Sıralı Fumigasyon Kuluçka Prosedürleri kullanma Toprakta Dayanıksız Organik Karbon Değerlendirilmesi

Bu sıralı fümigasyon inkübasyon prosedürünün genel amacı, kararsız karbonu ve topraktaki potansiyel karbon devir hızını tahmin etmektir. Bu yöntem, toprak mikroplarının topraktaki besinleri dönüştürmek için kullandığı substrat miktarı gibi toprak mikrobiyolojisi alanındaki önemli şeylere cevap verebilir. Bu tekniğin ana avantajlarından biri, kullanımının nispeten basit ve ucuz olmasıdır.

Toplamadan önce, toplama alanındaki toprak özellikleri ve bitki örtüsündeki farklılıkları belirleyin. Uygun varyasyon katsayılarını kullanarak, ihtiyaç duyulan numune sayısını ve değişkenlik mesafesini belirleyin. Heterojen toprak koşulları için, her bir kesit üzerindeki numune noktaları arasındaki mesafenin, bir deney birimi içindeki değişkenlik mesafesinden daha küçük olduğu bir ızgara numune modeli belirleyin.

Numune noktalarında toprak yüzeyinden organik maddeleri temizleyin. Bir burgu kullanarak, her toprak örneğini toplayın. Izgaranın her bir kesiti için numuneleri tek bir kapta karıştırın.

Her kompozit numuneyi, toplandıktan hemen sonra buz paketleri olan bir soğutucuya yerleştirin. Saha çalışması tamamlandıktan sonra toprak örneklerini elekten geçirin. Her numuneyi eledikten sonra ağı suyla temizleyin.

Her bir kompozit toprak numunesi için, üç ayrı 100 gramlık numuneyi beherlere yerleştirin. Beherleri laboratuvar filmi ile örtün ve beherleri 10 gün boyunca 25 santigrat derecede önceden inkübe edin. Ardından, her numune için filmi çıkarın ve önceden tartılmış bir alüminyum tartım teknesine bir gram toprak koyun.

Nemli toprağın toplam ağırlığını kaydedin ve tekneyi tartın. Her bir numuneyi tartı teknelerinde 105 santigrat derecede 48 saat kurutun. Ağırlığı ilk 24 saat boyunca her sekiz saatte bir ve daha sonra daha fazla kilo verilmeyene kadar her altı saatte bir kontrol edin.

Tartı teknelerinin bilinen ağırlıklarını kullanarak kuru toprağın ağırlığını belirleyin. Kuru-nemli toprak ağırlığı oranını hesaplayın. Fümigasyona başlamak için, porselen plakalı iki cam vakumlu kurutucunun her birinin altına nemli bir kağıt havlu yerleştirin.

Fümigasyon için bir desikatör belirleyin. Her numune için, her biri 30 gram toprak içeren üç dar cam şişe hazırlayın. Her şişeyi laboratuvar bandı üzerine kurşun kalemle etiketleyin.

Her set için, fümigasyon kurutucusuna iki şişe ve diğer desikatöre üçüncü şişeyi yerleştirin. Fümigasyon kurutucusunu bir davlumbazın içine yerleştirin. 100 mililitrelik bir beherin altını kaynar taşlarla örtün.

Çeker ocakta, behere 50 mililitre etanol içermeyen kloroform dökün. Beheri fümigasyon kurutucusunun ortasına yerleştirin ve desikatörü kapatın. Fümigasyon kurutucusunu bir vakum pompasına bağlayın.

Vakum pompasını açın ve kloroformun 30 saniye kaynamasına izin verin. Ardından, desikatöre hava girmesine izin vermek için pompayı kapatın ve bağlantısını kesin. Bu adımı iki kez daha tekrarlayın.

Kloroformu dördüncü kez iki dakika kaynatın. Ardından, vakumu korumak için desikatörü kapatın. Vakum pompasını kapatın ve bağlantısını kesin.

Diğer kurutucuyu kapatın ve kapatın. Her iki kurutucuyu da oda sıcaklığında karanlık bir yerde 24 saat saklayın. Ardından, fümigasyon kurutucusunu bir davlumbazın içine yerleştirin.

Kurutucuyu boşaltın ve kağıt havluyu çıkarın. Topraklı şişeleri desikatöre yerleştirin, desikatörü kapatın, vakum pompasını bağlayın ve toprak örneklerinden kloroform gazını çıkarmak için vakumu açın. Vakumu beş dakika çalıştırın ve ardından desikatörü boşaltın.

Bu adımı dört kez daha gerçekleştirin, ardından inkübasyon prosedürlerine hazırlamak için toprakla doldurulmuş şişeleri desikatörden çıkarın. Kuluçka kapları hazırlamak için, fümigasyonlu ve fümigasyonsuz alt numuneler için geniş ağızlı polipropilen şişeleri etiketleyin. Daha sonraki titrasyon için üç şişeyi daha toprak kontrolü olmayacak şekilde etiketleyin.

Etiketli her şişe için, 10 numara kauçuk tıpanın ortasına bir delik açın ve deliğe 15 santimetre uzunluğunda bir cam çubuk yerleştirin. 40 mililitrelik bir cam şişeyi bir lastik bantla cam çubuğa yapıştırın. Ardından, orijinal önceden inkübe edilmiş toprak örneğinden üç alt örneğinin her birine bir gram toprak ekleyin.

Fümigasyonlu toprak için etiketlenmiş şişelerden birine bir mililitre deiyonize su koyun. Şişeye bir şişe fümigasyonlu toprak yerleştirin. Durdurucu tertibatının cam şişesine bir mililitre iki molar sodyum hidroksit pipetleyin.

Şişeyi dikkatlice durdurun ve şişeyi laboratuvar filmi ile kapatın. Kalan toprak örnekleri için bu işlemi tekrarlayın. Topraksız kapları da aynı şekilde ancak toprak numuneleri olmadan hazırlayın.

Kuluçka odalarını 10 gün boyunca oda sıcaklığında karanlık bir yerde saklayın. İnkübasyondan sonra, sodyum hidroksit şişesini bir inkübasyon kabından dikkatlice çıkarın. Şişeye iki mililitre bir molar baryum klorür pipetleyin.

Şişeye bir damla fenolftalein ekleyin. Şişeye manyetik bir karıştırma çubuğu ekleyin ve karışımı bir karıştırma plakası üzerinde karıştırmaya başlayın. Bir büret ile, çözelti görünümü kırmızıdan renksizliğe dönene kadar yavaşça 0.1 normal hidroklorik asit ekleyin.

Eklenen hidroklorik asit hacmini kaydedin. Titrasyonu tüm inkübasyon odaları için tekrarlayın ve toprak değerlerini ayrı ayrı not edin. Titrasyon verilerini ve kuru-nemli toprak ağırlığı oranını kullanarak, toprak numunelerinin inkübasyonu sırasında mineralize olan karbondioksiti hesaplayın.

Bundan yola çıkarak, her bir numune seti için mikrobiyal biyokütle karbonunu hesaplayın. Fümigasyona tabi tutulmuş numuneler üzerinde yedi tur daha fümigasyon ve inkübasyon gerçekleştirin ve her döngüden sonra mineralize karbondioksiti hesaplayın. Bu verileri kullanarak, doğrusal olmayan regresyon ile fümigasyona tabi tutulan her bir numune için kararsız organik karbon miktarını ve potansiyel devir süresini belirleyin.

Sıralı toprak fümigasyonu ve inkübasyon yöntemi, kararsız organik karbon veya LOC'deki farklılıkları ve farklı bitki örtüsü koşulları arasındaki potansiyel karbon devir oranlarını tanımlar. Soya fasulyesi koşulları, soya fasulyesi hasadı sırasında biyokütle birikimi ile ilişkili olan en yüksek LOC değerlerine sahiptir. Loblolly çam tarlaları, asidik çam çöpünün baskın toprak organik madde kaynağı olmasıyla ilişkili olan en yüksek potansiyel karbon devir oranlarına sahipti.

Loblolly çamı ve switchgrass alley kırpma sistemi, en geniş örnekleme sahası koşulları yelpazesine sahipti ve switchgrass merası, numune alma sahaları arasında toprak dokularında en büyük çeşitliliğe sahipti. Bu koşulların her ikisi de hem LOC değerleri hem de potansiyel karbon devir oranları açısından geniş bir aralık sergiledi. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, her bir numuneyi çalıştırmak için gereken 80 günlük bir süre boyunca numune başına yaklaşık 30 dakika sürer.

Bu prosedürü doğru bir şekilde yürütmek için hatırlanması gereken şeylerden bazıları, desikatörlerin ve inkübasyon odalarının sıkıca kapatıldığından emin olmak ve sodyum hidroksit içeren şişelere çok yakın nefes almamaktır. Bu prosedürle paralel olarak veya bu prosedürü takiben, toprak mikrobiyal fonksiyonunu daha iyi anlamak için toprakta gerçekleştirilebilecek birkaç farklı enzim testi vardır. Bu videoyu izledikten sonra, sıralı fümigasyon inkübasyon prosedürünü kullanarak Labile Karbon Analizinin nasıl yapıldığını iyi anlamış olmalısınız.

Kloroform ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın. Bu işlemleri güvenli bir şekilde gerçekleştirmek için kişisel koruma ekipmanına ve çeker ocak gerekir.