31 Mayıs 2017
Burada, CD11c.DTR farelerinin intratrakeal difteri toksini tedavisi ile indüklenen, bir aseptik fulminan miyokardit modelinde kardiyak CD45 + lökosit infiltrasyonunu görselleştirmek için bir ışık-tabakalı mikroskopik yaklaşım anlatılmaktadır.
Bu protokolün genel amacı, Floresan Işık Tabakası Mikroskobu ile lökositik kardiyak infiltrasyonun tüm organ görselleştirmesi için indüklenmiş bir kardiyak aritmi ile bir farenin kalbini kimyasal olarak temizlemektir. Bu yöntem, hücresel çözünürlük düzeyinde protez ve yapılar hakkında tüm organ araştırmaları alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, tüm organlardaki iltihabın hem ölçülmesine hem de lokalizasyonuna izin vermesidir.
Nörolojik protez içine detaylı iç kısımların verilmesi. Bu yöntem için ilk olarak, tükenme modülündeki kardiyak aritmi için hücresel açıklamaları tanımlamak için acil bir görselleştirme aracına ihtiyaç duyduğumuzda aklımıza geldi. Kalbin sekiz ila 10 haftalık bir fareden açığa çıkmasından sonra, 21 gauge kateter kullanın ve sağ ventriküle nüfuz edin.
Kan drenajına izin vermek için aortu kesin ve ardından yavaş bir sabit basınçla beş mililitre PBS artı EDTA ile perfüze edin. PBS EDTA'yı beş mililitre% 4 paraformaldehit ile takip edin. Perfüzyonun sonunda, sabit kalbi nazikçe kavramak için tırtıklı forseps kullanın ve tüm doku bağlantılarını kesmek için organı hafifçe yukarı doğru çekin.
Gelen ve giden arterler ve damarlar dahil. Ardından, daha fazla fiksasyon için kalbi dört saat boyunca taze% 4 PFA'da saklayın. Dokuyu kurutmak için, hava kabarcığı oluşumunu önlemek için kalbi artan bir etanol serisinde, karanlıkta siyah beş mililitre polipropilen reaksiyon tüplerinde, bir tüp döndürücü üzerinde sürekli yavaş dönüşle inkübe edin.
Ardından, dokuyu gece boyunca sabit rotasyonla %98 dibenzil eter inkübasyonu ile temizleyin. Işık Tabakası Floresan Mikroskobu yapmak için, numuneyi yerinde tutmak için önce susuz agaroz bloklarını standart numune tutucusuna yerleştirin. Ardından, numuneyi numune tutucuya aktarın.
Ardından, numune tutucuyu uygun boyutta dibenzil eter dolgulu bir küvete aktarın. İlgilenilen floresan sinyallerini algılamak için uygun uyarma ve emisyon filtresi ayarlarını kullanın. Bu nedenle, görüntüleme sırasında gölgeleme etkilerini en aza indirmek için numunenin doğru konumlandırılması ve sabitlenmesi esastır.
Ayrıca, gevşek bir numune, işlem sonrası aydınlatılması zor olan hareketli artefaktlara neden olabilir. Tüm görüntüleri gerektirdikten sonra, uygun 3B ve 4B görüntü işleme analiz yazılımını açın ve aş'ı seçin. Dosyayı seçin ve açın ve görüntü yığınlarını açmak için ilk alınan kanaldan verileri içeren klasörü seçin.
Alınan uygun floresan kanal verilerini eklemek için düzenle ve kanal ekle'yi seçin. Ardından, x, y ve z voksel boyutlarını düzeltmek için düzenle'ye tıklayın ve görüntü özelliklerini seçin. Yeni açılan penceredeki parametrelerin ayarlanması.
Floresan sinyalleri ayarlamak için önce düzenleme menüsünü açın ve ekran ayarını göster'i seçin. Yeni bir pencere, tüm açık kanalları çok gösterir. Otomatik floresan kanalını gri tonlamalı olarak değiştirmek için, otomatik floresan kanalını seçin, beyaz görüntü stilini seçin ve Tamam'ı tıklatın.
Ardından, ızgarayı kaldırarak görünümü ayarlayın. Ardından, bir kanalı yakınlaştırın ve seçimini kaldırın. Ardından, örnek yapıları, sinyal yoğunluğunu ve kontrastı temsil etmeyen istenmeyen arka plan sinyallerini hariç tutmak için siyah düzeyi değerini ayarlayın.
Antikor ayakta durma kanalını, revize edilmiş otofloresan kanal sinyaline göre ayarlayın. Kanal modunu ayarlama, antikor sinyalinin görselleştirilmesini bir ısı haritası renk arama tablosuna ayarlamak için ateşleyin. Ardından, doku yapılarını ayrıntılı olarak görselleştirmek için karışım modunu seçin.
Organı sanal olarak kesmek için, 3B sahne dışa aktarmadan önce, nesne listesinden kırpma düzlemi simgesini seçin. Görüntü görünümünde sarı bir çerçeve ve beyaz bir mil manipülatörü görünecektir. Kırpma düzleminin yönünü değiştirmek için mili daha ince uçta döndürmek, ve istenen kırpma derinliğini seçmek için milin daha kalın orta kısmını hareket ettirmek için fareyi kullanın.
Ardından, çerçeveyi ve manipülatörü gizlemek ve istenen anlık görüntüleri oluşturmak için ilgili onay kutularının işaretini kaldırın. İki floresan kanal sinyalinden oluşan tüm bir görüntü yığınının elde edilmesi, lökosit dağılımının bir ısı haritası görünümünde görüntülendiği yapay bir 3D oluşturma ortaya çıkarır. Difteri toksini ile tedavi edilen bir hayvanın güçlü iltihaplı kalp bölgeleri, kırmızımsı, beyazımsı görünümleriyle algılanabilir.
Özellikle atriyal ventriküler demet ve Purkinje lifleri gibi kardiyak iletim sistemi bölgelerinde. Buna karşılık, kontrollü PBS ile tedavi edilen hayvanların kalpleri, bu iltihaplanma modelini göstermez. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, bir hedef organın hasadından bilgisayar destekli rendifikasyonuna kadar dört ila beş gün içinde dijital olarak hazır analizine izin verir.
Geliştirilmesinden sonra, bu teknik, emmenoloji alanındaki araştırmacıların, tüm fare organlarındaki hücresel dağılım modellerini keşfetmelerinin yolunu açtı. Bu yaştaki çeşitli patofizyolojik hastalıkların analiz ve tedavisinde protez kullanılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, Floresan Işık Levha Mikroskobu için tüm fare organlarının nasıl hazırlanacağını ve 3D veri yığınlarının nasıl oluşturulacağını ve işleneceğini iyi anlamış olmalısınız.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu makale, aseptik fulminan miyokarditin murin modelinde kalp CD45 + lökosit infiltrasyonunu görselleştirmek için bir ışık sayfası mikroskopi yaklaşımını açıklar. Yöntem, hücresel çözünürlük seviyesinde enflamasyonun tüm organ görselleştirmesini ve kantifikasyonunu sağlar.
This protocol enables whole-organ visualization and quantification of leukocyte infiltration in a murine myocarditis model, providing a scalable approach to de-risk inflammatory mechanisms in cardiac drug discovery. By combining light-sheet microscopy with chemical clearing, it supports target validation through spatial immune cell mapping in disease-relevant systems. The method enhances predictive confidence in early discovery by linking histological inflammation patterns to functional arrhythmia phenotypes.
The method fits within the discovery continuum from target validation to preclinical assessment, offering a bridge between phenotypic screening and mechanistic follow-up in immunocardiology.