Name: Fare ve Sıçanlarda için düşük akış Dijital Anestezi Sistemi Kullanımı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: Öğrenin, fare ve sıçanlarda düşük akışlı dijital anestezi sisteminin güvenli kullanımını. Şırınga tahrikli buharlaştırıcı ile hassas doz kontrolü sağlanır ve hayvan refahı artırılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Yazarların teşekkür hakkı yok.

Tüm çalışmalar, düzenleyici ve kurumsal kurallarına uygun olarak tamamlanmıştır. Bu çalışmanın hayvan yönleri Purdue Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (PACUC) tarafından onaylanan Kent Scientific Corporation Hayvan Kullanım Programı tarafından değerlendirilir ve Laboratuvar Hayvanları 22 Bakımı ve Kullanımı için Kılavuz uygun olarak yapıldı. Not: Bu protokolde kullanılan düşük akımlı dijital anestezi sistemi entegre pulse oksimetre ile donatılmıştır. 1. Entegre Pulse Oksimetre Düşük akımlı Anestezi Sistemi Kurma <ol><li> İsofluranın Teslim <ol><li> Bir taşıyıcı gaz kaynağı seçin. İç hava pompası kullanmak için, emme oda havası iç pompa izin arkasındaki Giriş Noktası sökün. </li><li> port egzoz kömür teneke kutu bağlayın. </li><li> düşük akım, dijital anestezi sistemi ön Y adaptörünü bağlayın. t beyaz dalları bağlamak için renk kodlu klipleri kullanınO burun konisi ve indüksiyon odasına mavi dalları. </li><li> Kapat beyaz klip kelepçeler ve açık mavi klibi odasına hava akışını yönlendirmek için kelepçeler. </li><li> 2 ml şırınga seçin. </li></ol></li><li> Fizyolojik İzleme, Entegre pulse oksimetre kullanılması <ol><li> &quot;AUX&quot; etiketli düşük akımlı anestezi sisteminin arkasında, bağlantı noktasına pulse oksimetre pençe sensörünü bağlayın. </li></ol></li></ol> 2. Ayarlarını Yapılandırma <ol><li> Anestezi <ol><li> anestezi sistemi üzerinde güç ve Kurma menüsüne erişmek. Basın kırmızı Ana Menü&gt; Anestezi&gt; Ayarlar erişmek için Kurma. </li><li> anestezik madde seçin. Basın Set Up kırmızı Tipi Anest vurgulamak için. İsofluranın seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. </li><li> Şırınga boyutunu ayarlayın. Basın Siri Boyutu vurgulamak için Kurma. 2 ml şırınga seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. </li><li> Boş pozisyon ayarlayın. Basın h Kurmaighlight kırmızı Boş ayarlayın. Şırınga Holding Kelepçe şırınga metal yaka oturacak şekilde şırınga koyarak Şırınga Tutma Blok boş, tamamen basılı cam şırınga edin. İtici Blok şırınga pistonu üst ışık temas edinceye kadar İtici Blok taşımak için Yukarı veya Aşağı oklarına basın. Basın boş konumunu ayarlamak için seçin. </li><li> Basın kırmızı kaldır vurgulamak için Kurma. şırıngayı çıkarın ve şişe üst adaptörü kullanarak izofluran ile şırınga doldurun. </li><li> anestezi sistemine Şırınga bağlayın. </li><li> Başbakan anestezik teslim boru. Basın kırmızı Başbakan Tube vurgulamak için Kurma. anestezi kadar basın Aşağı şırınga yoluyla ve buharlaştırıcı blokta siyah montaj içine geçecek. </li><li> anestezi etkinleştirin. Basın kırmızı Enable vurgulamak için Kurma. Evet seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın Run / Geri Ana Menüye dönmek için. </li><li> a seçinir arz ve dakika hacmi. Basın Set Up kırmızı Hava İkmal vurgulamak için. İç Pompası seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın kırmızı Dakika Vol vurgulamak için Kurma. 250 ml / dak sabit akış hızı. </li></ol></li><li> Fizyolojik İzleme <ol><li> Fare (240) minimum tespit kalp atış hızını ayarlayın. Ana menüye erişmek için Kurma&gt; tuşuna basın MouseStat. Yukarı ve aşağı oklarını kullanın asgari kalp hızını ayarlamak için. </li></ol></li></ol> 3. Anestezi Teslimat başlayın <ol><li> Fare indükleyin <ol><li> Basın Run / Geri iki kez çalıştırmak moduna girmek ve hava akışını başlatmak için. </li><li> sıkıca kapağını kapatarak, indüksiyon odasında fare yerleştirin. % 3 Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmesini ayarlayın. </li><li> Fare refleksi kaybı ile tespit anestezi istenen düzlemi, ulaşana kadar izleyin. gerektiği gibi Anestezik Ajan Konsantrasyon ayarlayın. </li><li> Hayvan kendi düzeltilmesi refleks a kaybeder keznd yeterince anestezi,% 0 Anestezi konsantrasyon düğmesini çevirin. Yazarlar, daha önce hava akımı sağlayan 30-60 sn anestezi derinliği 1 ters olmayacak şekilde odayı temizlemek için yeterli olan endüksiyon odası temizlemesini bulmuşlardır. </li><li> Hızla yüz maskesine hava yönlendirmek için beyaz kelepçeler açın ve indüksiyon odasına giden mavi kelepçeleri kapatın. </li><li> Araştırmacı uzak odasına açın fareyi çıkarın ve hemen burun konisi uygun. </li><li> Bir geri besleme döngüsü üzerinde bir rektal prob ile 37 ° C&#39;de vücut ısısını korumak için ayarlanmış bir kızılötesi ısınma pad üzerinde hayvan ortalayın. </li><li> Fare burun konisi istikrarlı olduğunda Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmesini çevirerek bakım gerektiği gibi,% 1.5 izofluran konsantrasyonu ayarlayabilir veya. </li><li> bakım için dakika hacmini azaltmak. hayvan desteklemek için minimum akış hızı, 30 g fare için 1.5-2.2 kat hayvanın dakika hacmi (eşittir52 ml / dakika) ve en az. burun konisi stiline özgü ayar önerilen akış hızı için üreticinin talimatlarına bakın ve gerektiği gibi ayarlayın. Ana Menüye erişmek için Kurma ve ardından Dakika Vol kırmızı vurgulanır kadar Kurma tuşuna basın. Hedef akışını ayarlamak için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın Run / Geri ana ekrana dönmek için. </li><li> Bir birlisme tutam sırasında geri çekme refleksi eksikliği ile belirlenen anestezi derinliği onaylayın. anestezi sırasında kurumasını önlemek için gözleri oftalmik merhem sürün. </li></ol></li></ol> 4. Fizyolojik İzleme başlayın <ol><li> arka ayak pedi üzerinde sensörü yerleştirin. kırmızı ışık pençe altında olduğunu ve pençe aydınlatır böylece sensörü yerleştirin. oxiwave görüntülemek için ekranda yukarı ve aşağı okları kullanın. Hayvan şimdi güvenle düşük akış, şırınga odaklı, dijital buharlaştırıcı kullanılarak anestezi. </li></ol> 5. Hayvan kaldır <ol><li> KapatmaAnestezi Dağıtım. <ol><li> anestezi teslim durdurmak için, Min (ya da% 0) için Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmeyi çevirin ve yüz maskesi hayvan kaldırmak. </li><li> Anestezi kurtarma sırasında fare izleyin. Fare tamamen ayaktan hale geldikten sonra, kafes iade. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Damen, F. W., Adelsperger, A. R., Wilson, K. E., Goergen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+traditional+and+integrated+digital+anesthetic+vaporizers%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Comparison of traditional and integrated digital anesthetic vaporizers.</a> JAALAS. 54 (6), 756-762 (2015).</li>
<li>Chakravarti, S., Basu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modern+Anaesthesia+Vapourisers%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Modern Anaesthesia Vapourisers.</a> Indian J Anaesth. 57 (5), 464-471 (2013).</li>
<li>Carroll, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarroll%2C+G+%22Small+Animal+Anesthesia+and+Analgesia%22">Small Animal Anesthesia and Analgesia</a>. , Blackwell Publishing. Ames, IO. (2008).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Lumb+and+Jones%27+veterinary+anesthesia+and+analgesia%22">Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia</a>. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).</li>
<li>Ambrisko, T. D., Klide, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+isoflurane+and+Sevoflurane+vaporizers+over+a+wide+range+of+oxygen+flow+rates%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Vet+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluation of isoflurane and Sevoflurane vaporizers over a wide range of oxygen flow rates.</a> Am J Vet Res. 67 (6), 936-940 (2006).</li>
<li>McKelvey, D. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcKelvey%2C+DH+%22Veterinary+Anesthesia+and+Analgesia%22">Veterinary Anesthesia and Analgesia</a>. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).</li>
<li>Thomas, J., Lerche, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThomas%2C+J+%22Anesthesia+and+Analgesia+for+Veterinary+Technicians%22">Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians</a>. , 4th ed, Mosby. St. Louis, MI. 335(2011).</li>
<li>Flecknell, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlecknell%2C+P+%22Laboratory+animal+anaesthesia%22">Laboratory animal anaesthesia</a>. , Academic Press, Elsevier. London, UK. (2009).</li>
<li>Mapleson, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+rebreathing+in+various+semiclosed+anaesthetic+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Brit+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">The elimination of rebreathing in various semiclosed anaesthetic systems.</a> Brit J Anaesth. 26 (5), 323-332 (1954).</li>
<li>Ward, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+principles+and+maintenance%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthetic+equipment%22%5BJournal%5D)">Physical principles and maintenance.</a> Anaesthetic equipment. , W. B. Saunders. London. (1985).</li>
<li>El-Attar, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guided+isoflurane+injection+in+a+totally+closed+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Guided isoflurane injection in a totally closed circuit.</a> Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).</li>
<li>Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-controller+closed+anaesthetic+breathing+system%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A computer-controller closed anaesthetic breathing system.</a> Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).</li>
<li>Lowe, H. J., Cupic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-regulated+automated+anesthesia+%28Abstract%29%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Clin.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Dose-regulated automated anesthesia (Abstract).</a> Br. J. Clin. Pharmacol. 12 (2), 281-282 (1971).</li>
<li>Soro, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+accuracy+of+the+anesthetic+conserving+device+%28Anaconda%29+as+an+alternative+to+the+classical+vaporizer+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anes+Analg%22%5BJournal%5D)">The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia.</a> Anes Analg. 111 (5), 1176-1179 (2010).</li>
<li>Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uptake+of+desflurane+during+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Uptake of desflurane during anaesthesia.</a> Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).</li>
<li>Weingarten, M., Lowe, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+circuit+injection+technic+for+syringe-measured+administration+of+methoxyflurane%3A+a+new+dimension+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anes+Analg%22%5BJournal%5D)">A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia.</a> Anes Analg. 52 (4), 634-642 (1973).</li>
<li>Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+device+to+reduce+the+consumption+of+a+halogenated+anaesthetic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent.</a> Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).</li>
<li>Kelly, J. M., Kong, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+ten+isoflurane+vaporisers+in+current+clinical+use%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use.</a> Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NARCOBIT+-+A+newly+developed+inhalational+anesthesia+system+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Anim%22%5BJournal%5D)">NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice.</a> Exp Anim. 56 (2), 131-137 (2007).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+newly+developed+inhalation+anesthesia+system+and+intraperitoneal+anesthesia+on+the+hemodynamic+state+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Pharm+Bull%22%5BJournal%5D)">Comparison of newly developed inhalation anesthesia system and intraperitoneal anesthesia on the hemodynamic state in mice.</a> Biol Pharm Bull. 30 (9), 1716-1720 (2007).</li>
<li>Voightsverger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sevoflurane+ameliorates+gas+exchange+and+attenuates+lung+damage+in+experimental+lipopolysaccharide-induced+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury.</a> Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).</li>
<li>Garber, J., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGarber%2C+J+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th edn, The National Academic Press. Washington DC. (2011).</li>
</ol>

Bu proje Kent Scientific Corporation, CJ Goergen Amerikan Kalp Derneği (SDG18220010) ve Purdue Üniversitesi tarafından ekipman ve finansmanı ile desteklenmiştir. Yazarlar Krista Bigiarelli ve Irina Toore Bu makalede kullanılan ekipman üreten Kent Scientific Corporation çalışanlarıdır. Bu yazının açık erişim yayın Kent Scientific Corporation tarafından desteklenmektedir.

Dijital düşük akımlı anestezi sistemi kullanıcı etkin bir şekilde herhangi bir sıkıştırılmış gaz kullanmadan çok düşük akış hızlarında fareler uyutmak için izin verir. Bu yaklaşık 500 ml / dakika minimum akış hızlarında sıkıştırılmış bir gaz kaynağına ihtiyaç olan standart pasif püskürteç, büyük ölçüde farklılık gösterir. Standart püskürteç geçişleri arasındaki kesinlikten yoksun aramalar kullanmak ve onlar doğruluğunu sağlamak için her yıl bakımı yapılmalıdır. Bir şırınga tahrik anestezi sistemi şırınga pompası tam gerekli hızını hesaplamak için sabit akış hızında anestetik için belirli bir konsantrasyonu sağlayabilir. Rutin kalibrasyonlar ek maliyet ve zaman tasarrufu ile sonuçlanan gereksizdir. önerilen minimum debisi olmayan bir geri soluma devresinde bir hayvan korumak için 1.5-2.2 kat hayvanın dakika hacmi olduğunu. Bu çalışmada kullanılan 100 ml / dakika akış hızı, hayvanlar için yeterli anesteziğin verilmesinde, bu en az aştı. akış hızı AyarAkış hızı doğrudan belirli bir süre için kullanılan izofluran miktarına bağlı olarak gs, bu anestezik teslim tekniği için kritik öneme sahiptir. Düşük akış hızlarında kullanıldığında hayvan hala etkili 1,19-21 anestezi ise, bu teknik büyük ölçüde kullanımı sırasında gerekli izofluran miktarını azaltabilirsiniz. Geleneksel vaporizers ve düşük akımlı dijital vaporizers arasında yeni ekipman maliyetleri karşılaştırılabilir. Ancak, dijital düşük akımlı anestezi sistemi izofluran ve sevofluran teslim etmek yeteneğine sahiptir. Bu belirlenen izofluran ve sevofluran hassas püskürteç, anestezik ajanlar her ikisini de kullanarak grup için ilk ekipman maliyetlerinin düşürülmesi ihtiyacını ortadan kaldırır. Düşük akış dijital buharlaştırıcı 1,19,20 kullanırken buharlaştırıcı teknolojileri arasındaki son yayınlanan karşılaştırmalar zamanla maliyet tasarrufu ettiler. Bu karşılaştırmaların sonuçları, bir yıl boyunca potansiyel maliyet tasarrufu yaklaştığı kullanılabilir. Gibi52 hafta boyunca haftada 2 saat aralıklarla, 5 gün içinde yapılan tipik kullanım ayarlarını tüketen, geleneksel izofluran buharlaştırıcı izofluran 3.8 L, ya da on iki 250 ml&#39;lik şişe tüketecektir. aynı frekansta kullanılan düşük akımlı dijital buharlaştırıcı sadece 0.32 L, ya da iki 250 ml&#39;lik şişe tüketmek olacaktır. Kömür bidonu tüketimi de azalır. Her kutu yaşlandırma atık gazın 50 gr tutan varsayarsak, geleneksel buharlaştırıcı bir yıl boyunca yaklaşık 21 kömür kutuları dolduracaktır. Buna karşılık, düşük akımlı dijital buharlaştırıcı 6 veya daha az gerektirir. Geleneksel buharlaştırıcı 9500 L. dijital düşük akım buharlaştıcıların bazı modellerde mevcut iç hava pompası, kapasiteli yılda yaklaşık 5 büyük gaz tüpleri, her gerektirir, sıkıştırılmış gaz gereksinimini ortadan kaldırır. Sıkıştırılmış gaz kullanılacak olsaydı, sistem yıllık 1 başına sadece 1 silindir kullanmak istiyorsunuz. teknik ihtiyaca göre değiştirilebilir. Düşük akımlı dijital vaporizers kullanıcı hızlı ve hassas anestezi derinliğini ayarlamak için izin verir. anestetik derinliği artırılabilir veya azaltılabilir gerekiyorsa, kullanıcı sistemi üstündeki kadranı kullanarak% 0.1 artışlarla anestezik konsantrasyonunu artırabilir. işlem boyunca gerektiğinde akış oranı da ayarlanabilir. daha büyük bir şırınga boyutları daha uzun işlemler için uygun olmasına rağmen, bu protokol, 2 ml şırınga kullanmaktadır. İç hava pompası kullanıcılara sıkıştırılmış gaz kaynağı gerektirmeden hayvanları uyutmak için bir seçenek sunar. Sıkıştırılmış gaz veya oksijen desteği gerektiren işlemler için, kullanıcı yerine çevredeki havayı kullanarak daha düşük akış sistemi bir gaz kaynağı bağlamak için seçeneği vardır. kullanıcı işlem boyunca seçilen hava kaynağı sağlamak için devam edebilir, ya da iç pompa ve gerektiği gibi sıkıştırılmış bir gaz kaynağı arasında geçiş yapabilirsiniz. Örneğin, kullanıcı indüksiyon ve bakım sırasında iç pompa vasıtasıyla oda havasını sunmak için sistem kurulumu, ancak ek oksi teslim edebilirkurtarma sırasında gen. Düşük akımlı dijital buharlaştırıcı kullanmanın birçok avantajı olmasına rağmen, aynı zamanda sınırlamalar vardır. Bir vana dahil değildir, çünkü elle açmadan önce temiz hava odasına kızarma indüksiyon odasına temizlemek için tek yoldur. Bu sistem sadece düşük akış hızlarında çalışacak şekilde tasarlanmıştır ve geleneksel püskürteç 10 L / dk&#39;ya kadar akış hızlarında kullanılabilir 800 ml / dk, akış oranlarının üzerinde anestezi teslim etmez. Bu özel sistem bu nedenle küçük hayvan türleri için uygundur. Ayrıca, sistem geleneksel bir buharlaştırıcı ile karşılaştırıldığında daha az anestetik madde tutar. Şırınga bir prosedür sırasında yenilenmeleri gerekir durumlar olabilir. Ancak, dolum sırasında gecikmeler boş şırıngayı yerine yakın bir ikinci şırınga önceden doldurarak azaltılabilir. 10 ml kadar şırınga boyutları orta prosedür şırıngalar dolum ihtiyacını azaltmak için kullanılabilir. Son olarak, geleneksel bir buharlaştırıcı farklı olarak, düşük-fow dijital buharlaştırıcı elektrik gerektirir. elektrik kullanılamaz veya güç kesintisi durumunda olduğu Piller durumlarda kullanım için mevcuttur. Önceki çalışmalar, düşük akımlı dijital sistemler geleneksel anestezi sistemine 1,19,20 kıyasla daha az izofluran, taşıyıcı gaz ve kömür metal kapları tüketmek olduğunu göstermiştir. daha fazla çalışma bu alanlarda ihtiyaç duyulan olsa kirleticilerin alınmasına yönelik anestezik gaz azalma da, atık anestezik gaz bir azalma tespit olabilir. Kızılötesi gaz spektroskopisi atık izofluran üretimini izlemek için kullanılabilir, ve dozimetre rozetleri gelecek karşılaştırmalarda laboratuvar personeline izofluran maruz kalma ölçmek için kullanılabilir. Özetle, anestezi teslimat için bu teknik sayesinde geleneksel sistemler üzerinde geliştirilmiş güvenlik, etkinlik ve hassas kemirgen anestezi yapmadan gruplarına yararlı olacaktır.

0.5-10 L / dk 2 akış oranları arasında yapmaktadır veteriner kullanımı için uygun bir çok hassas vaporizörler vardır. aralık kendi küçük solunum dakika hacmi ile karşılaştırıldığında yüksek olduğu gibi bu debileri, kemirgenler için ideal değildir. Yüksek debi nedeniyle hipotermi ve solunum yolu 3,4 kurutulması kendi tanıtımına veteriner pratikte tavsiye edilmez. Ayrıca, pek çok ortak veteriner buharlaştırıcı üretici kılavuzları yüksek akış oranları karşı basınç dalgalanmaları meydana artışa neden olabileceğini uyarısında bulunuyor. Aynı zamanda, pek çok standart püskürteç 500 ml / dakika akış hızları aşağıda doğru hale olduğu gösterilmiştir ve bu oran, veterinerlik alanında 5-7 küçük bir akış oranı olarak kabul edilir. Bir hayvan, bir T-parçası devresi üzerinde bulunan veya 1.5-2.2 katı hayvanın dakika hacmi 8-10 kadar düşük bir akış oranı kullanılarak, Bain devre değiştirilebilir. Bu akış oranları sufficien kabul edilirt süresi dolmuş gazların geri solunumunu engeller ve kan karbondioksit konsantrasyonları 8 artış önlemek için. Bu akış hızı tavsiye kullanarak, 30 g fare 52 ml kadar düşük bir akış oranında muhafaza edilebilir / dakika, geleneksel bir buharlaştırıcı kabul 500 ml / dakika minimum göre yaklaşık on kat daha az. Geleneksel buharlaştırıcı gaz akışı ve pasif anestezik buharlaşma için atmosferik basınç bağlı iken, direkt enjeksiyonlu buharlaştırıcı toplam taze gaz akışını ölçer ve gaz akımına 2 doğrudan buhar enjekte eder. Bazı direkt enjeksiyon püskürteç gaz akımına anestezi yönetmek için bir şırınga pompası kullanmaktadır. Bilgisayarlı kontroller bu sistemler otomatik olarak anestezik istenen konsantrasyona ulaşmak için gerekli olan sıvı maddenin hacmini enjekte şırınga pompası hızını ayarlamak için izin verir. Şırınga tahrik püskürteç mevcut klinik ve pediatrik kullanım için onaylanmış ve birçok benzer yapılandırmaları bir olarak kabul edilirestetik klinik pratikte 11-16 cihazları koruyucu. Kısa bir süre onaylandıktan sonra, şırınga pompası vaporizers ile anestezik olan koruyucu cihazlar hayvan çalışmalarında 8,17,18 kullanılmak üzere adapte edilmiştir. Geleneksel bir buharlaştırıcı farklı olarak, bir şırınga pompası kullanılarak, bir doğrudan enjeksiyon sistemi doğruluğunu sağlamak için, küçük bir akış oranı ile sınırlı değildir. Bu nedenle, bu teknoloji, kemirgen anestezi ve düşük akış oranları gerekli olan diğer durumlarda kullanım için idealdir. Bu buharlaştırıcı tasarımı ile bağlantılı faydalar ve potansiyel maliyet tasarrufu kemirgenler 1,19,20 için özel olarak tasarlanmış yeni anestezi sistemlerinin geliştirilmesi ilham kaynağı oldu. Bu yeni sistem, aynı zamanda içeren dahili bir hava pompası, kullanıcı bir sıkıştırılmış gaz kaynağı gerektirmeden anestezi yönetmek için izin. Ek bir fayda olarak, sistem önceden kalibre edilmiş izofluran ve sevofluran hem kullanım içindir. laboratuar hayvanları alanında bu buharlaştırıcı teknolojisinin başlamasıyla, bent sıkıştırılmış gaz için gerek kalmadan yakın önerilen düzeylere akış hızlarında küçük laboratuar hayvanları uyutmak için artık mümkün.

<table><tbody><tr><td>Anestezik Ekipman</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>SomnoSuite Düşük Akışlı Dijital Anestezi Sistemi</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO</td><td>Dökülme önleyici, buhar önleyici şişe üstü adaptör içerir; Y adaptör hortumu; kömür temizleme filtresi</td></tr><tr><td>MouseSTAT Nabız Oksimetresi & Nabız Monitörü</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-MSTAT-Modülü</td><td>SomnoSuite</td></tr><tr><td>MouseSTAT Fare Pençe Sensörüne</td> Entegre Edilmiştir <td>Kent Scientific Corporation</td><td>MSTAT-MSE</td><td></td></tr><tr><td>2 ml Cam Şırınga</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-2ML</td><td></td></tr><tr><td>Düşük Maliyetli İndüksiyon Odası, 0.5 L</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-0705</td><td></td></tr><tr><td>Düşük Profilli Yüz Maskesi, x-small</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-0304</td><td></td></tr><tr><td> Hayvan Isınma</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>RightTemp Homeotermik Isınma ile PhysioSuite Fizyolojik İzleme Sistemi</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>PS-RT</td><td>Kızılötesi ısıtma pedi, rektal prob ve ped sıcaklık probu içerir</td></tr><tr><td>Anestezik Ajanlar ve İlaçlar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>İzofluran (250 ml şişe)</td><td>Piramal Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puralube Oftalmik Merhem</td><td>Perrigo</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

fare ve sıçanlarda için düşük akış dijital anestezi sistemi kullanımı

Use of a Low-flow Digital Anesthesia System for Mice and Rats

Geleneksel bir buharlaştırıcı, pasif anestezik buharlaşma için akan gaza ve atmosferik basınca bağlıdır. Yeni geliştirilen doğrudan enjeksiyonlu buharlaştırıcılar, uçucu anestezikleri doğrudan bir gaz akışına uygulamak için bir şırınga pompası kullanır. Geleneksel bir buharlaştırıcının aksine, çok düşük akış hızlarında kullanılabilir, bu da onu farelerde ve sıçanlarda kullanım için ideal hale getirir. 
Ekipmanın düşük akış hızlarını kullanma yeteneği, anestezik maddelere, sıkıştırılmış gaza ve odun kömürü temizleme filtrelerine olan ihtiyacın azalması nedeniyle önemli bir maliyet tasarrufu sağlayabilir1. Daha düşük bir akış hızı, daha az anestezik gaz israfı anlamına gelir ve muhtemelen laboratuvar personelinin anestezik maruziyet riskini azaltır. Bu nedenle, doğrudan enjeksiyonlu buharlaştırıcılarla ilişkili yüksek hassasiyet ve güvenlik seviyelerinin yanı sıra anestezik maddelere, sıkıştırılmış gaza ve kömür filtrelerine olan ihtiyacın azalması, küçük hayvan anestezisi gerektiren araştırmalar için faydalıdır. 
Bu protokolün amacı, dijital, düşük akışlı anestezi sisteminin bir parçası olarak şırınga tahrikli doğrudan enjeksiyon buharlaştırıcısının kullanımını göstermektir. Direkt enjeksiyonlu buharlaştırıcı, geleneksel bir buharlaştırıcıya kıyasla çok düşük akış hızlarında anesteziyi doğru bir şekilde iletebilir, bu da onu kemirgenlere kontrollü gaz anestezik iletimi için umut verici bir alternatif haline getirir.

Hayvanlar 3 yetişkin C57 / BL6NTac dişi fareler (Taconic, yaş 6-7 hafta; ağırlık 15 +/- 1 gr) anestezi ve kalp hızı, oksijen doygunluğu, ve solunum hızı izlendi ise 1.3-1.5% izofluran ile korundu. tesise gelmeden önce rutin satıcı testi ile belirlenen tüm fareler Fare Patojen Free idi. Hayvanlar grubu yerleştirilmiş microisolation kafes ve şişe standart kemirgen yemi ve su serbest erişim sağlanmıştır. İsofluranın Kullanımı düşük akımlı anestezi sistemi kullanım sırasında şırınga kalan anestezik madde miktarını ölçer. Anestezi sistemi ile ölçülmüş hayvan bakım döneminin sonunda tekrar burun konisi aktarılmış ve gibi şırıngaya hacmi, not edilmiştir. Nihai hacim Bbaşlangıç ​​hacminin çıkarılır şekilde idame periyodu (Şekil 1) sırasında tüketilen anestezi miktarını belirlemek için. fizyolojik Parametreler Kalp hızı, SpO 2, ve solunum hızı pulse oksimetre (- 4 Şekil 2) üzerinden bakım sırasında izlendi. Vücut sıcaklığı, bir kızıl ötesi ısıtma yastığı ile 37.5 ° C &#39;de muhafaza edilmiştir. Bir interdijital tutam gelen geri çekme refleksi eksikliği ile tespit edilen her bir fare başarıyla 60 dakika boyunca anestezi cerrahi düzlemi altında oda hava / dakika, 100 ml, düşük akış hızlarında tutuldu. Fare uyanık vermedi ya da bakım döneminde aralıklı olarak uygulanan birlisme tutam yanıt. Hayvanların kalp hızları (Şekil 2), kan oksijen (Şekil 3) ve solunum sayısı (Şekil 4) relat kalmıştırÇalışma boyunca ively istikrarlı. Nedeniyle hayvan ve sensör konumlandırma, Fare 1 ve fare 3 den solunum hızı sinyali aralıklı ve ölçüm kesildi. Hayvanın konumlandırma ayarlandı, sinyal geliştirilmiş ve ölçülen solunum oranı benzer zaman noktalarında başkalarına karşılaştırılabilir. Düşük akımlı bir dijital anestezi cihazı idame periyodu (Şekil 1), 60 dakika boyunca izofluran 0.63 ml&#39;lik bir ortalama kullanılmıştır. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/54436/54436fig1.jpg" /> Şekil 1:.. İsofluranın Kullanımı dijital düşük akımlı anestezi sistemi kullanılarak anestezi bakım 1 saat boyunca üç farklı fareler için ml kullanılan izofluran miktarı <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig1large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Şekil 2:.. Nabız dakika (bpm) dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk başına atım üç farelerin kalp hızı <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig2large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/54436/54436fig3.jpg" /> Şekil 3:.. Oksijen Doygunluk üç fareler dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk kan oksijen doygunluğu seviyesi (%) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig3large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Şekil 4:.. Solunum Hızı min (bpm) dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk başına nefes üç farelerin solunum hızı <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig4large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Burada, şırınga tahrikli doğrudan enjeksiyonlu buharlaştırıcı kullanan dijital, düşük akışlı bir anestezi sistemi kullanarak anestezik gazı farelere daha güvenli ve verimli bir şekilde uygulamak için bir protokol sunuyoruz.

Fare ve Sıçanlarda için düşük akış Dijital Anestezi Sistemi Kullanımı

A traditional vaporizer depends on flowing gas and atmospheric pressure for passive anesthetic vaporization. Newly developed direct injection vaporizers ...

Bu protokol, dijital, düşük akışlı bir anestezi sisteminin parçası olarak şırınga güdümlü bir doğrudan enjeksiyon buharlaştırıcısının kullanımını göstermektedir. Doğrudan enjeksiyon buharlaştırıcısı, geleneksel bir buharlaştırıcıya kıyasla çok düşük akış hızlarında anesteziyi hassas bir şekilde iletir; bu da onu kemirgenlere kontrollü anestetik iletimi için gelecek vadeden bir alternatif haline getirir. Veteriner kullanımı için mevcut olan ve dakikada 5 ile 10 litre arasında çalışan birçok hassas buharlaştırıcı bulunmaktadır.Bu akış hızları, aralık kemirgenlerin küçük dakika solunum hacimlerinin çok üzerinde olduğu için onlar için ideal değildir. Bu buharlaştırıcının temel avantajı, bir hayvanın dakika hacminin 1,5 katı kadar düşük bir akış hızı kullanılarak burun konisi ile stabilize edilebilmesidir. Böylece, 30 gramlık bir fare, dakikada 52 mililitre kadar düşük bir akış hızında tutulabilir.İlk olarak, bir taşıyıcı gaz kaynağı seçin. Dahili hava pompasını kullanmak için, dahili pompanın oda havasını almasına olanak sağlamak amacıyla arka giriş portunun vidasını sökün. Ardından, egzoz portuna bir aktif karbon kanisteri bağlayın.Ardından, iletim borusunu anestezi sistemine bağlayın. Burun konisi ve indüksiyon odası dallarını belirlemek için renk kodlu klipsleri kullanın. Hava akışını odaya yönlendirmek için klempleri açın.Fizyolojik izleme için, nabız oksimetresi pati sensörünü düşük akışlı anestezi sisteminin arkasına bağlayın. Ayarları yapılandırmak için düşük akışlı anestezi sistemini açın. Anestezi Kurulumu (Anesthesia Setup) menüsüne gidin ve izofluranı seçin.Ardından, Syringe Size'ı vurgulamak için Set Up düğmesine basarak şırınga boyutunu ayarlayın. İki mililitrelik bir şırınga seçmek için yön butonlarını kullanın. Hayvanınız ve prosedür süresi için uygun boyuttaki şırıngayı kullanmanız önemlidir.Bu sistem, çeşitli uygulamalara uyum sağlamak amacıyla iki, beş ve 10 mililitrelik şırıngalarla uyumludur. Şırınga boyutunu seçtikten sonra, şırınganın boş konumunu ayarlayın. Şimdi, tamamen bastırılmış boş cam şırıngayı şırınga tutucu bloğa sabitleyin.Şırıngayı, tutucu klempi şırınganın metal yakasına oturacak şekilde yerleştirin. İtici bloğu, şırınga pistonunun üst kısmıyla hafifçe temas edecek şekilde ayarlayın. Boş konumu kaydedin.Şırıngayı çıkarın. Ardından, şişe üstü adaptörü kullanarak izofluran ile doldurun. Doldurma işleminden sonra şırıngayı tekrar tutucu bloğa yerleştirin ve iletim tüpünü takın.Ardından, yönlendirme düğmelerine basarak anestezik iletim tüplerini hazırlayın. Sistem, anestezik buharlaştırıcı bloğa ulaşana kadar şırıngayı itecektir. Şırıngayı aşırı doldurmamak önemlidir.Tüm ayarlar yapıldıktan sonra, anestezi iletimini etkinleştirin. Şimdi, Hava Kaynağını (Air Supply) oda havasına ve Dakika Hacmini (Minute Volume) dakikada 250 mililitreye ayarlayın. Fizyolojik izleme için, saptanan minimum kalp atış hızını Fare (Mouse) olarak ayarlayın.Farede anesteziyi indüklemek için hava akışını başlatın. Fareyi indüksiyon haznesine yerleştirin, kapağı sıkıca kapatın ve %3 oranında iletim sağlamak için Anestetik Ajan Konsantrasyonu kadranını ayarlayın. Fareyi, sağlanma refleksinin kaybı ile belirlenen istenen anestezi düzeyine ulaşana kadar izleyin. Hayvan yeterince anestezi altına girdiğinde, %0 iletim sağlamak için Anestezi Ajan Konsantrasyonu kadranını çevirin. Ardından, hava akışını burun konisine yönlendirmek için klempleri açın ve indüksiyon haznesine giden klempleri kapatın.Fareyi hazneden çıkarın ve hemen burun konisine yerleştirin. Ardından, geri bildirim döngüsüne bağlı bir rektal prob aracılığıyla vücut sıcaklığını 37 °C'de tutacak şekilde ayarlanan bir kızılötesi ısıtma pedinin merkezine yerleştirin. Fare burun konisine yerleştirilmiş durumdayken, izofluran konsantrasyonunu %1,5'e ayarlayın. Şimdi, anestezinin sürdürülmesini desteklemek için dakika hacmini azaltın.Parmak arası sıkıştırma sırasında çekilme refleksinin yokluğu ile belirlenen anestezi derinliğini onaylayın. Anestezi sırasında kurumayı önlemek için gözlere oftalmik pomad uygulayın. Sensörü arka pençenin yastığına yerleştirerek fizyolojik izlemeye başlayın.Sensörü, kırmızı ışık patiyi aydınlatacak şekilde konumlandırın. Sensör sinyalini görüntülemek için oxiwave ekranını açın. %0 uygulama yapmak için Anestezi Ajanı Konsantrasyonu kadranını Minimum'a getirin ve hayvanı burun konisinden çıkarın.Anestezi derken fareyi yakından izleyin. Fare tamamen hareketli hale geldiğinde, onu kafesine geri koyun. Bu şekil, dijital, düşük akışlı anestezi sistemi kullanılarak bir saatlik anestezi idamesi boyunca altı ila yedi haftalık üç farklı C57 Black 6 dişi fare için mililitre cinsinden kullanılan isofluran miktarını göstermektedir.Düşük akış hızları nedeniyle, düşük akışlı şırınga kontrollü dijital buharlaştırıcı, bir saatlik süre boyunca bir mililitreden daha az isoflurane tüketti. İndüksiyondan sonraki beş ila 60 dakika arasında pulse oksimetri kullanılarak ölçülen üç farenin dakika başına vuruş sayısı cinsinden kalp atım hızları burada gösterilmiştir. Hayvanların kalp atım hızları, idame dönemi boyunca nispeten stabil ve tutarlı kalmıştır.Bu şekil, üç farenin aynı zaman aralığındaki oksijen satürasyon seviyelerini göstermektedir. Son olarak, dijital düşük akışlı anestezi sistemi ile indüksiyondan sonraki beş ile 60 dakika arasındaki farelerin dakika başına soluk sayısı cinsinden solunum hızları burada gösterilmiştir. Dahili hava pompası, kullanıcılara sıkıştırılmış bir gaz kaynağına ihtiyaç duymadan hayvanları anestezi uygulama seçeneği sunar.Sıkıştırılmış gaz veya ek oksijen gerektiren prosedürler için kullanıcı, hava kullanmak yerine düşük akışlı buharlaştırıcıya bir gaz kaynağı bağlama seçeneğine sahiptir. Düşük akışlı şırınga tahrikli buharlaştırıcılar, doğru anestezik konsantrasyonları sağlarken dakikada 10 mililitre kadar düşük akış hızlarına çıkabilmektedir. Bu nedenle, söz konusu teknik; geleneksel sistemlere kıyasla artırılmış güvenlik, etkinlik ve hassasiyet nedeniyle kemirgen anestezi uygulamaları gerçekleştiren gruplar için faydalı olacaktır.

use-of-a-low-flow-digital-anesthesia-system-for-mice-and-rats

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Ya bir kateterin yerleştirilmesi ya da farelerde sağ yan ventrikül içine, bir bolus enjeksiyonu gerçekleştirerek merkezi sinir sistemi ilaçları hedeflemek için bir yöntem açıklanmaktadır. Biz antisens oligonükleotidler teslim odaklanmıştır. Bu teknik, diğer ilaçlara ve sıçanlara, kolaylıkla adapte edilebilir.

Kemirgen Merkezi Sinir Sistemi İlaçların doğrudan Intraventriküler teslim

Bu makalede, yenidoğan faresinde tekrarlanabilir omurilik kompresyon yaralanması (SCI) oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Model, spontan fonksiyonel iyileşmenin altında yatan adaptif plastisite mekanizmalarını incelemek için avantajlı bir platform sağlar.

Bir Yenidoğan Fare Omurilik Sıkıştırma Yaralanması Modeli

Sigara kısıtlayıcı EEG radiotelemetry serbestçe hareket kemirgenler, in vivo uzun vadeli elektroenzefalografıye kaydetmek için değerli bir metodolojik bir yaklaşımdır. Bu ayrıntılı bir protokol MSS ritmi ve MSS ile ilgili davranışsal aşamalarında güvenilir kayıtları elde etmek için, beynin farklı bölgelerinde stereotaksik epidural ve derin intraserebral elektrot yerleştirme anlatılmaktadır.

Sigara frenleyici EEG Radiotelemetry: Epidural ve Derin İntraserebral Stereotaksik EEG Elektrot Yerleştirme

Bu kağıt vivo içinde mikro Bilgisayarlı Tomografi (µCT) tarayıcılar kullanıcılarının nasıl anestezi, doğru getirin ve bir fare için çok az hareket hind bacak tibia yüksek çözünürlüklü görüntüleme sırasında dizginlemek bildirir. Doğru bir şekilde kemik mikro-mimari ölçmek için işlenmiş yüksek kaliteli görüntüler sonucudur.

Uygun konumlandırma ve sıçan Hind riske odaklı yüksek kararlılık düşsel ve kemik mikro mimarisi kullanarak Vivo içinde mikro Bilgisayarlı Tomografi için kısıtlama

Bu çalışmada bir basitleştirilmiş cerrahi müdahale ve kavernöz sinir stimülasyonu sinir-elektrot yalıtım ile gerçekleştirmek için teknik açıklar karmaşık silikon yapıştırıcı ve intracavernous basınç ölçüm kullanarak.

Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç

Bu protokol, intravital mikroskopi ile görselleştirmeyi kolaylaştırmak için bir farenin omuriliğine cam pencere nin yerleştirilmesini açıklar.

Farede Laminektomi ve Omurilik Penceresi İmplantasyonu

Farelerde deneysel ajanlar intratracheal (It) yönetimi genellikle distal akciğerlere asimetrik teslim sonuçlanır.  Bu raporda, her akciğeri operatif olmayan canlı fareler içinde cannulate için doğrudan intrabronchial (ıB) yaklaşımı açıklanmaktadır.  Bu yaklaşım, bir akciğer için seçici olarak ajanlar yönetmek için kullanılabilir ya da her iki akciğerde simetrik Ajan teslim geliştirmek için adapte olabilir.

Fare akciğer Içinde seçici Ajan biriktirme geliştirmek için doğrudan Intrabronchial yönetim

Burada, entegre ventilatör ve fizyolojik izleme modüllerine sahip dijital, düşük akışlı bir anestezi sistemi kullanarak farelere anestezik gazı güvenli ve etkili bir şekilde uygulamak için bir protokol sunuyoruz.

Kemirgenler için Entegre Düşük Akışlı Anestezik Buharlaştırıcı, Ventilatör ve Fizyolojik İzleme Sisteminin Kullanımı

Yetişkin farenin beyin ata tarafından beyin atmasını ortaya çıkarmak için bir protokol sunuyoruz. Minyatür mikroskoplu gradyan-kırılma indeksi lens kullanılarak, in vivo zeytin nöral somata aktivitesini incelemek için kalsiyum görüntüleme kullanılabilir.

In vivo Fare Kalitesiz Zeytinde Kalsiyum Görüntüleme

Bağırsak kaynaklı mikrobiyal metabolitler, hayvanlarda karmaşık davranışlara yol açan çok yönlü etkilere sahiptir. Bağırsak kaynaklı mikrobiyal metabolitlerin beyindeki etkilerini bir rehber kanül aracılığıyla intraserebroventriküler yolla tanımlamak için adım adım bir yöntem sunmayı amaçlıyoruz.

Serbestçe Hareket Eden Farelerde Bağırsak Kaynaklı Mikrobiyal Metabolitlerin İntraserebroventriküler Verilmesi

Öğrenin, fare ve sıçanlarda düşük akışlı dijital anestezi sisteminin güvenli kullanımını. Şırınga tahrikli buharlaştırıcı ile hassas doz kontrolü sağlanır ve hayvan refahı artırılır.

Fare ve Sıçanlarda için düşük akış Dijital Anestezi Sistemi Kullanımı

Daha fazla video keşfet