Name: Kullanımı Çevre Örneklerinde Yeni Faustoviruses İzolasyonunda bir Hızlı Stratejisi Vermamoeba vermiformis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
Description: Keşfedin Faustovirus izolasyonu için yeni bir stratejiyi; Vermamoeba vermiformis kullanarak çevre örneklerinden dev virüsleri hızla izole edin. Bu yöntem, viral ekosistemleri ve patojeniteyi anlamak için viroloji araştırmalarına önemli katkılar sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarların yapacak bir teşekkür yok.

1. Örnek Toplama <ol><li> Farklı ortamlarda ve bölgelerden gelen 70 örnekleri toplamak. Saint Pierre de Meyzoargues (Fransa), Marsilya (Fransa) Parc Borely gölden 15 numune köyünden 5 kirli su örnekleri;: Bu durumda, aşağıdaki kullanın 15 deniz suyu 25 nehir suyu örnekleri Alpler (Fransa) Marsilya SAMENA (Fransa), kayalık girişlerden sediman numuneler ve nihayet, La Ciotat kanalizasyon 10 numune (Fransa). </li><li> herhangi bir tedavi olmaksızın oda sıcaklığında, bir dakika boyunca, aşılanmasından önce homojenleştirme vorteksleyin örnekleri. </li></ol> 2. İzolasyon Prosedürü <ol><li> Kör Kültür Usul ve Numune Aşılama için Hazırlık ev sahipliği <ol><li> Kullanım V. ko-kültür için bir hücre desteği olarak vermiformis (suş CDC19). </li><li> (Proteaz pepton, maya özütü-glikoz ortamında 30 ml 75 cm 2 hücre kültürü şişesi içinde, py 28 ° C &#39;de muhafaza amipG). Tablo 1&#39;de PYG kompozisyon kontrol edin. Not: 48 saat sonra, amipler normal sayım kullanılarak sayım slaytlar (ör Kovaslides) ile nicelendirilir. </li><li> 10 dakika boyunca 720 x g&#39;de santrifüj ile 5 x 10 5 6 hücre / ml, ve topak amipler 10 arasında bir konsantrasyonda Hasat hücreleri. </li><li> Aspirasyon ile süpernatantı alın ve steril Page&#39;in amoebal tuzlu (PAS) Tablo 1&#39;de 30 ml amipler pelet yeniden askıya. Bu durulama işlemi tekrarlayın. </li><li> Yaklaşık 10 6 amipler / ml&#39;lik bir konsantrasyonda bir antibiyotik ve anti-mantar karışımı ile starvasyon ortamı 30 ml amip yeniden askıya. açlık orta kese içine alma veya çarpma olmadan hayatta kalmak mümkün kılan amip için bir hayatta kalma ortamı olduğunu. Tablo 1 &#39;de bir bileşim edin. Not: antimikrobiyel madde karışımı 10 ug / ml, vankomisin, 10 ug / ml, imipenem, 20 ug / ml siprofloksasin, 20 μ ihtivaug / ml doksisiklin, ve 20 ug / ml, vorikonazol. Bu karışım azaltmak veya viral çarpma değiştirebilir bakteriyel ve fungal kontaminasyonu azaltmak için görev yaptı. </li><li> Doğrudan nemli bir ortam ihtiva eden bir torba içine ıslak kompres yerleştirilmesi ile (amiplerin yapışmasını destekleyen bir 96-çukurlu plaka düz dipli 200 ul amip tek tabaka üzerine, her numune için 25 ul inoküle ve nemli bir ortamda 30 ° C&#39;de inkübe ) buharlaşmayı önlemek için plaka. Bu primo-kültürdür. Herhangi bir örnek aşılaması olmayan amip iki kuyu bırakın; Bu negatif kontrol olarak görev yapar. Üç gün boyunca bu primo-kültür inkübe edin. </li><li> Üç gün ilk aşılama, alt kültür herhangi mikroskobik gözlem olmadan yukarıda açıklandığı gibi taze amip üzerinde primo-kültür plakası sonra. primo-kültürü ile aynı koşullar altında üç gün yeni bir plaka inkübe edin. </li><li> inkübasyon bu üç gün sonra th için aynı şekilde son kültür gerçekleştirmeE primo- ve alt kültür. iki gün boyunca son kültür inkübe edin. Sonra algılama geçin. </li></ol></li><li> Otomatik Akış Sitometrisi ile liziz algılama Not: akışı ile birleştiğinde Kör kültür sitometri izolasyon önceki standart sisteminden farklıdır. Daha duyarlı, hassas ve otomatik olduğunu. algılama amaçlı, en yüksek hızda ve mikroskopik gözlem olmadan lizis algılamak için geliştirilen yeni bir teknikle uyguladı. Bu teknik, bir tarama örneklerinin avantajlıdır ve daha büyük tekniklere kıyasla daha iyi bir duyarlılığa sahiptir. 7-9 <ol><li> lizis tespit etmek için nihai eş-kültür 96 oyuklu plaka kullanınız. </li><li> sitometresinde açın ve üreticinin protokolüne uygun olarak düşük arka plan gürültüsünü elde etmek için temiz ve durulama çalıştırın. </li><li> Yüksek Verimli Sampler sitometresi otomatik 96 oyuklu plaka örnekleri yüklemek ve accordin 40 dakika içinde tamamen otomatik satın alma yapmak için akış ile birleştirilen (HTS) başlatınüreticinin protokolüne örn. </li><li> aşağıdaki gibi HTS ayarlayın: Örnek hacmi 150 ul, hacim 50 ul karıştırma hızı 180, karışımları 5 sayısının karıştırma, her bir numune 400 ul arasındaki yıkama hacmi, oran 2.5 ul / sn, kaydedilen olayların 10.000 sayısını akar. </li><li> kapısına ilk sırada yer amip nüfusu son ko-kültür mikro-plaka negatif kontrol kuyuları değerlendirmek ve fiziksel özelliklerine göre bu hücre konak yüzdesini belirlemek için. homojen bir amip nüfus ve enkaz ve gürültü tekabül eden bir alt olayların ikinci nüfusa sahip olduğundan emin olun. Not: Bu yolluk prosedürü ileri dağılım ile tahmin boyutuna göre tek hücre, gelen hücre içi enkaz ve topaklar ayırır. Doğru mümkün olan en iyi yolluk prosedürü kullanarak her nüfusun yüzdesini belirlemek için önemlidir. Bu yüzdeler protozoa birçok çeşit kullanılan, özellikle değişebilir, bu nedenle bir negativ olması her zaman önemlidirÖrneklerin geri kalanı için referans popülasyon olarak kullanılabilecek e kontrolü. </li><li> acquire örnek tıklayarak yolluk başlayın. </li><li> 10.000 olaylar az olmamak olayların sayısını kaydeder. </li><li> okunu kullanarak ilgi amip nüfusu yerelleştirilmesine. Bu kapıları tanımlamak için nasıl. </li><li> Daha sonra otomatik olarak tüm plakayı, yolluk sonra, HTS nokta izin veya &#39;Home&#39; tıklayarak plaka bulun. boyutu ve yapısı parametrelerine göre veri toplama ve analizi yapın (sırasıyla, FSC (ileri dağılım) ve SSC (yan dağılım)). Not: amip kapılı nüfus kaybını saptamak amip lizis sorumlu patojen ajanın varlığını işaret eder. virüs enfeksiyonu ile ilişkili protozoa liziz analiz cihazı ile işlenir ve güvenilir bir negatif kontrol olarak kullanılan aynı olmayan enfekte olmuş popülasyonlar göre amip nüfusun% 50 liziz bir keyfi olarak tasarlanmış eşik ile tespit edilir. </li></ol></li></ol><pclass = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. Lizis Algılama sonra Yeni İzolatlarının Karakterizasyonu <ol><li> Ön Boyama Dev Virüslerin Durum Ortaya Çıkardı <ol><li> flow sitometri lizis algılama sonra, kalan amip askıya parçalanmış ko-kültür pipetle. Daha sonra doğrudan 10 dakika boyunca 800 x g&#39;de süspansiyon 50 ul sitosantrifüj. </li><li> Santrifüj işleminden sonra, saf metanol çözeltisi ile slaytlar düzeltmek. mavi Eozin / Azur ve DAPI boyama ticari hızlı boyama kullanarak slaytlar Leke ve virüs fabrikaları varlığını kontrol etmek için 1,000X büyütme bir ışık mikroskobu altında gözlemlemek. <ol><li> hızlı boyama, birinci eozin çözeltisi içine slaytlar dalma daha sonra bir fosfat tampon çözeltisi ile 45 saniye için slaytlar durulama son olarak 6 saniye Blue Azur ihtiva eden ikinci sabitleme çözeltisi içine slaytlar dalma doğrudan geçmesi ve (4 sn üç kez tekrar) pH 7.2. sonra görünen kaydetme devam, oda sıcaklığında kurumaya bırakın slaytlarüzerinde. </li><li> DAPI boyama, mevduat sabit kuru slayt üzerine DAPI ticari stok solüsyonu 15 ul İçin. ışıktan korumak ardından gözlem geçin. </li></ol></li></ol></li><li> Elektron mikroskobu <ol><li> slaytlar ilk tespitten sonra, yüzen kültürlerin elektron mikroskobu gözlem yoluyla dev virüsün varlığını değerlendirmek. </li><li> Mevduat parlayan taburcu ızgara üzerine olumlu örnek 5 ul. oda sıcaklığında yaklaşık 20 dakika boyunca bekleyin. </li><li> Üzerinde 10 saniye boyunca% 1 amonyum molibdat küçük bir damla dikkatle ızgara ve mevduat kurutun. 5 dakika boyunca kurumaya ızgara bırakın. </li><li> 200 keV de mikroskopi elektron geçin. </li><li> tutucu ızgara yerleştirin; mikroskop içine tutucu tanıtmak. İlgili ikonuna tıklayarak vakum genel kontrol edin. Yakın vanalar spot büyüklüğü 5 de gözlem başlar ve x 25.000 büyütme ve. </li><li> ImageJ veya doğrudan kullanarak dev virüs ölçünsatın alma ekranında bulunan mikroskop ölçüsü aracını kullanarak mikroskop ly. Not: Yaklaşık 200 nm&#39;lik bir kapsid boyutu Faustovirus grubuna örnek sınıflandırır. </li></ol></li><li> Moleküler Biyoloji Not: Bu tanımlamanın ardından, moleküler biyoloji testleri elektron mikroskobu altında aynı kapsid boyutu ve görünüme sahip Marseillevirus gelen Faustovirus ayırt etmek için onay için çok önemli olduğunu, aynı konak özgüllüğü olmamasına rağmen. Marseillevirus Vermamoeba üzerinde büyümek değil, Faustovirus Vermamoeba ve bugüne kadar başarısız olmuş gibi Acanthamoeba gibi diğer amip üzerinde büyümek tüm girişimleri özgüdür. Tasarım ve Reteno ark eserlerinde yer alan spesifik primer / prob sistemlerinin uygulama. viral genlerin amplifikasyonu ve sekanslama yoluyla, yeni izole edilmiş virüs daha kesin bir ön sınıflandırma sağladı. <ol><li> eskiüreticinin protokolüne göre otomatik bir ekstraksiyon sistemi ile pozitif kültür örneklerinden yolu DNA. </li><li> Reteno vd de tarif edildiği gibi PCR bir PCR, gerçek zamanlı gerçekleştirin. 19 </li><li> Amplifikasyon için kullanılan aynı primerler kullanılarak Dizisi. DNA-idareli RNA polimeraz altbirim 1 genini hedef primerler kullanın: Fstv_S2F 5&#39;-CCA GGA CAT GAT GGT CAC ATA G-3 &#39;(ileri) ve Fstv_S2R 5&#39;-TTG CAC CTC CGC AGT TAA A-3&#39; (ters) ile Fstv_S2P FAM-TATGCTCCAATGGCCTTCAACGACA-TAMRA sonda. </li></ol></li></ol> 4. Virüs üretimi, saflaştırılması ve Genomu Sıralama <ol><li> uç nokta seyreltme klonlama için tek bir virüs amip kültürünü altkültürü. </li><li> Üretimi için: PYG 30 mi, 10 Vermamoeba vermiformis ml ve zaten küçük şişelere kuyu transfer izole virüs 5 ml ihtiva eden 20 şişeler hazırlar. </li><li> tamamlanana kadar 30 ° C&#39;de inkübe edinamip erimesi. Tüm amip parçalanmış kadar ters optik mikroskopi ile her gün gözlemleyin. </li><li> tam Parçalama işleminden sonra, bir alıcıya tüm şişeler havuz. artıkları yok etmek için 0.45 um filtre ile filtre. </li><li> 75 dakika boyunca 89.800 x g&#39;de ultrasantrifugasyon sureti ile saflaştırma başlatın. santrifüj başlamadan önce tüplerin ağırlığını kalibre emin olun. </li><li> Santrifüj işleminden sonra, aspirasyon her tüpten kaldırmak ve santrifüj tekrarlamadan önce, kalibrasyon için kullanılan aynı hacimde PAS pelet yeniden askıya. </li><li> Yukarıda olduğu gibi, süpernatant kaldırmak ve fosfat tamponlu tuzlu su, 1 ml (PBS) içinde her pelet yeniden askıya. </li><li> (0.22 um filtre üzerinde filtre PBS, 100 ml sukroz 27.5 g),% 25 sukroz ile üretilir virüs saflaştınlır. <ol><li> sükroz 8 ml ve viral süspansiyonun 2 ml kullanın. 1 saat 15 dakika süre ile 89.800 x g&#39;de santrifüjleyin. 1 ml PBS pelet yeniden askıya. -80 ° C&#39;de saklayın. </li&gt; </ol></li></ol>

<ol><li>Raoult, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+1.2-megabase+genome+sequence+of+Mimivirus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The 1.2-megabase genome sequence of Mimivirus.</a> Science. 306 (5700), 1344-1350 (2004).</li>
<li>Claverie, J. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+viruses+in+the+oceans%3A+the+4th+Algal+Virus+Workshop%5BTitle%5D)+AND+%22Virol+J%22%5BJournal%5D)">Giant viruses in the oceans: the 4th Algal Virus Workshop.</a> Virol J. 2, 52-52 (2004).</li>
<li>Monier, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marine+mimivirus+relatives+are+probably+large+algal+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Audio%2C+Transactions+of+the+IRE+Professional+Group+on%22%5BJournal%5D)">Marine mimivirus relatives are probably large algal viruses.</a> Audio, Transactions of the IRE Professional Group on. 5, 12-12 (2007).</li>
<li>Monier, A., Claverie, J. M., Ogata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taxonomic+distribution+of+large+DNA+viruses+in+the+sea%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Taxonomic distribution of large DNA viruses in the sea.</a> Genome Biol. , (2008).</li>
<li>Claverie, J. -M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mimivirus+and+Mimiviridae%3A+Giant+viruses+with+an+increasing+number+of+potential+hosts%2C+including+corals+and+sponges%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invertebr+Pathol%22%5BJournal%5D)">Mimivirus and Mimiviridae: Giant viruses with an increasing number of potential hosts, including corals and sponges.</a> J Invertebr Pathol. 101 (3), 9-9 (2009).</li>
<li>Colson, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+of+the+megavirome+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Virol%22%5BJournal%5D)">Evidence of the megavirome in humans.</a> J Clin Virol. 57 (3), 191-200 (2013).</li>
<li>La Scola, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tentative+characterization+of+new+environmental+giant+viruses+by+MALDI-TOF+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">Tentative characterization of new environmental giant viruses by MALDI-TOF mass spectrometry.</a> Intervirology. 53 (5), 344-353 (2010).</li>
<li>Boughalmi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+isolation+of+giant+viruses+of+the+Mimiviridae+and+Marseilleviridae+families+in+the+Tunisian+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High-throughput isolation of giant viruses of the Mimiviridae and Marseilleviridae families in the Tunisian environment.</a> Environ Microbiol. , (2012).</li>
<li>Pagnier, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+decade+of+improvements+in+mimiviridae+and+marseilleviridae+isolation+from+amoeba%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">A decade of improvements in mimiviridae and marseilleviridae isolation from amoeba.</a> Intervirology. 56 (6), 354-363 (2012).</li>
<li>Philippe, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pandoraviruses%3A+Amoeba+Viruses+with+Genomes+Up+to+2.5+Mb+Reaching+That+of+Parasitic+Eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Pandoraviruses: Amoeba Viruses with Genomes Up to 2.5 Mb Reaching That of Parasitic Eukaryotes.</a> Science. 341 (6143), 281-286 (2013).</li>
<li>Legendre, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thirty-thousand-year-old+distant+relative+of+giant+icosahedral+DNA+viruses+with+a+pandoravirus+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Thirty-thousand-year-old distant relative of giant icosahedral DNA viruses with a pandoravirus morphology.</a> PNAS. , (2014).</li>
<li>Saadi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+Isolation+of+Mimivirus+in+a+Patient+With+Pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">First Isolation of Mimivirus in a Patient With Pneumonia.</a> Clin Infect Dis. , (2013).</li>
<li>Saadi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shan+virus%3A+a+new+mimivirus+isolated+from+the+stool+of+a+Tunisian+patient+with+pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">Shan virus: a new mimivirus isolated from the stool of a Tunisian patient with pneumonia.</a> Intervirology. 56 (6), 424-429 (2013).</li>
<li>Claverie, J. -M., Abergel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mimivirus%3A+the+emerging+paradox+of+quasi-autonomous+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet+%3A+TIG%22%5BJournal%5D)">Mimivirus: the emerging paradox of quasi-autonomous viruses.</a> Trends Genet : TIG. 26 (10), 431-437 (2010).</li>
<li>Colson, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viruses+with+more+than+1%2C000+genes%3A+Mamavirus%2C+a+new+Acanthamoeba+polyphaga+mimivirus+strain%2C+and+reannotation+of+Mimivirus+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol+Evol%22%5BJournal%5D)">Viruses with more than 1,000 genes: Mamavirus, a new Acanthamoeba polyphaga mimivirus strain, and reannotation of Mimivirus genes.</a> Genome Biol Evol. 3 (0), 737-742 (2010).</li>
<li>Claverie, J. -M., Abergel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+questions+about+giant+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Virus+Res%22%5BJournal%5D)">Open questions about giant viruses.</a> Adv Virus Res. 85, 25-56 (2013).</li>
<li>Fischer, M. G. M., Allen, M. J. M., Wilson, W. H. W., Suttle, C. A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+virus+with+a+remarkable+complement+of+genes+infects+marine+zooplankton%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Giant virus with a remarkable complement of genes infects marine zooplankton.</a> PNAS. 107 (45), 19508-19513 (2010).</li>
<li>Van Etten, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Another+really%2C+really+big+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Another really, really big virus.</a> Viruses. 3 (1), 32-46 (2011).</li>
<li>Reteno, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Faustovirus%2C+an+asfarvirus-related+new+lineage+of+giant+viruses+infecting+amoebae%5BTitle%5D)+AND+%22J.Virol%22%5BJournal%5D)">Faustovirus, an asfarvirus-related new lineage of giant viruses infecting amoebae.</a> J.Virol. , (2015).</li>
<li>Coşkun, K. A., Ozçelik, S., Tutar, L., Elaldı, N., Tutar, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+identification+of+free-living+amoebae+from+tap+water+in+Sivas%2C+Turkey%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+res+Int%22%5BJournal%5D)">Isolation and identification of free-living amoebae from tap water in Sivas, Turkey.</a> Biomed res Int. 2013, 675145(2013).</li>
<li>Bradbury, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free-living+amoebae+recovered+from+human+stool+samples+in+Strongyloides+agar+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+microbiol%22%5BJournal%5D)">Free-living amoebae recovered from human stool samples in Strongyloides agar culture.</a> J Clin microbiol. 52 (2), 699-700 (2014).</li>
<li>Pagnier, I., Valles, C., Raoult, D., La Scola, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Vermamoeba+vermiformis+and+associated+bacteria+in+hospital+water%5BTitle%5D)+AND+%22Microb+Pathog%22%5BJournal%5D)">Isolation of Vermamoeba vermiformis and associated bacteria in hospital water.</a> Microb Pathog. 80, 14-20 (2015).</li>
<li>Ogata, H., Toyoda, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remarkable+sequence+similarity+between+the+dinoflagellate-infecting+marine+girus+and+the+terrestrial+pathogen+African+swine+fever+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Virol+J%22%5BJournal%5D)">Remarkable sequence similarity between the dinoflagellate-infecting marine girus and the terrestrial pathogen African swine fever virus.</a> Virol J. 6, 178-178 (2008).</li>
<li>Tarutani, K., Nagasaki, K., Itakura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+virus+infecting+the+novel+shellfish-killing+dinoflagellate+Heterocapsa+circularisquama%5BTitle%5D)+AND+%22Aquat+Microb+Ecol%22%5BJournal%5D)">Isolation of a virus infecting the novel shellfish-killing dinoflagellate Heterocapsa circularisquama.</a> Aquat Microb Ecol. 23, 103-111 (2001).</li>
</ol>

Yazarlar, rekabet eden hiçbir finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

Faustovirus ASFV yakın yeni Megavirales ailesinin ilk üyesi ihtimali ilk Reteno ve diğ., 19 tarafından önerildi ancak bazı farklılıklar de ayırt edilebilir. Faustovirus Asfarviridae ailesine katılmak gerekip gerekmediğini veya yerine yeni bir varsayılan virüs ailesini oluşturmalıdır belirsizliğine dikkat çekmektedir. Bu konu daha fazla araştırma, kendi morfolojisi özellikle daha kapsamlı karakterizasyonu, ev sahibi aralığı, çoğaltma döngüsü ve gen repertuarı gerektirecektir. Daha Faustovirus genotipl...

Dev virüsler, Megavirales sipariş ait özellikle keşif, tamamen partikül büyüklüğü ve genom karmaşıklığı açısından virüslerin dünyayı değiştirdi. Virüsler, daha önce küçük işletmeler olduğu düşünülen ve Mimivirus tüm kuralları kırmaya ortaya çıktı. 1 Metagenomic veri ortamında, 2-5 değil, aynı zamanda insanlarda sadece dev virüslerin aynı anda her yerde göstermektedir. 6 Bu nedenle, hala ihtiyaç vardır büyük ölçekte bu virüslerin aramak için. Bu dev virüslerin çeşitlilik insan numuneleri 12,13 ve çevresel örneklerde çeşitli tarama ile, dünya çapında da 7-11 fakat su ortamlarının çeşitliliği ve bunlarla ilişkili sedimanlar sadece örnekleme ile değerlendirildi. 7,9 Acanthamoeba polyphaga mimivirus oldu fagositik protistler, öncelikle Acanthamoeba spp kullanarak ko-kültür tarafından izole edilmiştir. 14-16 dev virüslerin bütün bir koleksiyonu da o vardıbilimsel topluluk Acanthamoeba spp araştırma ve izolasyon prosedürü kısıtlamak yapılan bu belirtilen protist host, izole. Açıkça tek bir ana türün bu güven virüslerin büyük bir kısmı gözardı ediliyor sonuçlandı. Dev virüs, CroV, son derece hareketli deniz protozoon Kafeterya roenbergensis ile izole edilmiş olması, 17,18 yeni soyları ya da dev virüslerin aileleri keşfetmek için protozoa daha geniş kullanma ihtiyacını ortaya koymaktadır. Reteno ve diğ., Daha önce hiç kullanılmamış olan hücre bilgisayarlar gibi diğer protozoa seçmek başardı ve dev virüslerin yeni Asfar ile ilgili soy (Yeni adlandırılan Faustovirus) izole edilmiştir. 19 Bu viral soy üyelerini genişletmek amacıyla yeni Faustovirus genotiplerin izole etmek için bir girişim olarak, bizim izolasyon prosedürleri modifiye ve yeni Faustoviruses hasat edebilen çevresel örnekleri ekrana onları kullandı. Daha sonraYeni izolatları karakterize etmek için tüm protokol nitelendirdi. Biz Vermamoeba vermiformis, daha önce ilk Faustovirus prototip E12. 19 halen ana özgü olduğunu Faustovirus Bu protistlerin izolasyonunda kullanılan insan ortamlarda bulunan en yaygın serbest yaşayan protistler, 20-22 değerlendirildi. Bizim laboratuvar amip lizis veya viral büyüme gösterdi hiçbir girişimde diğer dev virüsleri büyümeye çünkü bilinen dev virüslerin hiçbiri, bu amip için patojenik olduğunu biliyordum. Bu nedenle, söz konusu inanıyoruz V. vermiformis yeni Faustoviruses izole etmek bilinen en iyi ve en eşsiz hücre desteğidir.

<table><tbody><tr><td>LSR FORTESSA sitometresi&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>649225B4</td></tr><tr><td>TECNAI G2 F20</td><td>FEI</td><td>Almanya&nbsp;</td><td>5027/11</td></tr> sayılı Kanun<tr><td>Optik ters mikroskop</td><td>leica&nbsp;</td><td>Fransa</td><td>72643</td></tr><tr><td>DNA ekstraksiyonu</td><td>Qiagen EZ1 Gelişmiş XL Ekstraksiyon Robotu</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>L106A0452</td></tr><tr><td>PCR Cycler CFX96</td><td>Biorad</td><td>Fransa</td><td>785BR06298</td></tr><tr><td>PYG ortamı, PAS, Açlık ortamı</td><td>Kurum içi laboratuvar üretimi&nbsp;</td><td>Marsilya URMITE</td><td>x</td></tr><tr><td>Amip suşu CDC-19</td><td>ATCC</td><td>Fransa</td><td>50237</td></tr><tr><td>Plakalar</td><td>Cellstar</td><td>Fransa</td><td>655180</td></tr><tr><td>PCR malzemeleri, primerler.</td><td>eurogentec</td><td>Fransa</td><td>El yazması</td></tr><tr><td>camtik slayt 10'da belirtilen astarlar, ızgaralarla</td><td>Kova&nbsp;</td><td>ABD</td><td>H899871441F</td></tr><tr><td>Eozin / mavi Azur-Hemacolor lekesi</td><td>Merck milipore&nbsp;</td><td>Fransa</td><td>111955,6,57,109468</td></tr><tr><td>Vakum tahrikli filtreler</td><td>Thermo scientific</td><td>France</td><td>BPV4550 / 20170115</td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Tuzlu</td><td>Su Thermo Fisher scientific&nbsp;</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>10010-023</td></tr><tr><td>DAPI leke</td><td>Yaşam Teknolojileri&nbsp;</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>D1306</td></tr> Serisi<tr><td>cytospin 4 sitosantrifüj</td><td>Thermo Fisher scientific</td><td>Fransa</td><td>10522013JT184-31</td></tr><tr><td>Tek sitoloji</td><td>tüneli Biyomedikal polimerler inc.</td><td>Fransa</td><td>BMP-cyto-S50</td></tr><tr><td>Karbon ızgaraları&nbsp;</td><td>Euromedex</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>FCF400NI</td></tr><tr><td>Amonyum molibdat</td><td>VWR uluslararası&nbsp;</td><td>Fransa&nbsp;</td><td>21276185</td></tr><tr><td>Şişeler&nbsp;</td><td>SARSTEDT</td><td>Almanya</td><td></td></tr><tr><td>833911 0.22 &; m filtreleri&nbsp;</td><td>Milex millipor&nbsp;</td><td>Fransa</td><td>SE2M229104</td></tr><tr><td>Ultrasantrifüj Sorval WX 80</td><td>Thermo scientific</td><td>France</td><td>9102448</td></tr><tr><td>Hızlı akış filtreleri</td><td>Nalgene</td><td>Fransa</td><td>450-0020</td></tr></tbody></table>

kullanımı Çevre Örneklerinde yeni faustoviruses İzolasyonunda bir hızlı stratejisi<em&gt; vermamoeba vermiformis</em

A Rapid Strategy for the Isolation of New Faustoviruses from Environmental Samples Using Vermamoeba vermiformis

Dev virüslerin izolasyonu bu dev virüsler protistler ilgili özellikle, viroloji, bu yeni dönemde büyük ilgi olduğunu. Dev virüsler protistlerin birçok tür için potansiyel patojenik olabilir. Onlar Megavirales son zamanlarda açıklanan sipariş aittir. Pis su örneklerinden izole edilmiş yeni bir soy Faustovirus memeli patojen Afrika domuz ateşi virüsü uzaktan ilişkili olduğunu. Bu virüs aynı zamanda amoebal ana bilgisayar Vermamoeba vermiformis, sağlık su sistemlerinde yaygın protistler özgüdür. Onun genotip koleksiyonunu büyütmek ve pan-genomu incelemek amacıyla yeni Faustovirus genotiplerin izole devam çok önemlidir. Bu amip ko-kültür bakteriyel ve fungal kirletmesini önlemek için antibiyotik ve antifungal kombinasyonlarının kullanımının geliştirilmesi ve virüs çoğalmasını lehine ek suşlarının izole edilmesi için yeni bir strateji geliştirildi. Biz de yeni bir starvatio uygulamayaN, orta V korumak virüs ko-kültür için uygun koşullarda vermiformis. Son olarak, sitopatojenik bir etkiye tespit etmek için, zaman alıcı, akış sitometrisi yerine mikroskopik gözlem kullanılmıştır. Biz daha iyi bir ortam, ev sahibi özgüllük ve genetik içeriğini anlamak için, bu yöntemin etkinliğini kanıtlayan ve böylece Faustoviruses toplanması genişletilmesi, kanalizasyon örneklerinden iki izolatı elde edilmiştir.

Bu yazıda incelenen sistem iki yeni Faustoviruses izole ederek kavramın kendi kanıtı valide. Test edilen 70 örnek, lizis iki bölüm Güvenilir negatif kontroller aksine, tespit edilmiştir. lizis için negatif kontrol% 86 amip nüfus içeriyordu. Buna karşılık, pozitif örnekler (Saint Pierre de Meyzoargues için ST1) ve (La Ciotat Numune 9 LC9) kapılı amip dramatik bir düşüş gösterdi; amip fazla% 60 kalıntı en yüksek yüzde lize edildi. Bizim yöntemin saptama aşamasının bu sağlam sonuçlar <stron...

Burada, dev virüslerin asfarvirüs ile ilgili yeni bir soyu olan Faustovirus'un yeni genotiplerinin karakterizasyonu için viral izolasyondaki en son gelişmeleri açıklıyoruz. Bu protokol, virüslerin, özellikle amipleri enfekte eden dev virüslerin yüksek verimli izolasyonuna uygulanabilir.

Kullanımı Çevre Örneklerinde Yeni Faustoviruses İzolasyonunda bir Hızlı Stratejisi<em&gt; Vermamoeba vermiformis</em

The isolation of giant viruses is of great interest in this new era of virology, especially since these giant viruses are related to protists. Giant ...

Bu yeni izolasyon stratejisinin genel amacı, bu yeni viral familyanın pan-genomunu incelemek, ekosistemlerini ve insanlara yönelik potansiyel patojenitelerini daha iyi anlamak için yeni virüs izolatlarının sayısını artırmaktır. Bu yöntem, özellikle dev virüslerin ve Faustovirüslerin aranmasıyla ilgilenen dünya genelindeki virologlara yardımcı olarak viroloji alanındaki temel sorulara yanıt verebilir. Bu tekniğin temel avantajı; antibiyotik ve antifungal karışımı, amiplere uyarlanmış yeni açlık besiyeri ve daha hızlı ve daha hassas lizis tespiti için akış sitometrisi kullanımı gibi birçok aşamada yeni iyileştirmeler sunmasıdır. Metin protokolüne uygun olarak kirli su örnekleri toplandıktan sonra, amipleri 30 mL proteaz pepton maya özütü glukoz (PYG besiyeri) içeren 75 cm²'lik bir hücre kültürü flaskına ekleyerek konak hücre olan V. vermiformis'i hazırlayın ve 28 °C'de 48 saat inkübe edin. Amipleri saymak için sayım lamları kullanın ve hücreler mL başına 5 × 10⁵ ile 10⁶ konsantrasyonuna ulaştığında, hücreleri 720 ×g'de 10 dakika santrifüj ederek hasat edin.Süpernatantı aspire edin ve amip peletini yeniden süspanse etmek için 30 mililitre steril Page amip salini veya PAS kullanın. Peleti ikinci kez duruladıktan sonra, hücreleri mililitre başına yaklaşık 10⁶ amip olacak şekilde yeniden süspanse etmek için antibiyotik ve antifungal içeren 30 mililitre açlık medyumu kullanın. Açlık medyumu, amiplerin kistleşme veya çoğalma olmadan hayatta kalmasını sağlar.Ardından, 96 kuyucuklu düz tabanlı bir plakadaki kuyucuklara 200 µL amip ekleyin ve 30 °C'de 30 dakika boyunca inkübe edin. Sonra, su örneklerini oda sıcaklığında bir dakika boyunca vorteksledikten sonra, her bir örnekten 25 µL'yi amip hücrelerinin üzerine inoküle edin; negatif kontrol olarak iki kuyucuğu numunesiz bırakın. Buharlaşmayı önlemek için, primer kültürü içeren plağı ıslak bir kompresle birlikte bir torbaya yerleştirin ve plakla birlikte nemlendirilmiş hazneyi 30 °C'deki bir inkübatöre koyun.İlk inokülasyondan üç gün sonra, herhangi bir mikroskobik gözlem yapmadan, primo-kültür plağını az önce gösterildiği gibi amip içeren taze bir 96 kuyucuklu plağa alt kültürle aktarın. 30 °C'de üç gün boyunca inkübe edin. Ardından, alt kültürü kullanarak az önce açıklanan şekilde üçüncü bir plağı inoküle edin ve iki gün boyunca inkübe edin.Son ko-kültür plağındaki lizisi tespit etmek için sitometreyi açın ve arka plan gürültüsünü azaltmak amacıyla üretici protokolüne uygun olarak temizleme ve durulama işlemini gerçekleştirin. 40 dakikalık tamamen otomatik bir veri toplama işlemi yürütmek için, numuneleri 96 kuyucuklu plaktan üretici protokolüne göre otomatik olarak yükleyecek olan yüksek kapasiteli örnekleyiciyi (high throughput sampler veya HTS) başlatın. HTS ayarlarını; 150 µL numune hacmi, 50 µL karıştırma hacmi, 180 karıştırma hızı, 5 karıştırma sayısı, numuneler arası 400 µL yıkama hacmi, saniyede 2,5 µL akış hızı ve 10.000 kayıtlı olay sayısı olacak şekilde burada listelendiği gibi programlayın. HTS'nin plağı belirlemesi veya konumlandırması için "home" seçeneğine tıklayın. Ardından, amip popülasyonunu kapılamak (gate) ve hücre yüzdesini fiziksel özelliklerine göre belirlemek için öncelikle konak amip hücrelerini içeren negatif kontrol kuyucuklarını değerlendirin. Homojen bir amip popülasyonu ve debris ile gürültüye karşılık gelen, daha düşük olay sayılı ikinci bir popülasyon olduğundan emin olun. Sonrasında, "acquire sample" seçeneğine tıklayarak kapılama işlemine başlayın.Ardından, kapıları (gates) belirleyen oku kullanarak ilgilenilen amip popülasyonunu lokalize edin. En az 10.000 olayla (event) kapılama yaptıktan sonra, HTS'nin tüm plağı otomatik olarak çalıştırması için "run" seçeneğine tıklayın. Veri toplama ve analiz işlemlerini, boyut parametresi olan forward scatter ve yapı parametresi olan side scatter'a göre gerçekleştirin. Ek detaylar için metne başvurun.Akış sitometrisi ile lizis tespiti yapıldıktan sonra, kalan amipleri süspansiyon haline getirmek için lizis olmuş ko-kültürleri pipetleyin. Her örnekten 50 µL'yi lamların üzerine pipetledikten sonra, süspansiyonu doğrudan 800 ×g'de 10 dakika boyunca sitosantrifüjleyin.Ardından, lamları sabitlemek için saf metanol kullanın ve ardından lamları oda sıcaklığında kurumaya bırakın. Sabitleme işleminden sonra, lamları altı saniye boyunca blue-azur içine yerleştirmeden önce, her biri dört saniye sürecek şekilde üç kez ESN çözeltisine daldırın. Son olarak, lamları 45 saniye boyunca PBS içine daldırın.Gözleme geçmeden önce lamların oda sıcaklığında kurumaya bırakın. Yeni fikse edilmiş lamları DAPI ile boyamak için, kuru lamların üzerine 15 µL DAPI pipetleyin. Virüs fabrikalarının varlığını kontrol etmek için lamları ışık mikroskobunda 1000x büyütmede gözlemleyin.Elektron mikroskobisi gerçekleştirmek için, pozitif numuneden beş mikrolitreyi glow-discharge uygulanmış bir ızgaraya damlatın ve yaklaşık 20 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Izgarayı dikkatlice kurutun, ardından küçük bir miktar %1 amonyum molibdat ekleyip 10 saniye boyunca inkübe edin. Damlayı dikkatlice uzaklaştırdıktan sonra, ızgarayı beş dakika boyunca kurumaya bırakın. Ardından, elektron mikroskobunu 200 kiloelektron volt seviyesine ayarlayın. Daha sonra ızgarayı tutucuya yerleştirin ve tutucuyu mikroskoba yerleştirin. Vakum genel bakış simgesine tıklayarak vakumu kontrol edin. Ardından valfleri kapatın ve gözleme başlamadan önce spot boyutunu beş, büyütmeyi ise 25.000 olarak ayarlayın. Görüntüleme ekranında dev bir virüs tespit ettikten sonra, virüsü ölçmek için ölçüm aracını kullanın.Metin protokolüne uygun olarak moleküler biyoloji ve viral genom dizileme işlemlerini gerçekleştirin.Bu şekil, iki Faustovirus'un tespitinden elde edilen sonuçları güvenilir negatif kontrollerle karşılaştırmalı olarak göstermektedir. Liz için kullanılan negatif kontrol %86 ameba popülasyonu içeriyordu. Buna karşılık, pozitif örneklerde en yüksek debris yüzdesi görülürken, amebaların %60'ından fazlası liz olmuştur.Burada görüldüğü üzere, ESN ve blue-azur boyamaları, enfekte olmamış ve enfekte olmuş amip hücrelerinin çekirdeklerini ve enfekte hücrelerin içindeki virüs fabrikalarının varlığını boyamaktadır. DAPI boyaması da amiplerin içindeki virüs fabrikalarının varlığını doğrulamaktadır. Bu görüntülerde, elektron mikroskobu; fibril içermeyen ikosahedral bir kapsid ve 200 nanometer boyuta sahip olan, mega-virüsün tipik görünümünü sergileyen Faustovirus varlığını ortaya çıkarmaktadır.Uzmanlaşıldığında ve ko-kültür işleminin ardından, lizis tespiti ve virüs karakterizasyonu tekniği, uygun şekilde uygulandığı takdirde bir saat içinde tamamlanabilir. Bu prosedür uygulanırken, amip canlılığının kontrol edilmesinin ve olası kontaminasyonların denetlenmesinin önemli olduğunu unutmamak gerekir. Bu prosedürün ardından, virüs ailesi ve/veya genotipi gibi ek soruları yanıtlamak amacıyla, dev virüsleri hedefleyen moleküler biyoloji yöntemleri gibi diğer yöntemler uygulanabilir.Geliştirilmesinin ardından bu teknik, viroloji alanındaki araştırmacıların bu viral familyayı, spesifik konakçılarını ve potansiyel patojenitelelerini keşfetmelerinin önünü açmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, örnek sayısını ve türlerini artırarak, en uygun konakçı hücreyi ve en iyi kültür koşullarını seçerek dev virüslerin nasıl kolayca izole edileceği konusunda kapsamlı bir bilgiye sahip olmalısınız. İnsanlar için potansiyel olarak patojenik olan virüslerle çalışmanın, özellikle kanalizasyon örnekleri söz konusu olduğunda, son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın.Bu nedenle, bu prosedür uygulanırken güvenli koşullara sahip SB2 laboratuvarlarında çalışmak gibi önlemler her zaman alınmalıdır.

a-rapid-strategy-for-isolation-new-faustoviruses-from-environmental

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Bu çalışma, MST araçları olarak önerilen insan / / sığır domuz DNA virüsleri, adenovirüs ve polyomaviruses, belirli bir miktar tayini için qPCR kullanarak suda nitrat dışkı / idrar kirlenme veya kontaminasyon kaynağının belirlenmesi için maliyet-etkin bir yöntem açıklanır.

Özgül İnsan ve Hayvan Virüsler Mikrobiyal Kaynak Takip için maliyet-etkin Yöntemi

Amoebal kokültürü seçici gibi amip ve makrofajlar gibi fagositik hücrelere karşı mümkün hücre içi patojenleri büyümesi yapışık amipler kullanarak bir hücre kültür sistemi. Bu yüzden, yeni enfeksiyöz ajanlar keşfetmek için önemli bir aracı temsil eder. Amoebal zenginleştirme amoebal yeni türlerin ve bunların özel hücre içi bakteri keşfini sağlar.

Amoebal kokültürü ve Amoebal Zenginleştirme Yaklaşımlar New hücre içi patojenlerin keşif

EPA Metod 1615, çevre ve içme sularındaki enterovirüsleri ve norovirüsleri konsantre etmek için elektropozitif bir filtre kullanır. Bu el yazması, Yöntem 1615 analizleri için numune toplama prosedürünü açıklamaktadır.

Enterovirus Kültür ve RT-qPCR Su Norovirüs Oluşum EPA Metot 1615 Ölçüm. Virüs Örneklerinin I. Koleksiyonu

Burada, Buffalo Green Monkey böbrek hücresi hattını kullanarak toplam kültürlenebilir virüsleri ölçmek için bir prosedür sunuyoruz. Prosedür, çevresel ve içme sularında bulaşıcı virüslerin oluşumunu ölçmek için standartlaştırılmış bir araç sağlar.

Enterovirus Kültür ve RT-qPCR Su Norovirus Oluşum EPA Metot 1615 ölçülmesi. II. Toplam kültürlenebilir virüs Deneyi

Burada, ters transkripsiyon-kantitatif PCR kullanarak çevresel ve içme sularında enterovirüs ve norovirüsü ölçmek için bir prosedür sunuyoruz. EPA Metodu 1615'ten alınan bu standardize prosedürle yeraltı sularından ortalama virüs geri kazanımı, poliovirüs için %20 ve murin norovirüsü için %30 idi.

Enterovirüs Kültür ve RT-qPCR Su Norovirus Oluşum EPA Method 1615 Ölçümü. Bölüm III. RT-qPCR Virüs Algılama

Burada VirWaTest sunuyoruz, hangi kullanım noktasında su örneklerinden virüslerin konsantrasyonu ve tespiti için basit, uygun fiyatlı ve taşınabilir bir yöntemdir.

VirWaTest, su örnekleri virüslerin tespiti için bir nokta-of-kullanım yöntemi

Burada, enfekte amiplerin ayrılması için tek bir hücreli mikro-aspirasyon yöntemini tanımlıyoruz. Faustovirüsler ve bilinmeyen dev virüsler tarafından enfekte Vermamoeba vermiformis viral alt popülasyonları ayırmak için, aşağıda ayrıntılı protokolü geliştirdi ve iki düşük bolluk yeni dev virüs ayırma yeteneğini gösterdi.

Dev Virüs Karışım Ayırma için Floresan-Aktive Hücre Sıralama alternatif bir strateji olarak Tek Hücreli Mikro-aspirasyon

Bu protokol, alandaki doğal substratlardan canlı nematodları verimli bir şekilde çıkarmak için bir yöntem özetler.

Baermann Huni tarafından Vahşi Nematodların Hızlı İzolasyonu

Dizileme teknolojilerinin yaygın kullanımı nedeniyle sivrisineklerde çok sayıda yeni virüs benzeri sekans bulunmuştur. Omurgalı ve sivrisinek hücre hatlarını kullanarak virüsleri izole etmek ve büyütmek için etkili bir prosedür sunuyoruz; bu, sivrisinek kaynaklı ve sivrisineğe özgü virüsler de dahil olmak üzere sivrisinekle ilişkili virüsler üzerine gelecekteki çalışmaların temelini oluşturabilir.

Sahada Toplanan Sivrisineklerden Sivrisinek İlişkili Virüs İzolasyonu

Çevresel su ve atık su örneklerinden virüs konsantrasyonu, öncelikle virüslerin tanımlanması ve miktarının belirlenmesi için gerçekleştirilen zorlu bir görevdir. Çeşitli virüs konsantrasyon yöntemleri geliştirilmiş ve test edilmiş olsa da, burada farklı numune tiplerine sahip RNA virüsleri için ultrafiltrasyon ve yağsız süt topaklaşmasının etkinliğini gösteriyoruz.

Yağsız Süt Flokülasyonu ve Ultrafiltrasyon Kullanılarak Çevresel Su ve Atık Su Numunelerinden Virüs Partiküllerinin Konsantrasyonu

Burada, siyanofajları (ve konakçılarını) izole etmek için deniz ve tatlı su ekosistemlerinin öfotik bölgelerinden örnekleme yöntemlerini ve tek genotipleri zenginleştiren ve virüs-konak etkileşim dinamiklerini karakterize eden örnekleme sonrası süreçleri açıklıyoruz.

Fotosentetik Mikropların ve Virüslerinin Çevresel Örneklemesi: Tarladan Laboratuvara

Keşfedin Faustovirus izolasyonu için yeni bir stratejiyi; Vermamoeba vermiformis kullanarak çevre örneklerinden dev virüsleri hızla izole edin. Bu yöntem, viral ekosistemleri ve patojeniteyi anlamak için viroloji araştırmalarına önemli katkılar sağlar.

Kullanımı Çevre Örneklerinde Yeni Faustoviruses İzolasyonunda bir Hızlı Stratejisi

Daha fazla video keşfet