December 14th, 2016
Bu protokol, bir slayt odası modeli kullanılarak konak faktörlerine maruz kaldıktan sonra biyofilm gelişiminin görselleştirilmesini açıklar. Bu model, biyofilm gelişiminin doğrudan görselleştirilmesinin yanı sıra bilgisayar yazılım programları kullanılarak biyofilm parametrelerinin analizine olanak tanır.
Bu prosedürün genel amacı, balgam ve antibiyotiklere yanıt olarak biyofilmlerdeki değişiklikleri görselleştirmek ve ölçmektir. Bu yöntem, araştırmacılar tarafından bakteriyel biyofilmlere karşı çeşitli antibiyotiklerin etkinliğinin balgam varlığından nasıl etkilenebileceği gibi temel soruları anlamak için kullanılabilir. Bu metodolojinin temel avantajı, bireylerin farklı faktörlere yanıt olarak biyofilmlerde meydana gelen değişiklikleri görmelerine izin vermesidir.
Deneye başlamak için, daha önce elde edilen balgam örneğinin hacmini kaydedin. Fosfat tamponlu salin veya PBS ekleyin, numunenin hacminin iki katını ekleyin. Ardından, numuneyi iyice karıştırmak için bir transfer pipeti kullanın.
Numuneyi tamamen karıştırmak için en yüksek ayarda bir dakika boyunca vorteksleyin. Karışımın bir mililitresini 1.5 mililitrelik mikrosantrifüj tüplerine alın. Ardından tüpleri aşağı doğru döndürün.
Santrifüjlemenin ardından, süpernatanı kaydedin ve peleti atın. Filtre, süpernatanı 0.22 mikronluk bir filtreden sterilize eder ve temiz bir mikrosantrifüj tüpünde toplar. Balgam süpernatantını ileride kullanmak üzere 80 santigrat derecede saklayın.
Önceden hazırlanmış 40 mikrolitre kültürü dört mililitre taze Luria suyuna veya LB ortamına yerleştirin ve bakterileri 600 nanometrede 0.55 optik yoğunluğa sahip bir kültür elde etmek için büyütün. Daha sonra, 100 mikrolitre 0.5 OD kültürünü, LB'de 400 mikrolitre hazırlanmış% 10 balgam filtratına seyreltin. Slayt odalarının kuyularını tohumlamak için 200 mikrolitre seyreltme kullanın. Bakterilerin sallanmadan 37 santigrat derecede dört saat boyunca yapışmasına izin verin.
Dört saat sonra, ortamı çıkarın ve biyofilmi 1X taze LB ile nazikçe yıkayın. Kalan ortamı 200 mikrolitre taze LB ile değiştirin. Biyofilmlerin sallanmadan 37 santigrat derecede büyümesine izin verin. Biyofilm mikroskopi için hazır olana kadar ortamı yıkamadan her 12 saatte bir değiştirin. Bağlı bakterileri bozmamak için slaytları nazikçe yıkamak çok önemlidir.
Büyümeyi takiben, ortamı hazne kuyularından çıkarın ve her hazneyi 300 mikrolitre steril PBS ile iki kez nazikçe yıkayın. Daha sonra, biyofilm boyama karışımını hazırlamak için, ihtiyaç duyulan her mililitre çözeltiye canlılık kitinde sağlanan her boyadan bir mikrolitre ekleyin ve çözeltiyi karıştırın. Optimal boya miktarı ve boyama süresi, her organizma için ampirik olarak belirlenir.
Odacıklı kapak camının her bir oyuğuna 200 mikrolitre boyama karışımı ekleyin. Kapak camını inkübe edin. İnkübasyondan sonra, boyama karışımını odalardan çıkarın ve her bir kuyuyu 300 mikrolitre steril PBS ile yıkayın.
PBS'yi yeni ortamla değiştirin. Son olarak, konfokal mikroskopi ile görselleştirmeye devam edin. Burkholderia cepacia kompleksinin veya BCC klinik izolatlarının temsili görüntüleri, odacıklı kapak camında tek başına ortamla veya %10 balgam filtratlarının varlığında 48 saatlik büyümenin ardından, varlıklarının biyofilmin mimarisini değiştirebileceğini göstermektedir.
Görüntüler, %10 balgam ile muamele edildiğinde artan biyofilmin ortalama kalınlığı da dahil olmak üzere temel biyofilm parametrelerini elde etmek için Comstat yazılımı ile analiz edildi. Farklı faktörlerin biyofilm büyümesi üzerindeki etkilerini değerlendirmek için, klinik izolatlar sadece ortamda veya balgamla büyütüldü ve antibiyotikli veya antibiyotiksiz tedavi edildi. Bu videoyu izledikten sonra, odacıklı kapak camı üzerinde biyofilmlerin nasıl oluşturulacağını ve işleneceğini ve bunları boyama ve konfokal analiz için nasıl hazırlayacağınızı iyi anlamalısınız.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Bu protokol, balgam ve antibiyotiklere yanıt olarak biyofilm gelişiminin görselleştirilmesini ve kantitatif analizini slayt odacık modeli kullanarak açıklar. Bu model, biyofilm değişikliklerinin doğrudan gözlemlenmesini sağlar ve bilgisayar yazılımı kullanılarak ayrıntılı analiz yapılmasını mümkün kılar.
Quantitative visualization of biofilm development in the presence of host-derived sputum and antibiotics addresses a critical challenge in anti-infective discovery and translational model fidelity. This approach enables mechanistic de-risking by revealing how host factors modulate antibiotic efficacy and biofilm architecture, informing early-stage target validation and screening strategies. The method supports predictive confidence for portfolio decisions in infectious disease R&D.
This chambered coverglass model integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven testing of antibiotic efficacy in host-mimetic biofilm systems.