Name: İnsan Melanom tümör-süzücü lemfositler ile ilgili uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Öğrenin, melanom tümör-süzücü lenfositlerden uyarılmış pluripotent kök hücre üretimi yöntemini. Bu teknik, kanser immünoterapisinde sınırsız T hücresi sağlayarak metastatik melanom tedavisinde yeni olanaklar sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Michigan Üniversitesi Doku Tedarik Çekirdeği'nden Bayan Deborah Postiff ve Bayan Jackline Barikdar'a ve Michigan Üniversitesi Pluripotent Kök Hücre Çekirdeği Laboratuvarı'ndan Dr. Cindy DeLong'a teknik yardımları için teşekkür ederiz. Bu çalışma, Michigan Üniversitesi başlangıç finansmanı ve Central Surgical Association, American College of Surgeons, Melanoma Research Alliance ve NIH/NCI (1K08CA197966-01) tarafından F. Ito'ya verilen hibeler tarafından desteklenmiştir.

NOT: Hastalar Hücre Komitesi çalışmayı onayladı Kök Kurumsal Değerlendirme Kurulu ve insan pluripotent katılmak için bilgilendirilmiş onam vermelidir. 1. İzolasyon ve Kültürü TILS <ol><li> patoloji servisi / doku tedarik çekirdekten histopatolojik tanı için gerekli değildir tümör materyal elde. 30 mi, tümör toplama ortamı (Tablo 1) 50 ml bir tüp içinde tümör numunelerinin 20-100 g yerleştirin. </li><li> Katı, sert, makas kullanarak kırılgan ve / veya kanlı nekrotik alanlar tümör örneğinin normal doku teşrih. nekrotik doku çıkarıldıktan sonra, mümkün olduğu kadar küçük örnek kıymaya makas kullanın. </li><li> üreticinin talimatlarına göre bir ayıracı ve tümör ayrılma kiti (insan) ile tek bir hücre süspansiyonu içine kıyılmış örnek ayrıştırmaları. 50 ml&#39;lik bir tüp ayarlanır 70 mikron hücre süzgecinden ile süspansiyonu Filtre ve süzgeç 2 kez yıkayınRPMI 1640 2 mi. </li><li> 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, 200 x g&#39;de santrifüjleyin. Süpernatant atılır ve T hücre ortamı (Tablo 1), 10 ml tekrar süspansiyon hücreleri. </li><li> Bu Ficoll% 100 gradyan çözeltisi, 10 ml daha düşük bir adımı ve Dulbecco fosfat- ile seyreltildi% 75 gradyan çözeltisi 30 ml&#39;lik bir orta aşama ile 50 ml bir tüp içinde (gradyan çözeltisi) gibi bir iki-aşamalı gradyan çözeltisi hazırlayın tamponlu tuzlu su, herhangi bir kalsiyum, Resim magnezyum (D-PBS (-)). </li><li> (Adım 1.5 dan itibaren) gradyan çözümü (Adım 1.4) hücre süspansiyonu Katman. 45 dakika boyunca 20 ° C&#39;de 400 x g&#39;de santrifüjleyin. </li><li> % 100 gradyan çözeltisi ve 50 ml&#39;lik bir tüp içinde% 75 gradyan çözeltisi arasında arayüzde zenginleştirilmiş TILS içeren tabakayı toplayın. D-PBS 20-30 ml ekleyerek zenginleştirilmiş TILS çözelti tabakası seyreltilmiş (-). </li><li> 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, 200 x g&#39;de santrifüjleyin. Süpernatant atın ve 10 ml TIL zenginleştirilmiş fraksiyonu tekrar süspansiyonT hücre ortamı. </li><li> Kültür, 37 ° C &#39;de 6-çukurlu plaka içindeki 2 T hücre ortamı ml ve 6.000 lU / ml rekombinant insan (rh), IL-2 ile (Aşama 1.8) fraksiyonu,% 5 CO2. </li><li> Kültür başlangıcından 5 gün sonra yarım medya değiştirin ve daha sonra her 2-3 günde bir. </li><li> 1 oranında hücreleri bölme: 2 trypsinization olmadan usulca% 80-90 confluency ulaştığında kuyu sayısını iki katına, askıya sonra. 6000 lU / ml taze T hücresi ortam ve rhlL-2 yarım hacmi (1 mi) eklenir. </li></ol> Mitomisin-C ile tedavi edilen SNL Besleyici Hücre Plate 2. Hazırlık <ol><li> % 80-90 (3-4 x 10 6 hücre) kadar% 0.1 jelatin kaplı 10 cm tabak üzerine SNL besleme hücre ortamı (Tablo 1) 10 ml kültür SNL besleme hücreleri ulaşılır. </li><li> Şirketinden SNL besleyici hücre kültürü çanağı içinde 0.4 mg / ml mitomisin C çözeltisi 310 ul ilave edin ve 37 ° C&#39;de 2 saat ve 15 dakika için,% 5 CO2 inkübe edilir. medya a aspireND, 5 ml D-PBS ile iki kez yıkama hücreleri (-). </li><li> 0.5 mi% 0.25 tripsin / 1 mM EDTA ekleyin ve hücreleri ayırmak 1 dakika için oda sıcaklığında inkübe edin. nötralize etmek SNL besleyici hücre medya 4,5 ml ekleyin ve bir tek süspansiyon içine hücreleri yeniden askıya. </li><li> 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de 15 ml&#39;lik bir tüp ve santrifüj içine hücreleri aktarın. ortamı aspire ve SNL besleyici hücre ortamının 10 ml&#39;si içinde tekrar süspansiyon haline sonra hemasitometre ile hücre sayımı. </li><li> Plaka 1.5 x 10 6, 10 cm tabak üzerine SNL besleyici hücreler göz başına hücre ve 37 ° C&#39;de inkübe,% 5 CO2. 3 gün içinde SNL besleyici hücreler kullanın. </li></ol> Sendai Virüs kullanılması iPSCs 3. Nesil (SeV) Vektör <ol><li> Hasat TILS ve plaka bağlı fare anti-insan CD3 (1 ug / ml) ile TILS 5 x 10 5 hücre aktive ve çözünebilir fare anti-insan CD28 (ug / ml 5 ug) (Kademe 1.11 arasında), rhlL-2 3 &#39;ucunda bir 6-yuvalı plaka içinde, T hücre ortamı 2 ml (6.000 lU / ml)7 ° C, 5 gün süreyle% 5 CO 2. </li><li> bir pipet kullanılarak 15 ml bir tüp içinde (Kademe 3.1) TILS hasat ve bir hemositometrede hücre sayısını. </li><li> 500 ul rhlL-2 ile 1 tabak bağlı fare anti-insan CD3 (1 ug / ml) ile TILS x 10 5 hücre ve çözünebilir fare anti-insan CD28 (5 ug / ml), (60 lU / ml) Yeniden 37 ° C&#39;de 24 oyuklu bir plaka içerisinde oyuk başına yeniden programlama ortamı (Tablo 1), 24 saat boyunca% 5 CO2. SeV enfeksiyonu 3 kuyu hazırlayın: OCT3 / 4, Sox2 Klf4 ve c-myc (1 de); SeV enfeksiyonu (GFP: yeşil floresan protein) (1 kuyu); ve hücre sayımı (1 kuyu). </li><li> (Kademe 3,3) 24 saat sonra, bir hemasitometre hücre sayısını ve enfeksiyonun çeşitli (3-20) çokluklar (İB) için her virüsün hacmini belirler. -80 ° C depolama Sendai virüsü vektörü tüpler bir set çıkarın. su banyosunda (37 ° C) hızla SeV vektörleri çözülme ve buz üzerine koyun. Virüsün hacmi (ul)= İçişleri Bakanlığı (UKÜ / hücre) virüsünün / titre hücrelerinin sayısı x (UKÜ / ml) x 10-3 (ul / ml) </li><li> aktif TILS de dahil olmak üzere ortam içine 10-20 MOI&#39;da SeV vektörlerinin bir karışımın ilave edilmesiyle tek tek OCT3 / 4, Sox2 Klf4 ve c-myc taşıyan dört Sendai virüsü vektörü tüplerinin her hesaplanan miktarlar ekleyin. </li><li> transdüksiyon etkinliğini belirlemek için, aktive edilmiş TILS bir kuyuya SeV-GFP hesaplanan miktarlar ekleyin. </li><li> (Kademe 3.5 ila 3.6 adım) tabağına yerleştirin, 24 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 inkübatörde. 24 saat sonra, floresan mikroskobu altında sev-GFP ile enfekte edilmiş TILS kullanılarak enfeksiyonun etkinliğini tahmin ediyoruz. </li><li> 15 ml&#39;lik bir tüp içinde (Kademe 3.5 ila) hücreler toplanır. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, 200 x g&#39;de santrifüjleyin. </li><li> Süpernatant atılır ve primat ES hücre ortamı ve bazik fibroblast büyüme faktörü (bFGF, 4 ng / ml) ile HESC ortamın 0.5 ml pelletini. </li><li> Conta 10 cm çanak içine süspansiyon aktarınINS HESC ortam, 10 ml SNL besleyici hücreler mitomisin C ile muamele edilmiş. koloniler yetiştirilen kadar her gün HESC ortamı değiştirmek. </li><li> 21 gün 18 civarında, temiz tezgah 10 ul ucu kullanarak bir mikroskop altında koloniler etrafında SNL besleyici hücreleri çıkarmak. </li><li> 10 ul ucu ile koloniler kazıyın ve 96 oyuklu doku kültür plakasının her bir oyuğuna iPSCs ortam 100 ul bir 200 ul ucu kullanarak transfer edin. Pipet yukarı ve 2-3 kez aşağı 50-100 mikron ortalama boyutu küçük kümeleri içine koloniler kırmak için. </li><li> Temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF, 4 ng / ml) ile iPSCs ortam oyuk başına 2 ml (Kademe 2 de) mitomisin C ile muamele edilmiş SNL besleyici hücreler 6 oyuklu doku kültürü plakaları halinde küçük öbekler aktarın. Her gün iPSCs ortamı değiştirmek. </li><li> 5-6 gün 1 mg / ml kollajenaz IV, taze, mitomisin-C ile tedavi edilen SNL besleyici hücreler 6 oyuklu doku kültür plakalarına iPSCs aktarın. Immun her klon plakaları başına 2 kuyu hazırlayınostaining. </li><li> Pluripotency belirteçlerinin (SSEA3, SSEA4, TRA-1-60, TRA-1-81 ve Zeiss OCT3 / 4) 1 immünohistokimyasal boyama ile her klon tam yeniden programlanması belirleyin. NOT: Pluripotency potansiyelinin daha fazla değerlendirilmesi için, tam yeniden programlanması iPSC hatları bir embriyoid vücut oluşumu ve farklılaşma tahlil ya da bir teratom oluşum deneyi 16 tarafından üç germ içine ayırt edebilirsiniz onaylayın. </li><li> Tam yeniden programlanması iPSC hatları sitogenetik analizi ile normal karyotipe göstermek onaylayın. </li><li> Teratom oluşumu için, farklılaşmamış bir TIL türetilmiş IPSC DMEM 6-8 haftalık dişi NOD / SCID farelerinin deri altı doku içine% 10 FCS içeren 100 ul (1 x 10 6) süspansiyonu enjekte edilir. hematoksilen ve eozin ile leke teratom bölümleri. </li></ol> SSEA3, SSEA4, TRA1-60 ve TRA1-81 için iPSCs 4. immünofloresan boyama <ol><li> Yıkama 1 ml PBS ile iPSCs ve% 4 pa 1 ml iPSCs gidermek10 dakika boyunca raformaldehyde çözeltisi. % 4 paraformaldehit çözeltisini çıkarın ve PBS 3 kez 1 ml iPSCs yıkayın. NOT: toksik olduğu için paraformaldehid kullanırken dikkatli olun. </li><li> 30 dakika süre ile tampon (Tablo 1) engelleme iPSCs ön muamele. Bu arada, PBS ve Triton® X ile seyreltildi primer antikor (fare anti-insan SSEA3, fare anti-insan SSEA4, fare anti-insan TRA1-60 ve fare anti-insan TRA1-81) 01:50 1.5% keçi serumu çözeltisi seyreltilmiş -100 (toplam hacim: 1 ml). </li><li> Engelleme tampon (Tablo 1) sökün. seyreltilmiş birincil antikor solüsyonu ilave edildi ve oda sıcaklığında 1 saat boyunca inkübe edilir. Diğer taraftan, ikincil antikor (anti-fare IgG ve IgM veya anti-sıçan IgM) 01:50% 1.5 keçi serumu çözeltisi seyreltilir. </li><li> seyreltilmiş primer antikor çözeltisi çıkarın ve 5 dakika için 1 ml PBS 3 kez, her biri iPSCs yıkayın. seyreltilmiş sekonder antikor solüsyonu eklenir ve karanlık bir odada, oda sıcaklığında 45 dakika inkübe edilir. </li&gt; <li> seyreltilmiş sekonder antikor çözeltisi çıkarın ve 5 dakika boyunca PBS 3 kez 1 ml, her biri iPSCs yıkayın. mikroskobik inceleme ile iPSCs gözlemleyin. </li></ol> Oct3 için iPSCs 5. İmmünofloresan Boyama / 4 <ol><li> Yıkama 1 ml PBS ile iPSCs ve 10 dakika boyunca% 4 paraformaldehit çözeltisi 1 ml iPSCs düzeltin. % 4 paraformaldehit çözeltisini çıkarın ve PBS ile 3 kez iPSCs yıkayın. </li><li> Permeabilizasyon tamponu (Tablo 1) ilave edilir ve 10 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Permeabilizasyon tamponu çıkarın ve tampon (Tablo 1) bloke ekleyin. </li><li> 30 dakika için oda sıcaklığında inkübe edilir. Bu arada bloklama tamponunu birincil antikor (fare anti-insan Oct3 / 4) 1:50 seyreltin. </li><li> seyreltilmiş birincil antikor solüsyonu eklenir ve gece boyunca 4 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> seyreltilmiş primer antikor çözeltisi çıkarın ve 5 dakika boyunca PBS ile 1 ml 3 kez, her biri iPSCs yıkayın. Bu arada, di(Anti-fare IgG / IgM keçi) Ud ikincil antikor 1: 100 blokaj tamponunda. </li><li> seyreltilmiş sekonder antikor solüsyonu ilave edin ve 45 dakika için karanlık bir odada, oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> seyreltilmiş ikincil çözelti çıkarın ve 5 dakika boyunca PBS 3 kez 1 ml, her biri iPSCs yıkayın. mikroskobik inceleme altında iPSCs uyun. </li></ol>

<ol><li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126, 663-676 (2006).</li>
<li>Wernig, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+reprogramming+of+fibroblasts+into+a+pluripotent+ES-cell-like+state%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">In vitro reprogramming of fibroblasts into a pluripotent ES-cell-like state.</a> Nature. 448, 318-324 (2007).</li>
<li>Maherali, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directly+reprogrammed+fibroblasts+show+global+epigenetic+remodeling+and+widespread+tissue+contribution%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Directly reprogrammed fibroblasts show global epigenetic remodeling and widespread tissue contribution.</a> Cell Stem Cell. 1, 55-70 (2007).</li>
<li>Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+germline-competent+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells.</a> Nature. 448, 313-317 (2007).</li>
<li>Loh, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+T+cells+from+human+peripheral+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of T cells from human peripheral blood.</a> Cell Stem Cell. 7, 15-19 (2010).</li>
<li>Seki, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+terminally+differentiated+circulating+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of induced pluripotent stem cells from human terminally differentiated circulating T cells.</a> Cell Stem Cell. 7, 11-14 (2010).</li>
<li>Staerk, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+peripheral+blood+cells+to+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human peripheral blood cells to induced pluripotent stem cells.</a> Cell Stem Cell. 7, 20-24 (2010).</li>
<li>Nishimura, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+rejuvenated+antigen-specific+T+cells+by+reprogramming+to+pluripotency+and+redifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of rejuvenated antigen-specific T cells by reprogramming to pluripotency and redifferentiation.</a> Cell Stem Cell. 12, 114-126 (2013).</li>
<li>Vizcardo, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+Human+Tumor+Antigen-Specific+T+Cells+from+iPSCs+Derived+from+Mature+CD8%28%2B%29+T+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Regeneration of Human Tumor Antigen-Specific T Cells from iPSCs Derived from Mature CD8(+) T Cells.</a> Cell Stem Cell. 12, 31-36 (2013).</li>
<li>Wakao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expansion+of+functional+human+mucosal-associated+invariant+T+cells+via+reprogramming+to+pluripotency+and+redifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Expansion of functional human mucosal-associated invariant T cells via reprogramming to pluripotency and redifferentiation.</a> Cell Stem Cell. 12, 546-558 (2013).</li>
<li>Dudley, M. E., Wunderlich, J. R., Shelton, T. E., Even, J., Rosenberg, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+tumor-infiltrating+lymphocyte+cultures+for+use+in+adoptive+transfer+therapy+for+melanoma+patients%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunother%22%5BJournal%5D)">Generation of tumor-infiltrating lymphocyte cultures for use in adoptive transfer therapy for melanoma patients.</a> J Immunother. 26, 332-342 (2003).</li>
<li>Gros, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PD-1+identifies+the+patient-specific+CD8%28%2B%29+tumor-reactive+repertoire+infiltrating+human+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">PD-1 identifies the patient-specific CD8(+) tumor-reactive repertoire infiltrating human tumors.</a> J Clin Invest. 124, 2246-2259 (2014).</li>
<li>Rosenberg, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Durable+Complete+Responses+in+Heavily+Pretreated+Patients+with+Metastatic+Melanoma+Using+T-Cell+Transfer+Immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Durable Complete Responses in Heavily Pretreated Patients with Metastatic Melanoma Using T-Cell Transfer Immunotherapy.</a> Clinical Cancer Research. 17, 4550-4557 (2011).</li>
<li>Restifo, N. P., Dudley, M. E., Rosenberg, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adoptive+immunotherapy+for+cancer%3A+harnessing+the+T+cell+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Adoptive immunotherapy for cancer: harnessing the T cell response.</a> Nat Rev Immunol. 12, 269-281 (2012).</li>
<li>Saito, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+Melanoma+Tumor-Infiltrating+Lymphocytes+to+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+International%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of Melanoma Tumor-Infiltrating Lymphocytes to Induced Pluripotent Stem Cells.</a> Stem Cells International. 2016, 11(2016).</li>
<li>Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+induction+of+transgene-free+human+pluripotent+stem+cells+using+a+vector+based+on+Sendai+virus%2C+an+RNA+virus+that+does+not+integrate+into+the+host+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Jpn+Acad+Ser+B+Phys+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome.</a> Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-362 (2009).</li>
<li>Ban, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+%28iPSCs%29+by+temperature-sensitive+Sendai+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 14234-14239 (2011).</li>
<li>Fujie, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+Type+of+Sendai+Virus+Vector+Provides+Transgene-Free+iPS+Cells+Derived+from+Chimpanzee+Blood%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">New Type of Sendai Virus Vector Provides Transgene-Free iPS Cells Derived from Chimpanzee Blood.</a> PLoS One. 9, e113052(2014).</li>
</ol>

Yazarlar, rekabet eden hiçbir finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

Burada, OCT3 / 4, Sox2 Klf4 ve c-myc, dört transkripsiyon SeV aracılı transdüksiyonu ile iPSCs için melanom TILS yeniden programlanması için bir protokol faktörleri gösterdi. Bu yaklaşım, T hücrelerini yeniden programlamak için SeV sistemi kullanılarak olmayan bir entegre yöntem 7 olanaklar sunar. Bir önceki çalışma SeV yeniden programlama sistemi fibroblastlar değil, aynı zamanda periferik kan T hücrelerini 7,17 sadece yeniden programlamak yüksek verimli ve güvenilir o...

Transkripsiyon faktörleri, tanımlanmış bir dizi aşırı ekspresyonu ile uyarılmış pluripotent kök hücreler (iPSCs) üretilmesini sağlar Hücresel yeniden programlama teknolojisi hücre bazlı terapiler 1,2 alanında büyük ümit vaat etmektedir. Bu iPSCs transkripsiyonel ve epigenetik özelliklerini sergilemek ve benzer embriyonik kök hücreleri (EKH) 3-5 kendini yenileme ve pluripotensin kapasitesine sahip. Geçtiğimiz on yıl içinde yeniden programlama teknolojisi yapılan kayda değer ilerleme bize bile böyle T hücreleri 6-8 olarak terminal olarak farklılaşmış hücreler, insan iPSCs oluşturmak için izin verdi. T hücresi-kaynaklı iPSCs (TiPSCs) TiPSCs 9-11 antijen-spesifik T hücrelerinin yenilenmesini sağlayan özgün T hücreleri gibi T hücresi reseptörü (TCR) zincir genlerinin aynı yeniden düzenlenmiş konfigürasyonunu muhafaza eder. melanom süzücü limfositlerin yaklaşık% 80 (TILS), bir hastanın tümör spesifik tümör bağlantılı antijenleri tanıyan eldeND, orijinal Kanser hücreleri 12 karşı sitotoksisite korumak. Özellikle, TILS ile programlanmış hücre ölümü proteini-1 (PD-1) ifadesi mutasyona uğramış neoantijen özgü CD8 + 13 lenfositlerin dahil olmak üzere, otolog tümör reaktif repertuarı tespit bulunmuştur. Hazırlayıcı lymphodepleting rejimleri ve interlökin-2 (IL-2), sistemik tatbikat ile kombinasyon halinde, ex-vivo genişletilmiş otolog TILS adoptif nakli hastalarında 14 alt-metastatik melanom büyük gerilemesine neden olabilir. klinik öncesi modellerde ve hastalarda cesaret verici sonuçlar rağmen, yoksul infüzyon T hücrelerinin hayatta kalma ve bağışıklık baskılayıcı yolların varlığı evlatlık T hücre tedavisi tam potansiyelini tehlikeye görünmektedir. Mevcut klinik protokoller sayıda elde edilmesi için otolog T hücrelerinin geniş bir ex vivo işleme gerektirir. Bu sonuç, zayıf yaşam süresine sahiptir terminal olarak farklılaşmış T hücreleri, indirgenmiş Proteinlerin üretimi ile sonuçlanıriferative kapasitesi ve PD-1 15 yüksek düzeyde. adoptif T hücresi tedavisinin Bu sınırlama teorik immünoterapi için otolog T hücrelerinin sınırsız kaynağı sağlayabilir iPSCs kullanılarak aşılabilir. Son zamanlarda Sendai virüsü (sev) dört transkripsiyon faktörlerinin aracılı transdüksiyonu, OKT3 / 4, Sox2 Klf4 ve c-myc 16 PD-1 yüksek seviyede ifade eden melanoma TILS yeniden programlamayı bildirmiştir. retrovirüs vektörleri yeniden programlama genleri ifade etmek konak kromozom entegrasyonu gerektiren ederken, SeV vektörleri olmayan entegre ve sonunda sitoplazmaya çıkarılmıştır. Verimliliği yeniden programlanması lentivirüs veya retrovirüs vektörleri 6-8 ile karşılaştırıldığında SeV sistemi ile çok daha yüksektir. Lentivirüs veya retrovirüs vektörleri tarafından üretilen bazı iPSC klonlar nonlymphoid soy 6-8 arasında olabilir iken Ayrıca, SeV özel olarak ise, periferal kan tek-çekirdekli hücreleri (PBMC) T hücreleri yeniden programlamak için. Burada, detayprosedürler insan melanoma TILS izolasyonu ve aktivasyonu için bir SeV yeniden programlama sistemi kullanılarak TIL türetilmiş iPSCs üretimi için uyguladı.

<table><tbody><tr><td>nazik MACS C Tüpleri</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-237</td><td></td></tr><tr><td>nazik MACS Ayrıştırıcı</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-235</td><td></td></tr><tr><td>Tümör Ayrışma Kiti, insan</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-095-929</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 70 um Hücre Süzgeci</td><td>BD</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>BD Falcon 50ml Konik Cntrifuge tüpleri</td><td>BD</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>IMDM</td><td>İnsan</td> AB serumu <td>12440053</td><td></td></tr><tr><td></td><td>yaşam teknolojileri Yaşam teknolojileri</td><td>34005100</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamin (200mM)</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>2-merkaptoetanol (1000x, 55mM)</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>21985-023</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin&nbsp;</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>gentamisin</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>15750-060</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque PLUS</td><td>GE</td><td>17-1440-02</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS (-)</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>14040-133</td><td></td></tr><tr><td>rekombinant insan (rh) IL-2</td><td>Aldesleukin, Prometheus Laboratories Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saflaştırılmış NA/LE Fare Anti-İnsan CD3</td><td>BD</td><td>555329</td><td></td></tr><tr><td>Saflaştırılmış NA/LE Fare Anti-İnsan CD28</td><td>BD</td><td>555725</td><td></td></tr><tr><td>X-VIVO 15</td><td>Lonza</td><td>04-418Q</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>26140-079</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>N-Asetilsistein</td><td>Cumberland İlaç A.Ş.</td><td>NDC 66220-207-30</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Doku Kültürü Plakaları (6 oyuklu)</td><td>Corning</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Doku Kültürü Plakaları (24 oyuklu)</td><td>Corning</td><td>353047</td><td></td></tr><tr><td>Sendai virüs vektörü</td><td>DNAVEC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SNL besleyici hücreler</td><td>Cell Biolabs, Inc</td><td>CBA-316</td><td></td></tr><tr><td>mitomisin C</td><td>SIGMA</td><td>M4287</td><td>suda çözünür (0.5 mg / ml)</td></tr><tr><td>jelatin</td><td>SIGMA</td><td>G1890</td><td></td></tr><tr><td>temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF)</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>PHG0264</td><td></td></tr></tbody></table>

İnsan melanom tümör-süzücü lemfositler ile ilgili uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Human Melanoma Tumor-infiltrating Lymphocytes

Ex vivo Evlatlık transferi metastatik melanom hastalarında önemli alt gruplarında dayanıklı ve tam yanıtlara aracılık edebilir otolog tümör infiltre lenfositleri (TILS) genişletti. Bu yaklaşımın en önemli engeller telomerik kaynaklanan transfer T hücrelerinin, azalmış canlılığı, ve TILS sınırlı sayıda hastadan elde edilmiştir. Bununla birlikte, bu daha az farklılaşmış T hücrelerinin çok sayıda üretilmesi problemlidir, uzun telomerlerin ile daha az farklılaşmış T hücreleri adoptif T hücresi terapisi için ideal bir T hücresi alt kümesi olabilir. adoptif T hücresi tedavisinin bu sınırlama teorik kullanılarak uyarılmış pluripotent kök hücreler (iPSCs) aşılabilir, kendi kendini yenileme pluripotense, uzamış telomer korumak ve immünoterapi için otolog T hücrelerinin sınırsız bir kaynak sağlar. Burada, TILS içine yeniden programlama faktörleri iletimi için Sendai virüsü vektörleri kullanılarak iPSCs üretmek için bir protokol mevcut. Bu protokol oluşturmakTamamen yeniden programlanması, vektör ücretsiz klonlar s. Bu TIL türetilmiş iPSCs adoptif T hücre tedavisi için daha az farklılaşmış hastaya ve tümör-spesifik T hücrelerini elde etmek mümkün olabilir.

Şekil 1, anti-CD3 / CD28 ile aktivasyon ve TILS için OKT3 / 4, Klf4 Sox2 ve c-myc gen transferi takip etmektedir rhlL-2 melanom TILS, ilk genişleme içerir prosedür genel görünüşünü göstermektedir iPSCs üretimi için. Genellikle, rhIL-2 başlaması ile birlikte kültür üzerine TILS küreler kültür başlandıktan sonra 21-28 gün oluşturmak için. Bu noktada, TILS anti-CD3 ile aktif hale hazırız / CD28. Şekil 2A kültürü TILS, rhIL-2 günde 21 ile aktive edilecek haz...

Bu protokolün amacı, melanom tümörüne sızan lenfositlerin indüklenmiş pluripotent kök hücrelere yeniden programlanması için protokolü göstermektir.

İnsan Melanom tümör-süzücü lemfositler ile ilgili uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Adoptive transfer of ex vivo expanded autologous tumor-infiltrating lymphocytes (TILs) can mediate durable and complete responses in significant subsets ...

Bu deneyin genel amacı, melanoma sızan lenfositlerden indüklenmiş pluripotent kök hücreler veya iPSC'ler üretmektir. Bu yöntem, özellikle kanser immünoterapisi için tümör immünolojisi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, tümöre sızan lenfositlerden insan iPS hücreleri üretme yeteneğinin, immünoterapi için sınırsız sayıda, daha az diferansiye olmuş tümöre özgü T hücresi sağlayabilmesidir.Klinikte T hücrelerinin düşük sağkalım oranı şu anda adaptif T hücresi tedavisinin temel kısıtlaması olduğundan, bu teknik metastatik melanoma tedavisi için uygulamalara sahip olabilir. Bu yöntem ayrıca tümör mikroçevresindeki T hücresi reseptör repertuarının incelenmesinde de yararlı olabilir. Prosedürü laboratuvarımdan doktora sonrası araştırmacı Dr. Kumiko Iwabuchi uygulamalı olarak gösterecektir.Tümör materyali elde edildikten sonra beş ila 20 gram tümör örneği seçin ve makas kullanarak normal, katı ve sert dokuları, tümör örneklerinin kırılgan ve/veya kanlı nekrotik bölgelerinden ayırın. Ayrıştırılan örnekleri mümkün olduğunca ince şekilde doğrayın; ardından, üretici talimatlarına uygun olarak doğranmış tümör parçalarını tek hücreli bir süspansiyona dönüştürmek için bir dissociator ve insan tümör dissosiyasyon kiti kullanın. Dissosiyasyon sonunda hücreleri 70 micron süzgeçten geçirerek 50 milliliter'lik bir tüpe filtreleyin ve süzgeci iki mililitre RPMI 1640 ile iki kez yıkayın.Ardından hücreleri santrifüjle çöktürün ve 10 ml taze T-hücre ortamında yeniden süspande edin. Hücreleri yoğunluk gradyanı ile ayırmak için, öncelikle kalsiyum veya magnezyum içermeyen DPBS içinde 30 ml %75'lik gradyan çözeltisini, ardından 10 ml %100'lük gradyan çözeltisini yeni bir 50 ml'lik tüpe katmanlar halinde ekleyin. Daha sonra, katmanları bozmamaya dikkat ederek hücreleri dikkatlice gradyan çözeltisinin üzerine ekleyin ve örneği santrifüjleyin.Ayırma işleminin sonunda, gradyan çözeltiler arasındaki arayüzde bulunan zenginleştirilmiş tümör infiltrasyon lenfositlerini (TIL'ler) yeni bir 50 mililitrelik konik tüpe aktarın ve hücreleri 20 ila 30 mililitre taze DPBS ile yıkayın. Peleti 10 mililitre taze T-hücresi ortamında yeniden süspanse edin, ardından altı kuyucuklu bir plakanın beş kuyucuğuna kuyucuk başına iki mililitre TIL ekleyin ve TIL kültürlerini 37 °C ve %5 karbondioksit altında beş gün boyunca Rekombinant İnsan IL-2 ile destekleyin. Beşinci günde, her kuyucuktaki ortamın yarısını değiştirin ve sonrasında her iki ila üç günde bir bu işlemi tekrarlayın.Kültürler %80 ila %90 konfluens seviyesine ulaştığında, her kuyruktaki hücreleri bir pipet yardımıyla nazikçe yeniden süspande edin ve kültürleri, Rekombinant İnsan IL-2 ile desteklenmiş bir mililitre taze T-hücre ortamında bire iki oranında ayırın. Mitomisin-C ile işlenmiş SNL feeder plakaları hazırlamak için, öncelikle SNL feeder hücrelerini %0,1 jelatin kaplı 10 santimetrelik bir kapta 10 mililitre SNL feeder hücre ortamında kültüre edin. Hücreler %80 ila %90 konfluense ulaştığında, feeder hücrelerini 37 °C'de %5 karbondioksit içeren ortamda iki saat 15 dakika boyunca mitomisin C ile işleme tabi tutun.İnkübasyonun sonunda, hücreleri beş mililitre DPBS ile iki kez yıkayın. Ardından, besleyici hücreleri oda sıcaklığındaki Trypsin-EDTA ile ayırın. Bir dakika sonra, disosiasyon reaksiyonunu 4,5 mililitre taze SNL besleyici ortam ile nötralize edin ve tek hücre süspansiyonunu santrifüj için 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın.Sayımlama işlemi için peleti 10 mL taze SNL feeder hücre besiyerinde yeniden süspande edin. Ardından, 10 cm'lik kapların her birine 1,5 × 10⁶ SNL feeder hücresi ekleyin ve kültürleri 37 °C'de, %5 CO2 ortamında üç güne kadar inkübe edin. Sendai Virüsü ile iPSC'ler üretmek için; her bir kuyucuğa, fare anti-insan CD3 ile kaplanmış yeni bir altı kuyucuklu plağa, Rekombinant İnsan IL-2 ve çözünür fare anti-insan CD28 ile desteklenmiş 2 mL taze T hücresi besiyeri içerisinde 5 × 10⁵ TIL ekleyin.TIL'leri hücre kültürü inkübatöründe beş gün boyunca aktive edin. Ardından, sayım işlemi için kültürleri bir pipet kullanarak 15 mililitrelik konik bir tüpte birleştirin. Sonrasında, her kuyucuğa 1x10⁵ TIL'yi, çözünür fare anti-human CD28 ve Rekombinant Human IL-2 ile desteklenmiş 500 mikrolitre reprogramlama ortamı içinde, anti-human CD3 ile kaplanmış 24 kuyucuklu bir plakaya aktarın.Hücre kültürü inkübatöründe 24 saat bekledikten sonra her kuyuktaki hücreleri sayın ve uygun enfeksiyon çokluklarında (MOI) birkaç hacim virüs hazırlayın. Ardından, 10 ila 20 MOI değerinde bir Sendai Virüsü vektör karışımını uygun hacimdeki besiyerine ekleyin ve virüs içeren besiyerini TIL'lerin bulunduğu her kuyuğa ilave edin. Transdüksiyon verimliliğinin belirlenmesi için, hesaplanan hacimdeki Sendai Virüsü GFP'yi aktive edilmiş TIL'lerin bulunduğu bir kuyuğa ekleyin ve kültürleri 24 saat boyunca inkübatöre geri yerleştirin.Ertesi gün, transdüksiyonun enfeksiyon verimliliğini tahmin etmek için Sendai Virüsü GFP ile enfekte edilmiş hücreleri floresan mikroskobu ile inceleyin. Her kuyuktaki viral olarak enfekte hücreleri santrifüj için 15 mililitrelik bir tüpte toplayın ve peleti, primat embriyonik kök hücre medyumu ve temel fibroblast büyüme faktörü ile takviye edilmiş 0,5 mililitre insan embriyonik kök hücre medyumunda yeniden süspanse edin. Ardından, hücrelere 9,5 mililitre taze insan embriyonik kök hücre medyumu ekleyin ve süspansiyonu mitomisin C ile işlem görmüş bir SNL feeder hücre plağına aktarın.Bu görüntüde, Rekombinant İnsan IL-2 ile kültürün 21. gününde olan ve anti CD3 ile CD28 ile aktive edilmeye hazır TIL'ler gösterilmektedir. TIL'ler, 20'lik bir enfeksiyon multiplicitiesi (MOI) ile Sendai Virüsü ile transfekte edilebilir. Burada, Sendai Virüsü enfeksiyonundan 18 ila 21 gün sonra SNL feeder hücreleri üzerindeki tipik bir pluripotent klon gösterilmektedir.Bu temsili karyogramda gözlemlendiği üzere, TIL kaynaklı iPSC'ler normal bir karyotip sergilemektedir. TIL kaynaklı iPSC'lerde pluripotens belirteç ekspresyonunu doğrulamak için yapılan immünofloresan boyama, bu hücrelerin tipik pluripotens belirteçlerinin beklenen ekspresyon seviyelerini gösterdiğini kanıtlamaktadır. Ayrıca, melanoma TIL'lerinden türetilen iPSC'ler, üç germ tabakasından çeşitli hücreler içeren teratomlar oluşturabilmektedir.Ayrıca, TIL kaynaklı iPSC'ler, kapiler elektroforez ile değerlendirildiği üzere T hücresi reseptör yeniden düzenlemelerini korumuştur. İlk geliştirmemiz olan bu teknik, onkoloji alanındaki araştırmacıların metastatik melanoma hastaları için daha etkili kanser immünoterapilerini keşfetmelerinin yolunu açmıştır. Bu prosedür uygulanırken, Sendai Virüsü enfeksiyonundan önce T hücresi proliferasyonu ve canlılığının kontrol edilmesi ve enfeksiyon verimliliğinin GFP ekspresyon konturu ile değerlendirilmesi önemlidir.Bu videoyu izledikten sonra, melanoma TIL'lerinden insan TIL hücrelerinin nasıl üretileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

generation-induced-pluripotent-stem-cells-from-human-melanoma-tumor

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Indüklenmiş pluripotent kök (iPS) hücrelerden T lenfositlerin Nesil T hücre tabanlı immünoterapi için embriyonik kök hücreler kullanarak alternatif bir yaklaşım verir. Yöntem kullanılarak ya da...

T Lenfositler doğru İsteyerek Pluripotent Kök Hücrelerinin Yönetmen Farklılaşma

Burada tek bir lentiviral yeniden programlanması vektörü kullanılarak periferal kan 3-4 ml insan iPSCs üretimi için basit ve etkili bir protokol göstermektedir. Hazır kan hücrelerinin yeniden programlanması daha geniş bir araştırma toplum için erişilebilir kılarak IPSC teknoloji kullanımı hızlandırmak için vaat ediyor.

STEMCCA lentiviral Vektör Kullanma Çevresel Blood İnsan İsteyerek Pluripotent Kök Hücre Üretimi

Bu video, tümör antijenine özgü indüklenmiş pluripotent kök hücre (iPSC) türevi CD8αβ+ T Hücreleri oluşturmak için bir testi göstermektedir. Tümör antijenine özgü iPSC'ler, stromal hücreli bir tek tabaka üzerinde büyütülür ve hematopoietik progenitör hücrelere (HPC'ler) farklılaşır. HPC'ler, bir farklılaşma ortamı kullanılarak CD4 + CD8 + çift pozitif T hücrelerine farklılaştırılır. Bu hücreler daha sonra CD8 eksprese eden tek pozitif T hücreleri oluşturmak üzere uyarılır.

İndüklenmiş Pluripotent Kök Hücrelerden Tek Pozitif CD8 T Hücrelerinin Üretilmesi

Bu makale, birincil hücre kültürleri ve nasıl tümör hücrelerinden eritrositler ve fibroblastların kirlilikler çıkarmak için taze olarak elde edilen melanom doku hazırlanmasını tarif etmektedir. Son olarak, biz nasıl tarif...

Hasta Türetilen Hücre Kültürü ve CD133 İzolasyonu<sup&gt; +</supMelanom dan&gt; sağlayan olası Kanser Kök Hücreleri

Bu el yazması, koparılmış saçlardan insan keratinositlerinin türetilmesi ve sürdürülmesi ve ardından epizomal vektörler tarafından entegrasyon gerektirmeyen insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerin (hiPSC'ler) üretilmesi için adım adım bir prosedür sağlar.

Saç türetilmiş keratinositlerden Kullanarak Entegrasyon serbest İnsan uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Bu protokol, yeniden programlama faktörleri içeren matrigel ve Sendai virüs vektörlerinin bir kombinasyonunu kullanarak, besleyicisiz koşullarda insan periferik T hücrelerinden indüklenmiş pluripotent kök hücrelerin (iPSC'ler) nasıl üretileceğini açıklar.

Besleyici içermeyen şartlar Sendai virüs kullanılarak insan periferik T hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Bu çalışma, bir nöral ile insan pluripotent kök hücreleri pigmentli olgun melanosit üretilmesi ve besleyici içermeyen, 25 günlük protokolünü kullanarak ara madde aşama melanoblast için bir in vitro farklılaşma protokolü tarif eder.

Insan pluripotent kök hücreleri gelen melanosit besleyici içermeyen türetilmesi

Bu makalede, üç boyutlu (3D) timik kültür sistemi tarafından tümör antijene özgü indüklenen pluripotent kök hücre kaynaklı timik göçmenler (iTE) oluşturmak için yeni bir yöntem açıklanmaktadır. iTE, proliferasyon, hafıza oluşumu ve tümör baskılanması kapasitesine sahip naif T hücreleri ile yakından ilişkili T hücrelerinin homojen bir alt kümesidir.

Üç boyutlu Timik Kültür Sistemi Murine indüklenen Pluripotent Kök Hücre kaynaklı Tümör Antijen-spesifik Timik Emigrants oluşturmak için

Bu makalede, OP9/DLL1 co-kültür sistemini kullanarak fonksiyonel tümör antijene özgü indüklenen pluripotent kök hücre türetilmiş CD8αβ+ tek pozitif T hücreleri oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır.

Tümör Antijene Özgü T Hücrelerinin Üretimi için İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücrelerin Kullanılması

Burada, melanositler için optimize edilmiş bir doğrudan yeniden programlama sistemi ve sorunsuz doğrudan yeniden programlama sağlayan yüksek verimli, konsantre bir virüs paketleme sistemi açıklanmaktadır.

Fare Fibroblastlarının Melanositlere Doğrudan Yeniden Programlanması

Burada, taze melanom dokularından ayrışmış hücre süspansiyonlarını kültürleyerek melanom hastadan türetilmiş organoidler oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Bu organoidler, hastaya özgü tümörleri in vitro olarak aslına uygun olarak özetleyerek, tümör immünosupresif mekanizmalarını, ilaç taramasını, ilaç direnç mekanizmalarını ve kanser sürveyans yaklaşımlarını keşfetmek için yenilikçi bir yaklaşım sunar.

Melanom Hasta Kaynaklı Organoid Modellerle Terapötik Fırsatların Ortaya Çıkarılması

Öğrenin, melanom tümör-süzücü lenfositlerden uyarılmış pluripotent kök hücre üretimi yöntemini. Bu teknik, kanser immünoterapisinde sınırsız T hücresi sağlayarak metastatik melanom tedavisinde yeni olanaklar sunar.

İnsan Melanom tümör-süzücü lemfositler ile ilgili uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Daha fazla video keşfet