Name: Bir Fare Modelinde Seyrek Sistometri Uygulamasının Değerlendirilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 31 s
Description: Öğrenin, fare modelinde mikrocerrahi ile intravezikal tüp implantasyonu ve uyanık sistometri yöntemini. Bu standart teknik, üriner sistem fonksiyonlarının güvenilir şekilde değerlendirilmesini sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Vermont Üniversitesi Cerrahi Bölümü, Danimarka Bağımsız Araştırma Konseyi ve Odense Üniversite Hastanesi tarafından finanse edilmiştir.

Hayvanlar, kurumsal kurallara göre Vermont Üniversitesi Hayvan Bakım Tesisinde barındırıldı. Tüm hayvan deneyleri, laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için Ulusal Sağlık Enstitüleri kılavuzuna uygun olarak yürütülmüştür. 1. İntravezikal Boru İmplantasyonu <ol><li> Cerrahi işlem için hortum ve aletlerin hazırlanması <ol><li> Kateterin implantasyona sokulması için 7 cm&#39;lik bir PE10 tüpünü kesin. </li><li> PE10 tüpünün bir ucunda, ucun açık ateşe doğru yavaş yavaş ilerleyerek bir parlama oluşturun. NOT: Ateş geliştikçe tüpü çabucak çekin. </li><li> PE10 tüpünün dışındaki alevli ucundan 4.5, 5 ve 5.5 cm&#39;lik bir tutkal tabancasındaki düşük ısı ayarını kullanarak üç damla çok amaçlı sıcak tutkal uygulayın. Bunlar, tüpün hayvan sırtında sabitlenmesine yardımcı olacaktır. ( Şekil 1 ) </li><li> Boruyu% 70 oranında ıslatarak sterilize edin.Etanol ile yıkayın ve daha sonra steril% 0.9 NaCl ile yıkayın. Sisteme hava kabarcığı girmesini önlemek için tüp dolu halde bırakılmalıdır. </li><li> PE10 kateteri ucunu, 30 gauge iğneyi göbeğe ayırarak, proksimal ucun yanına manuel olarak manipüle ederek 30 gauge fiş oluşturun. Sonuna bir damla sıcak tutkal uygulayın. Contanın su geçirmez olduğundan emin olun. ( Şekil 2 ) </li><li> Aşağıdaki iki mikro cerrahi aleti kullanın: İki çift Dumont # 7 eğri mikroforceps, iki çift Dumont # 5 kavisli mikroforceps, 21 G iğne, ultra ince düz hemostat, mikro makas, küçük diseksiyon makası ve mikro iğne tutucu. </li><li> Prosedürü başlatmadan önce tüm aletleri sterilize edin. </li></ol></li><li> Hayvanın hazırlanması <ol><li> Hayvanı anestezi ettikten sonra önce karnın alt yarısını tıraş edin, sonra hayvanı eğilip tıraş edin ve üst sırttaki alanı% 70 alkolle temizleyip betadinle temizleyin. Kurumayı önlemek için gözlere veteriner merhemi uygulayın. Ardından, scapulae&#39;ler arasında 1,5 cm&#39;lik bir cilt insizyonu yapmak için steril örtülerle kaplı bir ısıtma yastığı (37 ° C) üzerinde hayvan sırtını yerleştirmek için düz, künt bir makas çifti ve Dumont # 7 eğri mikro-forseps çifti kullanın. </li><li> Sonunda karnı alkol ve betadin ile temizleyin. </li></ol></li><li> Ameliyat prosedürü NOT: 3.15X ila 20X aralığında büyütme ile tüm cerrahi işlemleri mikroskop altında gerçekleştirin. Hayvanı steril örtüye yerleştirdikten sonra steril eldiven koyun. Tüm ameliyat boyunca steril prosedürleri kullanmaya devam edin. <ol><li> Hayvan bir indüksiyon kutusu yerleştirin ve bir oksijen taşıyıcı (1 L / dakika) ile% 2 inhale izofluran kullanarak anestezi. Hayvan kafasını bir burun konisine yerleştirerek ve oksijen taşıyıcılı (% 1 L / dakika)% 2 inhale izofluran kullanarak prosedür boyunca anestezi uygulayın. Negatif aldıktan sonra ameliyatı başlatınToe-pinch testinden ative yanıt. </li><li> Deriden 1.5 cm daha düşük, orta hatlı karın kesi yapmak için düz kör makas ve çift Dumont # 7 eğri mikro-forseps kullanın. Ardından, kubbeyi ve idrar torbasının üst yarısını ortaya çıkarmak için linea alba ve kas boyunca fascia aracılığıyla uygun bir kesi oluşturun. Bir çift Dumont # 7 kavisli mikro-forseps kullanarak her doku katmanına yukarı çekiş uygulayarak mesaneye zarar vermekten kaçının. Sıcak fizyolojik tuzlu su damlaları ekleyerek kurutmadan karın iç organını tutun. </li><li> Boynunun ağzındaki kesiğe erişmek için hayvanı yana çevirin. İnsizyona rağmen dar bir hemostatı subkütan yönde itin. Deri altı kanalı arkadan başlamalı ve yana doğru ilerlemelidir. </li><li> Aletin ucu göğüs kafesinin alt kısmına eriştiğinde, ucu orta hatta ve karın içine doğru çevirin (karın duvarındaki kasları deldiğinde hafif bir pop olacaktır). İğne, kas tabakası altındaki karın kesisine maruz kalana kadar hemostatı ilerletmeye devam edin. ( Şekil 3 ) </li><li> Hortumun &quot;alevsiz&quot; ucunu hemostatla tutun ve borunun ucunu boynun arka kısmındaki kesiğin içinden çekerek yavaşça aleti geri çekin. Hortumun alevlenen ucunu, mesanenin kubbesinin hemen üzerinde olacak şekilde ayarlayın. </li><li> 6-0 monofilament sütürden (absorbe edilemeyen) gevşek bir bağ oluşturun ve mesane kubbesinin üzerine yerleştirin. Bu kravat tüpün mesaneye sabitlenmesi için daha sonra kullanılacaktır. </li><li> Karın ve mesanenin arkasında küçük bir tüysüz doku yerleştirin ve stabilize etmeye ve yükseltmeye yardımcı olun. </li><li> PE10 kateterinin alevli ucunu mesaneye sokmaya hazırlayın. <ol><li> Hakim olmayan elinde mesanenin kubbesini Dumont # 7 eğri mikroforce ile tutun ve kateter mesaneye yerleşene kadar tutun. </li><li> 21 metrelik bir iğne kullanın tO kubbenin tepesinde bir sistotomi yapın. Kateterin delikten kolaylıkla geçebildiğinden emin olmak için nazikçe sistotomiyi kapalı kavitili # 5 kavisli mikroflepses çifti ile muayene edin. </li><li> Mesane kubbesini egemen olmayan elinde tutmaya devam ederken, PE10 kateterinin alevlenen ucunu mesaneye yerleştirin (parlamayı, mesane boynuna aşağı itin, böylece emniyete alınmaz). </li><li> 6-0 monofilament sütürü, mesanenin kubbesi etrafına bağlayın ve hortumun önüne yerleştirilen bağ ile bağlayın. Mesane kapasitesini yapay olarak azaltmaktan kaçınmak için dikiş makinesini mümkün olduğunca yukarı doğru bağladığınızdan emin olun. ( Şekil 4 ) </li><li> Alternatif olarak, kateteri aşağıdaki gibi bir çanta dize dikişi kullanarak sabitleyin. 6-0 monofilament kullanarak mesanenin kubbesinde gevşek bir çanta dikiş dikişi yapın. Sistotomi yapmak ve kateteri takmak için 1.3.8.1 - 1.3.8.3 adımlarını takip edin. Torbayı, cüzdan dikiş dikişini bağlayarak sabitleyin. ( Şekil 5 )</li></ol></li><li> Tüpün distal ucuna 30-gauge iğne ile 0.5 mL&#39;lik bir insülin şırınga takarak mesanedeki tüpün açıklığını ve mühürünü test edin. Üretra deliğinde bir damla görünene kadar mesaneyi 0.1-0.2 mL% 0.9 NaCl ile yavaşça doldurun, daha sonra mesaneyi aspirasyonla boşaltın. Mesanenin doldurulup boşaltılması önemlidir. </li><li> Kubbe sızıntısı olmazsa, mesaneyi bir çift kavisli mikro-forseps ile tutun ve ateş parmakları mesane kubbesinin içine yaslanana kadar hortumu hafifçe çekin. </li><li> Kapanmadan önce küçük doku rulolarını çıkarın ve mesanenin normal konumunda olduğundan emin olun. </li><li> Karın duvarını iki kat halinde (kas ve deri) 6-0 koşu sütürüyle kapatın. Rektus abdominis kasının anterior abdominal fasya kenarlarını dikenleyerek (rektus kılıfının ön duvarı) yaklaşık olarak bulunması tercih edilir. </li><li> Hayvanlardaki tüpleri emniyet altına almak için, nazikçe roHayvanı karnına yatırın. Metal ankrajın subkütan kısmını interkapüler kesi içine sokun. ( Şekil 12 ) Tüpü sabitlemek için bir 6-0 dikiş kullanın ve dikey bir şilte dikişiyle onları çevreleyerek tutturun. </li><li> Tüpün dışarı çıkmasını önlemek için cildin üstünde ve altında bir tutkal baloncuğu kalmasını sağlayın. Tüp cildin yaklaşık 2 cm üzerinde kesilir. </li><li> İdrarın dışarı sızmasını önlemek için, 30 gauge fişini (adım 1.1.5) tüpün sonuna hafifçe yerleştirin. </li></ol></li><li> Hidrasyon için 0.5 mL% 0.9 NaCl subkutanöz enjekte edin. Ameliyattan hemen sonra ameliyat sonrası analjezi uygulayın ve 48 saat boyunca koruyun. <ol><li> Hayvanı bir kızılötesi lamba altında bulunan kafese geri koyun. Hayvan kafesin etrafında rahatça dolaşana kadar sürekli gözlem altında tutun. </li></ol></li><li> Hayvanı günlük olarak izleyin ve kayıttan önce 5 gün boyunca iyileşmesine izin verin. </li></ol> 2. Uyanık KistOmetri Kayıt <ol><li> Kayıt programının hazırlanması, basınç transdüseri ve infüzyon pompası. <ol><li> Hayvana anestezi vermeden önce, infüzyon pompasını, basınç transdüserini ve PE50 tüpünü kullanarak 22 G&#39;lik döndürmeyi birbirine bağlayın. ( Şekil 6 ) </li><li> Sistem basıncını ayarlamak ve kayıt için hazırlanmak için bir bilgisayarda kayıt programını açın (bir örnek için malzeme tablosuna bakın). Kalibrasyon ve kayıt sırasında aynı ayarları kullandığınızdan emin olun. <ol><li> 10 - 15 mL oda sıcaklığında% 0.9 NaCl içeren 20 mL&#39;lik bir şırınga doldurun ve infüzyon pompasına yükleyin. Pompayı, 0,6 mL / saat&#39;lik bir hızla infüze edecek şekilde programlayın. </li><li> Basınç dönüştürücüyü hayvan mesanesi ya da kayıt kafesinin alt kısmı ile aynı yükseklikte sabitleyin. </li><li> 22-mastar maki- neyi basınç transdüserinin sonuna takın (PE50 - hortum - basınç transdüseri döndürmek için) NOT: Döndürme, tüpün bükülmesini veya kıvrılmasını önlemek için kullanılırHayvan hareket ediyor. </li><li> Şırınga pompasını sistemde% 0.9 NaCl&#39;yi boşaltmak için ileri alın. Kalibre etmeden önce tüm hava kabarcıklarını kaldırdığınızdan emin olun. </li><li> Kayıt programı çalışıyorken basıncı kalibre etmek için bir cetvel kullanın (cm / H 2 O). PE50 bağlantısının ucunu 0 ile 30 cm arasında yavaşça hareket ettirin. Gerekirse sıfır ayarlayın. NOT: 0-cm işareti, kayıt kafesi ve basınç transdüseri tabanı ile aynı yükseklikte olmalıdır. </li></ol></li><li> Kayıt kafesinin merkezine 22-mastar çevirme askısını durdurun. Kafes tabanı, idrarın, kafesin altına yerleştirilmiş denge toplama cihazına düşmesine izin verdiğinden emin olun. Farenin yüksekliğini ayarlayın, böylece fare, boruyu zorlamadan veya gererek kafesin etrafında özgürce hareket edebilir. ( Şekil 7 ) </li><li> İşiniz bittiğinde, sistemin ve harici PE50 tüplerinin% 0.9 NaCl ile dolu olduğundan emin olun ve tüm hava kabarcığı çıkarın. </li></ol></li><li> HazırlıkHayvanın kayıt için aranması <ol><li> Hayvanı% 2 inhale izofluran ile anestezi altına alınız ve karnının üzerine koyunuz. 30-gauge fişini çıkartın ve PE10 tüpünü (mesane kateteri) PE50 bağlantısının ucuna kaydırın. Su geçirmez bir mühür oluşturmak için sıcak tutkal kullanınız. </li><li> Anestezi kapatın ve hayvanı, idrarın doğrudan analitik bir terazinin üzerine yerleştirilen bir toplama cihazına düşmesine izin verecek şekilde paralel tel zemin ile kayıt kasasına yerleştirin. ( Şekil 7 ) </li><li> Hayvan kafesteyken kayıt işlemine başlayın, ancak içeri sokmaya başlamayın. Anesteziden tamamen kurtarılana kadar hayvanı izleyin. Mesane basıncı stabilize olduktan sonra 0,6 mL / saat&#39;lik bir oranda% 0.9 NaCl verilir. NOT: Herhangi bir değişiklik yapılırken kayıt programında not alın. Enfüzyon başladığında, durduğunda veya düzensizliklerin ortaya çıktığı zaman bir kayıt olması önemlidir. </li><li> Sistemi sızdırmazlık açısından kontrol edin ve hayvanın kolay erişime sahip olduğundan emin olunYiyecek ve suya. </li><li> Üç tekrarlanabilir miksiyon döngüsü elde edilinceye kadar sessiz bir odada kayıt işlemine devam edin. NOT: Hayvan, kayıt boyunca tamamen rahatsız edilmemelidir. Tercihen, davranış gözlemlemek için uzaktan video izleme kullanın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Perez, L. M., Webster, G. D. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/nau.1930110102/abstract">The History of Urodynamics.</a> Neurourol Urodyn. 11 (1), 1-21 (1992).</li>
<li>Fry, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+and+their+use+in+understanding+lower+urinary+tract+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Animal models and their use in understanding lower urinary tract dysfunction.</a> Neurourol Urodyn. 29 (4), 603-608 (2010).</li>
<li>Maggi, C. A., Santicioli, P., Meli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nonstop+transvesical+cystometrogram+in+urethane-anesthetized+rats%3A+a+simple+procedure+for+quantitative+studies+on+the+various+phases+of+urinary+bladder+voiding+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Methods%22%5BJournal%5D)">The nonstop transvesical cystometrogram in urethane-anesthetized rats: a simple procedure for quantitative studies on the various phases of urinary bladder voiding cycle.</a> J Pharmacol Methods. 15 (2), 157-167 (1986).</li>
<li>Malmgren, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cystometrical+evaluation+of+bladder+instability+in+rats+with+infravesical+outflow+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Cystometrical evaluation of bladder instability in rats with infravesical outflow obstruction.</a> J Urol. 137 (6), 1291-1294 (1987).</li>
<li>Pandita, R. K., Fujiwara, M., Alm, P., Andersson, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cystometric+evaluation+of+bladder+function+in+non-anesthetized+mice+with+and+without+bladder+outlet+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Cystometric evaluation of bladder function in non-anesthetized mice with and without bladder outlet obstruction.</a> J Urol. 164 (4), 1385-1389 (2000).</li>
<li>Chang, H. Y., Havton, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+urethane+and+isoflurane+on+external+urethral+sphincter+electromyography+and+cystometry+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Differential effects of urethane and isoflurane on external urethral sphincter electromyography and cystometry in rats.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 295 (4), F1248-F1253 (2008).</li>
<li>Matsuura, S., Downie, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+anesthetics+on+reflex+micturition+in+the+chronic+cannula-implanted+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Effect of anesthetics on reflex micturition in the chronic cannula-implanted rat.</a> Neurourol Urodyn. 19 (1), 87-99 (2000).</li>
<li>DePaul, M. A., Lin, C. Y., Silver, J., Lee, Y. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peripheral+Nerve+Transplantation+Combined+with+Acidic+Fibroblast+Growth+Factor+and+Chondroitinase+Induces+Regeneration+and+Improves+Urinary+Function+in+Complete+Spinal+Cord+Transected+Adult+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Peripheral Nerve Transplantation Combined with Acidic Fibroblast Growth Factor and Chondroitinase Induces Regeneration and Improves Urinary Function in Complete Spinal Cord Transected Adult Mice.</a> PLoS One. 10 (10), e0139335(2015).</li>
<li>Kadekawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+bladder+and+external+urethral+activity+in+mice+with+or+without+spinal+cord+injury--a+comparison+study+with+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Regul+Integr+Comp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterization of bladder and external urethral activity in mice with or without spinal cord injury--a comparison study with rats.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 310 (8), R752-R758 (2016).</li>
<li>Uvin, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+cystometry+in+small+rodents%3A+a+study+of+bladder+chemosensation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The use of cystometry in small rodents: a study of bladder chemosensation.</a> J Vis Exp. (66), (2012).</li>
<li>Andersson, K. E., Soler, R., Fullhase, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+models+for+urodynamic+investigation%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Rodent models for urodynamic investigation.</a> Neurourol Urodyn. 30 (5), 636-646 (2011).</li>
<li>Smith, P. P., Kuchel, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+uroflow+cystometry+in+the+urethane-anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Continuous uroflow cystometry in the urethane-anesthetized mouse.</a> Neurourol Urodyn. 29 (7), 1344-1349 (2010).</li>
<li>Aizawa, N., Homma, Y., Igawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+High+Fat+Diet+Feeding+for+20+Weeks+on+Lower+Urinary+Tract+Function+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Low+Urin+Tract+Symptoms%22%5BJournal%5D)">Influence of High Fat Diet Feeding for 20 Weeks on Lower Urinary Tract Function in Mice.</a> Low Urin Tract Symptoms. 5 (2), 101-108 (2013).</li>
<li>Bjorling, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+voiding+assays+in+mice%3A+impact+of+genetic+strains+and+sex%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of voiding assays in mice: impact of genetic strains and sex.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 308 (12), F1369-F1378 (2015).</li>
<li>Morikawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+various+drugs+on+bladder+function+in+conscious+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Effects of various drugs on bladder function in conscious rats.</a> Jpn J Pharmacol. 50 (4), 369-376 (1989).</li>
<li>Yaksh, T. L., Durant, P. A., Brent, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micturition+in+rats%3A+a+chronic+model+for+study+of+bladder+function+and+effect+of+anesthetics%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Micturition in rats: a chronic model for study of bladder function and effect of anesthetics.</a> Am J Physiol. 251 (6 Pt 2), R1177-R1185 (1986).</li>
<li>Cornelissen, L. L., Misajet, B., Brooks, D. P., Hicks, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+genetic+background+and+gender+on+bladder+function+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Auton+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Influence of genetic background and gender on bladder function in the mouse.</a> Auton Neurosci. 140 (1-2), 53-58 (2008).</li>
<li>Lemack, G. E., Zimmern, P. E., Vazquez, D., Connell, J. D., Lin, V. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+response+to+partial+bladder+outlet+obstruction+in+mice+lacking+inducible+nitric+oxide+synthase%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Altered response to partial bladder outlet obstruction in mice lacking inducible nitric oxide synthase.</a> J Urol. 163 (6), 1981-1987 (2000).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

İntravezikal hortumun optimum materyali ve boyutu Basınçlı kayıtlarda boru çapının etki tayini için, farklı mikroakışkan tüpleri test ettik; PE50 (0,58 mm ID), poliüretan PU027 (0,4 mm ID), PE25 (0,46 mm ID) ve PE10 (0,28 mm ID). Her tüp için basınç, tüpü 0 ila 30 cm arasında dikey olarak hızlı bir şekilde hareket ettirirken 1 mL / saat hızla infüzyon pompası ile kaydedildi. Başlangıçtaki in vivo deneyler, PE50 tüpünü kullanmayı denedi, ancak fare mesanesine kıyasla hortumun boyutu nedeniyle ba...

Dolum sistometrisi (YB), mesane dolumunun yavaş olması sırasında basıncın kaydedilmesi için idrar kesesine kateter yerleştirilmesini içeren bir tanı yöntemidir. İlk olarak alt idrar yolları fonksiyonlarını değerlendirmek için klinik bir tanı yöntemi olarak 1927&#39;de tanıtılan, yaygın olarak kullanılmaya devam edilmiştir. 1 Araştırma uygulamalarında FC, sağlıklı ve hasta hayvan modellerinde mesane fonksiyonunu test etmek ve farmakolojik ajanların etkilerini incelemek için kullanılabilir. Kemirgen hayvan modelleri alt üriner sistem fonksiyonlarını araştırmak için yaygın olarak kullanılmaktadır. 2 Bu memeliler grubunda, FC ilk kez sıçanlarda kullanılmak üzere geliştirildi. 3 Burada, tüpü idrar torbasına yerleştirme ve FC&#39;yi gerçekleştirme metodolojisi, birçok araştırmacı tarafından kabul edilebilir tekrarlanabilirlik seviyesinde tanımlanmış ve kullanılmıştır. Transgenik ve nakavt edilen suşların varlığı fareleri sayısız araştırma alanı için değerli bir türe dönüştürür,Alt idrar yolları disfonksiyonu da dahil olmak üzere. Fare sistometrisinin gerçekleştirilmesi için kullanılan metodoloji, laboratuvarlar arasında gözle görülebilir şekilde değişmekte ve sonuçların karşılaştırılmasını zorlaştırmaktadır. 5 Ekz vivo modellerle karşılaştırıldığında, FC düşük idrar yolu anatomisini korur ve mikrovasküler siklüsün depolanması ve boşaltma aşamaları sırasında mesane ve çıkışı arasında eşgüdümlü işlevin değerlendirilmesini sağlar. Önceki araştırmalar, yaygın olarak kullanılan sayısız anestezik maddenin kasılmasını baskıladığını göstermektedir. İdrar kesesi düz kası büzülmesini (üretan, a-kloraloz, ketamin ve ksilazin) koruyan, hayvanın mikroplaşmasına izin veren ajanlar, fonksiyonel mesane kapasitesini hala önemli ölçüde azaltacak ve nörotransmisyonu bastıracak ajanlar. 6 , 7 , 8 , 9 Teknik olarak daha zorlu olmasına rağmen, FC awAmatör hayvan ameliyatı refleksinin fonksiyonel bütünlüğünü korur. Alt üriner sistem fonksiyonu post-operatif mesane duvarında şişme, ağrı ve rahatsızlıktan kaynaklanan stres ve çevresel etkiler gibi birçok faktörden etkilenir. Tüp implantasyonunda doku hasarını en aza indirgeyen bir cerrahi teknik kullanılarak ve tüp hareketini azaltan kayıt yöntemleri ile aynı anda hayvanın serbest dolaşımına izin verilmesi, doğru ve tekrarlanabilir kayıtlar elde etmek için gereklidir. Eğer yeterince gerçekleştirilirse, in vivo Serbest hareket eden hayvanlardaki FC, fizyolojik mesane fonksiyonunu güvenilir bir şekilde yansıtan veriler sağlayabilir. Serbest hareket eden hayvanlarda 10 FC aşağıdaki parametreler hakkında bilgi sağlayabilir; Bazal veya baseline basınç: İki meme arasındaki minimum basınç. Ara geçiş basıncı: İki meme arasındaki ortalama basınç. Eşik basıncı: İntravezikal basınç immİyileşmeden önce iyice. Maksimum basınç: Bir miksiyon devri sırasında maksimum mesane basıncı. Spontan aktivite (veya ortalama intermiktürasyon titreşim basıncı): Müdahale basıncı eksi bazal basınç. Boşaltma kasılmaları: Dolum aşamasında intravezikal basıncın artması, sıvının serbest bırakılmasına bağlı değildir. Mesane uyumluluğu: Mesane kapasitesi, eşik basıncının eksi bazal basınca bölünmesiyle bölünür. Mikstürasyon frekansı: Birim zamanındaki mikrodalga sayısı. Ara geçiş aralığı: İki maksimum işeme basıncı arasındaki süre. Mesane kapasitesi: Verilen hacim, miksiyon sayısına bölünür. Bu parametrelerin ve standart terminolojinin ayrıntılı bir açıklaması daha önce yayınlanmıştır. 11 FC sürekli veya tek devirli intravezikal infüzyon yöntemi kullanılarak yapılabilir. Sürekli sistometri, birden fazla mikstürasyon siklusunun kaydedilmesine ve temsili verilerin seçilmesine izin verirTekrarlanabilirlik üzerine. Mesane kapasitesinin ölçülmesindeki doğruluğu, bilinmeyen artık hacim nedeniyle sınırlıdır. Buna ek olarak, serbest ambulasyon yapan farelerde küçük boşluklu hacimlerin (gerilme ve cinsiyet 30 ila 184 μL arasında değişen oranlarda) toplanması zor. Boşalmış hacmi kaydetmek için bu yöntemi kullanmak, anestezi uygulanmış bir preparatla karşılaştırıldığında daha az doğrudur, ancak anestezinin mesane fonksiyonundaki baskılayıcı etkilerini önlemesi açısından daha üstüntür. Mesane kapasitesini değerlendirmek için tek devirli sistometri kullanılmalıdır. Bu yöntemde, mesane, infüzyon öncesinde aspirasyon yoluyla boşaltılır ve kapasite, infüzyon oranının zamanla maksimum basınca çarpımı olarak hesaplanır. Küçük kemirgenlerde sistometri yapma tekniği yayınlanmış olmasına rağmen, bir sıçanda gerçekleştirilen ameliyatı tarif etmiş ve fare sistometrisinin üretan anestezi altında yapılması önerilmiştir. 10 Bu iletişimin amacı tHem idrar torbasının kubbe içine intravezikal bir tüp yerleştirmek için kullanılan mikrocerrahi teknikler hem de sürekli mesane doldurma ve idiyesizlik sırasında uyanık bir şekilde hareket eden farede in vivo alt idrar yolları fonksiyonunu kaydetmek için kullanılan deney düzeneğini tanımlar. Buna ek olarak, tüpün uzunluğu, çapı ve malzemesinin yanı sıra vivo FC&#39;yi gerçekleştirmek için kullanılan metodolojinin kaydı nasıl etkilediğini belirlemek için deneyler gerçekleştirildi. Bu deneysel protokol daha önce yayınlanmış teknikleri özetler ve deneysel sonuçlara dayanan bir takım değişiklikler önermektedir.

<table><tbody><tr><td>Polietilen (PE) 10 boru</td><td>Instech</td><td>BTPE-10</td><td>30G konektörlere/fişlere uyar</td></tr><tr><td>Polietilen (PE) 50 boru</td><td>Instech</td><td>BTPE-50</td><td>22G konektörlere/fişlere uyar</td></tr><tr><td>22 G tek kanallı paslanmaz çelik döner</td><td>Instech</td><td>375/22</td><td></td></tr><tr><td>Yüksek Karbonlu Çelik Yardımcı Uzatma Yayı (9/64" OD)</td><td>Grainger</td><td>1NAH1</td><td>PE50 borularını korur - Boyuna kesme</td></tr><tr><td>22 G konektör</td><td>Instech</td><td>SP22/12</td><td></td></tr><tr><td>Yutaoz Profesyonel Hot Melt Yapıştırıcı Tutkal Tabancası</td><td>Yutaoz</td><td></td><td>Düşük sıcaklık ayarı kullanın (100 &�; C) - Ayarlanabilir sıcaklık aralığına sahip herhangi bir sıcakta eriyen tutkal tabancası çalışacaktır</td></tr><tr><td>Surebonder DT-2010 çok amaçlı tutkal</td><td>çubuğu Surebonder</td><td></td><td>Herhangi bir çok amaçlı sıcak tutkal işe yarayacaktır</td></tr><tr><td>Dumont #5 kavisli mikroforseps</td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>500232</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #7 kavisli mikroforseps</td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>14188</td><td></td></tr><tr><td>Mini diseksiyon makası - düz</td><td>World Precision Instruments</td><td>503240</td><td></td></tr><tr><td>Mikro sivrisinek forseps (12,5 cm)</td><td>World Precision Instruments</td><td>500451</td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon makası - düz</td><td>World Precision Instruments</td><td>14393</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo İğne Tutucu</td><td>World Precision Instruments</td><td>503258</td><td></td></tr><tr><td>İzofluran, USP</td><td>Phoenix</td><td></td><td>%2, 1 L/dk akış hızı</td></tr><tr><td>Buprenorfin</td><td></td><td></td><td>0.05 mg/kg</td></tr><tr><td>%0.9 Sodyum Klorür İrrigasyon, USP</td><td>Baxter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0 Ethilon siyah monofilament, emilmeyen sütür</td><td>Ethicon</td><td></td><td>Mesane bağı</td></tr><tr><td>6-0 Vicryl menekşe örgülü, emilebilir sütür</td><td>Ethicon</td><td></td><td>Kas sütürü, koşu</td></tr><tr><td>6-0 Prolene mavisi monofilament, emilmeyen sütür</td><td>Ethicon</td><td></td><td>Deri sütürü, dikey şilte, gömülü kesintili</td></tr><tr><td>KD Legato 210 infüze / çekme pompası</td><td>KD Scientific</td><td></td><td>1.5 mL / saat</td></tr><tr><td>Tek kullanımlık basınç dönüştürücü</td><td>Digitimer</td><td>NL108T2</td><td></td></tr><tr><td>Basınç Amplifikatörü</td><td>Digitimer</td><td>NL108A</td><td></td></tr><tr><td>Power1401-3 veri toplama arayüzü</td><td>Digitimer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spike2&nbsp;</td><td>Cambridge Electronic Design Limited</td><td></td><td>PC basınç kayıt yazılımı</td></tr><tr><td>Leica MZ6 cerrahi ameliyat mikroskobu (3.2 - 20X)</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td>Büyütme</td></tr></tbody></table>

bir fare modelinde seyrek sistometri uygulamasının değerlendirilmesi

Evaluating the Procedure for Performing Awake Cystometry in a Mouse Model

Uyanık dolum sistometrisi, serbest hareket eden farelerde mesane fonksiyonunu değerlendirmek için uzun süre kullanılmıştır, ancak kullanılan spesifik metotlar laboratuvarlar arasında değişiklik göstermektedir. Bu çalışmanın amacı, intravezikal bir tüp yerleştirmek için kullanılan mikrocerrahi prosedürünü ve uyanık, serbestçe hareket eden bir fare içine mesane basıncının kaydedilmesi için deneysel tekniği tanımlamaktır. Buna ek olarak, deneysel veriler, ameliyatın yanı sıra tüpün tipi ve boyutu, alt idrar yolları fonksiyonlarını ve kayıt hassasiyetini nasıl etkilediğini göstermek için sunulmuştur. Boru çapının basınç kaydı üzerindeki etkisi hem polietilen hem de poliüretan boru içlerinde farklı iç çaplarla değerlendirildi. Daha sonra, her iki materyalden en iyi performans gösteren tüp cerrahi olarak erkek C57BL / 6 farelerin idrar torbasının kubbesine yerleştirildi. Ameliyattan 2, 3, 5 ve 7 gün sonra, sağlıklı, bozulmamış hayvanlarda ve hayvanlarda, on iki saatlik bir gece boyunca mikozlanma sıklığı kaydedildi. Hasatta mesanelerŞişme bulguları brüt gözlem ile değerlendirildi ve daha sonra patolojik analiz için işlendi. Mesane şişmesinin büyük ölçüde mesane fonksiyonlarını önemli ölçüde bozduğu davranışsal işeme verileri ile korele olan 2. ve 3. günlerde gözlenmiştir. 5. günde, mesane histolojisi ve işeme frekansı normalize edildi. Çalışmalarımız tarafından sağlanan literatür ve kanıtlara dayanarak, uyanık bir faredeki intravezikal basınç ve boşluk hacmini in vivo olarak kaydetmek için aşağıdaki adımları öneriyoruz: 1) Ameliyatı bir ameliyat mikroskobu ve mikrocerrahi aletler kullanarak gerçekleştirin, 2) Polietilen-10 kullanın Hareket eserlerinin en aza indirgenmesi için hortumlar ve 3) Mesane şişmesi giderildiğinde ameliyat sonrası 5. günde sistometri uygulayın.

Tüp oklüzyonu esnasında sistem içerisindeki basınç artışı ve düşüşü tutarlılığında tüp malzemesi ve çapları arasında anlamlı bir fark bulunmadı. Mesane duvarında şişme posttravezikal tüp implantasyonu hem polietilen (PE) hem de poliüretan (PU) materyalleri için önemlidir. 2. günde, ciddi submukozal şişme gelişti. Mesanenin yarı kesitini işgal etti, bu da lümenin tıkanmasına neden oldu. 5. günde, ödemin tamamen çözülmesi, submukozal bölgeleri muskularis&#39;i kısmen işgal eden inflamatuar...

Bu çalışma serbestçe hareket eden bir fare içinde uyanık sistometri gerçekleştirmek için cerrahi prosedürleri ve deneysel teknikleri tanımlamaktadır. Buna ek olarak, optimizasyonunu ve standardizasyonunu destekleyen deneysel kanıtlar sağlar.

Bir Fare Modelinde Seyrek Sistometri Uygulamasının Değerlendirilmesi

Awake filling cystometry has been used for a long time to evaluate bladder function in freely moving mice, however, the specific methods used, vary among ...

Bu mikrocerrahi prosedürün genel amacı, uyanık bir farede idrar kesesine intravezikal bir tüp yerleştirmek ve alt üriner sistem fonksiyonlarını kaydetmektir. Bu yöntem, uyanık sistometri yoluyla tekrarlanabilir deneysel verilerin elde edilmesine ve sağlıklı ile hastalıklı fare modellerinde mesane fonksiyonlarının test edilmesine yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel hedefi, fare modelinde dolum sistometrisi gerçekleştirmek için deneysel verilere dayalı standartlaştırılmış bir yöntem sağlamaktır.İmplantasyon için tüpü hazırlamak amacıyla, önce yedi santimetrelik bir pe10 tüp parçası kesin ve bir genişleme oluşturmak için bir ucunu yavaşça açık aleve yaklaştırın; genişleme oluşur oluşmaz tüpü hızla geri çekin. Ardından, tüpün genişletilmiş ucundan 4,5, 5 ve 5,5 santimetre uzaklıktaki noktalara üç damla genel amaçlı sıcak silikon uygulamak için bir silikon tabancasının düşük ısı ayarını kullanın. Silikon kabarcıklarındaki düzensizlikleri düzeltmek için makas kullanın.İmplantasyon sonrası pe10 tüpünü tıkamak için kullanılacak olan 30 gauge bir iğnenin bir ucuna sıcak silikon uygulayın. Ardından, ayak parmağı sıkıştırma testine yanıt olmadığını doğrulayın ve hayvanın gözlerine pomad sürün. Üst sırt ve alt karın bölgesini alkol ve betadine ile sterilize ettikten sonra, skapula arasına 1,5 santimetrelik bir insizyon yapın ve hayvanı, diseksiyon mikroskobu altında steril örtülerle kapatılmış 37 degree celsius sıcaklıktaki bir ısıtma pedinin üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin.Şimdi, alt orta hat abdominal ciltte 1,5 santimetrelik bir insizyon yapın. Ardından, idrar torbasının kubbesini ve üst yarısını açığa çıkarmak için linea alba boyunca fasyayı ve kası takip eden eş bir insizyon gerçekleştirin. Abdominal viseral organları sıcak fizyolojik salin ile nemli tutarak, ense bölgesindeki insizyona erişmek için hayvanı yan tarafına döndürün.Sırt bölgesinde bir subkutan kanal oluşturmak ve hayvanın yan tarafı boyunca ilerlemek için dar bir hemostatı insizyon aracılığıyla subkutan olarak itin. Enstrümanın ucu göğüs kafesinin altına ulaştığında, ucu abdomenin iç tarafında orta hatta doğru çevirin ve hemostatı, uç kas tabakasının altındaki abdominal insizyonda görünene kadar ilerletin. Hemostat ucu insizyonun içine girdiğinde, hayvanı stabilize etmeye yardımcı olmak için omuz üzerindeki deriyi sıkıştırın ve enstrüman ucu abdominal insizyonda görünene kadar traksiyon uygulayın.Şimdi hemostatı kullanarak tüpün genişlememiş ucunu kavrayın ve hemostatı yavaşça geri çekerek tüpün ucunu boynun arkasındaki insizyondan dışarı çıkarın ve tüpün genişlemiş ucunu doğrudan mesane kubbesinin üzerine gelecek şekilde ayarlayın. Mesaneyi, tüy bırakmayan dokudan yapılmış küçük bir rulo ile sabitleyin. Mesane kubbesinin üzerine, gevşekçe bağlanmış, emilmeyen 6-O monofilaman bir sütür yerleştirin.Baskın olmayan el ve Dumont 7 numaralı kıvrımlı mikro forseps kullanarak mesane kubbesini kavrayın ve baskın eldeki 21 gauge iğne ile kubbe apeksinde bir sistotomi gerçekleştirin. Kateterin delikten kolayca geçebildiğinden emin olmak için sistotomiyi kapalı 5 numaralı kıvrımlı mikro forseps ile nazikçe kontrol edin ve pe10 kateterin genişletilmiş ucunu mesaneye yerleştirerek, sabitlenirken dışarı kaymaması için genişletilmiş kısmı mesane boynuna doğru itin. Monofilaman bağ tubing'in önüne yerleştirilmiş haldeyken, mesane kapasitesini yapay olarak azaltmaktan kaçınmak için 6-O süturu mesane kubbesi ve tubing etrafında mesanenin mümkün olan en üst kısmından sıkın.Alternatif olarak, mesanenin kubbesine gevşek bir kese ağzı dikişi atın, az önce gösterildiği gibi bir sistotomi gerçekleştirin ve kateterin genişleyen ucunu delikten içeri yerleştirin. Ardından, düz dikiş için gösterildiği gibi, dikişi kubbe ve tüp etrafında bağlayın. Her iki durumda da, mesane duvarına yaygın zarar vermeden tüpü sabitlemeye özen gösterin.Çok fazla doku alınırsa, mesane kapasitesi azalacaktır. Çok az alınırsa, bağlantı sızdıracaktır. Tüpün mesane içindeki sızdırmazlığını ve konumunu test etmek için, tüpün distal ucuna 30 gauge iğne takılmış 0,5 mililitrelik bir insülin şırıngası bağlayın ve üretral orifiste bir damla görünene kadar mesaneyi yavaşça 0,1 ila 0,2 mililitre %0,9 sodyum klorür ile doldurun.Sızdırmazlık tam sağlanamadıysa, sütür kuyruklarını mesanenin etrafında döndürün ve yeniden bağlayın. Ardından, mesaneyi aspirasyon yoluyla boşaltın. Kubbe bölgesinde sızıntı meydana gelmediyse, mesaneyi bir çift kavisli mikro forseps ile sabitleyin ve genişletilmiş uç mesane kubbesinin iç yüzeyine yaslanana kadar tüpü nazikçe çekin.Sızdırmazlığı daha önce açıklanan yöntemi kullanarak tekrar test edin. Sütür uçlarını kesin, doku rulosunu çıkarın ve mesaneyi normal konumuna geri getirin. Ardından, karın duvarını iki tabaka halinde kapatmak için sürekli 6-O sütür kullanın.Ardından hayvanı nazikçe karnının üzerine döndürün. Metal ankrajın deri altı kısmını intraskopular insizyona yerleştirin ve tüp ile ankrajı sabitlemek için 6-O monofilaman ile vertikal matris sütur uygulayın. Tüpün yerinden çıkmasını önlemek için derinin üstünde ve altında bir yapıştırıcı kabarcığının kaldığını teyit edin ve tüpü derinin yaklaşık iki santimetre üzerinden kesin.Ardından, idrar sızıntısını önlemek için tüpün ucuna nazikçe 30 gauge bir tıkaç yerleştirin. Okuma işlemini gerçekleştirmeden önce, infüzyon pompasını, basınç transduserini ve 22 gauge döner bağlantıyı birbirine bağlamak için pe50 boru kullanın. Daha sonra, anestezi altındaki deney hayvanını pron pozisyonda yerleştirin ve 30 gauge tıkacı çıkarın.Bağlayıcıyı ankora bağlayın, mesane kateterini pe50'nin ucuna kaydırın ve su sızdırmaz bir mühür oluşturmak için sıcak silikon kullanın. Fareyi tel taban üzerine yerleştirin ve kayda başlayın.Ardından, hayvan anesteziden uyandığında ve mesane basıncı stabilize olduğunda, saatte 0,6 mililitre hızla %0,9 sodyum klorür infüzyonuna başlayın. Genellikle kateter yerleştirilmesinden sonraki ikinci günde, mesanenin kesit alanının yarısını kaplayan ve lümen obstrüksiyonuna yol açan şiddetli submukozal şişlik gelişir. Beşinci günde ödem tamamen kaybolur ve submukozal alanlarda, muskularis tabakasını kısmen istila etmiş inflamatuar hücre infiltrasyonu kalır.İkinci ve üçüncü günlerde gözlemlenen en yüksek düzeydeki doku şişliği, hayvanların bu zaman noktalarında belirgin şekilde bozulmuş mesane fonksiyonu sergilemesiyle paralel olan ilgili davranışsal boşaltımla ilişkilidir. Histolojik verilerden beklendiği üzere, boşaltım sıklığı ameliyat sonrası beşinci güne kadar normale döner. Minimum hareket artefaktına sahip, uyanık ve serbestçe hareket eden bir hayvandaki intravezikal basınç, dolum döngüsü sırasında değişmeden kalabilen veya kademeli olarak en fazla 10 cm H₂O artabilen 10 ila 15 cm H₂O'luk bir bazal basınç ile karakterize edilir.Ardından, boşaltım sırasında ani bir puls tarzında basınç artışı ve düşüşü uygulanır. Uzmanlaşıldığında, bu teknik doğru şekilde uygulandığı takdirde 30 dakika içinde tamamlanabilir. Bu prosedür uygulanırken, doku fizyolojisini korumak adına mesaneye verilen zararın en aza indirgenmesi gerektiğini hatırlamak önemlidir.Bu prosedürün ardından, fonksiyonel mesane kapasitesine ilişkin ek soruları yanıtlamak için tek döngülü dolum sistometrisi gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, farelerde idrar torbasına mikrocerrahi yöntemiyle nasıl tüp implante edileceği ve alt üriner sistem fonksiyonlarını değerlendirmek için uyanık dolum sistometrisinin nasıl kullanılacağı konusunda iyi bir anlayış kazanmış olmalısınız.

evaluating-procedure-for-performing-awake-cystometry-mouse

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Sistometriler küçük hayvanların mesane fonksiyonu ölçmek için etkili bir...

Küçük Kemirgenler sistometri ve Kullanımı: Mesane Chemosensation Çalışması

Mesane büyütme cerrahi aşamaları fare ve sıçan modellerinde 3-D iskeleler kullanılarak anlatılmıştır. Mesane büyütme kullanım için biyomalzemenin konfigürasyonlarda etkinliği test etmek için, her iki uyanık ve anestetize sistometri teknikleri yer almaktadır.

Çeşitli Kemirgen Modeller sistometrik Analizleri kullanarak Mesane Büyütme için Biyomalzeme Değerlendirilmesi

Bu videoda, bir fare modelinin idrar kesesini boşaltmak ve durulamak için kateter tabanlı bir prosedürü açıklıyoruz. Hazırlanan fare daha sonra daha fazla deneysel prosedür için kullanılabilir.

Fare Modelinde İdrar Tükenmesi ve Mesane Durulama: Murin İdrar Kesesini Boşaltmak ve Yıkamak İçin Kateter Tabanlı Bir Prosedür

Bu video, bir fare mesane kanseri modelinde Helicobacter pylori nötrofil aktive edici proteinin veya HP-NAP'nin anti-tümör aktivitesini değerlendirmek için bir teknik göstermektedir. HP-NAP, proinflamatuar sitokinler üretmek için tümör hücresi nötrofilleri ile etkileşime girer ve saf T hücrelerinin tip 1 T yardımcısı (Th1) ve tip 1 sitotoksik (Tc1) T hücresi fenotiplerine farklılaşmasını indükler. Th1 ve Tc1 hücreleri, tümör anjiyogenezini inhibe eden ve sitotoksik T hücresi aracılı tümör...

Bir Murin Modelinde Bakteriyel İmmünomodülatör Proteinin Anti-Tümör Etkinliğinin Değerlendirilmesi

Amerika Birleşik Devletleri'nde yaklaşık 3-8000000 insan interstisyel sistit / mesane ağrı sendromu (IC / BPS), pelvik ağrı ile kısmen özelliği, bir zayıflatıcı durum muzdarip. Duruma sinir sistemi katkılarını araştırmak amacıyla, idrar kesesi ağrı fizyolojik modeli fareler ve sıçanlar kullanılır.

Farelerde Mesane Ağrı için bir model olarak Mesane Distansiyonunun Uyarılmış Visceromotor Cevapları

Üriner sistem enfeksiyonlarını (İYE) modelleme yeteneği, bakteriyel patogenezi anlayabilmek ve yeni terapötiklerin geliştirilmesini sağlayabilmek için çok önemlidir. Bu çalışmanın amacı, insanlarda görülen bulguları özetleyen ve tahmin eden deneysel İYE ve kateterle ilişkili İYE'nin fare modellerini göstermektir.

Fare Modelinde Kuruluş ve İYE ve CAUTI Karakterizasyonu

Bu protokol, dişi C57BL / 6J fareler, tümör büyümesi izlenmesinde sıçangil ortotopik mesane tümörlerinin üretimini tarif eder.

Bir Fare Ortotopik Mesane Tümör Modeli ve Tümör Tespit Sistemi

Bu iletişim kuralı, ilk dış üretral sfinkter elektrotlar ve ikinci, idrar kesesi ve dış üretral fonksiyonun ölçümü ile kombine bir idrar kesesi kateter kalıcı implantasyonu cerrahi işlem açıklar sfinkter implante uyanık hayvanlarda.

Cystometric ve dış üretral sfinkter ölçümleri implant kateter ve tekrarlanan ölçülerini izin elektrotları ile uyanık Sıçanlarda

Bu protokol, anestezi uygulanan bir kemirgende mesanenin lümenindeki ATP konsantrasyonlarını ölçme prosedürünü açıklar.

İn Vivo Kemirgenlerde Distansiyon Uyarılmış Ürotelyal ATP Salınımının Luminal Ölçümü

Bu protokol, kürk ve cilt tarafından idrar emilimini önlemek için cildin siyanoakrilat ile su geçirmez hale getirilmesi için bir kılavuz sağlar. Yapıştırıcının cilde uygulanması, bir mesane kateterinin implante edilmesi ve uyanık farelerde sistometri ve dış üretral sfinkter elektromiyografi kayıtları için elektrotlar için talimatlar içerir.

Gelişmiş Doğruluk için Fare Ürodinamik Tekniklerini Optimize Etme 

Öğrenin, fare modelinde mikrocerrahi ile intravezikal tüp implantasyonu ve uyanık sistometri yöntemini. Bu standart teknik, üriner sistem fonksiyonlarının güvenilir şekilde değerlendirilmesini sağlar.

Bir Fare Modelinde Seyrek Sistometri Uygulamasının Değerlendirilmesi

Daha fazla video keşfet