Name: Uyanık Farelerde Nöroaktif Maddelerin Microiontophoretic Uygulaması ile birlikte Nöronal Faaliyet dışı Kaydı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: Öğrenin uyanık farelerde mikroiyontoforez yöntemiyle sinaptik girdileri manipüle etmeyi ve nöroaktif maddelerin duyusal işlemedeki rolünü anestezi etkisi olmadan incelemeyi. Bu teknik sinirbilim araştırmaları için güçlü bir araç sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

MINECO tarafından finanse edildi Bu proje BFU201343608-P ve PSI2013-49348-EXP ve ARP MSM ve MRC çekirdek fonlarına JCYL hibe SA343U14 verir. YAA bir CONACyT (216106) ve Eylül dostluk düzenledi.

Tüm deney prosedürleri onayı ile Salamanca Üniversitesi&#39;nde yürütülen edildi ve standartlarına uygun yöntemler kullanılarak, Salamanca Hayvan Bakım Komitesi Üniversitesi yanı sıra Avrupa Birliği standartları (Direktif 2010/63 / EU) için nörolojik araştırma hayvanların kullanımı. 1. Tungsten elektrotlar Not:. Tungsten elektrot üretimi Merrill ve Ainsworth 27 ve Ainsworth ve arkadaşları 28&#39;de tarif edilen özgün tekniğe göre ve Bullock ve ark 17&#39;de tanımlanan iş istasyonu kurulumu kullanılarak gerçekleştirilir.. <ol><li> 2.5 M? - IC nöronların tek ünite dışı aktivite kayıt, 1.5 ucu empedansı ile elektrotlar kullanın. ayrıntılı bir açıklaması, yukarıda belirtilen referanslarda bulunabilir, çünkü burada, tungsten elektrot üretiminde gereken adımlar, sadece kısaca tarif edilmektedir. </li><li> Bir özel yapılmış hizada tungsten tellerini yerleştirinaracı (Şekil 1A) istenilen uzunlukta kesilmesi yardımcı olmak için. Hizalama aracı teller ~ 40 mm uzunluğunu sınırlamak üzere bir ucunda bir stop 2 mm aralıklarla paralel olarak yapıştırılmış 30 iğne (25 g) oluşur. Dikkatle yapışkan bant ile tellerin gevşek uçları bağlamak ve güçlü makas ile tel kalanını kesti. </li><li> tüm teller bantla bağlı kalır emin, hizalama aracı tungsten tellerin kaldırmak için bant yavaşça çekin. İyi bir elektrik bağlantısı var bu yüzden milin karşı sıkıca telleri tutan, cilalı pirinç mili (Şekil 1B, C) ​​üzerine bant yuvarlayın. </li><li> Iş istasyonunda 5 rpm motor mili bağlayın ve bir aşındırma çözeltisi (KNO 2, 80 ml ​​başına 90 g) içine çıkıntılı tel ipuçları batırmayın. Açı dağlama çözeltisinin yüzeyinde 45 ° &#39;ekseni mili. tellerin ~ 1/3 çözüm temasa böylece tel ipuçları bırakın. </li><li> Immdevreyi kapatmak için aşındırma banyoya bir karbon çubuk elektrot ERSE. mili dönerken mili mile aşındırma kaynağını uygulamak için bir bahar bakır örgü fırça kullanın. elektrotlar ve 250 mA dağlama çözeltisi geçirilir o anki ayarlayın. Geçerli 200 mA düştüğünde ucu aşındırma durdurun. tel uçları çok ince noktaları kazınmış olacak. </li><li> herhangi bir yağ ve yapışkan kalıntılarını temizlemek için bir alev ile bir keskin tel geçmektedir. borosilikat cam boru içine tel (ilk kör uç) yerleştirin (1.5 mm OD, 0.86 mm iç çap) alt ucu modelleme kil ile bloke edildi. üst ve alt kısmında dikey pipet kelepçe. bir ısıtma bobini (çap 5 mm, derinliği 5 mm) ve bir asma pistonu kullanarak pipet çekin. Tel pistonun ağırlıkla aşağı doğru çekildiğinde, erimiş cam etrafında çok ince bir katman oluşturur. </li><li> sodyum erimiş boncuk yardımıyla elektrotun keskin sonunda ucunu örten cam kaldırtetraborat. Bir boncuk haline dönüşene kadar boncuk oluşturmak için, bir ısıtma elemanı üzerine yerleştirin yavaş yavaş, su (~ 0.5 mi), küçük bir miktarda, sodyum tetraborat (~ 0.25 g) karışımı ve • çapı 2 mm. Isıtıcı elementin sıcaklığı, bir potansiyometre ile kontrol edilir. masaya sabitlenmiş bir manipülatör kolunun üzerine boncuk ve ısıtma elementi yerleştirin ve boncuk düşük büyütmede mikroskop altında odaklanmış kadar hareket ettirin. </li><li> Bir slayta cam kaplı tel Güvenli ve mikroskop altında yerleştirin. ucu ve tetraborat boncuk odak kadar sahne kolları ile slayt taşıyın. biraz eriyene kadar boncuğu ısıtın ve tel ucu ~ 10 insert - 15 mikron. Isıtma potansiyometresini kapatın. boncuk soğuduktan gibi, sözleşmeleri ve altta yatan tungsten açığa elektrodun ucundan camı kaldırır. tungsten elektrot kullanıma hazırdır. </li></ol> 2. Multibarrel Cam Pipet İmalatı <ol><li> Çok uçlarını korumakvaril cam kapilerleri ısıyla daralan boru ile (H-konfigürasyonunda beş varil), çektirmenin kelepçeler daha iyi bir tutuş sağlamak ve kırılmaları önlemek ve dikey çektirmenin tane koyun. </li><li> Bu parametreler, özellikle kurulum göre, yanı sıra değiştirildikten sonra 38. İnce ayar: Isı: 84, Alt mıknatıs kuvveti: 49, Ana mıknatıs kuvveti 15 mm ~ ucu uzunlukları edinmek için aşağıdaki parametrelere çektirme ayarlayın Isıtma elemanı. </li><li> tıkalı ipuçları iki pipetler elde etmek için kılcal çekin. modelleme kil kullanarak bir slayt üzerinde bir pipet montaj ve dış çapı kadar ~ mikroskop altında 20 pipet kırmak - 30 mikron, ince makas veya forseps ya da bir neşter düz tarafını kullanarak. kırık kenar çok pürüzlü, adım 1.7&#39;de açıklanan tetraborat boncuk tekniğini kullanarak rafine. </li><li> 3 eksenli minyatür micropositioner sonunda 20 G iğne ile yapılan bir tutucuya (bölüm 1) tungsten elektrot yerleştirin mikroskop erkeklere üzerine montee. ~ Ucundan 30 mm 10 ° - forseps kullanarak, elektrodun 5 ucunu bükün. </li><li> Mikroskop altında, dikkatle multibarrel ucu üzerinde tungsten elektrot hizalayın. Bir kez hizalanmış, iki üst varil arasındaki oluğa uydurma, multibarrel o kadar kişileri elektrot indirin. uzakta multibarrel ucundan 20 mikron - bu ~ 15 çıkana kadar elektrot ucu kaydırın. elektrot ve daha iyi bir bağ elde etmek için mümkün olduğu kadar küçük multibarrel ve daha ince bir topluluk arasındaki açı yapar. </li><li> ipuçları uzak ışık-kurutmalı yapıştırıcı ~ 5 mm küçük bir damla uygulayın. tutkal multibarrel kanalları engellenmesini önlemek için ucu bulmuyor dikkatli olun. </li><li> Bir mavi ışık LED lamba kullanarak tutkal Cure. Gerekirse daha iyi yapışması için, yapışkan uygulama / sertleştirme tekrarlayın. </li><li> tungsten elektrot ucu, sahibinin serbest bırakılıncaya kadar hafifçe mikroskop sahne taşıyın. slayt domuz geri topluluk çıkarın. </li><li> inci Wrapkısa bir uzunlukta kumbara geri elektrot e orta bölüm tüp ısı büzülme ve daha multibarrel tungsten elektrot sabitlemek için cam için hızlı kür epoksi uygun olan uygulayın. </li></ol> Microiontophoresis 3. ilaçlar Not: su içinde çözündüğünde microiontophoresis için kullanılan ilaçlar, bir elektrik yükü olması gerekir. ilgi ilaç bu işlem için uygun olup olmadığını görmek için literatürü kontrol edin. Burada, gabazine prosedürü, GABA A reseptörünün bir antagonisti, tarif edilmektedir. <ol><li> suyu sterilize ve hiçbir çözünen içeren güvenli bir 0.2 mikron şırınga filtre kullanılarak damıtılmış su filtre. Bu distile su kullanılarak gabazine 20 mM ~ 1000 ul hazırlayın. </li><li> ince uçlu pH elektrodu kullanılarak 0.2 um filtre edildi NaOH ile 4&#39;e seyreltme pH ayarlayın. </li><li> -20 ° C&#39;de 200 ul alikotları - 100 saklayın. kayıt gününde defrost. O gün, hayvan önce dizginlemekBir esnek plastik bir iğneye sahip bir 100 ul mikroenjektör kullanılarak, ilaçla multibarrel elektrot - (5 ul 3) baskı, varil doldurun. </li></ol> 4. Cerrahi ve Headpost implantasyon <ol><li> 27 ve 30 g ağırlıkları ile iki erkek CBA / J farelerinin (Mus musculus) deneyleri yapın. Bryant ve arkadaşları 29 cerrahi ve kayıt prosedürleri uygulayın, Portfors ve işbirlikçileri 30-32 ve Duque ve Malmierca 26. </li><li> gün önce ameliyat olarak hayvanları ele almak ve onları özgürce keşfetmek için izin vererek kayıt odasına onları alıştırmak. Günde 3 seans, en az 30 dakika süren her birini gerçekleştirin. Bu şekilde hayvanların kayıtları sırasında sakin ve rahat olacak. </li><li> kas içinden enjekte edilen Ketamin (50 mg / kg) ve ksilazin (10 mg / kg) içindeki bir karışımı kullanarak fare anestezisi. Bu doz ile hayvan yaklaşık 1 saat boyunca derin anestezi. bir thir tamamlayıcı dozlarda vermekbaşlangıç ​​dozunun d gerektiği gibi. </li><li> 38 ± 1 ºC sıcaklık korumak ve iki kulak çubukları ve bir lokma çubuğunu kullanarak bir stereotaksik çerçeve içinde, hayvanın kafasını stabilize etmek için ayarlanmış bir ısıtma battaniye hayvan yerleştirin. kulak çubukları ile kulak zarına delmek için dikkatli olun. </li><li> oftalmik jel bir damla uygulayarak gözleri koruyun. </li><li> makas kullanılarak kafa derisi Tıraş ve cildi dezenfekte povidon-iyot uygulayın. </li><li> Bir neşter kullanılarak, kafatası maruz ve parietal ve oksipital kemiklerin daha rostral kısmını kaplayan periost geri çekmek için orta hat boyunca bir kesi yapmak. </li><li> Kafatası üzerinde bir yuvarlak ve düz tabanı (5 mm çapında) ile hafif duralümin headpost (ağırlık ~ 0.65 g, uzunluk 30 mm, Şekil 2A) Tutkal. headpost ücretsiz uçları bırakarak ortasında bir gümüş tel Tutkal. gümüş tel elektrofizyolojik kayıt için referans elektrot olarak kullanılır. </li><li> lig ince bir tabaka sürünht-kurutmalı kafatası üzerinde yapışkan ve headpost tabanı. 10 saniye bekleyin ve orta hat boyunca, parietal kemiklerin rostral alana headpost yerleştirin. </li><li> Etkili bir yapışma gücü, ışık 20 saniye süreyle bir mavi ışık kaynağı kullanılarak yapışkan tedavi. </li><li> üç delik etrafında ve elektrikli matkap ve küçük bir matkap ucu kullanarak headpost tabanına arkasında delin. </li><li> kafatası ve headstage arasında ek temas noktalarını hizmet etmek delinmiş deliklerde iki saat vidasını (~ 2 mm uzunluğunda) yerleştirin. vidalar 1 ½ bir rahat uyum elde etmek için döner gerektirir. Onlar gevşek olmadığından emin olmak için forseps ile vidaları kontrol edin. </li><li> emin kişileri Dura yapım üçüncü deliğe gümüş topraklama kablosunun ucunu yerleştirin. kafatasına teli bağlamak için su geçirmez siyanoakrilat yapıştırıcı küçük bir damla uygulayın. </li><li> kafatası ile headpost bağı güçlendirmek için ışıkla sertleşen kompozit uygulayın. headpost tabanını Kapak, gümüş tel düşük kısmı,ve dikkatli olmak vidalar, kayıt sırasında erişime izin vermek için, lambda arkasında uzatmak değil. mavi ışık kaynağı kullanılarak Cure. </li><li> Kafatasının üzerinde ekleme yakın boynun arkasındaki kas geri çekin. Küçük bir trefin (2.35 mm çapında) kullanılarak, alt kollikulusu (IC) ortaya çıkarmak için, sadece orta hatta lambda dikişine ve yanal altında bir yuvarlak pencere açın. Sınırlar gevşek olduğunda, ince cımbız ile kaplama kemiği yukarı çekin. Kanama oluşursa, bunu durdurmak için soğuk steril tuzlu su ile durulayın. </li><li> Kompozit ve hafif kür o pencerenin etrafında küçük (~ yüksek genişliğinde 1 mm ve ~ 1 mm) duvar yapmak. </li><li> antibiyotikli merhem ile maruz kafatası ve kas örtün. Sonra, kayıt penceresi etrafında duvar yaptıktan sonra iyice üretilen dolgu, steril serum fizyolojik ile IC maruz yüzeyini ıslak ve vazelin ile örtün. </li><li> bir analjezik olarak (steril tuzlu su içinde 1:10 oranında seyreltildi 0.03 mg / kg) deri altına enjekte edilir Buprenorfin. </li><li> t hayvan tutuno uyanır ve kayıt oturumları öncesinde üç gün boyunca ameliyatın onun konut kafesine geri gelene kadar o battaniyeyi ısıtılması. Bireysel rat&#39;s konut kafeste Ev hayvanları jöle temizleme kafes arkadaşları önlemek ve metal ızgara kapağı dokunmak headpost. Hayvan tek yer zaman kafeste bazı zenginleştirme yerleştirin. Ayrıca, günlük enfeksiyonu önlemek ve dikkatli bir şekilde hayvan düzgün kurtarır ve rahatsızlık herhangi bir belirti görünmüyor kontrol etmek için talaş değiştirin. vazelin maruz beyin korunması kayıt penceresi üzerinden olup olmadığını da kontrol. </li></ol> 5. Elektrofizyolojik Kayıt ve Microiontophoresis <ol><li> İyileştikten sonra, kayıt ortamına alışmaları için hayvan zaman vermek ve başını sahip ölçülü. Fare vücut büyüklüğü (Şekil 2B) oyulmuş bir ısmarlama yastıklı köpük süzgeç üzerinde otururken sahibine headpost sabitleyerek hayvan gelmesini. Bu irade limbu fare hareketleri ve sakinlik katkıda bulunacaktır. </li><li> 10 dk seans ile başlayın ve giderek 120 dakikaya süresini kadar artar. Oturum sırasında, belirli aralıklarla 33 tatlı sıvılar ile hayvanlar (yoğunlaştırılmış süt, su içinde 30:70 seyreltilmiş) ödül. Daha sonra, kayıt oturumu sırasında, başında ve oturumun sonunda ya da hiç nöron izole ederken aynı ödül vereceğim. </li><li> Hayvan çok kayıttan önce heyecan, hafif bir sakinleştirici asepromazin (2 mg / kg, intraperitonal) enjekte edilir. ilgi sinir sistemine göre, sedatif sonuçlarınızı etkileyebilir. </li><li> 10 dakika - Hayvan özgürce 5 için kayıt odasına keşfetmek edelim. </li><li> Köpük ısmarlama yastıklı süzgeç (Şekil 2B) içine hayvanın vücudunu yerleştirin. </li><li> Stereotaktik çerçeve (Şekil 2C) bağlı bir tutucuya headpost edin. Bu hayvana bir sıvı ödül vermek için iyi bir zaman. </li><li> CoBir pamuk battaniye ile hayvanın vücudunda ver ve gevşek plastik bir hemicylinder ve yapışkan bant kullanarak sabitleyin. </li><li> kayıt penceresinden vazelin çıkarın ve sıcak steril tuzlu su ile durulayın. </li><li> Tutanak sinirsel aktivite ve gabazine ve iyontoforez uygulaması. <ol><li> onun tutucu multibarrel elektrot, bir Microdrive tarafından kontrol edilir ve bir micromanipulator bağlı yerleştirin. </li><li> küçük timsah klipleri kullanarak, kayıt için teller bağlayın. tungsten elektrot sonuna kadar olumlu terminali ve temas dura gümüş tel Toprak terminalini bağlayın. </li><li> Her bir varil içinde bir kaplanmamış gümüş tel yerleştirin, böylece bir ucu temas çözüm ve diğer ucu erişilebilir. Üreticinin talimatları izleyerek, microiontophoresis cihaza bu amaçları bağlayın. </li><li> ucu temas beynin yüzey kadar multibarrel elektrot hareket ettirin. th kuruma önlemek için sıcak steril tuzlu su uygulamake beyin dokusu. Bu noktada (gabazine -10 nA belirli ilaç için literatürü kontrol edin) bir tutma akımı uygulamak tek birim faaliyet ararken varil ucundan ilacın akmasını önlemek için. </li><li> Tek nöron dışı aktivite izole etmek için standart teknikleri kullanın. Nöronun frekans tepki alanını (FRA) elde, yani frekansları ve nöron bu seslerin 34-36 duyarlı olduğu için cevabı uyandırabilen şiddetleri kombinasyonu. </li><li> Benzer bir ateşleme hızı ve desen uyandırmak iki frekansları (f1 ve f2) seçin. Tuhaf paradigma altında olanlar frekansların her biri nadir ve tekrarlayan uyaran sunun. Not: Kısaca, tuhaf paradigmada, bir frekans (f1) meydana gelme olasılığı yüksek olan tekrarlayan uyaran olarak sunulmaktadır, ikinci (f2) tekrarlayan olanlar arasında rastgele serpiştirilmiş nadiren ortaya çıkan sapkın uyarıcı, ise. İkinci tuhaf dizisinde, bağılİki uyaranların olasılıkları tersine çevrilir. Uyarma paradigması ayrıntıları daha önce 22,37 tarif edilmiştir. </li><li> (- 20 nA 10) pozitif değerlere akım kaydırarak gabazine serbest bırakın. Yine FRA edinin ve gabazine uygulama altında tuhaf bir paradigma tekrarlayın. görülmektedir ateşleme hızının gözle görülür bir etkisi kadar fırlamasını korumak; Özellikle ilaç konsantrasyonu ve püskürtme akımın büyüklüğüne bağlı olarak, 20 dakika - genellikle 5 alır. İlacın etkisi altında değerlerini elde etmek için kayıt protokolü tekrarlayın. </li><li> tutma değerlerine mevcut döndürerek enjeksiyon durdurun. Tuhaf paradigmaya FRA ya da tepki değerlerini kontrol etmek döndüren izleyerek yıkayacak ilacın etkisi bekleyin. Not: Kayıt seansları 2 sürebilir - günde 3 saat ve hayvan rahatsızlık veya mücadele herhangi bir işaret göstermesi durumunda daha erken sona erdirilmelidir. ödül sıvı vermek ve kayıt ch kapakvazelin ile amber. </li></ol></li></ol> 6. Veri Analizi <ol><li> önce ve gabazine enjeksiyon yanı sıra SSA seviyesine sırasında FRA ölçün. </li><li> Ortak-SSA indeksi (CSI) ve daha önce 19,22,23,38,39 açıklandığı gibi frekansa özgü SSA indeksi (SI) SSA tepkisinin gücünü ölçmek. CSI ve SI nadir uyarıcıya nöronal tepki ve tekrarlayan birine yanıt arasındaki normalize farkı yansıtmaktadır. Pozitif CSI ve SI değerleri (uyaran başına sivri) tekrarlayan sesleri daha nadir yüksek sinirsel tepki gösterir. </li><li> kontrolü ve ilaç püskürtme durumuna gelen verileri karşılaştırmak. </li></ol>

<ol><li>Harris, K. D., Thiele, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+state+and+attention%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cortical state and attention.</a> Nat Rev Neurosci. 12 (9), 509-523 (2011).</li>
<li>Constantinople, C. M., Bruno, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+and+mechanisms+of+wakefulness+on+local+cortical+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Effects and mechanisms of wakefulness on local cortical networks.</a> Neuron. 69 (6), 1061-1068 (2011).</li>
<li>Sellers, K. K., Bennett, D. V., Hutt, A., Williams, J. H., Frohlich, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Awake+vs.+anesthetized%3A+layer-specific+sensory+processing+in+visual+cortex+and+functional+connectivity+between+cortical+areas%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Awake vs. anesthetized: layer-specific sensory processing in visual cortex and functional connectivity between cortical areas.</a> J Neurophysiol. 113 (10), 3798-3815 (2015).</li>
<li>Haider, B., Hausser, M., Carandini, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+dominates+sensory+responses+in+the+awake+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Inhibition dominates sensory responses in the awake cortex.</a> Nature. 493 (7430), 97-100 (2013).</li>
<li>Rudolph, M., Pospischil, M., Timofeev, I., Destexhe, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+determines+membrane+potential+dynamics+and+controls+action+potential+generation+in+awake+and+sleeping+cat+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Inhibition determines membrane potential dynamics and controls action potential generation in awake and sleeping cat cortex.</a> J Neurosci. 27 (20), 5280-5290 (2007).</li>
<li>Buran, B. N., von Trapp, G., Sanes, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behaviorally+gated+reduction+of+spontaneous+discharge+can+improve+detection+thresholds+in+auditory+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Behaviorally gated reduction of spontaneous discharge can improve detection thresholds in auditory cortex.</a> J Neurosci. 34 (11), 4076-4081 (2014).</li>
<li>Duque, D., Malmierca, M. S., Caspary, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+stimulus-specific+adaptation+by+GABA%28A%29+receptor+activation+or+blockade+in+the+medial+geniculate+body+of+the+anaesthetized+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Modulation of stimulus-specific adaptation by GABA(A) receptor activation or blockade in the medial geniculate body of the anaesthetized rat.</a> J Physiol. 592, (Pt 4) 729-743 (2014).</li>
<li>Stone, T. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStone%2C+TW+%22Microiontophoresis+and+Pressure+Ejection%22">Microiontophoresis and Pressure Ejection</a>. , Wiley. (1985).</li>
<li>Lalley, P. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLalley%2C+PM+%22Modern+techniques+in+neuroscience+research%29%22">Modern techniques in neuroscience research)</a>. Windhorst, U., Johansson, H. , Springer. 193-212 (1999).</li>
<li>Foeller, E., Celikel, T., Feldman, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibitory+sharpening+of+receptive+fields+contributes+to+whisker+map+plasticity+in+rat+somatosensory+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Inhibitory sharpening of receptive fields contributes to whisker map plasticity in rat somatosensory cortex.</a> J Neurophysiol. 94 (6), 4387-4400 (2005).</li>
<li>Foeller, E., Vater, M., Kossl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laminar+analysis+of+inhibition+in+the+gerbil+primary+auditory+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Assoc+Res+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Laminar analysis of inhibition in the gerbil primary auditory cortex.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 2 (3), 279-296 (2001).</li>
<li>Kurt, S., Crook, J. M., Ohl, F. W., Scheich, H., Schulze, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+iontophoretic+in+vivo+application+of+the+GABA%28A%29-antagonists+bicuculline+and+gabazine+in+sensory+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Differential effects of iontophoretic in vivo application of the GABA(A)-antagonists bicuculline and gabazine in sensory cortex.</a> Hear Res. 212 (1-2), 224-235 (2006).</li>
<li>Sivaramakrishnan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA%28A%29+synapses+shape+neuronal+responses+to+sound+intensity+in+the+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GABA(A) synapses shape neuronal responses to sound intensity in the inferior colliculus.</a> J Neurosci. 24 (21), 5031-5043 (2004).</li>
<li>Havey, D. C., Caspary, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+constructing+%27piggy-back%27+multibarrel+microelectrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Electroencephalogr+Clin+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">A simple technique for constructing 'piggy-back' multibarrel microelectrodes.</a> Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 48 (2), 249-251 (1980).</li>
<li>Dondzillo, A., Thornton, J. L., Tollin, D. J., Klug, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manufacturing+and+using+piggy-back+multibarrel+electrodes+for+in+vivo+pharmacological+manipulations+of+neural+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Manufacturing and using piggy-back multibarrel electrodes for in vivo pharmacological manipulations of neural responses.</a> J Vis Exp. (71), e4358(2013).</li>
<li>Perez-Gonzalez, D., Hernandez, O., Covey, E., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA%28A%29-Mediated+Inhibition+Modulates+Stimulus-Specific+Adaptation+in+the+Inferior+Colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">GABA(A)-Mediated Inhibition Modulates Stimulus-Specific Adaptation in the Inferior Colliculus.</a> PLoS ONE. 7 (3), e34297(2012).</li>
<li>Bullock, D. C., Palmer, A. R., Rees, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compact+and+easy-to-use+tungsten-in-glass+microelectrode+manufacturing+workstation%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Biol+Eng+Comput%22%5BJournal%5D)">Compact and easy-to-use tungsten-in-glass microelectrode manufacturing workstation.</a> Med Biol Eng Comput. 26 (6), 669-672 (1988).</li>
<li>Sugiyama, K., Dong, W. K., Chudler, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+method+for+manufacturing+glass-insulated+metal+microelectrodes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">A simplified method for manufacturing glass-insulated metal microelectrodes.</a> J Neurosci Methods. 53 (1), 73-80 (1994).</li>
<li>Ulanovsky, N., Las, L., Nelken, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Processing+of+low-probability+sounds+by+cortical+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Processing of low-probability sounds by cortical neurons.</a> Nat Neurosci. 6 (4), 391-398 (2003).</li>
<li>Escera, C., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+auditory+novelty+system%3A+An+attempt+to+integrate+human+and+animal+research%5BTitle%5D)+AND+%22Psychophysiology%22%5BJournal%5D)">The auditory novelty system: An attempt to integrate human and animal research.</a> Psychophysiology. 51 (2), 111-123 (2014).</li>
<li>Malmierca, M. S., Sanchez-Vives, M. V., Escera, C., Bendixen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+adaptation%2C+novelty+detection+and+regularity+encoding+in+audition%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Syst+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuronal adaptation, novelty detection and regularity encoding in audition.</a> Front Syst Neurosci. 8, 111(2014).</li>
<li>Malmierca, M. S., Cristaudo, S., Perez-Gonzalez, D., Covey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-specific+adaptation+in+the+inferior+colliculus+of+the+anesthetized+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Stimulus-specific adaptation in the inferior colliculus of the anesthetized rat.</a> J Neurosci. 29 (17), 5483-5493 (2009).</li>
<li>Antunes, F. M., Nelken, I., Covey, E., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-specific+adaptation+in+the+auditory+thalamus+of+the+anesthetized+rat%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Stimulus-specific adaptation in the auditory thalamus of the anesthetized rat.</a> PLoS ONE. 5 (11), 14071(2010).</li>
<li>von der Behrens, W., Bauerle, P., Kossl, M., Gaese, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlating+stimulus-specific+adaptation+of+cortical+neurons+and+local+field+potentials+in+the+awake+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Correlating stimulus-specific adaptation of cortical neurons and local field potentials in the awake rat.</a> J Neurosci. 29 (44), 13837-13849 (2009).</li>
<li>Perez-Gonzalez, D., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variability+of+the+time+course+of+stimulus-specific+adaptation+in+the+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Variability of the time course of stimulus-specific adaptation in the inferior colliculus.</a> Front Neural Circuits. 6, 107(2012).</li>
<li>Duque, D., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-specific+adaptation+in+the+inferior+colliculus+of+the+mouse%3A+anesthesia+and+spontaneous+activity+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Struct+Funct%22%5BJournal%5D)">Stimulus-specific adaptation in the inferior colliculus of the mouse: anesthesia and spontaneous activity effects.</a> Brain Struct Funct. , (2014).</li>
<li>Merrill, E. G., Ainsworth, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glass-coated+platinum-plated+tungsten+microelectrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Biol+Eng%22%5BJournal%5D)">Glass-coated platinum-plated tungsten microelectrodes.</a> Med Biol Eng. 10 (5), 662-672 (1972).</li>
<li>Ainsworth, A., Dostrovsky, J. O., Merrill, E. G., Millar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+insulating+tungsten+micro-electrodes+with+glass+%5Bproceedings%5D%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">An improved method for insulating tungsten micro-electrodes with glass [proceedings].</a> J Physiol. 269 (1), 4-5 (1977).</li>
<li>Bryant, J. L., Roy, S., Heck, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+stereotaxic+recordings+of+neuronal+activity+in+awake%2C+head-restrained+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">A technique for stereotaxic recordings of neuronal activity in awake, head-restrained mice.</a> J Neurosci Methods. 178 (1), 75-79 (2009).</li>
<li>Portfors, C. V., Roberts, P. D., Jonson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Over-representation+of+species-specific+vocalizations+in+the+awake+mouse+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Over-representation of species-specific vocalizations in the awake mouse inferior colliculus.</a> Neuroscience. 162 (2), 486-500 (2009).</li>
<li>Portfors, C. V., Mayko, Z. M., Jonson, K., Cha, G. F., Roberts, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+organization+of+receptive+fields+in+the+auditory+midbrain+of+awake+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Spatial organization of receptive fields in the auditory midbrain of awake mouse.</a> Neuroscience. 193, 429-439 (2011).</li>
<li>Muniak, M. A., Mayko, Z. M., Ryugo, D. K., Portfors, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+an+awake+mouse+for+recording+neural+responses+and+injecting+tracers%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of an awake mouse for recording neural responses and injecting tracers.</a> J Vis Exp. (64), (2012).</li>
<li>Deacon, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Housing%2C+husbandry+and+handling+of+rodents+for+behavioral+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Housing, husbandry and handling of rodents for behavioral experiments.</a> Nat Protoc. 1 (2), 936-946 (2006).</li>
<li>Malmierca, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+discontinuous+tonotopic+organization+in+the+inferior+colliculus+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A discontinuous tonotopic organization in the inferior colliculus of the rat.</a> J Neurosci. 28 (18), 4767-4776 (2008).</li>
<li>Izquierdo, M. A., Gutierrez-Conde, P. M., Merchan, M. A., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-plastic+reorganization+of+frequency+coding+in+the+inferior+colliculus+of+the+rat+following+noise-induced+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Non-plastic reorganization of frequency coding in the inferior colliculus of the rat following noise-induced hearing loss.</a> Neuroscience. 154 (1), 355-369 (2008).</li>
<li>Palmer, A. R., Shackleton, T. M., Sumner, C. J., Zobay, O., Rees, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Classification+of+frequency+response+areas+in+the+inferior+colliculus+reveals+continua+not+discrete+classes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Classification of frequency response areas in the inferior colliculus reveals continua not discrete classes.</a> J Physiol. 591 (16), 4003-4025 (2013).</li>
<li>Ayala, Y. A., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-specific+adaptation+and+deviance+detection+in+the+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Stimulus-specific adaptation and deviance detection in the inferior colliculus.</a> Front Neural Circuits. 6, 89(2013).</li>
<li>Duque, D., Perez-Gonzalez, D., Ayala, Y. A., Palmer, A. R., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topographic+distribution%2C+frequency%2C+and+intensity+dependence+of+stimulus-specific+adaptation+in+the+inferior+colliculus+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Topographic distribution, frequency, and intensity dependence of stimulus-specific adaptation in the inferior colliculus of the rat.</a> J Neurosci. 32 (49), 17762-17774 (2012).</li>
<li>Ayala, Y. A., Perez-Gonzalez, D., Duque, D., Nelken, I., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequency+discrimination+and+stimulus+deviance+in+the+inferior+colliculus+and+cochlear+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Frequency discrimination and stimulus deviance in the inferior colliculus and cochlear nucleus.</a> Front Neural Circuits. 6, 119(2013).</li>
<li>Perkins, M. N., Stone, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+release+of+%5B3H%5D-purines+by+quinolinic+acid+and+related+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">In vivo release of [3H]-purines by quinolinic acid and related compounds.</a> Br J Pharmacol. 80 (2), 263-267 (1983).</li>
<li>Lalley, P. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLalley%2C+PM+%22Modern+Techniques+in+Neuroscience+Research%22">Modern Techniques in Neuroscience Research</a>. Windhorst, U., Johansson, H. , Springer. Berlin Heiderlberg. Ch. 7 193-212 (1999).</li>
<li>Candy, J. M., Boakes, R. J., Key, B. J., Worton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+the+release+of+amines+and+antagonists+with+their+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Correlation of the release of amines and antagonists with their effects.</a> Neuropharmacology. 13 (6), 423-430 (1974).</li>
<li>Martins, A. R., Froemke, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordinated+forms+of+noradrenergic+plasticity+in+the+locus+coeruleus+and+primary+auditory+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Coordinated forms of noradrenergic plasticity in the locus coeruleus and primary auditory cortex.</a> Nat Neurosci. , (2015).</li>
<li>LeBeau, F. E., Rees, A., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+GABA-+and+glycine-mediated+inhibition+to+the+monaural+temporal+response+properties+of+neurons+in+the+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Contribution of GABA- and glycine-mediated inhibition to the monaural temporal response properties of neurons in the inferior colliculus.</a> Journal of Neurophysiology. 75 (2), 902-919 (1996).</li>
<li>Ayala, Y. A., Malmierca, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+modulation+of+stimulus-specific+adaptation+in+the+inferior+colliculus%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Cholinergic modulation of stimulus-specific adaptation in the inferior colliculus.</a> The Journal of Neuroscience. 35 (35), 12261-12272 (2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Uyanık hayvanlarda nöroaktif maddelerin microiontophoresis soruşturma ve tek nöronların 40,41 aktivitesi belirli sinaptik girdilerin rolünü incelemek için güçlü bir tekniktir. Daha da önemlisi, bu işlem anestezik potansiyel müdahalesi olmadan nöral devrelerinde nörotransmitter ve nöromodülatör etkisi belirlenmesini sağlar. Burada, biz uyanık farelerin IC gabazine uygulaması sağlam frekans ayarlama (Şekil 4A), geçici tepki desenleri (Şekil 4B) ve SSA (Şekil 5)...

Nöral eksitasyon ve inhibisyon etkileşimi duyusal bilginin 1 işlenmesi için esastır. Ayrıca anestezi kortikal aktivasyonu ve sinaptik girdilerin 2,3 zamansal desen dinamikleri üzerinde güçlü bir etkiye sahip olduğu bilinmektedir. Örneğin, anestetikler kortikal nöronlar 3,4 görsel olarak uyarılmış yanıtların süresini değiştirebilir gözlenmiştir. Ayrıca, eksitatör ve inhibitör sinaptik girdiler arasındaki oran hem uyarılmış değiştirerek ve spontan aktivite oranları 6,7, anestezi ve uyanık hayvanlarda 4,5 farklıdır. Uyanıklık sırasında, inhibisyon uyarma daha güçlü iken sinaptik iletkenlikleri ölçülerek, Haider ve arkadaşları 4 anestezi altında genlik bu engelleme eşleşen uyarma bulundu. Bu bulgular uyanık hayvanlarda duyusal işleme belirli sinaptik girdilerin etkilerini incelemek için deneysel prosedürlerin geliştirilmesini ister. &lt;p class = &quot;jove_content&quot;&gt; (nA sırasına) küçük akım enjeksiyonları uygulanarak tahsil nöroaktif maddelerin kontrollü ejeksiyon yoğun sinaptik girdilerin katkısı ve duyusal işleme 8-13 varsayımsal hücre reseptörlerinin rolünü incelemek için kullanılır olmuştur . microiontophoresis olarak bilinen bu teknik, hızlı ve sınırlı etkiye katkıda kaydedilen nöron yakın ilaç uygulama sağlar. Bu prosedür, örneğin, sistemik enjeksiyonlar, mikrodiyaliz ya Optogenetic tekniklerin kullanılması gibi başka deneysel manipülasyonlar tarafından ortaya yaygın etkisi ile karşılaştırıldığında, nöroaktif maddelere lokal etkilerini araştırmak için daha uygundur. Genellikle, bir domuz geri elektrot konfigürasyonu 14,15 eşzamanlı hedef nöron kaydetmek ve ilgi nöroaktif maddelerin teslim etmek için kullanılır. Bu nöroaktif maddeleri taşıyan bir multibarrel pipet bağlı bir kayıt elektrotu içerir. o DeğişikliklerHavey ve CASPARY 14 tarafından açıklanan riginal prosedür uygulanmıştır. Örneğin, bir tungsten elektrot yerine cam, bir nöral etkinlik 16 kaydetmek için kullanılabilir. Kayıt gereksinimlerini karşılamak için tungsten tel ipuçları, cam izolasyon ve uç maruz kalma uyum elektrolitik dağlama: tungsten elektrotlar 17,18 imalatı için daha önce yayınlanmış yöntemler üç genel adımları içerir. Işitsel nörobilim ilginç ve acil saha uyaran özel adaptasyon (SSA 19) çalışmadır. SSA Diğer nadiren sunulan seslere genelleme değildir tekrarlayan seslere nöral yanıt belirli bir azalmadır. SSA önemi potansiyeli 20,21 uyarılmış işitsel beyin nöral mekanizma yatan sapma tespiti yanı sıra işitsel geç uyumsuzluk olumsuzluk bileşeni için olası bir nöronal karşılığı olarak potansiyel rolü bulunur. SSA oişitsel korteks 19,22-24 kadar IC ccurs. GABA A aracılı inhibisyonunun anestezi 26 etkilenebilir gösterilmiştir SSA 7,16,25 bir kazanç kontrol mekanizması olarak hareket ettiği gösterilmiştir. Burada daha önce ve uyanık farelerde GABAA reseptörlerinin seçici bir antagonist uygulaması esnasında IC nöronlarının tek ünite aktivite kayıt için daha önce tarif edilen yöntemleri birleştiren bir protokol mevcut. İlk olarak, biz domuz geri elektrotlar ve sonraki, cerrahi ve kayıt yöntemlerinin üretimi açıklar. ilaç salımı etkinliği test etmek için, açık alan hem de önce ve gabazine arasında microiontophoretic ejeksiyon sırasında IC nöronların SSA seviyesini karşılaştırıldı.

<table><tbody><tr><td>Tungsten tel</td><td>Harvard Apparatus LTD</td><td>33-0099</td><td>0.005 inç x 3 inç</td></tr><tr><td>Borosilikat cam kılcal damar ve nbsp;</td><td>Harvard Apparatus LTD</td><td>30-0053</td><td>Filamentsiz borosilikat standart duvar, 1,5 mm OD, 0,86 mm ID, 100 mm uzunluğunda</td></tr><tr><td>Çok namlulu cam kılcal damarlar&nbsp;</td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>5B120F-4&nbsp;</td><td>5 namlulu kılcal, 4 inç uzunluğunda, 1,2 mm OD, filamentli</td></tr><tr><td>Diaplus</td><td>DiaDent</td><td>2001-2101</td><td>Tungsten elektrodu cam çok namlulu pipete tutturmak için kullanılan ışıkla sertleşen yapıştırıcı</td></tr><tr><td>G-Bond</td><td>GC Corporation</td><td>2277</td><td>Baş direğini hayvanın kafatasına tutturmak için kullanılan ışıkla sertleşen yapıştırıcı</td></tr><tr><td>Charisma</td><td>Heraeus Kulzer</td><td>66000087</td><td>Kafa direğinin kafatası Araldit Cristal ile bağını güçlendirmek için kullanılan ışıkla sertleşen kompozit</td></tr><tr><td></td><td>Tungsten elektrotun cam çok namlulu pipete bağlanmasını daha da sabitlemek için kullanılan</td> <td>Ceys</td><td></td> 2 bileşenli expoxy</tr><tr><td>Isıtma battaniyesi</td><td>Cibertec</td><td>RTC1</td><td></td></tr><tr><td>Stereotaktik çerçeve</td><td>Narishige</td><td>SR-6N</td><td>Fareler için modifiye</td></tr><tr><td>Mikroiyontoforetik cihaz</td><td>Harvard Aparatı LTD</td><td>Nörofor BH-2</td><td>IP-2 iyontoforez pompaları (her ilaç dağıtım kanalı için bir tane) ve bir denge modülü dahil</td></tr><tr><td>Çok namlulu cam pipet çektirme</td><td>Narishige</td><td>Model PE-21</td><td></td></tr><tr><td>LED lamba</td><td>Technoflux</td><td>CV-215</td><td>5 W, 430-485 nm</td></tr><tr><td>MicroFil</td><td>World Hassas Aletler</td><td>MF34G-5</td><td>Esnek plastik iğne, 34 AWG</td></tr><tr><td>Imalgene</td><td>Merial</td><td></td><td>Ketamin, 100 mg/mL</td></tr><tr><td>Rompun</td><td>Bayer</td><td></td><td>Ksilazin, 20 mg / mL</td></tr><tr><td>Gabazin / SR-95531</td><td>Sigma</td><td>S106</td><td>Hazırlayın ~ 1000 ve mikro; damıtılmış suda l 20 mM gabazin ve pH'ı 4'e ayarlayın</td></tr></tbody></table>

uyanık farelerde nöroaktif maddelerin microiontophoretic uygulaması ile birlikte nöronal faaliyet dışı kaydı

Extracellular Recording of Neuronal Activity Combined with Microiontophoretic Application of Neuroactive Substances in Awake Mice

nörotransmitter ve nöromodülatör, ve sonuç olarak, farklı sinir yanıtların aktivitesi farklılıklar, anestezi uygulanmış ve uyanıklık hayvanlar arasında bulunabilir. Bu nedenle, uyanık hayvanlarda sinaptik sistemlerinin manipülasyonu izin yöntemleri anestezik etkilenmeyen nöronal işleme sinaptik girdilerin katkısını belirlemek için gereklidir. Burada, biz aynı anda dışı nöral aktiviteyi kaydetmek ve uyanık farelerde kayıt sitelerin yakınında birden çok nöroaktif maddelerin serbest bırakmak için elektrotların yapımında metodoloji sunuyoruz. Bu prosedürleri birleştirerek, biz seçici kafa ölçülü farelerin alt kollikulusun nöronlarda GABA A reseptörleri bloke etmek gabazine ve microiontophoretic enjeksiyonları yapıldı. Gabazine başarılı şekilde frekans tepki alan ve uyarıcı özgü adaptasyon olarak nöral yanıt özelliklerinin güncellenmiştir. Bu nedenle, biz yöntemleri recordin için uygun olduğunu göstermektedirg tek birim faaliyet ve işitsel işleme belirli nörotransmiter reseptörlerinin rolü diseksiyon için. anlatılan prosedür ana sınırlama kayıt oturumları için hayvanın alışkanlık düzeyine göre belirlenir nispeten kısa kayıt süresi (~ 3 saat) &#39;dir. Diğer taraftan, çoklu kayıt seansları aynı hayvanda gerçekleştirilebilir. sinir iletiminin ya da (örneğin, sistemik enjeksiyonlar veya Optogenetic modellerin kullanımı gibi) nöromodülasyon seviyesini değiştirmek için kullanılan çeşitli deney prosedürler üzerinde bu tekniğin avantajı, ilaç etkisi, hedef nöron yerel sinaptik girişlerine sınırlı olmasıdır. Buna ek olarak, elektrot özel imalat nöral yapı ile (örneğin, kayıt sinyal-gürültü oranını geliştirmek için uç direnci gibi) ilgi nöron tipine göre belirli parametrelerin ayarlanmasına olanak tanır.

Biz IC 4 iyi izole nöronların tek ünite aktivitesini kaydedildi. Uyanık farelerde hücre dışı kayıtları elde edilen tipik bir sinyal-gürültü oranı Şekil 3B&#39;de gösterilmiştir. Şekil 4A önce ve GABA A blokajı gabazine ile reseptörlerinin boyunca her nöron frekans tepki alanını (FRA) göstermektedir. tepki kuvveti (ani / uyaran) ve spektral ayarlama bir genişlemesi olarak bir artışı gözlenmiştir. Uyarılmış yanıt artışı (Şekil 4B)</stron...

Uyanık farelerde hücre dışı nöral aktiviteyi aynı anda kaydetmek ve kayıt bölgelerinin yakınında birden fazla nöroaktif madde salmak için elektrotların yapımı için yöntemler sunuyoruz. Bu teknik, ilgilenilen nörona varsayılan yerel sinaptik girdilerin ayrıntılı analizine izin verir.

Uyanık Farelerde Nöroaktif Maddelerin Microiontophoretic Uygulaması ile birlikte Nöronal Faaliyet dışı Kaydı

Differences in the activity of neurotransmitters and neuromodulators, and consequently different neural responses, can be found between anesthetized and ...

Bu prosedürün genel amacı, uyanık hayvanlarda nöroaktif maddelerin mikroiontoforetik enjeksiyonlarını kullanarak nöronal işlemenin sinaptik girdilerinin etkisini manipüle etmektir. Bu yöntem, nörotransmitterlerin rolü ve bunların duyusal uyaranlar ile kodlama üzerindeki etkileşimleri gibi duyusal sistemlerin temel işlevlerinin çözülmesine yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, anestezi ile etkilenmeden tab'a giden yerel sinaptik girdilerin manipülasyonuna ve nöronal modülatör sistemlerin incelenmesine olanak sağlamasıdır.Bu yöntem kısıtlanmış farelerde uygulanmış olsa da yarasalar, sıçanlar veya kobaylar gibi diğer memelilerde de kullanılabilir. Bu prosedüre başlamak için, tungsten telleri kesim işlemi için özel olarak yapılmış bir hizalama aracına yerleştirin. Tellerin boşta kalan uçlarını yapışkan bantla dikkatlice sabitleyin ve istediğiniz uzunlukta kesin.Ardından, tungsten telleri hizalama aparatından çıkarmak için bandı yavaşça çekin. Tüm tellerin banda yapışık kaldığından emin olun. Sonra, bandı parlatılmış bir pirinç milin üzerine sarın ve tellerin mil ile iyi bir elektriksel bağlantı kurması için telleri mile sıkıca bastırın.Bundan sonra, mili istasyondaki 5 RPM'lik bir motora bağlayın. Mil erişimi, aşındırma çözeltisinin yüzeyine göre 45 derece açılıdır. Ardından, tellerin üçte birini çözeltiye daldırın.Ardından, devreyi tamamlamak için bir karbon çubuk elektrodu aşındırma banyosuna daldırın. İş istasyonunu açarak milin dönmesini sağlayın, ardından elektrotlardan ve aşındırma solüsyonundan geçen akımı 250 milliamps değerine ayarlayın. Tel uçlarının çok ince noktalar şeklinde aşındırılması için akım 200 milliamps değerine düştüğünde uç aşındırma işlemini durdurun.Şimdi, alt ucu modelleme kili ile kapatılmış borosilikat cam bir kılcal borunun içine bir tel yerleştirin. Pipeti bir ısıtıcı bobin ve askıda bir piston kullanarak tutun. Camla kaplanmış teli, mikroskobun altına yerleştirmeden önce bir lama sabitleyin.Ucu ayarlayın ve borik boncuğunuzu odağa getirin. Ardından boncuğu hafifçe eriyene kadar ısıtın. Bundan sonra, tel ucunun yaklaşık 10 ila 15 mikronunu yerleştirin ve ısıtma potansiyometrelerini kapatın.Boncuk soğurken, tungstenin açığa çıkması için elektrodun ucundaki camı çıkarın. Yaklaşık 15 milimetrelik bir uç elde etmek için poları uygun parametrelere ayarlayın. Ucu ayrılmış iki pipet elde etmek için kılcal boruyu çekin.Bir pole pipeti, modelleme kili kullanarak bir lam üzerine sabitleyin ve ucunu ince makas, pens veya bir skalpelin düz tarafı ile kırın. Daha iyi bir bağlama ve daha ince bir düzenek elde etmek için elektrot ile çok kanallı uç arasındaki açıyı hafifçe ayarlayın. Mikroskop altında, tungsten elektrodu çok kanallı ucun üzerine dikkatlice hizalayın.Hizalama tamamlandıktan sonra, elektrodu çok namlulu yapıya temas edene kadar indirin. İki üst namlu arasındaki oluğa yerleştirin ve ardından elektrot ucunu, çok namlulu yapının ucundan 15 ila 20 micrometers dışarı çıkana kadar kaydırın. Şimdi, tungsten ve çok namlulu yapı düzeneklerinin uçlarından yaklaşık 5 millimeters uzağa küçük bir damla ışıkla kürlenebilen yapıştırıcı uygulayın.Çok kanallı kanalların tıkanmasını önlemek için yapıştırıcının uçlara ulaşmasını engelleyin ve yapıştırıcıyı mavi ışık LED lambası kullanarak kürleyin. Şimdi, vücut sıcaklığını 38 °C'de tutmak için anestezi altındaki hayvanı bir ısıtma battaniyesine yerleştirin ve hayvanın başını iki kulak çubuğu ve bir ısırma çubuğu ile stereotaksik çerçevede sabitleyin. Ardından, gözleri korumak için oftalmik jel uygulayın. Sonrasında, kafa derisini tıraş edin ve cildi dezenfekte etmek için povidon iyot uygulayın. Bir bistüri kullanarak kafatasını açığa çıkarmak için orta hat boyunca bir insizyon yapın ve periyetal ile oksipital kemiklerin daha rostral kısmını örten periostu geri çekin.Ardından, kafatası ve baş sabitleyici direğinin tabanına ince bir tabaka ışıkla sertleşen yapıştırıcı uygulayın. 10 saniye bekleyin ve baş sabitleyici direğini, orta hat boyunca parietal kemiklerin rostral bölgesinin üzerine yerleştirin. Etkili bir bağlanma gücü elde etmek için yapıştırıcıyı 20 saniye boyunca mavi ışık kaynağı ile sertleştirin.Ardından, küçük bir matkap ucu kullanarak kafa direğinin tabanının etrafına ve arkasına iki delik açın. Kafatası ile kafa tablası arasında ek bir temas noktası oluşturması için açılan deliklerden birine bir saat vidası yerleştirin. Vidaların sıkıca oturması için bir buçuk tur döndürün ve gevşek olmadıklarından emin olmak için penset ile test edin.Ardından, gümüş şase telinin ucunu üçüncü deliğe yerleştirin ve dura ile temas ettiğinden emin olun. Teli kafatasına sabitlemek için küçük bir damla suya dayanıklı siyanoakrilat yapıştırıcı uygulayın. Daha sonra, baş postunun tabanını, gümüş telin alt kısmını ve vidaları kaplayarak baş postunun kafatasına olan bağlantısını güçlendirmek için ışıkla sertleşen kompozit uygulayın.Kayıt sırasında erişim sağlamak amacıyla lambda noktasını aşmamaya dikkat edin ve kompoziti mavi ışık kaynağı kullanarak sertleştirin. Ardından, boynun arkasındaki kası kafatasına yapıştığı noktaya yakın bir bölgeden geri çekin. Küçük bir trephine kullanarak, inferior colliculus'u açığa çıkarmak için lambda sütürünün hemen altına ve orta hattın lateraline yuvarlak bir pencere açın.Bu prosedürde, hayvanın vücudunu özel yapım köpük destekli bir sabitleyiciye yerleştirin. Baş sabitleyici çubuğunu, stereotaksik çerçeveye bağlı bir tutucuya sabitleyin. Bu aşama, hayvana sıvı ödül vermek için uygun bir zamandır.Ardından, hayvanın vücudunu pamuklu bir battaniye ile örtün ve plastik bir yarı silindir ile yapışkan bant kullanarak gevşekçe sabitleyin. Seçilen ilaçlarla namluları doldurmak için esnek uçlu bir şırınga kullanın. Mikro-manipülatör yardımıyla, çok namlulu elektrodu tutucusuna yerleştirin.Ardından, bir ucu çözeltiye temas edecek ve diğer ucu erişilebilir olacak şekilde her bir namlunun içine kodlanmamış bir gümüş tel yerleştirin. Daha sonra bu uçları mikroiontoforez cihazına bağlayın. Bundan sonra, pozitif terminali tungsten elektrodun ucuna, toprak terminalini ise duraya temas eden gümüş tele bağlayın.Ardından, çok kanallı elektrodu uç kısmı beynin yüzeyine temas edene kadar hareket ettirin. Beyin dokusunun kurumasını önlemek için sıcak steril salin uygulayın. Bu noktada, tek ünite aktivitesi aranırken kanal ucundan ilaç sızıntısını önlemek için tutma akımı uygulayın.Nöral aktiviteyi ve gabazinle yapılan iontoforetik uygulamayı kaydedin. Burada, inferior colliculus'taki kaydedilen dört nöronun gabazin mikroiontoforetik enjeksiyonundan önceki ve enjeksiyon sırasındaki frekans yanıt alanı gösterilmiştir. Siyah çarpılar, nadir ve tekrarlayan sesler olarak sunulması seçilen frekansları belirtmektedir.Burada, gabazin enjeksiyonu öncesinde ve sırasında yanıt alanını oluşturmak için sunulan tüm frekans ve şiddetlere verilen nöral yanıtların birikmiş peristimulus zaman histogramları yer almaktadır. Siyah çubuklar ses süresini göstermektedir. Burada, gabazin uygulaması öncesinde ve sırasında, nadir olarak sunulan frekans çiftine verilen spike yanıtının kırmızı noktalarla, tekrarlayan stimülusa verilen yanıtın ise mavi noktalarla gösterildiği nokta rasterleri yer almaktadır.Gölgeli arka plan uyaranın süresini belirtmektedir. Bu nokta rasterleri, parafrekansların göreceli olasılıkları değiştirildiğindeki yanıtları göstermektedir. Bu grafik, gabazin uygulaması öncesinde ve sırasında, nadir ve tekrarlayan sesler olarak sunulan yedi frekans çiftine karşı tek nöron yanıtlarını göstermektedir.Bu grafik, gabazin uygulaması öncesinde ve sırasında ölçülen nadir ve tekrarlayan seslere verilen nöral yanıtların SSA indekslerini göstermektedir. Uzmanlaşıldığında, açıklanan Prosedür, ilgilenilen nöral yapıya ve nöron tipine göre spesifik parametrelerin ayarlanmasına olanak tanır. Baş sabitleyicili hayvan kayıtları yapılırken, kayıt süresinin hayvanın alışma düzeyi tarafından belirlendiği ve sınırlandırıldığı unutulmamalıdır; ancak önemli bir avantaj, aynı hayvanda birkaç gün boyunca birden fazla kayıt işlemi gerçekleştirilebilmesi ve böylece kullanılan hayvan sayısının minimize edilmesidir.Piggy back elektrotlar kullanılarak mikroiontoforez yapıldığında, kayıt alanı içindeki nöronların girdi kaynakları ve projeksiyon hedefleri gibi ek soruları yanıtlamak amacıyla nöral transistör enjeksiyonları gibi diğer prosedürler birleştirilebilir. Uyanık hayvanlarla çalışırken kritik bir konu hayvanların refahıdır, bu nedenle protokolünüzde onaylanan geri çağırma süresini asla aşmayın ve lütfen herhangi bir rahatsızlık belirtisi olup olmadığını kontrol etmek için sürekli izleme yapın. Böyle bir durum oluşursa, kaydı derhal durdurmanız gerekir.

extracellular-recording-neuronal-activity-combined-with

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Nöronal yanıtların Elektrofizyolojik karakterizasyonu beyin fonksiyonu anlamak için ve yol izleme için boyaların yerleştirme yönlendirmek için önemlidir. Bununla birlikte, birçok çalışma anestetize hayvanlarda gerçekleştirilir. Anestezi olmadan beyin fonksiyonu anlamak için, nöronal yanıtı özellikleri kaydetmek ve uyanık fare boya enjekte etmek için bir yöntem geliştirdi.

Sinir Yanıtları Kayıt ve Tarayıcıları enjekte için bir Awake Fare hazırlanması

Bu video, fare beyninin işitsel uyaranları işleyen belirli bir bölgesindeki nöronal aktivitenin çalışmasını göstermektedir. Teknik, inhibe edici bir nörotransmisyon blokerinin uygulanmasını ve ilacın lokalize beyin bölgesine uygulanmasından önce ve sonra işitsel uyaranlara nöronal tepkilerin karşılaştırılmasını içerir.

İnhibitör Nörotransmitter Bloker Varlığında Uyanık Bir Farede İşitsel Nöronal Tepkilerin İncelenmesi

Kaynak: Moore, J. D., et al. Juxtacellular Uyanık, Başı Kısıtlanmış Sıçanların Subkortikal Beyin Yapıları İçindeki Tek Nöronların İzlenmesi ve Lokalizasyonu. J. Vis. Uzm. (2015)Bu video, kısıtlanmış, uyanık bir sıçanda yan yana hücresel kayıt ve boyama yöntemini göstermektedir. Prosedür, nöronlardan gelen sinyallerin kaydedilmesini ve kayıt bölgesini tam olarak lokalize etmek için boya enjekte edilmesini içerir. Bu teknik, nöral aktivitenin beynin anatomik yapısına doğru bir şekilde...

Uyanık bir sıçanda nöral aktivitenin hassas haritalanması için juxtacellular kayıt ve boyama 

Kaynak: Lai, J., et al. Kemirgen beyninde inhibitör ajanların eşzamanlı elektrofizyolojik kaydı ve mikro enjeksiyonları. J. Vis. Uzm. (2015)Bu video, sıçan superior colliculus'ta eşzamanlı nöronal kayıt ve inhibisyon için mikroenjeksiyon tabanlı bir tekniği göstermektedir. Prosedür, stereotaksik hedeflemeyi, kafatası delmeyi ve nöronal aktiviteyi kaydederken inhibe edici bir nörotransmitter sağlayan bir injectrodun yerleştirilmesini içerir. Işık stimülasyonu aksiyon potansiyellerini...

Bir Sıçanda Nöronal Aktivitenin İnhibisyonu ve Elektrofizyoloji Kullanılarak Tespiti

Bu protokol, uyanık sıçanlarda subkortikal beyin yapılarındaki nöronal aktiviteyi izlemek için bir kafa kısıtlama mekanizmasının tasarımını ve cerrahi implantasyonunu açıklar.  Juxtacellular konfigürasyondaki tek nöronları izole etmek ve anatomik konumlarını verimli bir şekilde tanımlamak için prosedürleri tanımlar.

Uyarı, Baş-ölçülü Sıçanların Alt-kortikal Beyin Yapıları içinde Juxtacellular İzleme ve Yerelleştirme Single Nöronlar

Bu yöntem, gezinmek ve hayvanın başının sağlam tespiti gerektiren mikroskobik görüntüleme veya tek hücreli elektrofizyolojik kayıtlar sırasında keşfetmek fare için somut, tanıdık bir ortam yaratır.

Düz zeminli Hava kaldırdı Platform: Yeni Bir Yöntem Awake üzerinde Mikroskopi veya Elektrofizyoloji ile davranışı birleştiren için serbestçe Kemirgenler Hareketli

Bu çalışmada, üretan anestezi altında hiperdirect yolaktan çoklu saha in vivo elektrofizyolojik kayıtların nasıl gerçekleştirileceği üzerine metodoloji sunulmuştur.

Akut<emIn vivo</em&gt; Anestezi Uygulanan Sıçanlarda Hiperdirect Pathway&#39;den Lokal Alan Potansiyellerinin Elektrofizyolojik Kayıtları ve Çoklu Ünite Aktivitesi

Bu eser bir optogenetic tek-unit güvenilir özel yapım cam optrode kullanarak uyanık bir fareden kayıt gerçekleştirmek için bir yöntem sunar.

Bir cam Optrode uyanık farelerde nöronal türüyle Optogenetics tanımlaması

Burada, uyanık farelerde mikroglial dinamiklerin ve nöronal aktivitenin eşzamanlı görüntülenmesi için adeno ilişkili virüs enjeksiyonunu kraniyal pencere implantasyonu ile birleştiren bir protokolü tanımladık.

Uyanık Farelerde Mikroglial Dinamiğin ve Nöronal Aktivitenin Eşzamanlı Görüntülenmesi

Protokol, serbestçe hareket eden bilinçli farelerde hücre dışı elektrofizyolojik özellikleri ortaya çıkarmak için motor kortekste (MC) hücre dışı kayıt metodolojisini ve ayrıca yerel alan potansiyellerinin (LFP'ler) ve sivri uçların veri analizini açıklar.

Serbestçe hareket eden farelerde çok kanallı hücre dışı kayıt

Fare beyninin in vivo transkraniyal manyetik uyarımını sağlamak için milimetre büyüklüğünde bir bobin ile birleştirilmiş düşük maliyetli bir elektroensefalografik kayıt sistemi önerilmektedir. Özel yapım, esnek, çoklu elektrot dizisi substratına sahip geleneksel vidalı elektrotlar kullanılarak, transkraniyal manyetik stimülasyona yanıt olarak fare beyninden çok bölgeli kayıt gerçekleştirilebilir.

Fare Beynini In Vivo'da Transkraniyal Olarak Uyarmak için Milimetre Boyutlu Bir Bobin ile Birleştirilmiş Düşük Maliyetli Elektroensefalografik Kayıt Sistemi

Öğrenin uyanık farelerde mikroiyontoforez yöntemiyle sinaptik girdileri manipüle etmeyi ve nöroaktif maddelerin duyusal işlemedeki rolünü anestezi etkisi olmadan incelemeyi. Bu teknik sinirbilim araştırmaları için güçlü bir araç sunar.

Uyanık Farelerde Nöroaktif Maddelerin Microiontophoretic Uygulaması ile birlikte Nöronal Faaliyet dışı Kaydı

Daha fazla video keşfet