Name: Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 30 s
Description: Öğrenin anestezili sıçanlarda elektroretinografi ve görsel uyarılmış potansiyellerin eşzamanlı kayıt yöntemini. Bu teknik retina ve korteks fonksiyonlarını kapsamlı şekilde değerlendirerek görsel yolakların yaşlanma ve hastalıklardan etkilenmesini araştırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu projenin finansmanı Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (NHMRC) 1046203 (BVB, AJV) ve Melbourne Nörobilim Enstitüsü Bursu (CTN) tarafından sağlanmıştır.

Tüm deney prosedürleri Avustralya&#39;da Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi tarafından belirlenen Bakım ve Bilimsel Amaçlarla Hayvanların Kullanım Uygulama Avustralya Kanunu göre yapılmıştır. Etik boşluk Melbourne Üniversitesi, Fen Fakültesi, Hayvan Etik Komitesi (Onay numarası 0.911.322,1) elde edilmiştir. Kronik VEP Elektrotların 1. Ön-implantasyon Not: eşzamanlı ERG ve VEP sinyallerinin ameliyatla VEP implante edilmesi gereken hayvanların en az 1 hafta koleksiyonu sinyal önce elektrotlar toplanacak edin. <ol><li> klorheksidin (% 70 etanol içinde% 0.5) ile temizlenerek önce deney cerrahi tezgah sterilize edin. Kullanmadan önce tüm cerrahi ekipman Otoklav. steril bir cerrahi örtü ile hayvan örtün. Tüm Deneyciler cerrahi maske, önlük ve sterilize eldiven giymek emin olun. </li><li> 3 L / dakikalık bir akış oranında O2 ile% 3.5 izofluran - 3 anestezi neden. ane korumakameliyat boyunca% 1.5 ve 2 L / dakika sthesia. pençe tutam refleksinin yokluğu ile anestezi yeterli derinlik sağlamak. </li><li> gözlerin kurumasını önlemek için kornea% 1 karboksimetilselüloz sodyum uygulanır. </li><li> Gözleri, alnının üzerine posterior 30 mm x 30 mm alanı Tıraş ve kulaklara ön. </li><li> vücut ısısını korumak ve bir stereotaksik çerçeve ile hayvanların başını stabilize etmek için bir ısı yastığı (37 ˚C) hayvan koyun. </li><li> % 10 povidon-iyot üç kez traş bölgeyi dezenfekte edin. Uygulama Standardı ile uyumlu olmak, gözün yakın bölge için alkol bazlı antiseptik kullanmaktan kaçının Cerrahi Teknologları Derneği tarafından yola çıktı. </li><li> kranial kemik açığa çıkarmak için bir neşter ile ve dermal doku bu tüketim a ~ 20 mm çaplı daire gelen kafasına bir medyan sagital kesi olun. </li><li> kazıma ve koronal ve sagital kafatası sütür ortaya çıkarmak için gazlı bez ile kurutularak yatan periosta çıkarın. </li><li> Bize7 mm kaudal bregma, orta hatta 3 mm yanal: stereotaksik koordinatlar her iki hemisferde üzerinde kafatası yoluyla iki delik (0.7 mm çap, derinlik ~ 1 mm) Trepan, bir matkap bağlı bir diş çapak ing. </li><li> Paslanmaz çelik vida Vida (çap 0.7 mm, klorheksidin sterilize uzunluk 3 mm) yaklaşık 1 mm (maruz vidanın 2 mm) derinliğe kadar, iki önceden hazırlanmış deliklere sıkı demirleme izin vermek. Altta yatan kortikal doku zarar vermeden bu kişiler dura. </li><li> ~ 4 ve 8 saat 0 sütür - gazlı bez ile kranial kemik kurutma ve iki 3 gevşek cilt geri çekilerek diş amalgam cerrahi zemin hazırlayın. </li><li> yerine (adım 1.10 açıklanan paslanmaz çelik vidalar) vida elektrotlar güvenli maruz kafatası üzerinde diş amalgam yayıldı. ~ Vida 1,5 mm kayıt için maruz kalır emin olun. </li><li> Geri çekme dikişlerle çıkarın. </li><li> analjezi ve tuzlu su (sodyum klorür,% 0.9, 1, 0.5,% karprofen deri altından (5 mg / kg) enjektesıvı replasmanı için 0,5 ml) deri altından. </li><li> Hayvan ayrı kafeslerde kurtarmak için izin verin. sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar sahipsiz hayvan bırakmayın. </li><li> tamamen cerrahi (en az 5 gün) kurtarıldı kadar diğer hayvanların şirkete hayvan iade etmeyin. </li><li> 4 gün için% 0.5, günde bir kez analjezi için karprofen deri altından (5 mg / kg) tatbik devam edin. </li><li> Kayıt ERG ve VEP cerrahisi sonrası 1 hafta. </li></ol> 2. ERG ve VEP Kayıt <ol><li> Veri toplama hazırlığı <ol><li> Aynı anda uyaran tetiklemek ve aşağıda tavsiye edilen ayarlara göre verileri 2 elde etmek için bilgisayar yazılımını kullanın. <ol><li> Sinyaller 3 yükseltmek (ERG: 1.000, VEP ×: x10,000) içten izole bir ön amplifikatör ve amplifikatör tarafından belirlenen kazanç ve empedans açısından eşleştirilmiş iki gözü. </li><li> Bir 650 üzerinde 4 kHz ERG için ayarlayın örnekleme oranımsn kayıt penceresi (2560 puan) Bunu yapmak için, &quot;500 ms&quot; Örnekler için &quot;2.560&quot; i seçin ve (isim ve Malzeme yazılım bkz Tablo sürümü için) veri toplama yazılımı &quot;zaman tabanı&quot; sekmesini tıklayın bir süre için 650 msn kayıt penceresi dönecektir hangi. <ol><li> 250 milisaniye çağ boyunca 10 kHz VEP için örnekleme oranını ayarlamak için aynı yöntemi kullanın. hem ERG ve VEP kayıtları için 10 msn öncesi uyaran taban çizgisini izin verin. Bunu yapmak için, &quot;Kur&quot; sekmesine tıklayın; Yeni bir diyalog penceresini açın &quot;Stimülatörü&quot; seçeneğini seçin; Bu pencerede &quot;Mode&quot; için açılır listeden &quot;darbe&quot; seçeneğini seçin; ve &quot;10 ms&quot; için &quot;gecikme&quot; için değerini ayarlayın. </li></ol></li><li> 1000 Hz (- - 3 dB) 0.3 filtreleme Set ERG bant geçiren. Bu veri toplama yazılımı &quot;Bio Amplifikatör&quot; tıklayarak yapılır. Sonra, &quot;0.3Hz&quot; &quot;Yüksek Pass&quot; değeri ve &quot;düşük geçiş&quot; için &quot;1 kHz için değerini ayarlayın&quot;. </li><li> 100 Hz - (- 3 dB) Vizyon (ISCEV) Klinik Elektrofizyoloji Uluslararası Derneği tarafından önerilen insan VEP kayıtları 6 2.1.1.3&#39;de yukarıda belirtilen yöntemi kullanarak, 0.1 ile VEP bant geçiren ayarlarını. </li></ol></li></ol></li><li> elektrot hazırlığı <ol><li> Sırasıyla 2, bir elektrot kurşun gümüş tel ya da bir timsah klibi takarak ERG aktif / pasif ve VEP aktif / pasif elektrotlar özel yapmak. Ticari olarak toprak elektrot edinin. </li><li> 4 ısmarlama elektrotlar için elektrot kurşun uzantısından erkek ucunu kesti. İç tel sağlayan bir neşter bıçak hasarlı olup dış politetrafluoroetilen yalıtım kaplama 1 cm kaldırın. </li><li> Ön moda sıçan göz kuşatmak için çapında bir döngü ~ 8 mm gümüş tel (0.3 mm kalınlığında) bir 70 mm uzunluk kesme ve şekillendirme ile ERG inaktif elektrotlar. 1 ml pipet ucu ile ilgili döngü şekillendirilmesiyle tek tip bir daire hazırlayın. </li><li&gt; gümüş 70 mm uzunluk kesme ve sıçan kesici üzerine kanca uzunluğu-bilge çapında bir elips ~ 8 mm oluşturarak Öncesi moda VEP inaktif elektrotlar. </li><li> Ön moda gümüş tel 30 mm uzunluk kesme ve yavaşça sıçan kornea temas için küçük bir döngü oluşturarak ERG aktif elektrotlar (~ çapı 1-2 mm) </li><li> Güvenli maruz iç tel ile gümüş entwining ile (2 2 ERG inaktif aktif ERG, 1 VEP inaktif) elektrot kurşun elektrotlar ekleyin. </li><li> fotovoltaik eserler azaltmak için maskeleme bandı ile aşırı maruz metal izole. </li><li> ERG inaktif elektrotlar kanca ve halka raptiye küçük bir parça sopa üzerinde (~ 20 mm x 5 mm) maskeleme bandı ile kemirgen boyun askısı kararlı eki sağlamaktır. </li><li> elektrodun iç teline timsah klibi takın VEP aktif elektrotlar yapmak açar. </li><li> Önceki kayıtları, gümüş tellerin açıkta kalan yüzeyleri (yani, inaktif halka ve acti electroplateSinyal iletimi geliştirmek için 20 saniye boyunca bir 9 V DC kaynağı kullanılarak klorür ile ucu) A.Ş.. <ol><li> Bunu yapmak için, normal tuzlu su içinde (birincil hücre anot olarak hareket eden) ERG elektrot teli gümüş ucu bırakın; 9 V pil pozitif terminaline bu elektrot teli diğer ucunu. </li><li> akünün eksi kutbuna başka kabloyu (katot) bağlayın, ve aynı zamanda tuzlu su içine diğer ucunu batırmayın. 20 saniye sonra çıkarın ve beyaz renkte eşit kaplanacak ERG elektrot teli şerit ucunu görüyoruz. Not: klorür kaplama açıklığını sağlamak için (~ kadar 8 saat kadar) Her bir deneysel oturumda için yeni ERG elektrotlar hazırlayın. </li></ol></li></ol></li><li> Hayvan hazırlanması <ol><li> Bir ışık geçirmez bir odaya önceki kayıtları hayvanları gecede (≥ 8 saat) Koyu adapte. , Oda ışıkları kapatarak tüm kapıları ve güneşlikler kapatarak maksimum karanlık adaptasyonu sağlamak. etrafında ışık geçirmez malzemeler koyarak ışık sızıntısını en aza indirmekkalın siyah perdeler dışında kapı / pencere ve yerleştirme bilgisayar ekranları kavşaklar. </li><li> Loş kırmızı ışık yayan diyot yardımıyla karanlık bir odada hayvan hazırlık yapmak (LED, 17.4 cd.m -2, λ max = 600 nm) çubuk hassasiyeti sürdürmek için. </li><li> kas içinden (5 mg / kg 60) ketamin / ksilazin enjeksiyonu ile sıçan anestezisi. Bir pençe tutam refleksinin yokluğu ile anestezi yeterli derinliği onaylayın. </li><li> , Sedasyon muhafaza gerektiğinde 50 dakika sonra anestezi bir başka doz (başlangıç ​​dozunun% 50) idare etmek. </li><li> Ek topikal anestezi için her göze% 0.5 Proxymetacaine bir damla uygulamak ve fazla sıvıyı kapalı yanıp söner. </li><li> öğrenci dilatasyon daha sonra, her bir göze% 0.5 tropikamid bir damla uygulamak aşırı sıvı kapalı kuru. </li></ol></li><li> ERG ve VEP elektrot konumlandırma <ol><li> Faraday kafesi bulunan Ganzfeld kase önünde ERG platformunda hayvan yerleştirin. bu c gibi bir elektrikli ısıtma yastığı kullanmaktan kaçınınBir elektrofizyolojik kayıtlar, elektrik gürültüsü tanıtmak. Not: Platform vücut ısısını korumak için bir devridaim ısıtılmış su platformuna eklenir. </li><li> ense etrafında sıkıca sıkı değil yerleştirilmiş kanca ve halka raptiye bir şerit ile platforma güvenli bir hayvan. </li><li> anestezi sıçan alt kesici etrafında inaktif VEP elektrot kanca. </li><li> Gözün ekvator çevresinde non-invaziv skleral halka çevreleyen ile ERG inaktif elektrotlar yerleştirin. ense civarında kanca ve halka raptiye şeridine elektrotlar takarak bu stabilize. kontralateral göz için tekrarlayın. </li><li> Sabitleyin VEP paslanmaz çelik vidalı kafatası önceden implante için timsah klipleri ekleyerek aktif elektrotlar. </li><li> Sinyal kalitesini artırmak için önce ERG aktif elektrodun yerleştirme kornea üzerinde% 1 karboksimetilselüloz sodyum küçük bir damla yerleştirin. Not: viskon sıvısı ayrıca mini deney boyunca kornea hidrasyon korumak yardımcı olurkemirgenler 7 kuruma tipi katarakt oluşumunu rımızı azamiye. </li><li> VEP inaktif elektrot teması artırmak için alt ön dişlerin% 1 karboksimetilselüloz sodyum küçük bir damla koyun ve böylece kaliteyi işaret etmektedir. </li><li> hafif özel bir dahili stereotaksik kol bağlı bir mikromanipülatör kullanarak santral kornea yüzeyine dokunmak ERG aktif elektrotlar yerleştirin. </li><li> subkutan kuyruk içine toprak iğne elektrot (paslanmaz çelik) 5 mm - 2 yerleştirin. </li><li> Gerekirse alt göz kapağında önceden sinyal kalitesini artırmak için kayıt için herhangi bir aşırı sıvı kurutun. </li><li> yakın hayvanın gözleri, her iki retina bile aydınlatılmasını sağlamak için kase açılması ile uyum sağlanması Ganzfeld kaseye slayt platformu (adım 2.4.1 bakınız). </li><li> dıştan gelen sesleri azaltmak için Faraday kafesi kapatın. </li></ol></li><li> Veri koleksiyonu <ol><li> Elektrot Yerleşi olmadığını değerlendirmek için - (0.52 log cd.sm -2) loş bir test flaş kullanmakent 2 tatmin edicidir. Kontrol koşulları altında, bu ~ 800 uV bir ERG genlik ve 10&#39;dan büyük olmayan,% arası bir göz değişkenlik olmasına neden olur. Gerekli repozisyon elektrotlar edin. </li><li> Test flaş aşağıdaki hayvanların kayıttan önce tam karanlıkta 10 dakika süreyle koyu adapte sağlar. </li><li> ERG ve VEP&#39;in toplarken bir Ganzfeld kase kullanarak ışık uyaranların mevcut yanıp söner ~ 500 msn zaman penceresi üzerinden aynı anda sinyal gönderir. sönük gelen İlerleme belirli dalga formları için yeterli koyu uyumlarını sağlamak amacıyla ışık düzeylerini daha parlak. </li><li> STR, B-dalga ve ERG a / b-dalgası dalga biçimleri ortaya çıkarmak için aydınlık enerjilerin aralığında sinyalleri toplamak. parlak ışıklı enerjilerin (1 tekrar) de kısık ışık seviyelerinde (20 tekrarlar) ve daha az ortalama daha sinyaller. Yavaş yavaş 1 dimmest gelen parlak ışık seviyesine 180 sn arası uyaran aralığı uzatmak. Bir örnek protokolü için Tablo 1&#39;e bakınız. </li><li> iso içinGeç ERG çubuk ve koni yanıtları, bir eşleştirilmiş-flaş paradigma 8 kullanmaktadır. 1.52 log cd.sm dört yanıp başlatmak -2-arasında 500 milisaniye arası uyaran aralığı 2 ile. Dijital varsayılan çubuk yanıtı elde etmek için karışık dalga (1. flaş) için koni dalga formu (3. veya 4. flaş) çıkarın. </li><li> Parlak ışıklı enerjilerde VEP sinyalleri, ortalama 20 tekrarlar kaydetmek için (yani, - 0,52 log cd.sm -2, 5 sn arası uyaran aralığı 1,52). Bu dizideki ilk flaş geleneksel koyu adapte ERG tepki verdiğini unutmayın. </li><li> (20) VEP aydınlık enerjiye bağlı olarak, bir sonraki daha parlak ERG aşamasından önce süpürür sonra yeniden uyarlanması için 3 dakika - 1 izin verin. </li><li> Veri toplama işlemi tamamlandıktan sonra, pentobarbital sodyum (325 mg / ml, 3 mi) intrakardiyak enjeksiyonu ile, anestezi verilen hayvanın euthanize. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-ile-next.within sayfa = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> Dalga şekli </td><td> Uyarıcı ışık enerjisi (cd.sm log -2) </td><td> Tekrar sayısı </td><td> interstimulus aralığı (sn) </td></tr><tr><td> STR </td><td> -6,24 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5,93 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5.6 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5,33 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,99 </td><td> 10 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,55 </td><td> 10 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,06 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -3,51 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -3,03 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -2.6 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -1,98 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Karışık a- / b-dalgası </td><td> -1,38 </td><td> 1 </td><td> 30 </td></tr><tr><td> Karışık a- / b-dalgası </td><td> -0,94 </td><td> 1 </td><td> 30 </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> -0,52 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 90 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 0.04 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 120 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 0.58 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flash 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 1.2 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 1.52 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td> Koni a- / b-dalgası </td><td> 1.52 </td><td> 4 </td><td> 0.5 </td></tr></tbody></table> Stimulus Enerji bir Aralığı Kullanarak Tablo 1. ERG ve VEP Kayıt Protokolü. Yeterli arası uyaran aralığı ile parlak (alt) yanıp söner, loş (üstte) den Uyarıcı sunumları ilerleme karanlık adaptasyonu sağlamak. Protokolün sonunda, kısa aralıklarla dört flaş tekrarlama koni aracılı yanıtı ortaya çıkarmak amacıyla sunulmuştur. ERG Dalga 3. Analizi Not: ERG ve VEP analizi daha önce detaylı bir şekilde tarif edilmiştir 3,9,10.Aşağıdaki bölümlerde kısa bir bakış sağlar. <ol><li> Veri analizi için bir elektronik tablo yazılımı dijital voltaj zaman biçiminde ihracat işaretleri. </li><li> Çubuk photoreceptoral fonksiyonu <ol><li> Gecikmiş bir Gauss (Eşitlik 1) 11 ile dalga PIII ön kenarını Model. PIII (i t) = Rm PIII ∙ [1 - exp (- ı, S (t ∙ - td) 2)] t&gt; T D (Denklem 1) </li><li> İki parlak parlak enerjilerin bir topluluk üzerinde 12,13 (yani, 1.22 ve 1.52 log cd.sm -2) uygun optimize edin. </li><li> A-dalga genliği% 90 Model yukarı sonrası receptoral müdahalelerine 14 önlemek için. Not: Model photoreceptoral yanıt doymuş genliği (Rm PIII, mV), duyarlılık (S m 2 .cd -1 .s -3) ve gecikme (t d, msn) döndürür. </li></ol></li><li> Çubuk bipolar hücre fonksiyonuiyon <ol><li> Dijital örten salınım potansiyelleri ile karışık PII dönmek karışık dalga formlarından PIII modeli (yukarıya bakınız) çıkarın. </li><li> Karışık PII gelen çubuk PII ayıklamak için, dijital karışık PII gelen koni yanıtı (3. ya da 1.52 log cd.sm de 4. flaş -2) çıkarma (1.52 log cd.sm 1 st flaş -2). </li><li> Ardından, salınım potansiyelleri kaldırmak için dalga (46.9 Hz, -3 dB, Blackman pencere) bir low-pass filtre uygulamak. Kalan dalga çubuk PII yanıtı 10&#39;dur. </li><li> Çubuk PII tepe genliği Özü ve 10 (1.52 log cd.sm -2 az -2 log cd.sm -2 ve çubuk izole PII altında) tüm uyaran şiddetleri karşı komplo. </li><li> iç retinal hücre bütünlüğünün bir ölçü sağlayan bir hiperbolik fonksiyonu (Denklem 2) kullanarak bu verileri Model. V (I) &#39;in V max = (i n / (i n+ K n)) (Denklem 2) Not: Bu denklem maksimal PII yanıtı (V max, mV), 1 / duyarlılık döner ve fonksiyonu (n) 15 eğimi (k, cd.sm-2 log). </li></ol></li><li> Koni bipolar hücre fonksiyonu Not: koni yanıtı tek bir yoğunlukta alınır gibi (1.52 log cd.sm -2) genlik ve zamanlama bu ışık seviyesinde döndürülür. <ol><li> Maksimal koni PII yanıtı 2,16 ayıklayın. </li><li> Bu maksimal yanıt 2,16 karşılık gelen örtülü zaman ayıklayın. </li></ol></li><li> Ganglion hücre fonksiyonu <ol><li> STR küçük bir sinyal olarak, yüksek frekans ve hat gürültüsünü ortadan kaldırmak için Dalga formu 50 Hz çentik ile bir alçak geçiren filtre uygulamak (46.9 Hz, -3 dB, Blackman pencere). </li><li> Maksimal pSTR yanıtı 3,17 ayıklayın. </li><li> Bu maksimal yanıt 3,17 karşılık gelen örtülü zaman ayıklayın. </li></ol></li></ol> 4. AnaVEP Dalga lizizi <ol><li> VEP (P1, N1 ve P2) maksimum ve minimum bileşenlerinin ekstre edilmesi. Detay için başvurular 3,6 bakın. </li><li> Onların önceki zirve ya da çukur (P1N1 ve N1P2) 3,6 den oluk-tepe genlikleri olarak Ekspres genlikleri. </li><li> Örtülü zaman (o) Ayıklama hangi bu maksimal yanıt karşılık gelir (P1 o N1 o, P2) 3,6. </li></ol>

<ol><li>Nguyen, C. T. O., Vingrys, A. J., Bui, B. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dietary+omega-3+fatty+acids+and+ganglion+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Dietary omega-3 fatty acids and ganglion cell function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 3586-3594 (2008).</li>
<li>Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+electroretinography%3A+methods+for+extraction+and+interpretation+of+rod+and+cone+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Rodent electroretinography: methods for extraction and interpretation of rod and cone responses.</a> Prog Retin Eye Res. 27, 1-44 (2008).</li>
<li>Tsai, T. I., Bui, B. V., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+acute+intraocular+pressure+challenge+on+rat+retinal+and+cortical+function%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Effect of acute intraocular pressure challenge on rat retinal and cortical function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 55, 1067-1077 (2014).</li>
<li>Cowey, A., Franzini, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+retinal+origin+of+uncrossed+optic+nerve+fibres+in+rats+and+their+role+in+visual+discrimination%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">The retinal origin of uncrossed optic nerve fibres in rats and their role in visual discrimination.</a> Exp Brain Res. 35, 443-455 (1979).</li>
<li>Weinstein, G. W., Odom, J. V., Cavender, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visually+evoked+potentials+and+electroretinography+in+neurologic+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Neurol+Clin%22%5BJournal%5D)">Visually evoked potentials and electroretinography in neurologic evaluation.</a> Neurol Clin. 9, 225-242 (1991).</li>
<li>Odom, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visual+evoked+potentials+standard+%282004%29%5BTitle%5D)+AND+%22Doc+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Visual evoked potentials standard (2004).</a> Doc Ophthalmol. 108, 115-123 (2004).</li>
<li>Ridder, W. H., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Causes+of+cataract+development+in+anesthetized+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Causes of cataract development in anesthetized mice.</a> Exp Eye Res. 75, 365-370 (2002).</li>
<li>Nixon, P. J., Bui, B. V., Armitage, J. A., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+contribution+of+cone+responses+to+rat+electroretinograms%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Experiment+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">The contribution of cone responses to rat electroretinograms.</a> Clin Experiment Ophthalmol. 29, 193-196 (2001).</li>
<li>Bui, B. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+the+electroretinogram+to+understand+how+intraocular+pressure+elevation+affects+the+rat+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Using the electroretinogram to understand how intraocular pressure elevation affects the rat retina.</a> J Ophthalmol. 2013, 262467(2013).</li>
<li>Nguyen, C. T., Vingrys, A. J., Bui, B. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dietary+omega-3+fatty+acids+and+ganglion+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Dietary omega-3 fatty acids and ganglion cell function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 3586-3594 (2008).</li>
<li>Hood, D. C., Birch, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+measure+of+the+electrical+activity+of+human+rod+photoreceptors+using+electroretinography%5BTitle%5D)+AND+%22Vis+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A quantitative measure of the electrical activity of human rod photoreceptors using electroretinography.</a> Vis Neurosci. 5, 379-387 (1990).</li>
<li>Birch, D. G., Hood, D. C., Locke, K. G., Hoffman, D. R., Tzekov, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+electroretinogram+measures+of+phototransduction+in+cone+and+rod+photoreceptors+-+Normal+aging%2C+progression+with+disease%2C+and+test-retest+variability%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Quantitative electroretinogram measures of phototransduction in cone and rod photoreceptors - Normal aging, progression with disease, and test-retest variability.</a> Arch Ophthalmol. 120, 1045-1051 (2002).</li>
<li>Bui, B. V., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+receptoral+responses+in+pigmented+and+albino+guinea-pigs+%28Cavia+porcellus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Doc+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Development of receptoral responses in pigmented and albino guinea-pigs (Cavia porcellus).</a> Doc Ophthalmol. 99, 151-170 (1999).</li>
<li>Robson, J. G., Saszik, S. M., Ahmed, J., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rod+and+cone+contributions+to+the+a-wave+of+the+electroretinogram+of+the+macaque%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rod and cone contributions to the a-wave of the electroretinogram of the macaque.</a> J Physiol. 547, 509-530 (2003).</li>
<li>Severns, M. L., Johnson, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+care+and+fitting+of+Naka-Rushton+functions+to+electroretinographic+intensity-response+data%5BTitle%5D)+AND+%22Doc+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">The care and fitting of Naka-Rushton functions to electroretinographic intensity-response data.</a> Doc Ophthalmol. 85, 135-150 (1993).</li>
<li>Bui, B. V., Fortune, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origin+of+electroretinogram+amplitude+growth+during+light+adaptation+in+pigmented+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Vis+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Origin of electroretinogram amplitude growth during light adaptation in pigmented rats.</a> Vis Neurosci. 23, 155-167 (2006).</li>
<li>Bui, B. V., Fortune, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ganglion+cell+contributions+to+the+rat+full-field+electroretinogram%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram.</a> J Physiol. 555, 153-173 (2004).</li>
<li>Tremblay, F., Laroche, R. G., Debecker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Electroretinographic+Diagnosis+of+the+Incomplete+Form+of+Congenital+Stationary+Night+Blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+Res%22%5BJournal%5D)">The Electroretinographic Diagnosis of the Incomplete Form of Congenital Stationary Night Blindness.</a> Vision Res. 35, 2383-2393 (1995).</li>
<li>Bayer, A. U., Keller, O. N., Ferrari, F., Maag, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+of+glaucoma+with+neurodegenerative+diseases+with+apoptotic+cell+death%3A+Alzheimer%27s+disease+and+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Association of glaucoma with neurodegenerative diseases with apoptotic cell death: Alzheimer's disease and Parkinson's disease.</a> Am J Ophthalmol. 133, 135-137 (2002).</li>
<li>Wostyn, P., Audenaert, K., De Deyn, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+abnormal+high+trans-lamina+cribrosa+pressure+difference%3A+A+missing+link+between+Alzheimer%27s+disease+and+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurology+and+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">An abnormal high trans-lamina cribrosa pressure difference: A missing link between Alzheimer's disease and glaucoma.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 110, 753-754 (2008).</li>
<li>Yucel, Y. H., Zhang, Q. A., Weinreb, R. N., Kaufman, P. L., Gupta, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+retinal+ganglion+cell+loss+on+magno-%2C+parvo-%2C+koniocellular+pathways+in+the+lateral+geniculate+nucleus+and+visual+cortex+in+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of retinal ganglion cell loss on magno-, parvo-, koniocellular pathways in the lateral geniculate nucleus and visual cortex in glaucoma.</a> Prog Retin Eye Res. 22, 465-481 (2003).</li>
<li>Gupta, N., Yucel, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+changes+can+we+expect+in+the+brain+of+glaucoma+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Survey+of+Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">What changes can we expect in the brain of glaucoma patients.</a> Survey of Ophthalmology. 52, 122-126 (2007).</li>
<li>Kong, Y. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+aging+and+diet+restriction+on+retinal+function+during+and+after+acute+intraocular+pressure+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">Impact of aging and diet restriction on retinal function during and after acute intraocular pressure injury.</a> Neurobiol Aging. 33, 1115-1125 (2012).</li>
<li>Bui, B. V., Sinclair, A. J., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroretinograms+of+albino+and+pigmented+guinea-pigs+%28Cavia+porcellus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Aust+N+Z+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Electroretinograms of albino and pigmented guinea-pigs (Cavia porcellus).</a> Aust N Z J Ophthalmol. 26, Suppl 1 98-100 (1998).</li>
<li>Jobling, A. I., Wan, R., Gentle, A., Bui, B. V., McBrien, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+and+choroidal+TGF-beta+in+the+tree+shrew+model+of+myopia%3A+isoform+expression%2C+activation+and+effects+on+function%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Retinal and choroidal TGF-beta in the tree shrew model of myopia: isoform expression, activation and effects on function.</a> Exp Eye Res. 88, 458-466 (2009).</li>
<li>Robson, J. G., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+the+dark-adapted+electroretinogram%5BTitle%5D)+AND+%22Doc+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Dissecting the dark-adapted electroretinogram.</a> Doc Ophthalmol. 95, 187-215 (1998).</li>
<li>Robson, J. G., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rod-driven+a-wave+of+the+dark-adapted+mammalian+electroretinogram%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram.</a> Prog Retin Eye Res. 39, 1-22 (2014).</li>
<li>Hudnell, H. K., Boyes, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+comparability+of+rat+and+human+visual-evoked+potentials%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Biobehav+Rev%22%5BJournal%5D)">The comparability of rat and human visual-evoked potentials.</a> Neurosci Biobehav Rev. 15, 159-164 (1991).</li>
<li>Charng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conscious+wireless+electroretinogram+and+visual+evoked+potentials+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Conscious wireless electroretinogram and visual evoked potentials in rats.</a> PLoS One. 8, e74172(2013).</li>
<li>Hetzler, B. E., Berger, L. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ketamine-Induced+Modification+of+Photic+Evoked-Potentials+in+the+Superior+Colliculus+of+Hooded+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Ketamine-Induced Modification of Photic Evoked-Potentials in the Superior Colliculus of Hooded Rats.</a> Neuropharmacology. 23, 473-476 (1984).</li>
</ol>

Yazarların bu çalışmayla ilgili herhangi bir açıklaması yoktur.

ERG ve VEP sırasıyla, retina ve korteks, görsel fonksiyonun objektif önlemlerdir. Eş zamanlı kayıt avantajı tüm görsel yolunun daha kapsamlı bir görünüm elde olmasıdır. Özellikle, onların eş zamanlı değerlendirmesinden tamamlayıcı bilgiler, örneğin optik nöropati birincil serebral atrofi 19 ile birlikte var olabilir, ERG henüz belirgin VEP 18 tezahürleri örtüşen bozukluklar için (görsel yolunda yaralanma bölgesinde daha net bir sınırlandırılmasını sağlayabilir, 20 veya VEP kaybı...

elektroretinogram (ERG) ve görsel uyarılmış potansiyel (VEP) ölçümü görsel yolunun bütünlüğü yararlı kantitatif değerlendirmeler sağlar. VEP aynı ışık olayı aşağıdaki birincil görsel kortekse retinadan görme yolları gelen fonksiyonel bütünlüğünü ölçer ERG, ışık uyarımı retinanın elektrik tepkilerini ölçer. Bu yazıda yaygın olarak kullanılan bir laboratuar modellerinde sıçan kayıt ve ERG ve VEP cevapların analizi için bir protokol açıklamaktadır. ERG bir ışık yanıp sönmeye retinanın brüt elektrik tepkisini miktarının tarafından anahtar retinal hücre sınıfları bir dizi fonksiyonel bütünlüğünün bir dizin sağlar. iyonik akıların koordineli dizi ışık başlangıçlı tarafından başlatılan ve ofset, gözün dışına yerleştirilen yüzey elektrotlar kullanılarak ölçülebilir voltaj saptanabilir değişiklikler üretirler. Elde edilen dalga bir se birleşimini temsilgenlik, zamanlama ve sıklığı farklılık iyi tanımlanmış bileşenlerin Ries. Araştırmanın önemli bir vücut bu bileşenler, nispeten iyi bir çok omurgalı retinae boyunca ve parçaları birbirinden ayrılabilir olduğu korunmuş olduğunu göstermiştir. Mantıklı uyaran (flaş uyarı, arka plan, interstimulus aralık) koşulları seçme ve analiz etmek için kompozit dalga belirli özelliklerini seçerek bir retina hücrelerinin 1,2 belirli bir grubun bir ölçü dönen emin olabilirsiniz. Bu özellikler yarar ve dolayısıyla retina fonksiyonunun bir non-invaziv bir önlem olarak ERG yaygın uygulamaları altında yatan. Bu yazının (pozitif ERG ölçme ve retinada önemli hücre sınıfları, yani fotoreseptör (PIII bileşeni), bipolar hücreleri (PII bileşeni) ve retina ganglion hücrelerinin bazıları hakkında bilgi dönmek için özelliklerini analiz etmek için metodoloji üzerinde duruluyor scotopic eşik yanıt veya pSTR). 3 alan V1 optik sinir, optik sistemi, talamus (lateral genikulat nükleus, LGN) ve optik radyasyon yoluyla seri iletilecektir. Kemirgenlerde, çoğunluk - Her göz decussate 4&#39;ten optik sinir liflerinin (90% 95) ve kontralateral orta beyin innerve. ERG aksine, 5 ve böylece görsel yolu VEP dalga formunu etkileyebilecek herhangi bir yerde birlikte değişir, özel hücre sınıflar için VEP farklı bileşenlerini atfedilmesi henüz mümkün değildir. Bununla birlikte, VEP görsel performans ve görsel yolu bütünlüğü yararlı bir non-invaziv bir ölçüsüdür. VEP, ERG ile bağlantılı olarak kullanıldığında, görme sistemi (örneğin, retina / işitsel yol) daha tam bir değerlendirmesini sağlar. ERG ve VEP kayıtları başvurunun bağlı olarak, tek başına ya da kombinasyon halinde yapılabilirkatyon. Bu yazıda anlatılan metodoloji retina ve kortikal görsel uyarılmış hem gözlerden elektrofizyoloji ve anestezi farelerde her iki yarımkürede aynı anda değerlendirilmesini sağlar. Bu daha kapsamlı retina fonksiyon değişiklikleri görsel uyandırılmış kortikal fonksiyonu olabilir ki retina fonksiyonu ve yukarı etkilerini değerlendirmek için kullanışlı bir yoldur.

<table><tbody><tr><td>Timsah klipsi</td><td>jenerik marka</td><td>HM3022</td><td>VEP vidalı elektrotları kablolara bağlamak için paslanmaz çelik 26 mm klips</td></tr><tr><td>Biyoamplifikatör</td><td>ADInstruments</td><td>ML 135</td><td>ERG ve VEP sinyallerini yükseltmek için</td></tr><tr><td>Karboksimetilselüloz sodyum %1.0Allergan</td><td></td> <td>CAS 0009000-11-7</td><td>Aktif ERG elektrodunun sinyal kalitesini iyileştirmek için viskoz sıvı</td></tr><tr><td>Carprofen %</td><td>0,5Pfizer Hayvan Sağlığı Grubu</td><td>CAS 53716-49-7</td><td>Tescilli adı: Rimadyl enjekte edilebilir (50 mg / ml). Ameliyat sonrası analjezi için, normal salin içinde %0,5'e (5 mg/ml) seyreltilmiş</td></tr><tr><td>Klorheksadin %0,5</td> <td>Orion Laboratuvarları</td><td>27411, 80085</td><td>Cerrahi aletleri dezenfekte etmek için</td></tr><tr><td>Sirkülasyonlu su banyosu</td><td>Lauda-K&ouml; nigshoffen</td><td>MGW Lauda</td><td>Ameliyat ve elektrofizyolojik kayıtlar sırasında anestezi uygulanan hayvanın vücut ısısını korumak için</td></tr><tr><td>Dental amalgam</td><td>DeguDent GmbH</td><td>64020024</td><td>Elektrot-kafatası tertibatını daha sağlam hale getirmek için kaplamak için</td></tr><tr><td>Dental çapak</td><td>Storz Instruments, Bausch ve Lomb</td><td>#E0824A</td><td>VEP vidalarını implante etmek için her yarım küre üzerinde kafatasında küçük bir delik açmak için ~ 0,7 mm çapında minyatür bir matkap</td></tr><tr><td>kafası Matkap</td><td>Bosch</td><td>Dremel 300 serisi</td><td>Trepanning için otomatik matkap</td></tr><tr><td>Elektrot kurşun</td><td>Çim Telefaktörü&nbsp;</td><td>F-E2-30</td><td>Gümüş tel elektrotları amplifikatöre bağlamak için platin kablolar</td></tr><tr><td>Faraday Kafesi</td><td>özel yapım</td><td></td><td>Karanlığa adaptasyonu sürdürmek için ışık geçirmezlik sağlar. Sinyal-gürültü oranını iyileştirmek için Ganzfeld kurulumunu kapsar</td></tr><tr><td>Gazlı bez çubukları</td><td>Multigate Medical Products Pty Ltd</td><td>57-100B</td><td>Ameliyat sırasında cerrahi insizyonu ve açıkta kalan kafatası yüzeyini kurutmak için</td></tr><tr><td>Ganzfeld entegre küre</td><td>Fotometrik Çözümler Uluslararası</td><td></td><td>Özel tasarlanmış ışık stimülatörü: 36 mm çap, 13 cm açıklık boyutu</td></tr><tr><td>Velcro</td><td>VELCRO Australia Pty Ltd</td><td>VELCRO Marka Yeniden Kullanılabilir </td><td>Elektrotları ve hayvanı kayıt platformuna sabitlemek için Cırt cırtlı tutturucuyu</td>sarın</tr><tr><td>İzoflurane %99,9</td> <td>Abbott Australasia Pty Ltd</td><td>CAS 26675-46-7</td><td>Tescilli Adı: Isoflo(TM) İnhalasyon anestezisi. VEP elektrot implant cerrahisi için oksijen gazı ile karıştırılmış farmasötik dereceli inhalasyon anestezik</td></tr><tr><td>: Ketamin ve nbsp;</td><td>Troy Laboratuvarları</td><td>Ilium Ketamil</td><td>Tescilli adı: Ketamil Enjeksiyon, Marka: Ilium. Elektrofizyolojik kayıt için farmasötik dereceli anestezik</td></tr><tr><td>Luxeon LED'ler</td><td>Phillips Lighting Co.</td><td></td><td>Işık stimülasyonu için yirmi 5 W ve bir adet 1 W LED.</td></tr><tr><td>Mikromanipülatör</td><td>Harvard Aparatı</td><td>BS4 50-2625</td><td>Kayıtlar sırasında ERG aktif elektrodu tutar</td></tr><tr><td>İğne elektrodu</td><td>Çim Telefaktörü ></td><td>F-E2-30</td><td>Hem ERG hem de VEP için toprak elektrodu görevi görmek üzere kuyruğa deri altından yerleştirilir</td></tr><tr><td>Fenilefrin %2.5 minimum&nbsp;</td><td>Bausch ve Lomb</td><td>CAS 61-76-7</td><td>ERG kaydı için maksimum dilatasyon elde etmek için Tropicamid ile aşılanmıştır</td></tr><tr><td>Povidone iyot% 10</td> <td>Sanofi-Aventis</td><td>CAS 25655-41-8</td><td>Tescilli adı: Betadine, Traşlı cildi ameliyata hazırlamak için antiseptik %10, 500 ml</td></tr><tr><td>Powerlab veri toplama sistemi</td><td>ADInstruments</td><td>ML 785</td><td>LED'leri Kontrol</td></tr><tr><td>Eder Proxymetacaine %0.5Alcon</td> <td>Laboratories& nbsp;</td><td>CAS 5875-06-9</td><td>ERG kayıtları sırasında kornea anestezisi için</td></tr><tr><td>Tuzlu su çözeltisi</td><td>Gelflex</td><td></td><td>Enjekte edilemez, gümüş tel elektrotların elektrokaplanması için</td></tr><tr><td>Kapsam Yazılım</td><td>ADInstruments</td><td>sürüm 3.7.6</td><td>Powerlab sistemi aracılığıyla uyaranı aynı anda tetikler ve veri toplar</td></tr><tr><td>Gümüş (ince yuvarlak tel)</td><td>A& E metal</td><td>0,3 mm</td><td>Aktif ve inaktif ERG elektrotları ve aktif olmayan VEP elektrodu yapmak için kullanılır</td></tr><tr><td>Paslanmaz makara vidaları&nbsp;</td><td>MicroFasterners</td><td></td><td>0.7 mm şaft çapı, 3 mm uzunluğunda birincil görsel korteks üzerine implante edilecek ve aktif VEP elektrotları olarak görev</td></tr> yapacak <tr><td>Stereotaksik çerçeve</td><td>David Kopf</td><td>Model 900</td><td>Paxinos & Watson'ın 2007 sıçan beyin atlası,</td></tr><tr><td>Cerrahi bıçak</td><td>Swann-Morton Ltd.'yi</td> koordine ediyor.<td>0206</td><td>VEP elektrotlarını implante etmek için birincil görsel korteksi kaplayan cilt alanını kesmek için</td></tr><tr><td>Sütür</td><td>Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd</td><td></td><td>3-0 ipek örgülü sütür emilmez, VEP elektrot implantasyon ameliyatı sırasında cilt retraksiyonu için</td></tr><tr><td>Tobramycine göz merhemi %0.3</td> <td>Alcon Laboratories&nbsp;</td><td>CAS 32986-56-4</td><td>Tescilli adı: Tobrex. Ameliyat sonrası cilt çevresine uygulanan profilaktik antibiyotikli yara</td></tr><tr><td>Tropicamide %0.5Alcon</td> <td>Laboratories&nbsp;</td><td>CAS 1508-75-4</td><td>Tescilli adı:% 0.5 Midriasil göz damlası, ERG kaydı için midriyazis elde etmek için aşılanmış</td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Troy Laboratories</td><td>Ilium Xylazil-100</td><td>Elektrofizyolojik kayıt için farmasötik dereceli anestezik</td></tr><tr><td>Pipet ucu</td><td>Eppendorf Pty Ltd</td><td>0030 073.169</td><td>Eppendorf epTIPS 100 - 5.000 ml, ısmarlama elektrotlar için</td></tr><tr><td>Microsoft Office Excel</td><td>Microsoft</td><td>sürüm 2010</td><td>veri analizi için elektronik tablo yazılımı</td></tr><tr><td>Lethabarb Euthanazia Injection</td><td>Virbac (Avustralya) Pty Ltd</td><td>LETHA450</td><td>Hızlı ötenazi için 325 mg / ml pentobarbital sodyum</td></tr></tbody></table>

elektroretinografi eşzamanlı kayıt ve anestezi sıçanlar görsel uyarılmış potansiyeller

Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats

Elektroretinogram (ERG) ve görsel uyarılmış potansiyel (VEP), görsel yolun bütünlüğünü değerlendirmek için yaygın olarak kullanılır. ERG, retinanın ışık stimülasyonuna verdiği elektriksel tepkileri ölçerken, VEP, aynı ışık olayını takiben retinadan birincil görsel kortekse giden görsel yolların karşılık gelen fonksiyonel bütünlüğünü ölçer. ERG dalga formu, farklı retinal, nöronal ve glial hücre sınıflarından gelen yanıtları yansıtan bileşenlere ayrılabilir. VEP dalga formunun erken bileşenleri, optik sinirin ve daha yüksek kortikal merkezlerin bütünlüğünü temsil eder. Bu kayıtlar, uygulamaya bağlı olarak tek başına veya birlikte gerçekleştirilebilir. Bu yazıda açıklanan metodoloji, her iki gözden ve her iki hemisferden retinal ve kortikal görsel uyarılmış elektrofizyolojinin eş zamanlı olarak değerlendirilmesine olanak tanır. Bu, retina fonksiyonunu ve retina fonksiyonundaki değişikliklerin görsel uyarılmış kortikal fonksiyon üzerindeki yukarı akış etkilerini daha kapsamlı bir şekilde değerlendirmenin yararlı bir yoludur.

ERG bir dalga (&gt; -1,38 log cd.sm -2), b-dalgaları (&gt; - 4.99 log cd.sm -2) oran otozomal STR&#39;lerle (&lt;- 4.99 log cd.sm -2) ve VEP (&gt; - 0.52 cd.sm log -2) eş zamanlı olarak (Şekil 1 ve kaydedilmiştir 3). Çok loş yanıp söner anda, pozitif STR (pSTR) 110 msn flaş sonra yaklaşık görülen ve yaklaşık 220 ms bir negatif STR (nSTR) (Şekil 1 ve 2). Büyük bir b-dalgası olan bir ERG, kendi k...

Bu protokol, anestezi uygulanmış sıçanlarda elektroretinogram ve görsel uyarılmış potansiyellerin eş zamanlı ölçümünü tanımlar.

Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the ...

Bu prosedürün genel amacı, bir sıçanda elektroretinogram ve görsel uyarılmış potansiyeli eş zamanlı olarak ölçmektir. Bu yöntem, görme yolundaki belirli bileşenlerin yaşlanma veya hastalıklardan etkilenip etkilenmediği gibi, fissür nörobilimi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Bu tekniğin temel avantajı, retinal fonksiyonun ve bunun görsel uyarılmış kortikal fonksiyon üzerindeki yukarı akış etkilerinin kapsamlı bir şekilde değerlendirilmesine olanak tanımasıdır. Bu prosedüre başlamak için, 70 milimetre uzunluğunda bir gümüş teli keserek ve sıçan gözünü çevreleyecek şekilde sekiz milimetre çapında bir halka oluşturarak özel yapım ERG inaktif elektrotları önceden hazırlayın. Bir milimetrelik bir boru başı ucunda şekillendirerek düzgün bir daire oluşturun ve halkanın boyutunu ayarlayın.Bu durum önemlidir çünkü çok küçük bir halka eklem içi basıncı istemeden artırabilirken, çok büyük bir halka sinyallerin değişkenliğini artırabilir. Ardından, 70 milimetre uzunluğunda gümüş keserek özel yapım VEP inaktif elektrodu önceden hazırlayın. Ve sıçan kesici dişlerine takmak için sekiz milimetre çapında bir elips oluşturun.Ardından, 30 milimetre uzunluğunda gümüş tel keserek özel yapım ERG aktif elektrotlarını önceden hazırlayın ve korneada minimum abrazyonla nazikçe temas sağlamak için yaklaşık bir ila iki milimetre çapında küçük bir halka oluşturun. Sonrasında, gümüş teli açıkta kalan iç tele dolayarak elektrotları elektrot iletkenlerine güvenli bir şekilde sabitleyin. Fotovoltaik artefaktları azaltmak için açıkta kalan fazla metal kısımları maskeleme bandı ile izole edin.ERG aktif elektrotları için, elektrodun bir mikro-manipülatör ile tutulmasını kolaylaştırmak amacıyla daha kalın ve daha sert bir sarım elde etmek için daha fazla kat maskeleme bandı uygulanabilir. Her bir ERG inaktif elektroduna, kemirgen boyun kayışına stabil bir şekilde tutturulmasını sağlamak için maskeleme bandının üzerine küçük bir parça cırt bant yapıştırın. Ardından, her bir VEP aktif elektrodu için, elektrot iletkeninin iç teline bir timsah klips takın.Kayıtlardan hemen önce, sinyal iletimini iyileştirmek için gümüş tellerin açıkta kalan yüzeylerini klorür ile elektrolize edin. Bunu yapmak için katodu pilin negatif terminaline bağlayın ve diğer ucunu salin çözeltisine daldırın. Ardından, anot telindeki gümüş ucu normal salin çözeltisine daldırın ve bu elektrot telinin diğer ucunu dokuz voltluk bir pilin pozitif terminaline bağlayın.20 saniye sonra bağlantıyı kesin; elektrot telinin gümüş ucu eşit şekilde beyazla kaplanmış olmalıdır. Klorürleme işlemini tüm gümüş ERG ve VEP elektrotları için tekrarlayın. Bu prosedürde, anestezi altındaki hayvanın tıraşlanmış bölgesini %10'luk povidon iyot ile üç kez dezenfekte edin.Bir bistüri ile başın orta hattı boyunca sagital bir insizyon yapın ve kraniyal kemiği açığa çıkarmak için 20 milimetre çapında dermal doku dairesi eksize edin. Ardından, koronal ve sagital kraniyal süturları açığa çıkarmak için alttaki periostu kazıyarak ve gazlı bezle kurulayarak uzaklaştırın. Kafatasının her iki hemisferinde ikişer delik açın.Sıkı bir sabitleme sağlamak için paslanmaz çelik vidaları, önceden hazırlanmış iki deliğe bir milimetre derinliğe kadar vidalayın. Ardından, kraniyal kemiği gazlı bezle kurutarak ve deriyi iki dikişle geri çekerek cerrahi alanı dental amalgam için hazırlayın. Sonrasında, vida elektrotları yerinde sabitlemek için dental amalgamı açığa çıkan kafatasına yayın ve kayıt için vidaların yaklaşık 1.5 milimetresinin açıkta kaldığından emin olun.Ardından, retraksiyon sütürlerini çıkarın. Skotopik kayıtlar için tüm prosedürler karanlık bir odada gerçekleştirilir. Görselleştirme amacıyla, elektrot yerleşimi burada normal oda aydınlatması altında yapılmıştır.Hayvan 12 saat boyunca karanlığa adapte edilmiş ve ketamin ile ksilazin kullanılarak anestezi altına alınmıştır. Pupil dilatasyonu ve topikal anestezinin ardından, inaktif VEP elektrodu alt kesici dişlerin etrafına yerleştirilir. Daha sonra hayvan, Faraday kafesi içerisinde bulunan Ganzfeld kabının önündeki ERG platformuna yerleştirilir.Hayvanı, ense kısmına sıkıca ancak çok gergin olmayacak şekilde yerleştirilmiş bir cırt cırt bantla platforma sabitleyin. Ardından, ERG inaktif elektrotlarını göz ekvatoru etrafında skleral halkayı invaziv olmayan bir şekilde çevreleyerek konumlandırın. Limbusun yaklaşık üç metre gerisine yerleştirin.Elektrodu ense etrafındaki cırt bant şeridine tutturarak sabitleyin. İşlemi karşı göz için tekrarlayın. Şimdi, timsah klipleri kafatasına önceden implante edilmiş paslanmaz çelik vidalara takarak VEP aktif elektrotlarını sabitleyin.ERG aktif elektrot yerleşiminden önce, sinyal kalitesini artırmak için elektrodun üzerine küçük bir damla %1 karboksimetilselüloz sodyum yerleştirin. Özel olarak yapılmış stereotaksik kola bağlı bir mikro manipülatör kullanarak, ERG aktif elektrotlarını merkezi kornea yüzeyine hafifçe değecek şekilde konumlandırın. Fazla sıvıyı silerek, karboksimetilselüloz sodyumun sklera ile değil, yalnızca kornea ile temas ettiğinden emin olun.Ardından, paslanmaz çelik taşlanmış iğne elektrodun iki ila beş milimetresini kuyruğa subkütan olarak yerleştirin. Platformu Ganzfeld kasesine yaklaştırın ve her iki retinanın eşit şekilde aydınlatılmasını sağlamak için hayvanın gözlerinin kasenin açıklığıyla hizalandığından emin olun. Sonrasında, dış gürültüyü azaltmak için Faraday kafesini kapatın.Yukarıdaki protokol kullanılarak, en sönük flaş en altta ve en parlak flaş en üstte olacak şekilde, bir dizi uyarana yanıt olarak bir ERG dalga formu yığını kaydedilebilir. Çok sönük ışık seviyelerinde, skotopik eşik yanıtları kaydedilebilir. Uyaran parlaklığı arttıkça, dalga formlarına B dalgası hakim olur ve ardından en parlak uyaranlarda negatif yönlü A dalgası ortaya çıkar.Çubuk fotoreseptör fonksiyonu, A dalgasını modellemek için bir P3 kullanılarak analiz edilebilir. Bu şekil, P2 amplitüdünün artan stimülasyon enerjisiyle birlikte büyüdüğünü göstermektedir. Çubuk bipolar hücre fonksiyonu, çubuk P2'nin yoğunluk yanıt teorileri bir naka rushtin fonksiyonu ile modellenerek analiz edilebilir.Retinal ganglion hücresi fonksiyonu, düşük lüminesans enerjilerinde analiz edilir ve pSTR pik genliği ile zamanlamasıyla nicelleştirilir. Konu bipolar hücre fonksiyonu, eşleştirilmiş flaş paradigması ile uyarılır ve koni P2 pik genliği ile zamanlamasıyla nicelleştirilir. VEP'in genlik analizi, bu yanıtların zamanlamasını veren pik-çukur ve çukur-pik genlikleri olarak alınır.VEP dalga formlarının genliği, uyaran enerjisinin artmasıyla birlikte artar. Bu teknikte uzmanlaşıldığında, elektrotların hazırlanması, yerleştirilmesi ve adaptasyon süresi hariç tutulduğunda, işlem yaklaşık 30 ila 45 dakika içinde tamamlanabilir. Bu prosedür uygulanırken, elektrotların ne kadar doğru yerleştirildiğine dikkat etmek ve adaptasyon için yeterli süre tanımak özellikle önemlidir.Bu prosedürün ardından, belirli soruları yanıtlamak için hastalık modifikasyonu veya terapiler gibi diğer prosedürler gerçekleştirilebilir. Bu videoyu izledikten sonra, elektrotların nasıl hazırlanacağı ve yerleştirileceğinin yanı sıra ERG ve VEP dalga formlarının nasıl kaydedileceği ve analiz edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

simultaneous-recording-electroretinography-visual-evoked-potentials

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video, retina sağlığını ve görsel yol bütünlüğünü incelemek için bir sıçan modelinin hazırlanışını göstermektedir. Görsel uyarılmış potansiyel ve elektroretinografi referansı ve aktif elektrotlar sıçana bağlanır, ardından eşit retinal aydınlatma için platformu Ganzfeld çanağının önünde sıçan ile hizalar ve dış paraziti önlemek için Faraday kafesi kapatılır.

Bir Elektrofizyoloji Kurulumu Kullanarak Görsel Yol Bütünlüğünü Değerlendirmek için Bir Sıçan Modeli Hazırlama

Bu video, ışık uyaranlarına yanıt olarak beynin görsel korteksinden gelen elektrik sinyallerini kaydeden önceden implante edilmiş kafatası elektrotları ile karanlığa uyarlanmış, anestezi uygulanmış bir sıçanda görsel uyarılmış potansiyelleri veya VEP'leri ölçme sürecini göstermektedir.

Bir Sıçan Modelinde Kafatası Elektrotları aracılığıyla Görsel Uyarılmış Potansiyellerin Kaydedilmesi

Bu video, anestezi uygulanmış bir sıçanda birlikte lokalize elektroensefalografi (EEG) ve lokal alan potansiyellerinin (LFP'ler) eşzamanlı kayıtları için prosedürü göstermektedir. İşlem, sıçanın hazırlanmasını ve uyarıcı elektrotların bıyık pedlerine takılmasını içerir. Yüzey EEG ölçümleri için farenin kafatasına bir EEG örümcek elektrodu yerleştirilir. Aynı zamanda, çok kanallı bir mikroelektrot, lokalize bir beyin bölgesinden nöral aktiviteyi kaydetmek için kafatasındaki bir çapak deliğinden...

Anestezi Uygulanmış Bir Sıçanda Eş Zamanlı Elektroensefalografik ve Lokal Alan Potansiyeli Kayıtları

Bu video, bilinçli bir sıçanda elektroretinogram (ERG) ve görsel uyarılmış potansiyelin (VEP) nasıl kaydedileceğini gösterir. Cerrahi olarak implante edilen elektrotlara sahip sıçan önce karanlığa adapte edilir. Dilatasyon damlaları uygulandıktan sonra, hayvan bir kısıtlayıcıya yerleştirilir ve bir Ganzfeld kasesine yerleştirilir. ERG ve VEP sinyalleri daha sonra kaydedilir.

Bir Sıçanda Elektroretinogram ve Görsel Uyarılmış Potansiyelin Kaydedilmesi

Bu video, karanlığa uyarlanmış, anestezi uygulanmış bir fare retina pigment epiteli (RPE) üzerinde doğrudan bağlı bir elektroretinogramın (DC-ERG) kaydını göstermektedir. Dilatasyon damlaları uygulandıktan sonra, hayvan bir kayıt düzeneğine yerleştirilir ve bir tuz tamponu ile doldurulmuş kılcal elektrot kornea üzerine yerleştirilir. Referans değer oluşturulduktan sonra DC-ERG kaydedilir.

Bir farede retina pigment epitelinin doğrudan bağlı elektroretinogram kaydı

Elektroretinogram (ERG), ışığa tepki olarak retina tarafından üretilen bir elektrik potansiyelidir. Bu yazıda, karanlığa adapte olmuş sıçanlarda retina fonksiyonunu değerlendirmek için ERG'nin nasıl kullanılacağı ve bu durumda uzaktan iskemik ön koşullandırma gibi nöroprotektif bir girişimin değerlendirilmesinde nasıl kullanılabileceği anlatılmaktadır.

Kemirgen Retina ve Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullamanın Koruyucu Etkileri Fonksiyonu Değerlendirmek Üzere elektroretinogram kullanma

Optik sinirde lisolesitin mikroenjeksiyonu kullanılarak fokal demiyelinizasyon indüklenir. Görsel uyarılmış potansiyeller, in vivo olarak görsel yol boyunca sinyal iletimini incelemek için görsel korteks üzerine implante edilen kafatası elektrotları aracılığıyla kaydedilir. Bu protokolde elektrot implantasyonu ve optik sinir mikroenjeksiyonunun altında yatan cerrahi prosedürler detaylandırılır.

Deneysel Optik Sinir demyelinizasyon bir Rat Modelinde Görsel Uyarılmış Potansiyel Kayıt

Biz kayıtları anestezi karıştırıcıların olmadan yapılan insan durumuna daha benzerdir gözün (Elektroretinogram) ve bilinçli sıçanlarda beyin (görsel uyarılmış potansiyel), görsel elektrofizyolojik sinyaller ölçmek için cerrahi implantasyon ve Kayıt işlemleri göstermektedir.

Bilinçli Sıçanlarda implantasyon ve Kablosuz Elektroretinogram Recording ve Görsel Uyarılmış Potansiyel

Bu iletişim kuralı ortak yerelleştirilmiş elektroansefalografi (EEG) ve multi-Laminer yerel alan bir imzalat köstebeğiyle potansiyel eşzamanlı kayıt için basit bir yöntem açıklanır. Bir elektrot yerleştirilmesi için kafatası delinen burr deliği EEG sinyal önemsiz bozulma üretmek için gösterilir.

Co yerelleştirilmiş elektroansefalografi ve yerel alan potansiyel kemirgen eşzamanlı kayıt

Kalıtsal retina hastalıklarının tanı ve yönetiminde geçerli tam alan elektroretinogram yanıtları elde etmek için uluslararası standartlara bağlı kalmak ve retinal koyu adaptasyonu sürdürmek çok önemlidir. Ameliyathane ortamında sedasyon veya genel anestezi altında olan bebekler ve çocuklar için tam alan elektroretinogramı elde etmek için taşınabilir bir karanlık oda kullanılarak pratik bir protokol sağlanmaktadır.

Optimal Karanlık Adaptasyon ve Uluslararası Standartlara Ulaşmak İçin Anestezi Altındaki Bebekler ve Çocuklar Için Elektroretinogram Kaydı

Bu protokolün amacı, subakut oküler hipertansiyonu indükleyen limbal vasküler pleksusun 360° termik koterizasyonuna dayanan yeni bir glokomatöz nörodejenerasyon modelini karakterize etmektir.

Kemirgenlerde Cerrahi Olarak İndüklenen Glokom için Limbal Vasküler Pleksusun Tam Daire Koterizasyonu

Öğrenin anestezili sıçanlarda elektroretinografi ve görsel uyarılmış potansiyellerin eşzamanlı kayıt yöntemini. Bu teknik retina ve korteks fonksiyonlarını kapsamlı şekilde değerlendirerek görsel yolakların yaşlanma ve hastalıklardan etkilenmesini araştırır.

Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller

Daha fazla video keşfet