-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
Cerrahi Ablasyon Tahlili Planaryalar Göz Rejenerasyon incelenmesi için
Cerrahi Ablasyon Tahlili Planaryalar Göz Rejenerasyon incelenmesi için
JoVE Journal
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Developmental Biology
Surgical Ablation Assay for Studying Eye Regeneration in Planarians

Cerrahi Ablasyon Tahlili Planaryalar Göz Rejenerasyon incelenmesi için

Full Text
11,347 Views
07:47 min
April 14, 2017

DOI: 10.3791/55594-v

Jacob M. Morton*1, Marwa A. Saad*1, Wendy S. Beane1

1Department of Biological Sciences,Western Michigan University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Bu protokol sürekli çevredeki dokulara bozmadan planarian gözleri (optik bardak) çıkarılması için nasıl gösterir. ya bir ensülin iğne ve şırınga kullanılarak, ya da her iki gözü göz rejenerasyon, görsel yenilenme evrimi, ve ışık kaynaklı bir davranışın temel düzenleyici mekanizmalarının soruşturma kolaylaştırmak için kesilip edilebilir.

Transcript

Bu prosedürün genel amacı, tekniğin tüm eğitim seviyelerindeki araştırmacılar ve öğrenciler tarafından uygulanabilmesi için beyni veya çevresindeki dokuları rahatsız etmeden düzlemsel optik kabın nasıl güvenilir bir şekilde çıkarılacağını göstermektir. Bu yöntem, endojen göz kök hücre bakımını ve farklılaşmasını in vivo olarak düzenleyen mekanizmaların belirlenmesi gibi rejeneratif alandaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, araştırmacıların diğer dokuları en az şekilde rahatsız ederek sadece göz dokularını çıkarmasına izin vermesidir.

Genel olarak, bu yönteme yeni başlayan kişilerin, çevredeki dokuların ablasyonundan kaçınırken tüm gözü ablasyon yaparak doğru miktarda dokuyu güvenilir bir şekilde çıkarabilmesi için pratik yapılması gerekir. Başlamak için, en az bir hafta boyunca beslenmemiş ve en az beş ila yedi milimetre uzunluğunda olan solucanları seçin. 15 ila 30 solucanı, üçte ikisi solucan suyuyla dolu 100 milimetrelik bir Petri kabına aktarın ve hemen kapağı değiştirin.

Solucanları, hasar görmediklerinden ve yakın zamanda yenilenmediklerinden emin olmak için beyaz başlar veya kuyruklar gibi eksik veya pigmentsiz dokular açısından gözlemleyin. İlk olarak, çalışma alanını ve diseksiyon mikroskobu tabanını %70 etanol solüsyonu ile silin ve tamamen kurumasını bekleyin. Seçilen solucanlarla birlikte çanağı mikroskobun sol tarafına yerleştirin.

Daha sonra, mikroskobun sağ tarafına, bir çift beş numaralı forseps, bir mililitrelik şırınga ile 31 gauge 5/16 inçlik bir insülin iğnesi, temiz bir transfer pipeti ve ablasyonlu solucanları toplamak için etiketli 12 oyuklu bir plaka yerleştirin. Ameliyat sırasında kolayca erişilebilecek şekilde bir kutu tüy bırakmayan mendil, taze solucan suyuyla doldurulmuş plastik bir yıkama şişesi ve ek transfer pipetleri yerleştirin. Diseksiyon mikroskobu tabanının ortasına bir Peltier plakası yerleştirin ve çıkışı, Peltier plakasının yüzeyi solucanları hareketsiz hale getirmek için yeterince soğuk olacak şekilde DC güç kaynağına ayarlayın.

Alternatif olarak, bir Peltier plakası yerine buzla doldurulmuş bir Petri kabı kullanılabilir. Ameliyat yüzeyini hazırlamak için önce beş santimetreye on santimetrelik bir plastik parafin filmi parçası kesin ve Peltier plakasının ortasına yerleştirin. Ardından, tüy bırakmayan bir mendili yaklaşık iki santimetrelik bir kareye katlayın ve filmin üzerine yerleştirin.

Ardından, katlanmış mendili yerinde tutun, solucan suyuyla nemlendirin ve mendili bir transfer pipeti ile düz bir şekilde yuvarlayın. Son olarak, 1,5 ila iki santimetre karelik bir parça beyaz filtre kağıdı kesin ve mendilin üzerine koyun. Ameliyata başlamak için, transfer pipetini kullanarak bir solucan sırt tarafı yukarı bakacak şekilde filtre kağıdına yerleştirin.

Işığı açın ve huzmesini solucanın üzerine odaklayın. Diseksiyon mikroskobu odağını ve büyütmesini, solucanın gözleri net bir şekilde görülebilecek şekilde ayarlayın. Solucanın konumunu, başı araştırmacıya doğru bakacak ve 30 ila 40 derece sağa açılı olacak şekilde ayarlamak için parafin filmini döndürün.

Solucan ventral tarafı yukarı bakacak şekilde konumlandırılmışsa ve faringeal açıklık görünüyorsa, solucanın pozisyonunu gözler görünür olacak şekilde sırt tarafı yukarı bakacak şekilde nazikçe değiştirmek için forsepsin donuk tarafını kullanın. Mikroskop ayarlarını, gözler net bir şekilde odaklanacak şekilde yeniden ayarlayın. Ayrıca hem gözlerin hem de çevresindeki kafa dokularının görüş alanında olduğundan emin olun.

Sağ elinizde başparmak ve işaret parmağı arasında temiz bir şırınga tutun. Şırınganın alt kısmını sol başparmağın üzerinde, Peltier plakasına karşı desteklenmiş olarak destekleyin. İğnenin eğiminin görünür olduğundan emin olmak için mikroskoptan bakın.

İşlem sırasında yüzeyin sabit kalmasını sağlamak için sol işaret parmağını sol başparmakla 40 derecelik bir açı yapacak şekilde ameliyat yüzeyine yerleştirin. İğneyi, iğnenin eğimi yukarı bakacak şekilde göze 90 derecelik bir açıyla yerleştirin. İğnenin ucuyla, beyaz, pigmentsiz bölge olarak görünen gözün optik kabının üzerindeki ince doku tabakasına nazikçe nüfuz edin.

Sağdan sola doğru kepçeyle, optik kap içinde bulunan siyah pigmentli dokuyu ve tüm beyaz dokuları çok nazikçe çıkarın. Çift göz ablasyonu yapıyorsanız, ikinci gözü şimdi ablate edin. Ameliyatı tamamladıktan sonra, pipeti az miktarda solucan suyu ile geri yükleyin ve filtre kağıdından kaldırmak için suyu solucanın üzerine bırakın.

Solucanı hemen transfer pipetine çekin. Solucanı, üçte ikisi taze solucan suyuyla dolu etiketli 12 oyuklu bir plakaya taşıyın. Tüm solucanlar transfer edildikten sonra, kuyulardaki suyu taze solucan suyu ile değiştirerek yıkayın.

Işıktan korunan solucanları 20 derecelik bir inkübatörde inkübe edin ve yenilenme sürecini izleyin. Canlı solucanları feda etmek için, solucan suyunu plakadan çıkarın ve% 70 etanol ile değiştirin. Solucanları üç ila beş dakika kuluçkaya yatırın ve solucanların parçalanıp grileşmediğini gözlemleyin.

Burada, cerrahi işlemden önce, dört gün sonra ve iki hafta sonra çekilmiş, çift göz ablasyonu ve tek göz ablasyonuna tabi tutulan yassı kurtların fotoğrafları sunulmaktadır. Görüntüler, zaman içindeki yenilenme ilerlemesini göstermektedir. Ablasyonlu solucanlarda göz rejenerasyonu, arrestin ve yeni geliştirilen fotoreseptör nöronlarının immünohistokimyasal boyanması ile de doğrulandı.

Çift göz ablasyonunu takiben yassı solucanlarda görsel sistemin geri kazanılması, ışığa vahşi tip fotofobik tepkiye dayanan fonksiyonel bir tahlilde de incelenmiştir. Ablasyondan 24 saat sonra, gözsüz solucanlar ışıktan kaçmazlar ve hafif lekelerden geçerler. Fotofobi, işlemden yedi gün sonra geri yüklenir, bu da yenilenen görme sisteminin işlevsel olduğunu gösterir.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bir solucanın çift göz ablasyonu prosedürü yaklaşık üç dakika yapılabilir. Ablasyon yaparken, gözün tüm pigmentli ve pigmentsiz dokularını eksize etmek, gözler arasındaki dokuya zarar vermemek veya dokuyu daha sonra göze yırtmamak için emin olmak önemlidir. Bu prosedürü takiben, spesifik genlerin rolünü ve rejeneratif süreçlerini incelemek için immünohistokimya ve RNA interferansı gibi diğer yöntemler uygulanabilir.

Ek olarak, yeniden büyümeyi takiben göz fonksiyonunu test etmek için davranışsal testler yapılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, çevredeki dokuları rahatsız etmeden planaryal gözleri nasıl eksize edeceğinizi iyi anlamış olmalısınız. İğnelerle çalışmanın tehlikeli olabileceğini ve eldiven giymek ve iğneyi sizden uzağa bakacak şekilde tutmak gibi önlemler alınması gerektiğini unutmayın.

Explore More Videos

Gelişimsel Biyoloji Sayı 122 Planarya yassı solucan göz ablasyon göz rezeksiyonu göz eksizyon Osel optik fincan kök hücreler Schmidtea mediterranea nörobilim gelişimsel biyoloji rejenerasyon

Related Videos

Zebra balığı Pronephros Lazer Ablasyon Böbrek Epitel Rejenerasyon Eğitim

07:27

Zebra balığı Pronephros Lazer Ablasyon Böbrek Epitel Rejenerasyon Eğitim

Related Videos

15.6K Views

Farmakolojik ve Fonksiyonel Genetik Tahliller Planarian Rejenerasyon işleyin Dugesia

09:58

Farmakolojik ve Fonksiyonel Genetik Tahliller Planarian Rejenerasyon işleyin Dugesia

Related Videos

37.5K Views

Planarian İmmobilizasyon, Kısmi Işınlama, ve Doku Nakli

10:09

Planarian İmmobilizasyon, Kısmi Işınlama, ve Doku Nakli

Related Videos

20K Views

Konfokal mikroskopi kullanılarak zebra balıklarında lazerle ablasyonlu internöromast hücrelerinin iyileşmesinin izlenmesi

02:39

Konfokal mikroskopi kullanılarak zebra balıklarında lazerle ablasyonlu internöromast hücrelerinin iyileşmesinin izlenmesi

Related Videos

277 Views

Yetişkin Zebra balığı Lateral Hat Rejenerasyon için bir Deneyi

09:38

Yetişkin Zebra balığı Lateral Hat Rejenerasyon için bir Deneyi

Related Videos

13K Views

Bir lazer kaynaklı retina dejenerasyonu, Zebra balığı rejenerasyon modelini Müller Glia hücre aktivasyonu

06:27

Bir lazer kaynaklı retina dejenerasyonu, Zebra balığı rejenerasyon modelini Müller Glia hücre aktivasyonu

Related Videos

10.3K Views

Kimyasal amputasyon ve yeniden oluşturulmasını Planarian Schmidtea mediterranea yutak

06:14

Kimyasal amputasyon ve yeniden oluşturulmasını Planarian Schmidtea mediterranea yutak

Related Videos

11.3K Views

Zebrabalığı İnternöromast Hücrelerinde Konfokal Mikroskop Tabanlı Lazer Ablasyon ve Rejenerasyon Tonu

11:17

Zebrabalığı İnternöromast Hücrelerinde Konfokal Mikroskop Tabanlı Lazer Ablasyon ve Rejenerasyon Tonu

Related Videos

6.5K Views

Doğal Ürünlerin Biyomodülasyon Özelliklerini Ölçmek için Bir Planarian Motilite Tsay

07:13

Doğal Ürünlerin Biyomodülasyon Özelliklerini Ölçmek için Bir Planarian Motilite Tsay

Related Videos

6.1K Views

Görsel Sistemin Innervasyona Bağlı Büyümesini ve Gelişimini İncelemek için Canlı Zebra Balığı Larvalarında Göz Çıkarılması

09:00

Görsel Sistemin Innervasyona Bağlı Büyümesini ve Gelişimini İncelemek için Canlı Zebra Balığı Larvalarında Göz Çıkarılması

Related Videos

4.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code