml tekrar süspansiyon hücreleri. Genişlemesi için% 5, 37 ° C&#39;de CO2 kültürleri inkübe edin. </li></ol> 3. Duyu Epiteli içine IMOP Hücreleri Farklılaşan <ol><li> DMEM / F12, 1X B27 takviyesi, 25 ug / ml carbenecillin: iMOP duyu epitelyum farklılaşma medya 50 ml hazırlayın. IMOP duyusal epitel farklılaşma medya 50 ml olun. 37 ° C bir su banyosu içinde 50 ml konik DMEM / F12 49 ml kadar ısıtın. Çözülme 50X B27 takviyesi ve 5 dakika süreyle 100 mg / ml carbenecillin alikotları. 37 ° C su banyosu içinde. 1 mi 50X B27 ve DMEM / F12 içinde 100 mg / ml carbenecillin 12.5 ul ekle. </li><li> Hasat, tekrar süspansiyon ayırmak ve saymak için hücreler 1.4-1.9 adımları tekrarlayın </li><li> Gün -3 kültür ortamı iMOP kullanarak bir 6 cm çanak Plaka 1 x 10 6 hücre. Gün 0 günü, transfer kültürleri 15 ml konik içine 10 ml pipet kullanarak. Otoimmun toplayınyerçekimi sedimantasyon küreler olarak adım 1.6 belirtti. Aspire dışarı pipet aspirasyon bir 2 ml kullanan medya geçirdi ve konik altındaki otospheres bırakın. </li><li> Yavaşça duyu epitelyum farklılaşma medya 2 ml ekleyin. Transferi büyük delik 10 ml pipet kullanarak 6 cm çanak otospheres. NOT: Sert pipetleme Makine kesme otospheres hücreleri ayırmak olabilir. </li><li> Her gün kültürlere taze duyusal epitel farklılaşma medya 2 ml ekleyin. Gerekirse, hücreler yerine yerçekimi sedimantasyon ve medya tarafından tahsil edilebilir. </li><li> 15 ml konik aktarma ve otospheres adımda belirtildiği gibi harcanan medya pipet aspirasyon bir 2 ml kullanılarak 1.6.Aspirate tortu ve rahatsız otospheres bırakmak için izin vererek Gün 10&#39;da otospheres toplayın. </li><li> Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 1X PBS% 4 formaldehit içinde inkübe edilerek otospheres sabitleyin. , Formaldehit solüsyonu çıkarın yıkama tamponu (PBS 1X% 0.1 TritonX-10 içeren otospheres yıkayın0) blokaj tamponunda inkübe edildi (1X PBS,% 10 normal keçi serumu ve 1 saat süre ile,% 0.1 Triton X-100) ihtiva etmektedir. <ol><li> Tampon değiştirin ve sulandırılmış antikor ile tampon engelleme örnekleri kuluçkaya yatmaktadır. 4 ° C&#39;de inkübe edin. 1X PBS 27 immün% 0.1 Triton X-100 ihtiva eden konuyu otosphere ile yıkayın örnekleri. P1000 pipet kullanarak bir bardak slayt medyayı montaj içine 1X PBS içine aktarın otospheres ve yer otospheres. Numune üzerinde lamel koyun ve montaj medya 4 ° C&#39;de kurumaya bırakın. </li></ol></li><li> 16 bit CCD kamera ve 20X 0.75 havaya ya da bir 40X 1.3 NA immersiyon yağı amacı ile donatılmış bir inverted mikroskop kurulumu kullanarak Epifloresans görüntüleri elde edin. Mavi (377 ± 25 nm / 447 ± 30 nm), yeşil (475 ± 25 nm / 540 ± 25 nm), kırmızı (562 ± 20nm / ve 625: Listelenen (uyarma ve emisyon) dalga boyları kullanarak farklı renk kanallarından floresan toplayın ± 20nm) ve kızılötesi (628 20nm ± / ve 692 ± 20nm). </li></ol> 4. Assaying Edu Ortaklığın <ol><li> Gün -3 günü, 6 cm tabağına 1 x 10 6 iMOP hücreleri plaka. Üç gün sonra 0. günde, hasat, ayrışır, tekrar süspansiyon ve adımları 1,4-1,9 tekrarlayarak hücreleri saymak. </li><li> Plaka iMOP kültür ortamı 2.5 x 10 5 hücre ve 6 kuyu yemeğin farklı kuyularda duyusal epitelyum farklılaşma medyada 5 x10 5 hücre. </li><li> Bir edu birleştirme yöntemi kullanılarak 3. günde edu katılmasıyla S fazında hücrelerin yüzdesi belirlemek <ol><li> Kültür ortamında 1 uM edu bir nihai konsantrasyon elde etmek üzere iMOP kültürlere edu stokları ekleyin. </li><li> 2 saat boyunca iMOP kültürlerinde edu inkübe ve% 5 CO2 ile 37 ° C &#39;de inkübe edilir. Hasat, ayırmak ve toplamak hücreler adımları 1,4-1,9 tekrarlayın. 15 dakika boyunca 1X PBS içinde% 4 formaldehit içinde ekleyin. RT&#39;de hücreleri gidermek için. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj ile hasat hücreleri. Formaldehit çözeltisi ve properl kaldıry atmayın. </li><li> Etiket Hoechst hücrelerin çekirdekleri ve üreticinin protokolüne uygun olarak yeşil floresan boya azid ile edu dahil. Not: tüm yıkamalar 1X PBS, iki kez 1X PBS ile% 3 BSA ve% 0.1 Tween 20 ile yıkayın hücreleri ile yapılır. </li><li> Ve antifade reaktif kullanılan bir slayt Mount hücreleri numune üzerinde 1.5 cam kapak yerleştirin. Bir Epifloresans mikroskopi kullanılarak işaretli hücrelerin floresan görüntüler elde. </li></ol></li></ol> 5. IMOP Türevli Nöronlar Farklılaşan <ol><li> Neurobasal ortam, 1X B27 takviyesi, 2 mM L-Glutamin: nöronal farklılaşma medya 50 ml sağlayın. 5 dakika için 37 ° C su banyosu içinde 50 kat B27 ve 200 mM L-Glutamin çözülme şişe. Neurobasal ortam 48.5 mi 1 ml 50X B27 ve 0.5 ml 200 mM L-Glutamin ekleyin. </li><li> Steril 10 cm plaka yuvarlak 12 mm 1.5 cam lamelleri yerleştirilmesi ve sterilize lamelleri temizlemek için plakaya% 70 EtOH eklemek tarafından Coat coverglass. </li><li> Yavaşça koya ajiterslips onlar etanol kaplıdır sağlamak. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca plaka bırakın. Kalan etanol yıkamak için steril 1X PBS ile lamelleri 3 kere yıkayın. 1X PBS kalan yıkamak için steril H 2 0 kez lamel durulayın. </li><li> Pipet aspirasyon bir 2 ml kullanılarak H 2 0 aspire ve lamelleri kurumaya bırakın. 15 dakika boyunca doku kültürü kaputu UV ışığına lamelleri Açığa. Hemen kullanılmadığı takdirde mağazası steril bir ortamda lamelleri. </li><li> 24 iyi bir çanak her bir kuyunun bir 12 mm yuvarlak lamel yerleştirin. Lamelleri kuyunun dibinde düz yalan emin olmak için hafifçe sallayın plaka. </li><li> Çözülme 2 mg / 1X PBS içinde 10 ug / ml poli-D-lisin konsantrasyonuna oda sıcaklığında poli-D-lizin stok çözeltisi ml seyreltin. 10 ug / ml poli-D-lisin 0.25 ml çukurlara ekleyin. 1 saat boyunca 37 ° C inkübatör plaka bırakın. </li><li> Steril 1X PBS ile 3 kez yıkayın. Oda sıcaklığında 10 mg / ml stok çözeltisi, laminin ve Çözme 10 ug / m seyreltin1X PBS l. Ekle 10 ug 24 çoklu kuyu çanak tek kuyuya çözüm çalışma / ml laminin 0.25 ml. 37 ° C inkübatör de plaka inkübe edin. 2 ml aspire pipet kullanarak laminin çözüm aspire. </li><li> P1000 pipet ile 1X PBS 1 ml ilave edilmesi ve pipet aspire 2 ml aspire 1X PBS kaldırarak lamel 1X PBS ile 3 kez yıkayın. Hücreler kaplama için hazır olana kadar kuyuda son yıkama 1X PBS bırakın. Dissociating ve Gün -3 de 6 cm tabak adımlarla 1.4-1.9.Plate 1 x 10 6 hücre hücre sayımı, hasat nöronal farklılaşma başlatın. </li><li> Gün 0, hasat günü, ayırmak ve 1.4-1.9 tekrar ederek hücreleri saymak. Tohum 1 x 10 5 - kuyuda 24-kuyu tabak çoklu başına önceden ısıtılmış nöronal farklılaşma medya 0.5 ml x 10 5 iMOP hücreleri 1.5. Aspire ve her gün kültürlere önceden ısıtılmış nöronal farklılaşma medya ekleyebilirsiniz. </li><li> 15 dakika boyunca% 4 formaldehit içinde iMOP türetilmiş nöronlar sabitleyin. birt RT Gün 7&#39;de çıkarın formaldehit çözeltisi, yıkama tamponu ile iMOP türetilmiş nöronlar yıkama blokaj tamponunda inkübe edildi (1X PBS,% 0.1 Triton X-100 ihtiva eder) (1X PBS,% 10 normal keçi serumu ve% 0.1 Triton X-ihtiva eden 100) 1 saat karıştırıldı. <ol><li> Tampon değiştirin ve sulandırılmış antikor ile tampon engelleme örnekleri kuluçkaya yatmaktadır. 4 ° C&#39;de inkübe edin. 1X PBS% 0.1 Triton X-100 denek hücreleri içeren ile yıkayın örnekleri 27 immün için. Montaj medya üzerine yerleştirmeden önce 1X PBS ile coverglass yıkayın. Montaj medya adım 3.8 listelenen Epifloresans görüntüleri almadan önce 4 ° C&#39;de kurumaya bırakın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Petit, C., Richardson, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linking+genes+underlying+deafness+to+hair-bundle+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Linking genes underlying deafness to hair-bundle development and function.</a> Nat Neurosci. 12 (6), 703-710 (2009).</li>
<li>Kujawa, S. G., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adding+insult+to+injury%3A+cochlear+nerve+degeneration+after+%27temporary%27+noise-induced+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Adding insult to injury: cochlear nerve degeneration after 'temporary' noise-induced hearing loss.</a> J Neurosci. 29 (45), 14077-14085 (2009).</li>
<li>Kujawa, S. G., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acceleration+of+age-related+hearing+loss+by+early+noise+exposure%3A+evidence+of+a+misspent+youth%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Acceleration of age-related hearing loss by early noise exposure: evidence of a misspent youth.</a> J Neurosci. 26 (7), 2115-2123 (2006).</li>
<li>Huth, M. E., Ricci, A. J., Cheng, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+aminoglycoside+ototoxicity+and+targets+of+hair+cell+protection%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of aminoglycoside ototoxicity and targets of hair cell protection.</a> Int J Otolaryngol. 2011, 937861-93 (2011).</li>
<li>Brigande, J. V., Heller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quo+vadis%2C+hair+cell+regeneration%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Quo vadis, hair cell regeneration?</a> Nat Neurosci. 12 (6), 679-685 (2009).</li>
<li>Groves, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+challenge+of+hair+cell+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Biol+Med+%28Maywood%29%22%5BJournal%5D)">The challenge of hair cell regeneration.</a> Exp Biol Med (Maywood). 235 (4), 434-446 (2010).</li>
<li>Okano, T., Kelley, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+therapy+for+the+inner+ear%3A+recent+advances+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Amplif%22%5BJournal%5D)">Stem cell therapy for the inner ear: recent advances and future directions.</a> Trends Amplif. 16 (1), 4-18 (2012).</li>
<li>Ronaghi, M., Nasr, M., Heller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concise+review%3A+Inner+ear+stem+cells--an+oxymoron%2C+but+why%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Concise review: Inner ear stem cells--an oxymoron, but why?</a> Stem Cells. 30 (1), 69-74 (2012).</li>
<li>Chen, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+auditory+evoked+responses+by+human+ES-cell-derived+otic+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Restoration of auditory evoked responses by human ES-cell-derived otic progenitors.</a> Nature. 490 (7419), 278-282 (2012).</li>
<li>Koehler, K. R., Mikosz, A. M., Molosh, A. I., Patel, D., Hashino, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+inner+ear+sensory+epithelia+from+pluripotent+stem+cells+in+3D+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Generation of inner ear sensory epithelia from pluripotent stem cells in 3D culture.</a> Nature. , (2013).</li>
<li>Oshima, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensitive+hair+cell-like+cells+from+embryonic+and+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mechanosensitive hair cell-like cells from embryonic and induced pluripotent stem cells.</a> Cell. 141 (4), 704-716 (2010).</li>
<li>Diensthuber, M., Oshima, K., Heller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem%2Fprogenitor+cells+derived+from+the+cochlear+sensory+epithelium+give+rise+to+spheres+with+distinct+morphologies+and+features%5BTitle%5D)+AND+%22J+Assoc+Res+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Stem/progenitor cells derived from the cochlear sensory epithelium give rise to spheres with distinct morphologies and features.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 10 (2), 173-190 (2009).</li>
<li>Doetzlhofer, A., White, P., Lee, Y. S., Groves, A., Segil, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prospective+identification+and+purification+of+hair+cell+and+supporting+cell+progenitors+from+the+embryonic+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Prospective identification and purification of hair cell and supporting cell progenitors from the embryonic cochlea.</a> Brain Res. 1091 (1), 282-288 (2006).</li>
<li>Doetzlhofer, A., White, P. M., Johnson, J. E., Segil, N., Groves, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+growth+and+differentiation+of+mammalian+sensory+hair+cell+progenitors%3A+a+requirement+for+EGF+and+periotic+mesenchyme%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">In vitro growth and differentiation of mammalian sensory hair cell progenitors: a requirement for EGF and periotic mesenchyme.</a> Dev Biol. 272 (2), 432-447 (2004).</li>
<li>Martinez-Monedero, R., Yi, E., Oshima, K., Glowatzki, E., Edge, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+inner+ear+stem+cells+to+functional+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Differentiation of inner ear stem cells to functional sensory neurons.</a> Dev Neurobiol. 68 (5), 669-684 (2008).</li>
<li>Oshima, K., Senn, P., Heller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+sphere-forming+stem+cells+from+the+mouse+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of sphere-forming stem cells from the mouse inner ear.</a> Methods Mol Biol. 493, 141-162 (2009).</li>
<li>Nishimura, K., Nakagawa, T., Sakamoto, T., Ito, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fates+of+murine+pluripotent+stem+cell-derived+neural+progenitors+following+transplantation+into+mouse+cochleae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Fates of murine pluripotent stem cell-derived neural progenitors following transplantation into mouse cochleae.</a> Cell Transplant. 21 (4), 763-771 (2012).</li>
<li>Wu, D. K., Kelley, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+inner+ear+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Perspect+Biol%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of inner ear development.</a> Cold Spring Harb Perspect Biol. 4 (8), a008409(2012).</li>
<li>Jiang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lineage+analysis+of+the+late+otocyst+stage+mouse+inner+ear+by+transuterine+microinjection+of+a+retroviral+vector+encoding+alkaline+phosphatase+and+an+oligonucleotide+library%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Lineage analysis of the late otocyst stage mouse inner ear by transuterine microinjection of a retroviral vector encoding alkaline phosphatase and an oligonucleotide library.</a> PLoS One. 8 (7), e69314(2013).</li>
<li>Sapede, D., Dyballa, S., Pujades, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+analysis+reveals+three+different+progenitor+pools+for+neurosensory+elements+in+the+otic+vesicle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cell lineage analysis reveals three different progenitor pools for neurosensory elements in the otic vesicle.</a> J Neurosci. 32 (46), 16424-16434 (2012).</li>
<li>Satoh, T., Fekete, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+analysis+of+the+relationships+between+mechanosensory+cells+and+the+neurons+that+innervate+them+in+the+chicken+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Clonal analysis of the relationships between mechanosensory cells and the neurons that innervate them in the chicken ear.</a> Development. 132 (7), 1687-1697 (2005).</li>
<li>Raft, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-regulation+of+Ngn1+and+Math1+coordinates+the+production+of+neurons+and+sensory+hair+cells+during+inner+ear+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cross-regulation of Ngn1 and Math1 coordinates the production of neurons and sensory hair cells during inner ear development.</a> Development. 134 (24), 4405-4415 (2007).</li>
<li>Neves, J., Parada, C., Chamizo, M., Giraldez, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Jagged+1+regulates+the+restriction+of+Sox2+expression+in+the+developing+chicken+inner+ear%3A+a+mechanism+for+sensory+organ+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Jagged 1 regulates the restriction of Sox2 expression in the developing chicken inner ear: a mechanism for sensory organ specification.</a> Development. 138 (4), 735-744 (2011).</li>
<li>Mak, A. C., Szeto, I. Y., Fritzsch, B., Cheah, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+and+overlapping+expression+pattern+of+SOX2+and+SOX9+in+inner+ear+development%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Expr+Patterns%22%5BJournal%5D)">Differential and overlapping expression pattern of SOX2 and SOX9 in inner ear development.</a> Gene Expr Patterns. 9 (6), 444-453 (2009).</li>
<li>Kiernan, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sox2+is+required+for+sensory+organ+development+in+the+mammalian+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Sox2 is required for sensory organ development in the mammalian inner ear.</a> Nature. 434 (7036), 1031-1035 (2005).</li>
<li>Puligilla, C., Dabdoub, A., Brenowitz, S. D., Kelley, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sox2+induces+neuronal+formation+in+the+developing+mammalian+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Sox2 induces neuronal formation in the developing mammalian cochlea.</a> J Neurosci. 30 (2), 714-722 (2010).</li>
<li>Kwan, K. Y., Shen, J., Corey, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C-MYC+transcriptionally+amplifies+SOX2+target+genes+to+regulate+self-renewal+in+multipotent+otic+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">C-MYC transcriptionally amplifies SOX2 target genes to regulate self-renewal in multipotent otic progenitor cells.</a> Stem Cell Reports. 4 (1), 47-60 (2015).</li>
<li>Dittami, G. M., Sethi, M., Rabbitt, R. D., Ayliffe, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+mammalian+cell+counts%2C+cell+size+and+cell+health+using+the+Moxi+Z+mini+automated+cell+counter%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Determination of mammalian cell counts, cell size and cell health using the Moxi Z mini automated cell counter.</a> J Vis Exp. (64), (2012).</li>
<li>Levenstein, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+fibroblast+growth+factor+support+of+human+embryonic+stem+cell+self-renewal%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Basic fibroblast growth factor support of human embryonic stem cell self-renewal.</a> Stem Cells. 24 (3), 568-574 (2006).</li>
<li>Furue, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heparin+promotes+the+growth+of+human+embryonic+stem+cells+in+a+defined+serum-free+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Heparin promotes the growth of human embryonic stem cells in a defined serum-free medium.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (36), 13409-13414 (2008).</li>
<li>Lotz, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+levels+of+FGF2+maintain+undifferentiated+stem+cell+cultures+with+biweekly+feeding%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Sustained levels of FGF2 maintain undifferentiated stem cell cultures with biweekly feeding.</a> PLoS One. 8 (2), e56289(2013).</li>
<li>Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+survival+of+hippocampal+neurons+in+B27-supplemented+Neurobasal%2C+a+new+serum-free+medium+combination%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination.</a> J Neurosci Res. 35 (5), 567-576 (1993).</li>
<li>Watanabe, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+ROCK+inhibitor+permits+survival+of+dissociated+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells.</a> Nat Biotechnol. 25 (6), 681-686 (2007).</li>
<li>Ruben, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+inner+ear+of+the+mouse%3A+a+radioautographic+study+of+terminal+mitoses%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Development of the inner ear of the mouse: a radioautographic study of terminal mitoses.</a> Acta Otolaryngol. , Suppl 220. 1-44 (1967).</li>
<li>Matei, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Smaller+inner+ear+sensory+epithelia+in+Neurog+1+null+mice+are+related+to+earlier+hair+cell+cycle+exit%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Smaller inner ear sensory epithelia in Neurog 1 null mice are related to earlier hair cell cycle exit.</a> Dev Dyn. 234 (3), 633-650 (2005).</li>
<li>Lee, Y. S., Liu, F., Segil, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+morphogenetic+wave+of+p27Kip1+transcription+directs+cell+cycle+exit+during+organ+of+Corti+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A morphogenetic wave of p27Kip1 transcription directs cell cycle exit during organ of Corti development.</a> Development. 133 (15), 2817-2826 (2006).</li>
<li>Chen, P., Segil, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p27%28Kip1%29+links+cell+proliferation+to+morphogenesis+in+the+developing+organ+of+Corti%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">p27(Kip1) links cell proliferation to morphogenesis in the developing organ of Corti.</a> Development. 126 (8), 1581-1590 (1999).</li>
<li>Hasson, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unconventional+myosins+in+inner-ear+sensory+epithelia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Unconventional myosins in inner-ear sensory epithelia.</a> J Cell Biol. 137 (6), 1287-1307 (1997).</li>
<li>Barclay, M., Ryan, A. F., Housley, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type+I+vs+type+II+spiral+ganglion+neurons+exhibit+differential+survival+and+neuritogenesis+during+cochlear+development%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Dev%22%5BJournal%5D)">Type I vs type II spiral ganglion neurons exhibit differential survival and neuritogenesis during cochlear development.</a> Neural Dev. 6, 33(2011).</li>
<li>Bermingham, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Math1%3A+an+essential+gene+for+the+generation+of+inner+ear+hair+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Math1: an essential gene for the generation of inner ear hair cells.</a> Science. 284 (5421), 1837-1841 (1999).</li>
<li>Izumikawa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auditory+hair+cell+replacement+and+hearing+improvement+by+Atoh1+gene+therapy+in+deaf+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Auditory hair cell replacement and hearing improvement by Atoh1 gene therapy in deaf mammals.</a> Nat Med. 11 (3), 271-276 (2005).</li>
<li>Kim, W. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NeuroD-null+mice+are+deaf+due+to+a+severe+loss+of+the+inner+ear+sensory+neurons+during+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">NeuroD-null mice are deaf due to a severe loss of the inner ear sensory neurons during development.</a> Development. 128 (3), 417-426 (2001).</li>
<li>Liu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+role+of+BETA2%2FNeuroD1+in+development+of+the+vestibular+and+auditory+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Essential role of BETA2/NeuroD1 in development of the vestibular and auditory systems.</a> Genes Dev. 14 (22), 2839-2854 (2000).</li>
<li>Ma, Q., Anderson, D. J., Fritzsch, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurogenin+1+null+mutant+ears+develop+fewer%2C+morphologically+normal+hair+cells+in+smaller+sensory+epithelia+devoid+of+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Assoc+Res+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Neurogenin 1 null mutant ears develop fewer, morphologically normal hair cells in smaller sensory epithelia devoid of innervation.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 1 (2), 129-143 (2000).</li>
<li>Pang, Z. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+human+neuronal+cells+by+defined+transcription+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Induction of human neuronal cells by defined transcription factors.</a> Nature. 476 (7359), 220-223 (2011).</li>
<li>Vierbuchen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+fibroblasts+to+functional+neurons+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors.</a> Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+single-step+induction+of+functional+neurons+from+human+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Rapid single-step induction of functional neurons from human pluripotent stem cells.</a> Neuron. 78 (5), 785-798 (2013).</li>
<li>Blanchard, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+conversion+of+fibroblasts+into+peripheral+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Selective conversion of fibroblasts into peripheral sensory neurons.</a> Nat Neurosci. 18 (1), 25-35 (2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

IMOP Kültürleri İzleme Yeni bir iMOP hücre çizgisinin farklılaşmasını kendini yenileme korunması ve geliştirilmesi için bir protokol açıklanan ve ek kaplama biçimleri (Tablo 1) yer almaktadır. Rutin genişleme ve iMOP hücrelerin farklılaşması yardımcı Birkaç kritik adımlar belirtilmiştir. Pluripotent kök hücre kültürleri benzer, iMOP hücreleri teorik belirsiz ömrünü var. Hücre hatları düzgün korunur emin olmak için, iMOP kültürleri rutin hücre canlılığı, kend...

A correction was made to the Authors section in: <a href="http://www.jove.com/video/53692">Initiating Differentiation in Immortalized Multipotent Otic Progenitor Cells</a>.
One of the authors' names was corrected from:
Jadali Azadeh
to:
Azadeh Jadali

A correction was made to the Authors section in: <a href="http://www.jove.com/video/53692">Initiating Differentiation in Immortalized Multipotent Otic Progenitor Cells</a>.

Erratum: Initiating Differentiation in Immortalized Multipotent Otic Progenitor Cells

İç kulağın organları olan koklea, utrikül, sakkül ve üç yarım daire kanalı, işitme ve denge yeteneğine aracılık eder. Koklea içinde, tüy hücreleri sesleri spiral ganglion nöronlarına (SGN) iletilen elektrik sinyallerine dönüştürür. SGN'ler, nöral sinyalleri işitsel devre boyunca yaymak için aksiyon potansiyellerini ateşler. Genetik mutasyonlar, ototoksik ilaçlar ve yüksek seslere maruz kalma, işitme kaybına neden olan tüy hücresi ve SGN ölümüne katkıda bulunur1-4. Bir kez kaybolduktan sonra, bu hücreler değiştirilmez. Yeni ortaya çıkan saç hücreleri veya SGN'ler oluşturmak için iPSC ve ESC'nin kullanılması, iç kulak hücresi replasman tedavileri için büyük umut vaat etmektedir5-8. Bir ilerleme telaşı, pluripotent kök hücrelerin ve iç kulak kaynaklı progenitörlerin, olgunluğun çeşitli aşamalarında saç hücrelerine ve SGN'lere farklılaşabildiğini göstermiştir. Memeli embriyonik kök hücreleri (ESC) ve indüklenmiş pluripotent kök hücreler (iPSC), fonksiyonel saç hücreleri ve SGN'ler9-11 oluşturmak için kullanılabilir. Memeli iç kulağından türetilen kök hücrelerin ve progenitör hücrelerin, in vivo hücresel muadilleri12-16'nın özelliklerine sahip tüy hücreleri ve nöronlar oluşturduğu da gösterilmiştir. 
Kaybedilen saç hücrelerinin ve SGN'lerin yerine iPSC veya ESC'den türetilmiş otik progenitörlerin kullanılması, verimli bir farklılaşma gerektirir. İç kulakta aşılanmış kök kaynaklı progenitörlerin yanlış farklılaşması veya sürekli çoğalması, iç kulak fonksiyonunu şiddetlendirebilir ve iç kulakta teratom oluşumu gibi tümörjenik bir risk oluşturabilir17. Kültür koşullarının geliştirilmesine ve otik öncüllerin farklılaşmasının anlaşılmasına açık bir ihtiyaç vardır. Bu yöntemlerin geliştirilmesindeki bir strateji, iç kulak gelişimi sırasında nörosensoriyel progenitörler tarafından verilen hücre kaderi kararlarını özetlemektir. Proliferasyonu önleyen ve otik progenitörleri saç hücrelerine veya SGN'lere yönlendiren protokoller, replasman tedavilerinin güvenliğini ve etkinliğini artırmaya yardımcı olacaktır. 
Gelişim sırasında, iç kulak, eşkenar dörtgen 5 ve 6 arasındaki sınırlı bir bölgede yüzey ektoderminin kalınlaşmasıyla başlar ve otik plakod haline gelir. Otik plakod, bir otik kap oluşturmak üzere istila ederken, otik kabın ön bölgesindeki bir hücre topluluğu, tüy hücrelerinin öncüllerini ve iç kulağın nöronlarını içeren nöral-duyusal-yetkin alana (NSD) yol açar18. İç kulak gelişmekte olan fare, tavuk ve zebra balıklarından yapılan kader haritalama çalışmaları, duyusal tüy hücrelerine, çevredeki destek hücrelerine ve otik nöronlara yol açan çoklu nörosensoriyel progenitör popülasyonlarını göstermektedir19-22. Yüksek hareketlilik grubu transkripsiyon faktörü, Sox2, duyusal hücre spesifikasyonunda rol oynamış ve iç kulak progenitörleri için bir belirteç olarak kullanılmıştır23,24. İç kulakta Sox2 ekspresyon seviyelerini azaltan hipomorfik mutasyonlar, kokleadaki tüy hücrelerinin, destek hücrelerinin ve SGN'lerin kaybına neden olur25,26. 
Hücre kaderi kararlarına tabi tutulan otik progenitör hücreleri incelemek için, Sox2'den koklear progenitörleri eksprese eden kader kısıtlı bir ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitör (iMOP) hücre hattı daha önce kurulmuştu. iMOP hücreleri orijinal olarak embriyonik E12.5-13.5 kokleadan türetilmiş ve bir c-Myc retrovirüsü ile enfekte edilmiştir27. iMOP hücreleri, otosfer olarak bilinen koloni oluşturan hücreler olarak sürekli olarak çoğalabilir ve tüy hücrelerine, destekleyici hücrelere ve SGN'lere farklılaşma kapasitesine sahiptir27. iMOP hücrelerinin farklı otik soylara farklılaşma kapasitesinin anlaşılması, bu bulguların iPSC veya ESC'den türetilmiş saç hücreleri ve SGN'leri verimli bir şekilde üretmek için uygulanmasına olanak tanır. Etkili farklılaşma protokolleri, geleneksel tedavilere karşı inatçı olan iç kulak hastalıklarının hücre replasman tedavileri için yeni yollar açacaktır. İn vitro hücre kültürü ile otik hücrelerin üretilmesinde çok önemli bir konu, hücrelerin farklılaşma geçirip geçirmediğini belirlemeye yardımcı olan farklılaşma belirteçlerine sahip olmaktır. Cdkn1b (p27KIP), gelişmekte olan iç kulakta farklılaşma için erken bir belirteç olarak yaygın bir şekilde kullanılmıştır, ancak iMOP hücrelerinde Cdkn1b'nin ekspresyonu ve farklılaşma ile nasıl ilişkili olduğu ele alınmamıştır. Bu çalışmada, mevcut kültür koşulları ve Cdkn1b ekspresyonunun iMOP farklılaşmasının diğer belirteçleri ile nasıl ilişkili olduğu açıklanmaktadır.

<table><tbody><tr><td>CoolCell LX Alkolsüz Hücre Dondurma Kapları</td><td>BioCision</td><td>BCS-405</td><td></td></tr><tr><td>Kriyojenik Şişeler (2 ml)&nbsp;</td><td>Corning</td><td>430654</td><td></td></tr><tr><td>1.5 Kalınlıkta Cam Layer (Yuvarlak 12 mm)Elektron</td> <td>Mikroskobu Bilimleri</td><td>72230-01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>11320-082</td><td></td></tr><tr><td>Nörobazal Orta Yaşam</td><td>Teknolojileri</td><td>21103</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Salin (PBS) pH 7.4</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Hank's Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>14025-092</td><td></td></tr><tr><td>B27 Takviyesi (50X) Serumsuz</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>17504-044</td><td>1 ml alikot olarak saklanır</td></tr><tr><td>L-Glutamin (200 mM)&nbsp;</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>25030-081</td><td>5 ml alikot olarak saklanır</td></tr><tr><td>Doğal Fare Laminin</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>23017-015</td><td>1 mg/ml alikot olarak saklanır</td></tr><tr><td>Click-iT EdU Alexa Fluor 488&nbsp;</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>C10337</td><td></td></tr><tr><td>Synth-A-Freeze Kriyoprezervasyon Ortamı</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>A12542-01</td><td></td></tr><tr><td>Uzatılmış Altın Antifade Mountant</td><td>Life Technologies</td><td>47743-736</td><td>10 mg / ml 100 ve mikro olarak saklanır; l aliquots</td></tr><tr><td>Moxi Z Mini Otomatik Hücre Sayacı</td><td>Orflo&nbsp;</td><td>MXZ001</td><td></td></tr><tr><td>Moxi Z Kaset Tipi S</td><td>Orflo&nbsp;</td><td>MXC002</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant Murin Fibroblast Büyüme Faktörü, bazik (bFGF)</td><td>Peprotech</td><td>450-33</td><td>H20'de% 0.1 BSA'da yeniden süspanse edilir ve 20 mg / ml alikotlar olarak saklanır</td></tr><tr><td>Poly-D-Lizin</td><td>Sigma</td><td>P7886</td><td>1X PBS'de yeniden askıya alınır ve 10 mg / ml 100 & mikro olarak saklanır; l alikotlar</td></tr><tr><td>Karbenisilin, Disodyum Tuzu</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>BP2648-1</td><td>10 mM Hepes pH 7.4'te yeniden süspanse edilmiş ve 100 mg / ml alikot olarak saklanmış 5</td></tr><tr><td>ml pipet ayrı ayrı sarılmış karton kapaklı (200/kutu)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>1367811D</td><td></td></tr><tr><td>10 ml pipet ayrı ayrı sarılmış karton kapaklı (200/kutu)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>1367811E</td><td></td></tr><tr><td>Doku Kültürü Tedavi Edilmiş Biolite 24 Kuyulu Plaka</td><td>Thermo Fisher Bilimsel</td><td>130188</td><td></td></tr><tr><td>Doku Kültürü Tedavi Edilmiş Biolite 6 Kuyulu Plaka</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>130184&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Doku Kültürü İşlem Görmüş 6 cm Çanak</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>130181&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>EMD Millipore Millex Steril Şırınga PVDF Filtre Gözenek boyutu: 0.22 &mu; m</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>SLGV033RS</td><td></td></tr><tr><td>TipOne filtreli pipet uçları 0,1 - 10 &mu; l uzun filtre ucu</td><td>USA Scientific</td><td>1120-3810</td><td></td></tr><tr><td>TipOne filtre pipet uçları 1 - 20 &mu; l filtre ucu</td><td>USA Scientific</td><td>1120-1810</td><td></td></tr><tr><td>TipOne filtre pipet uçları 1 - 200 &mu; l&nbsp; filtre ucu</td><td>USA Scientific</td><td>1120-8810</td><td></td></tr><tr><td>TipOne filtre pipet uçları 101 - 1000 &mu; l filtre ucu</td><td>USA Scientific</td><td>1126-7810</td><td></td></tr><tr><td>15 ml konik tüpler steril 20 torba 25 tüp (500 tüp)</td><td>USA Scientific</td><td>1475-0511</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik tüpler steril 20 torba 25 tüp (500 tüp)</td><td>USA Scientific</td><td>1500-1211</td><td></td></tr></tbody></table>

Ölümsüzleştirdi multipotent otic progenitor hücrelerde farklılaşma başlatılıyor

Initiating Differentiation in Immortalized Multipotent Otic Progenitor Cells

Hücre replasman tedavileri için insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerin (iPSC) veya embriyonik kök hücrelerin (ESC) kullanımı büyük umut vaat ediyor. Düşük verim ve farklılaşmış hücrelerin heterojen popülasyonları dahil olmak üzere çeşitli sınırlamalar, kök hücre tedavilerinin ilerlemesini engellemektedir. İç kulak hücresi replasman tedavileri için çok sayıda fonksiyonel saç hücresinin ve spiral ganglion nöronlarının (SGN) verimli bir şekilde farklılaşmasını kolaylaştırmak için kader kısıtlı ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitör (iMOP) hücre hattı oluşturuldu. Tek iMOP hücrelerinin ayrışmış kültürlerinden başlayarak, bazik fibroblast büyüme faktörü (bFGF) çekilmesi ile hücre döngüsü çıkışını ve farklılaşmasını destekleyen protokoller tanımlanmıştır. bFGF çekilmesinden sonra çoğalan hücrelerde önemli bir azalma, bir EdU hücre proliferasyon testi kullanılarak doğrulandı. Proliferasyondaki azalma ile birlikte, başarılı farklılaşma, moleküler belirteçlerin ekspresyonu ve morfolojik değişiklikler ile sonuçlandı. iMOP'tan türetilmiş otosferlerde Cdkn1b (p27KIP) ve Cdh1'in (E-kaderin) immün boyaması, iç kulak duyusal epiteline farklılaşma için bir gösterge olarak kullanılırken, Cdkn1b ve Tubb3'ün (nöronal β-tubulin) immün boyaması iMOP'tan türetilmiş nöronları tanımlamak için kullanıldı. iMOP hücrelerinin kullanımı, iç kulak nörosensoriyel progenitörleri tarafından verilen hücre kaderi kararlarını anlamak için önemli bir araç sağlar ve çok sayıda iPSC veya ESC'den türetilmiş tüy hücresi ve SGN oluşturmak için protokoller geliştirmeye yardımcı olur. Bu yöntemler, replasman tedavileri için otik hücreler üretme çabalarını hızlandıracaktır.

IMOP Hücreleri bFGF Çekilme Azaltmaktadır Çoğalma IMOP hücrelerin proliferatif kapasitesinin azaltılması ve iMOP hücrelerinin farklılaşmasını başlatmak için, bFGF kültürlerinden geri çekildi. Büyüme faktörü çekilmesi çoğalmasını azaltır olduğunu doğrulamak için, edu dahil bir çoğalma tahlilinde olarak kullanılmıştır. (BFGF) olmadan iMOP kültür ortamı (bFGF ihtiva eden) ve duyusal epitelyum ortamında kültürlenm...

Ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitör (iMOP) hücreleri ve otik farklılaşmayı sürdürmek için mevcut protokoller açıklanmıştır. Duyusal epitel ve spiral ganglion nöronlarına (SGN) farklılaşmayı gösteren kültür koşulları ve moleküler belirteçler vurgulanır.

Ölümsüzleştirdi Multipotent Otic Progenitor Hücrelerde Farklılaşma başlatılıyor

Use of human induced pluripotent stem cells (iPSC) or embryonic stem cells (ESC) for cell replacement therapies holds great promise. Several limitations ...

Bu prosedürün genel amacı, ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitör hücreleri iç kulak hücresi tiplerine ayırmaktır. Dolayısıyla bu yöntem, otik progenitörlerin nasıl koklear saç hücreleri veya işitsel nöronlar haline gelebileceği gibi işitsel rejenerasyondaki temel soruları ele almamıza yardımcı olabilir. Daha da önemlisi, bu teknik, in vivo memeli hayvan model sistemlerine paralel olarak kullanılabilecek bir in vitro hücresel sistem sağlar.Bugün prosedürü göstermek, laboratuvarımda doktora sonrası bir araştırmacı olan Azadeh Jadali'nin yanı sıra laboratuvardaki iki yüksek lisans öğrencisi olan Zhichao Song ve Alejandra Laureano olacak. Kültür ortamını metin protokolünde tarif edildiği gibi hazırladıktan sonra, bu sıvının üç mililitresini 60 milimetrelik bir doku kültürü kabına altıncı ölümsüzleştirilmiş multipotent progenitöre veya IMOP hücrelerine bir kez on kez plakalamak için kullanın. Hücreleri yüzde beş karbondioksit ile 37 santigrat derecede beş ila yedi gün inkübe edin.Her gün, taze ortam ekleyerek kültürdeki sıvı hacmini iki katına çıkarın. Hücreleri geçirmek için önce onları kültür kabından 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Ve sonra tüpü 37 santigrat derecede beş ila on dakika boyunca yerleştirin.Bu süre zarfında, koloni oluşturan otosferlerin yerçekimi sedimantasyonu yoluyla koninin dibinde toplanmasını bekleyin. Ardından, paleti rahatsız etmemeye dikkat ederek süpernatanı aspire edin. 0,5 mililitre önceden hazırlanmış önceden ısıtılmış, bir milimolar EDTA ile zenginleştirilmiş dengeli tuz çözeltisi veya HBSS ekleyerek ve ardından iki ila üç kez yukarı ve aşağı pipetleyerek otosferleri yeniden askıya alın.Otosferlerin tek hücrelere ayrılmasını kolaylaştırmak için, konikliği 37 santigrat derecede bir inkübatöre yerleştirin. Çözeltiyi periyodik olarak döndürün ve tüpün dibinde tortu olarak hiçbir otosfer gözlenmediğinde, oda sıcaklığına getirin. EDTA'yı nötralize etmek için hücrelere iki mililitre kültür ortamı eklemeye devam edin.Ve onları oda sıcaklığında 200 g'da beş dakika santrifüjleyin. Daha sonra seyreltilmiş EDTA çözeltisini aspire edin ve hücreleri beş mililitre 1x PBS'de yıkayın. Aynı ayarları kullanarak hücreleri döndürdükten sonra 1x PBS'yi aspire edin.Daha sonra, konik üzerine 0,5 mililitre kültür ortamı ekleyin. Ve hücre paletini yeniden askıya alın. Saymak için, IMOP hücrelerini kültür ortamında bir ila yüz oranında seyreltin.Daha sonra bu çözeltiden 75 mikrolitreyi bir mikroakışkan parçacık sayacına yerleştirilmiş bir kasete ekleyin ve hücre numarasını belirleyin. Daha sonra, daha önce tarif edildiği gibi 60 milimetrelik bir doku kültürü kabında on ila altıncı IMOP hücrelerini bir kez plakalayın ve bu geçiş prosedürünü her beş ila yedi günde bir tekrarlayın. Kaplamadan üç gün sonra, daha önce gösterildiği gibi otosferleri toplamak için yerçekimi sedimantasyonunu kullanın.Süpernatanı aspire etmeye devam edin. Ve hücreleri iki mililitre duyusal epitelyal farklılaşma ortamında nazikçe yeniden süspanse edin. Ardından, otosferleri 60 milimetrelik yeni bir tabağa aktarmak için on mililitrelik geniş gözenekli bir pipet kullanın.Otosferleri on gün boyunca ayırt edin. Kültüre her gün iki mililitre taze farklılaştırma ortamı eklemek. Daha sonra, otosferleri yerçekimi sedimantasyonu yoluyla tekrar hasat edin.Ve harcanan ortamı aspire edin. Daha sonra, otosferleri oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 1x PBS'de yüzde dört paraformaldehit içinde sabitleyin. Daha sonra formaldehit çözeltisini çıkarın ve hücreleri yüzde 0.1 Triton x100 içeren 1x PBS'de yıkayın.Yüzde on keçi serumu ve yüzde 0.1 Triton x100 ile desteklenmiş 1x PBS'de otosferleri bloke ederek devam edin. Bir saat sonra, bloke edici tamponu, Cdkn1b veya CDH1 antikorunun uygun seyreltmesini içeren tamponla değiştirin. Daha sonra hücreleri birincil antikorda gece boyunca dört santigrat derecede inkübe edin.Ve ertesi gün, başka bir yerde tarif edildiği gibi floresan etiketli ikincil antikorlar, Phalloidin ve Hoechst kullanarak immün boyamaya devam edin. Görüntülemeye hazırlanmak için montaj ortamını bir cam slayt üzerine yerleştirin. Ve sonra lekeli otosferleri ortama sokun.Ardından, numunenin üzerine bir kapak fişi yerleştirin. Montaj ortamının gece boyunca dört santigrat derecede kurumasına izin verdikten sonra, slaytı 16 bit CCD kamera ile donatılmış ters çevrilmiş bir mikroskop sahnesine yerleştirin. 20x 0.75 hava objektifini kullanarak mavi, yeşil, kırmızı ve kızılötesi kanallardan veri toplayarak epifloresan görüntüler elde edin.İlk olarak, yuvarlak cam kapak kızaklarını steril 100 milimetrelik bir plakaya yerleştirerek ve yüzde 70 etanole batırarak temizleyin. Örtüldüklerinden emin olmak için kapak fişlerini hafifçe çalkalayın ve tabağı on dakika oda sıcaklığında bırakın. Ardından, kapak fişlerini steril 1x PBS'de üç kez ve ardından steril su ile bir kez durulayın.Daha sonra kapak kaymalarını 15 dakika boyunca bir doku kültürü başlığında UV ışığına maruz bırakarak kurumaya bırakın. Hemen kullanım için, 24 oyuklu bir plakanın her bir oyuğuna bir steril kapak fişi yerleştirin. Ve tüm kapak kızaklarının düz durduğundan emin olmak için plakayı hafifçe sallayın.Daha sonra, her bir oyuğa mililitre poli D lizin başına 10 mikrogam içeren 0.25 mililitre 1x PBS ekleyerek kapak fişlerini kaplayın. Plaka 37 santigrat derecede bir saat inkübe edildikten sonra, poli D lizin çözeltisini çıkarın ve kuyuları steril 1x PBS ile üç kez yıkayın. Son yıkamadan gelen sıvı aspire edildikten sonra, 24 kuyucuğun her birine mililitre Laminin başına 10 mikrogram içeren 0.25 mililitre 1x PBS ekleyin.Plakayı gece boyunca 37 santigrat derecede inkübe ettikten sonra, Laminin çözeltisini aspire edin, daha sonra her bir kuyucuğu üç kez bir mililitre 1x PBS ile yıkayın, ancak hücreler kaplanmaya hazır olana kadar PBS'yi kuyucuklardaki son yıkamadan bırakın. Nöronal farklılaşmaya başlamak için, daha önce tarif edildiği gibi ayrışmış otosferlerden hücreleri sayın. Ve sonra onları önceden ısıtılmış nöronal farklılaşma ortamında yeniden süspanse edin.Kaplanmış örtü fişlerini içeren plakanın her bir oyuğuna bir ile bir nokta arasında, beş çarpı on ila beşinci IMOP hücrelerini tohumlayarak devam edin. Plakayı yüzde beş karbondioksit ile 37 santigrat derecede inkübe edin. Nöronal farklılaşma ortamını her gün değiştirmek.Yedi gün sonra, ortamı aspire edin ve her bir oyuğa yüzde dört formaldehit ekleyerek kapak fişlerine takılması gereken hücreleri sabitleyin. Ve onları oda sıcaklığında 15 dakika bekletin. Daha sonra formaldehiti çıkarın ve hücreleri yüzde 0.1 Triton x100 içeren 1x PBS'de bir kez yıkayın.Ardından, yıkama tamponunu çıkarın. Ve her bir oyuğa yüzde on normal keçi serumu ve yüzde 0.1 Triton x100 içeren 1x PBS'den oluşan bloke edici tampon ekleyin. Hücreleri oda sıcaklığında bir saat bekletin.Daha sonra sıvıyı çıkarın ve uygun Cdkn1b veya Tubb3 antikorunun seyreltilmesini içeren bloke edici tampon ile değiştirin. Dört santigrat derecede bir gece inkübasyonun ardından, hücreleri bir kez yüzde Triton x100 içeren 1x PBS ile yıkayın. Ve sonra daha önce açıklandığı gibi immün boyama ile devam edin.Boyama tamamlandıktan sonra, kuyucuklara 1x PBS ekleyerek son bir yıkama yapın. Bunları analize hazırlamak için, lekeli hücrelerin tutturulduğu kapak fişlerini 24 oyuklu plakadan çıkarın. Ve bunları bir cam slayt üzerindeki montaj ortamına yerleştirin.Montaj ortamının gece boyunca dört santigrat derecede kurumasına izin verdikten sonra, daha önce açıklandığı gibi epifloresan görüntüleri elde edin. Epitelyal farklılaşma ortamında on gün boyunca kültürlenen otosferler, farklılaşmamış hücrelere kıyasla artmış Cdkn1b ekspresyonu, döngüye bağlı bir kinaz inhibitörü ve iç kulak farklılaşması için belirteç gösterir. Burada Hoechst boyaması hücre çekirdeklerini not etti.Bu hücreler ayrıca aktin filamentlerinde ve epitelin karakteristik hücre-hücre yapışma bölgelerinde morfolojik değişiklikler sergiler. Hücre periferilerinde Phalloidin ve Cdh1 etiketlemesinin görünümü ile gösterilir. Otosferler ayrıca nöronlar oluşturmak için yönlendirilebilir.Bu parlak alan görüntüsü, nöronal farklılaşma ortamında yedi gün geçirdikten sonra, IMOP hücrelerinin nöritler sergilediğini göstermektedir. Bu hücrelerin bir nöronal belirteç Tubb3 ile immün boyanması, farklılaşmalarını doğrular. Ve ayrıca Cdkn1b'yi sağlam bir şekilde ifade ederler.Bu, çift Tubb3, Cdkn1b sinyalinin IMOP hücrelerinde nöronal farklılaşmanın bir göstergesi olarak kullanılabileceğini düşündürmektedir. Cdkn1b floresan diferansiyel ve diferansiyel olmayan hücreler de Hoechst sinyaline oranı belirlenerek normalize edildi ve kantitatif sonuçlar elde edildi. Bu verilerin histogramları burada gösterilmektedir.Normalleştirilmiş Cdkn1b'nin önceden belirlenmiş bir eşiğinin üzerindeki farklılaşmamış ve farklılaşmış IMOP hücrelerinin yüzdeleri bu grafiklerde sunulmaktadır. Her iki farklılaşmış popülasyon, farklılaşmamış kontrollere kıyasla Cdkn1b'yi eksprese eden hücrelerin yüzdesinde önemli bir artış gösterir ve bu da immünofloresan tarafından önerilen farklılaşmayı doğrular. Bir kez ustalaştıktan sonra, IMOP hücrelerinin rutin kültürü ve farklılaşması, uygun şekilde yapılırsa 30 dakika içinde yapılabilir.Bu videoyu izledikten sonra, IMOP hücrelerinin farklılaşmasını nasıl başlatacağınızı iyi anlamış olmalısınız. Bu videoyu izlediğiniz için teşekkür ederiz. Ve deneylerinizde iyi şanslar.

initiating-differentiation-immortalized-multipotent-otic-progenitor

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Biz küçük bir molekül tabanlı oligodendrosit öncü hücreler (OPC) içine fare embriyonik kök hücreleri farklılaşma için protokol açıklar. Bu protokol, 30 gün farklılaşma, yüksek verimlilik ile Olig2 + NG2 + OPC üretir. Ayrıca, aksiyon potansiyelleri ateş "spike" OPC oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır.

Embriyonik Kök Hücreler farklılaşma oligodendrosit Öncüleri

İlköğretim, insan fetal beyin-türevli, multipotential progenitör hücreler...

İnsan Fetal Beyin gelen Progenitör-türetilmiş Oligodendrosit Kültür Sistemi

Bu video, insan embriyonik kök hücrelerinin veya hESC'lerin, besleyici hücreler veya herhangi bir ara adım kullanmadan doğrudan nöral progenitör hücrelere farklılaşmasını göstermektedir. Kemik morfogenetik proteininin veya BMP'nin seçici inhibisyonu ve transforme edici büyüme faktörü-beta veya TGF-β sinyal yolakları, hESC'lerin nöral progenitör hücrelere veya NPC'lere farklılaşmasına yol açar.

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Nöral Progenitörlere Farklılaşması

Bu video, insan embriyonik kök hücrelerinden oligodendrosit öncü hücrelerinin (OPC'ler) üretilmesi sürecini ve ardından OPC'lerin oligodendrositlere olgunlaşmasını göstermektedir. Bu oligodendrosit üretme süreci, Alzheimer da dahil olmak üzere nörodejeneratif hastalıkların araştırma ve tedavisini iyileştirmek için çok sayıda yol açar.

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Oligodendrositlere Farklılaşması

Bu video, insan kaynaklı nöronların (iN'ler) ve indüklenmiş oligodendrosit öncü hücrelerinin (iOPC'ler) bir ko-kültürünün kurulmasını göstermektedir. iN'ler bir ko-kültürde iOPC'lerle karıştırılır ve daha sonra her iki iN'nin nöronlara ve iOPC'lerin oligodendrositlere olgunlaşmasını desteklemek için inkübe edilir. Nöronlar, diğer nöronlar ve oligodendrositlerle sinaptik bağlantılar oluştururken, oligodendrositler, nöronların aksonlarının etrafında miyelin kılıfları geliştirir.

Nöron-Oligodendrosit Etkileşimlerini Modellemek için Bir Ko-Kültür Yöntemi

Bu video, ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitör (iMOP) hücrelerin duyusal epitel hücrelerine farklılaşmasını göstermektedir. Başarılı hücre farklılaşmasını doğrulamak için iMOP hücrelerinin kültürlenmesi, otosferlerin oluşturulması, farklılaşmanın indüklenmesi ve hücresel bileşenlerin ve farklılaşma belirteçlerinin floresan mikroskobu aracılığıyla görselleştirilmesiyle ilgili adımları ana hatlarıyla belirtir.

Otik progenitör hücrelerin duyusal epitel hücrelerine farklılaşması ve ardından immün boyama

Video, ölümsüzleştirilmiş multipotent otik progenitörlerin (iMOP'lar) spiral ganglion nöronlarına (SGN'ler) farklılaşmasını ve farklılaşmanın immünofloresan temelli doğrulanmasını göstermektedir. iMOP'lar, SGN'lere farklılaşma için bir nöronal farklılaşma ortamında kültür substratı kaplı lameller üzerine kaplanır. Farklılaşmış hücreler, nöronal farklılaşma belirteçlerine özgü antikorlarla etiketlenir ve farklılaşmayı doğrulamak için mikroskop altında analiz edilir.

Ölümsüzleşmiş Multipotent Otik Progenitörlerin Spiral Ganglion Nöronlarına Ayrılması ve Farklılaşmanın Değerlendirilmesi

Son yıllarda, in vitro kültür yöntemler kullanılarak germ hücre oluşumunu somatik kök hücrelerin birkaç farklı türde kullanılarak gösterilmiştir. Bu makale, görsel erken oosit benzeri hücrelere yeni doğan fare edilen kök hücrelerin farklılaşma sunacak.

Germ benzeri hücreler içine Yenidoğan Fare Cilt Türetilmiş Kök Hücre Farklılaşma<em&gt; In vitro</em

Protokol, çevresel kan mononükleer hücrelerin yeniden programlanması ile sinirsel kök hücrelerini Sendai virüs enfeksiyonu, dopaminerjik nöronlar içine inscs farklılaşma, tek taraflı-lesioned içine da öncüleri transplantasyon teşvik sunar Parkinson hastalığı fare modelleri ve PD tedavisi için iNSC-türetilen DA öncüleri güvenlik ve etkinliğini değerlendirilmesi.

Periferik mononükleer hücrelerden Indüklenen nöral kök hücrelerin üretimi ve transplantasyon çalışmaları için Dopaminergic neuron precursors doğru farklılaşma

Nörodejenerasyonda nöron-glial etkileşimler yetersiz araç ve yöntemler nedeniyle iyi anlaşılamamıştır. Burada, insan pluripotent kök hücrelerinden indüklenmiş nöronlar, oligodendrosit öncü hücreleri ve oligodendrositler elde etmek için optimize edilmiş protokolleri açıklıyoruz ve Alzheimer hastalığında hücre tipine özgü katkıları anlamada bu yöntemlerin değerlerine örnekler sunuyoruz.

Nöron-Oligodendrosit Etkileşimlerini Modellemek için Pluripotent Kök Hücrelerden İnsan Nöronlarının ve Oligodendrositlerin Üretilmesi

Bu protokol, insan osteoklastlarının indüklenmiş pluripotent kök hücrelerden (iPSC'ler) ayırt edilmesini sunar ve osteoklastların ve osteoklast öncüllerinin karakterizasyonu için yöntemleri açıklar.

İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücrelerden Osteoklastların Farklılaşması ve Karakterizasyonu

Öğrenin iMOP hücrelerinin iç kulak hücre tiplerine farklılaşmasını. Bu yöntem işitme rejenerasyonu ve koklear saç hücreleri gelişimi araştırmalarında değerli bir in vitro model sunar.

Ölümsüzleştirdi Multipotent Otic Progenitor Hücrelerde Farklılaşma başlatılıyor

Daha fazla video keşfet