-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Konfokal Mikroskobu kullanılarak Transfekte İnsan Embriyonik Böbrek Hücreleri Canlı Hücre Görüntü...
Konfokal Mikroskobu kullanılarak Transfekte İnsan Embriyonik Böbrek Hücreleri Canlı Hücre Görüntü...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Live Cell Imaging and 3D Analysis of Angiotensin Receptor Type 1a Trafficking in Transfected Human Embryonic Kidney Cells Using Confocal Microscopy

Konfokal Mikroskobu kullanılarak Transfekte İnsan Embriyonik Böbrek Hücreleri Canlı Hücre Görüntüleme ve 3D Analiz Angiotensin Reseptör Tip 1a Ticareti

Full Text
10,117 Views
09:51 min
March 27, 2017

DOI: 10.3791/55177-v

Parnika Kadam1,2, Ryan McAllister3, Jeffrey S. Urbach3, Kathryn Sandberg1,2, Susette C. Mueller4

1Department of Biochemistry,Georgetown University Medical Center, 2Department of Medicine,Georgetown University Medical Center, 3Department of Physics,Georgetown University Medical Center, 4Department of Oncology,Georgetown University Medical Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Burada anjiotensin II tedavi tarafından başlatılan endositoz sırasında yeşil flüoresan protein etiketli anjiotensin tip 1a reseptörlerini eksprese görüntü hücrelere bir protokol mevcut. Bu teknik, zaman içinde, üç boyutlu olarak reseptör ve lizozom ko-lokalizasyonunu analiz yazılımı kullanılarak daha sonra etiket, ikinci bir fluoresan işaretleyici ile lizozomlar ve benzerini kapsamaktadır.

Bu deneyin genel amacı, Anjiyotensin iki tedavisinden sonra Anjiyotensin tip bir reseptör lizozom kolokalizasyonunun kantitatif mekansal ve zamansal kanıtlarını elde etmektir. Bu yöntem, içselleştirme sürecinde olduğu gibi, ligand simülasyonuna yanıt olarak ortaya çıkan mutant reseptörlere karşı Y tipinin hücre altı işlenmesindeki farklılıkları tespit etmek için tasarlanmıştır. Bu tekniğin avantajları arasında, yaşam hücresi görüntüleme, sabit ve deterjan geçirgen hücrelerden artefaktları ortadan kaldırması ve reseptör lokalizasyonundaki dinamik değişikliklerin gerçek zamanlı olarak değerlendirilebilmesi sayılabilir.

Uygun bir 1.4 sayısal açıklık objektifi seçerek ve objektifi mikroskop aşaması üzerinde ortalayarak başlayın. Objektif üzerine bir damla yüksek viskoziteli, düşük otomatik floresan daldırma yağı ekleyin ve aktarılan hücrelerin bulunduğu odayı mikroskop aşamasına aktarın. Yağ ilk sürgünün altına değene kadar hedefi yavaşça kaldırın ve loş hücreleri bulun.

İlgilenilen sağlıklı bir hücre ile, görüş alanının merkezinde, konfokal moda geçin ve hücrenin, ventral tarafı kapak kayması ile yakından yan yana gelecek şekilde iyi bir şekilde yayıldığını onaylayın. Z Yığını iletişim kutusunu açın, Canlı'yı tıklatın, hücrenin üst kısmına odaklanın ve ardından Başlat'ı tıklatın. Ardından hücrenin en altına odaklanın, Z adım boyutu 1,00 mikrometre girin ve ardından Son'u tıklatın.

Ardından, üst kısımdaki Edinme ayarları altında XYZT Modu'nu seçin. Son olarak, GFP etiketli Anjiyotensin Tip 1A Reseptörünün lizozomlara hedeflenmesini gözlemlemek için tarama için zaman aralığını ve tarama süresini ayarlayın. Daha sonra ligand stimülasyonunu başlatmak için, görüntülenen kuyucuğa 100 X stok ligand çözeltisinden üç mikrolitre ekleyin ve yanıtı istenen süre ve frekans için 3D olarak görüntülemek için Başlat'a tıklayın.

Canlı hücre görüntülerini analiz etmek için uygun 3D görüntü niceleme yazılımını açın. Bu protokolde Velocity. Görüntü alanına sağ tıklayın ve Özellikler'i seçin.

Ligand tedavisine yanıt olarak GFP etiketli reseptör vezikülünü ve delik hücresi yoğunluklarını analiz etmek için bir ölçüm dizisi oluşturmak için uygun XY ve Z görüntü pikseli özelliklerini girin. 2D menüsü altında, hücreyi gözlemlemek için genişletilmiş odak modunu seçin. Ardından, hücrenin etrafına ilgi çekici bir bölge çizmek için serbest stil bölgesi aracını kullanın ve Seçime Kırp'ı seçmek için görüntüye sağ tıklayın.

Yeni bir görüntü öğesi oluşturulacaktır. Kırpılan hücre görüntüsünü seçmek için görüntü adına tıklayın ve ölçüm sekmesini açın. İçselleştirilmiş veziküllerin GFP ifadesini ölçmek için, Bul'dan Nesneleri Bul'u yukarıdaki dizi kutusuna sürükleyin.

Nesne bul kanalını GFP olarak ayarlayın ve en parlak GFP yoğunluklarına sahip nesneleri seçmek için eşiği standart sapmaya ve alt sınırı altıya ayarlamak için ayarlar simgesini açın. Minimum nesne boyutunu sıfır mikrometre küp olarak ayarlayın. Ardından, ölç'e tıklayın ve kanalları ve ölçüm türlerini seçin.

Tüm hücreyi tanımlamak için eşiklemeyi ve filtreleri tanımlamak ve toplam GFP yoğunluğunu ölçmek için ikinci bir Nesne Bul kutusunu sürükleyin. Ardından, Nesneleri Bul kanalını GFP olarak ayarlayın ve herhangi bir GFP yoğunluğuna ve minimum nesne boyutuna iki mikrometre küp olan nesneleri seçmek için standart sapmayı sıfıra ayarlayın. Filtre Popülasyonu'nu Popülasyon iki Nesne Bul kutusuna sürükleyin ve hücrenin tamamını seçmek ve tüm küçük nesneleri elemek için 100'den büyük bir mikrometre küp hacmi seçin.

Ardından, tüm zaman noktalarında ölçüm yapmak için ölçümleri ve Ölçüm Yap öğesini seçin. Veziküllerde ölçülen GFP ifadesini ve zaman içinde tüm hücreyi analiz etmek için, görüntü adının altındaki ölçüm öğesi dosya adına tıklayın. Toplam verilerden GFP ve veziküller için verileri çıkarmak için ham sekmeyi açın ve popülasyonu seçin.

Ardından, analiz edilen sekmeyi açın ve verilere sağ tıklayın, analizi seçin, ardından popülasyonu seçmek için analizi kısıtlayın. Tüm hücredeki GFP miktarını ölçmek için, her ikisini de popülasyon ikiye değiştirin. Bu Verileri Analiz Et ve Özetleyen altında, GFP renk kanalını topla'yı ve toplamı seçin.

Ardından, Verileri düzenleme ölçütü ve satır'ın altında zaman noktası'nı seçin. Lizozomlardaki GFP miktarına ilişkin verileri çıkarmak için, birinci popülasyon için Nesneleri Bul'da nesneleri bul kanalını kırmızı kanala ayarlayın. İletişim kutusundaki tekerlek simgesinde, kullanarak eşiği standart sapmaya, en parlak yoğunluklara sahip kırmızı nesneleri seçmek için alt sınırı altıya ve minimum nesne boyutunu 0,017 mikrometre küp olarak ayarlayın.

Ölçümleri seçin ve tüm zaman noktalarında ölçüm yapmak için ölçüm öğesi yapın. Lizozomlarda ölçülen GFP ekspresyonunu analiz etmek için, görüntü adının altındaki ölçüm öğesi dosya adına tıklayın. Ham sekmesi altında popülasyon bir'i seçin ve ardından popülasyon bir'i seçin ve analiz sekmesi altında GFP renk kanalını ve toplamını toplayın, kırmızı veziküllerdeki GFP miktarını ölçmek için daha önce olduğu gibi sağ tıklayın.

Ligand stimülasyonundan önce, GFP etiketli Anjiyotensin Tip 1A Reseptörleri ağırlıklı olarak plazma zarında lokalizedir. Ancak Anjiyotensin iki ilavesinden sonraki 2.5 dakika içinde, bu reseptörler içselleşir, parlak veziküller oluşturur ve daha sonra kümelenir ve büyük paranükleerzom vezikülleri oluşturur. Anjiyotensin iki kaynaklı fırfırlama, bu temsili GFP ekspresyonu ölçüm verileri için gözlemlendiği gibi toplam vezikül GFP yoğunluğunun ölçülmesini zorlaştırır.

Boyut filtreleme, daha büyük fırfırlar ve kümelenmiş veziküller arasında ayrım yapmaz, ancak daha küçük nesnelerdeki GFP'nin daha büyük nesnelerdeki GFP'den daha erken arttığını ortaya çıkarır. Otofokus olmadan GFP ekspresyonunun bu temsili zaman seyrinde, içselleştirilmiş GFP, toplam hücresel GFP yüzdesi olarak ölçüldü. Hücre içindeki toplam GFP'nin analizi, bu hücrenin zaman içinde kayda değer bir şekilde ağartıcı olmadığını ortaya koydu.

Transfekte edilmiş hücrelerin lizozomlarındaki GFP'nin miktar tayini, lizozomlar içinde bulunan Anjiyotensin Tip 1A Reseptörünün yoğunluğunun, Anjiyotensin iki uygulamasından sonra 24 dakikaya kadar değişmediğini de gösterir. Bu prosedür sırasında, görüntüleme öncesinde ve sırasında hücrelerin sağlığını izlemeyi hatırlamak önemlidir, çünkü prosedür zaman alıcıdır, hücre kültürleri herhangi bir şekilde anormal ise deney iptal edilmelidir. Bu prosedürü takiben, reseptörlerin hücre altı lokalizasyonunu tespit etmek ve doğrulamak için immün boyama ve FRET veya FLIM kullanılabilir.

Western blotları, reseptör kaçakçılığı sırasında yer alan sinyal moleküllerindeki kimlik ve değişiklikleri ele almak için yapılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, lizozomlara ve diğer hücre altı bölmelere yönelik ligand kaynaklı transmembran reseptörünü ölçmek için canlı hücre görüntüleme ve analizinin nasıl gerçekleştirileceğini iyi anlamış olmalısınız.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Moleküler Biyoloji Sayı 121 canlı hücre görüntüleme lazer tarama konfokal mikroskopi anjiyotensin tip 1 reseptör transfeksiyon endozomlar hücre içi veziküller üç boyutlu görüntü analizi lizozomlar transmembran reseptörleri gelişmiş yeşil floresan protein

Related Videos

Konfokal Görüntüleme İzolasyon ve Yetişkin kardiyak miyositler Genetik Manipülasyon

12:15

Konfokal Görüntüleme İzolasyon ve Yetişkin kardiyak miyositler Genetik Manipülasyon

Related Videos

15K Views

Görüntüleme Protein-protein etkileşimleri In vivo

11:15

Görüntüleme Protein-protein etkileşimleri In vivo

Related Videos

21.8K Views

Lökotrien B Gerçek zamanlı görüntüleme 4 Hücre aracılığı ile Göç ve β-arrestin BLT1 Etkileşimleri

13:45

Lökotrien B Gerçek zamanlı görüntüleme 4 Hücre aracılığı ile Göç ve β-arrestin BLT1 Etkileşimleri

Related Videos

13.2K Views

Üç boyutlu Matrix floresan etiketli Proteinler ifade Geçiş Hücreler Canlı hücre Görüntüleme

10:26

Üç boyutlu Matrix floresan etiketli Proteinler ifade Geçiş Hücreler Canlı hücre Görüntüleme

Related Videos

13.6K Views

Gelişmekte Neuroepithelium Hücre Davranış Yüksek çözünürlüklü Canlı Görüntüleme

10:59

Gelişmekte Neuroepithelium Hücre Davranış Yüksek çözünürlüklü Canlı Görüntüleme

Related Videos

13.8K Views

Üç boyutlu Floresans Images Hücresel Morfoloji Değişiklikleri rakamlarla Analitik Aracı

10:00

Üç boyutlu Floresans Images Hücresel Morfoloji Değişiklikleri rakamlarla Analitik Aracı

Related Videos

15.1K Views

Kültür Hücrelerinin retikulum Subdomain'ler Görselleştirme

16:43

Kültür Hücrelerinin retikulum Subdomain'ler Görselleştirme

Related Videos

13.6K Views

İlköğretim Rat Yenidoğan kardiyomiyositlerin Canlı Hücre Görüntüleme Adenoviral izlenerek ve Lentiviral İletimi Confocal Disk Mikroskopi Spinning kullanma

13:36

İlköğretim Rat Yenidoğan kardiyomiyositlerin Canlı Hücre Görüntüleme Adenoviral izlenerek ve Lentiviral İletimi Confocal Disk Mikroskopi Spinning kullanma

Related Videos

14K Views

Analiz İn Vivo Hücre Göç Zebra balığı Embriyolar hücre nakli ve Time-lapse Görüntüleme kullanılarak

11:39

Analiz İn Vivo Hücre Göç Zebra balığı Embriyolar hücre nakli ve Time-lapse Görüntüleme kullanılarak

Related Videos

8.2K Views

Lökosit haddeleme ve yapışma Anjiyotensin II-infüzyon farelerde görselleştirme: teknikleri ve Püf noktalar

10:16

Lökosit haddeleme ve yapışma Anjiyotensin II-infüzyon farelerde görselleştirme: teknikleri ve Püf noktalar

Related Videos

9.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code