Name: yetiştirme Geyik kenesi, Siyah Ayaklı Tik Tak: Fare üzerinde Olgunlaşmamış Evreleri Besleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min
Description: Öğrenin fare üzerinde olgunlaşmamış geyik kenesi besleme protokolünü. Bu yöntem kanla beslenmiş kenelerin hayatta kalma oranını artırır, fare konakçısındaki stresi azaltır ve tek bir günde toplama imkanı sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, Nevada Üniversitesi, Reno, Laboratuvar Hayvanları Tıbbı personelinin yardımını kabul eder. MM, Nevada INBRE'den fon aldı.

aşağıda özetlenen protokolü (Sayı-00682) Nevada Reno Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış ve Nevada, Reno hayvan araştırma etik komitesi Üniversitesi kurallarına uygun olduğundan. Kısaca, fareler izofluran ile anestezi uygulandı ve burunluk 20 dakika süre ile devamlı izofluran düzeylerini muhafaza için kullanılmıştır. Bir veteriner merhem anestezi altında gözlerin kurumasını önlemek için kullanılmıştır. Ayak tutam anestezi seviyesini tespit etmek için kullanıldı ve nefes alma hızı prosedürü boyunca ölçüldü. Fareler ayrı kafeslerde tutulur ve bilinç kazanmış kadar takip edildi. Fareler kene beslemek için sadece bir kez kullanıldı ve post kene kurtarma ötenazi uygulandı. Ötenazi Hayvan Tıp personeli personelin Laboratuvarı tarafından gerçekleştirilmiştir. CO2 ve servikal dislokasyon hayvanlar ötenazi kullanılmıştır. NOT: keneler üzerinde çalışmak tam bir kişisel koruyucu eq kullanımını gerektiriruipment. Olgunlaşmamış keneleri saymak için, beyaz laboratuar önlüğü giyin, lastik bantlarla kaplı laboratuar kaplamasının manşonu açıklığını örten uzun nitril eldivenler ve kapalı ayakkabı kullanın. Fareleri kenelerle enfeste öldürmek için saç ağını, tek kullanımlık tulumları, kolları üzerine uzun kollu eldivenleri ve ayaklıkları kullanın. Yanlış kene tespiti için beyaz veya açık renkli tulum kullanın. Eldiven ve kılıfları periyodik olarak kontrol edin. 1. Hayvan Barınağına Hazırlanma Odası <ol><li> Kenelerle bulaşmış fareleri eve ayırmak için ayrı bir oda belirleyin. Kazara kene kaçışını önlemek için, yapışkan bir hasır veya iki taraflı halı bantını kapının dışında ve içinde yerleştirin. </li></ol> 2. Fare Infestation için Keneler Sayma <ol><li> Çift taraflı bantları 7 &quot;x 5&quot; x 14 &quot;plastik kapların üst kenarlarına koyun ve yaklaşık 2 cm su ile doldurun. </li><li> Kabın ortasına başka bir küçük kutu veya Petri kabı koyun ve 1 cm su ile doldurun,# 34; Bu kapsayıcı etrafına hendek&quot; </li><li> Petri kabı içinde larva veya perileri içeren flakon saklayın. </li><li> şişeden larvaları ya da nymphs çıkarın ve mikroskop altında saymak için iyi bir boya fırçası kullanın. 50 larva veya ayrı ayrı sintilasyon şişelerine 25 nymphs sayın. naylon mesh veya organze kumaş ekran ve lastik bantlar ile yakın hemen şişeleri örtün. </li></ol> Olgunlaşmamış Keneler 3. İstila Fareler <ol><li> beyaz veya açık renkli çalışma tezgahı kullanın ve çalışma alanının çevresinde çift taraflı bant yapıştırın. </li><li> izofluran ile fare anestezisi. Ayak tutam tarafından anestezi seviyesini kontrol edin. Bir kez anestezi, kağıt havlu ile örtülü bir ısıtma pedi fare aktarmak ve sürekli izofluran temini için bir burun konisi eklemek. </li><li> kuruluğu önlemek için vazelin esaslı göz merhemi uygulanır. Min normal başına 230 nefes br halinde izofluran seviyesini azaltmak -. Izofluran seviyesi (80 ayarlamak için fare solunum desen NotHayvanı öldürmekten kaçınmak için eating oranı dakikada 80 nefesin altındadır). </li><li> Bir şişe 50 larva veya 25 nimf alın ve kulakların arasında kürkün altına kene takozları bir boya fırçası ile yerleştirin ( Şekil 1 ). Kenların iliştirilmesi için yeterli zaman tanımak için 20 dakika boyunca fare ile anestezi altında tutun. </li><li> Fareyi, statik kapaklar ve beyaz yatak takımı ile standart, plastik bir ayakkabı kutusu tipi tek kullanımlık fare kafesine taşıyın. Normal fare bakımı uyarınca oyuncaklar , su ve yiyecekleri ad libitum olarak verin. </li><li> Fare kafesini, üst kenarlar etrafında çift taraflı yapışkan bant ile kaplı daha büyük bir fare veya gerbil kafesi içinde saklayın. Dış kafese 3 cm su doldurun ( Şekil 2 ). </li></ol> 4. Farelerden Kene Toplama <ol><li> Olgunlaşmamış keneler, beslenmenin 3. ve 6. günleri arasında ayrılır. Kafesleri ve su hendeklerini 3. günden sonra her gün tıkanmış keneler için kontrol edin. </li><li> 4. ve 6. günler arasında kafesden müstakil keneler toplayın. Bir ağrı kullanınT fırça veya yumuşak forseps ile tıkanmış kene tutun ve naylon örgü kumaş lastik bantlarla sabitlenmiş temiz sintilasyon şişeleri içinde saklayın. </li><li> Kalan kenarlar için 7. günde anestezi uygulayın ve fare kontrol edin. </li><li> 7. günde engellenmiş keneler için yatak takımları, yiyecek yemi ve su şişesini kontrol edin. Yukarıda açıklandığı gibi prosedürü takiben fareleri euthanize edin. Tek kullanımlık kafesleri, yatak takımları, su şişesi ve yiyecek yalakçısı otoklav ederek, kaçmayan kaynaksız kenelerden kaçınınız. </li></ol> 5. Fed Kenarlarının Depolanması <ol><li> % 90 nemde tıkanmış kene koruyun, 20 ° C ve 12:12 ışık: koyu renk döngüsü, nem ve sıcaklık kontrolü altındaki inkübatör oluşuncaya kadar. Bu işlemin yaklaşık 12 ila 18 hafta sürebilir. </li><li> Yüksek nem, kene sağkalımını arttırırken, kenelerin mantar büyümesine eğilimli olmasını sağlar. Kalıp için haftada en az bir kere mikroskop altında beslenen keneleri kontrol edin. Saptanırsa, hayatta kalanları% 5 etanol içinde 5Dak., Suda durulayın, kuru bir filtre kağıdına aktarın ve yeni, temiz tüplere aktarın. </li></ol>

<ol><li>Gleim, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+associated+with+tick+bites+and+pathogen+prevalence+in+ticks+parasitizing+humans+in+Georgia%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Parasites+%26amp%3B+Vectors%22%5BJournal%5D)">Factors associated with tick bites and pathogen prevalence in ticks parasitizing humans in Georgia, USA.</a> Parasites &amp; Vectors. 9 (125), Available from:
 <a target="_blank" href="http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6">http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6</a> 1-13 (2016).</li>
<li>Krober, T., Guerin, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+feeding+assays+for+hard+ticks%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Parasitol%22%5BJournal%5D)">In vitro feeding assays for hard ticks.</a> Trends Parasitol. 23 (9), 445-449 (2007).</li>
<li>Kuhnert, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+of+Hard+Ticks+In+Vitro%3A+New+Perspectives+for+Rearing+and+for+the+Identification+of+Systemic+Acaricides%5BTitle%5D)+AND+%22ALTEX%22%5BJournal%5D)">Feeding of Hard Ticks In Vitro: New Perspectives for Rearing and for the Identification of Systemic Acaricides.</a> ALTEX. 13 (2), 76-87 (1996).</li>
<li>Voigt, W. P., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8233589">In vitro feeding of instars of the ixodid tick Amblyomma variegaturn on skin membranes and its application to the transmission of Theileria mutans and Cowdria ruminantium.</a> Parasitol. 107, 257-263 (1993).</li>
<li>Gregson, J. D. Ticks. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGregson%2C+JD+%22Insect+Colonization+and+Mass+Production%22">Insect Colonization and Mass Production</a>. Smith, C. N. , Academic Press. New York. 49-72 (1966).</li>
<li>Sonenshine, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSonenshine%2C+DE+%22Biology+of+Ticks%22">Biology of Ticks</a>. 2, Oxford University Press. New York. (1993).</li>
<li>Bouchard, K. R., Wikel, S. K. Care, maintenance, and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBouchard%2C+KR+%22Biology+of+Disease+Vectors%22">Biology of Disease Vectors</a>. Marquaedt, W. C. , Elsevier. New York. 705-711 (2005).</li>
<li>Schumaker, T. S., Barros, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+cycle+of+Ornithodoros+%28Alectorobius%29+talaje.+%28Acari%3AArgasidae%29+in+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Life cycle of Ornithodoros (Alectorobius) talaje. (Acari:Argasidae) in laboratory.</a> J Med Entomol. 32, 249-254 (1995).</li>
<li>Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+life+cycle+of+Ixodes+woodi+%28Acari%3AIxodidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory life cycle of Ixodes woodi (Acari:Ixodidae).</a> J. Med. Entomol. 35, 177-179 (1998).</li>
<li>James, A. M., Oliver, J. H. Jr Feeding and host preference of immature Ixodes dammini,I.scapularis,and I.pacificus.(Acari:Ixodidae). <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Feeding+and+host+preference+of+immature+Ixodes+dammini%2CI.scapularis%2Cand+I.pacificus.(Acari%3AIxodidae)">J. Med. Entomol</a>. 27, 324-330 (1990).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Protokolün Kritik Adımları Kazara kaçmayı önlemek için kenevir yetiştirirken birkaç güvenlik seviyesine sahip olmak önemlidir. Yapışkan bant ve su hendeği kullanımı, güvenliği sağlamak için kritik öneme sahiptir. Vücut ısısını sabit tutmak için anestezi uygulanmış fareyi ısıtma pedinde tutmak önemlidir. Fareyi tıraş etmenin kene ataşmanı için herhangi bir ek fayda sağlamadığını da bulduk. Bireysel bir fare, belirlenen bir &quot;kene odası&quot; nda bir hafta boyunca aynı kafeste tutulabilir ve ...

Keneler omurgalıların zorunlu hematophagous ektoparazitlerdir ve dünya çapında dağıtılmaktadır. Amerika Birleşik Devletleri&#39;nde, kenelerin en az 11 türün halk sağlığı önemi 1&#39;in patojenlerin vektörler bulunmaktadır. Ixodes scapularis, Lyme hastalığı (Borrelia burgdorferi) ateş (B. miyamotoi) nükseden, insan granülosit anaplazmoz (Anaplasma phagocytophilum) ve babeziyoz neden olan maddeler olarak çeşitli patojenlerin iletiminden sorumludur (Babesia spp.). Laboratuvarda çalışmalar için vahşi bolca bu arachnids toplama bir hastalık vektörü olarak I. scapularis önemine rağmen her zaman mümkün değildir. Bu nedenle, sağlıklı laboratuvarda yetiştirilmiş kene üretimi kene biyolojisi üzerinde çalışmalar çok önemlidir ve etkileşimleri-patojen işaretleyin. I. scapularis dahil tüm sert keneler (aile Ixodidae), yaşam döngüsü, yumurta ve üç activ oluşurE aşamaları: larva, nimf ve yetişkin. Her aktif aşamada bir omurgalı konakçı beslenir. Bağlar ve besleme birkaç gün içinde keneler ve onların konak arasında gerçekleşen karmaşık etkileşimler yapay besleyiciler kullanarak çoğaltmak için neredeyse imkansızdır ve 2 , 3 , 4 toplu yetiştirme için yeterli sayıdaki beslemiş kenelerin sağlanması pek olası değildir. Dolayısıyla, canlı fareler ve tavşanlar en sık olgunlaşmamış (larvalar ve nimfler) yetiştirme ana bilgisayarları ve tavukların olgun aşamaları (yetişkinler) olarak kullanılır. Her gelişim evresi boyunca kan beslemeye yönelik çoklu konut gereksinimi, kenelerin yetiştirilmesini zorlaştırmaktadır ve zaman ve maliyet yoğun 5 , 6 , 7 . Çoğu kene destekleme protokolleri, fareleri asma tel ızgara taban kafesindeki 7 , 8 ya da silindirik bir kabin içinde tutmayı gerektirirHayvan öyle boyutlara sahip ki, hayvan serbestçe hareket edemez ve kendini damatlayamaz 6 , 9 , 10 . Bu silindirik kafesler daha sonra bir tel örgü ile bir ayakkabı kutusu kafesine aktarılır. Sızdırılmış, ayrılmış keneler altındaki sudan toplanır. Bununla birlikte, bu yöntem, beslenen kenelerin, idrar ve dışkı ile kirlenmiş mantar büyümesini ve kene ölüm oranını artırabilecek suya maruz kalmasına neden olur. Buna ek olarak, kene su çukurundan kaçma ve aynı zamanda farelere stres yaratma olasılığını artırır. Bu sorunları gidermek için, burada plastik ayakkabı kutusu tipi tek kullanımlık kafeslerdeki farelerde larval kene beslemeyi göstermektedir. Bu yöntem, farelerin normal davranışına izin verir, tıkanmış tıkanıklığı artırır ve kontaminasyondan ötürü kene ölümünü azaltır.

<table><tbody><tr><td>Puralube veteriner merhemi</td><td>Amazon</td><td></td><td>Herhangi bir Evcil hayvan mağazasından veya çevrimiçi mağazadan temin edilebilir</td></tr><tr><td>Tek kullanımlık fare kafesi</td><td>&nbsp; Yenilikçi, San Diego, CA&nbsp;</td><td>MV 2</td><td>Alt ve kapak seti</td></tr><tr><td>Beyaz Alpha dri nevresim&nbsp;</td><td>Laboratuvar Kaynağı, Fort Worth, TX</td><td>&nbsp; ALPHA-Dri&ticaret;</td><td></td></tr></tbody></table>

yetiştirme<em&gt; geyik kenesi,</em&gt; siyah ayaklı tik tak: fare üzerinde olgunlaşmamış evreleri besleme

Rearing Ixodes scapularis, the Black-legged Tick: Feeding Immature Stages on Mice

Lyme hastalığının vektörü Ixodes scapularis , doğu ve orta batı Amerika Birleşik Devletleri&#39;ndeki en önemli hastalık vektörlerinden biridir. Bu tür, her gelişim evresi için bir omurgalı konakçıdan bir kan yemek isteyen üç ana kene ve yetişkin dişiler üreme için kan dolumu gerektirir. Larval keneler beslenmek için ev sahibine 3 - 5 gün boyunca bağlarlar ve evin tamamen tıkıldıktan sonra bırakırlar. Birkaç farklı konağa bağımlılık ve engorgement için uzun ekleme zamanı, laboratuar ortamında kenelerin yetiştirilmesini zorlaştırır. Bununla birlikte, kene biyolojisi ve kene-patojen etkileşimlerini anlamak için sağlıklı, laboratuar bakımlı kenelerin üretimi önemlidir. Burada, farelerde olgunlaşmamış kene beslemeye yönelik basit ve uygun maliyetli bir protokol gösteriyoruz. Farelerde azaltılmış stres için varolan protokolleri değiştirdik ve kenelerin temas etmesini önlemek için örgü dipleri olmayan tek kullanımlık kafesleri kullanarak kene besleme başarısı ve hayatta kalma oranını arttırdık.İdrar ve dışkılarla kirlenmiş su.

Geliştirilmiş besleme etkinliği ve fare konak üzerinde stresin azaltılması için mevcut kenot yetiştirme protokolleri 6 , 10&#39;u değiştirdik. Sonuçlar, standart ayakkabı kutusu tarzı fare kafeslerinin, kenelerin yetiştirilmesi için çok uygun olduğunu ortaya koymaktadır. Beyaz yatak, beslenen kenelerin kolay toplanması için iyi bir kontrast sağladı. Çoğu keneler, beslendikten sonra kapların duvarlarına tırmandı ve toplanması kola...

Sağlıklı laboratuarda yetiştirilen kenelerin üretimi, kene biyolojisi ve kene patojen etkileşimleri üzerine çalışmalar için gereklidir. Burada, fare için düşük maliyetli ve stresli olgunlaşmamış kene beslemesi için basit bir protokolü gösteriyoruz.

yetiştirme<em&gt; Geyik kenesi,</em&gt; Siyah Ayaklı Tik Tak: Fare üzerinde Olgunlaşmamış Evreleri Besleme

Ixodes scapularis, the vector of Lyme disease, is one of the most important disease vectors in the eastern and Midwestern United States. This species is a ...

Bu kene besleme protokolünün genel amacı, kemirgen konakçıya verilen stresi azaltırken kanla beslenmiş kenelerin hayatta kalma oranını artırarak mevcut standartları geliştirmektir. Bu yöntem, kene kolonisi yetiştirmeyi basitleştirmenin yanı sıra, makrobiyoloji alanlarındaki temel biyolojik soruları yanıtlamak için gerekli olan, tek bir toplama gününde çok sayıda kanla beslenmiş kenenin toplanması için daha kolay bir yol sunar. Bu tekniğin temel avantajı, kenelerin fare ekskretaları içeren suya maruz kalmaması ve böylece kene mortalitesinin azaltılmasıdır.Ek olarak, keneler tek bir günde toplanabilir ve bu durum farenin stresini azaltır. Sayım için kene tüplerini muhafaza etmek amacıyla, kaçışın minimum düzeyde olduğu bir kap hazırlayın. Plastik bir kabın üst kenarlarının tamamına çift taraflı bant yapıştırın.Ardından, kabı yaklaşık iki santimetre suyla doldurun. Sonra, kabın merkezine başka bir küçük kutu veya kap yerleştirin ve batıp konumunu koruması için içini yaklaşık bir santimetre suyla doldurun. Kene larvaları veya nimfleri içeren vialleri bu kutu veya kabın içine yerleştirin.Bir enfestasyon için keneleri saymak amacıyla, larvaları veya nimfleri şişeden çıkarmak için bir mikroskop ve ince uçlu bir resim fırçası kullanın. 50 larva veya 25 nimfi bir sintilasyon şişesine aktarın. Bir şişe tamamen doldurulduğu anda, üzerini naylon ağ veya organdi kumaş ekranla kapatın ve kapağı sıkı lastik bantlarla sabitleyin.Kenelerle enfekte olmuş farelerin tutulması için ayrı bir oda belirleyin. Kenelerin yanlışlıkla kaçmasını önlemek için odanın dışına yapışkan bir paspas veya çift taraflı halı bandı yerleştirin ve odanın kapısının içine başka bir paspas koyun. İlk olarak, farelerin yakınında kenelerle çalışmak için bir alan hazırlayın.Beyaz veya açık renkli bir çalışma tezgahı kullanın. Tezgah üzerindeki çalışma alanının çevresine çift taraflı bantla bir çerçeve oluşturun. Ardından, bir fareyi isofluran ile anestezi altına alın.Hazır olduğunda, fareyi kağıt havluyla kaplı bir ısıtma pedine transfer edin ve izofluranın sürekli verilmesini sağlamak için bir burun konisi takın. Anestezi düzeyini ayak parmağı sıkıştırma yöntemiyle kontrol edin. Anestetik dozunu solunum paternine göre ayarlayın.Dakikada 80 ila 230 nefes normaldir. Solunum yavaşlarsa izofluran miktarını azaltın. Ayrıca, gözlere vazelin bazlı bir oftalmik pomad uygulayın.Şimdi, 50 larva veya 25 nimf içeren bir flakonu alın ve bir resim fırçası kullanarak keneleri fareye aktarın. Keneleri, baş bölgesinde kulakların arasındaki kürkün altına yerleştirin. Son keneyi yerleştirdikten sonra, fare onları temizlemeye çalışmadan önce kenelerin tutunabilmesi için fareyi 20 dakika boyunca anestezi altında tutun.20 dakika sonra fareyi, kenelerin daha kolay görülebilmesi için beyaz altlığın bulunduğu yeni bir kafese geri koyun. İçine bazı oyuncaklar ekleyin ve suya ve yeme serbest erişim sağlayın. Sıkı kapanan kapaklı tek kullanımlık kutular kullanın.Ardından, ev kafesini, duvarlarının üst iç kenarları boyunca çift taraflı yapışkan bant bulunan daha büyük bir sıçan veya gerbil kafesinin içine yerleştirin. Daha sonra, kafeler arasındaki boşluğu yaklaşık üç santimetre su ile doldurun. Olgunlaşmamış keneler, üç ila altı günlük beslenmenin ardından ayrılacaktır.Üçüncü günden itibaren, kafesleri ve çevreleyen suyu her gün şişmiş keneler açısından kontrol edin. Ayrılmış keneleri bir resim fırçası veya yumuşak pens kullanarak toplayın ve bunları lastik bantlarla sabitlenmiş naylon ağ kumaş kapaklı temiz sintilasyon şişelerine aktarın. Yedinci günde, fareyi daha önce yaptığınız gibi anesteziye alın ve yapışmış kalan kene olup olmadığını kontrol edin.Ayrıca, altlığı, yemliği ve suyu iyice kontrol edin. Ardından, fareyi ötanize edin ve kalan keneleri yok etmek için tek kullanımlık kafesleri, altlığı, su şişesini ve yemliği otoklavdan geçirin. Kanla doymuş keneleri kontrollü bir inkübatörde barındırın.Keneler 12 ila 18 hafta içinde deri değiştirmelidir. Haftada en az bir kez, keneleri mikroskop altında küf yönünden kontrol edin. Herhangi bir küf tespit edilirse, hayatta kalan keneleri beş dakika boyunca %70 etanol ile yıkayın.Ardından, hayatta kalanları suyla durulayın ve kurumaları için bir filtre kağıdına aktarın. Temizlendikten ve kuruduktan sonra keneleri yeni, temiz tüplere aktarın ve yaşam döngülerine devam etmelerini sağlayın. Kenelerin çoğu beslendikten sonra kapların duvarlarına tırmanmış ve kolayca toplanabilmiştir.Keneler fare kafeslerinden nadiren kaçtı. Beyaz altlık, beslenmiş kenelerin tespit edilmesi için iyi bir kontrast sağladı. Toplamalar sırasında, kenelerin çoğu dördüncü güne kadar ayrılmıştı.Birkaçı bırakmak için beşinci güne kadar bekledi ve yedinci güne gelindiğinde hiçbir farede kene bulunmuyordu. Kenelerin yaklaşık 2/3'ü tutunmayı ve doygunluğa ulaşana kadar beslenmeyi başardı. Farelerin tamamı sağlıklı kaldı ve herhangi bir rahatsızlık belirtisi göstermedi.Bu yöntem uzmanlaşıldığında, tek bir toplama gününde yüzlerce kanla beslenmiş kene sağlayabilir. Bu prosedürü gerçekleştirirken, kenelerin yanlışlıkla yapışmasını önlemek için tam kişisel koruyucu donanım (KKD) giymeyi hatırlamak önemlidir.

rearing-ixodes-scapularis-black-legged-tick-feeding-immature-stages

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Keneler hemolimf, tükrük bezleri ve tükürük toplama patojenler hastalıklara nasıl neden kene kaynaklı incelemek önemlidir. Bu protokolü biz beslenmesini hemolimf ve tükrük bezleri toplamak nasıl...

Ixodes scapularis Keneler gelen tükürük, Tükürük Bezi ve hemolimf Koleksiyonu

Lyme hastalığı Kuzey Amerika'daki en sık bildirilen vektör kaynaklı bir hastalıktır. Etkeni, Borrelia burgdorferi keneler kene ile bulaşan bir spioket bakteridir. Hayvan modellerinde enfeksiyonun İletim ve saptama burada açıklandığı kene besleme, kullanılmasıyla optimize edilir.

Lyme Hastalığı Araştırma İletim ve Xenodiagnosis için Hayvanlar Keneler besleme

Bu çalışmada, laboratuvar faresine bağlı bir kapsül kullanılarak sert kenenin nymphal ve larva evreleri için bir besleme sistemi geliştirilmiştir. Besleme kapsülü esnek malzemelerden yapılır ve en az bir hafta boyunca fareye sıkıca bağlı kalır ve kene beslemenin rahat bir şekilde izlenmesini sağlar.

Laboratuvar Farelerde Olgunlaşmamış Sert Kene Aşamaları Enfestasyon için Kapsül Tabanlı Model

Mevcut protokol, kene embriyolarının enjekte edilmesi için bir yöntemi açıklamaktadır. Embriyo enjeksiyonu, transgenik çizgiler oluşturmak için genetik manipülasyon için tercih edilen tekniktir.

Siyah Ayaklı Kene Gen Düzenleme için Embriyo Enjeksiyon Tekniği, Ixodes scapularis

Burada sunulan, çeşitli kene yaşam aşamalarının kısmi veya tam olarak engorgementine izin vermek için yapay bir membran sistemi aracılığıyla keneleri in vitro olarak kan beslemek için bir yöntemdir.

Ixodes scapularis için Kene Yapay Membran Besleme

Bu makale, klinik araştırmalar için insanları larva Ixodes scapularis'e maruz bırakma metodolojisini sunmaktadır. Teknik nispeten basittir, araştırma gönüllüleri tarafından tolere edilebilir ve deneysel ihtiyaçlara göre değiştirilebilir. İnsan denekleri içeren bu tür araştırmalar, uygun düzenleyici makamlar tarafından onaylanan klinik çalışma protokolleri kapsamında yürütülmelidir.

İnsanların Larva Ixodes scapularis Kenelerine Deneysel Maruziyeti İçin Bir Model

Bu yöntem, 3D baskılı bir oda ve laboratuvarda üretilmiş silikon membranı içeren in vitro kene kan besleme sisteminin geliştirilmesini öngörür. Sistem, kenelerin yapay beslenmesini sağlar, çeşitli beslenme evrelerinde kolayca örnekleme alınır ve düşük miktarda kan kullanılır; bu da ixodid kenelerini incelemek için paha biçilmez bir araç sağlar.

Ixodid kene araştırmalarında 3D baskılı bir odada yapay bir zardan beslenen kene kanı

Lyme hastalığı araştırma çalışmaları, genellikle bir süreç genellikle birkaç hafta sürer patojen Borrelia burgdorferi ile enfekte kenelerin nesil gerektirir. Burada saat içinde yapılabilir mikroenjeksiyon tabanlı bir kene enfeksiyonu prosedürü göstermektedir. Ayrıca keneler içinde B. burgdorferi in situ lokalizasyonu için immünofloresan yöntemi göstermektedir.

Hızlı Aktarım ve Lyme Hastalığı Patojenler lokalizasyonu için işaretleyin Gut içinde Yöntemleri

Yöntemin hemocoel içine entomopatojenik bakteri doğrudan enjeksiyon kullanır burada...

Ve Yetiştirme ve Enjeksiyon<em&gt; Manduca Sexta</emBakteriyel virülans Değerlendirememesi&gt; Larva

Mast hücreleri ve bazofillerin aktivasyonuyla karakterize alerjik tepkiler, IgE çapraz bağlanması ve proenflamatuar aracıların salınması ile tahrik edilmektedir. Alerjik tepkilerin bir kantitatif olarak değerlendirilmesi allerjen vasküler geçirgenlikte değişiklikleri izlemek için Evans mavisinin kullanılması sureti ile elde edilebilir.

Farelerde Yerel Anafilaksi Ölçme

Öğrenin fare üzerinde olgunlaşmamış geyik kenesi besleme protokolünü. Bu yöntem kanla beslenmiş kenelerin hayatta kalma oranını artırır, fare konakçısındaki stresi azaltır ve tek bir günde toplama imkanı sunar.

yetiştirme

Daha fazla video keşfet