Name: içinde Microengineered İnsan Bağırsak Villi Oturma mikrobiyomu Co-kültür, bir Gut-on-a-Chip mikroakışkan Aygıt (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 51 s
Description: Keşfedin bağırsak mikrobiyomu ve insan bağırsak hücrelerinin gut-on-a-chip mikroakışkan cihazda ko-kültür yöntemini. Bu teknik, gastroenteroloji ve ilaç geliştirme araştırmalarında hastalık mekanizmalarını anlamak için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Sri Kosuri'ye (Harvard Üniversitesi Wyss Enstitüsü) GFP etiketli E. coli suşunu sağladığı için teşekkür ederiz. Bu çalışma, W911NF-12-2-0036 Numaralı İşbirliği Anlaşması kapsamında Savunma İleri Araştırma Projeleri Ajansı, sözleşmeli #HHSF223201310079C kapsamında Gıda ve İlaç İdaresi ve Harvard Üniversitesi'ndeki Wyss Biyolojik Olarak Esinlenmiş Mühendislik Enstitüsü tarafından desteklenmiştir. Bu belgede yer alan görüşler ve sonuçlar yazarlara aittir ve Ordu Araştırma Ofisi, Ordu Araştırma Laboratuvarı, Gıda ve İlaç İdaresi veya ABD Hükümeti'nin açık veya zımni resmi politikalarını temsil ettiği şeklinde yorumlanmamalıdır. A.B.D. Hükümeti, buradaki herhangi bir telif hakkı notuna bakılmaksızın, Hükümet amaçları doğrultusunda yeniden baskıları çoğaltmaya ve dağıtmaya yetkilidir.

Bir Gut-on-a-chip Cihazının 1. Mikro ve Not: bağırsak-on-a-çip esnek mesafeyle ayrılmış iki paralel mikrokanallar (1 mm genişlik x 150 mm yükseklik x 1 cm uzunluğunda) ihtiva eden saydam, gaz geçirgen, silikon polimer (polidimetilsiloksan, PDMS) tarafından yapılan bir mikroakışkan cihazdır gözenekli (gözenek çapı 10 mikron, aralık gözenek 25 mikron gözenek) membran 5,9 PDMS. Sağlanan adımları izleyerek gut-on-a-chip (sol Şekil 1A) Üretiyor. <ol><li> Gut-on-a-chip 5,9 mikroimalat Prosedürü. <ol><li> PDMS prepolimer ve pişirme amilinin karıştırılması ile vulkanize edilmemiş, gazı alınmış PDMS hazırlama (15: ağırlık / ağırlık olarak 1) ve 30 dakika süre ile, vakum desikatörde yerleştirin. </li><li> 30 g sırasıyla, SU-8, üst tabanlı micropatterns ve bağırsak-on-a-chip alt mikrokanallar olan her silikon kalıp üzerine vulkanize edilmemiş, gazı alınmış PDMS, 3 g dökün. Daha sonra lt kuru fırında 60 ° C&#39;de tedavidoğu 4 saat. </li><li> Cerrahi bir neşter kullanılarak kenarı etrafında kesim her silikon kalıp üst ve alt PDMS katmanları Çekiç yerine. biyopsi zımba (delik çapı 2.0 mm) kullanılarak 6 delik (iki girişleri, iki çıkışları ve iki vakum odaları) Punch. </li><li> w 1: Düz ile bindirilirken yuvarlak sütunlar (çapı 10 mikron, yüksekliği 25 mm) ile yazılan dizileri içeren bir Silanlanmış silikon gofret sertleşmemiş ve gazı alınmış PDMS 10 g dökerek gözenekli membran hazırlayın, PDMS destek katmanı (15 Silanlanmış / a; 1 cm kalınlığında). kurulum 3 kg ağırlık baskı ayağı yerleştirin ve 12 saat veya daha uzun süre 60 ° C&#39;de polimer tedavi. </li><li> dikkatle gofret slab köşesini yukarı kaldırarak ve gözenekli PDMS membran tamamen gofret ayrılmış kadar soyulması ile silikon gofret PDMS destek levha yapıştırılmış bir gözenekli PDMS membran kurulumu Çekiç yerine. </li><li> PL ve gözenekli membran kısım: bir üst tabaka kanalı Side (1 w / w PDMS, 15) açığaasma sırasıyla 1 dakika ve 3 saniye için bir el korona işlemci tarafından üretilen. </li><li> herhangi bir hava kabarcığı olmadan paralel olarak her parçası koyarak bir konformal temas gözenekli PDMS membran ve üst mikrokanal tabakasının plazma tedavi yüzeyler yerleştirin. </li><li> İki PDMS katmanları geri dönüşümsüz bağlanma 80 ° CO / N de tüm kurulum kuluçkaya yatmaktadır. </li><li> dikkatle destek katmanı köşesini yukarı kaldırarak ve destek tabakası tamamen membran ile üst tabakadan ayrılır kadar soyulması ile bir gözenekli zar ile bir üst tabakanın montaj PDMS destek katmanı soyulabilir. </li><li> içi boş vakum odalarına yapmak için bir ucu ince cımbız kullanarak vakum odaları (ana kanalın iki tarafında yer alan iki bölme) üzerinde bulunan bu zarın kısımlarını koparın. </li><li> i tarif edildiği gibi üst parçası ve aynı şekilde plazma alt parçasının üzerine kazınmış kanallı tarafında takılı membran ile yan Açığan, 1 dakika boyunca 1.1.6 aşama. </li><li> Bir Stereoskop altında herhangi bir hava kabarcığı olmadan paralel olarak her parçası koyarak bir konformal kişiyle gözenekli zar ile üst mikrokanallı katmanı ve alt tabaka hizalayın. </li><li> mikroakışkan hücre kanalına önümüzdeki iki içi boş vakum odaları içeren eksiksiz bir ölçek gut-on-a-chip mikroakışkan cihaz üretmek için 80 ° CO / N kuru bir fırında tüm kurulum Cure. </li></ol></li><li> 90 ° bükülmüş paslanmaz çelik künt uç iğne yoluyla gut-on-a-chip üst veya alt mikrokanallar bağlantılı her port girişine ve çıkışına hortumu bağlayın. </li><li> 90 ° bükülmüş paslanmaz çelik künt uç iğne kullanarak vakum odalarına bağlantılı deliklere hortumu bağlayın. </li><li> Tek kullanımlık şırınga steril 1 ml ile% 70 (h / h) etanol akan mikrokanallar ve tüp sterilize edin. </li><li> 60 ° C kuru fırın O / N mikrokanallar ve boruyu kurur. </li></ol> Microengine 2. BüyümeGut-on-a-chip Aygıt mada kullanılabilir Bağırsak Villi <ol><li> Bir Gut-on-a-chip microdevice 5,9 Tohum Bağırsak Hücrelerine (örn Caco-2BBE). <ol><li> % 70 ile 60 ° C kuru fırında O kurutmayla 1 ml steril bir şırınga kullanılarak (hacim / hacim) etanol (adım 1.4) ürünü sterilize / N yüzey aktivasyonu öncesinde (adım 1.5). </li><li> Bağırsak-on-a-chip Microsystem&#39;ait tam setup Açığa (yani, vücut bağırsak-on-a-chip boru bağlı) aynı anda 40 dakika boyunca UV ışığı (253.7 nm), ve ozona. </li><li> Bir biyo-güvenlik kabini (BSC) UV ışık altında 15 dakika boyunca oda sıcaklığında cihazın soğumasına. </li><li> tek kullanımlık bir ile üst ve alt mikro halinde - I kolajen 50 ug / ml tip ve serumsuz Dulbecco Modifiye Edilmiş Eagle Ortamı (DMEM) içinde seyreltilmiş 300 ng / ml hücre dışı matris karışımı bir karışımı, çözüm ECM kaplamanın 100 ul tanıtılması steril 1 ml şırınga. </li><li> doğmuş iyileşmesini37 ° C&#39;de tüm ayar te 1 saat boyunca% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş. </li><li> Gazını önceden ısıtılmış (37 ° C) tam kültür ortamında (DMEM,% 20, h / h, fetal sığır serumu (FBS), 100 birim / ml penisilin ve 100 ug / ml streptomisin, 50 mi; 3 ml bölünüp 1 dakika için BSC 50 mi filtrasyon sistemi ile (gözenek büyüklüğü 0.45 um) kullanılarak tek kullanımlık şırınga). <ol><li> filtrasyon sistemi ile önceden ısıtılmış orta geçmek ve 1 dakika orta kabarcıkları veya çözünmüş gaz çıkarmak için filtrelenmiş ortamda yavaşça dokunun. </li></ol></li><li> 37 ° C&#39;de 3 ml tek kullanımlık şırınga içinde gazı alınmış tam orta kısım koyun ve inkübe 1 saat boyunca% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş. </li><li> Üst ve alt mikrokanallarla, iki 3 ml&#39;lik tek kullanımlık şırıngalar gazdan arındırılmış içeren önceden ısıtılmış tam kültür ortamı bağlayın. </li><li> hacimsel bir şırınga pompası kullanılarak, üst mikrokanal içinde gazı alınmış tam hücre kültürü ortam akış37 ° C (0.02 din / cm2&#39;de kesme stresi eşdeğer), 30 ul / saat akış hızı ile O / N,% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş. </li></ol></li><li> Gut-on-a-chip içinde Microengineered Caco-2 Villi oluşumu. <ol><li> 50 ile 65 arasında geçiş sayısı ile Caco-2BBE hücreleri kullanır. </li><li> 37 ° C kadar tam kültür ortamı ihtiva eden bir T75 şişesi içinde, Caco-2 hücreleri büyütün tamamen konfluent hücreler elde etmek için 4-5 gün boyunca% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş. </li><li> Tam bir T75 şişesi içinde yetiştirilen birleşen Caco-2 hücreleri, daha sonra, hücrelerin yıkayın PBS dışarı aspire PBS içermeyen 2+ Ca 2 + ve Mg 10 ml ekleyin. İki kez bu adımı yineleyin. </li><li> 37 ° C&#39;de% 0.05 tripsin / EDTA solüsyonu 1 ml ilave edilir ve kuluçkaya 5 dakika boyunca,% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş. </li><li> yukarı pipetleme ve üç beş kez aşağı (FBS) ile önceden ısıtılmış tam hücre kültür ortamı 10 ml ayrışmış hücreleri tekrar süspansiyon. </li><li> c hücre süspansiyonu aşağı Spin5 dakika boyunca 500 xg&#39;de entrifugation sonra supernatant çıkarın. </li><li> Yine 1 ml cihazda ~ 1.5 x 10 5 hücre / cm 2 hücre yoğunluğunu ayarlamak için tam orta önceden ısıtılmış süspanse edin. hücre yoğunluğu tahmin etmek hemasitometre kullanın. </li><li> Üst mikrokanal bağlı boru çıkışına 25 G5 / 8 iğneye bağlanmış bir 1 ml tek kullanımlık şırınga yerleştirilerek üst mikrokanal (lümen taraf) olarak yeniden süspansiyon haline getirildi, Caco-2 hücrelerinin 100 ul infüze. </li><li> bağlayıcı klipleri kullanarak üst ve alt Mikrokanallardaki bağlı tüm giriş ve boru çıkışları kelepçe. </li><li> 1 saat boyunca 37 ° C, nemlendirilmiş bir% 5 CO2 inkübatörü içinde inkübe tüm kurulum gözenekli membran yüzeyine yapışması Caco-2 hücreleri kesilerek izin verilmesi. </li><li> kelepçeleri çıkarın ve hücreleri 24-36 st için sağlam bir tek tabaka oluşturacak kadar bir şırınga pompası kullanılarak, sadece 30 ul / saat üst mikrokanal kültür ortamının akışı devam ettirir. Faz contras kullanınT veya diferansiyel girişim kontrast (DIC) mikroskopi, bir hücre bir tek tabaka hücre-hücre kavşaklar teyit etmek için. </li><li> Hücreler bir tek tabaka oluşturur, 30 ul / saat aynı akış hızında hem üst (lümen) içerisine kültür ortamı ve alt (kılcal tüp) mikrokanallar serpmek. </li><li> Peristaltizmin benzeri hareketleri 5,9 taklit mekanik deformasyonlar uygulanması. <ol><li> gerilim ekipmanları ile donatılmış vakum pompası açın. </li><li> paslanmaz çelik bir konektör ile boru vasıtasıyla vakum kontrolöre elektrik ölçme cihazı. </li><li> Vakum kontrol yazılım üzerinde döngüsel sinüs fonksiyonu modu ile 0.15 Hz frekansta% 10 ortalama hücre suşu germe hareketi ayarlayın ve ardından &quot;Başlat&quot; a tıklayın. </li></ol></li><li> ~ 100 saat için mekanik deformasyonlar altında birleşik Caco-2 tek katman için üst ve alt mikrokanal kültür ortamının sabit akış (30 ul / saat) (% 10, 0.15 Hz) tutun. Not: Caco-2 hücreleri Sponspontan olarak epitel mikrokanal 5,8-10 lümenine doğru uzatılmış dalgalı 3D projeksiyonlar villus morfolojilerinden tabi tutulurlar. </li></ol></li><li> , Gut-on-a-chip 10 lümen-kapiller doku arayüzü ile yaşayan insan bağırsağında organ düzeyinde fonksiyonlarını taklit anlatıldığı gibi adımları izleyin. <ol><li> 2.1 ila 2.2 adımları yineleyerek microengineered Caco-2 villuslar büyütün. </li><li> Önceden ısıtılmış ko-kültür ortam akış (komple Caco-2 hücre kültür ortamı ve tam HMVECs kültür ortamında oluşan bir karışım, 1: 1 hacim / hacim), 30 ul / saat sonra, üst ve alt mikrokanallarla. </li><li> Ayrışmış normal insan kılcal mikrovasküler endotel hücreleri, 100 ul ilave edilmiştir (HMVECs, nihai hücre yoğunluğu, ~ 5.0 x 10 5 hücre / cm2) 2.2.3 den 2.2.9 adımları tarif benzer yöntemle düşük mikrokanalın içine. </li><li> iyileştirilmiş bir dikdörtgen PDMS parça yerleştirin (0.5 cm x 1 cm x 1 cm, genişlik x uzunluk x yükseklik, 15: 1, B/ elastomer w: sertleştirici) gut-on-a-chip cihazının üst kısmındaki, sonra baş aşağı tüm cihaz kurulum çevirmek (), yani üst mikrokanallı olumsuz karşı karşıya ve alt mikrokanal yukarı doğru bakmaktadır. </li><li> Ayrışmış HMVECs düşük mikrokanal gözenekli membran yüzeyine yapışma sağlamak için 1 saat boyunca 37 ° C, nemlendirilmiş bir% 5 CO2 inkübatörü içinde setup inkübe edin. </li><li> CO 2 inkübatör bir bütün kurulum dışarı atın ve tekrar kurulum çevirin. </li><li> mekanik germe hareketleri ile 30 ul / saat, her iki üst ve alt mikro halinde ((1 h / h 1 tam Caco-2 hücre kültür ortamı ve tam HMVECs kültür ortamında oluşan bir karışım), önceden ısıtılmış ko-kültür ortam akış en az üç gün boyunca% 10, 0.15 Hz), endotel tek tabaka hücre-hücre bağlantı yerleri meydana getirmek. </li></ol></li></ol> 3. Bir Gut-on-a-chip microdevice mikrobiyomu Co-kültür Konak-gut <ol><li> o kültür öncesi gerçekleştirinf bakteriyel hücreler microengineered bağırsak villus üzerinde için birlikte kültür ortakçı gut mikrobiyomları aşağıdaki gibi. <ol><li> otoklava Laktobasil MRS bulamacında ve Güçlendirilmiş Klostridial Orta (1, hac / hac 1) karışımın 10 ml dondurularak kurutuldu probiyotik bakteri ve toz halindeki karışımı yeniden süspanse edin. </li><li> 10 ml&#39;lik atılabilir steril bir tüp içinde olan kan daha sonra, mikrobiyal hücre süspansiyonu 3 ml ortam içinde uygun bir miktarının ilave edilmesi ile (600 nm), yaklaşık olarak 0.2 optik yoğunluk birimi nihai hücre yoğunluğu ayarlayın. </li><li> Tüpler anaerobik kap içinde mikrobik hücreler yeniden süspansiyon haline getirilmiş içeren. kap içinde anaerobik gaz üreten poşet iki paket ekleyin. 37 ° C sallayarak olmadan konteyner kurulumu sıkıca konteyner kapağını kapatın ve inkübe% 5 CO 2 inkübatör O / N nemlendirilmelidir. </li></ol></li><li> Bağırsak Hücrelerine 5,10 ile mikrobiyomları ve Co-kültür aşılama. <ol><li> gazı alınmış antibioti ihtiva eden 3 mi atılabilir şırıngalar hazırlanmasıCı içermeyen hücre kültür ortamı (yani,% 20 FBS bulunan DMEM). Kültür ortamının gaz giderme prosedürü için 2.1.6 bakınız. </li><li> CO 2 inkübatör microengineered villuslar içeren gut-on-a-chip cihazının bütün bir kurulum dışarı atın, sonra biyogüvenlik kabini taşıyın. </li><li> Üst ve alt Mikrokanallardaki bağlantılı boru bağlı şırınga çıkarın. Daha sonra, önceki mikrobiyomu tohumlanmasından 12 saat için antibiyotik içermeyen kültür ortamı, akış geri CO2 inkübatör getirmek cihaza 3.2.1 hazırlanan şırınga bağlayın. </li><li> 5 dakika boyunca 10.000 xg&#39;de öncesi kültüre probiyotik bakteri karışımı hücreleri (3.1 adımlara bakın) aşağı doğru döndürün. Vakum kullanılarak süpernatan üzerinden aspire, daha sonra (~, nihai hücre yoğunluğu 1.0 x 10 7 cfu / ml), antibiyotik içermeyen DMEM ortamı içinde yeniden süspanse edin. </li><li> Bir 25 bağlı bir 1 ml tek şırınga kullanarak &quot;germ-free&quot; bağırsak villus içeren Mikrokanallı lümen tarafında içine hücre süspansiyonu demlenmeyeG5 / 8 iğne. için bağırsak villus apikal yüzeyinde mikrobiyal hücrelerin yapışmasını izin ~ tüm boru sonuna kadar sıkma yoluyla akışı olmadan 1.5 saat. </li><li> 40 ul / siklik ritmik deformasyonlarla saat (% 10, 0.15 Hz), her iki üst ve alt mikro içine önceden ısıtılmış antibiyotik içermeyen kültür ortamı serpmek. </li><li> Yeşil floresan protein ko-kültürü (GFP) E. -etiketli için E. coli (GFP E.coli, Sigara patojenik DH5-Alpha E. Coli konak) microengineered villus ile 10,11 hücreleri, ön yetiştirmek GFP E. 12 saat boyunca durum (200 rpm) çalkalama altında 37 ° C&#39;de otoklavda muamele LB ortamında coli hücreleri. GFP E. co-kültür yürütmek için 3.2.5 den 3.2.6 için prosedürü tekrarlayın microengineered villi olan E. coli hücreleri. </li></ol></li><li> Görüntü Hücreler 5,8-10 <ol><li> Mikrobik ve epitel morfolojisi 5,8,10 kayıt için DIC, Epifloresans veya lazer tarama konfokal mikroskopi gerçekleştirin. <ol><li> DIC görüntüleme için CO 2 inkübatör gut-on-a-chip Mikrosistem bir kurulum çıkarmak mikroskop sahnede cihaz kurulumu koyun, daha sonra hücre morfolojisi kaydedin. </li><li> villus epitel flüoresan görüntüleme için, 10 dakika boyunca 100 ul / saat hücreleri yıkamak için PBS akar. <ol><li> % 4, 15 dakika boyunca (ağırlık / hacim) paraformaldehid villi sabitleyin. Daha sonra 10 dakika boyunca 100 ul / saat hücreleri yıkamak için PBS akar. </li><li> % 0,3 ile villi geçirgenliği (h / h) Triton X-100, PBS, 10 dakika boyunca büyükbaş hayvan serum albümini (BSA) (ağ / hac)% 2 ihtiva eden seyreltilmiştir. Daha sonra 10 dakika boyunca 100 ul / saat hücreleri yıkamak için PBS akar. </li><li> % 2 blok hücreler 1 saat süreyle PBS içinde BSA çözeltisi (w / v). Daha sonra 10 dakika boyunca 100 ul / saat hücreleri yıkamak için PBS akar. </li><li> 4 300 nM &#39;ışık koruması altında nükleer boyama süreyle PBS içinde seyreltilmiş 6-diamidino-2-fenilindol dihidroklorür (DAPI) çözeltisi ekleyin. </li><li> floresan Phalloidin 25 ünite / ml ekleIşık koruma altında F-aktin boyanması için PBS içinde çözülmüş (Phalloidin-CF647 konjuge). </li><li> Bir lazer tarama konfokal mikroskop kullanılarak floresan lekeli hücrelerin rekor görüntüler. Not: Bir 25X objektif konfokal mikroskopi sırasında uygun optik zoom ile uygulanmıştır. Şekil 3B&#39;de, yaklaşık 525X büyütme kullanılmıştır. </li></ol></li></ol></li></ol></li></ol>

<ol><li>Turnbaugh, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+obesity-associated+gut+microbiome+with+increased+capacity+for+energy+harvest%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest.</a> Nature. 444, 1027-1031 (2006).</li>
<li>Tremaroli, V., Backhed, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+interactions+between+the+gut+microbiota+and+host+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional interactions between the gut microbiota and host metabolism.</a> Nature. 489, 242-249 (2012).</li>
<li>Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C. M., Brett Finlay, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gut+Microbiota+in+Health+and+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Gut Microbiota in Health and Disease.</a> Physiol. Rev. 90, 859-904 (2010).</li>
<li>Turnbaugh, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+microbiome+project%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The human microbiome project.</a> Nature. 449, 804-810 (2007).</li>
<li>Kim, H. J., Huh, D., Hamilton, G., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+gut-on-a-chip+inhabited+by+microbial+flora+that+experiences+intestinal+peristalsis-like+motions+and+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow.</a> Lab Chip. 12, 2165-2174 (2012).</li>
<li>Round, J. L., Mazmanian, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+gut+microbiota+shapes+intestinal+immune+responses+during+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The gut microbiota shapes intestinal immune responses during health and disease.</a> Nat Rev Immunol. 9, 313-323 (2009).</li>
<li>Garrett, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Communicable+ulcerative+colitis+induced+by+T-bet+deficiency+in+the+innate+immune+system%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Communicable ulcerative colitis induced by T-bet deficiency in the innate immune system.</a> Cell. 131, 33-45 (2007).</li>
<li>Kim, H. J., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gut-on-a-Chip+microenvironment+induces+human+intestinal+cells+to+undergo+villus+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Integr+Biol%22%5BJournal%5D)">Gut-on-a-Chip microenvironment induces human intestinal cells to undergo villus differentiation.</a> Integr Biol. 5, 1130-1140 (2013).</li>
<li>Huh, D., Kim, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabrication+of+human+organs-on-chips%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Microfabrication of human organs-on-chips.</a> Nat Protoc. 8, 2135-2157 (2013).</li>
<li>Kim, H. J., Li, H., Collin, J. J., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contributions+of+microbiome+and+mechanical+deformation+to+intestinal+bacterial+overgrowth+and+inflammation+in+a+human+gut-on-a-chip%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Contributions of microbiome and mechanical deformation to intestinal bacterial overgrowth and inflammation in a human gut-on-a-chip.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 113, E7-E15 (2016).</li>
<li>Miller, W. G., Lindow, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+GFP+cloning+cassette+designed+for+prokaryotic+transcriptional+fusions%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">An improved GFP cloning cassette designed for prokaryotic transcriptional fusions.</a> Gene. 191, 149-153 (1997).</li>
<li>Odijk, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+direct+current+trans-epithelial+electrical+resistance+in+organ-on-a-chip+microsystems%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Measuring direct current trans-epithelial electrical resistance in organ-on-a-chip microsystems.</a> Lab Chip. 15, 745-752 (2015).</li>
<li>Lentle, R. G., Janssen, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+characteristics+of+digesta+and+their+influence+on+flow+and+mixing+in+the+mammalian+intestine%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Physiol+B%22%5BJournal%5D)">Physical characteristics of digesta and their influence on flow and mixing in the mammalian intestine: a review.</a> J Comp Physiol B. 178, 673-690 (2008).</li>
<li>Granato, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface-associated+lipoteichoic+acid+acts+as+an+adhesion+factor+for+attachment+of+Lactobacillus+johnsonii+La1+to+human+enterocyte-like+Caco-2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Cell surface-associated lipoteichoic acid acts as an adhesion factor for attachment of Lactobacillus johnsonii La1 to human enterocyte-like Caco-2 cells.</a> Appl Environ Microbiol. 65, 1071-1077 (1999).</li>
<li>Dewhirst, F. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+oral+microbiome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">The human oral microbiome.</a> J Bacteriol. 192, 5002-5017 (2010).</li>
<li>Grice, E. A., Segre, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+skin+microbiome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The skin microbiome.</a> Nat Rev Microbiol. 9, 244-253 (2011).</li>
<li>Hay, P. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+bacterial+colonisation+of+the+genital+tract+and+subsequent+preterm+delivery+and+late+miscarriage%5BTitle%5D)+AND+%22Br+Med+J%22%5BJournal%5D)">Abnormal bacterial colonisation of the genital tract and subsequent preterm delivery and late miscarriage.</a> Br Med J. 308, 295-298 (1994).</li>
</ol>

Donald E. Ingber, Emulate Inc.'in kurucusudur, şirkette hisse sahibidir ve Bilimsel Danışma Kurulu'na başkanlık etmektedir. Diğer yazarların herhangi bir mali açıklaması bulunmamaktadır.

konak-mikrobiyomları etkileşimleri anlamak tıp ilerleyen için kritik öneme sahiptir; mikrobiyal hücreler, çok in vitro memeli hücreleri aşırı büyütmesi Ancak, plastik bir kaba veya bir statik oyuklu bir plaka içerisinde gerçekleştirilebilir, geleneksel hücre kültürü modelleri fazla 1-2 gün bağırsak mikrop yaşayan insan bağırsak hücrelerinin kararlı ko-kültür desteklemez. Overgrowing mikrobiyal popülasyon hızlı, daha sonra ciddi şekilde intestinal bariyer fonksiyonları aşmasına ve intestinal epitelyal hücre ölüm...

İnsan bağırsak mikrobiyal türlerin şaşırtıcı çeşitli bir dizi (&lt;1.000 tür) ve muazzam bir mikrobiyal hücrelerin sayısını (insan konakçı hücrelere göre 10 kat daha fazla) ve gen (insan genomu 100 kat daha fazla) 1 barındırır. Bunlar insan microbiomes, besin ve xenobiotik metabolize bağışıklık tepkilerini düzenleyen ve intestinal homeostasis 2 korumada önemli bir rol oynamaktadır. Beklendiği gibi, bu farklı fonksiyonlar verilmiş, ortakçı bağırsak mikrobiyomları yoğun sağlık ve hastalık 3 modüle eder. Böylece, bağırsak mikrobiyomları ve konak-mikrop etkileşimlerinin rolünü anlamak gastrointestinal (GI) sağlığı teşvik ve bağırsak bozuklukları 4 için yeni tedavi ajanlarının keşfetmek için büyük önem taşımaktadır. Bununla birlikte, nitro bağırsak modellerinde (örneğin, statik kültürler) mevcut kısa bir süre (&lt;1 gün) mikrobiyal hücreleri aşırı büyütmesi ve bağırsak bariyeri tehlikeye çünkü ana-mikrobiyomları ko-kültür kısıtlamafonksiyonu 5. Yedek hayvan modelleri (örn mikropsuz 6 ya da genetik mühendisliği farenin 7), genel olarak kolonizasyon ve insan bağırsak mikrobiyomu stabil bakımı zordur, çünkü ana-bağırsak mikrobiyomları karışma çalışma için kullanılmaz. Bu zorlukların üstesinden gelmek için, biz son zamanlarda yaşayan insan bağırsağında meydana gelen 5,8 konak-bağırsak mikrobiyomları etkileşimleri taklit &quot;Gut-on-a-Chip&quot; microphysiological sistemi (sol Şekil 1A) bir biomimetic insan geliştirdi. Gut-on-a-chip mikrovasıta esnek, gözenekli, hücre dışı matrisin (ECM) insan bağırsak epitel Caco-2 hücreleri ile kaplı -kaplı membran, bağırsak lumen kapiler doku arabirimi (Şekil 1A taklit mesafeyle ayrılmış iki paralel mikroakışkan kanal içerir sağ) 9. Vakum odaklı halkalı ritmik deformasyonlar normalde induc değişiklikleri taklit fizyolojik mekanik deformasyonlara neden(sağ Şekil 1A) peristaltizm ile ed. İlginç bir şekilde, Caco-2 hücreleri 100&#39;den saat bağırsak-on-a-çipte yetiştirilen, kendiliğinden sıkış kesişmeler, apikal fırça sınır bazal kript sınırlı proliferatif hücreleri ile üç boyutlu (3D), bağırsak villi oluşturur, mukus üretimi, artan ilaç metabolize aktivite (örneğin, sitokrom P450 3A4, CYP3A4) ve geliştirilmiş glukoz alım 8. Bu &#39;mikropsuz&#39; mikro olarak, probiyotik Lactobacillus rhamnosus GG veya en fazla iki hafta içinde 5,10 host epitel hücreleri ile bir probiyotik bakteri karışımının terapötik oluşumu için ortak-kültür mümkündü. Bu çalışmada, bir süre için bağırsak-on-a-yongalara ana bilgisayar bağırsak mikrobiyomları ko-kültür gerçekleştirmek için ayrıntılı protokol açıklar. Ayrıca, kritik konuları ve potansiyel zorlukları tartışmak bu konak-mikrobiyomları ko-kültür p geniş bir uygulama için dikkat edilmesi gerekenrotocol.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco'nun 25 mM glikoz ve 25 mM HEPES</td><td>Gibco</td><td>10564-011</td> içeren Modifiye Eagle Medium'u (DMEM) <td>37 ° C'de ısıtın; Bir su banyosunda C.</td></tr><tr><td>Difco Lactobacilli MRS et suyu</td><td>BD</td><td>288120</td><td>Otoklavı 121 ° C'de çalıştırın; 15 dakika boyunca C.</td></tr><tr><td>Poli (dimetilsiloksan)</td> <td>Dow Corning</td><td>3097358-1004</td><td>15: 1 (a/a), PDMS: iyileştirici ajan</td></tr><tr><td>Caco-2BBE insan kolorektal karsinom hattı</td><td>Harvard Sindirim Hastalıkları Merkezi</td><td></td><td>İnsan kolorektal adenokarsinomu&nbsp;</td></tr><tr><td>Isı ile inaktive edilmiş FBS</td><td>Gibco</td><td>10082-147</td><td>DMEM'de %20 (h/h)</td></tr><tr><td>Penisilin-streptomisin-glutamin</td><td>Gibco</td><td>10378-016</td> DMEM 4&prime;,6-Diamidino-2-fenilindol dihidroklorürde <td>1/100 seyreltme</td></tr><tr><td></td><td>Moleküler Problar</td><td>D1306</td><td>Çekirdek boyama</td></tr><tr><td>Phalloidin-CF647 konjugat (25 birim / ml)</td> <td>Biotium</td><td>00041</td><td>F-aktin boyama</td></tr><tr><td>Flexcell FX-5000 gergi sistemi</td><td>Flexcell International Corporation</td><td>FX5K</td><td>Peristalsis benzeri gerilme hareketi (%10 hücre gerilmesi, 0,15 Hz frekans)</td></tr><tr><td>Ters epifloresan mikroskobu</td><td>Zeiss</td><td>Axio Observer Z1</td><td>Görüntüleme, DIC</td></tr><tr><td>Taramalı konfokal mikroskop</td><td>Leica</td><td>DMI6000</td><td>Görüntüleme, Floresan</td></tr><tr><td>UVO Temizleyici</td><td>Jelight Company Inc</td><td>342</td><td>Bağırsak çipi</td></tr><tr><td>Tip I kollajenin yüzey aktivasyonu&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>A10483-01</td><td>Çip içine hücre kültürü için hücre dışı matris bileşeni</td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD</td><td>354234</td><td>Çip içine hücre kültürü için hücre dışı matris bileşeni</td></tr><tr><td>1 ml tek kullanımlık şırınga</td><td>BD</td><td>309628</td><td>Hücre ve ortam enjeksiyon malzemeleri</td></tr><tr><td>25 G 5/8 iğne</td><td>BD</td><td>329651</td><td>Hücre ve ortam enjeksiyon malzemeleri</td></tr><tr><td>Şırınga pompası</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>BS-8000</td><td>Çip içine enjeksiyon ekipmanı</td></tr><tr><td>VSL # 3</td><td>Sigma-Tau İlaç</td><td>7-45749-01782-6</td><td>8 farklı kommensal bağırsak mikroplarının bir formülasyonu</td></tr><tr><td>Takviyeli Clostridial Ortam</td><td></td><td>BD 218081</td><td>Anaerobik bakteri kültürü ortamı</td></tr><tr><td>GasPak EZ Anaerobik Konteyner Sistemi Göstergeli</td><td>BD</td><td>260001</td><td>Anaerobik gaz üreten poşet&nbsp;</td></tr><tr><td>% 4 paraformaldehit</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimi</td><td>157-4-100</td><td>Hücrelerin boyanması için sabitlenmesi</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Hücrelerin geçirgenliği</td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7030</td><td>Hücrelerin boyanması için bloke edici ajan</td></tr><tr><td>Korona işleyici</td><td>Elektro-Teknik Ürünler</td><td>BD-20AC</td><td>Çip üretimi için plazma jeneratörü</td></tr><tr><td>Steriflip&nbsp;</td><td>Millipore</td><td>SE1M003M00</td><td>Tüm kültür ortamının gazdan arındırılması</td></tr><tr><td>Tek kullanımlık hemositometre</td><td>iNCYTO</td><td>DHC-N01</td><td>Manuel hücre sayımı için</td></tr></tbody></table>

içinde microengineered İnsan bağırsak villi oturma mikrobiyomu co-kültür, bir gut-on-a-chip mikroakışkan aygıt

Co-culture of Living Microbiome with Microengineered Human Intestinal Villi in a Gut-on-a-Chip Microfluidic Device

Burada, bir insan bağırsak-on-a-chip microphysiological cihazda microengineered bağırsak villi çoklu tür uzun süreli ko-kültür, insan bağırsak mikrobiyomları gerçekleştirmek için bir protokol açıklar. Biz fizyolojik, mekanik deformasyonlar ve sıvı kayma akışı sürekli peristalsis taklit uygulanır mikroakışkan bir cihaz, bağırsak lümen-kapiller doku arayüzü özetlemek. Lümen mikrokanal olarak, insan bağırsak epitel Caco-2 hücreleri, bir &#39;mikropsuz&#39; villus epitel oluşturulması ve ince bağırsak villi yeniden oluşturmak için kültürlenmiştir. Önceden kültürlenmiş mikrobik hücreler, bir konak-mikrop ekosistem kurmak için lümen tarafına aşılanır. mikrobiyal hücreler villi apikal yüzeyine yapışmasını sonra sıvı akışı ve mekanik deformasyonlar bir kalıcı-hal, taze kültür vasatı sürekli olarak tedarik edildiği mikro-ve bağlanmamış bakterileri (bakterial atıklar) sürekli kaldırılır üretilmesi için devam edilir. Genişletilmiş ko-kültür f sonrasıhaftaya ROM gün birden mikrokoloniler rastgele tüyleri arasında yer tespit edilmiştir ve mikrobik ve epitel hücreleri hem de kültür içinde, en az bir hafta boyunca sürekli ve işlevsel kalır. Bizim eş-kültür protokolü sağlık ve hastalık olayını insan mikrobiyomu rolü in vitro çalışmada kolaylaştırabilir çeşitli insan organ bulunabilir diğer host-mikrobiyomları ekosistemlere için çok yönlü bir platformu sağlamak için adapte edilebilir.

In vitro olarak insan bağırsak ana-mikrobiyomları ekosistem taklit etmek için, bunun gerektiğinde bu peristalsis gibi mekanik ve sıvı akışı gibi, fizyolojik koşullar altında bağırsak bakteri ve insan bağırsak epitel hücrelerinin istikrarlı, uzun vadeli ko-kültür tekrar oluşturmak için bir deney protokolü geliştirmektir. Burada, bir biomimetic gut-on-a-chip microdevice kullanmak (Şekil 1A), in vitro olarak bir hafta boyunca...

Biz, insan bağırsak-on-a-chip microphysiological sistemi kullanılarak uzun bir süre için bir in vitro protokole ko-kültür bağırsak mikrobiyomları ve bağırsak villi açıklar.

içinde Microengineered İnsan Bağırsak Villi Oturma mikrobiyomu Co-kültür, bir Gut-on-a-Chip mikroakışkan Aygıt

Here, we describe a protocol to perform long-term co-culture of multi-species human gut microbiome with microengineered intestinal villi in a human ...

Bu protokolün genel amacı, bir bağırsak-çip (gut-on-a-chip) mikroakışkan cihazında, peristaltik benzeri hareketler ve akış altında insan intestinal hücrelerinin villus büyümesini göstermek ve bu hücrelerin canlı bağırsak mikrobiyomu ile nasıl birlikte kültüre edileceğini ortaya koymaktır. Bu yöntem; hastalık mekanizmalarının belirlenmesi ve yeni ilaç bileşiklerinin etkinliğinin ve toksisitesinin doğrulanması amacıyla gastroenteroloji, klinik mikrobiyoloji ve farmasötik bilimler alanındaki temel sorulara yanıt olmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, araştırmacıların bir mikrofizyolojik sistem kullanarak, insan canlı bağırsağının yaşayabilir ve fonksiyonel post-mikrobiyom ekosistemini in vitro ortamda kurabilmeleridir.Konak hücrelerin mikrobiyomla kararlı bir şekilde birlikte kültüre edilmesi bu hastalıkların karmaşıklığını taklit edebildiği için, bu tekniğin etkileri ülseratif kolit veya Crohn hastalığı gibi hastalıklara kadar uzanabilir. Bu yöntem, bağırsak mikrobiyomu ile bağırsaktaki bağışıklık sistemi arasındaki karmaşık etkileşimlere dair bir içgörü sağlayabilse de, deri, genital kanal veya ağız boşluğu gibi konak-mikrop etkileşimlerinin olduğu diğer organ sistemlerine de uygulanabilir. Başlamak için, beraberindeki metin protokolünde açıklandığı şekilde bağırsak-on-a-chip mikroakışkan cihazını hazırlayın.Cihaz, esnek ve gözenekli bir PDMS membran ile ayrılmış iki paralel mikrokanal içeren şeffaf, gaz geçirgen bir silikon polimerden oluşur. Kanalların her iki yanında, döngüsel mekanik gerinim uygulamak için kullanılabilecek vakum odaları bulunur. Kanallardan %70 etanol akıtmak için bir mililitrelik bir şırınga kullanarak cihazı sterilize edin.Ardından, cihazı 60 °C'lik bir kurutma fırınında gece boyunca kurutun. Ertesi gün, bağırsak-çip (gut-on-a-chip) mikro sistemini, bağlı tüpleriyle birlikte, 40 dakika boyunca eş zamanlı olarak UV ışığına ve ozona maruz bırakın. Cihazı, bir biyogüvenlik kabininin UV ışığı altında 15 dakika boyunca soğutun.Ardından, 100 µL hücre dışı matris kodlama çözeltisini bir mL'lik bir şırıngaya yükleyin ve cihazın üst mikrokanalına aktarın. Alt mikrokanalı da kaplamak için bu işlemi tekrarlayın. Tüm düzeneği bir saat boyunca 37 °C sıcaklıktaki nemlendirilmiş %5CO2 inkübatörüne yerleştirin.İnkübasyon sırasında, önceden ısıtılmış tam kültür ortamını 50 mililitrelik bir filtrasyon sisteminde 0,45 mikronluk bir filtreden bir dakika boyunca geçirerek gazdan arındırın. Ortamdaki kabarcıkları veya çözünmüş gazları gidermek için filtrelenmiş ortamın üzerine bir dakika boyunca nazikçe vurun. Ardından, gazı alınmış tam ortamı iki adet üç mililitrelik tek kullanımlık şırıngaya aktarın ve şırıngaları bir saat boyunca inkübe edin.Ardından, şırıngaları gut-on-a-chip cihazının üst ve alt mikrokanallarına bağlayın ve üst ile alt mikrokanallara nazik darbelerle komple besiyeri akıtarak kodlama solüsyonunu yıkayın. Daha sonra, çipi gece boyunca 37 °C ve %5 CO2 ortamında inkübe ederken, gazı alınmış komple hücre kültür besiyerini bir şırınga pompası kullanarak cihazın üst mikrokanalına akıtın. Caco-2 intestinal epitel hücreleri içeren tam konfluansla dolmuş bir T75 flaskını, önce hücreleri 10 mL kalsiyum ve magnezyum içermeyen PBS ile durulayarak hasat edin.Ardından, PBS'yi aspire edin ve durulama işlemini iki kez daha tekrarlayın. Sonra, bir mililitre %0,05 Trypsin-EDTA çözeltisi ekleyin ve flaskı 37 °C'de beş dakika boyunca inkübe edin. Hücreler ayrıldığında, 10 mililitre önceden ısıtılmış tam hücre kültürü medyumu ekleyin ve hücre süspansiyonunu bir santrifüj tüpüne aktarmadan önce pipetle üç ila beş kez aşağı yukarı çekerek karıştırın.Hücre süspansiyonunu santrifüjleyerek çöktürün. Ardından, süpernatantı uzaklaştırın ve hücreleri önceden ısıtılmış kompleli ortamda santimetrekare başına 150.000 hücre olacak şekilde yeniden süspande edin. Hücre süspansiyonundan 500 µL miktarını, 25-gauge, 5/8-inç iğne takılmış bir mililitrelik tek kullanımlık bir şırıngaya çekin.Ardından, hücre süspansiyonunun 100 µL'sini çıkış borusu aracılığıyla üst mikrokanala aktarın. Sonrasında, üst ve alt mikrokanallara bağlı tüm giriş ve çıkışları mandal klipsler kullanarak kapatın. Bağırsak epitel hücrelerinin gözenekli membranın yüzeyine tutunmasını sağlamak için tüm düzeneği bir saat boyunca inkübe edin.Ardından, klempleri çıkarın ve üst kanal borusunu, bir şırınga pompasına yerleştirilmiş kültür ortamı dolu bir şırıngaya bağlayın. Hücreler sağlam bir monotabaka oluşturana kadar, üst mikrokanala saatte 30 µL hızında kültür ortamı akışını yeniden başlatın. Hücreler monotabaka oluşturduğunda, alt kanalı ikinci şırıngaya bağlayın ve hem üst lümen hem de alt kapiller mikrokanallara saatte 30 µL aynı akış hızında kültür ortamı perfüze edin.Çipte peristaltik benzeri bir hareket oluşturmak için öncelikle vakum pompasını çalıştırın. Cihazın vakum odalarını, paslanmaz çelik konnektörlü tüpler aracılığıyla vakum kontrolörüne bağlayın. Ardından, kontrolörü ortalama hücre geriniminin %10'u oranında, 0.15 Hertz frekansında döngüsel bir sinüs germe hareketi sağlayacak şekilde ayarlayın ve başlat'a tıklayın.Villus büyümesini teşvik etmek için mekanik deformasyonlar eşliğinde, hem üst hem de alt mikrokanallara kültür ortamı akışını en az 80 saat boyunca sürdürün. Otoklavlanmış Lactobacilli MRS Broth ve Reinforced Clostridial Medium'dan %50/50 oranında bir karışım hazırlayın. Ardından, dondurularak kurutulmuş probiyotik bakteri karışımını 10 ml'lik bu karışım içerisinde yeniden süspande edin.Karışımın optik yoğunluğunu 600 nanometrede ölçün ve nihai hücre yoğunluğunu yaklaşık 0,2 optik yoğunluk birimine ayarlayın. Ayarlanmış mikrobiyal hücre süspansiyonundan üç mililitrelik porsiyonları tek kullanımlık 10 mililitrelik steril tüplere paylaştırın. Porsiyonları anaerobik bir kaba yerleştirin ve kabın içine iki paket anaerobik gaz üreten saşe ekleyin.Konteyner kapağını sıkıca kapatın ve konteyner düzeneğini sallamadan bir inkübatörde gece boyunca inkübe edin. Ardından, gazı alınmış antibiyotiksiz hücre kültürü besiyeri hazırlayın ve bunu üç mililitrelik tek kullanımlık şırıngalara doldurun. Mikro-mühendislik ürünü villusları içeren gut-on-a-chip cihazını biyogüvenlik kabinine aktarın.Cihazın üst ve alt mikrokanallarına bağlı olan şırıngaları çıkarın ve bunları gazı alınmış antibiyotiksiz hücre kültür besiyeri içeren şırıngalarla değiştirin. İşlem tamamlandığında, cihazı tekrar CO2 inkübatörüne yerleştirin. Ardından, mikrobiyomu yerleştirmeden önce antibiyotiksiz kültür besiyerini 12 saat boyunca cihazdan akıtın.Ardından, önceden kültürlenmiş probiyotik bakteriyel hücre karışımını santrifüjle çöktürün. Süpernatantı aspire edin, ardından bakterileri antibiyotiksiz DMEM içinde yeniden süspanse edin. Bu hücre süspansiyonundan yaklaşık 100 µL'yi, 25-gauge, 5/8-inç iğne takılı bir mililitrelik şırıngaya yükleyin.Bakterileri, daha önce mikrop içermeyen bağırsak villuslarının bulunduğu mikrokanalın lümen tarafına infüze edin. Boruları kıstırarak akışı durdurun ve mikrobiyal hücrelerin bağırsak villuslarının apikal yüzeyine yapışması için bir buçuk saat bekleyin. Ardından, önceden ısıtılmış antibiyotiksiz kültür ortamını, döngüsel ritmik deformasyonlar eşliğinde, hem üst hem de alt mikrokanallara saatte 40 µL hızla perfüze edin.Bu ko-kültür protokolü, intervillöz boşlukta birden fazla probiyotik bakteri türünün stabil kolonizasyonuna olanak tanır. Canlı bakteriyel mikro-koloniler, ko-kültürde iki haftaya kadar korunabilir. Burada, hem GFP işaretli E.coli hem de intestinal villi içeren farklı bir ko-kültür gösterilmektedir.Yüksek güçlü büyütme, 72. saatteki bakteriyel mikro kolonilerin konumunu net bir şekilde göstermektedir. Bu prosedürü uygularken, kültürün erken aşamalarında epitel hücre tek tabakasının zarar görmesini önlemek için kültür ortamının mikroakışkan kanallara nazikçe ve yavaşça enjekte edilmesini hatırlamak önemlidir. Bu yönteme dayanarak, insan bağışıklık hücreleri ile yapılan bir ko-kültür yöntemi, mikrobiyomun bağışıklık sistemiyle nasıl etkileşime girebileceği ve intestinal sağlığın optimum homeostazı üzerindeki etkileri konusunda da bazı ipuçları sağlayabilir.Bu videoyu izledikten sonra, insan bağırsağının mikro çevresinin nasıl yeniden oluşturulacağı ve mikrobiyom ile insan bağırsak villuslarının in vitro ko-kültürünün nasıl gerçekleştirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Patojenik bakteriler ve insan hücreleri ile çalışmak son derece tehlikelidir, bu nedenle biyogüvenlik kabini içinde çalışmayı unutmayın.

co-culture-living-microbiome-with-microengineered-human-intestinal

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu videoda, fare bağırsak dokusu parçaları ile spesifik bağırsak bakterileri arasındaki etkileşimleri incelemek için bir ex vivo bağırsak organ kültürü sistemi kurma metodolojisini açıklıyoruz. Cihaz, ilki bağırsak dokusu lümenini birbirine bağlayan ve içine spesifik bakteri süspansiyonunu sağlayan ve ikincisi ex vivo doku canlılığını korumak için cihazın kuyularına sürekli olarak ortam sağlayan iki çift giriş-çıkış portundan oluşur.

Konak-mikrobiyota etkileşimlerini incelemek için bir ex vivo bağırsak organ kültürü sistemi

Burada, birincil hücreleri, doku modellerini ve punch biyopsilerini 28 güne kadar mikroakışkan çok organlı bir çipte kokültür yapmak için bir protokol sunuyoruz. İnsan dermal mikrovasküler endotel hücreleri, karaciğer agregatları ve deri biyopsileri ortak bir besiyeri dolaşımında başarılı bir şekilde birleştirildi.

Çok organ Chip - Uzun vadeli Çok doku kokültürü için mikroakışkan Platformu

Burada, fizyolojik şartlarda mide bağırsak, taklit Biyoreaktörler bir dizi kullanarak gut microbiota kolon tüp bebek, kültür için bir iletişim kuralı mevcut.

Uygulama gelişmiş teknoloji insan Gut Microbiota Eğitim Kültür Vitro

Burada, mikromakine mikroakışkan bir platform kullanarak üç boyutlu basitleştirilmiş ve farklılaşmamış bir cilt modeli oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Paralel akış yaklaşımı, hepsi şırınna pompaları tarafından kontrol edilen, üstteki epitel hücrelerinin tohumlaması için bir dermal bölmenin yerinde birikmesini sağlar.

Mikromakine Mikroakışkan Platformda Basitleştirilmiş Üç Boyutlu Çip Üzerinde Cilt Modeli Üretimi

Bu makale, ex vivo deneyleri için yeni bir bağırsak organ kültürü sistemi kullanarak konak mikrobiyom etkileşimlerini analiz etmek için benzersiz bir yöntem salamaktadır.

Konak-Mikrobiyota Etkileşimlerini Analiz Etmek için Bağırsak Bağırsak Organ Kültürü Sistemi

Biyopsi kaynaklı intestinal organoidler ve çip üzerinde organ teknolojileri, bölgeye özgü bağırsak işlevselliğini özetlemek için mikrofizyolojik bir platformda birleştirilir.

Bağırsak Bölgesine Özgü İşlevselliği Modellemek için İnsan Organoidlerini ve Çip Üzerinde Organ Teknolojisini Birleştirme

neuroHuMiX, proksimal ve temsili ko-kültür koşulları altında bakteriyel, epitelyal ve nöronal hücrelerin etkileşimlerini incelemek için gelişmiş bir çip üzerinde bağırsak modelidir. Bu model, bağırsak mikrobiyomu ile sinir sistemi arasındaki iletişimin altında yatan moleküler mekanizmaların çözülmesini sağlar.

Bağırsak Mikrobiyom-Sinir Sistemi Eksenini İncelemek için Çip Üzerinde Bağırsak Modeli

Bu protokol, hastalık patogenezine yönelik mekanik çalışmalar için kullanılabilen bir in vitro nekrotizan enterokolit (NEC) modelini açıklar. İnsan yenidoğan bağırsağından, endotel hücrelerinden ve şiddetli NEC'li bir yenidoğanın bağırsak mikrobiyomundan türetilen bağırsak enteroidleri ile tohumlanmış bir mikroakışkan çipe sahiptir.

İnsan Yenidoğan Bağırsak Enteroidlerini ve Disbiyotik Mikrobiyomu İçeren Nekrotizan Enterokolitin Mikroakışkan Modeli

Köpek bağırsak organoidlerinin ve bir Çip Üzerinde Bağırsak mikroakışkan sisteminin entegrasyonu, insan bağırsak hastalıkları için ilgili translasyonel modeller sunar. Sunulan protokoller, bağırsağın 3D morfogenezine ve dinamik in vitro modellemesine izin vererek, köpeklerde ve insanlarda Tek Sağlık ile bağırsak hastalıkları için etkili tedavilerin geliştirilmesine yardımcı olur.

İnflamatuar Bağırsak Hastalığı Hastalarından Türetilen Bağırsak Organoidleri Kullanılarak Çip Üzerinde Köpek Bağırsağında Üç Boyutlu Morfogenez

Bu makale, mikroaerofilik koşullar altında canlı bir vajinal mikrobiyom ile insan konakçı etkileşimlerinin incelenmesini sağlayan bir mikroakışkan çip üzerinde vajina (Vajina Çipi) kültür cihazı oluşturmak için bir protokolü açıklamaktadır. Bu çip, vajinal hastalıkları araştırmak ve potansiyel terapötik karşı önlemleri geliştirmek ve test etmek için bir araç olarak kullanılabilir.

Bir İnsan Çip Üzerinde Vajinada Sağlıklı ve Disbiyotik Vajinal Mikro Ortamların Modellenmesi

Ayrıntılı protokolümüz, insan bağırsak mukozasını 3D yapılar ve çeşitli hücre tipleri ile simüle eden, mikrobiyal kolonizasyona yanıt olarak bağışıklık tepkilerinin ve hücresel fonksiyonların derinlemesine analizini sağlayan gelişmiş çip üzerinde bağırsak modelinin oluşturulmasını ve kullanımını özetlemektedir.

Bağırsak mukozal bağışıklık tepkilerini analiz etmek için immünokompetan çip üzerinde bağırsak modeli

Keşfedin bağırsak mikrobiyomu ve insan bağırsak hücrelerinin gut-on-a-chip mikroakışkan cihazda ko-kültür yöntemini. Bu teknik, gastroenteroloji ve ilaç geliştirme araştırmalarında hastalık mekanizmalarını anlamak için kullanılır.

içinde Microengineered İnsan Bağırsak Villi Oturma mikrobiyomu Co-kültür, bir Gut-on-a-Chip mikroakışkan Aygıt

Daha fazla video keşfet