Name: Cpf1i Kullanarak C-Brick DNA Standart Montajı İçin Protokoller (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 3 s
Description: Öğrenin, Cpf1 proteini ve C-Brick standardı kullanarak DNA parçalarını sentetik biyolojide diziden bağımsız ve yinelemeli olarak monte etme yöntemini. Karmaşık genetik devrelerin inşasını kolaylaştırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

C-Tuğla standardının geliştirilmesi sırasında teknik yardımları için Shanghai Tolo Biotech&#39;e teşekkür ediyoruz. Bu çalışma, Çin Bilimler Akademisinin Stratejik Öncelik Araştırma Programından hibelerle desteklenmiştir (Grund No XDB19040200).

1. crRNA&#39;nın hazırlanması <ol><li> CrRNA şablonlarının hazırlanması <ol><li> Tekli oligonükleotidleri ( Tablo 1 ) RNaz içermeyen suda 10 uM&#39;lik bir konsantrasyona kadar yeniden süspanse edin. </li><li> 22.5 uL üst şeritli oligonükleotid ( Tablo 1&#39;de T7-F), 22.5 uL alt-şeritli oligonükleotid ( Tablo 1 ) ve 5 uL 10x tavlama tamponu 0.2 mL PCR tüpüne ilave edin. Toplam hacmin 50 μL olduğundan emin olun. NOT: Altı farklı alt zincirli oligonükleotidler Tablo 1&#39;de gösterilmiştir, bunların her biri ayrı ayrı üst iplikçikli T7-F ile eşleştirilmelidir. Tablo 1&#39;deki küçük harfler, crRNA&#39;nın rehber dizisine transkribe edilecek sekansı temsil etmektedir. 10x Taq PCR tamponu, 10x tavlama tamponunun yerine kullanılabilir. </li><li> PCR tüpünü bir termostatöre yerleştirin. </li><li> Tavlama programını çalıştırın: İlk denatürasyon için 95 ° C&#39;de5 dakika sonra 95-20 ° C arasında bir cooldown, termosiklörde dakikada 1 ° C düşüş. NOT: Adımları derhal adım 1.2.1 için kullanın. </li></ol></li><li> CrRNA&#39;nın transkripsiyonu ve saflaştırılması <ol><li> RNaz içermeyen suya 38 μL, adım 1.1.4&#39;deki şablondan 8 μL, 5x T7 transkripsiyon tamponu 20 uL, NTP karışımından (10 uM) 20 μL, rekombinant RNaz inhibitöründen (RRI) 4 μL ve 10 μM ML T7 RNA polimeraz&#39;dan 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne aktarıldı. Toplam hacmin 100 μL olduğundan emin olun. </li><li> Mikrosantrifüj tüpünü bir gece boyunca (yaklaşık 16 saat boyunca) 37 ° C&#39;lik bir su banyosuna koyun. </li><li> Transkribe RNA&#39;yı arındırmak için bir RNA temizleme ve konsantrasyon kiti kullanın; Üreticinin protokolünü izleyin. </li><li> RNA&#39;ları UV-Vis spektrofotometreleri ile ölçün ve RNA&#39;yı 10 uM&#39;lik bir konsantrasyona kadar sulandırın. Numuneleri derhal kullanın veya -80 ° C&#39;de saklayın. NOT: crRNA dizisiS Tablo 2&#39;de listelenmiştir . </li></ol></li></ol> 2. C-Tuğla Parçalarının Yapımı ( yani, Biyolojik Parçaların C-Tuğla Standart Vektörüne Yerleştirilmesi) NOT: Bu adımın üç alt aşaması vardır. Kısa biyolojik kısımlar ( örn. Promoterler ve sonlandırıcılar) için biyolojik parçaları C-Brick standart vektör 4&#39;e eklemek için doğrudan PCR yöntemini kullanmak en iyisidir. Bütün vektör sekansı ek veride gösterilir ve önek ve son ek sırası Şekil 1&#39;de gösterilmiştir (aşama 2.1, aşağıda). PCR ile kolaylıkla elde edilebilen biyolojik kısımlar için ( örn., Genomik DNA şablonları, plazmidler veya yeni sentezlenmiş DNA dizileri), biyolojik parçaları bir C-Brick standart vektörüne eklemek için kesintisiz montaj yöntemini kullanmak en iyisidir (Aşama 2.2, aşağıda). BioBrick ve BglBrick standartlarından edinilen parçalar için sınırlamaEnzim aracılı sindirim ve T4 DNA ligaz aracılı ligasyon biyolojik parçaları bir C-Brick standart vektörüne yerleştirmek için kullanılabilir (aşama 2.3, aşağıda). <ol><li> Doğrudan PCR amplifikasyonu ile yapı <ol><li> PCR amplifikasyonu için oligonükleotitler dizayn ve sipariş etmek. NOT: Oligonükleotitin 5&#39;-ucu, DNA bölümünün dizisini içerir ve oligonükleotitin 3 &#39;ucu, vektör dizisini ( yani, ileri bandın 3&#39; ucunda &quot;GGATCCACTAGTCTCTAGCTCG&quot; ve &quot;GGATCCTTTCTCCTCTTTCTAG&quot; Ters yörede). Oligonükleotitin 5&#39;-ucunda çıkıntı veya ~ 20 bp çıkıntı tasarlanamaz. Spesifik örnekler daha önceki bir çalışmada bulunabilir 4 . </li><li> 10 uM&#39;lik bir konsantrasyona kadar ultra saf su içindeki tek tek oligonükleotitleri yeniden süspanse edin. </li><li> 0.2 mL&#39;lik bir PCR tüpünde buz üzerinde PCR reaksiyonları oluşturun: 18 μL ultra saf su ekleyin, 25 μL 2x PCR tamponu, adım 2.1.2&#39;den ileri ve geri primerlerden her biri 2.5 uL (10 uM), şablon olarak 0.5 uL C-Brick standart vektörü (50 ng) ve 0.5 uL&#39;lik bir şablon olarak dNTP&#39;lerin (10 uM) Yüksek doğrulukta DNA polimerazın Toplam hacmin 50 μL olduğundan emin olun. </li><li> Tüpü doğrudan bir termosiklleye yerleştirin ve termosiklör programını çalıştırın. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Thermocycler programı: 98 ° C&#39;de 3 dakika süreyle bir devir; 98 ° C&#39;de 10 saniye, 55 ° C&#39;de 20 saniye ve 72 ° C&#39;de 2 dakika için otuz döngü; Ve 72 ° C&#39;de 10 dakika boyunca bir döngü. Numuneyi 16 ° C&#39;de tutun. </li><li> Adım 2.1.4&#39;ten 9 μL karışım 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne ilave edilir. </li><li> 1 uL DpnI ekleyin ve 37 ° C&#39;lik bir su banyosunda 1 saat inkübe edin. NOT: Primerler üst üste binen sekanslara sahip değillerse 0.5 μL T4 polinükleotid kinaz (PNK) ve 0.5 μL T4 DNA ligaz ekleyin ve1 saat boyunca 22 ° C su banyosu. Aksi takdirde, primerler ~ 20 nt örtüşen diziyi içeriyorsa, doğrudan DpnI ile işleme tabi tutulan ürünleri E. coli (DH10B) -kompetent hücrelere dönüştürün (basamak 2.4). Doğrusallaştırılmış PCR ürünü konakçıdaki rekombinasyon sistemi ile dairesize hale getirilecektir. </li><li> Numuneleri hemen kullanın veya -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li><li> Dikişsiz montaj ile inşaat <ol><li> PCR amplifikasyonu için oligonükleotitler dizayn ve sipariş etmek. NOT: Oligonükleotitin 3&#39;-ucu, DNA bölümünün terminal dizisini içerir ve oligonükleotitin 5&#39;-ucu, doğrusallaştırılmış C-Brick standart vektör dizisinin terminalini içerir ( yani, 5 &#39;için standart olarak kullanılan &quot;CTAGAAAGAGGAGAAAGGATCC&quot; İleriye doğru ipliğin ucunu ve &quot;CGAGCTAGAGACTAGTGGCCT&quot; ters iplikçikinin 5&#39;-ucu için). Spesifik örnekler daha önceki bir çalışmada bulunabilir 4 . </li><li> Bireyi yeniden askıya alUltra saf sularda 10 uM konsantrasyona kadar ual oligonükleotitler. </li><li> 0.2 mL&#39;lik bir PCR tüpünde buz üzerinde PCR reaksiyonlarını ayarlayın: ultra saf su, 25 μL 2x PCR tamponu, 1 μL dNTPs (10 μM), 2.5 μL ileri ve geri primerlerin her biri (10 μM ), Adım 2.2.2, 0.5 uL şablon (20-500 ng) ve 0.5 uL yüksek-sadakat DNA polimeraz&#39;dan hazırlandı. Toplam hacmin 50 μL olduğundan emin olun. </li><li> Tüpü doğrudan termosiklleye yerleştirin ve termosiklör programını çalıştırın. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. NOT: Thermocycler programını şu şekilde ayarlayın: 98 ° C&#39;de 3 dakika süreyle bir devir; 98 ° C&#39;de 10 saniye, 55 ° C&#39;de 20 saniye sonra (primerin tavlama sıcaklığına göre) 30 döngü ve 72 ° C&#39;de 1 dakika (biyolojik parçaların uzunluğuna göre) 30 döngü; Ve 72 ° C&#39;de 10 dakika boyunca bir döngü. Numuneyi 16 ° C&#39;de tutun. </li><li> Bir PCR temizleme sistemi kullanarak PCR ürününü arıtınTem kiti; Üreticinin protokolünü izleyin. </li><li> C-Brick standart vektörünü BamHI ile sindirin: 34 μL ultra saf su, 10 μL plazmid (1 μg), 5 μL 10x tampon ve 1 μL BamHI&#39;yi mikrosantrifüj tüpüne ilave edin. Su banyosunda 37 ° C&#39;de 2 saate kadar inkübe edin. </li><li> Bir jel temizleme sistemi kiti kullanarak yukarıdaki ürünü arındırın; Üreticinin protokolünü izleyin. </li><li> Adım 2.2.7&#39;den 2 mcL doğrusallaştırılmış vektör (50 ng), adım 2.2.4&#39;ten 5 uL parça (200 ng), 5x kesintisiz montaj tamponu 2 mcL ve kesintisiz montaj kitinden 1 μL kesintisiz montaj enzimi ekleyin. 1.5 mL&#39;lik mikrosantrifüj tüpüne uygulayın. Toplam hacmin 10 mcL olduğunu kontrol edin. </li><li> Bunu 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;lik bir su banyosuna yerleştirin. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li><li> Restriksiyon enzim aracılı sindirim ve T4 DNA ligaz aracılı ligasyon yoluyla yapı. NOT: BioBrick (basamak 2.3.4-2.3.7) ve BglBrick (basamak 2.3.1-2.3.3) standartlarından elde edilen parçalar için kısıtlama enzimi aracılı sindirim ve T4 DNA ligaz aracılı ligasyon, Biyolojik parçaları bir C-Tuğla standart vektörüne dönüştürür. <ol><li> BamHI ve BglII ile BglBrick standart parçalarını sindirin: 34 μL ultra saf su, 10 μl plazmid (2 μg), 5 μL 10x tampon 3, 0.5 μL BamHI ve 0.5 μL BglII&#39;yi mikrosantrifüj tüpüne ilave edin. 37 ° C su banyosunda 2 saat inkübe edin. </li><li> % 1 agaroz jel elektroforezi çalıştırın ve bir jel temizleme sistemi kiti kullanarak fragmanı arındırın. </li><li> Parçayı ve C-Brick standart vektörünü ligate edin: Adım 2.1.12&#39;den doğrusallaştırılmış vektörün (50 ng) 2 mL ve adım 2.3.3&#39;ten 6 uL parça (200 ng) 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne ekleyin. 1 uL 10 x T4 DNA ligaz tamponu ve 1 μL T4 DNA ligaz ekleyin. 22 ° C&#39;de 2 saat inkübe edin. Numuneleri derhal kullanın veya buz özütüE -20 ° C&#39;de saklayın. </li><li> XbaI ve SpeI ile BioBrick standart parçalarını sindirin: 34 μL ultra saf su, 10 μL plazmid (2 μg), 5 μL 10x tampon, 0.5 μL Xbal ve 0.5 μL SpeI mikrosantrifüj tüpüne ekleyin. 37 ° C su banyosunda 2 saat inkübe edin. </li><li> C-Brick standart vektörünü XbaI ve SpeI ile sindirin: 34 μL ultra saf su, 10 μL plazmid (1 μg), 5 μL 10x tampon, 0.5 μL Xbal ve 0.5 μL SpeI mikrosantrifüj tüpüne ekleyin . 37 ° C su banyosunda 2 saat inkübe edin. </li><li> % 1 agaroz jel elektroforezi çalıştırın ve safha 2.3.4 adımından ve adım 2.5.5&#39;deki doğrusallaştırılmış vektörü jel temizleme sistemi kitiyle saflaştırın; Üreticinin protokolünü izleyerek. </li><li> Parçayı ve C-Brick vektörünü ligate edin: Adım 2.3.5&#39;den 2 mcL doğrusallaştırılmış vektör (50 ng) ve adım 2.3.4&#39;ten 6 uL parça (200 ng) 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne ekleyin. ilanD 1 uL 10x T4 DNA ligaz tamponu ve 1 uL T4 DNA ligazı. 22 ° C&#39;de 2 saat inkübe edin. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li><li> E. coli&#39;nin yetkili hücrelerine (DH10B) kimyasal transformasyon için adım 2.1.8, 2.2.9, 2.3.3 veya 2.3.7&#39;den 10 uL ürün ekleyin. </li><li> Birkaç klonu 5 mL sıvı Luria-Bertani (LB) tüpü içine alın ve gece boyunca çalkalayıcıda (220 rpm) 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> Bir plazmid hazırlama kiti kullanarak plazmid ayıklayın; Üreticinin protokolünü izleyin. </li><li> Sanger dizilemesi ile doğru klonları tanımlayın 11 . </li></ol> 3. C-Tuğla Montajı ( Şekil 2 ) <ol><li> C-Brick vektörünün Cpf1 ile sindirimi <ol><li> 22.5 uL RNaz içermeyen su, 4 μL 10x Cpf1 tamponu, adım 2.6&#39;dan (1 μg) plazmidden 10 μL, RRI&#39;nin 0.5 μL&#39;si ve 1 μl# 181; L Cpfl&#39;den (5 uM) 1.5 mL&#39;lik bir mikrosantrifüj tüpüne. NOT: Cpf1 ticari olarak satın alınabilir veya önceki bir çalışmada protokolden sonra saflaştırılabilir 4 . </li><li> T1 ve T2 bölgelerine yabancı bir DNA parçası eklemek için, 1 μL crRNA-T2 (10 uM) ilave edin ve 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de bir su banyosunda inkübe edin. Bir dd 1 μL crRNA-T1 (10 uM) ve Cpfl (5 uM) 30 dakika daha. NOT: Alternatif olarak, T3 ve T4 bölgelerine yabancı bir DNA parçası eklemek için 1 μL crRNA-T3 (10 uM) ilave edin ve 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de bir su banyosunda inkübe edin. Başka bir 30 dakika boyunca 1 μL crRNA-T4 (10 uM) ekleyin. </li><li> 1 μL termal duyarlı alkalin fosfataz ekleyin ve tüp 37 ° C su banyosunda 1 saat daha inkübe edin. </li><li> Bir agaroz jel elektroforezi çalıştırın ve bir jel temizleme sistemi kiti kullanarak vektörü arındırın. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li&gt; <li> DNA parçasının Cpfl ile sindirimi <ol><li> RNase içermeyen 21.5 μL su, 4 μL 10x Cpf1 tamponu, adım 2.6&#39;dan (2 μg) plazmid 10 μL, RRI 0.5 μL ve Cpf1&#39;den (5 μM) 2 mL Tl 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne ekleyin. </li><li> T1 ve T2 bölgeleri içine yabancı bir DNA parçası eklemek için, 1 μL crRNA-T1 (10 μM) ve 1 μL crRNA-T3 (10 μM) ekleyin ve 37 ° C&#39;de 2 saat su banyosunda inkübe edin. NOT: Alternatif olarak, 1 μL crRNA-T2 (10 μM) ve 1 μL crRNA-T4 (10 μM) ekleyin ve 37 ° C&#39;de 2 saat su banyosunda inkübe edin. </li><li> Bir agaroz jel elektroforez çalıştırın ve bir jel temizleme sistemi kiti kullanarak parça saflaştırmak. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li><li> C-Tuğla montajı ve ileri doğrulama <ol><li> Yabancı DNA parçasını ve C-Brick vektörünü ligatlayın: 2 μL doğrusal vektörü ekleyin (50 ng) adım 3.1.4&#39;ten ve 6 mcL DNA fragmanı (200 ng) adım 3.2.3&#39;ten 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne aktarılmıştır. 1 μL 10x T4 DNA ligaz tamponu ve 1 μL T4 DNA ligaz ekleyin. 22 ° C&#39;de 2 saat inkübe edin. Numuneleri derhal kullanın veya dondurun ve -20 ° C&#39;de saklayın. </li><li> E. coli (DH10B) -erkentent hücrelere kimyasal transformasyon için 10 μL ligasyon ürünlerini (adım 3.3.1) ekleyin. </li><li> 5 mL&#39;lik bir sıvı LB tüpüne birkaç klon ekleyin ve gece boyunca 220 rpm ve 37 ° C&#39;de çalkalayıcıda inkübe edin. </li><li> Bir plazmid hazırlama kiti kullanarak plazmid ayıklayın; Üreticinin protokolünü izleyin. </li><li> Sanger dizilemesi ile doğru klonları tanımlayın 11 . </li></ol></li><li> C-Tuğla montajının yeni turunu yapın. Adım 3.3.4&#39;teki doğru klonlar, adım 3.1-3.3&#39;teki aynı protokol izlenerek, tekrar tekrar C-Brick montajı için yeni bir C-Tuğla vektörü veya DNA parçası olarak kullanılabilir. NOT: T2 &#39;ve T3&#39;ünItes, T2 ve T3 bölgelerinin yedeği olarak tasarlanmıştır ( Şekil 1a ). Adım 2.3.7&#39;den elde edilen plasmidler için, sadece C-Tuğla standart montajı için T2 &#39;ve T3&#39; kullanılabilir. </li></ol>

<ol><li>Canton, B., Labno, A., Endy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Refinement+and+standardization+of+synthetic+biological+parts+and+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Refinement and standardization of synthetic biological parts and devices.</a> Nat Biotechnol. 26 (7), 787-793 (2008).</li>
<li>Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+BioBrick+vectors+from+BioBrick+parts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Eng%22%5BJournal%5D)">Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts.</a> J Biol Eng. 2, (2008).</li>
<li>Knight, T. <a target="_blank" href="https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/21168">Idempotent Vector Design for Standard Assembly of Biobricks</a>. , MIT Artificial Intelligence Laboratory; MIT Synthetic Biology Working Group. 1-11 (2003).</li>
<li>Li, S. Y., Zhao, G. P., Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C-Brick%3A+A+New+Standard+for+Assembly+of+Biological+Parts+Using+Cpf1%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Synth+Biol%22%5BJournal%5D)">C-Brick: A New Standard for Assembly of Biological Parts Using Cpf1.</a> ACS Synth Biol. 5 (12), 1383-1388 (2016).</li>
<li>Anderson, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BglBricks%3A+A+flexible+standard+for+biological+part+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Eng%22%5BJournal%5D)">BglBricks: A flexible standard for biological part assembly.</a> J Biol Eng. 4 (1), (2010).</li>
<li>Liu, J. K., Chen, W. H., Ren, S. X., Zhao, G. P., Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((iBrick%3A+a+new+standard+for+iterative+assembly+of+biological+parts+with+homing+endonucleases%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">iBrick: a new standard for iterative assembly of biological parts with homing endonucleases.</a> PLoS One. 9 (10), e110852(2014).</li>
<li>Hsu, P. D., Lander, E. S., Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+applications+of+CRISPR-Cas9+for+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Development and applications of CRISPR-Cas9 for genome engineering.</a> Cell. 157 (6), 1262-1278 (2014).</li>
<li>Wright, A. V., Nunez, J. K., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+and+Applications+of+CRISPR+Systems%3A+Harnessing+Nature%27s+Toolbox+for+Genome+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Biology and Applications of CRISPR Systems: Harnessing Nature's Toolbox for Genome Engineering.</a> Cell. 164 (1-2), 29-44 (2016).</li>
<li>Jinek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+programmable+dual-RNA-guided+DNA+endonuclease+in+adaptive+bacterial+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.</a> Science. 337 (6096), 816-821 (2012).</li>
<li>Zetsche, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cpf1+is+a+single+RNA-guided+endonuclease+of+a+class+2+CRISPR-Cas+system%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cpf1 is a single RNA-guided endonuclease of a class 2 CRISPR-Cas system.</a> Cell. 163 (3), 759-771 (2015).</li>
<li>Sanger, F., Nicklen, S., Coulson, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+sequencing+with+chain-terminating+inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">DNA sequencing with chain-terminating inhibitors.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 74 (12), 5463-5467 (1977).</li>
<li>Shanghai Tolo Biotechnology Company Limited. , Shanghai 200233, China. Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.tolobio.com/">http://www.tolobio.com/</a> (2017).</li>
<li>Engler, C., Kandzia, R., Marillonnet, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+one+pot%2C+one+step%2C+precision+cloning+method%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A one pot, one step, precision cloning method.</a> PLoS One. 3 (11), e3647(2008).</li>
<li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nat Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li>
<li>Casini, A., Storch, M., Baldwin, G. S., Ellis, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bricks+and+blueprints%3A+methods+and+standards+for+DNA+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Bricks and blueprints: methods and standards for DNA assembly.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 16 (9), 568-576 (2015).</li>
<li>Cameron, D. E., Bashor, C. J., Collins, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+brief+history+of+synthetic+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A brief history of synthetic biology.</a> Nat Rev Microbiol. 12 (5), 381-390 (2014).</li>
<li>Keasling, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+biology+for+synthetic+chemistry%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Synthetic biology for synthetic chemistry.</a> ACS Chem Biol. 3 (1), 64-76 (2008).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Bu protokol DNA montaj standardı C-Brick için bir prosedürü açıklamaktadır. Bu protokolün en önemli adımı, C-Brick standart vektörünün doğrusallaştırılmasıdır; Vektörün tamamlanmamış bölünmesi başarı oranını ciddi şekilde etkileyebilir. Buna ek olarak, Cpf1 esas olarak &quot;18-23&quot; bölünme paterninde hedef DNA sekanslarını parçalasa da, DNA toplanmasından sonra az sayıda mutasyona neden olabilecek iki baz yakınındaki yanlişlı bölünme 4 de tespit edilmiştir4. Bu nedenle, Sanger dizilemesi, bi...

DNA biyolojik parçalarının standardizasyonu sentetik biyolojinin gelişimi için önemlidir 1 . Bir DNA montaj prosedürünün geliştirilmesi, geçici test tasarımlarının yerini alabilir ve genetik bileşenlerin daha büyük sistemlere montajı sırasında ortaya çıkan beklenmedik sonuçların çoğunu kaldırabilir. BioBrick standardı (BBF RFC 10), önerilen en erken DNA montaj standartlarından biriydi. Önek dizisini (EcoRI ve Xbal kesim bölgeleri içeren) ve son ekleme dizisini (SpeI ve PstI kesme bölgelerini içeren) 2 , 3 kullanır . XbaI ve SpeI&#39;nin birbirine tamamlayıcı uçları olduğu için, XbaI ve SpeI ile kesilen BioBrick DNA parçaları, tekrar tekrar montaj için yeni bir BioBrick üretecek şekilde birleştirilebilir. Bazı kusurlar, BioBrick standardı 4 kullanılarak tanımlanmıştır. Örneğin, 8 bp&#39;lik bir skar üretirFüzyon proteinlerinin inşasına izin vermeyen DNA parçaları arasında. Ayrıca, yukarıda sözü edilen dört 6-bp kısıtlama sahası türü DNA parçalardan çıkarılmalıdır; bu çok rahatsız edicidir. İlk problemi çözmek için BglBrick standardı kuruldu 5 . Gly-Ser üreten ve çoklu proteinlerin veya protein alanlarının kaynaşmasına izin veren 6 bp &quot;GGATCT&quot; skarını oluşturur. IBrick, ikinci problemle başa çıkmak için geliştirildi 6 . Uzun DNA sekanslarını tanıyan homojenleştirme endonükleazları (HE) kullanır. HE tanıma siteleri nadiren doğal DNA dizilerinde mevcut olduğundan, iBrick standardı, DNA dizilerini değiştirmeden iBrick parçalarının doğrudan yapımı için kullanılabilir. Bununla birlikte, iBrick standardı DNA parçaları arasında 21 bp&#39;lik bir skar bırakır ve bu da onun hoşnutsuzluğunun nedeni olabilir. Son yıllarda kümelenmiş düzenli aralıklı kısa palindromik tekrarlar (CRISPR) sistemi hızla gelişti 7 , 8 . CRISPR ile ilişkili (Cas) proteinler arasında, Streptococcus pyogenes&#39;ten Cas9 endonuclease şimdi yaygın olarak kullanılmaktadır . Çoğunlukla künt uçları olan çift sarmal DNA kopmaları (DSB&#39;ler) getirir 9 . 2015&#39;te Zhang ve arkadaşları, Cpf1&#39;i ( Prevotella ve Francisella 1&#39;den CRISPR) ilk kez karakterize etti . Sınıf 2 tip V CRISPR-Cas sistemine aittir ve bir CRISRP RNA (crRNA) rehberli endonükleaz 10&#39;dur . Cas9&#39;un aksine, Cpf1, 4 veya 5 nt 5 &#39;çıkıntı 10 içeren bir DSB&#39;yi sunar. Bu özelliğe dayanarak Cpf1, bir DNA montaj standardı olan C-Brick 4&#39;ü geliştirmek için kullanıldı. Bir C-Tuğla standart vektöründe, ön ek T1 / T2&#39;nin ve bitişik T3 / T4&#39;ün dört Cpf1 hedef bölgesi biyolojik kısımlara kenetlenir; Bu, BioBrick standardına benzer. T2 ve T3 bölmelerinin bölünmesi pTamamlayıcı yapışkan uçları geliştirir, parçaların arasına bir &quot;GGATCC&quot; yara üretirken DNA bölümlerinin yinelemeli montajını gerçekleştirmek mümkündür. Özellikle, C-Brick standardının iki ana avantajı vardır: uzun hedef sekansları tanımak ve kısa izleri bırakmak. C-Brick tarafından üretilen 6 bp&#39;lik &quot;GGATCC&quot; skar, füzyon proteinlerinin oluşturulmasına izin veren Gly-Seriyi kodlar. Ayrıca, C-Brick standardı da kısmen BglBrick ve BioBrick standartlarıyla uyumludur.

<table><tbody><tr><td>Ticari Oligonükleotid</td><td>Sangon Biotech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10x Taq PCR Tampon</td><td>Transgen</td><td>#J40928</td><td></td></tr><tr><td>Ultra Saf Damıtılmış Su</td><td>Invitrogen</td><td>10977-015</td><td></td></tr><tr><td>5x RNA Transkripsiyon Tamponu</td><td>Thermo Scientific</td><td>K0441</td><td></td></tr><tr><td>T7 RNA polimeraz</td><td>Thermo Scientific</td><td>#EP0111</td><td></td></tr><tr><td>NTP karışımı</td><td>Sangon</td><td>#ND0056</td><td></td></tr><tr><td>RRI (Rekombinant RNaz İnhibitörü)</td><td>Takara</td><td>2313A</td><td></td></tr><tr><td>RNA Temiz ve Konsantratör-5</td><td>Zymo Research</td><td>R1015</td><td></td></tr><tr><td>UV-Vis Spektrometresi</td><td>Thermo Scientific</td><td>Nano-Drop 2000c</td><td></td></tr><tr><td>2x Phanta Max Tampon</td><td>Vazyme</td><td>PB505</td><td>PCR tamponu</td></tr><tr><td>dNTP'ler</td><td>Transgen</td><td>AD101</td><td></td></tr><tr><td>Phanta Max Süper Sadakat DNA Polimeraz</td><td>Vazyme</td><td>P505-d1</td><td></td></tr><tr><td>Tek Adımlı Klonlama Tolobio için Ezmax</td><td></td><td>24303-1</td><td>dikişsiz montaj kiti</td></tr><tr><td>Ezmax Tek Adımlı Klonlama için 5x Tampon</td><td>Tolobio</td><td>32006</td><td></td></tr><tr><td>BamHI</td><td>NEB</td><td>#R0136L</td><td></td></tr><tr><td>BamHI-HF</td><td>NEB</td><td>#R3136L</td><td></td></tr><tr><td>BglII&nbsp;</td><td>NEB</td><td>#R0144L</td><td></td></tr><tr><td>XbaI</td><td>NEB</td><td>#R0145L</td><td></td></tr><tr><td>SpeI</td><td>NEB</td><td>#R3133L</td><td></td></tr><tr><td>10x Tampon 3</td><td>NEB</td><td>#B7003S</td><td></td></tr><tr><td>10x CutSmart Tampon</td><td>NEB</td><td>B7204S</td><td></td></tr><tr><td>10x T4 DNA ligaz Tamponu</td><td>Tolobio</td><td>32002</td><td></td></tr><tr><td>T4 PNK</td><td>Tolobio</td><td>32206</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNA ligaz</td><td>Tolobio</td><td>32210</td><td></td></tr><tr><td>DpnI</td><td>NEB</td><td>#R01762</td><td></td></tr><tr><td>SV Jel ve PCR temizleme sistemi</td><td>Promega</td><td>A9282</td><td></td></tr><tr><td>Plazmid Mini Kit I</td><td>Omega</td><td>D6943-02</td><td>plazmit hazırlama kiti</td></tr><tr><td>ısıya duyarlı alkalin fosfataz&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>#EF0651</td><td>FastAP</td></tr><tr><td>10x Cpf1 tamponu</td><td>Tolobio</td><td>32008</td><td></td></tr><tr><td>Cpf1</td><td>Tolobio</td><td>32105</td><td>FnCpf1</td></tr><tr><td>termodöngüleyici</td><td>Uygulamalı Biyosistemler</td><td>veriti 96 kuyulu</td><td></td></tr><tr><td>C-Tuğla standart vektör</td><td>Tolobio</td><td>98101</td><td></td></tr><tr><td>E. coli [DH10B]</td> <td>Canlandırıcı</td><td>18297010</td><td></td></tr><tr><td>Luria-Bertani ortamı (tripton)</td><td>Oxoid</td><td>LP0042</td><td></td></tr><tr><td>Luria-Bertani ortamı (maya özütü)</td><td>Oxoid</td><td>LP0021</td><td></td></tr><tr><td>Luria-Bertani ortamı (NaCl)</td><td>Sangon Biotech</td><td>B126BA0007</td><td></td></tr></tbody></table>

cpf1&#39;i kullanarak c-brick dna standart montajı İçin protokoller

Protocols for C-Brick DNA Standard Assembly Using Cpf1

CRISPR ile ilişkili protein Cpf1 çift sarmallı DNA&#39;yı CRISPR RNA&#39;nın (crRNA) rehberliğinde parçalayıp yapışkan uçlar üretir. Bu özellikten dolayı Cpf1, C-Brick adı verilen ve uzun tanıma yerleri ve kısa izlerin avantajına sahip bir DNA montaj standardının oluşturulması için kullanılmıştır. Standart bir C-Tuğla vektöründe, dört Cpf1 tanıma bölgesi vardır - ön ek (T1 ve T2 siteleri) ve son ek (T3 ve T4 bölgeleri) - biyolojik DNA parçalarını çevreleyen. T2 ve T3 bölgelerinin bölünmesi tamamlayıcı yapışkan uçlar üretir ve bu da T2 ve T3 bölgeleriyle DNA parçalarının birleştirilmesini sağlar. Bu arada, montajdan sonra parçalar arasında kısa bir &quot;GGATCC&quot; skarı meydana gelir. Yeni oluşturulan plazmid dört kez Cpf1 bölünme yerini bir kez daha içerdiğinden yöntem, DNA parçalarının yinelenen montajını sağlar ve bu da, BioBrick ve BglBrick standartlarına benzer. DNA parçalarını bir araya getirmek için C-Brick standardının kullanımını özetleyen bir prosedürBurada açıklanmaktadır. C-Brick standardı, bilim adamları, lisansüstü öğrenciler ve lisans öğrencileri ve hatta amatörler tarafından yaygın bir şekilde kullanılabilir.

<html> Bu protokol, üç kromoprotein kasetinin (cjBlue (BBa_K592011), red (BBa_K592012) ve amilGFP&#39;nin (BBa_K592010) montajını gösterdi. Birincisi, yukarıda bahsedilen üç genin ve sonlandırıcıların kodlama dizileri ayrı ayrı bir C-Brick standart vektörüne klonlanmıştır. Kısa DNA kısımları, promotör ve terminatör, 5 &#39;terminalindeki kısa DNA kısımlarını içeren primerler kullanılarak PCR amplifikasyonuyla C-Brick vektörüne sokuldu. Bunu self-ligasyon yöntemi izledi. Üç kromoprotein ko...

CRISPR ile ilişkili protein Cpf1, özel olarak tasarlanmış bir CRISPR RNA (crRNA) yardımıyla, istenilen noktalarda çift sarmallı DNA&#39;yı parçalayıp yapışkan uçlar üretebilir. Bu karakteristiğe dayanarak, bir DNA montaj standardı (C-Brick) oluşturuldu ve kullanımını ayrıntılandıran bir protokol burada açıklandı.

Cpf1&#39;i Kullanarak C-Brick DNA Standart Montajı İçin Protokoller

CRISPR-associated protein Cpf1 cleaves double-stranded DNA under the guidance of CRISPR RNA (crRNA), generating sticky ends. Because of this ...

Aşağıdaki videolar, CRISPR ile ilişkili protein olan Cpf1'i kullanarak DNA parçalarını birleştirmek için C-Brick standardını kullanma prosedürünü detaylandırmaktadır. Bu yöntem, sentetik biyoloji alanında DNA düzeneğinin gelişimini ilerletebilir. Karmaşık genetik devrelerin inşasını kolaylaştırmak gibi.Bu yöntemin ana avantajı, diziden bağımsız olması ve DNA yapılarının yinelemeli montajına izin vermesidir. Bu yöntem için ilk olarak, Cpf1'in tek siRNA ve katalitik DNA tarafından yönlendirildiğini fark ettiğimizde ortaya çıktık. Bu nedenle, DKN'ler oluşturuluyor.Prosedürü gösteren, laboratuvarımdan bir yüksek lisans öğrencisi olan Shi-Yuan Li olacak. CrRNA şablonlarını onarmak için, tek tek oligonükleotidleri RNaz içermeyen suda 10 mikromolar konsantrasyona kadar yeniden süspanse edin. 0.2 mililitrelik bir PCR tüpüne, ekteki belgede ayrıntılı olarak açıklandığı gibi üst iplikçik oligonükleotidi, alt iplikçik oligonükleotidi ve 10x tavlama tamponu ekleyin.Toplam hacmin 50 mikrolitre olduğundan emin olun. Bu tablo, her biri üst iplikçik T7-F ile ayrı ayrı eşleştirilmesi gereken altı farklı alt iplikçik oligonükleotidini göstermektedir. Küçük harfler, crRNA'nın kılavuz dizisine kopyalanacak diziyi temsil eder.PCR tüpünü bir termocycler'a yerleştirin. Tavlama programını beş dakika boyunca 95 santigrat derecede bir ilk denitrasyon ile çalıştırın ve ardından dakikada bir santigrat derece azalma ile 95 ila 20 santigrat derece arasında bir soğutma yapın. Tavlamayı takiben, tavlanmış ürünü 1.5 mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpünde RNaz içermeyen su, T-7 transkripsiyon tamponu, NTP karışımı, rekombinant RNaz inhibitörü ve T-7 RNaz polimeraz ile birleştirerek hemen transkripsiyon gerçekleştirin.Reaksiyonu gece boyunca 37 santigrat derecede bir su banyosunda inkübe edin. Ertesi gün, kopyalanan RNA'yı saflaştırmak için bir RNA temizleme ve konsantrasyon kiti kullanın. RNA'yı ölçmek için bir UV-Vis spektrofotometresi kullanın.Ardından, RNA'yı 10 mikromolar konsantrasyona seyreltin. Numuneler hemen kullanılmayacaksa, 80 santigrat derecede saklayın. C-Brick parçalarının yapımı çeşitli yöntemlerle gerçekleştirilebilir.Videonun bu bölümünde, üç kromoprotein kaseti, cjBlue, eforRed ve amilGFP, dikişsiz montaj yöntemi kullanılarak birleştirilecektir. Kromoprotein kasetlerinin PCR amplifikasyonu için oligonükleotidleri tasarlayarak ve sipariş ederek başlayın. Oligonükleotidler geldiğinde, bunları ultra saf suda 10 mikromolar konsantrasyona kadar tekrar süspanse edin.Ardından, PCR reaksiyonlarını ayarlamak için 0.2 mililitre PCR tüplerini buzun üzerine yerleştirin. Ultra saf su, iki XPCR tamponu, DNTP'ler, ileri ve geri primerler, kromoprotein şablonu ve yüksek kaliteli DNA polimeraz ekleyin. Tüpleri doğrudan termocycler'a yerleştirin ve programı çalıştırın.Numuneleri hemen kullanın veya dondurun ve 20 santigrat derecede saklayın. Amplifikasyonun ardından, PCR ürünlerini bir kit kullanarak saflaştırın. Ardından, C-Brick standart vektörünü BamH1 ile sindirmek için tüpe ultra saf su, plazmid, 10x tampon ve BamH1 ekleyin.Bir su banyosunda 37 santigrat derecede iki saate kadar inkübe edin. Bir jel temizleme kiti kullanarak doğrusallaştırılmış vektörü saflaştırın. Temizlemenin ardından, 1,5 mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpünde doğrusallaştırılmış vektörü, PCR ürününü, 5x dikişsiz montaj tamponunu ve dikişsiz montaj enzimini dikişsiz bir montaj kitinden birleştirin.Toplam hacmin 10 mikrolitre olduğundan emin olun. Bunu 30 dakika boyunca 37 santigrat derece su banyosuna yerleştirin. Kuluçka işleminden sonra numuneleri hemen kullanın veya buz üzerinde dondurun ve 20 santigrat derecede saklayın.90 mikrolitre e coli DH10B'ye 10 mikrolitre yapı ekleyin. Kimyasal bir dönüşüm gerçekleştirin. Daha sonra, dönüştürülmüş hücreleri bir LB plakasına yayın ve 37 santigrat derecede inkübe edin.Ertesi gün, beş mililitrelik sıvı LB tüplerinde kültürlemek için birkaç klon seçin ve bunları gece boyunca 220 rpm'de bir çalkalayıcı üzerinde 37 santigrat derecede inkübe edin. Bir plazmit hazırlama kiti kullanarak plazmidi çıkarın. Ardından, Sanger dizilimi ile doğru klonları tanımlayın.C-Brick yollarının inşasının, reaktif PCI uygulamasıyla veya T4 DNA ligaz ortamının ligasyona hemen sindirilmesindeki kısıtlama ile de gerçekleştirilebileceğini bilin. Daha sonra, C-Brick vektörünü Cpf1 ile sindirmek için, RNaz içermeyen su, 10x Cpf1 tamponu, plazmid, rekombinant RNaz inhibitörü ve Cpf1'i 1.5 mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin. T1 ve T2 bölgelerine yabancı bir DNA parçası yerleştirmek için, bir mikrolitre crRNA T2 ekleyin ve tüpü 37 santigrat derecede bir su banyosunda 30 dakika inkübe edin.Daha sonra tüpü su banyosunda tutarak bir mikrolitre crRNA T1, bir mikrolitre Cpf1 ekleyin ve 30 dakika daha inkübe edin. Önce crRNA T2 eklenir, çünkü iki tanıma bölgesi vektör DNA'sına daha yakındır. T1 bölgesindeki Cpf1 bağlanması, T2 bölgesinin yatağını etkileyebilir.Ayrıca, T2'nin sitesi T2 bölgesinin yerini alıyorsa, önce crRNA T1'in eklenmesi durumunda T2'nin sitesi bozulurdu. Bir mikrolitre ısıya duyarlı alkalin fosfataz ekleyin ve tüpü 37 santigrat derece su banyosunda bir saat daha inkübe edin. Agaroz jel elektroforezi gerçekleştirin ve bir jel temizleme sistemi kiti kullanarak vektörü saflaştırın.Numuneleri hemen kullanın veya dondurun ve 20 santigrat derecede saklayın. İlgilenilen DNA fragmanını Cpf1 ile sindirmek için, RNaz içermeyen su, 10x Cpf1 tamponu, plazmit, rekombinant RNaz inhibitörü ve Cpf1'i 1.5 mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin. T1 ve T2 bölgelerine yabancı bir DNA parçası yerleştirmek için, tüpe bir mikrolitre crRNA T1 ve bir mikrolitre crRNA T3 ekleyin ve iki saat boyunca 37 santigrat derecede bir su banyosunda inkübe edin.İnkübasyondan sonra, agaroz jel elektroforezi yapın ve bir jel temizleme kiti kullanarak parçayı saflaştırın. Numuneleri hemen kullanın veya dondurun ve 20 santigrat derecede saklayın. Daha sonra, C-Brick vektöründeki yabancı DNA fragmanını bağlamak için, doğrusallaştırılmış vektörü ve DNA fragmanını 1.5 mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin.10x T4 DNA Ligaz Tamponu ve T4 DNA Ligaz ekleyin. Ardından, 22 santigrat derecede iki saat inkübe edin. Numuneleri hemen kullanın veya dondurun ve 20 santigrat derecede saklayın.E coli DH10B yetkili hücrelerine 10 mikrolitre ligasyon ürünü ekleyin ve kimyasal bir dönüşüm gerçekleştirin. Daha sonra, dönüştürülmüş e coli'yi LB plakalarına yayın ve 37 santigrat derecede inkübe edin. Ertesi gün, 5 mililitrelik sıvı LB tüplerine birkaç klon ekleyin ve gece boyunca 220 rpm ve 37 santigrat derecede bir çalkalayıcı üzerinde inkübe edin.Bir plazmit hazırlama kiti kullanarak plazmidi çıkarın. Ardından, Sanger dizilimi ile doğru klonları tanımlayın. Yeni bir C-Brick montajı turu gerçekleştirin.Numuneyi kullanarak, çatlak klonları olarak adlandırılan klonlar, daha fazla C-Brick yinelemeli montajı için yeni bir C-Brick vektörü veya DNA parçası olarak kullanılabilir. Üç kromoprotein kaseti, cjBlue, eforRed ve amilGFP, bu videoda anlatıldığı gibi birleştirildi. Bir plaka üzerinde yetiştirilen e coli'de üç kromoprotein eksprese edildi.Kromoprotein içermeyen negatif kontrol bakterileri dördüncü plakada gösterilmiştir. Daha sonra, daha fazla renk oluşturmak için iki renk ifade kaseti C-Brick standardıyla daha da birleştirildi. Üç kromoprotein ve üç birleştirilmiş çift kromoprotein, sıvı LB ortamında büyütülen e coli'de eksprese edildi.Birden altıya kadar ifade edilen yapılar şunlardır: eforRed, bir, amilGFP, iki, cjBlue, üç, amilGFP artı eforRed, dört, eforRed artı cjBlue, beş ve amilGFP artı cjBlue, altı. Tek bir plaka üzerindeki veya tek bir mikrosantrifüj tüpündeki renkli bakteriler, tek bir dizi doğrulanmış klondan kültürlendi. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik uygun şekilde yapılırsa bir hafta içinde yapılabilir.Bu prosedürü denerken, siRNA hazırlığı ve Cpf1 temizleme için tüm materyallerin RNaz içermemesi gerektiğini hatırlamak önemlidir. Hala tavsiye ediyorum, bu taktik, sentetik biyoloji alanındaki araştırmacıların metabolik yolların genetik bir vitrinini oluşturmaları için bir yol olarak yardımcı oldu. Bu videoyu izledikten sonra, C-Brick standardını kullanarak bir DNA yolunun nasıl birleştirileceğini iyi anlamış olmalısınız.

protocols-for-c-brick-dna-standard-assembly-using-cpf1

Research

JoVE Journal

Genetics

Genetik

Petrol kirliliğinin iyileştirilmesi için bakteriyel sistemini düzenleyen sürdürülebilir bir otomatik standart değiştirilebilir DNA parçalarının (BioBricks) kullanılarak tasarlanmıştır. Bir...

Sulu Ortamlarda Hidrokarbon Dönüşüm Enable A Toolkit

Homolog rekombinasyon teknikleri büyük ölçüde...

Homolog rekombinasyon Oluşumlar Recombineering<em&gt; Drosophila</em

Özel plazmitlerin sentezi emek ve zaman alıcıdır. Bu protokol, özel DNA klonlama prosedürünün işini ve süresini azaltmak için Gibson montaj klonlamasının kullanımını açıklar. Açıklanan protokol ayrıca, geleneksel kes ve yapıştır DNA klonlamasına benzer maliyetle memeli ekspresyonu için güvenilir etiketli protein yapıları üretir.

Plazmid vektörler oluşturulması Gibson tertibatı kullanılarak insan uzama faktör-1α bir promotörün regülasyonu altında FLAG-etiketli Proteinlerinin İfade

Burada, sinomi DNA sekanslarına restriksiyon enzim sahalarının yerleştirilmesi ve fonksiyonel plazmid geri kazanımına dayanan bir protokol olan plazmit geri kazanım ve restriksiyon enzim yeri ekleme (CAPRRESI) ile kinera montajını sunuyoruz. Bu protokol protein kodlayan genlerin eritilmesi için hızlı ve düşük maliyetli bir yöntemdir.

CAPRRESI: Plazmid Geri Kazanım ve Kısıtlama Enzim Yerinin Eklenmesi ile Chimera Meclisi

Genlerin ve onların düzenleyici elemanlarının arasındaki fiziksel etkileşimleri tanımlaması zordur ama kromozom conformation yakalama yöntemleri tarafından kolaylaştırdı. Bu değişiklik 4C-seq protokolü için PCR önyargı yanında en aza indirgemek PCR şablonları aşırı amplifikasyon azaltır ve bir ek Restriksiyon enzimi Özet adım dahil ederek okur mappability en üst düzeye çıkarır.

Gen düzenleyici dizileri dairesel kromozom Conformation yeni nesil sıralama kullanarak yüksek üretilen iş tanımlaması yakalama (4C-seq)

Biz tasarım, simülasyon, ıslak-laboratuvar deneyleri ve analiz için 6 6 kafesleri reconfigurable bir DNA akordeon raf için detaylı iletişim kuralı tanımlamak.

Tasarım ve Reconfigurable DNA akordeon raf sentezi

Burada, dize derleme gRNA (STAgR), klonlama mevcut CRISPR/Cas9 yaklaşıyor kolayca gRNA vektörler multiplex için bir yöntem. STAgR basit, etkili ve özelleştirilebilir gRNA çoğullama yapar.

Dize birleştirme gRNA için özelleştirilebilir bir protokol klonlama (STAgR)

Bu makale T4 ligasyonu ve küçük dairesel DNA molekülleri tavlama, denaturing sayfa arıtma için detaylı bir protokolü sunar ve yerel sayfa analizi dairesel fayans, montaj ve AFM görüntüleme 1D ve 2D DNA nanoyapıların yanı sıra özel jel sonlu DNA nanoyapıların Elektroforez ve Santrifüjü arıtma.

İstikrarlı DNA motifleri, 1D ve 2D nanoyapıların küçük dairesel DNA molekülleri inşa

Burada, kromozom konformasyon yakalama (3C) tekniğinin lisans katılımı ve öğrenimine vurgu yaparak ayrıntılı olarak bir adaptasyonunu sunuyoruz.

3C'lerle A Almak: Lisans Öğrencileri için Kromozom Konformasyon Yakalama

Bu makale, Modüler Klonlamanın (MoClo) polisistronik operonların klonlanması için nasıl uyarlanabileceğini gösteren adım adım bir protokol sunmaktadır.

In-Cloning araç setini kullanarak Modüler Klonlama (MoClo) ile Polisistronik Operonların Standartlaştırılmış Modüler Montajı

DNA parçalarının PCR amplifikasyonuna gerek kalmadan ilgilenilen DNA parçalarının vektörler arasında transferine izin veren yüksek verimli bir klonlama yöntemi olan CRISPR tabanlı mekik klonlama (CRISPRshuttle klonlama) için bir protokol açıklıyoruz.

CRISPR Tabanlı Mekik Klonlama: Yüksek Verimli Bir Klonlama Yöntemi

Öğrenin, Cpf1 proteini ve C-Brick standardı kullanarak DNA parçalarını sentetik biyolojide diziden bağımsız ve yinelemeli olarak monte etme yöntemini. Karmaşık genetik devrelerin inşasını kolaylaştırır.

Cpf1'i Kullanarak C-Brick DNA Standart Montajı İçin Protokoller

Daha fazla video keşfet