Name: Yeni Bir Dünyadan Rekombinant Virüsün Kurtarılması ve Karakterizasyonu Zika Virüsü Bulaşıcı Klon (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Öğrenin, iki plazmidli cDNA klonundan bulaşıcı Zika virüsünü kurtarma yöntemini. Bu teknik, flavivirologide aşı stratejileri ve patogenez araştırmaları için uygulanabilir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Klon&#39;dan türeyen virüsün karakterize edilmesine yardım ettikleri için Kristen Bullard-Feibelman, Milena Veselinovic ve Claudia Rückert&#39;e teşekkür etmek istiyorlar. Bu çalışma, Ulusal Allerji ve Enfeksiyon Hastalıkları Enstitüsü (NIH) tarafından hibe AI114675 (BJG) ve AI067380 (GDE) altındaki hibelerden kısmen desteklenmiştir.

1. Enfeksiyoz klon plasmidlerinin transformasyonu ve geri kazanımı <ol><li> Bazı değişikliklerle birlikte ticari bir dönüştürme protokolü ( örn. , NEB 5 Dakikada Dönüştürme Protokolü) kullanarak her iki plazmayı da (ayrı ayrı) transforme edin. Her iki plazmid ampisilin direncini kodlayan bir gen içerdiğinden, seçim için ampisilin veya karbenisilin kullanın. Karbenisilin daha kararlı olduğu için tercih edilir. <ol><li> -80 ° C derin dondurucudan hücreleri çıkarın (Malzeme Tablosuna bakın) ve buz üzerinde 5-10 dakika eritin. 37 ° C&#39;de, lösojen broy (LB) (10 g / L NaCl ve 25 μg / mL karbenisilin içeren; LB-karben) plakaları ve katabolit baskılanmış suyu (antibiyotik içermeyen SOC) yerleştirin. </li><li> 50 μL yetkili hücre içeren bir tüp içine 1 μL plazmid DNA&#39;sında 100 pg - 10 ng ekleyin; Tüpü hafifçe oynatarak karıştırın. </li><li> Tüpleri 5 dakika boyunca buzda inkübe edin. </li><li> Isı şok tüpleri 42 ° C&#39;de 30 saniyeBir su banyosunda. Isı şokunu takiben hemen buza 2 dakika dönün. </li><li> Her tüpe oda sıcaklığında SOC&#39;yi 950 μL pipetleyin ve pipetleme ile karıştırın. Bakteri karışımının 100 μL&#39;sini bir LB-carb plakasına yayın ve gece boyunca 37 ° C&#39;de (kabaca 12-14 saat) inkübe edin. </li></ol></li><li> 12-14 saat inkübasyondan sonra plakaları 37 ° C inkübatörden çıkarın. Kolonilerin büyümeye devam etmesini sağlamak için plakları oda sıcaklığında koyu renkli bir çekmeceye koyun (kabaca 8-9 saat). </li><li> 5 mL Terrific broth (TB, carbamycillin içeren 25 μg / mL carbenicillin içeren) kullanarak, bakteriyel bir çalkalayıcıda (kabaca 14-16 saat) 30 ° C&#39;de her plazmid için 5-10 küçük koloni oluşturun. NOT: Küçük koloniler plazmitin bozulmamış olduğunun bir göstergesidir; Delesyonlar, düzenlenmeler veya mutasyonlar içeren (burada instabilite olayları olarak da adlandırılan) plazmitlere sahip koloniler daha hızlı büyür ve böylece daha büyük olurlar. Dolayısıyla, plakadaki en küçük kolonileri seçmeye çalışmalı, özellikle de hayırT mevcut en büyük kolonileri seçmek. Tamamlanması için bazı orta boy koloniler de seçilebilir. Kullanılan düşük sıcaklık, hücrelerin aşırı büyümek olasılığını azaltır (OD 600 , 0.6-0.8&#39;den büyük). Çoğu araştırmacı, bir gecede büyüme gerçekleştirdiğinden, daha fazla kontrol ve aşırı büyüme ihtimalini düşürür. </li><li> Sıvı kültürleri bulanıklık açısından kontrol edin (kabaca OD 600 , 0.6-0.8). Herhangi bir bulanık boruyu 4 ° C&#39;ye yerleştirin ve diğer tüplerin daha uzun süre büyüyerek bulanık hale gelmesine izin verin. NOT: Plazmid instabilite olayları oluşabileceği için, bakterileri OD 600 değerlerine göre daha fazla büyütmeyin. </li><li> Plazmid DNA&#39;yı, ticari bir plasmid miniprep kiti ile bakterilerden ayırabilirsiniz (Malzeme Tablosuna bakınız). 15 μL önceden ısıtılmış (bir ısıtma bloğunda 70 ° C&#39;ye kadar) elüsyon tamponu içinde elute edin. Seyreltme tamponunun, santrifüje tabi tutulmadan önce 5 dakika sütun üzerinde inkübe edilmesine izin verin. NOT: Bu başlangıç ​​kültüründen en az 1 mL 4 ° C&#39;de saklanmalıdır.Bir sonraki adımda daha fazla kullanabilirsiniz. </li><li> Plazmid instabilite olaylarının kültür esnasında oluşup oluşmadığını değerlendirmek için geri kazanılmış plazmidlerin 10 uL&#39;ini sindirin. NOT: SalI / NheI ile p2&#39;yi ve BamHI / Hindlll ile p2&#39;yi 37 ° C&#39;de 1 saat boyunca özümleyin. Jel elektroforeziyle sindirim sonrasında doğru bantların varlığını teyit edin ( Şekil 2a ) ve 2. adıma geçin. Yuvarlanan daire amplifikasyonu (RCA) ile plazmid DNA hazırlarken, bazı miniprep eluatın bir şablon görevi için rezerve edin. </li></ol> 2. Bağlama için Yeterli Plazmid DNA&#39;nın Hazırlanması NOT: Bağlama ve sonraki elektroporasyon, maxiprep veya RCA vasıtasıyla üretilmesi gereken yeterli miktarda plazmid DNA&#39;sı gerektirir. Maxiprep, geleneksel olarak kullanılan bir yaklaşım olsa da, RCA, bakterilere ihtiyaç duymamakta ve dolayısıyla istikrarsızlık olaylarına neden olabilecek plazmid kaynaklı toksisite potansiyelini ortadan kaldırmaktadır. <ol><li><stRong&gt; Aşağıdaki maxiprep prosedürünü uygulayın. <ol><li> Önceki bölümde doğru kısıtlama enzimi sindirim modelini gösteren her bir plazmid için 1 L TB-Carb (25 ug / mL karbenisilin) ​​et suyuna 500 mcL marş kültürü ilave edin ve gece boyunca 30 ° C&#39;de çalkalayın (kabaca 14-16 saat , Kabaca OD 600 0.6-0.8). Not: kültürü, bu OD 600 değeri üzerinde büyümesine izin vermeyin. Bu, plasmidler içindeki potansiyel olarak istikrarsızlık olaylarıyla sonuçlanır. </li><li> Bakterileri hasat edin ve üreticinin protokolüne göre maxipreps yapın (Bkz. Malzeme Tablosu). </li></ol></li><li> Adım 1.6&#39;dan kaydedilen miniprep&#39;i kullanarak, RCA yordamı için aşağıdakileri yapın. <ol><li> 1 mcL plazmid DNA&#39;sını 50 uL numune tamponu içeren bir tüp içine aktarın. </li><li> Numuneyi 95 ° C&#39;de 3 dakika boyunca ısıyla denature edin ve sonra kullanıma hazır olana kadar 4 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> Ticari amplifikasyonu hazırlayınPremiks (Bkz. Malzeme Tablosu ). Buz üzerinde ayarlanmış bir tüp içinde 50 uL reaksiyon tamponu ile 2 uL enzim karışımı birleştirin. NOT: Amplifikasyon ön karışımı, kullanıma hazır oluncaya kadar buzda tutulmalıdır. Gerekli sayıda amplifikasyon reaksiyonu için yeterli tepkin maddeleri birleştirerek bir ana karışım hazırlamak uygundur. Kullanılmayan herhangi bir ön karışım atılmalıdır. </li><li> Düzeltilmiş numuneye 50 μL hazırlanmış amplifikasyon ön karışımı aktarın. </li><li> Reaksiyon tüplerini 30 ° C&#39;de 18 saat inkübe edin. </li><li> Ø29 DNA polimerazını devre dışı bırakmak için tüpleri 65 ° C&#39;de 10 dakika inkübe edin. </li><li> Reaksiyon tüplerini kullanıma hazır olana kadar 4 ° C veya -20 ° C&#39;de saklayın. NOT: Bu noktada, her iki yöntemle hazırlanan plazmid DNA&#39;sı (260 nm&#39;de emilim kullanılarak) nicelendirilmelidir ve hazırlama sırasında herhangi bir istikrarsızlık olayı (silme ve yeniden düzenlemeler) oluştuğunu doğrulamak için ZIKV genomu Sanger dizilimi olmalıdır. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Astar Adı </td><td> Sıra (5 &#39;- 3&#39;) </td></tr><tr><td> ZIKV PRVABC59 1For. </td><td> AGTTGTTGATCTGTGTGAATCAGAC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 632For. </td><td> GCCCTATGCTGGATGAGG </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 692Rev. </td><td> GGTTCCGTACACAACCCAAGTTG </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 1313Rev. </td><td> CTCCCTTTGCCAAAAAGTCCACA </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 1201For. </td><td> CCAACACAAGGTGAAGCCTAC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunan 1663For. </td><td> GCAGACACCGGAACTCCACACT </td></tr><tr><td> ZIKV 2008&#39;de Korundu. </td><td> CAGATGGCGGTGGACATGC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 2350Rev. </td><td> GTGAGAACCAGGACATTCCTCC </td></tr><tr><td> ZIKV Korundu 2605For. </td><td> TACAAGTACCATCCTGACTCCC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunan 3499Rev. </td><td>GCCTTATCTCCATTCCATACCA </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 3961Rev. </td><td> TTGCCAACCAGGCCAAAG </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 4132For. </td><td> CATTTGTCATGGCCCTGG </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 4561Rev. </td><td> CTATTGGGTTCATGCCACAGAT </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 4665For. </td><td> GACCACAGATGGAGTGTACAGAGT </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 5189Rev. </td><td> AAGACAGTTAGCTGCTTCTTCTTCAG </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 5219For. </td><td> GAGAGTTCTTCCTGAAATAGTCCGTGA </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 6086Rev. </td><td> CTTGCTTCAAGCCAGTGTGC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 6119For. </td><td> GCCTCATAGCCTCGCTCTATCG </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 6721Rev. </td><td> CCATTCCAAAGCCCATCTTCCC </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 6769For. </td><td> CCAGCCAGAATTGCATGTGTCC </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 7209Rev. </td><td> ATCATTAGCAGCGGGACTCCAA </td></tr><tr><td> ZIKV Korunan 7343For. </td><td> GTTGTGGATGGAATAGTGGT </td></tr><tr><td> ZIKV Korunan 8243For. </td><td> TGCCCATACACCAGCACTATGA </td></tr><tr><td> ZIKV PRVABC59 8893Rev. </td><td> TGCATTGCTACGAACCTTGTTG </td></tr><tr><td> ZIKV korundu 9133For. </td><td> AGCCCTTGGATTCTTGAACGAGGA </td></tr><tr><td> ZIKV PRVABC59 9673Rev. </td><td> AACGCAATCATCTCCACTGACT </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 9686For. </td><td> GATGATAGGTTTGCACATGCC </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 10321Rev. </td><td> GTCCATGTACTTTTCTTCATCACCTAT </td></tr><tr><td> ZIKV Korunmuş 10455For. </td><td> CAGGAGAAGCTGGGAAACC </td></tr><tr><td> ZIKV Conserved 10621Rev. </td><td> CAGATTGAAGGGTGGGGAAGGTC </td></tr></tbody></table> Tablo 1: cDNA klonlarının dizilimi için primerler. Plazmidler listelenen primerler ile sıralanabilir. &quot;Korunan&quot; olarak işaretlenmiş astarlarZIKV&#39;in tüm genotiplerini sıralama / yükseltme olasılıklarının yüksek olduğunu belirtin. &quot;PRVABC59&quot; olarak etiketlenen primerler bu suşa özeldir ancak diğer Asya genotip türleri ve muhtemelen diğer genotipler için de çalışabilir. 3. In Vitro Transkripsiyon RNA Hazırlanması <ol><li> Maxiprep veya RCA hazırlanmış DNA&#39;nın sindirim reaksiyonunu ayarlayın. <ol><li> P1 sindirimi için 10 uL 10x reaksiyon tamponu, 3 uL ApaLI, 3 μL BamHI-HF, 3 uL rSAP veya CIP ve 3,3 μg p1 DNA karıştırın. 100 uL&#39;ye ddH20 ilave edin. </li><li> P2 sindirimi için, 10 uL 10x reaksiyon tamponu, 3 uL ApaLI, 3 uL EcoRI-HF ve 13.3 μg p2 DNA&#39;yı karıştırın. 100 uL&#39;ye ddH20 ilave edin. </li><li> 1-2 saat boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> Ticari bir jel ve PCR temizleme seti kullanarak arındırın (Malzeme Tablosuna bakın). Isıtma bloğunda 70 ° C&#39;ye önceden ısıtılmış 30 uL elüsyon tamponu içinde elute edin (inkübe edinSütun 5 dak.). NOT: Daha sonra bir jel üzerinde çalışmak için 1 uL tutun. </li></ol></li><li> Ligasyon reaksiyonu hazırlayın. <ol><li> 10 uL 10x T4 DNA ligasyon reaksiyon tamponu, 3 μL T4 DNA ligaz (400 U / μL), saflaştırılmış p1 29 uL ve 29 μL saflaştırılmış p2&#39;yi birleştirin. 100 uL&#39;ye ddH20 ilave edin. </li><li> Oda sıcaklığında 2 saat veya gece boyunca 16 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> Ticari bir jel ve PCR temizleme seti kullanarak arındırın (Malzeme Tablosuna bakın). Isıtma bloğunda 70 ° C&#39;ye önceden ısıtılmış 10 uL elüsyon tamponunda elute edin (eğrilmeden önce 5 dakika kuluçka sütunu). NOT: Daha sonra bir jel üzerinde çalışmak için 1 uL tutun. </li></ol></li><li> Sindirilmemiş plasmidleri, sindirilmiş plasmidleri ve bir agaroz jelinde bağlayın. Ligasyon ürününün, ligasyonun başarılı olduğunu gösteren tek başına sindirilmiş plazmitten daha yüksek bir moleküler ağırlık bandına (yaklaşık 11 kb) sahip olması gerekir ( Şekil 2b ).</li><li> T7 in vitro transkripsiyon reaksiyonu oluşturun. <ol><li> 10 uL 2x ARCA / NTP Mix, 2 μL T7 RNA polimeraz karışımı ve 8 μL saf ligasyon reaksiyonu ile 20 uL son bir hacim birleştirin. NOT: Karışıma dahil edilen ARCA, yalnızca doğru yönlendirmeyle birleştirilen bir kap analogudur. Standart kap analogları, transkriptlerin yalnızca ~% 50&#39;sinde doğru oryantasyonda bir başlık oluşturabilir. </li><li> 37 ° C&#39;de 4 saat inkübe edin. </li><li> Bir UV spektrofotometre yardımıyla RNA konsantrasyonunu ölçün. İsteğe bağlı olarak, RNA transkriptinin uzunluğunu teyit etmek için bir denatüre edici agaroz jeli çalıştırın. </li></ol></li></ol> 4. Elektroporasyon ile Bulaşıcı Virüs Kurtarma <ol><li> Elektroporasyondan önceki günlerde, kurtarılacak olan yapı başına 1 T182 şişesiVero hücresi (T150 ile T182 arasında kabul edilebilir; DMEM +% 10 Fetal sığır serumu (FBS) içinde yetiştirilir) hazırlayın. Sahte bir transfeksiyon kontrolü olarak 1 T182&#39;yi ekleyin. CeLl% 70-80 konfluende kullanılmalıdır. </li><li> Hücreler hazır olduğunda, 12 mL / DMEM reaksiyonu +% 15 FBS + 10 mM HEPES&#39;i 37 ° C&#39;ye kadar ısıtılan su banyosuna yerleştirin. </li><li> Standart bir protokol ile tripsinizasyon ile hücreleri ayırın ve tripsin inaktive etmek için% 10 FBS ile ortamda hücreleri kurtarmak; 4 ° C&#39;de 5 dakika 150 x g&#39;de santrifüj hücreleri. </li><li> 1 x fosfat tamponlu salin (PBS), hücreleri pelet hücreleri 150 xg&#39;de 5 dakika 4 ° C&#39;de yıkayın. Bu adımı toplam üç yıkama için iki kere tekrarlayın. </li><li> Örneklerin sayısı başına 200 mcL RPMI 1640 + 10 mM HEPES (steril) hücreleri tekrar süspansiyon haline getirin. Steril bir tüpe 200 uL hücre süspansiyonu aktarın. Hücreler ~ 0.5 x 107 hücre / mL olmalıdır. </li><li> Adım 3.4&#39;te üretilen 20 μL su (sahte negatif kontrol) veya 20 μL RNA (tercihen 5-10 μg) hücrelerin her setine ekleyin. Tüpü hafifçe oynatarak karıştırın ve tüpün içeriğini 2 mm&#39;lik boşluk elektroporasyon küvetine aktarın. </li><li> Elektrarı ayarlaOporator 170 V LV, omega (direnç) 0 ve 950 μF&#39;de (kabaca 625 V / cm ve diğer makineler için 20 ms zaman sabiti). Mümkün olan en düşük mevcut ayara direnç ayarlayın, varsa 0 veya ∞. </li><li> Pulse bir kez ve hemen adım 4.2&#39;de ısıtılmış DMEM +% 15 FBS + 10 mM HEPES 600 mcL ekleyin. Tüm hücreleri çıkarmak için küvetin içine iyice yıkayın. 10 mL önceden ısıtılmış ortam içeren bir T75 doku kültürü şişesine hücreler ekleyin. Küvette bulunan damlalık kullanarak ilave ortamı küvetlerden çıkarın. Steriliyeti korumaya dikkat edin. </li><li> Ortamı ve hücreleri karıştırmak için 37 ° C inkübatöre yerleştirilen Swirl şişesi. </li><li> Ertesi gün hücre canlılığı olup olmadığını kontrol edin ve her gün bunu% 50-75 hücre ölümüne kadar bekleyin. Alınan elektroporasyonlu kontrol ile karşılaştırıldığında hücre ölümü gözlemlenir. NOT: Vero hücrelerinde ZIKV sitopatik etki (CPE) oldukça belirgindir ve kültür ortamında yüzen hücreleri parçalayıp yuvarlatır. SahibizHasat için ideal olarak 8-10 gün aralığı gözlemledi. </li><li> Konik bir tüp içinde süpernatantı hasat edin ve 4 ° C&#39;de 10 dakika süreyle&gt; 3000 xg&#39;deki hücre döküntülerini gidermek için santrifüjleyin. </li><li> Berraklaştırılmış süpernatanı yeni bir tüple ve% 20 FBS son konsantrasyonuyla takviye edin (% 100 stoktan). Ayrıca, dondurulmuş haldeyken (1 M steril bir stoktan) virüs enfeksiyonunu korumak için bir tamponlayıcı madde olarak 10 mM&#39;lik nihai konsantrasyonda steril HEPES ekleyin. </li><li> Vorteks ve alikot ile vidalı kap şişelerine karıştırın. Gelecekteki kullanım için -80 ° C&#39;de saklayın. </li></ol> 5. Kurtarılan Virüsün Titrasyonu <ol><li> Titrasyonun yapılmasından bir gün önce Vero hücrelerinin uygun sayıdaki 6- veya 12 oyuklu plakalarını tohumlayın. </li><li> Virüsü dondurucudan çıkarın ve tüplerde veya 96 oyuklu plakalarda DMEM +% 2 FBS içinde seri 10 kat dilüsyonlar yapın. NOT: Kurtarılan klonlardan beklenen titre 1 x 10 6 ile 5 x 10 7 PFU / mL arasındadır. </li><li> 200 o ekleSırasıyla bir 12 veya 6 oyuklu plakanın bir çukuruna çiftli olarak her bir seyreltmenin 400 uL&#39;lik bir miktarı. </li><li> 37 ° C inkübatörde plakalar koyun ve her 15 dakikada bir, ~ 1-1.5 saatlik adsorpsiyon periyodu boyunca kaya yerleştirin. </li><li> Viral inokülumu çıkarın ve her göze 1 mL (12-kuyucuklu) veya 2 mL (6-kuyucuklu) DMEM-Tragacanth kaplama ekleyin. NOT: Buraya agaroz, agar, metilselüloz veya diğer kaplama malzemeleri kullanmak mümkündür. </li><li> 5 gün boyunca 37 ° C inkübatöre hücreleri inkübe edin. Uygun plak oluşumunun süresi, kullanılan kaplamaya bağlı olarak değişir. </li><li> Hücreleri düzeltmek için, plakaları inkübatörden çıkarın ve dezenfektana hafifçe dökün. </li><li> Kaplamak ve karıştırmak için girdap yapmak için her oyuğa yeterli% 20 etanol /% 0.1 kristal mor (CV) ekleyin. NOT: Birçok başka fiksatif var ve burada kullanılabilir. Buna ek olarak, bir agaroz veya agar kaplaması kullanılıyorsa, sabitlemesiz plakları görselleştirmek için nötr kırmızı ile birlikte ikinci bir kaplama kullanılabilir. % 20 etanol var olduğu gösterildiÖnceki çalışmalarda zarflı virüslerin inaktivasyonunda etkili; Zarflanmamış virüsler için bu miktarı kullanmayın, aksi halde devre dışı bırakılmaz 19 . </li><li> Plakaları oda sıcaklığında 30-60 dakika inkübe edin (sınıf II biyogüvenlik kabininde); CV&#39;yi atın (yerel yönetmeliklere göre) ve musluk suyuyla yıkayın. </li><li> Plakaların kurumasına izin verin ve plakları manuel olarak sayın. NOT: Referans 20, plak tahlilleri yapmak için ek bir referans olarak kullanılabilir. </li></ol>

<ol><li>Kindhauser, M. K., Allen, T., Frank, V., Santhana, R. S., Dye, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika%3A+the+origin+and+spread+of+a+mosquito-borne+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+World+Health+Organ%22%5BJournal%5D)">Zika: the origin and spread of a mosquito-borne virus.</a> Bull World Health Organ. 94 (9), 675C-686C (2016).</li>
<li>Oehler, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+complicated+by+Guillain-Barre+syndrome--case+report%2C+French+Polynesia%2C+December+2013%5BTitle%5D)+AND+%22Euro+Surveill%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection complicated by Guillain-Barre syndrome--case report, French Polynesia, December 2013.</a> Euro Surveill. 19 (9), (2014).</li>
<li>Li, D., Aaskov, J., Lott, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+cryptic+prokaryotic+promoter+within+the+cDNA+encoding+the+5%27+end+of+dengue+virus+RNA+genome%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Identification of a cryptic prokaryotic promoter within the cDNA encoding the 5' end of dengue virus RNA genome.</a> PLoS One. 6 (3), e18197(2011).</li>
<li>Pu, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+approach+to+propagate+flavivirus+infectious+cDNA+clones+in+bacteria+by+introducing+tandem+repeat+sequences+upstream+of+virus+genome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Virol%22%5BJournal%5D)">A novel approach to propagate flavivirus infectious cDNA clones in bacteria by introducing tandem repeat sequences upstream of virus genome.</a> J Gen Virol. 95 (Pt 7), 1493-1503 (2014).</li>
<li>Pu, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+propagation+of+flavivirus+infectious+cDNAs+by+a+novel+method+to+reduce+the+cryptic+bacterial+promoter+activity+of+virus+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Successful propagation of flavivirus infectious cDNAs by a novel method to reduce the cryptic bacterial promoter activity of virus genomes.</a> J Virol. 85 (6), 2927-2941 (2011).</li>
<li>Rice, C. M., Grakoui, A., Galler, R., Chambers, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+of+infectious+yellow+fever+RNA+from+full-length+cDNA+templates+produced+by+in+vitro+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22New+Biol%22%5BJournal%5D)">Transcription of infectious yellow fever RNA from full-length cDNA templates produced by in vitro ligation.</a> New Biol. 1 (3), 285-296 (1989).</li>
<li>Yun, S. I., Kim, S. Y., Rice, C. M., Lee, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+application+of+a+reverse+genetics+system+for+Japanese+encephalitis+virus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Development and application of a reverse genetics system for Japanese encephalitis virus.</a> J Virol. 77 (11), 6450-6465 (2003).</li>
<li>Gualano, R. C., Pryor, M. J., Cauchi, M. R., Wright, P. J., Davidson, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+major+determinant+of+mouse+neurovirulence+of+dengue+virus+type+2+using+stably+cloned+genomic-length+cDNA%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Virol%22%5BJournal%5D)">Identification of a major determinant of mouse neurovirulence of dengue virus type 2 using stably cloned genomic-length cDNA.</a> J Gen Virol. 79 (Pt 3), 437-446 (1998).</li>
<li>Johansen, I. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intron+insertion+facilitates+amplification+of+cloned+virus+cDNA+in+Escherichia+coli+while+biological+activity+is+reestablished+after+transcription+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Intron insertion facilitates amplification of cloned virus cDNA in Escherichia coli while biological activity is reestablished after transcription in vivo.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (22), 12400-12405 (1996).</li>
<li>Shan, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Infectious+cDNA+Clone+of+Zika+Virus+to+Study+Viral+Virulence%2C+Mosquito+Transmission%2C+and+Antiviral+Inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">An Infectious cDNA Clone of Zika Virus to Study Viral Virulence, Mosquito Transmission, and Antiviral Inhibitors.</a> Cell Host Microbe. 19 (6), 891-900 (2016).</li>
<li>Schwarz, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+of+the+1947+Zika+Virus+Prototype+Strain+with+a+Cytomegalovirus+Promoter-Driven+cDNA+Clone%5BTitle%5D)+AND+%22mSphere%22%5BJournal%5D)">Rescue of the 1947 Zika Virus Prototype Strain with a Cytomegalovirus Promoter-Driven cDNA Clone.</a> mSphere. 1 (5), (2016).</li>
<li>Tsetsarkin, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Full-Length+Infectious+cDNA+Clone+of+Zika+Virus+from+the+2015+Epidemic+in+Brazil+as+a+Genetic+Platform+for+Studies+of+Virus-Host+Interactions+and+Vaccine+Development%5BTitle%5D)+AND+%22MBio%22%5BJournal%5D)">A Full-Length Infectious cDNA Clone of Zika Virus from the 2015 Epidemic in Brazil as a Genetic Platform for Studies of Virus-Host Interactions and Vaccine Development.</a> MBio. 7 (4), (2016).</li>
<li>Gadea, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+robust+method+for+the+rapid+generation+of+recombinant+Zika+virus+expressing+the+GFP+reporter+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">A robust method for the rapid generation of recombinant Zika virus expressing the GFP reporter gene.</a> Virology. 497, 157-162 (2016).</li>
<li>Kapoor, M., Zhang, L., Mohan, P. M., Padmanabhan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+characterization+of+an+infectious+dengue+virus+type-2+RNA+genome+%28New+Guinea+C+strain%29%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Synthesis and characterization of an infectious dengue virus type-2 RNA genome (New Guinea C strain).</a> Gene. 162 (2), 175-180 (1995).</li>
<li>Messer, W. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+characterization+of+a+reverse+genetic+system+for+studying+dengue+virus+serotype+3+strain+variation+and+neutralization%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Negl+Trop+Dis%22%5BJournal%5D)">Development and characterization of a reverse genetic system for studying dengue virus serotype 3 strain variation and neutralization.</a> PLoS Negl Trop Dis. 6 (2), e1486(2012).</li>
<li>Kinney, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Avian+virulence+and+thermostable+replication+of+the+North+American+strain+of+West+Nile+virus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Virol%22%5BJournal%5D)">Avian virulence and thermostable replication of the North American strain of West Nile virus.</a> J Gen Virol. 87 (Pt 12), 3611-3622 (2006).</li>
<li>Chang, A. C., Cohen, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+and+characterization+of+amplifiable+multicopy+DNA+cloning+vehicles+derived+from+the+P15A+cryptic+miniplasmid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Construction and characterization of amplifiable multicopy DNA cloning vehicles derived from the P15A cryptic miniplasmid.</a> J Bacteriol. 134 (3), 1141-1156 (1978).</li>
<li>Weger-Lucarelli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+Characterization+of+Recombinant+Virus+Generated+from+a+New+World+Zika+Virus+Infectious+Clone%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Development and Characterization of Recombinant Virus Generated from a New World Zika Virus Infectious Clone.</a> J Virol. 91 (1), (2017).</li>
<li>Roberts, P. L., Lloyd, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virus+inactivation+by+protein+denaturants+used+in+affinity+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22Biologicals%22%5BJournal%5D)">Virus inactivation by protein denaturants used in affinity chromatography.</a> Biologicals. 35 (4), 343-347 (2007).</li>
<li>Baer, A., Kehn-Hall, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+concentration+determination+through+plaque+assays%3A+using+traditional+and+novel+overlay+systems%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Viral concentration determination through plaque assays: using traditional and novel overlay systems.</a> J Vis Exp. (93), e52065(2014).</li>
<li>Weger-Lucarelli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+Characterization+of+Recombinant+Virus+Generated+from+a+New+World+Zika+Virus+Infectious+Clone%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Development and Characterization of Recombinant Virus Generated from a New World Zika Virus Infectious Clone.</a> J Virol. , (2016).</li>
<li>Grubaugh, N. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Drift+during+Systemic+Arbovirus+Infection+of+Mosquito+Vectors+Leads+to+Decreased+Relative+Fitness+during+Host+Switching%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Genetic Drift during Systemic Arbovirus Infection of Mosquito Vectors Leads to Decreased Relative Fitness during Host Switching.</a> Cell Host Microbe. 19 (4), 481-492 (2016).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Burada, ZIKV için iki parçalı bir enfeksiyöz cDNA klon sisteminin geri kazanılması için bir yöntem açıklıyoruz. ZIKV için daha önce tarif edilen klonlar, ya zayıflamadan muzdariptir ya da intronların eklenmesini gerektirir, bu da plazmitleri daha büyük hale getirir ve böcek hücrelerinde kurtarmayı önler. Enfeksiyöz virüs, memeli veya böcek hücrelerinde iki plazmit klon sistemi kullanılarak geri kazanılabilir (veriler gösterilmemiştir). Ek olarak, bu sistemden kurtarılan virüs, çeşitli hücre hatlarında, bağışıklığı baskıl...

Zika virüsü (ZIKV; Aile Flaviviridae : Genus Flavivirus ), 2013-14 yılları arasında Brezilya&#39;ya gelen sivrisinek taşıyan bir flavivirüs olup, daha sonra Amerika Birleşik Devletleri&#39;nde yaygınlaşan ateşli bir hastalık patlamasıyla ilişkilendirilmiştir 1 . Buna ek olarak, ZIKV, yetişkinlerde Guillain-Barré sendromu ve fetüsler ve yenidoğanlarda mikrocefali gibi ağır hastalık sonuçlarıyla bağlantılıdır2. Batı yarımkürede hızla yayılmadan önce ZIKV hakkında pek az şey biliniyordu. Bu, moleküler araçların eksikliğini içeriyordu, bu yüzden mekanistik araştırmayı engelledi. Bulaşıcı cDNA klonları gibi virüsler için moleküler araçlar aşı ve antiviral terapötik gelişmeyi kolaylaştırır ve farklı viral patogenez, bağışıklık yanıtı ve viral evrim ile ilgili viral genetik faktörlerin değerlendirilmesine izin verir. Flavivirüs bulaşıcı klonların bakterilerde cr nedeniyle oldukça kararsız olduğu bilinmektedirGenomlarında bulunan yptik prokaryotik hızlandırıcılar 3 . Bu sorunu hafifletmek için çeşitli yaklaşımlar kullanılmıştır; Virütik dizilerin 4 üst akışında tandem tekrarların yerleştirilmesi, varsayılan prokaryotik promoter dizilerinin 5 mutasyonu, genomun birden çok plazmid 6&#39;ya bölünmesi, düşük kopya sayı vektörleri (bakteri yapay kromozomlar dahil) 7,8 ve viral genomda intronların sokulması da dahil olmak üzere 9 . ZIKV için modifikasyonsuz bir tam uzunluklu sistem tanımlanmıştır; Bununla birlikte, bu klonun hücre kültüründe ve farelerde zayıfladığı görülmüştür. Diğer gruplar ZIKV genomuna intronlar tasarladılar ve in vitro memeliler hücrelerinde enfeksiyöz virüsün üretilmesi için eklenebilen bakterilerdeki istikrarsız dizilerin bozulmasına izin verdi 11, 12 . Ek olarak, ZIKV 13&#39;ün prototip MR766 suşunu kurtarmak için İnfeksiyöz-Subgenomik-Amplikon başlıklı bir PCR tabanlı sistem başarıyla kullanılmıştır. Burada açıklanan yaklaşım, yabancı sekanslara ihtiyaç duymamakta, daha önce sarı humma 6 , dang 14 , 15 ve Batı Nil virüsleri 16 ile başarıyla kullanılan çok sayıda plazmid kullanarak yüksek instabilite bölgesinde genomu bozmaktadır. Dahası, viral genomik uçtaki hepatit D ribozim dizisinin eklenmesi, bir doğrusallaştırma bölgesi eklenmesine gerek kalmadan otantik bir 3 &#39;ucunun oluşturulmasını kolaylaştırır. Buna ek olarak, her iki plazmid, herhangi bir artık toksisite 17 azaltmak için düşük kopya sayısı vektör (pACYC177, hücre başına ~ 15 kopya) inşa edilmiştir. Geri kazanılan virüs,Hem anne hem de böceklerden türeyen çeşitli hücre tiplerini içeren 8 hücre hattındaki in vitro büyüme eğrilerinde ebeveyn virüs bulaştırdı ve farelerde aynı patojenik profilleri, sivrisineklerde enfeksiyon, yayılım ve iletim oranlarını sergiledi. Burada, bulaşıcı klon plasmidlerin büyümesini , in vitro olarak tam uzunlukta viral RNA (viral genom) üretmek ve hücre kültüründe bulaşıcı virüsün nasıl toplanacağını açıklayan bir protokol açıklanmaktadır. İlk olarak bakterilerdeki plazmidlerin çoğalmasını veya yuvarlanan daire amplifikasyonunu (RCA) kullanarak bakteri içermeyen amplifikasyonunu anlatacağız. Sonra, iki plazmitin nasıl sindirildiğini ve ardından tam uzunlukta virüs üretmek için birlikte bağlandığını gösteriyoruz. Son olarak, transkripsiyon RNA üretimini ve daha sonra Vero hücrelerine elektroporasyonunu, ardından geri kazanılan virüs titrasyonunu tarif ediyoruz ( Şekil 1 ). Açıklanan yaklaşım hızlıdır,Enfeksiyonlu virüs stoklarının 1-2 hafta içinde toparlanması.

<table><tbody><tr><td>NEB Kararlı YetkinE. coli</td><td>New England BioLabs</td><td>C3040H</td><td></td></tr><tr><td>Karbenisilin, Disodyum Tuzu</td><td>çeşitli</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zyppy Plazmid Miniprep Kiti</td><td>Zymo Research</td><td>D4036</td><td></td></tr><tr><td>ZymoPURE Plazmid Maxiprep Kiti</td><td>Zymo Research</td><td>D4202</td><td></td></tr><tr><td>SalI-HF</td><td>New England BioLabs</td><td>R3138S</td><td>20.000 birim / ml</td></tr><tr><td>NheI-HF</td><td>New England BioLabs</td><td>R3131S</td><td>20.000 birim/ml</td></tr><tr><td>ApaLI</td><td>New England BioLabs</td><td>R0507S</td><td>10.000 birim/ml</td></tr><tr><td>EcoRI-HF</td><td>New England BioLabs</td><td>R3101S</td><td>20.000 birim/ml</td></tr><tr><td>BamHI-HF</td><td>New England BioLabs</td><td>R3136S</td><td>20.000 birim/ml</td></tr><tr><td>HindIII-HF</td><td>New England BioLabs</td><td>R3104S</td><td>20.000 birim/ml</td></tr><tr><td>illustra TempliPhi 100 Amplifikasyon Kiti</td><td>GE Healthcare Yaşam Bilimleri</td><td>25640010</td><td></td></tr><tr><td>NucleoSpin Jel ve PCR Temizleme</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740609.5</td><td></td></tr><tr><td>Karides Alkalin Fosfataz (rSAP)</td><td>New England BioLabs</td><td>M0371S</td><td>1.000 birim/ml</td></tr><tr><td>Alkalin Fosfataz, Buzağı Bağırsağı (CIP)</td><td>New England BioLabs</td><td>M0290S</td><td>10.000 birim/ml</td></tr><tr><td>T4 DNA Ligase</td><td>New England BioLabs</td><td>M0202S</td><td>400.000 birim / mL</td></tr><tr><td>HiScribe T7 ARCA mRNA Kiti</td><td>New England BioLabs</td><td>E2065S</td><td></td></tr><tr><td>Vero hücreleri</td><td>ATCC</td><td>CCL-81</td><td></td></tr><tr><td>ECM 630 Yüksek Verimli Elektroporasyon Sistemi</td><td>BTX</td><td>45-0423</td><td>Diğer makineler kabul edilebilir.</td></tr><tr><td>Agarlı LB Suyu (Miller)</td><td>Sigma</td><td>L3147</td><td>Ev yapımı da olabilir.</td></tr><tr><td>Müthiş Et</td><td>Suyu Sigma</td><td>T0918</td><td>Ev yapımı da olabilir.</td></tr><tr><td>Petri Kabı</td><td>Celltreat</td><td>229693</td><td></td></tr><tr><td>Kültür Tüpleri</td><td>VWR International</td><td>60818-576</td><td></td></tr><tr><td>T75 şişeleri</td><td>Celltreat</td><td>229340</td><td></td></tr><tr><td>T182 şişeleri</td><td>Celltreat</td><td>229350</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640, L-glutamin</td><td>Corning</td><td>10-040-CV</td><td></td></tr> <tr><td>ileL-glutamin ve 4.5 g/L glukoz ile DMEM</td><td>Corning</td><td>10-017-CV</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu (FBS)</td><td>Atlas Biologicals</td><td>FP-0500-A</td><td></td></tr><tr><td>Tragacanth Tozu</td><td>MP Bio</td><td>MP 104792</td><td></td></tr><tr><td>Kristal Menekşe</td><td>Amresco</td><td>0528-1006</td><td></td></tr><tr><td>Etanol Denatüre</td><td>VWR International</td><td>BDH1156-1LP</td><td></td></tr><tr><td>6 kuyulu plaka</td><td>Celltreat</td><td>229106</td><td></td></tr><tr><td>12 oyuklu plaka</td><td>Celltreat</td><td>229111</td><td></td></tr><tr><td>Sıralama Oligos</td><td>IDT</td><td>tablo 1'e</td><td></td>bakınız</tr><tr><td>Qubit 3.0</td><td>ThermoFisher</td><td>Qubit 3.0</td><td>diğer yöntemler kabul edilebilir.</td></tr><tr><td>Qubit dsDNA BR Test Kiti</td><td>ThermoFisher</td><td>Q32850</td><td>diğer yöntemler kabul edilebilir.</td></tr><tr><td>Qubit RNA HS Test Kiti</td><td>ThermoFisher</td><td>Q32852</td><td>diğer yöntemler kabul edilebilir.</td></tr><tr><td>Sınıf II Biyogüvenlik Kabini</td><td>Değişiklik Gösterir</td><td>N/A</td><td>Bu, canlı virüs çalışmaları için gereklidir.</td></tr></tbody></table>

yeni bir dünyadan rekombinant virüsün kurtarılması ve karakterizasyonu zika virüsü bulaşıcı klon

Rescue and Characterization of Recombinant Virus from a New World Zika Virus Infectious Clone

Enfeksiyöz cDNA klonları bir virüsün genetik manipülasyonuna izin verir, böylece aşılar üzerinde çalışma, patogenez, replikasyon, bulaşma ve viral evrimi kolaylaştırır. Burada Zika virüsü (ZIKV) için şu anda Amerika&#39;da patlayıcı bir salgına neden olan bulaşıcı bir klonun yapımını anlatıyoruz. Flavivirüs kaynaklı plazmidlerle sıkça görülen bakterilere toksisiteyi önlemek için genomu NS1 geninde ayıran ve mutasyonsuz başarıyla kurtarılamayan tam uzunluktaki yapılardan daha kararlı olan iki plazmid sistemi ürettik. İki parçaya katılmak için sindirim ve ligasyondan sonra, T7 RNA polimeraz ile in vitro transkripsiyon ile tam uzunluktaki viral RNA üretilebilir. Transkribe RNA&#39;nın hücrelere elektroporasyonundan sonra sırasıyla farelerde ve sivrisineklerde benzer in vitro büyüme kinetikleri ve in vivo virülans ve enfeksiyon fenotiplerini sergileyen virüs bulunmuştur.

Burada açıklanan protokol, bulaşıcı klon türevi Zika virüsünün iyileşmesine izin verir. İki plazmid bulaşıcı klon sisteminin manipülasyonu, son derece dengesiz olan tam uzunluktaki versiyonlara kıyasla (bakınız veriler gösterilmemiştir), özen gösterildiğinde açıktır. Sindirimden ve iki ayrı parçanın bağlanmasından sonra, T7 polimeraz ile in vitro transkripsiyon kullanılarak kapaklı RNA üretilir ve daha sonra Vero hücrelerine elektroporasyon yapılır ( Şekil 1...

Bu protokol, iki-plazmid bulaşıcı bir cDNA klonundan bulaşıcı Zika virüsünün iyileşmesini tanımlıyor.

Yeni Bir Dünyadan Rekombinant Virüsün Kurtarılması ve Karakterizasyonu Zika Virüsü Bulaşıcı Klon

Infectious cDNA clones allow for genetic manipulation of a virus, thus facilitating work on vaccines, pathogenesis, replication, transmission and viral ...

Bu prosedürün genel amacı, iki parçalı bir Zika virüsü Z-DNA klonundan enfeksiyöz virüs geri kazanmaktır. Bu yöntem; aşı stratejileri, patogenez, transmisyon ve virüs evrimi gibi flaviviyroloji alanındaki temel sorulara yanıt verebilir. Bu tekniğin temel avantajı, iki parçalı sistemin tam uzunluktaki yaklaşımlardan daha stabil olmasıdır.Bu yöntem Zika virüsü hakkında bilgi sağlayabilse de, plazmit instabilitesi nedeniyle klonlanması zor olduğu kanıtlanmış diğer viral sistemlere de uygulanabilir. Prosedürü, laboratuvarımdan doktora sonrası araştırmacı James Weger uygulamalı olarak gösterecek. Zika virüsü genomunu kodlayan P1 ve P2 plazmitlerinin her ikisi için sindirim reaksiyonlarını hazırlayarak başlayın. 3.3 µg P1'i, uygun bir fosfataz varlığında ApaL1 ve BamH1 High Fidelity ile 100 µL nihai hacimde sindirin.P2 için, 13.3 µg P2 DNA'sını 100 µL'lik son hacimde ApaL1 ve EcoR1 High Fidelity ile sindirin. Her iki reaksiyonu da 37 °C'de 1.2 saat boyunca inkübe edin. Sindirilen plazmitleri ticari bir jel ve PCR temizleme kiti kullanarak saflaştırdıktan sonra, kolona 70 °C'ye önceden ısıtılmış 30 µL elüsyon tamponu ekleyin ve beş dakika inkübe edin.Saflaştırılmış sindirilmiş plazmitler santrifüjle çöktürüldükten sonra; 29 µL saflaştırılmış P1 ve 29 µL saflaştırılmış P2'yi, T4 DNA ligasyon reaksiyon tamponu ve çift distile su içerisindeki T4 DNA ligaz ile toplam 100 µL hacme tamamlayarak ligasyon reaksiyonunu hazırlayın. Ligasyon reaksiyonunu oda sıcaklığında iki saat boyunca inkübe edin. İnkübasyonun ardından, ligasyonla birleştirilmiş plazmiti daha önce olduğu gibi saflaştırın.Bu kez önceden ısıtılmış elüsyon tamponundan 10 µL kullanın. Ardından, sindirilmemiş plazmidleri, sindirilmiş plazmidleri ve ligasyonu bir agaroz jelde yürütün. Başarılı bir ligasyon, yaklaşık 11Kb boyutunda bir ligasyon ürünü oluşturmalıdır.Plazmidlerin doğru moleküler ağırlıkta hareket ettiği doğrulandıktan sonra, sekiz µL saflaştırılmış ligasyon reaksiyonu kullanarak bir T7 in vitro transkripsiyon reaksiyonu kurun ve 37 °C'de dört saat boyunca inkübe edin. İnkübasyonun ardından, RNA konsantrasyonunu bir UV spektrofotometre ile ölçün. Elektroporasyondan bir veya iki gün önce, geri kazanılacak her konstrükt için bir T182 flask Vero hücresi hazırlayın.Sahte elektroporasyon kontrolü olarak kullanılacak bir T182 flaskı ekleyin. Hücreler %70 ila %80 konfluense ulaştığında, %15 FBS ve 10 milimolar HEPES içeren DMEM'i 37 degrees celsius'ye ısıtılmış bir su banyosunda ısıtın. Hücreleri standart yöntemlere göre tripsinizasyon ile ayırın ve tripsini inaktive etmek için %10 FBS içeren hücreleri ve besiyerini toplayın.Ardından hücreleri 4 °C'de beş dakika boyunca 150 ×g'de santrifüjleyin. Hücreleri PBS ile üç kez yıkadıktan sonra, her bir hücre peletini RPMI 1640 artı 10 mM HEPES içerisinde yaklaşık 0,5 × 10⁷ hücre/mL konsantrasyona gelecek şekilde süspanse ederiz. Hücre süspansiyonundan 200 µL'yi steril bir tüpe aktarın.Ardından, her bir hücre setine yalancı kontrol olarak 20 µL su veya 20 µL RNA ekleyin. Tüpü hafifçe sallayarak hücreleri nazikçe karıştırın ve ardından tüpün içeriğini iki mm aralıklı bir elektroporasyon küvetine aktarın. Elektroporatörü 170 V, 0 Ω direnç ve 950 µF değerlerine ayarlayın.Hücrelere bir kez şok uygulayın ve hemen 600 µL önceden ısıtılmış besiyeri ekleyin. Hücreleri, 10 mL önceden ısıtılmış besiyeri içeren bir T75 doku kültürü flaskına aktarın. Küvetle birlikte verilen damlalığı kullanarak küvette kalan tüm besiyerini uzaklaştırın.Besiyeri ve hücreleri karıştırmak için erleni çalkalayın ve ardından 37 °C'lik inkübatöre yerleştirin. Ertesi gün ve takip eden her gün, mock elektropore edilmiş kontrole kıyasla %50 ila %75 oranında hücre ölümü gözlemlenene kadar hücrelerin canlılığını kontrol edin. %50 ila %75 hücre ölümü görüldüğünde, süpernatanı konik bir tüpe toplayın ve ardından hücresel kalıntıları uzaklaştırmak için 4 °C'de 10 dakika boyunca 3.000 ×g'den daha yüksek hızda santrifüjleyin.Santrifüj işleminin ardından, berraklaştırılmış süpernatantı yeni bir tüpe aktarın ve %20 son konsantrasyona ulaşacak şekilde FBS ekleyin. Ayrıca, virüs enfektivitesini dondurulmuş haldeyken korumak amacıyla tamponlayıcı ajan olarak 10 millimolar son konsantrasyona ulaşacak şekilde steril HEPES ekleyin. Son olarak, virüsü vortexleyerek karıştırın ve vidalı kapaklı tüplere paylaştırın. Virüsü gelecekteki kullanımlar için minus 80 degrees celsius derecede saklayın.Bu görsel, yabani tip PRVABC59 ve enfeksiyöz klondan türetilmiş Zika virüsünün, insan dışı primat Vero hücre hattının büyüme kinetiği üzerindeki benzer etkisini göstermektedir. Bu görsel, her iki virüsün insan plasenta hücreleri üzerindeki etkisini göstermektedir. Benzer büyüme kinetikleri, sivrisinekten türetilmiş C6/36 hattında da görülmektedir.Bu sağkalım eğrisi, 1.000 PFU PRVABC59 veya enfeksiyöz klondan türetilen virüs ile inoküle edilmiş dört haftalık interferon alfa, beta ve gama reseptör nakavt farelerden elde edilen verileri göstermektedir. Zika virüsü içeren kan öğünü alındıktan 14 gün sonra Aedes aegypti fareleri disseke edilmiştir. Enfeksiyonun değerlendirilmesi için sivrisinek gövdelerinde, yayılımı ölçmek amacıyla bacaklarda veya enfeksiyöz virüsün iletimini ölçmek için tükürük salgılarında plak sayım yöntemi kullanılmıştır.Oranlar, test edilen toplam sivrisineklerin yüzdesi olarak sunulmuştur. Bu prosedürü uygularken, virüsün tamamının dizilenmesi gerektiğini unutmamak önemlidir. Ayrıca, viral replikasyon döngülerini minimize etmek için virüsün %50 ila %75 CPE'de hasat edilmesi gerektiğini hatırlamak önemlidir.Bu teknik, Zika virüsünde aşıları, patogenezi ve virüs evrimini araştırmak için flaviviroloji alanındaki araştırmalar açısından önemlidir.

rescue-characterization-recombinant-virus-from-new-world-zika-virus

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Plazmid DNA influenza A virüsleri Kurtarma grip araştırmacılar grip virüsünün biyoloji çeşitli yönlerini incelemek amacıyla rekombinant virüsler üretmek için, ve potansiyel vektörler veya aşı olarak kullanılmak üzere izin veren bir temel ve temel deneysel bir tekniktir.

Plazmid DNA Rekombinant Grip Virüsü Üretimi

Bu video, insan fetal nöral kök hücrelerini Zika virüsü ile enfekte etmek için bir prosedürü göstermektedir. Enfekte olmuş hücreler daha ileri çalışmalar için kullanılabilir.

Fetal Nöral Kök Hücrelerin Zika Virüsü Enfeksiyonu

Klonlanmış cDNAs, gibi genetik tersine adlandırılan bir yaklaşım, gelen rekombinant arenaviruses kurtarma araştırmacılar arenavirus biyolojisi birçok farklı yönlerine, spesifik viral gen ürünlerinin rolü, hem de onların farklı özel etki ve kalıntılarının katkısını araştırmak için izin verir . Benzer şekilde, insan patojen arenaviruses mücadele etmek için etkili ve güvenli aşıların üretimi için yeni olanaklar sağlar aşı geliştirilmesi için FDA onaylı hücre çizgileri (Vero) bölgesindeki genetik...

FDA onaylı Vero hücrelerinde Aşı Geliştirme için bir araya getiren Arenavirus üretimi

Ortaya çıkan bir patojen olan Zika Virüsü (ZIKV), fetal gelişimsel anormallikler ve mikrosefali ile bağlantılıdır. Etkili bir enfeksiyöz hücre kültürü sisteminin kurulması, ZIKV replikasyonu çalışmalarının yanı sıra aşı ve ilaç geliştirme çalışmaları için de çok önemlidir. Bu çalışmada ZIKV ile ilgili çeşitli virolojik analizler gösterilmiş ve tartışılmıştır.

Zika Virüs Bulaşıcı hücre kültürü sistemine ve<em&gt; İn Vitro</emİnterferonların&gt; profilaktik etkisi

Burada fare Zika virüs kaynaklı microcephaly bir model oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu iletişim kuralı embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin-sahne intraserebral aşılama Zika şunun için yöntemler içerir.

İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak Zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin

Ifnar1- / - fare modeli immunoprivileged organlarda Zika virüs (ZIKV) enfeksiyon için antijen spesifik T-hücre yanıtları değerlendirmek için bir protokol açıklanmıştır. Bu yöntem koruma hücresel mekanizmaları ve immunopathogenesis ZIKV aşı soruşturma için çok önemli ve aynı zamanda onların etkinliğini değerlendirme için değerlidir.

Virüslü Ifnar1- / - farelerin Immunoprivileged organlarında Zika virüs özgü T hücreli yanıt-e doğru değerlendirilmesi

Biz insan serumu, birincil insan hücreleri ve enfeksiyon miktar nicel gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonu tarafından kullanarak Zika virüs enfeksiyonu önceden varolan bağışıklık dang virüs karşı etkisini değerlendirmek için bir yöntem açıklanmaktadır.

Antikor-bağımlı donanýmýn birincil insan hücrelerinde Zika şunun miktar

Zika virüsü son salgını aşılar ve/veya terapötik stratejileri geliştirmek için ters genetik yaklaşımlar kurulması önemini vurgular. Burada, biz insan sitomegalovirus acil-erken Organizatör kontrolü altında bir bakteriyel yapay kromozom monte tam uzunlukta cDNA klon bir bulaşıcı rekombinant Zika virüsü kurtarmak için protokol tarif.

Bir bakteriyel yapay kromozom cDNA klon rekombinant Zika virüs kurtarma

Protokolün amacı, enfeksiyon sonrasında faredeki birden fazla organdan Zika virüsünü izole ederek ve ölçerek viral hastalıkları araştırmak için kullanılan teknikleri göstermektir.

Farede Birden Fazla Organdan Zika Virüsünün İzolasyon ve Nicelikselleştirilmesi

Sunulan protokol, Aedes aegypti sivrisinek popülasyonlarının Zika gibi belirli bir virüs için vektör yeterliliğini bir muhafaza ortamında belirleyebilir.

Zika Virüsü Kullanan Aedes aegypti Sivrisineklerinde Vektör Yetkinlik Analizleri

Bu çalışmada, Zika virüsü replikasyonunun inhibitörlerini yüksek verimli bir tarama formatında taramak için replikon bazlı ve viral enzim bazlı tahlillerde kullanılan protokolleri açıklıyoruz.

Zika Virüs Replikasyonunun inhibitörlerini taramak için yüksek verimli Antiviral Tahliller

Öğrenin, iki plazmidli cDNA klonundan bulaşıcı Zika virüsünü kurtarma yöntemini. Bu teknik, flavivirologide aşı stratejileri ve patogenez araştırmaları için uygulanabilir.

Yeni Bir Dünyadan Rekombinant Virüsün Kurtarılması ve Karakterizasyonu Zika Virüsü Bulaşıcı Klon

Daha fazla video keşfet