-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Çoklu Renkler Yüksek hızında Yapısal Aydınlatma TIRF Mikroskopi A Guide
Çoklu Renkler Yüksek hızında Yapısal Aydınlatma TIRF Mikroskopi A Guide
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
A Guide to Structured Illumination TIRF Microscopy at High Speed with Multiple Colors

Çoklu Renkler Yüksek hızında Yapısal Aydınlatma TIRF Mikroskopi A Guide

Full Text
26,342 Views
11:15 min
May 30, 2016

DOI: 10.3791/53988-v

Laurence J. Young1, Florian Ströhl1, Clemens F. Kaminski1

1Department of Chemical Engineering and Biotechnology,University of Cambridge

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article provides an in-depth guide for constructing and aligning a structured illumination microscope for high-speed live cell super-resolution imaging using TIRF-SIM. This method is advantageous for imaging dynamic biological processes in multiple colors.

Key Study Components

Area of Science

  • Cell Biology
  • Microscopy Techniques
  • Super-Resolution Imaging

Background

  • Standard TIRF microscopy has limitations in resolving dynamic processes.
  • Super-resolution techniques enhance imaging capabilities.
  • Structured illumination microscopy (SIM) offers faster time resolution.
  • This protocol allows for flexible modifications to the microscope setup.

Purpose of Study

  • To construct a TIRF-SIM microscope for advanced imaging.
  • To enable the study of biological processes that require high temporal resolution.
  • To provide a detailed protocol for researchers to replicate the setup.

Methods Used

  • Alignment of optical components including dichroic mirrors and lenses.
  • Use of a liquid crystal variable retarder for polarization control.
  • Preparation of fluorescent bead samples for calibration.
  • Implementation of SLM control software for pattern generation.

Main Results

  • Successful alignment of the TIRF-SIM microscope.
  • Demonstration of imaging capabilities with fluorescent beads.
  • Verification of TIRF illumination conditions.
  • Establishment of a protocol for future imaging studies.

Conclusions

  • The TIRF-SIM setup allows for high-speed imaging of dynamic processes.
  • This method can address questions in cell biology previously unattainable.
  • Flexibility in the setup enables various imaging modalities.

Frequently Asked Questions

What is TIRF-SIM?
TIRF-SIM is a microscopy technique that combines total internal reflection fluorescence with structured illumination for super-resolution imaging.
What are the advantages of using TIRF-SIM?
It offers faster time resolution and the ability to image dynamic biological processes in multiple colors.
Can the microscope setup be modified?
Yes, the setup is flexible and can be adapted for other imaging modalities like 3D-SIM.
What is the purpose of the liquid crystal variable retarder?
It is used to control the polarization of light for optimal imaging conditions.
How is the microscope calibrated?
Calibration involves aligning optical components and using fluorescent beads to ensure proper focus and illumination.
What types of samples can be imaged?
The setup can image various biological samples, including live cells and fluorescent bead layers.

Bu makale, dinamik biyolojik süreçleri birden çok renkte optik süper çözünürlükle görüntülemek için toplam iç yansıma floresan aydınlatması (TIRF-SIM) ile çalışan yapılandırılmış bir aydınlatma mikroskobunun montajı ve çalıştırılması için derinlemesine bir kılavuz sağlar.

Bu protokolün genel amacı, TIRF ve çoklu renklerle optik kesit alma modlarında çalışabilen yüksek hızlı canlı hücre süper çözünürlüklü görüntüleme için uygun yapılandırılmış bir aydınlatma mikroskobu oluşturmak ve hizalamaktır. Bu yöntem, hücre biyolojisi alanında şu anda standart kırınım sınırlı TIRF mikroskobu kullanılarak cevaplanamayan temel soruların cevaplanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin ana avantajı, diğer süper çözünürlüklü mikroskopi tekniklerine kıyasla hızlı zaman çözünürlüğüdür, bu da onu canlı hücrelerdeki dinamik süreçleri görüntülemeye çok uygun hale getirir.

Bu protokol bir TIRF-SIM mikroskobunun yapım adımlarını açıklasa da, kurulum esnektir ve 3D-SIM, multifokal SIM ve doğrusal olmayan SIM gibi görüntüleme modalitelerini uygulamak için kolayca değiştirilebilir. Yapılandırılmış bir aydınlatma mikroskobu için uyarma yolunu düzenlemek ve hizalamak için, burada gösterildiği gibi optik tablo üzerindeki bileşenlerin konumlarını işaretleyerek başlayın. İlk dikroik aynayı, DM4'ü mikroskop çerçevesinin filtre küpü taretine yerleştirdikten sonra, ikinci dikroik aynayı, DM3'ü bir inç kare kinematik ayna yuvasına yerleştirin ve kondenser merceğinden bir odak uzaklığı uzağa yerleştirin, L5. Ardından, sistem için optik erişimi doğru bir şekilde tanımlamak için, objektif merceği (OB) taretten çıkarın ve bunun yerine bir hizalama aleti vidalayın.

Ardından, lazerden gelen kolimasyonlu bir referans ışınını iki hizalama diskindeki deliklerin merkezinden yönlendirmek için dikroik ayna DM3'ü ve SLM'nin yaklaşık nihai konumuna yerleştirilmiş geçici bir hizalama aynasını kullanın. Burada gösterildiği gibi üç ayna ve dikroik ayna DM2 kullanarak, ışını lazerden gelen geçici aynaya yönlendirin. Kaba optik eksen belirlendikten sonra, hizalama aracını çıkarın.

Ardından, mikroskop gövdesine girmeden önce ışın yoluna bir iris yerleştirin ve ışın üzerinde ortalayın. İrisin ortasında küçük bir delik olan bir parça beyaz kart takın, ardından objektif lensi yeniden takın. Ardından, DM3 aynalarında yinelemeli açısal ayarlamalar yapın ve gelen ışınla kart üzerindeki arka yansımayı ortalamak için SLM konumunda.

Ardından objektif merceği geçici olarak çıkarın ve bir referans konumu oluşturmak için tavandaki lazer noktasını işaretleyin. Tüp lensi, L5'i, objektiften kabaca bir odak uzaklığı uzağa yerleştirin ve referans ışınının yönü boyunca çevirmek için ayarlanmış doğrusal bir öteleme aşamasına monte edin. Tüp merceğin konumunu ve açısını, objektiften çıkan ışın toplanacak ve tavandaki referans noktasına çarpacak şekilde ayarlayın.

İris ve beyaz kart ile arka yansımayı tekrar kontrol ederek merceğin ışına dik olup olmadığını kontrol edin. Ardından objektif merceği çıkarın ve görüntü röleli teleskopun ikinci merceği olan L4'ü takın. Kolimasyonu sürdürmek ve referans ışınının tavandaki işaretli noktaya çarpmaya devam etmesini sağlamak için bu merceğin konumunu ve açısını ayarlamak için doğrusal öteleme aşamasını kullanın. Objektif merceği değiştirin ve teleskobun ilk merceği olan L3'ü takın. Daha önce açıklandığı gibi kolimasyon ve sapma olmamasını sağlamak için bu merceğin konumunu ve açısını ayarlayın.

SLM çipini metin protokolüne göre, lensler hizalı olarak monte ettikten sonra, SLM'yi aynanın yerine yerleştirin. SLM'nin konumunu, referans ışını SLM çipinin merkezinde yer alacak şekilde ayarlayın ve açıyı, ışın iki röle merceğinden geçecek şekilde ayarlayın. Ardından referans ışınının hala işaretli noktada ortalanıp ortalanmadığını kontrol edin.

Sıvı kristal değişken geciktiriciyi veya LCVR'yi, hızlı ekseni 45 derece açıyla gelen polarizasyona monte edin. Ardından, polarizasyon döndürücünün metin protokolüne göre hizalanmasını tamamladıktan sonra, oküler aracılığıyla iletilen ışığı kullanarak, bir retiküle odaklanın ve objektif merceği bu konuma sabitleyin. Ardından, 1.5 numaralı bir kapak camına 100 nanometre çok renkli boncuklardan oluşan bir damla yayarak tek katmanlı bir floresan boncuk hazırlayın.

Suya tekrar daldırmadan önce boncukları cama adsorbe etmek için boncukları kurumaya bırakın. Daldırma yağı kullanarak boncuk örneğini objektifin üzerine yerleştirin. Kameranın konumunu, floresan boncuk tabakası odakta olacak şekilde hassas bir şekilde ayarlayın.

SIM ikili ızgara desenlerini bitmap dosyaları olarak oluşturduktan ve bunları metin protokolüne göre SLM'ye yükledikten sonra, SLM kontrol yazılımını yükleyin ve Bağlan'a tıklayın. Repertuar" sekmesinde, repertuar dosyasını açmak için Yükle'ye tıklayın ve dosyada bulunan çalışan siparişlerin sayısını kontrol edin. Repertuar dosyasını SLM'ye yüklemek için "Panoya Gönder"e tıklayın.

Ardından, Durum" sekmesini seçin ve çalışan siparişin numarasını girin. Çalışma sırasını hizalama ızgarasına değiştirmek için Seç'e tıklayın. L3'ün odak konumundaki ışın yoluna bir XY aşamasına monte edilmiş bir uzamsal maske veya SM yerleştirin ve konumunu, yalnızca istenen ilk siparişler geçilecek şekilde optik eksene göre çevirin.

Uzamsal filtreden hemen sonra, yalnızca iki dairesel ışın görünecektir. Kameradaki floresan boncuk tabakasının görüntüsünü kontrol edin. İki dairesel ışın burada gösterildiği gibi örtüşmüyorsa, objektif merceği ve kamera konumunu yinelemeli olarak ayarlayarak örnek düzlemi yeniden konumlandırın.

Odağı ince ayarladıktan ve numune düzlemini metin protokolüne göre ayarladıktan sonra, örneğin boyayı odağa getirerek 10 mikromolar rodamin 6G boya çözeltisi görüntüleyerek TIRF aydınlatmasını onaylayın. İki ışın doğru TIRF açısında gelirse, tek moleküller yüksek arka plan olmadan görünür olacak ve dairesel açıklığın kenarları odakta olacaktır. Kirişlerin pozisyonunda ince ayarlamalar, dikroik ayna DM3 ayarlanarak yapılabilir.

Sistemi senkronize etmek ve kalibre etmek için boncuk tek katmanlı numuneyi objektifin üzerine yerleştirin ve odak noktasına getirin. SLM'yi, ilk model oryantasyonu için sırayla üç faz kaydırma görüntüsünün her birini gösterecek şekilde programlamak için SLM kontrol yazılımını kullanın. Ardından örnek repertuarın dördüncü çalışma sırasına geçin.

Edinme yazılımında, Gelişmiş Kamera Özellikleri'ni seçerek ve Çıkış Tetikleyici Türü 1"i pozitif ve Çıkış Tetikleyici Türü 2"yi negatif olarak ayarlayarak kamerayı küresel pozlama süresi için yapılandırın. Sıra bölmesinde, Tarama Türü'nün altında, Sabit Disk Kaydı'nı seçin ve kare sayısını üç olarak ayarlayın. Ardından Başlat'a tıklayınüç kare elde etmek için.

SLM modeli her pozlamada değişecektir. Sistemi metin protokolüne göre kalibre ettikten sonra, SLM kontrol yazılımında, SLM çalışma sırasını TIRF-SIM için gerekli olan dokuz ikili ızgara görüntüsünün tam serisine geçirin. Bu, örnek repertuarda sıfır olarak çalışıyor.

Boncuk örneğinin dokuz görüntüsünü aldıktan sonra, kamera yazılımının sıra bölmesinde, tarama türü olarak Sabit Disk Kaydı'nı seçin ve kare sayısını dokuz olarak değiştirin. Ardından görüntüleri almak için "Başlat" ı tıklayın. Son olarak, Arabelleğe Alınmış Görüntüleri Kaydet altında, görüntü türü olarak TIFF'i seçin ve Tamam'ı tıklatın. Metin protokolüne göre süper çözünürlüklü bir görüntüyü yeniden oluşturun.

Burada gösterilen, standart TIRF'yi TIRF-SIM ile karşılaştırmak için çok renkli 100 nanometre çapında floresan boncuklar görüntülendi. TIRF-SIM, TIRF'ye kıyasla açıkça önemli ölçüde daha yüksek yanal çözünürlüğe sahipti. Mikroskobun tahmini çözünürlüğü 488 ve 640 nanometre TIRF-SIM için sırasıyla 90 nanometre ve 120 nanometredir.

Bu, teorik kırınım sınırlı duruma kıyasla her iki dalga boyu için yanal çözünürlükte iki kat iyileşmeye karşılık gelir. Burada görüldüğü gibi, floresan olarak işaretlenmiş amiloid fibriller in vitro olarak oluşturuldu ve ayrıca çift çözünürlüğü göstermek için bir test numunesi olarak kullanıldı. emGFP etiketli mikrotübüller veya LifeAct-GFP gibi yüksek kontrastlı hücre altı yapılar, TIRF-SIM görüntüleme için idealdir ve yüksek kontrastlı, süper çözünürlüklü görüntüler verir.

Gösterilen kurulumu kullanan TIRF-SIM görüntüleme, bazal hücre korteksinin yakınında bulunan bir mikrotübül alt popülasyonunun gözlemlenmesini sağlar ve zaman içinde mikrotübül polimerizasyonu ve depolimerizasyonu görülebilir. Ayrık yapılara sahip olmayan düşük kontrastlı numuneler, plazma zarının kenarları dışında yüksek çözünürlüklü bilgilerden yoksundur ve bu nedenle TIRF-SIM görüntüleme için yetersiz kalırlar. Son olarak, başarılı SIM görüntüleme için yüksek modülasyon kontrastı gereklidir.

Burada gösterildiği gibi, yeniden yapılandırılmış görüntünün Fourier dönüşümü, SIM optik transfer fonksiyonunun görselleştirilmesine izin verir. Bir kez ustalaştıktan sonra, gerekli tüm parçalar edinilmişse, bu teknik yaklaşık bir hafta içinde tamamlanabilir. Bu prosedürü denerken, TIRF-SIM'i başarılı bir şekilde uygulamak için en kritik konuların farkında olunmalıdır.

İlk olarak, kirişlerin hassas bir şekilde hizalanması çok önemlidir. Objektif lens açıklığının kenarlarına yerleştirilmeleri gerektiğinden bu zor olabilir. İkinci olarak, ışığın polarizasyon durumunun desenle birlikte döndürülmesi çok önemlidir.

Bu olmadan, numunenin desen kontrastı düşük olacak ve sonraki görüntü oluşturma imkansız olacaktır. Bu videoyu izledikten sonra, SLM tabanlı bir TIRF-SIM mikroskobunun yapımı ve hizalanmasındaki en önemli adımları iyi anlamış olmalısınız. 3B Sınıfı lazerlerle çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın.

TIRF hedefi yerindeyken hizalama işlemi gerçekleştirilirken lazer gücü göz için güvenli seviyelerde tutulmalıdır.

Explore More Videos

Biyomühendislik Sayı 111 Optik süper çözünürlük yapılandırılmış aydınlatma mikroskopisi floresan yüksek hızda görüntüleme TIRF bio

Related Videos

Gerçek zamanlı, TCR Eşzamanlı Görüntüleme ve İlişkili Sinyal Proteinler için TIRF Mikroskopi Tekniği

16:10

Gerçek zamanlı, TCR Eşzamanlı Görüntüleme ve İlişkili Sinyal Proteinler için TIRF Mikroskopi Tekniği

Related Videos

24.5K Views

Fagozom Oluşumu ve Kapanışının TIRF Mikroskobu Tabanlı Görselleştirilmesi

04:13

Fagozom Oluşumu ve Kapanışının TIRF Mikroskobu Tabanlı Görselleştirilmesi

Related Videos

680 Views

Toplam İç Yansıma Floresan Mikroskobu Kullanılarak Hücre Görüntüleme

02:51

Toplam İç Yansıma Floresan Mikroskobu Kullanılarak Hücre Görüntüleme

Related Videos

691 Views

Floresan Fotoaktivasyon Lokalizasyon Mikroskobu ile Biyolojik Yapıların Eş Zamanlı Çok Renkli Görüntülenmesi

12:51

Floresan Fotoaktivasyon Lokalizasyon Mikroskobu ile Biyolojik Yapıların Eş Zamanlı Çok Renkli Görüntülenmesi

Related Videos

9.4K Views

Yapılandırılmış Aydınlatma Mikroskopi Verilerinin uzay-zamansal Görüntü Korelasyon Spektroskopisi nicel T Hücreleri kortikal Aktin Akışı

09:09

Yapılandırılmış Aydınlatma Mikroskopi Verilerinin uzay-zamansal Görüntü Korelasyon Spektroskopisi nicel T Hücreleri kortikal Aktin Akışı

Related Videos

10.2K Views

Ara filamentler ve mikrotübüller 2 boyutlu doğrudan Stokastik optik imar mikroskobu ile görüntüleme

14:23

Ara filamentler ve mikrotübüller 2 boyutlu doğrudan Stokastik optik imar mikroskobu ile görüntüleme

Related Videos

11.5K Views

Çok renkli yerelleştirme mikroskobu canlı memeli hücre organelleri tek membran proteinlerin

11:06

Çok renkli yerelleştirme mikroskobu canlı memeli hücre organelleri tek membran proteinlerin

Related Videos

9.1K Views

Çoklu görüntüleme modları bir floresan mikroskop ile iletken

08:32

Çoklu görüntüleme modları bir floresan mikroskop ile iletken

Related Videos

10.3K Views

Hücreleri tarafından seçilmiş adezyon oluşumunda görselleştirme gelişmiş Disk-toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik

10:19

Hücreleri tarafından seçilmiş adezyon oluşumunda görselleştirme gelişmiş Disk-toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik

Related Videos

7K Views

Fotonik Çip Kullanarak Yüksek İşLeç Toplam İç Yansıma Floresansı ve Direkt Stokastik Optik Rekonstrüksiyon Mikroskobu

14:09

Fotonik Çip Kullanarak Yüksek İşLeç Toplam İç Yansıma Floresansı ve Direkt Stokastik Optik Rekonstrüksiyon Mikroskobu

Related Videos

7.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code