Name: Protein-protein etkileşimlerinin Autophagy araştırma çalışma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 8 s
Description: Öğrenin, otofaji düzenlemesinde protein-protein etkileşimlerini incelemek için immünofloresan ve immünopresipitasyon tekniklerini kullanın. Bu yöntemler, hücresel sinyal yollarında yeni bileşenlerin keşfedilmesine yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu eser bilimsel ve Teknolojik Araştırma Konseyi, Türkiye (TÜBİTAK) 1001 Grant 107T153 tarafından Sabancı Üniversitesi desteklenmiştir. SEB ve NMK TÜBİTAK BIDEB 2211 burs doktora çalışmaları için destekler.

1. ayirt <ol><li>HEK293T korumak insan embriyonik böbrek hücreleri DMEM yüksek glikoz ortamda ve N2A fare neuroblast hücrelerde DMEM düşük glikoz orta, % 5 CO 2-37 ° C'de oksijen kuluçka makinesi % 10 ısı inaktive fetal sığır (FBS) serum, kültür ortamıyla ek antibiyotik (50 U/mL penisilin, 50 µg/mL streptomisin) ve L-glutamin (2 mM).</li>
	<li>% 0.25 tripsin kullanarak hücreleri bağlantısını kesin. İlk hücre kültürü medyayı çıkarın sonra 10 mL steril fosfat tamponlu tuz (PBS) hücrelerle yıkama ve tripsin 2 mL DMEM orta ekleyerek 5 dk. Yinele tripsin için 37 ° C'de 1 mL ile kuluçkaya.</li>
	<li>De pipetting tarafından plaka yıkayın. Hücre Çözümü 10 µL kaldırmak ve trypan mavi 10 µL ile karıştırın. Bir hemasitometre kullanarak canlı hücreleri saydırmak.</li>
	<li>Hem HEK293T ve N2A yapisan hücre hatları, ancak, HEK293T hücreleri kolayca plaka bağlantısını kesin. Bu nedenle, eğer HEK293T hücre satırı ile çalışma, kat coverslides ile steril % 0,01 Poli-L-lizin hücreleri tohum önce filtre.
	<ol><li>10 cm Petri kabına yer steril coverslides. Poli-L-lizin çözüm her coverslide üzerine uygun miktarda ekleyin. 10 dakika süreyle Poli-L-lizin Çözümle coverslides kuluçkaya</li>
		<li>Kaldırmak Poli-L-lizin çözüm. 
		Not: Poly-L-lizin yeniden kullanılabilir; toplamak ve daha fazla deneyler için yeniden kullanmak isteğe bağlıdır. Poli-L-lizin zehirli olduğundan, tüm çözüm coverslides üzerinde tamamen buharlaşır kadar bekleyin ve sonra Poli-L-lizin kurtarmak.</li>
		<li>Steril PBS ile coverslides yıka.</li>
	</ol></li> <li>1 mL DMEM 12-şey plaka her kuyuya ekleyin. Bir coverslide her kuyuya yerleştirin.</li>
	<li>Tohum 20.000 hücre/iyi, damla damla coverslides sayfasında bulunan bir hücreler homojen bir dağılım için aynı zamanda plaka sallayarak süre. Hücrelerin içinde CO 2 kuluçka 37 ° C'de tutun ve ilaç eklemek toplam kuluçka süresi 48 saat fazla olamaz, Yani, 3 h, Torin tedavi için ekleyebilir, böylece ilaç sonrası 45 h tohum.
	<ol><li>İçin RACK1-LC3 etkileşim çalışmaları, Torin 1, rapamycin ve açlık autophagy indükleyicileri kullanılmıştır. Hücreleri Torin 1 ile 3 h (250 nM son konsantrasyonu); inkübe ile Rapamycin 16 h (200 nM nihai toplama); ve Earle ile &#39; s dengeli tuz çözüm (EBSS) hücreleri açlıktan için 2 h için. 
		Not: Kuluçka içinde FBS denetim koşulu olarak kullanıldı % 10 ile DMEM.</li>
	</ol></li> <li>48 h toplam kuluçka süresi sonra coverslides medyada kaldırmak ve 1 mL PBS ile yıkayın.</li>
	<li>Hücreleri, düzeltmek için kuluçkaya 1 mL buz soğuk steril süzülmüş % 4 paraformaldehyde (PFA) 1 x PBS (pH 7,4), herhangi bir ajitasyon olmadan oda sıcaklığında 20 dakika içinde hücrelerle. 
	İngiltere'de yılın ışığa duyarlı olduğundan, plaka karanlıkta kuluçka döneminde (önemli) bırakın; Alüminyum folyo ile plaka kapsayan yardımcı olabilir. Ayrıca, İngiltere'de yılın toksik, bu nedenle, iş bir duman başlık altında hücreleri tamir ederken. 
	Not: belirli antikor en iyi farklı fiksasyon ajanlar ve koşulları kullanarak çalışabilir gibi fiksasyon adım ayirt deneylerde unutmayın, optimize edilmelidir.</li>
	<li>Sonra 20 dk, İngiltere'de yılın kuluçka, önce İngiltere'de yılın çözüm coverslides üzerinde kaldırın ve sonra her örnek 3 kez 1 mL steril süzülmüş PBS ile yıkayın. At Bu adım, (önemli) Kuyu kuru, Hadi onlar kadar değil için tek tek yıkayın. Beri o hücreleri izleyen tepkiler ile müdahale, hücre morfolojisi değiştirmek ve belirsiz sinyaller artırmak kurutma önlemek.</li>
	<li>Yıkama tamamlandığında, 1 mL PBS üzerinde buz örneklerinde tutmak</li>
	<li>Engelleme çözüm hazırlamak: %0,1 sığır Serum Albumin (BSA) ve % 0.1 saponin ile PBS.</li>
	<li>6-şey plaka parafin film ile kapak. Plaka alt parafin film kaplama sonra düzgün olduğundan emin olun. 6-şey plaka etiket.</li>
	<li>Transfer coverslides 12-şey tabak 6-şey plakaları parafin film ile kaplı cımbız kullanma.</li>
	<li>Coverslides üzerinde PBS atmak ve çözüm permeabilization için her coverslide üzerine engelleme 100 µL ekleyin. Örnekleri 30 dakika süreyle buz üzerinde kuluçkaya</li>
	<li>Çözüm kapatmaktır birincil antikor hazırlayın. Boyama için en iyi çalışma konsantrasyonları tanımlamak için antikor dilutions deneyler önce optimize. 
	Not: Örneğin, LC3 antikor çözüm kapatmaktır 1: 100 seyreltme kullanılır.</li>
	<li>30 dk kuluçka sonra engelleme çözüm atmak ve PBS 1 mL yavaşça örnekleriyle bir kez yıkayın.</li>
	<li>Ekle 100 µL birincil antikor çözüm için her coverslide. Bir shaker üzerinde 1 h için oda sıcaklığında örnekleri kuluçkaya. 
	Not: Kuluçka zaman birincil antikor ile optimize edilmelidir. Antikor bağlı olarak, bir gecede kuluçka 4 ° C'de daha uygun olabilir. Bir shaker yavaşça kuluçkaya en iyisidir (100 rotasyonlar antikor coverslides üzerinde eşit olarak dağıtmak için /dk).</li>
	<li>Birincil antikor ile kuluçka sonra örnekleri ayrı ayrı, 3 kez 1 mL PBS ile yıkayın.</li>
	Çözüm (en iyi duruma getirmeleri ikincil antikor dilutions, gerekli olabilir) engelleme <li>hazırla 1:500 ikincil antikor. Burada, Anti-tavşan IgG Alexa Fluor 568 ikincil bir anti-tavşan antikor kullanıldı.
	<ol><li>Kuluçkaya ikincil antikor çözüm üzerinde bir shaker oda sıcaklığında 1 h için 100 µL örnekleriyle. Fluorophore etiketli ikincil antikorlar beri gün ışığına duyarlı, (önemli) çözümü karanlıkta bırakın. Örnekleri yer karanlıkta sırasında ve sonra ikincil antikor kuluçka.</li>
	</ol></li> <li>3 kez PBS ile plaka ikincil antikor kuluçka sonra yıkayın. 
	Not: Temel deneyim üzerine bazı antikorlar tarafından PBS ortadan yüksek arka plan sinyalleri var yıkar. -Den sonra adım 1,21, böyle bir antikor ile ilgili örnekleri 4 ° c 6 h için PBS içinde tutmak yardımcı olabilir.
	<ol><li>Gerekirse, Höchst çekirdeklerin işaretlemek için gibi bir DNA'ya bağlanıcı boya hücrelerle leke.</li>
	</ol></li> <li>Birden fazla protein leke, başlamak--dan adım 1.16 ikinci protein için aynı yordamı uygulamak.
	Birden fazla antikor (örneğin, Kullanım fare ve tavşan antikorları) ile boyama işlemi sırasında antikor arasında hiçbir tür reaktivite olduğunu <ol><li>emin olun. 
		Not: Burada, RACK1 ikinci protein anti-RACK1 birincil antikorlar ve yukarıda belirtilen aynı konsantrasyonları kullanarak anti-fare Alexa Fluor 488 IgG ikincil antikorları kullanarak lekeli.</li>
	</ol></li> <li>Montaj çözüm hazırlamak: % 50 1 x PBS gliserol. 22 µm filtre filtreden.</li>
	<li>Hav bırakmayan mendil kullanarak etanol ile slaytları silin ve 10 µL montaj çözüm her slayta eklemek. Bir cımbız kullanarak, coverslides hücreleri ile yan montaj orta ile doğrudan temas halinde olduğunu her dropso yerleştirin. Yavaşça hav bırakmayan mendil kullanarak aşırı montaj çözüm atın.</li>
	<li>Coverslides şeffaf oje ile kapatın. İlk olarak, 4 kenarlardan oje damla ekleyerek coverslides stabilize etmek ve onları tamamen mühür.</li>
	<li>Floresan sinyal birkaç saat sonra çamaşır suyu bu yana bir flüoresan veya confocal mikroskop altında örnekleri en kısa zamanda analiz.</li>
</ol> 2. Immunoprecipitation <ol><li>Ayır ve sayısı hücreler olarak açıklanan adımları 1.2 ve 1.3.</li>
	<li>Eğer HEK293T hücrelerle çalışma 4 milyon hücre 15 cm Petri yemeklerinde her koşul için tohum. Eğer N2A hücrelerle çalışma, 5 milyon hücre 15 cm Petri yemeklerinde tohum. CO 2 kuluçka 37 ° C'de hücreler deneme sonuna kadar kuluçkaya.</li>
	<li>Böylece hücrelerin toplam kuluçka süresi 48 h. aşmadığı ilgili uyuşturucu ya da şartlar tanımlı bir süre için hücrelerle tedavi 
	Not: Bu çalışmada immunoprecipitation testler için hücreleri Torin 1 ile 3 h için tedavi edildi (250 nM), rapamycin ile 16 h (200 nM) ve 2 h ile EBSS. DMEM FBS denetimi olarak hücrelere eklendi % 10.</li>
	<li>Sonra 48 h toplam kuluçka süresi, medyayı çıkarın ve hücreleri hasat. HEK293T hücreleri kolayca plaka ayırmak, buz ile tabak yıkama soğuk PBS hasat için yeterli olabilir. Ancak, N2A hücreleri dekolmanı daha dayanıklıdır; hücreleri hasat için hücre Kazıma aletleri kullanın.
	<ol><li>Microcentrifuge tüpler tüm hücreleri toplamak.</li>
	</ol></li> <li>Santrifüj örnekleri 15 dakika 4 ° C. atma süpernatant ve yıkama 1 mL PBS pipetting tarafından yeniden askıya ile Pelet 16.000 x g de.</li>
	<li>Tekrar santrifüj adım ama 15 dakika süreyle 4 ° C'de en yüksek santrifüj hızda süpernatant atın.</li>
	<li>Denemeyi başlatmadan önce hazırlamak radyo IMMUNO-yağış tahlil (RIPA) arabellek. 
	Not: RIPA arabellek 3 türü vardır; (bkz. Aşağıdaki formüller) soruşturuluyor protein etkileşim yoğunluğunu göre seçin.
	<ol><li>Bir güçlü protein-protein etkileşimi ise normal RIPA arabellek seçin.</li>
		<li>Etkileşim zayıftır seçin hafif RIPA veya daha hafif RIPA. 
		Not: Aşağıdaki adımlarda bu arabellekleri tarifleri vardır. İmmunoprecipitation testlerinde kullanılan tüm arabellekleri proteaz inhibitörleri ile desteklenmiş.
		<ol><li>Düzenli RIPA arabelleği %1 NP-40, 150 mM NaCl, % 0.5 sodyum deoxycholate ve % 0.1 Sodyum Lauryl Sülfat 50 mM Tris pH 8 kullanarak hazırlayın.</li>
			<li>Hafif RIPA arabelleği % 1 NP-40, 150 mM NaCl ve % 0.25 sodyum deoxycholate 50 mM Tris pH 7.5 kullanarak hazırlayın.</li>
			<li>Daha hafif RIPA arabelleği %1 Triton-X 100, 137 mM NaCl, % 1 gliserol ve 1 mM sodyum orthovanadate 50 mM Tris pH 7.4 kullanarak hazırlayın.</li>
		</ol></li></ol></li> <li>Uygun RIPA arabellek seçtikten sonra proteaz inhibitörleri (RIPA +) ile tampon ek. Sonra 3 x hücre Pelet RIPA + cilt hücreleri parçalayıcı.</li>
	<li>Girdap süspansiyon 15 s. almak o buz üzerinde 5 dk. tekrar girdap ve 5 kez buzlanma ve 4'te 16.000 x g 15dk için de örnekler santrifüj kapasitesi ° C.</li>
	<li>Süpernatant temiz microcentrifuge tüp ve kalan hücre artıkları kaldırmak için santrifüj aktarın. Süpernatant temiz bir tüp transfer.</li>
	<li>Protein lysates 1:50 sulandırmak ve 96-şey plaka boş ve standartları ile hazırlayın. Örnekleri sulandırmak.
	<ol><li>Mix örnekleri Bradford ile çözüm 1:20. 15 dakika içinde belgili tanımlık karanlık kuluçkaya.</li>
		<li>595 nm dalga boyu, optik yoğunluk ölçer. Her örnek için Absorbans değerleri kullanarak protein konsantrasyonu hesaplayın.</li>
	</ol></li> <li>Bir gün önce hücreleri, hasat ilgi protein için özel antikorlar ile protein artı işareti boncuk çift.
	<ol><li>200 µL bahşiş makas kullanarak kenar kesme ve boncuk Bulamaç üzerinden 25 µL her koşul için kullanın.</li>
		<li>Boncuk 1 mL PBS ile bir kez, bir kez 1 mL RIPA arabellek ile bir kez 1 mL RIPA + ile yıkayın. 3300 x g, 1 dk. 4 ° C de yıkama adımları gerçekleştirmek</li>
		<li>Son yıkama sonra RIPA + 300 µL üstündeki ekleyin ve çekilecek protein için özel olan 1,5 µg antikor ekleyin.</li>
		<li>Tüpler gecede 4 ° C'de bir rotator (20 rotasyonlar/dk) üzerinde kuluçkaya. 
		Not:, ATG5 immunoprecipitated özel anti-ATG5 antikorları kullanarak buradaydı.</li>
	</ol></li> <li>Sonra gece kuluçka antikor ile boncuk boncuk PBS ile bir kez, bir kez RIPA ve bir kez ile RIPA + 2.12.2. adımda açıklandığı gibi yıkayın.</li>
	<li>Ekleyin 2 mg protein üzerinde her boncuk lysate durumu ve 300 µL RIPA + tampon/tüp ile toplam birime tamamlamak. Saat 4'te bir gecede üzerine bir değiştirici boruları kuluçkaya ° C.</li>
	<li>Kuluçka sonra daha önce açıklandığı gibi boncuk (Adım 2.12.2) yıkayın.
	<ol><li>Sonra son yıkama, tüm süpernatant boncuk dokunmadan kaldırmak için daha küçük damlalıklı bahşiş kullanın.</li>
		<li>Ekleyin 10 µL boya yükleme x 3: % 6 SDS, %30 gliserol, % 16 β-Mercaptoethanol ve % 0.1 Bromophenol mavi 1M Tris-HCl pH 6.8.</li>
	</ol></li> <li>Her koşul için en az 100 µg protein lysate kullanarak giriş denetimleri hazırlamak. Su kullanarak örnek birimleri eşitlemek ve boya yükleme x 3 uygun hacmi ekleyin.</li>
	<li>Kaynatın örnekleri 10 dakika süreyle 95 ° C'de 
	Not: Genellikle ne zaman örnekleri kaynama kapaklar tüplerinin kendiliğinden açabilirsiniz ve örnekleri kaybolur. Bu kapaklar belirli kap Engelleyicisi ile kapalı tutarak kaçının.</li>
	Örnekleri ve proteinler standart protokolleri kullanarak kendi boyutları göre ayırmak için SDS-sayfa jelleri üzerine yük aşağı spin <li>. 
	Not: RACK1 ve ATG5 bu çalışmada, % 12'si polyacrylamide jeller 80 V 30 dk için ve daha sonra 120 V yaklaşık 90 dakika boyunca örnekleri işletilmiştir. Ancak, LC3 gibi daha küçük proteinler için % 15 polyacrylamide Jeller kullanarak daha uygun.</li>
	Çalışan jel tamamlandıktan sonra <li>nitroselüloz veya ya da ıslak veya yarı kuru transfer yöntemleri kullanılarak PVDF membran proteinleri aktarın. O zaman, PBS %5 yağsız süt % 0.05 ile kuluçka tarafından membranlar blok ara 20 (PBST), oda sıcaklığında 1 h. yıkama membranlar için 3 kez ile 5 dk. PBST</li>
	<li>Oda sıcaklığında 1 h için çalışma konsantrasyonlarda birincil antikorlar ile membranlar kuluçkaya. BSA kırmızı çözümleri içeren birincil antikor dilutions için kullanın (%5 BSA Cohn V kesir, %0.02 sodyum azid PBST, pH 7.5; içinde fenol red pH marker olarak eklendi ekleyin) antikorları yeniden izin vermek için. 
	Not: Örneğin, ATG5 antikor 2.000 x kırmızı çözümde oranında seyreltin.
	<ol><li>Kuluçka süresi sonunda, 3 kez ile PBST membranlar yıkayın.</li>
	</ol></li> <li>% 5 yağsız süt çözümde hazırlanmıştır HRP Birleşik ikincil antikorlar ile membranlar kuluçkaya (burada, 1:10.000, Anti-tavşan IgG kullanılmıştır). Sonra yıkayın ve membranlar 3 x 5 dakika süreyle PBST ile</li>
	<li>Olun ECL çözüm: 25 mM luminol, 9 mM kumarik asit, 3 x 10 -4% H 2 O 2 70 mM Tris-HCl pH 8.8 '. Her deneme için taze H 2 O 2 kullanın. 
	Not: 2 H sonra reaksiyon başlatır O 2 toplama ve bunu devam ediyor yaklaşık 20 dakikadır.
	<ol><li>Membranlar kuluçkaya ve filmler ECL içinde 20 dk için x-ışını. Geliştirmek ve karanlık bir odada düzeltmek.</li>
	</ol></li> <li>Co-immunoprecipitation ile yakın ya da moleküler ağırlık örtüşen proteinlerin denetlemek için 30 dk içinde sıyırma arabellek için 60 ° C'de membranlar kuluçka tarafından antikorlar membranlar kapalı şerit gerekebilir: (25 mM Tris-HCl pH 2 ve %1 SDS).</li>
	Co-immunoprecipitation için farklı antikorları kullanarak kontrol etmek için <li>Yinele adımları 2.20-2.23. Örneğin, aşağıdaki ATG5 algılama ve zarı sıyırma, RACK1 protein bir anti-RACK1 birincil antikor (1:1, 000) ve ikincil antikorlar (1:10, 000) kullanarak aynı membranlar üzerinde test edildi. Β-aktin yükleme denetimi olarak kullanılan; ve IgG sinyal yükleme denetim immunoprecipitated örnekleri için kullanıldı.</li>
</ol>

<ol><li>Oral, O., Akkoc, Y., Bayraktar, O., Gozuacik, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+and+pathological+significance+of+the+molecular+cross-talk+between+autophagy+and+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Histol+Histopathol%22%5BJournal%5D)">Physiological and pathological significance of the molecular cross-talk between autophagy and apoptosis.</a> Histol Histopathol. 31, 479-498 (2016).</li>
<li>Korkmaz, G., Tekirdag, K. A., Ozturk, D. G., Kosar, A., Sezerman, O. U., Gozuacik, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MIR376A+is+a+regulator+of+starvation-induced+autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">MIR376A is a regulator of starvation-induced autophagy.</a> PLoS One. 8, e82556(2013).</li>
<li>Itah, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrodynamic+cavitation+kills+prostate+cells+and+ablates+benign+prostatic+hyperplasia+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Biol+Med+%28Maywood%29%22%5BJournal%5D)">Hydrodynamic cavitation kills prostate cells and ablates benign prostatic hyperplasia tissue.</a> Exp Biol Med (Maywood). 238, 1242-1250 (2013).</li>
<li>Gozuacik, D., Kimchi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+as+a+cell+death+and+tumor+suppressor+mechanism%29%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Autophagy as a cell death and tumor suppressor mechanism).</a> Oncogene. 23, 2891-2906 (2004).</li>
<li>Erzurumlu, Y., Kose, F. A., Gozen, O., Gozuacik, D., Toth, E. A., Ballar, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+unique+IBMPFD-related+P97%2FVCP+mutation+with+differential+binding+pattern+and+subcellular+localization%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A unique IBMPFD-related P97/VCP mutation with differential binding pattern and subcellular localization.</a> Int J Biochem Cell Biol. 45, 773-782 (2013).</li>
<li>Kuzuoglu-Ozturk, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy-related+gene%2C+TdAtg8%2C+in+wild+emmer+wheat+plays+a+role+in+drought+and+osmotic+stress+response%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Autophagy-related gene, TdAtg8, in wild emmer wheat plays a role in drought and osmotic stress response.</a> Planta. 236, 1081-1092 (2012).</li>
<li>Longatti, A., Tooze, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicular+trafficking+and+autophagosome+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+Differ%22%5BJournal%5D)">Vesicular trafficking and autophagosome formation.</a> Cell Death Differ. 16, 956-965 (2009).</li>
<li>Erbil, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RACK1+Is+an+Interaction+Partner+of+ATG5+and+a+Novel+Regulator+of+Autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">RACK1 Is an Interaction Partner of ATG5 and a Novel Regulator of Autophagy.</a> J Biol Chem. 291, 16753-16765 (2016).</li>
<li>Gozuacik, D., Yagci-Acar, H. F., Akkoc, Y., Kosar, A., Dogan-Ekici, A. I., Ekici, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anticancer+use+of+nanoparticles+as+nucleic+acid+carriers%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Nanotechnol%22%5BJournal%5D)">Anticancer use of nanoparticles as nucleic acid carriers.</a> J Biomed Nanotechnol. 10, 1751-1783 (2014).</li>
<li>Phizicky, E. M., Fields, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein-protein+interactions%3A+methods+for+detection+and+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Protein-protein interactions: methods for detection and analysis.</a> Microbiol Rev. 59, 94-123 (1995).</li>
<li>Uetz, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comprehensive+analysis+of+protein-protein+interactions+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A comprehensive analysis of protein-protein interactions in Saccharomyces cerevisiae.</a> Nature. 403, 623-627 (2000).</li>
</ol>

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Immunoprecipitation ve ayirt teknikleri protein-protein etkileşimleri çalışma için önemlidir. Bu iki teknikleri yaygın olarak kullanılan ve iyi kurulmuş olmakla birlikte, bu teknikleri kullanırken deneyler kalitesini tanımlamak için çeşitli kriterler dikkate alınmalıdır.
Bu testlerde kullanılan ilk, birincil antikorlar faiz proteinler için kesin gerekir. Bunu sağlamak için shRNA nakavtlar veya nakavt hücreleri antikor söz konusu özgüllük sınamak için kullanın. Ayrıca, pozitif denetimleri kulla...

Macroautophagy (autophagy, burada) toplu sitoplazma, proteinler ve organelleri autophagic veziküller denilen çift cidarlı veziküller içinde tutma ile karakterize bir hücresel stres mekanizmadır. Çift cidarlı dış tabakası füzyonu, autophagic veziküller ve onların kargo organellerin için teslim edilir ve orada1bozulmuş. Tüm hücre tipleri ve tüm organizmalar, homeostatik fonksiyonları protein yıkımı ve organel (örneğin, mitokondri) ciro gibi performans düşük Bazal seviyelerde Autophagy oluşur. Hücresel stres, açlık gibi önde gelen koşullar altında autophagy hızla upregulated ve hücre enerji düzeyleri ve temel metabolizma1,2,3korumak için olanak sağlar.
30 autophagy genler Maya klonlanmış ve protein ürünleri sivilce çekirdekleşme, genişleme, vezikül fusion geç endosome/lysosome ve kargo bozulması autophagic bir işlemi, çeşitli aşamalarında bir rol oynamaya gösterildi 4 , 5. Orthologs bu genlerin çoğunluğunun tespit edilmiştir ve çeşitli organizmalar çalışmalarda doğruladı onların hücresel işlevler6korunması. Çalışmalar son on yılda birkaç protein kompleksleri ve protein-protein etkileşimleri ve onlar karmaşık ve kontrollü bir şekilde autophagy yolları yöneten ilgili autophagy gösterdi. Kesişme noktalarında, yedeklemeler, geri bildirim ve feedforward mekanizmaları var ve onlar hücre autophagy (veziküler salgılanması, lysosome dipnotlar, endosomal sıralama ve taşıma7, vb) gibi ilgili diğer olaylar ile koordine etmek için izin Autophagy protein ATG5 bir yem olarak kullanarak bir tarafsız Maya-iki melez ekran (ATG5 olan bir anahtar autophagy protein açlık LC3 lipidation aracılık eder E2 benzeri conjugating sistemi dahil indüklenen autophagy), biz aktive reseptör belirledik C-kinaz 1 (RACK1; GNB2L1) olarak güçlü bir etkileşen ve roman autophagy bileşen8. Önemlisi, ekran ATG5 RACK1 etkileşim autophagy indüksiyon klasik autophagy indükleyicileri (Yani, açlık ve mTOR inhibisyon) tarafından için vazgeçilmez olduğunu gösterdi.
Ayirt tabanlı yöntemler genellikle protein-protein etkileşimleri izlemek için kullanılır. Bu teknikler antikor ağırlıklı ve etkileşimleri görselleştirmek ve hücresel yerelleştirmeler onaylamak için yardımcı olur. Bu teknikte, floresan tag özgü konjuge antikor protein ilgi genellikle belirli boyama için kullanılır. Her protein ile birleştiğinde için farklı floresan boyalar antikor olarak etiketlenmiş olabilir. Protein özel antikorlar kullanarak, bir çakışma görüntüleri birleştirildiğinde sinyal içinde eş yerelleştirme confocal mikroskobu altında proteinlerin gösterir. Hücreleri veya hatta dokular için uygun bir tekniktir. Ayirt teknikleri etkileşim dinamikleri hakkında ipuçları sağlayabilir ve hücresel Morfoloji farklı koşullar9altında genel değişiklikleri izlerken protein kompleksleri, dağılımı ve boyutu belirlemek. Immunoprecipitation tekniktir etkileşimleri analiz için izin veren başka bir sık kullanılan antikor tabanlı arasında proteinler10göz önüne alındığında. Bu tekniği kullanarak, ilgi hücreleri izole proteinlerdir veya karmaşık veya ilgi bir protein ile temas halinde olan proteinlerin yağış kaynaklanan özel antikorlar kullanarak doku ayıklar. Co-immunoprecipitation, nerede protein ve onun ortak etkileşen tespit edilir, sadece iki protein arasındaki etkileşimi ortaya çıkarır, ama farklı koşullar11altında etkileşimin gücünü ölçebilirsiniz.
Bu iletişim kuralı onaylayın ve ATG5-RACK1 ve RACK1-LC3 etkileşim karakterize için kullanılan ayrıntı anahtar teknikleri açıklar. Kritik adımlar ve tuzaklar autophagy araştırma gibi öneriler sorun giderme için vurgu ile ayirt ve immunoprecipitation teknikleri üzerine odaklanmıştır.

<table><tbody><tr><td>Tripsin EDTA Çözeltisi A</td><td>Biyolojik Endüstrileri&nbsp;</td><td>BI03-050-1A</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>GE Sağlık</td><td>SH-30256.01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM (yüksek glikoz)</td> <td>Sigma ve nbsp;</td><td>5671</td><td></td></tr><tr><td>DMEM (düşük glikoz)</td> <td>Sigma</td><td>5546</td><td></td></tr><tr><td>Tripan Mavi</td><td>Sigma</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>Hemositometre</td><td>Sigma</td><td>Z359629-1EA</td><td></td></tr><tr><td>kapak kaydırakları</td><td>Jena Bioscience</td><td>CSL-103</td><td></td></tr><tr><td>slaytları</td><td>Isolab</td><td>I.075.02.005</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-Lizin</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>P8920</td><td></td></tr><tr><td>Torin</td><td>Tocris</td><td>4247</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>VWRSAD2650</td><td></td></tr><tr><td>EBSS</td><td>Biyolojik Endüstriler&nbsp;</td><td>BI02-010-1A</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit (PFA)</td> <td>Sigma</td><td>15812-7</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>&nbsp; A4503</td><td></td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Sigma</td><td>84510</td><td></td></tr><tr><td>LC3 Antikor</td><td>Sigma</td><td>L7543</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Tavşan IgG Alexa Fluor 568</td><td>&nbsp; Invitrogen</td><td>A11011</td><td></td></tr><tr><td>RACK1 Antikoru</td><td>Santa Cruz Biyoteknoloji</td><td>&nbsp; sc-17754</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Fare IgG Alexa Fluor 488</td><td>&nbsp; Invitrogen</td><td>A11001</td><td></td></tr><tr><td>NP-40</td><td>Uygulaması</td><td>A16694.0250</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Klorür</td><td>Uygulaması</td><td>A9242.5000</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum deoksikolat</td><td>Sigma</td><td>30970</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum dodesil sülfat (SDS) Biyokimyasal</td><td></td> <td>A2572</td><td></td></tr><tr><td>Trizma Baz</td><td>Sigma</td><td>T1503</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X&nbsp;</td><td>Applichem</td><td>4975</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum ortovanadat</td><td>Sigma</td><td>450243</td><td></td></tr><tr><td>ATG5 Antikor</td><td>Sigma</td><td>A0856</td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>Applichem</td><td>A4453</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Merkaptoetanol&nbsp;</td><td>Uygulama</td><td>A1108.0250</td><td></td></tr><tr><td>Bromofenol mavisi&nbsp;</td><td>Uygulama</td><td>A3640.0005</td><td></td></tr><tr><td>Yağsız süt</td><td>Uygulama</td><td>A0830</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma</td><td>P5927</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Azid</td><td>Riedel de Haen</td><td>13412</td><td></td></tr><tr><td>Fenol kırmızısı&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>114537-5G</td><td></td></tr><tr><td>anti-tavşan IgG, HRP konjuge</td><td>Jackson İmmüno.&nbsp;</td><td></td><td></td>1110305144</tr><tr><td>Luminol</td><td>Fluka</td><td>9253</td><td></td></tr><tr><td>Kumerik Asit</td><td>Sigma</td><td>C9008</td><td></td></tr><tr><td>Hidrojen Peroksit</td><td>Merck</td><td>K35522500604</td><td></td></tr><tr><td>anti fare IgG, HRP konjuge</td><td>Jackson Immuno.</td><td>115035003</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Aktin Antikoru</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>A5441</td><td></td></tr><tr><td>Normal tavşan serumu</td><td>Santa Cruz Biyoteknoloji</td><td>sc-2027</td><td></td></tr><tr><td>Rapamisin</td><td>Sigma</td><td>&nbsp; R0395</td><td></td></tr><tr><td>Protein A-Agaroz Boncuk</td><td>Santa Cruz Biyoteknoloji</td><td>sc-2001</td><td></td></tr><tr><td>fetal sığır serumu&nbsp;</td><td>Biowest</td><td>S1810-500</td><td></td></tr><tr><td>penisilin / streptomisin çözeltisi</td><td>Biyolojik Endüstriler&nbsp;</td><td>03-031-1B</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamin &</td><td>Biyolojik Endüstriler&nbsp;</td><td>BI03-020-1B</td><td></td></tr><tr><td>Bradford Çözümü</td><td>Sigma</td><td>6916</td><td></td></tr><tr><td>Nitoselüloz membran</td><td>GE Healthcare</td><td>A10083108</td><td></td></tr><tr><td>X-ray Filmleri</td><td>Fujifilm</td><td>47410 19289</td><td></td></tr><tr><td>Proteaz inhibitörü</td><td>Sigma</td><td>P8340</td><td></td></tr></tbody></table>

protein-protein etkileşimlerinin autophagy araştırma çalışma

Study of Protein-protein Interactions in Autophagy Research

Protein-protein etkileşimleri anlayış hücresel sinyal cascades ve tanımlayıcı roman yol bileşenleri ve protein dynamics için önemlidir. Hücresel aktiviteler çoğunluğu proteinler arasındaki fiziksel etkileşim gerektirir. Analiz ve bu etkileşimler eşlemek için Biyoinformatik araçlarını yanı sıra çeşitli deneysel teknikler geliştirilmiştir. Autophagy besin yoksunluğu, kimyasallar ve hipoksi gibi farklı stres ile başa çıkmak hücreleri sağlar mekanizması geri dönüşüm bir cep var. Autophagy ilgili sinyal olayları daha iyi anlamak için ve protein kompleksleri autophagy düzenleyen roman etkenler keşfetmeye, protein-protein etkileşim ekranlar uygulandı. Bu tarama sonuçlar doğrulama ayirt ve immunoprecipitation teknikleri kullanımını gerektirir. Bu sistemde biz keşfetti belirli autophagy kaynaklı protein-protein etkileşimleri Neuro2A içinde test edildi (N2A) ve HEK293T hücre hatları. Kullanılan teknik prosedürler ayrıntılarını bu görüntülenmeyecektir deney yazıda açıklanmıştır.

Şekil 1 ' de ortak bir yerelleştirme örneği bu protokolü kullanarak elde edilen sonuç gösterilir. Bizim son kağıt bir rakam8sunulur. Burada, endojen LC3 kırmızı lekeli iken endojen RACK1 protein yeşille, lekeli. Birleştirilmiş resimlerde görülmektedir Sarı noktalar yeşil ve kırmızı sinyalleri arasında örtüşme siteleri gösterir. Böylece sarı noktalar bu iki proteinlerin kısmi co yerelleştirme temsil eder.
<im...

Sunulan iki antikor tabanlı protein-protein etkileşimi araştırma tekniği vardır: ayirt ve immunoprecipitation. Bu teknikler proteinlerin hücresel sinyal yollar roman bileşenleri keşfi ve anlayış protein dinamikleri arasında fiziksel etkileşimleri çalışmak için uygundur.

Protein-protein etkileşimlerinin Autophagy araştırma çalışma

Protein-protein interactions are important for understanding cellular signaling cascades and identifying novel pathway components and protein dynamics. ...

Benim adım Devrim Gözaçık. Sabancı Üniversitesi'nde (İstanbul, Türkiye), memelilerde otofajinin düzenlenmesi üzerine çalışıyoruz. Otofajiyi düzenleyen farklı proteinlere, yolaklara ve RNA'lara odaklanıyoruz.Otofajiyi incelemek için çeşitli teknikler bulunmaktadır. Keşfettiğimiz farklı yolakları analiz etmek için moleküler biyoloji, biyokimya ve hücre biyolojisi tekniklerini kullanıyoruz. Otofaji yolaklarını analiz etmek amacıyla immünopresipitasyon, immünofloresan teknikleri, konfokal mikroskopi ve diğer çeşitli tekniklerden yararlanıyoruz.Farklı tekniklerin ayrıntıları, karşılaşılan sorunlar ve hata giderme yöntemleri, doktora öğrencim Secil Erbil tarafından açıklanacaktır. İmmünofloresan ve immünopresipitasyon prosedürlerinin genel amacı, bir hücredeki endojen protein-protein etkileşimlerini izlemektir. Bu yöntem, protein-protein etkileşimleri ve bunların hücresel lokalizasyonu hakkındaki temel sorulara yanıt vermenize yardımcı olabilir.Bu tekniklerin temel avantajı, istenen işlem ve koşullar sırasındaki etkileşim yoğunluğunu kontrol grubuyla karşılaştırarak nicel olarak belirleme imkanı sunmalarıdır. Başlangıç olarak, hücreleri tripsin ile ayırın. Ardından, bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın ve hücre konsantrasyonunu hesaplayın.Paketlenmiş ve otoklavlanmış lamelleri alın ve 10 santimetrelik bir Petri kabına yerleştirin. Bu deneyde olduğu gibi, HEK293T gibi kolayca ayrılan bir hücre hattı ile çalışıyorsanız, lamelleri steril filtrelenmiş %0,01'lik poly-L-lysine çözeltisi ile kaplayın. 10 dakikalık inkübasyonun ardından çözeltiyi uzaklaştırın.Tüm poli-L-lizin buharlaşana ve lameller tamamen kuruyana kadar bekleyin. Ardından bunları steril PBS ile yıkayın. 12 kuyucuklu plakaya bir mililitre besiyeri koyun ve lamelleri her bir kuyucuğun içine yerleştirin.Kuyu başına 20.000 hücre ekleyin. Hücrelerin lamlar üzerinde homojen bir dağılım göstermesi için inokülasyon sırasında ve sonrasında plağı sallamak önemlidir. Hücreleri, toplam inkübasyon süresi 48 saati geçmeyecek şekilde istenen ilaç ve kontrol grubu ile işleme tabi tutun.48 saatin sonunda, lam üzerindeki medyumu uzaklaştırın ve hücreleri bir kez PBS ile yıkayın. Ardından, bir çeker ocak altında PBS'yi uzaklaştırın ve hücreleri oda sıcaklığında 20 dakika boyunca %4 PFA ile inkübe ederek sabitleyin. PFA ışığa duyarlı olduğundan, inkübasyon süresi boyunca plakayı alüminyum folyo ile örtün.Ardından PFA'yı uzaklaştırın ve örnekleri üç kez PBS ile yıkayın. Bu adımda, örneklerin kurumasını önlemek için her birini tek tek yıkamak önemlidir. Daha sonra altı kuyucuklu bir plakayı işlem koşullarınıza göre etiketleyin ve her bir kuyucuğu Parafilm ile kapatın.Bu adımda, Parafilm ile kapatma işleminden sonra tabanın pürüzsüz olmasına dikkat edin. Ardından, lamel camlarını altı kuyucuklu plakaya yerleştirin, her bir lamel camının üzerine 100 µL BSA-saponin karışımı ekleyin ve bloklama için buz üzerinde 30 dakika inkübe edin. Sonrasında bloklama solüsyonunu uzaklaştırın ve örnekleri bir kez PBS ile yıkayın.BSA-saponin karışımı içinde bir'e 100 oranında primer antikor hazırlayın ve bu çözeltiden her bir lam üzerine 100 µL ekleyin. Oda sıcaklığında bir saat boyunca inkübe edin. İnkübasyon sırasında, antikorda lamlar üzerinde eşit dağılım sağlamak için plakayı sallamak daha uygundur.Ardından primer antikoru uzaklaştırın ve örnekleri üç kez PBS ile yıkayın. BSA-saponin karışımı içinde 1:500 oranında Alexa Fluor sekonder antikor hazırlayın ve her bir lam üzerine bu solüsyondan 100 µL ekleyin. Alexa Fluor ışığa duyarlı olduğundan, bu adımdan sonra örneklerin karanlıkta tutulması önemlidir.Bu nedenle, altı kuyucuklu plakayı alüminyum folyo ile kapatın ve sarsıcının üzerinde oda sıcaklığında bir saat inkübe edin. Ardından sekonder antikoru uzaklaştırın ve örnekleri üç kez PBS ile yıkayın. Lamları işlem isimleriyle etiketleyin ve Kimwipes kullanarak etanol ile temizleyin.Ardından, her lamın ortasına 10 µL mounting çözeltisi koyun. Bir penset yardımıyla, her bir lamın üzerine lameli yerleştirin. Daha sonra, fazla mounting çözeltisini bir Kimwipe kullanarak nazikçe alın.Öncelikle, her bir lamı dört damla oje ile sabitleyin. Ardından lamı tamamen mühürleyin. Örneği konfokal mikroskop kullanarak analiz edin.Burada, yakın tarihli makalemizden alınan ve bu protokol kullanılarak elde edilen bir kolokalizasyon sonucu örneği görülmektedir. Bu videoda, endojen RACK1 proteini yeşil ile, endojen LC3 ise kırmızı ile boyanmıştır. Merge görüntülerinde ortaya çıkan sarı noktalar, yeşil ve kırmızı sinyallerin üst üste bindiği bölgelerdir.Başka bir deyişle, sarı noktalar bu iki proteinin kolokalizasyonunu temsil etmektedir. İmmünopresipitasyon, protein-protein etkileşimlerini incelemek için yaygın olarak kullanılan bir başka yöntemdir. Başlamak için, her koşul için 15 santimetrelik Petri kaplarına dört milyon HEK293T hücresi ekleyin.Hücreleri, toplam inkübasyon süresi 48 saati geçmeyecek şekilde istenen ilaçlarla muamele edin. 48 saatlik inkübasyonun ardından, hücreleri buz gibi soğuk PBS ile toplayın. HEK293T hücreleri plakadan kolayca ayrılır.Bu nedenle, plakayı pipetleme yoluyla PBS ile yıkamak, tüm hücrelerin ayrılması ve toplanması için yeterlidir. Hücrelerinizi Eppendorf tüplerine toplayın ve dört derecede, maksimum hızda 15 dakika santrifüjleyin. Ardından süpernatanı atın ve hücre peletini pipetleme ile yeniden süspanse ederek bir mililitre PBS ile yıkayın.Ardından tekrar santrifüjleyin ve süpernatantı atın. Sonra hücre peletini, proteaz inhibitörleri içeren RIPA tamponunda yeniden süspanse edin. Süspansiyonu 15 saniye boyunca vorteksleyin ve Eppendorf tüpünü beş dakika boyunca buz üzerinde tutun.Beş dakika boyunca, her beş dakikada bir beş kez vorteksleme işlemini tekrarlayın. Ardından numuneyi, dört derecede, en yüksek hızda 15 dakika boyunca santrifüjleyin. Daha sonra süpernatantı alın ve hücre kalıntılarından tamamen kurtulmak için tekrar santrifüjleyin.Protein lizatlarını 1/50 oranında seyreltin ve boş kontrol, standartlar ve seyreltilmiş örneklerle bir 96 kuyucuklu plaka hazırlayın. Bunları 1/20 oranında Bradford çözeltisi ile karıştırın, karanlıkta 15 dakika bekletin, 595 nanometrede optik yoğunluğu ölçün ve her örnek için absorbans değerlerini kullanarak protein konsantrasyonunu hesaplayın. Ardından antikor bağlanması için boncukları hazırlayın.Bir makas yardımıyla 200 µL'lik ucun kenarını kesin ve her bir koşul için boncuk süspansiyonundan 25 µL alın. Boncukları bir kez PBS ile, bir kez RIPA tamponu ile ve bir kez proteaz inhibitörleri içeren RIPA tamponu ile yıkayın. Son yıkamadan sonra, boncukları proteaz inhibitörleri içeren 300 µL RIPA tamponu içinde yeniden süspande edin ve çöktürmek istediğiniz proteine özgü 1,5 µg antikor ekleyin.Antikor ve boncuk karışımını, döner cihazda dört derecede gece boyunca inkübe edin. İnkübasyon sonrası, boncukları proteaz inhibitörleri içeren RIPA tamponu ile yıkayın ve her koşuldan iki miligram toplam hücre lizatı yükleyin. Toplam hacmi, proteaz inhibitörleri içeren RIPA tamponu ile 300 mikrolitreye tamamlayın ve döner cihazda dört derecede gece boyunca inkübe edin.Ardından boncukları, proteaz inhibitörleri içeren RIPA tamponu ile üç kez yıkayın. Son yıkamadan sonra, daha küçük bir pipet kullanarak boncuklara değmeden tüm süpernatantı almaya çalışın. Daha sonra 10 µL 3X yükleme boyası ekleyin.Ko-immünopresipitasyon deneyinde kontrol edilecek proteinlerin endojen ekspresyonunu denetlemek için, en az 100 mikrogram protein lizatı kullanarak girdi (input) örneklerini hazırlayın. Her örneğe uygun hacimde 3X yükleme boyası ekleyin. IP ve girdi kontrol örneklerini denatüre etmek için 95 derecede 10 dakika boyunca kaynatın.Ardından, proteinleri boyutlarına göre ayırmak için örnekleri santrifüjle çöktürün ve western blot uygulayarak SDS jeline yükleyin. Protein örneklerini SDS jeli üzerinden yürütün ve ardından proteinleri nitroselüloz membranlara aktarın. Islak transfer işlemi tamamlandıktan sonra, nitroselüloz membranı sarsak üzerinde oda sıcaklığında bir saat boyunca %5 yağsız süt çözeltisi ile inkübe ederek bloke edin.Ardından membranı, oda sıcaklığında sallayıcı üzerinde beş dakika boyunca üç kez PBS-Torin çözeltisi ile yıkayın. Membranı, tespit etmek istediğiniz proteine özgü primer antikorda oda sıcaklığında bir saat boyunca inkübe edin. Primer antikorları, kalitelerini kaybetmeden tekrar kullanabilmek için kırmızı çözelti içinde hazırlamayı tercih edebilirsiniz.Primer antikor inkübasyonunun ardından, PBS-Torin yıkama adımlarını üç kez tekrarlayın. Ardından, %5 yağsız süt içinde HRP-konjuge sekonder antikor çözeltisini hazırlayın ve shaker üzerinde oda sıcaklığında bir saat boyunca membranla birlikte inkübe edin. İnkübasyonun ardından yıkama adımlarını tekrar tekrarlayın.Ardından ev yapımı ECL solüsyonunu hazırlayın ve membranı bir kasede yerleştirin. Daha sonra, kapsamlı bir diyagramdaki metinde açıklandığı gibi sabitleme adımlarınızı uygulamaya devam edin. Filmi sabitleyip kuruttuktan sonra, spesifik bandı öngörebilmek için membranın kenarlarına ve protein harfine göre işaretleme yapın.Etkileşimini kontrol etmek istediğiniz tüm proteinler için bu antikor inkübasyon adımlarını ve ardından gelen karanlık oda prosedürlerini tekrarlayın. Daha sonra sonuçları analiz edin. Burada, güncel makalemizden alınan bir endojen immünopresipitasyon sonucu yer almaktadır.Bu videoda, endojen ATG5 proteini çöktürülmüş ve farklı koşullar altında endojen RACK1 ko-immünopresipitasyon seviyeleri kontrol edilmiştir. Bu prosedürleri uygularken, farklı uygulamalar sonucunda nicelleştirilmiş etkileşim seviyelerini toplamak amacıyla, pozitif ve negatif kontrollerle birlikte mümkün olduğunca fazla biyolojik tekrar yapmayı hatırlamak önemlidir. Tüm biyolojik tekrarların verdiği genel tablo, farklı koşullar altındaki etkileşim örüntüsü olarak tanımlanır.Bu videoyu izledikten sonra, protein-protein etkileşimlerinin dinamiklerinin nasıl araştırılacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

study-of-protein-protein-interactions-in-autophagy-research

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Otofaji hücreler protein ve organellerin aşağılamak ve geri dönüşüm sağlayan her yerde bulunan bir süreçtir. Biz görselleştirmek ve küçük ölçmek için gelişmiş floresan mikroskop geçerli, ama autolysosomes içine oluşumu ve autophagosomes ve lizozomlar dağılımı, ve füzyon da dahil olmak üzere otofaji indüksiyon ile ilgili temel, fiziksel değişiklikler,.

Gelişmiş 3D Floresan Mikroskobu kullanılarak Otofaji Kantitatif Analiz

Floresan etiketli otofaji belirteçlerin zaman atlamalı mikroskopi yüksek temporal çözünürlük ile dinamik otofaji yanıt izleme sağlar. 3 farklı renklerin bir kombinasyonu belirli Otofaji ve organel belirteçleri kullanarak, güçlü bir mekansal ve zamansal bağlamda autophagosome oluşumuna bir protein katkısı takip edebilir.

Erken Otofaji Etkinlikler Hücre Görüntüleme Canlı: Omegasomes ve Ötesi

Biz, LC-MS / MS sistemi kullanılarak coregulatory etkileşimi proteinlerinin saflaştırılması için bir yöntem oluşturmuştur.

LC-MS / MS Analizi Nükleer kofaktör ile etkileşimde proteinlerin yüksek verimli belirlenmesi için bir protein Hazırlama Yöntemi

Otofaji aktivasyonu çeşitli hastalıkların önlenmesinde yararlıdır. Fizyolojik yaklaşımlardan biri in vivo otofaji fiziksel egzersiz teşvik etmek. Burada aerobik egzersiz ile Otofaji etkinleştirmek ve farelerde otofaji düzeylerini ölçmek için nasıl gösterir.

Farelerde Aerobik Egzersiz ile Autophagy etkinleştirme

Burada, otofajiyi objektif, kantitatif ve istatistiksel olarak sağlam bir şekilde ölçmek için, 3 autofagy markörün parlak detaylı görüntülerini karşılaştıran ve LC3 nokta sayımı ile birlikte lokalizasyonunu niceleyen analitik bir özelliğe sahip multispektral görüntüleme akış sitometrisi kullanılmıştır.

Multifektral Görüntüleme Akış Sitometrisi Kullanılarak LC3, p62 ve LAMP1 Birlikte Lokalizasyonu Ölçülerek Otofajik Fluxın Değerlendirilmesi

Memeli hücreleri toplu autophagic tutma etkinliği ölçmek için basit ve iyi doğrulanmış bir iletişim kuralı burada açıklanmıştır. Bu yöntem laktat dehidrogenaz (karaciğer) oranı miktarının toplam hücresel karaciğer düzeylere göre sedimentable hücre kesirler dayanır.

Laktat dehidrogenaz haciz tahlil — Toplu Autophagic haciz etkinliğini memeli hücreleri belirlemek için basit ve güvenilir Yöntem

Alan etkili biyosensing (FEB), biyomoleküler etkileşimleri tespit etmek için etiketsiz bir tekniktir. Elektrik akımını, bağlanma hedeflerinin hareketsiz bırakıldığı grafen biyosensörü aracılığıyla ölçer. Hsp90 ve Cdc37 arasındaki biyomoleküler etkileşimleri değerlendirmek için FEB teknolojisi kullanıldı ve iki protein arasında güçlü bir etkileşim tespit edildi.

Moleküler Chaperone Hsp90 ve İstemci Protein Kinaz Cdc37 Arasındaki Biyomoleküler Etkileşimi Alan Etkili Biyosensing Teknolojisini Kullanarak Keşfetmek

Bu protokol, Drosophila melanogaster larva yağ gövdesinde otofajinin besin tükenmesi yoluyla indüklenmesini açıklamakta ve transgenik sinek suşlarını kullanarak otofajideki değişiklikleri analiz etmektedir.

Drosophila melanogaster larva yağ gövdesinde açlığa bağlı otofajinin analizi

Bu protokol, immünofloresan ve ardından görüntü analizi, geçici aşırı ekspresyon hususları ve western blot kullanılarak ATG9A glikozilasyon durumunun araştırılması dahil olmak üzere ATG9A biyolojisinin incelenmesine yardımcı olabilecek çeşitli yöntemleri açıklar.

Çok Kapsamlı Bir Membran Proteini Olan ATG9A'nın Görüntülenmesi

Burada, yarı otomatik, yüksek verimli bir tarama formatında lusiferaz bazlı bir raportör testinin kullanımı için ayrıntılı bir protokol açıklıyoruz.

Otofaji ile İlişkili 4B Sistein Peptidaz İnhibitörleri için Hücre Bazlı İlaç Taraması

Burada, hücre dışı veziküllerde (EV'ler) otofagozom belirteç LC3-II seviyelerini immünoblotlama ile özlü bir şekilde değerlendirmek için metodolojiyi sunuyoruz. EV'lerde, otolizozom oluşumunda ve omegazom oluşumunda LC3-II seviyeleri için analiz, otofagozom-lizozom füzyonu inhibe edildiğinde LC3-II-pozitif EV'lerin salınmasında STX6'nın yeni rolünü göstermektedir.

Hücre İçi LC3 Pozitif Veziküllerin Birikimi ile İlişkili Olarak Hücre Dışı Veziküller Yoluyla LC3-II Salınımının Değerlendirilmesi

Öğrenin, otofaji düzenlemesinde protein-protein etkileşimlerini incelemek için immünofloresan ve immünopresipitasyon tekniklerini kullanın. Bu yöntemler, hücresel sinyal yollarında yeni bileşenlerin keşfedilmesine yardımcı olur.

Protein-protein etkileşimlerinin Autophagy araştırma çalışma

Daha fazla video keşfet