30 Kasım 2016
Amplifikasyona ihtiyaç duymadan biyolojik substratlardaki molekülleri barkodlayarak ve sayarak gen ekspresyonunu ölçen çoğullanmış yüksek verimli bir gen ekspresyon platformunun kullanımını açıklıyoruz. Platformu, irritabl bağırsak sendromu olan ve olmayan kişilerde tam kandaki mikroRNA (miRNA) ekspresyonunu ölçmek için kullandık.
Bu multipleks nükleik asit miktar tayin protokolünün genel amacı, tam kandaki mikroRNA ekspresyonunu dijital olarak ölçmektir. Bu yöntem, sindirim bozukluklarının incelenmesinde temel soruların cevaplanmasına yardımcı olabilir. MikroRNA'lar gibi düzensiz moleküler mekanizmaların ve biyobelirteç imzalarının tanımlanmasına yardımcı olur.
Bu tekniğin ana avantajı, mikroRNA nicelemesinin amplifikasyona dayanmamasıdır. Bu teknoloji, moleküler hedefleri dijital olarak sayar ve büyük ölçüde otomatiktir. Toplam RNA'yı saflaştırmak için, önceden toplanmış ve dondurulmuş tam kan örneklerini iki saat boyunca çözdürün ve inkübe edin.
Tüpleri oda sıcaklığında on dakika boyunca 5.000 kez g sıcaklıkta santrifüjlemek için sallanan bir kova rotoru kullanın. Ardından, peleti rahatsız etmemeye dikkat ederek bir atık tüpüne dikkatlice dökerek veya pipetleyerek süpernatantları çıkarın. Pelete dört mililitre RNaz içermeyen su ekleyin.
Kapağı güvenli bir şekilde değiştirin ve pelet gözle görülür şekilde çözülene kadar girdaplayın. Ardından, tüpü tekrar santrifüjleyin ve süpernatanı çıkarın. Ardından, peletlere 350 mikrolitre BM1 tamponu ekleyin ve pelet gözle görülür şekilde çözülene kadar girdap yapın.
Ardından, otomatik toplam RNA ekstraksiyonu için numuneyi iki mililitrelik bir işleme tüpüne aktarın. Ticari olarak temin edilebilen bir RNA ekstraksiyon kiti kullanarak, RNA saflaştırma kitinde sağlanan önceden yüklenmiş pipet uçlarını, santrifüj tüplerini, tamponları ve reaktifleri robotik RNA ekstraksiyon sistemine yükleyerek, tam kan örneğinden mikroRNA da dahil olmak üzere hücre içi RNA'nın otomatik saflaştırılmasını gerçekleştirin. Protokol seçim menüsünden Blood miRNA PartA protokolünü seçin ve çalıştırmayı başlatın.
RNA ekstraksiyonunu tamamlayın ve numuneleri metin protokolüne göre saklayın. 12 RNA örneğini mikrolitre başına 33 nanograma normalleştirmek için önce RNaz içermeyen su kullanarak mikroRNA örneklerini hazırlayın. Nükleaz içermeyen su ile, tahlil kitinde sağlanan mikroRNA kontrollerinin 500'de 1'i oranında seyreltilmesini hazırlayın ve buz üzerinde tutun.
Ardından, 13 mikrolitre tavlama tamponu, 26 mikrolitre mikro R-tag reaktifi ve 6,5 mikrolitre mikroRNA kontrolünü birleştirerek tavlama ana karışımını hazırlayın. 12 adet 0.2 mililitre şerit tüpünün her birine 3.5 mikrolitre tavlama ana karışımı ekleyin ve ardından 3 mikrolitre RNA örneği ekleyin. Karıştırmak için tüpleri hafifçe vurun, tezgah üstü mini mikrosantrifüj ile 2000 kez g'de döndürün ve aşağıdaki programı kullanarak tüpleri bir termodöngüleyicide çalıştırın.
Ardından, üç mikrolitre ligasyon tamponu ve 19.5 mikrolitre PEG'i birleştirerek bir ligasyon ana karışımı hazırlayın. Ardından, reaksiyonların her birine 2,5 mikrolitre ligasyon ana karışımı ekleyin. Tüpleri karıştırdıktan ve döndürdükten sonra, beş dakika boyunca 48 santigrat derecede termo döngüleyiciye geri koyun.
Daha sonra, hala termosikler bloğundayken her numuneye doğrudan bir mikrolitre ligaz ekleyin ve aşağıdaki programı kullanarak tüpleri inkübe edin. Tüpleri yavaşça karıştırın ve döndürün ve her numuneye bir mikrolitre ligasyon temizleme enzimi ekleyin. Ardından, tüpleri burada gösterildiği gibi termosiklerde inkübe edin.
İnkübasyondan sonra, karıştırmadan ve döndürmeden önce numunelere 40 mikrolitre RNaz içermeyen su ekleyin. MikroRNA hibridizasyonunu gerçekleştirmek için, raportörü çözün ve buz üzerinde sağlanan prob setlerini yakalayın ve döndürün. Reporter Code Set 2'ye 130 mikrolitre hibridizasyon tamponu ekleyin ve hibridizasyon ana karışımını oluşturmak için karıştırın.
12 yeni 0,2 mililitrelik şerit tüpüne, 20 mikrolitre hibridizasyon ana karışımı ekleyin. 85 santigrat derecede yeni hazırlanan mikroRNA örneklerini beş dakika boyunca denatüre edin ve buz üzerinde soğutun. Ardından, hibridizasyon ana karışımını içeren şerit tüplerinin her birine 5 mikrolitre mikroRNA örneği ekleyin.
Termocycler'ı, 30 mikrolitre hacim hesaplanan sıcaklıkta 65 santigrat dereceye ve ısıtmalı kapağı, çalışmanın sonunda 4 santigrat dereceye kadar düşmemesi için Forever time ayarında programlayın. Her tüpe 5 mikrolitre yakalama probu seti ekleyin ve karıştırın. Ardından, onları döndürdükten sonra, tüpleri hemen 65 santigrat derecede termo döngüleyiciye yerleştirin.
Numuneleri en az 12 saat ve en fazla 30 saat inkübe edin. Önce kartuşu ve plakaları oda sıcaklığına ısıtarak hazırlık istasyonunu kurun. Ardından plakaları aşağı doğru döndürün.
Hazırlık istasyonunu yüklemek için istasyon kapısını açın ve reaktif plakalarını, kartuşu, pipet uçlarını, hazırlanan numuneleri 0,2 mililitrelik şerit tüplere ve iki adet boş 0,2 mililitrelik 12 tüplü şerit tüplerini robottaki uygun yerlere yükleyin. Şerit tüp kapaklarını ve reaktif plakası kapağını çıkarın. Ardından, hazırlık istasyonu kapısını kapatın ve kontrol panelinden uygun tahlili çalıştırın.
Hareketsizleştirilmiş ve yönlendirilmiş üçlü komplekslerin barkodlarını görselleştirmek ve saymak için, kartuşu hazırlık istasyonundan çıkarın, kapatmak için verilen kapağı kullanın ve mevcut herhangi bir yuvaya dijital analizöre yerleştirin. Bir kartuş tanımlama dosyası veya CDF oluşturmak için dokunmatik ekranı kullanın. CDF'deki her örneğe uygun raporlayıcı kitaplık dosyasının atandığından emin olun.
Tarama tamamlandıktan sonra, verileri işlemeden ve analiz etmeden önce, ilgili kalite kontrol ve analiz protokolüne göre veri dosyalarını bir USB sürücü kullanarak veya e-posta yoluyla dijital analizörden indirin. Gen ekspresyon platformu tahlil sistemi, yüksek düzeyde otomatikleştirilmiş doğası sayesinde teknik gürültüyü azaltır ve kullandığı benzersiz kimya, yüksek hassasiyetli gen ekspresyon verileri üretir. Burada gösterilen teknik kopyalar, hem endojen hem de viral mikroRNA ekspresyon miktar tayininde mümkün olan yüksek tekrarlanabilirliği göstermektedir.
Bu yöntem kullanılarak, sağlıklı çalışma katılımcıları tarafından tanımlandığı gibi, beklenen ifadeden sapma gösteren viral kodlu ve endojen insan mikroRNA'ları, IBS'de ilgi çekici hedefler olarak tanımlanabilir. Yöntemin hassasiyeti ve hassasiyeti, düşük ifadeli hedefler arasındaki bozulmaların tespit edilmesini sağlar ve ince bozulmalar da güvenilir bir şekilde gözlemlenebilir. Bu rakamlar, sağlıklı kontrollere kıyasla IBS ve IBS alt tiplerinde dolaşımdaki mikroRNA'lardaki bazı bozulmaları göstermektedir.
IBS katılımcılarında diferansiyel olarak yükseltilmiş en önemli iki mikroRNA burada sunulmaktadır. Bu keman grafiğindeki eğriler, miR-150 için sayımların sıklığını gösterir. Dikey çubuklar birinci ve üçüncü çeyrekleri temsil eder ve kırmızı kare medyan sayıyı gösterir.
Bu prosedürü takiben, daha büyük kohortlarda biyobelirteç imzalarını doğrulamak ve temel RNA ve protein ilişkilerini keşfetmek için aynı teknolojiye dayalı daha hedefli özel tahliller gerçekleştirilebilir. Geliştirilmesinden sonra, bu teknik, biyomedikal araştırma alanındaki araştırmacıların hızlıca, hassasiyet ve doğrulukla hastalık için tanısal biyobelirteç panelleri geliştirmelerinin yolunu açtı.
Bu makale, tam kan örneklerinde mikroRNA ekspresyonunu kantitize etmek için tasarlanmış bir multiplex yüksek verimli gen ekspresyon platformu sunmaktadır. Yöntem, amplifikasyon gerektirmeden doğru ölçüm sağlar ve bu da onu irritabl bağırsak sendromu gibi durumları incelemek için uygun kılar.
This multiplexed high-throughput gene expression platform enables robust, amplification-free quantification of circulating miRNAs, supporting biomarker discovery in digestive disorders such as irritable bowel syndrome. By providing high sensitivity and reproducibility in detecting low-expression miRNA perturbations, the method enhances target validation confidence and reduces mechanistic ambiguity in early discovery. Its automated workflow and digital counting approach improve assay standardization and scalability for cross-functional R&D teams.
The method fits within the discovery continuum from hypothesis-driven biomarker screening to assay validation, supporting progression from early discovery to lead identification in digestive disorder research.