-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Yüksek verimli Gen Etiketleme içinde Trypanosoma brucei
Yüksek verimli Gen Etiketleme içinde Trypanosoma brucei
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
High-throughput Gene Tagging in Trypanosoma brucei

Yüksek verimli Gen Etiketleme içinde Trypanosoma brucei

Full Text
8,354 Views
11:26 min
August 12, 2016

DOI: 10.3791/54342-v

Philip Dyer1, Samuel Dean1, Jack Sunter1

1Sir William Dunn School of Pathology,University of Oxford

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Bir proteine bir etiket eklemek, onun işlevi hakkında fikir edinmenin güçlü bir yoludur. Burada, yüzlerce Trypanosoma brucei proteinini paralel olarak endojen olarak etiketlemek için bir protokol açıklıyoruz, böylece genom ölçeği etiketlemesi elde edilebilir.

Bu yöntemin genel amacı, Trypansoma brucei'deki proteinleri yüksek verimli bir şekilde etiketlemektir. Bu yöntem, kinetoplacid alanındaki büyük protein kohortlarının lokalizasyonu ve potansiyel işlevi hakkındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, çok sayıda proteinin paralel olarak hızlı ve kolay bir şekilde etiketlenebilmesidir.

Bu yöntem lokalizasyon hakkında fikir verebilse de, büyük protein kohortlarının etkileşimleri diğer etiketler kullanılarak da araştırılabilir. Örneğin, bir biyo-kimlik yakınlık haritalama deneyi için BirA etiketi. Prosedürü göstermek, laboratuvarımızdan bir araştırma görevlisi olan Ross Madden olacak.

Bu prosedüre başlamadan önce, eksi 80 santigrat derece dondurucuda 96 oyuklu bir PCR soğutucusunu önceden dondurun. Aşağıdakileri 10 mililitrelik bir tüpte birleştirerek Master Mix A'yı hazırlayın. 2, 100 mikrolitre damıtılmış deiyonize su, 105 mikrolitre PCR dereceli DMSO, 105 mikrolitre 10 milimolar dNTP ve 105 mikrolitre pPOT şablonu.

Master Mix A'yı bir reaktif rezervuarına dökün ve 23 oyuklu bir PCR plakasının her bir oyuğuna 96 mikrolitre Master Mix A'yı alın. P20 12 kanallı çok kanallı bir pipet kullanarak, yüklenen her kuyucuğa iki mikrolitre 100 mikromolar havuzlanmış astar ekleyin. Plakayı filmle kapatın.

Önceden soğutulmuş PCR soğutucusuna yerleştirin ve eksi 20 santigrat derecede en az 80 dakika donmasına izin verin. PCR Master Mix A'nın dondurulması, belirli bir sıcak başlatma polimeraz kullanıldığında bile verimli bir sıcak başlatma reaksiyonu sağlamak için kritik öneme sahiptir. Bu, tekrarlanabilir ve yüksek verimli bir amplifikasyona yol açar.

PCR plakası dondurucudayken, Master Mix B'yi hazırlayın. Aşağıdakileri 10 mililitrelik bir tüpte birleştirin. 2.048 mikrolitre damıtılmış deiyonize su, 525 mikrolitre 10X tampon ve 52.5 mikrolitre polimeraz, plaka başına toplam 2.626 mikrolitre hacim. PCR plakasını ve PCR soğutucusunu eksi 80 santigrat derece dondurucudan çıkarın.

Plaka hala PCR soğutucusunda iken, toplam 25 mikrolitrelik bir reaksiyon hacmi için her bir oyukta donmuş Master Mix A'nın üzerine hızlı bir şekilde 50 mikrolitre Master Mix B ekleyin. Bu zaman açısından kritiktir ve Master Mix A çözülmeden önce tamamlanmalıdır. Plakayı filmle kapatın.

Termal döngüleyiciyi aşağıdaki gibi ayarlayın. 10 dakika boyunca 94 santigrat derece, daha sonra, 15 saniye boyunca 94 santigrat derece, 30 saniye boyunca 65 santigrat derece ve iki dakika boyunca 72 santigrat derece 30 döngü ve ardından yedi dakika boyunca 72 santigrat derece son uzatma periyodu. Blok 94 santigrat dereceye ulaştıktan sonra, PCR plakasını termal döngüleyiciye yükleyin ve amplifikasyon programını başlatın.

Bu prosedüre, Tris-asetat EDTA veya TAE çalışma tamponunda dört sıra kuyucuk ile büyük bir %1 agaroz jeli hazırlayarak başlayın. Her sıranın birinci ve 28. kuyularına bir kb'lık bir DNA merdiveni yükleyin. Bir sonraki adım, burada gösterilen modeli izleyerek, iki mikrolitre PCR ürününü, DNA yükleme tamponu olmadan doğrudan jelin her bir şeridine aktarmaktır.

Örneğin, PCR plakasının A ve B Sıralarından gelen PCR ürünleri, jelin ilk sırasının sırasıyla tek sayılı ve çift sayılı şeritlerine yüklenir. Amplikonları kontamine etme olasılığını azaltmak için hızlı bir şekilde çalışarak, PCR plakasını A Satırından PCR ürünlerini jelin ilk sırasının tek sayılı şeritlerine yükleyin. Ardından, PCR plakanın B Satırındaki PCR ürünlerini jelin ilk sırasının çift sayılı şeritlerine yükleyin.

PCR ürünlerini, aynı modeli kullanarak PCR plakasının C ve D Satırlarından, C Satırı tek sayılı şeritlere ve D Satırı, jelin ikinci sırasının çift sayılı şeritlerine gelecek şekilde yükleyin. PCR plakasının her bir oyuğu jel üzerine yüklenene kadar bu yükleme modeline devam edin. Jeli çalışan tanka yerleştirin ve jel suya batırılana kadar tankı TAE çalışma tamponu ile doldurun.

30 dakika boyunca 100 voltta çalıştırın. Bir UV transilluminatörü kullanarak görselleştirin. Burada, 96 PCR'den 95'inin başarılı olduğu temsili bir 96 oyuklu PCR validasyonu agaroz jeli gösterilmektedir.

Başarısız PCR H11 idi. Bu prosedür Trypansoma brucei, prosiklik form, hücre hattı SMOXP9 kullanır. Hücreleri protokol metninde açıklandığı gibi uygun yoğunluğa büyütün ve 10 dakika boyunca 800 kez G'de santrifüjleme ile gerekli sayıda hücreyi hasat edin.

Hücreler santrifüjlenirken elektroporasyon için kuruluma başlayın. Plaka işleyiciyi elektroporatöre bağlayın. Elektroporatör ünitesinde voltajı 1.500 volta, darbe uzunluğunu 100 mikrosaniyeye, darbe sayısını 12'ye ve darbe aralığını 500 milisaniyeye ayarlayın.

Plaka işleyicide nabız sayısını bire ayarlayın. P200 12 kanallı çok kanallı bir pipet kullanarak, PCR reaksiyonlarını PCR plakasından 96 oyuklu tek kullanımlık bir elektroporasyon plakasına aktarın. Hücreleri 10 mililitre modifiye cytomix içinde yıkayın ve 10 dakika boyunca 800 kez G'de tekrar santrifüjleyin.

Hücreleri, mililitre başına beş kez 10 ila yedinci hücrelerin nihai konsantrasyonu için 23 mililitre modifiye cytomix içinde yeniden süspanse edin. Hücre süspansiyonunu bir reaktif rezervuarına aktarın. Elektroporasyon plakasının her bir oyuğuna 200 mikrolitre hücre solüsyonu pipetleyin ve pipetleme yoluyla PCR ürünü ile karıştırın.

Kısa devreleri önlemek için plakanın üst kısmındaki damlacıkları çıkarmak için bir kağıt mendil kullanın. Elektroporasyon plakasının üst kısmına sızdırmazlık filmi uygulayın ve her sütunun üstünde ve altında elektrotlar için delikler açıkta kalacak şekilde konumlandırın. Filmi yönlendirmek için kullanılan yükseltilmiş noktaları kapatmaktan kaçının.

Elektroporasyon plakasını plaka tutucuya yükleyin ve kapağı kapatın. Elektroporatör ünitesindeki "darbeye" basın. Elektroporasyondan sonra, hücreler, geri kazanım için oyuk başına bir mililitre SDM-79 ortamı içeren dört adet 24 oyuklu doku kültürü plakasına hızlı bir şekilde aktarılmalıdır.

Kalan altı uç, 24 oyuklu bir doku kültürü plakasındaki altı sıra ile aynı hizada olacak şekilde, diğer tüm uçları eksik olan bir P200 12 kanallı çok kanallı pipet kullanın. Hücreler 96 oyuklu plakadan 24 oyuklu plakaya aktarıldıktan sonra, 96 oyuklu plakadaki kuyucukları 24 oyuklu plakadaki karşılık gelen oyuklardan gelen ortamla yıkayın. Ardından, yıkamayı 24 oyuklu plakadaki kuyucuklara geri aktarın.

Elektroporasyonlu hücreleri 96 oyuklu elektroporasyon plakasından 24 oyuklu doku kültürü plakalarına burada gösterilen önceden tanımlanmış modelde aktarın. Örneğin, 96 oyuklu plakanın Satır A'daki tek sayılı kuyucuklarından gelen hücreler Levha A'nın Satır A'sına aktarılırken, 96 oyuklu plakadan Satır A'nın çift sayılı kuyucuklarından gelen hücreler Levha C'nin Satır A'sına aktarılır. 96 oyuklu plakadaki kuyuları, 24 oyuklu plakanın karşılık gelen sırasından orta ile yıkayın. Ardından, yıkamayı 24 oyuklu plakaya geri aktarın.

Hücrelerin 24 oyuklu plakalara aktarılması kafa karıştırıcıdır, ancak elde edilen hücre dizilerini doğru gene kadar izleyebilmeniz gerekir ID.It hücreleri sağlıklı tutmak için bu adımı hızlı bir şekilde yapmak çok önemlidir. Tüm elektroporasyonlu hücreler dört adet 24 oyuklu plakaya aktarıldıktan sonra, 24 oyuklu plakaları sıkı bir sızdırmazlık sağlayan bir kapaklı temiz bir plastik kutuya yerleştirin. Kutuyu 28 derecelik bir inkübatöre koyun.

Altı ila sekiz saat sonra, seçici antibiyotik içeren% 10 FCS ile her bir kuyucuğa bir mililitre SDM-79 ekleyin. Transgenik hücre hatları görünür hale gelene kadar dokuz ila 10 gün boyunca 28 santigrat derecede inkübe edin. Uç terminalde 96 farklı proteini etiketlemek için 96 oyuklu bir transfeksiyondan sonra, hücreler geri kazanım ve seçim için 24 oyuklu doku kültürü plakalarına aktarılır.

Her kuyucuk daha sonra sağlıklı, ilaca dirençli hücreler içerip içermediğini belirlemek için değerlendirilir. Sağlıklı bir kuyu, faz kontrast mikroskobunda parlak olan, ağırlıklı olarak yüksek derecede aktif hücreler içerir. Bu örnek şematikte yeşil, başarılı transfeksiyona sahip bir kuyuyu temsil eder ve gri, yalnızca ölü hücrelere sahip bir kuyuyu temsil eder.

96 kuyudan 88'i veya kuyuların% 92'si, 15 günlük seçimden sonra başarıyla transfekte edilmiş parazitler içerir. Bir kez ustalaştıktan sonra, hücrelerin sayılmasından elektroporasyondan sonra kaplanmasına kadar yaklaşık bir saat sürecektir. Bu prosedürü denerken, seçici ilaçları transfeksiyondan altı ila sekiz saat sonra eklemeyi unutmamak önemlidir.

Bu videoyu izledikten sonra, Trypansoma brucei'de büyük protein kohortlarını nasıl etiketleyeceğinizi iyi anlamış olmalısınız.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Immunology Sayı 114 yüksek hacimli endojen gen etiketleme PCR Trypanosoma brucei 96 oyuklu elektroporasyon floresan protein lokalizasyonu

Related Videos

Telomer G-çıkıntı Yapısı incelenmesi Trypanosoma brucei

15:25

Telomer G-çıkıntı Yapısı incelenmesi Trypanosoma brucei

Related Videos

14.7K Views

Genetik Manipülasyon Δku80 Suşlarının Toxoplasma gondii

09:52

Genetik Manipülasyon Δku80 Suşlarının Toxoplasma gondii

Related Videos

17.6K Views

Floresan Proteinleri kullanarak Afrika tripanosom içinde Glycosome Dynamics Monitör

10:04

Floresan Proteinleri kullanarak Afrika tripanosom içinde Glycosome Dynamics Monitör

Related Videos

9.4K Views

Tripanozomlann RNA Düzenleme karşı ilaçlar Tarama için bir Muhabiri olarak RNA Catalyst

09:19

Tripanozomlann RNA Düzenleme karşı ilaçlar Tarama için bir Muhabiri olarak RNA Catalyst

Related Videos

8.8K Views

Biyoparlaklık Görüntüleme Afrika Trypanosomiasis Geç Evre Enfeksiyon Algılama için

07:59

Biyoparlaklık Görüntüleme Afrika Trypanosomiasis Geç Evre Enfeksiyon Algılama için

Related Videos

8.2K Views

Algılama Trypanosoma brucei Varyant Yüzey Glikoprotein Değiştirme

09:45

Algılama Trypanosoma brucei Varyant Yüzey Glikoprotein Değiştirme

Related Videos

9.1K Views

Afrika, anyon-değiştiriciler (Diethylaminoethyl-selüloz sütunlar) tarafından kandan da dahil olmak üzere hücre dışı Tripanozomlar arıtma

14:26

Afrika, anyon-değiştiriciler (Diethylaminoethyl-selüloz sütunlar) tarafından kandan da dahil olmak üzere hücre dışı Tripanozomlar arıtma

Related Videos

10.7K Views

CRISPR/Cas9 sistemi kullanılarak Trypanosoma cruzi 'Nin Amastigote aşamasına doğrudan bir gene Knockout tanıtımı

06:13

CRISPR/Cas9 sistemi kullanılarak Trypanosoma cruzi 'Nin Amastigote aşamasına doğrudan bir gene Knockout tanıtımı

Related Videos

9.5K Views

İn Vitro β-galaktosidaz İfade Eden Parazitleri Kullanarak Trypanosoma cruzi'nin Tüm Yaşam Döngüsü Aşamalarına Karşı İlaç Taraması

08:48

İn Vitro β-galaktosidaz İfade Eden Parazitleri Kullanarak Trypanosoma cruzi'nin Tüm Yaşam Döngüsü Aşamalarına Karşı İlaç Taraması

Related Videos

3.7K Views

Canlı Trypanosoma brucei'de Dinamik Glikozomal pH Değişikliklerinin Ölçülmesi

08:50

Canlı Trypanosoma brucei'de Dinamik Glikozomal pH Değişikliklerinin Ölçülmesi

Related Videos

1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code