Name: Blastulae Gelişmekte Cerrahi Fusion tarafından Parabiyotik balığı Embriyolar Üretimi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 38 s
Description: Öğrenin parabiyotik Danio rerio embriyoları üretme yöntemini, blastula cerrahi füzyonu kullanarak hücre otonomisi ve gen fonksiyonlarını araştırmak için. Bu protokol gelişim biyolojisi ve nörobilim çalışmalarında yüksek başarı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Julie R. Perlin'e el yazması hakkındaki yararlı yorumları için teşekkür ederiz. D.I.S., Amerikan Hematoloji Derneği, Cooley's Anemi Vakfı ve NIH (K01DK085217 ve R03DK100672) tarafından sağlanan hibelerle desteklenmektedir. E.J.H., Helen Hay Whitney Vakfı'nın Howard Hughes Tıp Enstitüsü Üyesidir. BL, Howard Hughes Tıp Enstitüsü Tıbbi Araştırma Görevlisidir. B.W.B., Kanser Araştırma Enstitüsü'nden bir Irvington Bursu ve bir Genç Araştırmacı tarafından desteklenmektedir ASCO Conquer Cancer Foundation'dan ödül. L.I.Z., NIH (R01CA103846, P01HL032262 ve R01HL04880), Taub MDS Araştırma Vakfı, Harvard Kök Hücre Enstitüsü'nden alınan hibelerle desteklenmektedir ve Howard Hughes Tıp Enstitüsü'nün bir araştırmacısıdır.

Bu protokol, Boston Çocuk Hastanesi Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı. Bu protokol daha önce yayınlanan bir yöntem 15 ile modifiye edilir. Reaktiflerin 1. Hazırlık (Peşin gün veya hafta) <ol><li> % 1.5 agaroz kaplı yemekler hazırlayın. Bir Erlenmeyer şişede 100 mi balığı E3 orta 1.5 g agarozun ekleyin. Isı, agaroz erimesi ve daha sonra yaklaşık 5 ml 100 mm çapında x 20 mm derinlik petri içine dökün. Not: Bu embriyoların dechorionation için kullanılan (3.1 Adım) ve Parabiyotik cerrahi için (3.3 Adım) vardır. Birkaç hafta boyunca 4 ° C &#39;de agaroz kaplanmış yemekler saklayın; buzdolabı üzerinden onları almak ve sıcak Parabiyotik ameliyat günü sabahı RT için. </li><li> % 4 metil selüloz hazırlayın. Bir karıştırma çubuğu olan bir Erlenmeyer şişesi içinde E3, 100 ml metil selüloz tozu, 4 g çözündürülür. en düşük hıza ayarlanmış 4 ° C&#39;de bir şişeyi çalkalama levhasının üzerine, koyun ve karıştırın izinen fazla 2 gün ısıtıldı. <ol><li> Aralıklı metil selüloz beyaz öbekler kırmak için bir spatula kullanın. metil selüloz kristaller tam bu konsantrasyonda çözünmez. Çözelti berrak hale gelir ve hiçbir beyaz topaklar, tablet, uzun süreli depolama için -20 ° C&#39;de 1.5 mi mikrofüj tüplerine çözeltisi ve dondurma kalan homojen görünür. Not: metil selüloz düşük konsantrasyonlar kullanılabilir; Bununla birlikte, bu daha yüksek bir yüzdesi, daha viskoz metil selüloz, en iyi sonuçları vermiştir. </li></ol></li><li> Yüksek Kalsiyum Ringer (HCR) çözeltisi hazırlayın. (5 M NaCl, 8 ml (116 mM son), 3M KCI 400 ul (2.9 mM nihai), 1 M HEPES 5M CaCl2 (10 son mM) ve 2 ml 800 ul karışımı, 5 HCR çözeltisi 400 ml yapmak için E3 medya 390 ml mM nihai). Not: Bir kaç hafta boyunca 4 ° C&#39;de saklayın HCR çözümü; Parabiyotik Ameliyat günü sabahı RT sıcak. </li><li> transfer için 6 modifiye Pasteur pipetler - 5 hazırlayınBlastula çiftleri halka. Kısaca Bunsen beki üzerinde pipet ucunu ısıtın. hala sıcakken sonra, geniş bir forseps kullanılarak, yaklaşık 45 ° C&#39;ye kadar pipet ucu bükümü. <ol><li> , Embriyoların zarar yaklaşık 3 saniye alev kısaca pipet ucu tutabilir keskin kenarlar olmadığından emin olmak için. Bu pipet sonu / cila pürüzsüz olacaktır. Bu modifiye edilmiş cam Pasteur pipeti aşağıdaki Aşama 3.5 10 ml pipet pompası (Şekil 1) ile bağlantılı olarak kullanılır. </li></ol></li><li> blastula çiftlerinin cerrahi dikiş için cam iğne araçları hazırlayın. zebra balığı embriyolarının mikroenjeksiyon için yapıldığı gibi 3 cam iğneler - 2 çekin. Bir odun ya da plastik saplı alay iğne (Şekil 1A) sonuna kadar her bir cam iğne düzeltmek için laboratuvar filmi kullanın. 30 mikron - forseps kullanarak, yaklaşık 20 çapında iğnenin ucunu kesiyorum. Bu adımı (Şekil 1B) yönlendirmek için bir sahne mikrometre kullanın. Not: Ne boyutunuEdle ucu önemlidir. ucu çok büyükse o tam olarak kontrol etmek zorlaşır ve aşırı hasara neden olabilir. ucu çok küçükse yeterince embriyo yara çok zordur. </li></ol> 2. (Gün 0 Günü -1) Embriyolar Zebra balığı ve Toplama Damızlık Çiftler ayarlama <ol><li> Yetişkin zebrafish üreyen ayarlayın. parabiyoz ameliyatı yapılacak olan gece önce balık ayarlayın. erkek ve kadın ayrı bölücüler kullanın. İstenilen embriyolar elde her satırın birkaç çift kurulacak oran artırmak için. çiftlerinin% 50 doğacaktır - Biz genellikle 20 olduğunu bulmak. </li><li> Ertesi sabah, bölücüler çekin ve çiftleşme izin verir. Bir ince gözenekli çay süzgeci kullanarak herhangi bir embriyolar toplayın, sonra E3 embriyo orta 18 içeren Petri aktarabilirsiniz. </li><li> Istenildiği gibi embriyolar mikro enjekte (örneğin, 25 ug plasmid DNA, ya da 1 ile 200 ug mRNA ile - 6 ng morfolino) toplama 1 saat içerisinde. Onları izin256 hücre aşamasına kadar büyür. DNA ekspresyon yapısı, bir ısı şoku promotör kontrolü altına yerleştirildiği (örneğin, HSP70, Şekil 4B), (daha sonraki bir aşamada, 37 ° C&#39;de parabionts şok ısı ile gen ifadesinin zamanlaması kontrol örn., 36 hpf ). Not: bir flüoresan transgen bir alternatif, floresan dekstran (2 mg / ml&#39;de, örneğin, dekstran, çağlayan mavisi), DNA, RNA, veya morfolino enjeksiyon karışımına ilave edilebilir zamanda. dekstran boya normal gelişim engel olmaz ve enjekte embriyo Parabiyotik füzyon sonra uygun floresan ışığı altında tespit edilmesi için izin verecektir. Seçenek olarak ise, bir pigmentsiz suş ile pigmentli bir soyunun parabiyoz (örneğin, AB) (örneğin, Casper) sonraki aşamalarda enjekte embriyo tanımlamak için kullanılabilir. </li><li> periyodik olarak kendi gelişimini izlemek için 28.5 ° C.Use bir Stereoskop embriyolar inkübe 256 hücre dev yakın onlarelopmental aşama (yaklaşık 2,5 hpf). Not:. Gerekirse morfolino enjekte embriyolar yer alırken, Parabiyotik ortakları (örneğin, morfolino enjekte embriyolar genellikle un enjekte muadillerine göre daha yavaş geliştirmek RT un enjekte embriyolar Shifting arasındaki sahne eşleştirme sağlamak için farklı sıcaklıklara embriyolar vardiya 28,5 ° C&#39;de bir gelişim birkaç saat sonra) hizalama aşamalarına neden olur. </li></ol> Blastulae Gelişmekte Cerrahi Fusion tarafından Parabiyotik Zebra balığı Embriyolar 3. Nesil <ol><li> Embriyolar 256 hücre aşamasına (yaklaşık 2.5 HPF) yaklaştıkça, ayrı agaroz kaplı tabaklar (morfolino örneğin, bir çanak her bir genetik arka plan (yani, genetik mutant transgenik kuşaklar ve / veya genetik manipülasyon) için embriyo transferine enjekte edilen embriyoların ve kontrol embriyoları için ikinci bir tabak). Alternatif, çizilmeye ücretsiz cam beher veya cam Petri kapları temizlemek için embriyolar transfer. Not: embriyolar plastik sopa ve chorions dışarı kez zarar olarak kaplanmamış plastik yemekleri kullanmaktan kaçının. </li><li> (- 10 ml, yaklaşık 7) yeterli sıvı embriyoların kapsayacak şekilde kalana kadar E3 medya süzün. 50 mg / Streptomyces griseus (proteazlar) hücre dışı sıvıdan izole proteaz mi karışımına 200 ul ekle. nazikçe embriyoların her birkaç dakikada bir girdap. <ol><li> Embriyoların% 50 genellikle 5 sürer kendi chorions, dışarı gelmiş olduğunda - taze E3 embriyo orta - (20 ml yaklaşık 15) 10 dk, cömert bir hacim ile onları üç kez yıkayın. <ol><li> onları hafifçe giderilmesinde sonra yavaşça modifiye cam Pasteur pipeti içine hazırlanması ve kendi chorions kalan tüm embriyolar Dechorionate. Embriyolar dechorionated ve yıkanmış edildikten sonra, HCR çözümü ile E3 ortamı değiştirin. proteazlar alternatif olarak, el ile ince forseps kullanılarak chorions çıkarın. 100 dechor - 60 var hedefliyoruzHer deneysel koşul için uygun ionated embriyolar. Not: Bu sonuçta kullanılacak kat daha fazla birkaç, ancak birçok embriyolar ele ya da parabiyoz için ameliyat sırasında hasar olması muhtemeldir. Embriyolar dechorionated sonra, onları batık tutmak ve yüzey gerilimi onları imha edilmesine neden olacak gibi onları su yüzeyine dokunmamaya izin vermeyin. proteazlar yüksek doz kullanılarak embriyolar er kendi chorions çıkıp bir daha senkronize bir şekilde gelmesini sağlar unutmayın. proteazlar daha düşük bir dozda kullanıldığında, embriyolar chorions çıkmaya daha uzun sürer ve proteazlar uzun süre maruz kalma sonucu zarar gördüğü embriyoların bir kısmına neden olabilecek daha az uyumlu bir şekilde, çok yok. </li></ol></li></ol></li><li> Embriyoların hasar ya da yumurta sarısı yırtılacaktır, çözünmemiş kristallerin pelet, 10 dakika boyunca maksimum hızda bir masaüstü santrifüj (yukarıdaki Aşama 1.2&#39;de) metilselüloz ve santrifüj çözülmes. <ol><li> Santrifüj işleminden sonra, berrak üst kısmını (hacminin yaklaşık% 75) kullanır. Aktarım 1 -% 1.5 agaroz kaplı Petri kabı içine metil selüloz 1.5 cm çaplı bir düşer. tüpün dibinden pelet kristaller herhangi hazırlanması önlemek için özen gösterin. </li><li> çanak alt tarafında her damla konumunu önceden belirlemek için işaretleyici kullanın. 100 mm çaplı petri başına metil selüloz - (3 alikotları &#39;değerinde 2) 15 damla - 12 yerleştirin. Deneme başına gerektiği kadar tabak hazırlayın. Not: Tek Blastula çiftinin füzyon için her damla kullanın. mark medya katma de hangi nokta damla neredeyse görünmez hale kez her damla yerini tayin edecektir. </li></ol></li><li> Adım 3.3 yukarıda hazırlanan agaroz kaplı çanak başına antibiyotik takviye HCR çözümün bir 40 ml kısım hazırlayın. HCR her biri 40 mi kana 0.5 ug 50 U / ml, 50 U / ml ampisilin ve kanamisin penisilin-streptomisin ilave/ Ml olmuştur. <ol><li> Hazır Blastula füzyonlarının gerçekleştirmek için zaman, dikkatli bir şekilde, antibiyotik ile takviye HCR çözeltisi 40 ml metil selüloz damlacıkları içeren tabakların her birine doldurun. HCR çözeltisi çok hızlı bir şekilde ilave edilir, bu damlacıklar bozabilir. </li></ol></li><li> 10 ml&#39;lik pipet pompasına (yukarıdaki adım 1.4&#39;de yapılan) modifiye cam Pasteur pipeti takın. Bir Stereoskop altında her arka plan (örneğin, bir morfolino enjekte embriyo ve bir vahşi tip embriyo) dan bir dechorionated embriyo toplamak. <ol><li> iki embriyo dağıtım önce, sonra yavaşça, metil selüloz damla ortasında küçük bir depresyon yapmak için Pasteur pipet kullanın depresyon içine hem embriyolar mevduat. Not: yol açabilir pipet üst veya alt kısmında sıvı yüzeyi ile kendi yapım teması (önleyecek şekilde aktarma işlemi sırasında, hafifçe yukarı embriyolar Pasteur pipeti viraj içine yerleşmek, böylece Pasteur pipeti çevirin thei içinr rüptürü). </li></ol></li><li> , Hayvan kutupları ile doğrudan olarak hemen metil selüloz embriyolar saklandıktan sonra, dikkatli bir şekilde metil selüloz olan embriyolar yeniden konumlandırmak için son (Şekil 1A) bir jel yükleme pipet ucu ile odun ya da plastik saplı alay iğne kullanmak şekilde birbirlerine dokunmadan. <ol><li> doğrudan onlara dokunmadan onları yeniden konumlandırmak için embriyolar metil selüloz yakın yoluyla nazik süpürme hareketleri yararlanın. metil selüloz etraflarında yerleşmek böylece embriyolar 5 dakika bekletin. Bu süre zarfında, başka damla içine sonraki çifti yükleyin. Not: embriyoların doğrudan temas etmeyin ve kolayca rüptüre olur yumurta sarısının, herhangi bir bölümünü dokunmamaya özel özen gösterin. </li></ol></li><li> Cam iğne aracını kullanarak, dikkatli temas onların noktada her bir embriyo yara. yumuşak dikiş hareketi ile, ilk embriyo hücreleri tekrar ikinci embriyo içine çekilir ve edilebilir.Bu hareketin sonunda, 2 iğneyi yerinde tutun - 3 saniye sonra çok yavaş uzak çizin. Not: yaklaşık 2 dönemi vardır - iki dokular daha yapışkan ve birbirlerine takmak için daha muhtemel gibi görünüyor nerede embriyolar yaralı sonra 3 sn. Böylece, kısaca yaralama sonra iğneyi yerinde tutarak hemen yaralama sonra zaman ilk dönem için temas halinde her embriyo yaralı dokuların tutmaya yardımcı olduğuna inanıyorum. </li><li> Oda sıcaklığında 15 dakika - bu embriyolar, 10 bekletin. Bu arada, metil selüloz diğer damla yeni çiftleri dikiş devam ediyor. 10 Sonra - 15 dakika, ilk çifti ekli (Şekil 2A) kalmıştır olup olmadığını değerlendirmek. Not: embriyolar daha bağlıysa, sürece embriyolar% 30 epiboly sahne etrafında daha genç olduğu gibi için dikiş işlemini tekrarlayın. üç denemeden kadar birlikte embriyoların dikiş için genellikle bu izin verir. Embriyolar bir eki ama c korumuştur görünüyorsaonnection değil önemli olan, bunu güçlendirmek için bağlantı kenarında ek dikiş gerçekleştirin. sallayarak veya Parabiyotik cerrahi ve inkübasyon dönemlerinde yemekleri hareketli kaçının. Not: erken gelişim aşamasında ve algılanan kırılganlık rağmen, embriyoların hücre kütleleri manipülasyon önemli bir miktar (yani, yaralama ve dikiş) tahammül ve hala normal gelişebilir. yumurta sarısı, ancak embriyo öldürme, sadece ufak bir dokunuş ile bozulabilir. cam iğne ile iki blastulae dikerken, her embriyonun hücre kütlesi ve yumurta sarısı arasında bir arayüz ile temas kurmaya yok. </li><li> Aynı yemeğin ve medya (ortam değişmez) 28.5 ° C embriyolar O / N inkübe edin. Ertesi sabah tarafından, embriyolar çoğu çözülmüş metil selüloz damlacıklarının dışarı taşımış olacaktır. başarıyla erimiş değil tüm embriyolar çıkarın. medyayı Durusu ve taze bir 25 ml E3 ile değiştirin. Not: ile çalışma durumundaPigmentli soyu, pigmentasyon engellemek için% 0.003 nihai konsantrasyon 500 ul% 0.15 (50x) feniltiyoüre (PTU) ekleyin. Embriyolar pigmentasyon bastırılmasını sağlamak için PTU sürekli kalması gerekir. </li></ol> 4. Mikroskop Kurulum, Görüntü Alma, İşleme ve Analizi <ol><li> % 0.8 düşük erime noktası (LMP) agaroz hazırlayın: tamamen çözünene dek 0.8 g agarozun 100 mi E3 LMP ve ısıtılır. sıcakken, kısım agaroz 37 ° C bir ısıtma bloğu içinde 1.5 mi mikrofüj tüplerine LMP 1 mi. LMP agaroz, 37 ° C&#39;de, erimiş kalır. agaroz, 37 ° C &#39;de, 4 mg / ml (25x), pH LMP her biri 1 mi kısım 7.0 tricaine 40 ul ekle. Not: Bir pigmentli suşu ile çalışan, her 1ml kana% 0.15 (50x) PTU 20 ul ekleyin. <ol><li> 4 ° C&#39;de mühürlü 50 ml tüpler birkaç ay için kalan LMP agaroz saklayın. </li></ol></li><li> Parabiyotik embriyolar anestezisi 4 mg / ml 1 ml (25x), pH 7.0 tricaine eklenerek yansımasıE3 25 ml embriyo zaten olduğu. </li><li> Embriyolar ortada havuz olacak şekilde hafifçe çanak girdap. Sonra, geniş uçlu plastik transfer pipet kullanarak mümkün olduğunca az sıvı embriyoların hazırlar. dik pipet çevirin ve pipet çok dibe şekilde hafifçe embriyolar sıçrama. <ol><li> Pipet altındaki embriyolar ile hafifçe agaroz yüzeyine pipet dokunarak LMP agaroz 1 mi tümböleni aktarın. agaroz sulandırmak bu kadar fazla sıvıyı transfer kaçının. </li></ol></li><li> pipet fazla sıvıyı attıktan sonra, yavaşça, 6- ardından, agaroz içinde embriyo karıştırın cam alt kuyu (No 1.5 lamel) için agaroz ve embriyo tüm aktarmak için pipet kullanmak için pipet kullanın iyi plaka. Not: Görüntüleme plakasına embriyolar aktardıktan sonra pipet atmak için emin olun. Kalıntı agaroz pipet içine koyacaktır, rendering bir sonraki aşama için etkisiz. Aksine, yeni bir pipet her zaman kullanın. </li><li> Bir Stereoskop altında, aşağı cam kapak doğru embriyoları yerleştirmek için ahşap saplı alay iğnenin ucunda sabit bir jel yükleme pipet kullanın (onlar mikroskop objektif çalışma mesafesi sağlamak için) ve istenilen yönde görüntüleme için. Not: Agaroz tamamen belirledi kadar sürekli yerleştirin. çiftin hangi embriyonun göre Parabiyotik embriyolar monte etmeye özen görüntülü olmaktır. Yapışık embriyoların rastgele yönünü göz önüne alındığında, bir çiftleri için her iki embriyolar görüntü zor olabilir. Bu senaryoda, bir forseps ve geniş uçlu plastik transfer pipet kullanarak agaroz embriyolar kurtarmak ve daha sonra farklı bir bakış açısıyla görüntüleme için yeniden bağlayın. </li><li> tricaine (ve PTU gerekirse) ile takviye edilmiş E3 3 ml - agaroz donduktan sonra, 2 ile kaplayın. </li><li> , Las ters geniş bir alan epi-floresan kullanarak görüntü embriyolarkonfokal er-tarayarak veya disk konfokal mikroskop iplik. İstenen görüntüleme için en uygun hedefi seçin. görünümünde bir bütün embriyo alanı için, bir 4x objektif kullanımı. Görüntü, bir 20x objektif olarak, belirli bir doku 16, 19 daha yüksek bir büyütme seçin. Not: dik bir mikroskop kullanıyorsanız, bir cam kapak kayma (yukarıda benzer) LMP agaroz monte edilir. Aynı E3-tricaine-PTU 16, 19 ile doldurulmuş vakum gres bir halka sahip bir cam mikroskop lamı üzerine cam lamel ters çevirin. </li><li> Süreç böyle NIH Image J / FIJI 16, 19 olarak ücretsiz görüntü analiz yazılımı paketleri kullanarak görüntüleri satın aldı. Not: hücre sayıları Sayısı ve hücre göçü ve hücre bölünmesi segmentasyon kullanarak ve algoritmaları 16, 19 izleme olarak dinamiklerini ölçmek. </li></ol>

<ol><li>Zon, L. I., Orkin, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoiesis%3A+An+evolving+paradigm+for+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hematopoiesis: An evolving paradigm for stem cell biology.</a> Cell. 132 (4), 631-644 (2008).</li>
<li>Dzierzak, E., Speck, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+lineage+and+legacy%3A+the+development+of+mammalian+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Of lineage and legacy: the development of mammalian hematopoietic stem cells.</a> Nat Immunol. 9 (2), 129-136 (2008).</li>
<li>Li, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epoxyeicosatrienoic+acids+enhance+embryonic+haematopoiesis+and+adult+marrow+engraftment%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Epoxyeicosatrienoic acids enhance embryonic haematopoiesis and adult marrow engraftment.</a> Nature. 523 (7561), 468-471 (2015).</li>
<li>Tam, P. P., Rossant, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+embryonic+chimeras%3A+tools+for+studying+mammalian+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mouse embryonic chimeras: tools for studying mammalian development.</a> Development. 130 (25), 6155-6163 (2003).</li>
<li>Tanaka, M., Gertsenstein, M., Rossant, J., Nagy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mash2+acts+cell+autonomously+in+mouse+spongiotrophoblast+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mash2 acts cell autonomously in mouse spongiotrophoblast development.</a> Dev. Biol. 190 (1), 55-65 (1997).</li>
<li>Morin-Kensicki, E. M., Faust, C., LaMantia, C., Magnuson, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+and+tissue+requirements+for+the+gene+eed+during+mouse+gastrulation+and+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Cell and tissue requirements for the gene eed during mouse gastrulation and organogenesis.</a> Genesis. 31 (4), 142-146 (2001).</li>
<li>Ho, R. K., Kane, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-autonomous+action+of+zebrafish+spt-1+mutation+in+specific+mesodermal+precursors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cell-autonomous action of zebrafish spt-1 mutation in specific mesodermal precursors.</a> Nature. 348 (6303), 728-730 (1999).</li>
<li>Parker, L., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-autonomous+and+non-autonomous+requirements+for+the+zebrafish+gene+cloche+in+hematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cell-autonomous and non-autonomous requirements for the zebrafish gene cloche in hematopoiesis.</a> Development. 126 (12), 2643-2651 (1999).</li>
<li>Liao, E. C., Trede, N. S., Ransom, D., Zapata, A., Kieran, M., Zon, L. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-cell+autonomous+requirement+for+the+bloodless+gene+in+primitive+hematopoiesis+of+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Non-cell autonomous requirement for the bloodless gene in primitive hematopoiesis of zebrafish.</a> Development. 3 (3), 649-659 (2002).</li>
<li>Kamran, P., Sereti, K. I., Zhao, P., Ali, S. R., Weissman, I. L., Ardehali, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parabiosis+in+mice%3A+a+detailed+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Parabiosis in mice: a detailed protocol.</a> J Vis Exp. (80), (2013).</li>
<li>Wagers, A. J., Sherwood, R. I., Christensen, J. L., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Little+evidence+for+developmental+plasticity+of+adult+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Little evidence for developmental plasticity of adult hematopoietic stem cells.</a> Science. 297 (5590), 2256-2259 (2002).</li>
<li>Hervey, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+lesions+in+the+hypothalamus+in+parabiotic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The effects of lesions in the hypothalamus in parabiotic rats.</a> J. Physiol. 145 (2), 336-352 (1959).</li>
<li>Goldman, D. C., Bailey, A. S., Pfaffle, D. L., Al Masri, A., Christian, J. L., Fleming, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BMP4+regulates+the+hematopoietic+stem+cell+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">BMP4 regulates the hematopoietic stem cell niche.</a> Blood. 114 (20), 4393-4401 (2009).</li>
<li>Dieterlen-Lièvre, F., Martin, C., Beaupain, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quail-chick+chimaeras+and+parabionts%3A+several+new+models+to+investigate+early+developmental+events+in+the+haemopoietic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Biol+%28Praha%29%22%5BJournal%5D)">Quail-chick chimaeras and parabionts: several new models to investigate early developmental events in the haemopoietic system.</a> Folia Biol (Praha). 25 (5), 293-295 (1979).</li>
<li>Demy, D. L., Ranta, Z., Giorgi, J. M., Gonzalez, M., Herbomel, P., Kissa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+parabiotic+zebrafish+embryos+for+cell+migration+and+homing+studies%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Generating parabiotic zebrafish embryos for cell migration and homing studies).</a> Nat. Methods. 10 (3), 256-258 (2013).</li>
<li>Anderson, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cells+develop+the+absence+of+endothelial+cadherin+5+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cells develop the absence of endothelial cadherin 5 expression.</a> Blood. 126 (26), 2811-2820 (2015).</li>
<li>Murayama, E., Sarris, M., Redd, M., Le Guyader, D., Vivier, C., Horsley, W., Trede, N., Herbomel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NACA+deficiency+reveals+the+crucial+role+of+somite-derived+stromal+cells+in+haematopoietic+niche+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">NACA deficiency reveals the crucial role of somite-derived stromal cells in haematopoietic niche formation.</a> Nat Commun. 28 (6), 8375(2015).</li>
<li>Shah, D. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+Atpif1+regulates+haem+synthesis+in+developing+erythroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial Atpif1 regulates haem synthesis in developing erythroblasts.</a> Nature. 491 (7425), 608-612 (2012).</li>
<li>Tamplin, O. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+arrival+triggers+dynamic+remodeling+of+the+perivascular+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell arrival triggers dynamic remodeling of the perivascular niche.</a> Cell. 160 (1-2), 241-252 (2015).</li>
<li>Adám, A., Bártfai, R., Lele, Z., Krone, P. H., Orbán, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heat-inducible+expression+of+a+reporter+gene+detected+by+transient+assay+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Heat-inducible expression of a reporter gene detected by transient assay in zebrafish.</a> Exp. Cell Res. 256 (1), 282-290 (2000).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Parabiyotik füzyon yetişkin fare modelleri ve civciv embriyolarının 10-14 aday genlerin hücresel fonksiyonları araştırmak için güçlü bir araç olmuştur. Daha yakın bir zamanda Blastula füzyon metodu yapışık zebrabalıkları embriyolar 15 üretilmesi için tarif edilmiştir. Mevcut protokolde, video tabanlı öğreticiler göstermek ve daha iyi hematopoetik gelişiminde ilgi aday genlerin, zamansal hücre içsel ve dışsal hücre rollerini incelemek amacıyla farklı genetik kökenden Parabiyotik zebrabalıkları embri...

Yabani tip ve genetik olarak değiştirilmiş hayvanların arasındaki genetik mozaikler (şimerleri) oluşturulması hücre içsel aday genlerin 1-6 hücre-dışsal fonksiyonlar karşı araştırılması için köklü ve klasik bir stratejidir. Zebrabalıkları Blastula nakli yaygın hücre özerklik 7-9 çalışmaları için kimerik embriyolar oluşturmak için kullanılmıştır. Ilgi konusu doku bağlı olarak, ancak, tahmin edilebileceği gibi istenen dokuya (örneğin, kan) 1-3, 7-9 verici hedef hücrelere zor olabilir. Fare genetikçiler uzun bir ortak dolaşımı 10-14 ile yapışık organizmaları üretmek için Parabiyotik cerrahi yöntemler kullanmışlardır. Parabiyotik hayvanlar ortak kan dolaşımına paylaştığından, farklı genetik arka plan diğer hayvan hücreleri, bir hayvanda kökenli hücreler arasındaki etkileşimleri 10-16 incelenebilir. Son zamanlarda, Karima Kissa grubu zarif CRE yeteneğini gösterdiyapışık zebrafish embriyolar yedik ve daha sonra hematopoetik kök ve progenitör hücre (HSPC) göç 15 incelemek için bu sistemi kullanabilirsiniz. Buna ek olarak, Zebra balığı parabiyoz son zamanlarda hematopoetik kök hücre (HSC) ortaya çıkması ve göç, 16 endotelyal kaderin 5 rolünü araştırmak için ve zebra balığı gelişim 17 sırasında HSPC niş içinde stromal hücrelerin rolünü araştırmak için kullanıldı. Farelerde aksine, Zebra balığı embriyolar şeffaf ve sistem benzersiz güçlü hale Parabiyotik gelişimi sırasında hücrelerin doğrudan görselleştirme için izin verir. Zebra balığı parabiyoz yarar, ancak ayrıntılı talimat ve görsel gösteri olmadan teknik olarak zor olabilir hassas embriyolar üzerinde dik bir öğrenme eğrisi ve Parabiyotik cerrahi ile sınırlıdır. Bu protokolün amacı, eğitim için Parabiyotik zebrafish embriyolar oluşturmak için nasıl video tabanlı öğreticiler eşlik net, adım adım talimatlar bir dizi sağlamaktırTemporal, hücreye özgü veya blastulae geliştirme cerrahi füzyonu ile aday gen (ler), hücre-dışsal fonksiyonlar. Anahtar değişiklikler ve artan parabiont hayatta kalma ve yeni deneysel uygulamalar için ek öneriler yer almaktadır.

<table><tbody><tr><td>Metil selüloz</td><td>Sigma</td><td>M0387</td><td></td></tr><tr><td>E3/HCR için ayrı bileşenler:</td><td></td> <td>1L için: 14,61g NaCl, 0,63g KCl, 2,43g CaCl2-2H2O, 1,99g MgSO4</td><td></td></tr><tr><td>NaCl (Sodyum klorür)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>KCl (Potasyum klorür)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2 (Kalsiyum klorür dihidrat)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>223506</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4 (Magnessium sülfat heptahidrat)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>230391</td><td></td></tr><tr><td>Hepes (1M) tampon çözeltisi</td><td>ThermoFisher</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalog Sayı</güçlü></td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Antibiyotikler:</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kalem/Strep</td><td>gibco by Life technologies</td><td>15140-120</td><td></td></tr><tr><td>Ampisisilin sodyum tuzu</td><td>Sigma Life Science</td><td>A0166</td><td></td></tr><tr><td>Streptomyces kanamyceticus</td><td>Sigma Life Science'dan</td> Kanamisin sülfat <td>K1377</td><td></td></tr><tr><td>Name </td><td>Company</td><td>Katalog Numarası</td><td></td></tr><tr><td>50 mg / ml Streptomyces griseus Roche'dan pronaz</td><td></td><td>11459643001</td><td></td></tr><tr><td>iğneler için kullanılan kılcal cam (Kılcal Cam & Filamentler)</td><td>Sutter Aleti</td><td>ÜRÜN #: BF 100-50-10</td><td></td></tr><tr><td>Ahşap saplı alay iğneleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>S07894</td><td></td></tr><tr><td>Cam Pastör pipetleri</td><td>Fisherbrand</td><td>13-678-20A</td><td></td></tr><tr><td>10 ml pipet pompası (yeşil) (Pipet Pompası Pipetleyici)</td><td>Novatech International</td><td>F37898-0000</td><td></td></tr><tr><td>100 mm çap / 20 mm derinliğinde plastik petri kapları (PETRI DISH, 100/20 MM, PS, ŞEFFAF, HAVALANDIRMALI, AĞIR TASARIM, 15 ADET/ÇANTA )</td><td>Greiner Bio-one</td><td>664102</td><td></td></tr><tr><td>Dekstran, Cascade Blue, 10.000 MW, Anyonik, Lizin Sabitlenebilir</td><td>ThermoFisher</td><td>D-1976</td><td></td></tr><tr><td>PTU. Çalışma stoğu %0,003'tür (50x %0,15'tir). 500 ml için 0.75 g N-Feniltiyoüre</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7629</td><td></td></tr><tr><td>Trikain (toz) (Trikain Metansülfonato, Trikain-S)</td><td>Western Chemical Inc</td><td>MS 222</td><td></td></tr><tr><td>LMP agaroz (Ultra saf LMP agaroz)</td><td>Invitrogen</td><td>16520100</td><td></td></tr><tr><td>plastik transfer pipeti (sanırım sadece geniş uçlu olanı)</td><td>Fisherbrand</td><td>137115AM</td><td></td></tr><tr><td>Görüntüleme için kullanılan cam tabanlı 6 oyuklu plakalar</td><td>MatTek</td><td>P06G1.5-20-F</td><td></td></tr><tr><td>ahşap saplı bir diseksiyon iğnesinin ucuna sabitlenmiş plastik batı jel yükleme ucu (GELoader uçları)</td><td>Eppendorf</td><td>22351656</td><td></td></tr><tr><td>cam kapak kaymaları, kaymalar ve dik bir mikroskop için monte edilirse vakum yağı:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Vakum gresi ( Dow Corning&reg; yüksek vakumlu silikon gres renksiz, ağırlık 5,3 oz (tüp) )</td><td>Dow Corning</td><td>Z273554</td><td></td></tr><tr><td>Cam kapak slipleri</td><td>Corning Yaşam Bilimleri</td><td>2960-244</td><td></td></tr></tbody></table>

blastulae gelişmekte cerrahi fusion tarafından parabiyotik balığı embriyolar Üretimi

Generation of Parabiotic Zebrafish Embryos by Surgical Fusion of Developing Blastulae

farklı genetik geçmişleri iki hayvan cerrahi parabiyoz hücre içsel farklı genetik ortamlarda aday ilgi genlerin, hücrelerin göç davranışları ve salgılanan sinyaller için hücre dış roller karşı çalışmak için benzersiz bir senaryo oluşturur. Parabiyotik hayvanlar ortak bir dolaşım paylaştığından, bir hayvandan herhangi bir kan ya da kan yoluyla bulaşan faktör ortağı ve tersi geçerli olacak. Bu nedenle, tek bir genetik geçmişe türetilmiş hücreler ve moleküler faktörler ikinci bir genetik arka bağlamında incelenebilir. Yetişkin farelerin parabiyoz araştırma yaşlanmanın, kanser, diyabet, obezite ve beyin gelişimi için yaygın olarak kullanılmaktadır. Daha yakın zamanda, zebra balığı embriyoların parabiyoz hematopoez gelişim biyolojisi okumak için kullanılmıştır. Farelerde tersine, zebra balığı embriyolarının şeffaf doğası f araştırmak için benzersiz bir güçlü bir yöntem yapım Parabiyotik bağlamda hücrelerinin doğrudan görselleştirme izin verirundamental hücresel ve moleküler mekanizmalar. Bu tekniğin programı Ancak Parabiyotik zebrabalıkları embriyolar oluşturmak için bir öğrenme eğrisi ile sınırlıdır. Bu protokol ilgi aday genlerin rolünü araştırmak için farklı genetik geçmişleri iki zebra balığı embriyolarının blastulae sigorta cerrahi için nasıl bir adım-adım bir yöntem sağlar. Buna ek olarak, Parabiyotik zebrafish embriyolar olası gen ifadesinin zamansal kontrolü yapmak, ısı şok hoşgörülü. Bu yöntem sofistike bir set-up gerektirir ve embriyonik gelişim sırasında in vivo hücre göçü, kader özellikleri ve farklılaşma çalışmak için geniş uygulamalar mevcut değil.

Daha önce yayınlanmış çalışmaların 15 ile uyumlu olarak, zebra balığı embriyolarının başarıyla Parabiyotik füzyon evreleme ve oryantasyon iki embriyo ve metilselüloz konsantrasyonuna bağlıdır. Sadece birkaç basit ile, ucuz araçlar, cerrahi kaynaşmış gelişmekte blastulae paylaşılan tirajlı Parabiyotik embriyoların içine büyüdüğünü üretildi. Bu araçlar, bir tadil edilmiş Pasteur pipeti, 10 ml pipet pompası ve tek başına ya da laboratuar film ile ucuna sabitlenmiş bir jel yükleme...

Bu protokol, farklı genetik geçmişlere sahip parabiyotik zebra balığı embriyolarının nasıl oluşturulacağına dair adım adım talimat sağlar. Zebra balığı embriyosunun benzersiz görüntüleme yetenekleriyle birleştirildiğinde, bu yöntem, ilgilenilen aday genler için hücre özerk ve hücre özerk olmayan işlevleri araştırmak için benzersiz derecede güçlü bir araç sağlar.

Blastulae Gelişmekte Cerrahi Fusion tarafından Parabiyotik balığı Embriyolar Üretimi

Surgical parabiosis of two animals of different genetic backgrounds creates a unique scenario to study cell-intrinsic versus cell-extrinsic roles for ...

Bu yöntemin genel amacı, ilgilenilen aday genlerin hücre içi (intrinsik) ile hücre dışı (ekstrinsik) fonksiyonlarının incelenmesinde kullanılabilecek parabiotik zebrafish embriyoları oluşturmaktır. Bu yöntem, hücre otonomisine dair temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Örneğin, hematopoetik sistemde, HSC göçündeki kritik defektlerin HSC'lerin kendisine mi yoksa niş mikroçevresine mi bağlı olduğu bu şekilde belirlenebilir.Bu protokolün temel avantajı, parabiotic zebrafish embriyolarının başarıyla oluşturulma yeteneğini artırmasıdır. Genel olarak, bu yöntemde yeni olan kişiler, gelişmekte olan embriyolar son derece hassas olduğu ve kolayca zarar gördüğü için zorluk yaşayacaklardır. Cerrahi dikiş adımları yüksek derecede doğruluk ve hassasiyet gerektirdiğinden öğrenilmesi zor olabilir, bu nedenle yöntemin görsel olarak gösterilmesi kritik öneme sahiptir.Burada, gelişmekte olan blastulaların cerrahi füzyonu yoluyla parabiyotik zebra balığı embriyoları oluşturmak için adım adım talimatlar sunuyoruz. Bu yöntem, parabiyotik füzyonların verimliliğinin nasıl artırılacağını ve birleşik embriyoların sağkalımının nasıl geliştirileceğini göstermektedir. Reaktifleri ve araçları metin protokolüne göre hazırladıktan sonra, pipetin ucunu bir Bunsen beki üzerinde kısa bir süre ısıtarak iki ila üç modifiye Pasteur pipeti hazırlayın.Ardından, henüz sıcakken geniş uçlu bir pens kullanarak pipetin ucunu yaklaşık 45 derece bükün. Embriyolara zarar verebilecek keskin kenarların kalmadığından emin olmak için, pipetin ucunu bir ila iki saniye boyunca Bunsen beki üzerinde tutun. Plazmid DNA, mRNA veya morpholino kullanarak, embriyolar toplandıktan sonraki bir saat içinde mikroenjeksiyon yapın ve embriyoların 256 hücreli aşamaya kadar gelişmesine izin verin.Embriyolar 256 hücreli evreye yaklaştığında, her bir genetik arka planı ayrı agaroz kaplı kaplara, çiziksiz cam beherlere veya petri kaplarına aktarın. Embriyoları metin protokolüne göre dekoryone ettikten sonra, önceden hazırlanmış metilselülozu çözdürün ve embriyolara zarar verebilecek veya vitelloları çatlatabilecek çözünmemiş kristalleri çöktürmek için masaüstü santrifüjü maksimum hızda kullanın. Bu sırada, bir markör yardımıyla 100 mililitrelik agaroz kaplı bir petri kabının alt kısmında önceden belirlenmiş 12 ila 15 noktayı işaretleyin.Ardından, santrifüjden sonra, metilselülozun şeffaf üst fraksiyonunu kullanarak, petri kabındaki işaretli noktalara 1 ila 1,5 santimetrelik damlalar aktarın. Sonra, az önce hazırlanan agaroz kaplı kap başına 40 mililitrelik bir yüksek kalsiyumlu Ringer veya HCR çözeltisi alikotu hazırlayın. Her bir alikota, burada listelenen antibiyotikleri ekleyin.Blastula füzyonlarını gerçekleştirmeye hazır olduğunuzda, metilselüloz damlacıkları içeren her bir kabı, damlacıkları bozmamaya dikkat ederek antibiyotikli HCR alikotları ile dikkatlice doldurun. Daha önce hazırlanmış modifiye bir cam Pasteur pipetini 10 mililitrelik bir pipet pompasına takın. Ardından, bir stereoskop altında, her bir arka plandan tek bir dekoryone edilmiş embriyo toplayın.İki embriyoyu yerleştirmeden önce, metilselüloz damlasının ortasında küçük bir çukur oluşturmak için Pasteur pipeti kullanın. Ardından, iki embriyoyu bu çukura yerleştirin. Şimdi, ucunda jel yükleme ucu bulunan bir ayırma iğnesi kullanarak, embriyolara doğrudan temas etmeden hafif süpürme hareketleri yapın ve embriyoların hayvan kutupları birbirine doğrudan değecek şekilde metilselüloz içinde dikkatlice yeniden konumlandırın.Gelişmekte olan embriyoların doğru şekilde yönlendirilmesi, embriyoların nasıl birleşeceğini ve gelişeceğini belirler. Kafa kafaya birleştirmeler için, her bir birleşmenin animal pollerinde hizalandığından emin olun. Metilselülozun etraflarında çökelmesi için embriyoları beş dakika bekletin.Bu süre zarfında, bir sonraki çifti başka bir damlacığa yükleyin. Cerrahi işlemi gerçekleştirmek için, cam iğne aracını kullanarak her embriyoyu temas noktalarından dikkatlice yaralayın. Ardından, hafif bir dikme hareketiyle, hücreleri birinci embriyodan ikinci embriyoya ve tekrar geri çekin.Hareketin sonunda, iğneyi çok yavaşça geri çekmeden önce iki ila üç saniye boyunca sabit tutun. Embriyoların düzgün bir şekilde birbirine dikilmesini sağlamak için cam iğne ile hassas çalışmak kritiktir. Başarılı bir füzyon için yeterli bağlantıyı korurken vitellus keselerine zarar vermemeye özen gösterilmelidir.Embriyoların oda sıcaklığında 10 ila 15 dakika bekletilmesine izin verin. Bu süre zarfında, ek embriyo çiftlerini dikin. İnkübasyonun ardından, embriyoların yapışık kalıp kalmadığını değerlendirin ve gerekirse yaralama adımını tekrarlayın.Embriyoları aynı kapta ve ortamda 28,5 °C'de gece boyunca inkübe edin. Ertesi sabah embriyolar, büyük oranda çözünmüş olan metilselülozun dışına çıkmış olacaktır. Başarıyla kaynaşmamış olan tüm embriyoları uzaklaştırın.Ardından, besiyerini dökün ve yerine 25 milliliters E3 ekleyin. Füzyon uygulanmış embriyoların görüntülerini elde etmek için %0,8 düşük erime noktalı agaroz hazırlayın. Agaroz henüz sıcakken, 37 degree Celsius ısıtma bloğuna yerleştirilmiş 1,5 milliliters mikrosantrifüj tüplerine 1 milliliter agaroz paylaştırın.Embriyoların bulunduğu 25 mL E3 ortamına, bir mililitre 4 mg/mL pH 7.0 trikain ekleyerek parabiyotik embriyoları anestezi edin. Embriyoların ortada toplanması için petri kabını hafifçe çalkalayın. Ardından, geniş uçlu plastik bir transfer pipeti kullanarak embriyoları mümkün olan en az sıvı ile çekin.Ardından, pipeti dik konuma getirin ve embriyoların pipetin en altına çökmesi için onları nazikçe sarsın. Daha sonra, pipet ucunu agarozun yüzeyine hafifçe değdirerek embriyoları 1 mililitre düşük erime noktalı agaroz alikotuna aktarın. Pipette kalan fazla sıvıyı uzaklaştırın ve embriyoları agaroz içinde nazikçe karıştırmak için pipeti kullanın.Ardından, pipet yardımıyla agarozu ve embriyoları cam tabanlı altı kuyucuklu bir plakadaki kuyucuğa aktarın. Stereomikroskop altında, bir ayırma iğnesinin ucuna takılmış jel yükleme ucu kullanarak embriyoları örtü camına yakın ve görüntüleme için istenen yönelime getirin. Agaroz donduktan ve kuyucuklara trikainli besiyeri eklendikten sonra, görüntüleri elde etmek için ters bir geniş alan epifloresan lazer taramalı konfokal veya döner disk konfokal mikroskop kullanın.Tüm embriyoyu kapsayan bir görüş alanı için 4X objektif kullanın. Belirli bir dokuyu görüntülemek için 20X objektif kullanın. Görüntüleri metin protokolüne göre işleyin.Burada gösterildiği gibi, iki blastula hayvan kutupları birbirine bakacak şekilde yönlendirildikten sonra, embriyolar temas noktalarından dikkatlice yaralandırılmıştır. Yaralama derecesinin artması, embriyoların ek morfolojik defektler veya gelişim gecikmesi olmaksızın başarılı bir füzyonla sonuçlanan bir bağlantıyı koruma olasılığını artırmıştır. Bu şekilde gösterildiği üzere, iki blastula hayvan kutupları doğrudan hizalanacak şekilde yönlendirilerek, ortak dolaşıma sahip güvenilir baş-baş veya vitellus kesesi-vitellus kesesi füzyonları oluşturulmuştur.Çoğu durumda, embriyolar ortak bir dolaşımı pompalayan iki kalbe sahipti. Embriyoların gerçekten dolaşımlarını paylaştıklarını doğrulamak için, GFP-pozitif eritrositleri olan füzyon transgenik embriyolar, mCherry-pozitif vasküler endotelyal hücreleri olan embriyolarla birleştirildi. Bu videoda görüldüğü üzere, döllenmeden 48 saat sonra GFP-pozitif eritrositlerin Flik 1 HRAS mCherry partner embriyosunda dolaştığı gözlemlendi.Son olarak, gen ekspresyonunun zamansal kontrolünü incelemek için, iki embriyodan biri hsp70 EGFP DNA konstrüktü ilele enjekte edildi. 37 °C'de uygulanan kısa süreli 30 dakikalık bir ısı şokunun ardından, embriyolardan birinde belirgin bir GFP sinyali oluştu ve bazı durumlarda, enjekte edilmemiş partner embriyoda dolaşan GFP-pozitif hücreler görüldü. Bu teknikte uzmanlaşıldığında, uygun şekilde yürütülürse işlem beş saat içinde tamamlanabilir.Bu prosedürü uygularken, iki blastulayı birbirine dikerken dikkatli olmayı ve cerrahi işlem ilk denemede başarılı olmazsa füzyonları yeniden gözden geçirmeyi unutmamak önemlidir. Bu prosedürün ardından, yabani tip HSC'lerin mutant bir nişte normal şekilde işlev görüp göremediği veya tersine, mutant HSC'lerin yabani tip bir nişte işlev görüp göremediği gibi ek soruları yanıtlamak için canlı hücre görüntüleme gibi ek yöntemler kullanılabilir. Bu teknik, hematoloji alanındaki araştırmacılara zebra balıklarında kan gelişiminin düzenlenmesini incelemek için güçlü bir yöntem sunmaktadır.Trikainin tehlikeli olabileceğini unutmayın ve bu prosedürü gerçekleştirirken uygun güvenlik kıyafetleri giymek gibi önlemler her zaman alınmalıdır. Bu videoyu izledikten ve önerdiğimiz teknikleri uyguladıktan sonra, daha başarılı bir şekilde daha kaliteli biyotik zebrafish embriyoları üretebileceğinizi umuyoruz.

generation-parabiotic-zebrafish-embryos-surgical-fusion-developing

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Nakli ile blastula veya gastrula aşamada hedef kimerik zebrafish embriyolar üretmek için bir adım-adım rehber.

Transplantasyon Kimerik Zebra balığı Embriyolar Yaratma

Zebra balığı hücre nakli, doku spesifik kimeralar üretmek için genetik ve embriyoloji kombinasyonu sağlar. Bu video gastrula laboratuarımızda önbeyin komissür oluşumu sırasında, Astroglial nüfus ve özel rehberlik ipuçları rollerini araştırmak için izin hücre transplantasyon sahnelenen göstermektedir.

Doku Hedeflenen Embriyonik Chimeras: Zebra balığı Gastrula Hücre Nakli

Biz embriyogenez sırasında canlı görüntüleme hücresel davranışı için kimerik zebrafish embriyolar üretmek için bir protokol ortaya koymaktadır.

Transplantasyon GFP of-Kimerik Zebra balığı Embriyolar Retina ve Beyin Gelişimi Canlı Görüntüleme blastomer ifade

Bu videoda, canlı zebra balığı embriyolarının düşük eriyik agaroz kullanılarak 6 oyuklu plakaya monte edilmesine ilişkin adım adım talimatlar açıklanmaktadır. Ayrıca canlı embriyoların görüntülerini elde etme ve yazılım kullanarak analiz etme sürecini de sağlar.

Agar Montajı: Uzun Süreli Görüntüleme için Canlı Zebra Balığı Embriyolarını Monte Etmenin Temel Bir Yöntemi

Zebra balığı, daha yüksek omurgalılarla genetik benzerlikleri nedeniyle gelişimsel biyoloji ve insan hastalıkları araştırmaları için güçlü bir model sistemdir. Bu protokol, erken embriyogenez için gerekli olan genlerdeki resesif mutasyonları tanımlamak için ileri tarama stratejileri için kullanılabilecek haploid zebra balığı embriyoları oluşturmak için bir metodolojiyi açıklar.

Haploit Zebra balığı Embriyolar üretimi ile<em&gt; In Vitro</em&gt; Gübreleme

Zebra balığı, genetik ve gelişimsel çalışmalar için mükemmel bir model sistemdir. Boncuk implantasyonu, lokal hücresel ortamlarda değişiklikler yaparak gelişimsel mekanizmaları sorgulamak için kullanılabilecek değerli bir doku manipülasyon tekniğidir. Bu protokol, zebra balığı embriyosunda mikroboncuk implantasyonunun nasıl gerçekleştirileceğini açıklar.

Zebra balığı Embriyo microbead İmplantasyonu

Hücrelerin ekstirpasyonu ve nakli gibi embriyolojik manipülasyonlar erken gelişimi incelemek için önemli araçlardır. Bu protokol, zebra balığı embriyolarında bu manipülasyonları gerçekleştirmek için basit ve etkili bir transplantasyon cihazını tanımlar.

Zebra Balığı Embriyoları İçin Basit ve Etkili Bir Transplantasyon Cihazı

Zebra balığı blastoderm eksplantları, embriyonik hücrelerin erken embriyo içindeki endojen sinyal merkezlerinden izole edilmesiyle, nispeten naif hücre kümelerinin kolayca manipüle edilmesi ve kültürlü ex vivoüretilmesiyle üretilir. Bu makalede, gastrülasyon sırasında Nodal sinyali için rolleri sorgulayarak bu tür eksplantlar yapmak için talimatlar sağlar ve yardımcı programlarını gösterir.

Zebra Balığı Embriyolarından Naïve Blastoderm Explants Üretimi

Bu çalışma, zebra balığı embriyolarına transgenik yapılar oluşturmak ve enjekte etmek için ağ geçidi tabanlı bir klonlama yöntemi olan modüler Tol2 transgenez sistemi için bir protokolü açıklamaktadır.

Zebra Balığı Tol2 Sistemi: Modüler ve Esnek Ağ Geçidi Tabanlı Transgenez Yaklaşımı

Burada, zebra balığı embriyolarında ve larvalarında döllenmeden en az 1 ila 7 gün sonra herhangi bir aşamada yüksek uzamsal ve zamansal çözünürlüğe sahip hücrelerin nakli için bir protokol sunuyoruz.

Embriyonik ve Larva Zebra Balıklarında Yüksek Çözünürlüklü Hücre Nakli

Öğrenin parabiyotik Danio rerio embriyoları üretme yöntemini, blastula cerrahi füzyonu kullanarak hücre otonomisi ve gen fonksiyonlarını araştırmak için. Bu protokol gelişim biyolojisi ve nörobilim çalışmalarında yüksek başarı sağlar.

Blastulae Gelişmekte Cerrahi Fusion tarafından Parabiyotik balığı Embriyolar Üretimi

Daha fazla video keşfet