Name: Görünüm-bağlantı noktaları görünür ve kızılötesi ışık şeffaf plastik mikrosıvısal cihazlar üretmek için yumuşak tekniğinde yordamı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: Keşfedin, Fourier dönüşümlü kızılötesi mikrospektroskopi ile uyumlu plastik mikroakışkan cihazların yumuşak teknik kullanılarak üretim yöntemini. Bu protokol, canlı hücre biyokimyasını zarar vermeden incelemeyi kolaylaştırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar MBI maddi destek minnetle kabul etmiş oluyorsunuz.

1. hazırlık silikon birincil kalıp Not: bir photomask için birincil kalıp hazırlanması gereklidir. Photomask, şirket içinde standart optik maskesi imalat işlemleri yoluyla fabrikasyon veya bağımsız sağlayıcılarından satın. Bir photomask parlak alan polarite ile ( Şekil 2 bir) bu durumda kullanılır.
<ol><li>Örüntü tanımını <ol><li>Spin kat 4 inç silikon gofret SU-8 3010 negatif fotorezist 30 2300 RPM ile s.</li>
		<li>Yumuşak-pişir fotorezist 2 min için 65 ° C'de ve ardından 8 dakika süreyle 95 ° C sıcak plaka üzerinde</li>
		<li>UV ışık fotorezist maruz (i-line, 365 nm) 100-120 mJ/cm 2; toplam enerji doz için maske aligner altında photomask ile sabit iletişim modu daha iyi bir çözünürlük elde etmek için tercih edilir.</li>
		<li>Gofret kaldırmak ve bir mesaj pozlama fırında 65 ° c için 1 dakika ve sonra 95 ° C'de 2 dakika süreyle uygulayın</li>
		<li>Oda sıcaklığında SU-8 geliştirici kullanarak fotorezist geliştirmek sonra durulama izopropil alkolle ve yavaşça darbe azot ile kuru; ölçülen desen kalınlığı 10 µm olmalıdır ve altı. Şekil 2 b gerçek silikon kalıp resmini için bkz:.</li>
	</ol></li> <li>Silanization silikon kalıp <ol><li>60 W 30 için silikon kalıp oksijen plazma ile tedavi oksijen akışı 20 sccm bir iyimsersin. İşlemi sırasında 1-10 mbar odası basınç ayarlı.</li>
		<li>Kalıp silane 50 µL vakum bir kavanoza yerleştirin ve kavanoz vakum durumu (1-10 mbar) en az 2 h. için terk 
		Not: PDMS kalıp 15 ' e yapışmasını önler bir hidrofobik yüzey kaplama silanization işlemi oluşturur. Birincil kalıp da silikon kuru gravür içerir alternatif bir yöntem kullanarak sahte olduğu olduğunu unutmayın. Bu durumda, photomask Ters polarite (karanlık alanı) olacak ve adım 1.1 model tanımında bir pozitif fotorezist kullanacak.</li>
	</ol></li></ol> 2. PDMS ikincil kalıp hazırlanması <ol><li><ol>PDMS karıştırma <li>Mix PDMS elastomer ve kür Ajan, 10:1; öyle ki elde edilen PDMS kalınlığı yaklaşık 1-1,5 mm olan toplam tutardır.</li>
		<li>Ayrıntılı karıştırma sonra karışımı bu vakum devlet (1-10 mbar) vakum kavanozda yaklaşık 15dk için terk ederek degas veya görünür hava kabarcığı yok; olana bu karışımı içinde kapana kısılmış herhangi bir hava kaldırmaktır.</li>
	</ol></li> <li>Kalıp çoğaltma <ol><li>Adım 1 fabrikasyon silikon kalıp üzerinde PDMS karışımı dökün ve adım 2.1.2 olduğu gibi aynı ayarlarla herhangi bir kapana kısılmış havayı çıkarmak için karışım degas. Karışım tedavisi için sıcak bir tabak 2 h için 70 ° C ısıda.</li>
		<li>Tedavi PDMS sıcak plaka kaldırmak ve aşağı oda sıcaklığına kadar soğumaya bırakın. PDMS silikon kalıp kenarları boyunca bir tıraş bıçağı ile kesti.</li>
		<li>Bir köşe kesme PDMS cımbız çifti ile pinch ve dikkatle PDMS yineleme silikon kalıp kapalı soyma; ikincil bu kalıp üzerinde elde edilen mikrosıvısal desen birincil kalıp (Ters polarite bir çıkıntı olduğunu Resim 2 c).</li></ol></li> <li>Silanization PDMS çoğaltma (Adım 1.2 aynıdır) <ol><li>60 W 30 için PDMS kalıp oksijen plazma ile tedavi oksijen akışı 20 sccm bir iyimsersin. İşlemi sırasında 1-10 mbar odası basınç ayarlı.</li>
		<li>Bir vakum kalıp silane 50 µL ile jar ve vakum devlet (1-10 mbar) kavanoza en az 2 h. bırakın yer</li>
	</ol></li></ol> 3. PDMS şablonları hazırlanması Not: nesnenin şeklini ve boyutunu son cihazların standartlaştırmak ve ana özellikleri ile uyum içinde iki yarısı kolaylaştırmak için iki ayrı PDMS şablonları, geometri cihazın tanımlamak kullanıldı saydam pencere ve içinde - ve çıkış - let bağlantıları yerleşimi. İlk PDMS şablon aygıt düz yarısı imalatı kolaylaştırmak için ikinci yardımcı olur ise cihazın desenli yarısı imalatı aids.
<ol><li>Tasarım bilgisayar destekli tasarım (CAD) yazılımıyla şablonları. şekil 3 bir lay-out ve cihazın desenli Yarı imal için kullanılan şablon boyutlarını gösterir. Aygıt düz yarısı imal etmek, 1.5 mm çapında delik tasarımından kaldırmak.</li>
	<li>Elde etmek bir dış sağlayıcısından veya bir iç mekanik atölye şablonları kullanılabilir durumdaysa. 
	Not: Akrilik malzeme imalat kolaylığı nedeniyle ve düşük şablon standart herhangi bir atölyede ulaşılabilir mal gibi kullanıldı. 3D baskı gibi alternatif seçenek.</li>
	<li>Mix PDMS elastomer ve kür Ajan 10:1; PDMS Şablonlar tamamen batırmak için yeterli miktarda hazırlamak emin olun.</li>
	<li>Ayrıntılı karıştırma sonra karışımı vakum devlet (1-10 mbar) yaklaşık 15 dk ya vardır kadar (hangisi daha sonraysa) görünür hiçbir kabarcıklar vakum kavanozda bırakarak degas; bu karışımı içinde kapana kısılmış herhangi bir hava kaldırmaktır.</li>
	Onların en üst yüzeyi yaklaşık 1 mm sıvı yüzeyinin altında batık kadar <li>akrilik şablonlarındaki PDMS karışımı dökün. Yine 3.4 olduğu gibi aynı ayarlarla herhangi bir kapana kısılmış havayı çıkarmak için PDMS degas. Bu karışım tedavisi için düzeltilmiş elektrikli Ocak 2 h için 60 ° C'de ısı.</li>
	<li>Tedavi PDMS sıcak plaka kaldırmak ve aşağı oda sıcaklığına kadar soğumaya bırakın. Bir tıraş bıçağı ile akrilik şablonları kenarları boyunca PDMS kes.</li>
	<li>Bir çift cımbız ile bir köşe kesme PDMS çimdik ve dikkatle PDMS akrilik şablonları kapalı soyma. 
	Not: Resim 3 b lay-out ve cihazın desenli Yarı imal eskiden PDMS Yineleme boyutları gösterir.</li>
	<li>İkinci PDMS yineleme düz imalatı için cihazın yarısı yinelenen adımlar 3.3-3.7 ama 1,5 mm çapında delik akrilik şablonu kullanarak hazırlayın.</li>
</ol> 4. Mikrosıvısal cihaz imalat <ol><li>aygıt (örneğin, aygıt yerleşimli) desenli yarısı imalatı <ol><li>tedavi CaF 2 pencere oksijen plazma ile 60 W 30 s 20 sccm oksijen akışı ile. Bu aşağıdaki imalat sırasında NOA akışını artırmak için yapılır. 
		Not: Bu adım zorunlu değildir.</li>
		( şekil 4 bir) <li>yer dikkatle ilk PDMS şablona (1.5 mm çap ayağı ile bir) düz bir yüzey, örneğin, bir soda kireç plaka. Bir CaF 2 pencere üstünde tepe-in PDMS tak merkezli yerleştirin ve Tak ( şekil 4 b) ile iyi iletişim içinde öyle ki pencerenin hafifçe bastırın.</li>
		2. adımda ve arka orta odası ( şekil 4 konumu ile uyumlu kalıp, bir ince UV-şeffaf plaka (Bu durumda, bir kuvars plaka, 500 µm kalınlığında ve 1,5 cm x 1,5 cm boyutunda) yerleştirin PDMS kalıp <li>Al c). kuvars plaka PDMS kalıp ile iyi iletişim içinde olduğundan emin olun. 
		Not: The kuvars plaka engelleyen istenmeyen alan kalıp kolayca CaF 2 pencere ile temas geliyor.</li>
		<li>Yavaşça CaF 2 pencereye doğru CaF 2 pencerenin ortasına hizalanmış sıvı odası ile bu PDMS kalıp ön yüzü aşağı dönük yerleştirin. (Şablon, kalıp ve pencere) tüm öğeleri iyi temas halinde ve ( şekil 4 c-4 d) uyumlu olduğundan emin olun.</li>
		<li>Yavaş yavaş NOA damla izin PDMS şablonun içinde dağıtmak ve yavaş yavaş boşluğu doldurmak sağlar. Reçine pencerenin kenarına temas olduğunda, kılcal damar akışı PDMS kalıp CaF 2 penceresi ( şekil 4 e-4f) arasında ince boşluk (~ 10 µm) dolduracaktır.</li>
		Kavite tamamen dolu sonra <li>UV ışık (örneğin, bir UV LED pozlama sistemi, şekil 4 g ile) maruz NOA tedavisi. 
		Not: Buna göre pozlama süresi değişebilir UV kaynak enerji ile. 90 civarında 24 mW/cm 2 güç yoğunluğu sağlar, UV-LED pozlama sistemi gerektirir s % 100 güç ve sürekli pozlama modu.</li>
		<li>Dikkatli bir şekilde ince kuvars plaka PDMS kalıp arkasından çıkarın ve sonra yavaşça NOA Katmanı ( şekil 4 h) üst PDMS kalıp soyma. Son olarak, NOA katman PDMS şablonundan ( şekil 4 ben) kaldırın. 
		Not: Elde edilen cihaz düzen tedavi NOA üzerinde birincil silikon kalıp desen aynı polarite olurdu.</li>
	</ol></li> <li>(Yani, aygıt düzeni olmadan) aygıt düz yarısı imalatı <ol><li>oksijen plazma 60 W 30 ile CaF 2 pencere tedavi s 20 sccm oksijen akışı ile. 
		Not: Bu adım zorunlu değildir.</li>
		<li>Dikkatle ikinci PDMS şablonu (bir 1.5 mm çap ayağı olmadan) yer düz bir yüzey, örneğin, bir soda kireç plaka üzerinde. Bir CaF 2 pencere üstünde tepe-in PDMS tak merkezli yerleştirin ve fişi ile iyi iletişim içinde öyle ki pencerenin hafifçe bastırın.</li>
		<li>5 cm x 3,5 cm boyut ile 1 mm kalınlığında PDMS sac PDMS şablon Merkezi'yle uyumlu PDMS levha ile CaF 2 pencere üstünde tepe-in yer. PDMS sayfası penceresi ile iyi iletişim içinde olduğundan emin olun.</li>
		<li>Yavaş yavaş NOA damla izin PDMS şablonun içinde dağıtmak ve yavaş yavaş boşluğu doldurmak izin.</li>
		Kavite tamamen dolu sonra <li>UV ışık (örneğin, bir UV LED pozlama sistemi ile) maruz NOA tedavisi. 
		Not: Buna göre pozlama süresi değişebilir UV enerji kaynağı ile. 24 mW/cm 2 güç yoğunluğu sağlar, UV-LED pozlama sistemi ile bu 50 civarında gerektirir s % 100 güç ve sürekli pozlama modu.</li>
		<li>Peel off NOA katmanın üst PDMS sacdan ve dikkatle tedavi NOA kat PDMS şablondan kaldırmak.</li>
	</ol></li> <li>Cihazın iki yarısı bağ <ol><li>öyle ki her iki CaF 2 windows uyumlu aygıt iki yarısı hizalayın. Yavaşça parmak-NOA katmanları köşesinde iki yarıyı da öyle ki iki yarısı konumunu sabit basın.</li>
		<li>Bir 8 mm çap zımba ( şekil 5 bir) kullanarak 1 mm kalınlığında PDMS sac dışında iki adet dairesel diskler kesti.</li>
		<li>Aygıt (4 cm x 2,5 cm) aynı boyutta iki dikdörtgenin bir 1 mm kalınlığında PDMS sac kesme. Her iki PDMS dikdörtgenler kanallar ve içinde-let/çıkış-let cihazın karşılık gelen açıklıklar kesti. 
		Not: Kanal acil sırasında çöken önlemek için PDMS dikdörtgenler önceden kesilmiş açıklıklar içindir.</li>
		<li>Yığın aşağıdaki sipariş alt: önceden kesilmiş açıklıklar olan bir PDMS dikdörtgen, tek bir PDMS disk (temas adım 4.3.2 kesmek belgili tanımlık alt pencere,), cihazın (en üst pencere üzerinde oturan), ikinci PDMS disk iki parmak preslenmiş yarısı ve son olarak İkinci PDMS dikdörtgen ile önceden kesilmiş açıklıklar ( şekil 5 b).</li>
		<li>Öyle ki 2 tabak arasında gözükeceksin vakum basın kurulumunda bu derleme yerleştirin ve plastik torba ( şekil 5 c) mühür. Vakum pompası açmak ve derleme tahliye edin. Vakum pompası onun temel basınç ulaşmak veya vakum en az 10 dakika süreyle geçerli izin 
		Not: elde temel basınç vakum pompası kullanılan ve plastik poşet conta kalitesini bağlıdır.</li>
		<li>UV 270 W 15 dk. çevirmek için vakum pompası ve yavaş yavaş derleme delik derleme son aygıttan kaldırmadan önce atmosferik basınç için izin, bir geniş bant Hg gaz lambalı tahliye derlemeye maruz.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Holman, H. -Y. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchrotron+infrared+spectromicroscopy+as+a+novel+bioanalytical+microprobe+for+individual+living+cells%3A+cytotoxicity+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22BIOMEDO%22%5BJournal%5D)">Synchrotron infrared spectromicroscopy as a novel bioanalytical microprobe for individual living cells: cytotoxicity considerations.</a> BIOMEDO. 7 (3), 417-424 (2002).</li>
<li>Liu, K. Z., Xu, M., Scott, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomolecular+characterisation+of+leucocytes+by+infrared+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Biomolecular characterisation of leucocytes by infrared spectroscopy.</a> Br J Haematol. 136 (5), 713-722 (2007).</li>
<li>Moss, D. A., Keese, M., Pepperkok, R. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/journal/09242031/38">IR microspectroscopy of live cells.</a> Vibrational Spectroscopy. 38 (1-2), 185-191 (2005).</li>
<li>Rahmelow, K., Hubner, W. <a target="_blank" href="https://www.osapublishing.org/as/abstract.cfm?uri=as-51-2-160">Infrared Spectroscopy in Aqueous Solution: Difficulties and Accuracy of Water Subtraction.</a> Appl Spectrosc. 51 (2), 160-170 (1997).</li>
<li>Kazarian, S. G., Chan, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ATR-FTIR+spectroscopic+imaging%3A+recent+advances+and+applications+to+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">ATR-FTIR spectroscopic imaging: recent advances and applications to biological systems.</a> Analyst. 138 (7), 1940-1951 (2013).</li>
<li>Loutherback, K., Chen, L., Holman, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-channel+microfluidic+membrane+device+for+long-term+FT-IR+spectromicroscopy+of+live+adherent+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Open-channel microfluidic membrane device for long-term FT-IR spectromicroscopy of live adherent cells.</a> Anal Chem. 87 (9), 4601-4606 (2015).</li>
<li>Loutherback, K., Birarda, G., Chen, L., Holman, H. -Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+approaches+to+synchrotron+radiation-based+Fourier+transform+infrared+%28SR-FTIR%29+spectral+microscopy+of+living+biosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Pept+Lett%22%5BJournal%5D)">Microfluidic approaches to synchrotron radiation-based Fourier transform infrared (SR-FTIR) spectral microscopy of living biosystems.</a> Protein Pept Lett. 23 (3), 273-282 (2016).</li>
<li>Dousseau, F., Therrien, M., Pézolet, M. <a target="_blank" href="https://www.osapublishing.org/as/abstract.cfm?uri=as-43-3-538">On the Spectral Subtraction of Water from the FT-IR Spectra of Aqueous Solutions of Proteins.</a> Appl Spectrosc. 43 (3), 538-542 (1989).</li>
<li>Tobin, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924203110000299">FTIR spectroscopy of single live cells in aqueous media by synchrotron IR microscopy using microfabricated sample holders.</a> Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 34-38 (2010).</li>
<li>Birarda, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924203110000184">Infrared microspectroscopy of biochemical response of living cells in microfabricated devices.</a> Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 6-11 (2010).</li>
<li>Vaccari, L., Birarda, G., Businaro, L., Pacor, S., Grenci, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infrared+microspectroscopy+of+live+cells+in+microfluidic+devices+%28MD-IRMS%29%3A+toward+a+powerful+label-free+cell-based+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Infrared microspectroscopy of live cells in microfluidic devices (MD-IRMS): toward a powerful label-free cell-based assay.</a> Anal Chem. 84 (11), 4768-4775 (2012).</li>
<li>Mitri, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SU-8+bonding+protocol+for+the+fabrication+of+microfluidic+devices+dedicated+to+FTIR+microspectroscopy+of+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">SU-8 bonding protocol for the fabrication of microfluidic devices dedicated to FTIR microspectroscopy of live cells.</a> Lab Chip. 14 (1), 210-218 (2014).</li>
<li>Birarda, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IR-Live%3A+fabrication+of+a+low-cost+plastic+microfluidic+device+for+infrared+spectromicroscopy+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">IR-Live: fabrication of a low-cost plastic microfluidic device for infrared spectromicroscopy of living cells.</a> Lab Chip. 16 (9), 1644-1651 (2016).</li>
<li>Wehbe, K., Filik, J., Frogley, M. D., Cinque, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+optical+substrates+on+micro-FTIR+analysis+of+single+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Bioanal+Chem%22%5BJournal%5D)">The effect of optical substrates on micro-FTIR analysis of single mammalian cells.</a> Anal Bioanal Chem. 405 (4), 1311-1324 (2013).</li>
<li>Helmut, S., et al. <a target="_blank" href="http://iopscience.iop.org/article/10.1088/0957-4484/16/5/007/meta">Controlled co-evaporation of silanes for nanoimprint stamps.</a> Nanotechnology. 16 (5), 171(2005).</li>
<li>Loewen, E. G., Popov, E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLoewen%2C+EG+%22Diffraction+Gratings+and+Applications%22">Diffraction Gratings and Applications</a>. , Taylor, Francis. (1997).</li>
<li>Technical Note: Optical Materials. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.newport.com/n/optical-materials">https://www.newport.com/n/optical-materials</a> (2017).</li>
<li>Cai, D., Neyer, A., Kuckuk, R., Heise, H. M. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022286010002814">Raman, mid-infrared, near-infrared and ultraviolet-visible spectroscopy of PDMS silicone rubber for characterization of polymer optical waveguide materials.</a> J Mol Struc. 976 (1-3), 274-281 (2010).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Değerlendirmek ve imalat protokolü en iyi duruma getirmek için biz basit bir düzeni üzerinde ana devre ayrılmış mikrosıvısal desen bir büyük dikdörtgen Odası (5 x 2.5 mm boyut) Merkezi, iki küçük dikdörtgen chambers (5,5 x 0,75 mm boyut) için kullanılan alt ve üst kenarları ve 300 µm geniş içinde-let/çıkış-let kanal. Orta Odası tohum için kullanılır ve gözlem FTIR sırasında hava arka plan ölçmek için iki ayrı daha küçük Odalar ise hücre başvurusu odası bir önceki yayın13' te anlatıldığı gibi deney...

Fourier Transform Infrared Spectro-mikroskobu (FTIR) kapsamlı bir örnek ayrıntılı kimyasal bilgi sağlamak için bir etiket içermeyen ve non-invaziv görüntüleme tekniği kullanılmıştır. Bu biyolojik örnekleri, örnek soğurma spektrumu onun kimyasal bileşimi1 içsel parmak taşıyan bu yana hazırlık en az miktarda kimya okumak için biyokimyasal bilgilerini çıkarma sağlar , 2. son zamanlarda, FTIR giderek canlı biyolojik örnekleri, örneğin, hücreleri3çalışma uygulandı. Ancak, çoğu durumda Canlı hücreler için orta su IR orta bölgede güçlü bir Absorbans gösterir. Hatta ince bir tabaka varlığını tamamen önemli yapısal bilgiler örneklerin aşabilir.
Uzun yıllar boyunca, ortak yaklaşım düzeltmeye veya tamamen su emme sinyal spektrumda dışlamak için örnekleri kurutma. Ancak, bu yaklaşım canlı hücreler, gerçek zamanlı ölçümler için değişikliği onların kimyasal bileşimi ve zamanla hücresel süreçler çalışması için gerekli olan izin vermez. Az 10 µm4IR kiriş orta toplam optik yol uzunluğunu sınırlamak için güvenilir soğurma spektrumları canlı biyolojik örneklerinden elde etmenin bir yolu var.
Yaşam köklü bir yaklaşımda hücre deneyleri yapılmış çok çok zayıflatılmış toplam yansıma (ATR)-bağımsız Sulu orta kalın bir katman içinde sürekli olabilir hücreleri sağlayan örnek kalınlığı ölçümleri sağlayan FTIR görüntüleme. Ancak, penetrasyon fani dalgasının küçük derinliği ölçümleri örnekleri için yalnızca ilk birkaç mikron ATR kristal5yüzeyinden kısıtlar.
Alternatif olarak, su emme sınırlama genellikle iki büyük gruba ayrılır çeşitli mikrosıvısal sistemleri ortaya çıkması ile hile: açık kanal (nerede bir sıvı yüzeylerin maruz atmosfer) ve kapalı Kanal (nerede iki IR şeffaf pencere ayırıcı tarafından tanımlanmış kalınlığı ile ayrılır).
Loutherback ve ark. uzun vadeli sürekli IR ölçümleri için 7 gün6canlı hücrelerin sağlayan bir açık-kanal membran aygıt geliştirdi. Yöntem Orta hücre yüzeyinden buharlaşma önlemek için ortamda yüksek nem gerektirir. Sistem en iyi epitel dokular, deri, akciğer ve gözleri veya mikrobiyal biyofilmler7gibi hava-sıvı arabirimleri, doğal olarak yetiştiği hücreleri ile çalışır.
Kapalı-kanal yapılandırma bir Tekdüzen, ince tabaka hücreleri kendi sulu ortamda nerede tutulur iki paralel IR saydam pencereler arasında yaratmayı amaçlamaktadır. Bu boşluğu kalınlığı doygunluk su emme sinyaldir böyle olduğunu. Su arka plan sonra doğru örnek spectra elde etmek için düşülen. Kapalı-kanal yöntemlerin çoğu Demontabl sıvı odası3,8,9formu iki pencere ayıran plastik çıta kullanmaktadır. Bu yöntemin bir avantajı microfabrication gerektirmez olduğunu; Ancak, daha karmaşık bir ölçüm odası - ve çıkış - let kanalları ile daha ince çıta gerçekleştirmek son derece zor yapılardır. Mekanik kilitleme üzerinde güven nedeniyle IR ölçümleri arasında yol uzunluğu tekrarlanabilirlik ile ilgili bir sorun vardır. Daha güvenilir bir spektrum edinme için aralığı daha kesin bir denetim sağlamak için optik litografi yöntemleri için desen fotorezist spacer9,10 tanımlamak için IR substrat üzerine uygulanmıştır , 11 , 12. bu boşluk ekleyici tanımlanması için daha karmaşık yapılar sağlar rağmen yöntem her yüzey üzerinde desen üretmek için bir microfabrication tesis erişmesi gereken.
Bu yazıda, biz mal imalat azaltmak için amaç ve microfabrication tesis erişme gereksinimi ile basit imalat tekniği IR uyumlu mikrosıvısal aygıtının, mevcut. Yöntem burada yumuşak litografi bilinen kurulan bir işlem (bkz. şekil 1) kullanır sundu. İki kalıpları bu durumda gerekli değildir. Birincil kalıp standart bir UV litografi işlemiyle bir 4-inç silikon gofret yapılır. İkincil kalıp desen Ters polarite silikon birincil kalıp ve sonraki aygıt imalat için Ana kalıp olarak hizmet veren PDMS yapılmış onun yinelemedir.
Cihaz iki ayrı katmanları vardır: ilk katman (hangi sunulan çantayı mikrosıvısal kanal, içinde-/ out bırak ve bir gözlem odası bir CaF2 görüntüleme çerçevesi ile oluşan) mikrosıvısal düzeni ve bir düz yüzey (ile ikinci bir katman ki sadece bir CaF2 viewport oluşur).
Burada bir UV tedavi edilebilir optik yapıştırıcı, Norland optik yapıştırıcı 73 (NOA73, bundan böyle NOA kısaltılır), cihazın plastik ana gövdesini oluşturur için kullanılır. Bu optik yapıştırıcı kullanmanın bir çok avantajı vardır: düşük üretim maliyeti, dış sistemleri, iyi optik şeffaflık, düşük viskozite ve en önemlisi, Biyouyumluluk13bağlantı kolaylığı. CaF2 Biyouyumluluk ve mükemmel IR-saydamlık14nedeniyle görüntüleme çerçevesi olarak uygun bir seçim var.
Bu yeni yaklaşım ile bir microfabrication tesise erişim kesinlikle sadece birincil kalıp imalatı için gereklidir. Sonraki imalat işlemleri plastik mikrosıvısal aygıt için bir UV-aydınlatma kaynağı ile donatılmış herhangi bir laboratuvar yapılabilir.

<table><tbody><tr><td><güçlü > Kimyasal< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Trikloro (1H, 1H, 2H, 2H-perflorooktil) silan% 97</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>448931-10G</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 Silikon Elastomer Kiti</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Polidimetilsiloksan veya kısacası, PDMS</td></tr><tr><td>Norland Optik Yapıştırıcı 73</td><td>Norland Ürünleri A.Ş.</td><td>7304</td><td></td></tr><tr><td>SU8 3010 fotorezist</td><td>MicroChem</td><td>Y311060</td><td></td></tr><tr><td>SU8 geliştirici</td><td>MicroChem</td><td>Y020100</td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Malzeme</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silikon gofret, 4 inç, birinci sınıf</td><td>Bonda Technology Pte Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CaF2 IR sınıfı pencereler</td><td>Crystran, İngiltere</td><td>CAFP10-1</td><td>10 mm çap, 1 mm kalınlık</td></tr><tr><td>Akrilik şablonlar</td><td></td><td></td><td>Özel yapım</td></tr> <tr><td>< güçlü > Ekipman < / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV-KUB 2 (UV LED maruz kalma sistemi)</td> <td>KLOE</td><td></td><td>Emisyon spektrumu 365nm ve artı; 5nm</td></tr><tr><td>Newport UV lambası</td><td>Newport</td><td>Model 66902</td><td>50-500 Watt Hg ark lambası</td></tr><tr><td>CEE Spin kaplayıcı</td><td>Brewer Bilim</td><td>Modeli 200x</td><td></td></tr><tr><td>MJB4 maske hizalayıcı</td><td>SUSS MicroTec</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hassas dijital sıcak plaka</td><td>Harry Gestigkeit GmbH</td><td>2860SR</td><td></td></tr><tr><td>Plazma Yüzey Teknolojisi</td><td>Diener Electronic GmbH + Co. KG</td><td></td><td>O2 plazma tedavisi için</td></tr><tr><td>IDP-3 Kuru Scroll Vakum Pompası</td><td>Agilent Technologies</td><td></td><td>nihai basınç 3,3 x 10-1 mbar</td></tr><tr><td>Bruker IFS 66v/s FTIR Spektrometresi</td><td>Bruker</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

görünüm-bağlantı noktaları görünür ve kızılötesi ışık şeffaf plastik mikrosıvısal cihazlar üretmek için yumuşak tekniğinde yordamı

Soft Lithographic Procedure for Producing Plastic Microfluidic Devices with View-ports Transparent to Visible and Infrared Light

Kızılötesi (IR) spectro-mikroskobu yaşayan biyolojik örneklerin uygun mikrosıvısal aygıtları eksikliği ve su emme IR orta aralıktaki tarafından engel oluyor. Burada, plastik mikrosıvısal cihazları imalatı için bir protokol gösterdi, nerede yumuşak tekniğinde teknikleri şeffaf kalsiyum florür (CaF2) görünümü-ports gözlem chamber(s) ile bağlantılı olarak gömmek için kullanılır. Bu yöntem nereye polydimethylsiloxane (PDMS) kalıp standart tekniğinde işlemleri yoluyla üretilen ve sonra plastik bir cihaz üretmek için şablon olarak kullanılacak bir yineleme döküm yaklaşım, dayanır. Plastik Cihaz özellikleri ultraviyole/görünür/kızılötesi (UV/Vis/IR) - şeffaf pencere ile doğrudan gözlem için izin vermek için CaF2 görünür hale ve IR ışık. Önerilen yöntem avantajları şunlardır: plastik vücuda esneklik tasarım, bir temiz oda mikro-üretim tesisi, birden çok görünüm-bağlantı noktaları, kolay ve çok yönlü bağlantınız için bir dış pompalama sistemi erişmek için sınırlı bir ihtiyaç Örneğin , açık/kapalı kanal yapılandırma ve nanoporous membran gibi gelişmiş özellikler eklemek olanağı.

Şekil 6 , yepyeni bir CaF2 penceresinin cihaz ve tam aygıt desenli yarısı geçirgenliği spectra sunar. Tüm üç spectra geçirgenliği % 80'den daha büyük ile orta IR mükemmel şeffaflık sergi. Kesişim deseni tam aygıt (sarı eğrideki rakam) spektrum görünür iki pencere arasında 9-10 µm yelpazesi içinde hava boşluğu nedeniyle oluşur. Burada sunulan imalat yaklaşım CaF2 orta IR aralıktaki saydamlığını değiştirmez bu spectra göstermektedir.
<...

Plastik mikrosıvısal cihazları imalatı için bir protokol ile şeffaf görünümü-liman görünür ve kızılötesi ışık görüntüleme için tanımlanır.

Görünüm-bağlantı noktaları görünür ve kızılötesi ışık şeffaf plastik mikrosıvısal cihazlar üretmek için yumuşak tekniğinde yordamı

Infrared (IR) spectro-microscopy of living biological samples is hampered by the absorption of water in the mid-IR range and by the lack of suitable ...

Bu mikrofabrikasyon protokolünün genel amacı, Fourier dönüşümlü kızılötesi mikro spektroskopi ile uyumlu plastik mikroakışkan cihazları basit ve uygun maliyetli bir şekilde üretmektir. Bu yöntemler, hücresel biyokimyanın kapsamlı bir şekilde anlaşılmasına yardımcı olabilir. Bu yöntemler, canlı hücrelerin biyokimyasal haritalarını çıkarabilen, etiketsiz ve zarar vermeyen bir görüntüleme tekniği olan kızılötesi mikro spektroskopiye kolaylaştırılmış erişim sağlar.Bu tekniğin temel avantajı, mikro-fabrikasyon tesislerine erişim ihtiyacını azaltması ve nihai cihazlar için ana bileşen olarak plastik kullanmasıdır. Prosedürü laboratuvarımızdan araştırma görevlisi Mona Suryana uygulamalı olarak gösterecektir. Bu prosedüre başlamak için, metin protokolünde belirtildiği şekilde silikon birincil kalıbı hazırlayın.Ardından, PDMS elastomer ve kürleme ajanını 10'a 1 oranında karıştırın. Karıştırılan toplam miktar, elde edilen PDMS'in yaklaşık 1 ila 1,5 milimetre kalınlığında olacağı şekilde ayarlanır. İyice karıştırdıktan sonra, karışımı bir vakum kavanozuna aktarın.Basıncı 1 ile 10 millibar arasına düşürün. Karışımın gazını gidermek için 15 dakika veya görünür kabarcık kalmayana kadar bekleyin. Gazı giderilmiş PDMS'yi hazırlanmış silikon kalıba dökün.Kalıbı vakum kavanozuna aktarın ve karışımı bir kez daha gazdan arındırmak için basıncı 15 dakika boyunca düşürün. Ardından kalıbı bir ısıtıcı tabla veya fırına aktarın. Karışımın kürlenmesi için kalıbı 70 °C'de iki saat boyunca ısıtın.Kürlenmiş PDMS'yi ısı kaynağından çıkarın ve oda sıcaklığına gelene kadar soğumaya bırakın. Silikon kalıbın kenarları boyunca PDMS'yi kesmek için bir jilet kullanın. Bir cımbız yardımıyla bir köşesini tutun ve PDMS replikasını silikon kalıptan dikkatlice soyun.Ardından, PDMS kalıbını bir plazma temizleyiciye aktarın. Oda basıncını 1 ile 10 milibar arasına ayarlayın ve PDMS kalıbını 60 watt gücünde, 20 SCCM oksijen akışıyla 30 saniye boyunca oksijen plazması ile işleme tabi tutun. Bundan sonra kalıbı bir vakum kavanozuna yerleştirin ve yaklaşık 50 microliters silan ekleyin.Kavanozu iki saat boyunca vakum durumunda bırakın. Başlamak için, metin protokolünde belirtildiği gibi akrilik şablonlar tasarlayın veya edinin ve bu prosedürün başlangıcında gösterildiği gibi PDMS elastomer ve kürleme ajanını hazırlayın. Gazı alınmış PDMS karışımını, en üst yüzey sıvı yüzeyinin yaklaşık bir milimetre altında kalacak şekilde akrilik şablonların üzerine dökün.Ardından, daldırılmış kalıpları bir vakum kavanozuna aktarın. PDMS'i daha önce uygulanan sürecin aynısını kullanarak gazdan arındırın. Daha sonra daldırılmış kalıpları bir ısıtıcı plakaya veya fırına aktarın.Karışımı kürlemek için 60 °C'de iki saat boyunca ısıtın. Kürlenmiş PDMS'yi ısı kaynağından çıkarın ve oda sıcaklığına soğumasını bekleyin. Bir jilet kullanarak PDMS'yi akrilik şablonların kenarları boyunca kesin.Ardından, bir cımbız yardımıyla bir köşeyi tutun ve PDMS'i dikkatlice soyun. Bundan sonra, metin protokolünde belirtildiği gibi ikinci PDMS replikasını hazırlayın. Cihazın desenli yarısının imalatına başlamak için, bir kalsiyum florür pencereyi 20 SCCM oksijen akışıyla, 60 watt'ta 30 saniye boyunca oksijen plazması ile işleme tabi tutun.Küçük sütunların bulunduğu ilk PDMS şablonu dikkatlice düz bir yüzeye yerleştirin. Ardından, işlem görmüş kalsiyum florür penceresini şablonun merkezine yerleştirin. Pencerenin PDMS ile tamamen temas ettiğinden emin olmak için hafifçe bastırın.Ardından, PDMS kalıbın arka tarafına, merkezi odacığın konumuyla hizalı olacak şekilde UV şeffaf bir plaka yerleştirin. PDMS ile tam temas sağlandığından emin olmak için hafifçe bastırın. Kalıbı, akışkan desenli yüzeyi aşağıya bakacak ve akışkan odacığı pencerenin merkezine hizalanmış olacak şekilde PDMS şablonunun üzerine yerleştirin.Ardından, PDMS şablonun giriş kısmına yavaşça damlalar halinde NOA ekleyin. NOA'nın boşluğu yavaşça doldurmasını bekleyin. Boşluk tamamen dolduktan sonra, kalıbı UV ışığına maruz bırakarak NOA'yı kürleyin.UV geçirgen plakayı kalıptan dikkatlice çıkarın. PDMS kalıbı NOA tabakasının üzerinden nazikçe soyun. Ardından NOA tabakasını çıkarın.Cihazın düz yarısını imal etmeye başlamak için, kalsiyum florür penceresini 20 SCCM oksijen akışıyla, 60 watt gücünde 30 saniye boyunca oksijen plazmasına tabi tutun. Küçük sütunların bulunmadığı ikinci PDMS şablonunu dikkatlice düz bir yüzeye yerleştirin. İşlem görmüş kalsiyum florür penceresini şablonun merkezine yerleştirin.Pencerenin PDMS ile tam temas ettiğinden emin olmak için hafifçe bastırın. Ardından beş santimetre çarpı 3,5 santimetre boyutlarında, bir milimetre kalınlığında bir PDMS tabakası temin edin. Bu tabakayı, şablonun merkeziyle hizalayarak kalsiyum florür pencerenin üzerine yerleştirin.Sayfanın pencereyle tam temas ettiğinden emin olmak için hafifçe bastırın. PDMS şablonun giriş kısmına kademeli olarak NOA damlatın. NOA'nın boşluğu yavaşça doldurmasını sağlayın.Kavite tamamen doldurulduktan sonra, kalıbı UV ışığına maruz bırakarak NOA'yı kürleyin. PDMS tabakasını soyun. Ardından, kürlenmiş NOA tabakasını PDMS şablonundan dikkatlice çıkarın.Cihazın bir yarısını, kalsiyum florür pencereler hizalı olacak şekilde diğerinin üzerine yerleştirin. İki yarının konumunu sabitlemek için NOA katmanlarının köşelerine nazikçe bastırın. Ardından, metin protokolünde belirtildiği şekilde PDMS disk ve dikdörtgenler hazırlayın.PDMS diskleri cihazın ilgili açıklıklarına yerleştirin. Ardından, önceden kesilmiş açıklıklara sahip PDMS dikdörtgenleri her bir yanın üzerine yerleştirin. Tüm düzeneği iki plaka arasına sıkıştırarak vakum presine aktarın.Ardından, plastik torbayı mühürleyin. Tertibatın havasını boşaltmak için vakum pompasını çalıştırın ve en az 10 dakika boyunca çalışmasına izin verin. 270 watt'lık bir geniş bantlı cıva buhar lambası kullanarak, havası boşaltılmış tertibatı 15 dakika boyunca UV ışığına maruz bırakın.Bundan sonra, vakum pompasını kapatın ve son cihazı düzeneğe ayırmadan önce düzeneğin yavaşça atmosferik basınca tahliye edilmesini sağlayın. Bu prosedürde, görünür ve kızılötesi ışığa karşı şeffaf görüntüleme pencerelerine sahip plastik bir mikroakışkan cihaz üretilmektedir. Ardından, yepyeni bir kalsiyum florür penceresini, üretilen cihazın yarısını ve tamamlanmış cihazı karşılaştırmak için geçirgenlik spektrumları elde edilir.Görüldüğü üzere, üçü de orta kızılötesine kadar %80'in üzerinde bir geçirgenlik sergileyerek bu aralıkta yüksek derecede şeffaflığa sahip olduklarını göstermektedir. Tüm cihaz için elde edilen spektrum, iki pencere arasındaki hava boşluğunun neden olduğu bir girişim deseni sergilese de, bu spektrumlar fabrikasyon sürecinin kalsiyum florür pencerelerin orta kızılötesi aralığa kadar olan şeffaflığını değiştirmediğini kanıtlamaktadır. Uzmanlaşıldığında, bu teknik; doğru şekilde uygulandığı ve gerekli şablonlar ile kalıplar hazır olduğu takdirde bir saat içinde tamamlanabilir.Bu videoyu izledikten sonra, PDMS ile replika kalıplama ve UV ile kürlenebilen reçinelerle kılcallıkle doldurma işlemi kullanarak Fourier dönüşümlü kızılötesi spektroskopisi ile uyumlu plastik mikroakışkan cihazların nasıl üretileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Silan ve UV ışığı ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın; bu prosedürü gerçekleştirirken her zaman prosedüre dayalı risk değerlendirmeleri yapın ve uygun kişisel koruyucu ekipman kullanın.

soft-lithographic-procedure-for-producing-plastic-microfluidic

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Mikroakışkan cihazlar gerçek zamanlı olarak ve uygun fiziksel ölçeklerde karmaşık doğal süreçler görselleştirmek için kullanılabilir. Biz yeraltı bakteri büyüme ve taşımacılık eğitimi için doğal gözenekli ortamın temel özellikleri taklit basit bir mikroakışkan cihaz geliştirdik.

Gözenekli Ortam Mikrobiyal Ulaştırma incelenmesi için basit mikroakışkan Sistemleri: Mikrodünya Pencere

Kaynak: Kurz, D. L. ve diğerleri. Gözenekli ortamlarda biyotıkanmayı incelemek için mikrofluidik platform. J. Vis. Exp. (2022)Video, biyofilm oluşumunu incelemek için mikrofluidik cihazın kullanıldığını gösteriyor. Mikrokanala bakteriyel bir süspansiyon getirilir ve ardından biyofilm gelişimi için kuluçka yapılır. Akış daha sonra yeniden başlatılır ve basınç izleme ile görüntüleme kullanılarak biyofilm oluşumu ve gözenek tıkanıklığı zamanla tespit edilir.

Biyofilm oluşumu sırasında gerçek zamanlı görüntüleme ve basınç takibi için mikrofluidik bir cihaz

Burada, yüksek verimli tek hücre izolasyonu ve uzun süreli klonal kültüre izin vermek için yeni bir mikro kuyu tasarım konseptini kullanan mikroakışkan bir platformla tek hücreleri izole etmek ve kültürlemek için bir protokol sunuyoruz.

Yüksek verim Tek hücreli İzolasyonu ve Kültür mikroakışkan Platformu

Çok katmanlı mikroakışkan cihazlar genellikle işlevsellik için karmaşık geometrilere sahip ana kalıpların imalatını içerir. Bu makale, herhangi bir uygulamaya ayarlanabilen valfler ve değişken yükseklik özellikleri ile çok adımlı fotolitografi için eksiksiz bir protokol sunar. Bir gösteri olarak, hidrojel boncuklar üretebilen bir mikroakışkan damlacık jeneratörü üretiyoruz.

Ventilli Katmanlı mikroakışkan Cihazlar için çok adımlı Değişken Yükseklik Fotolitografi

Bu yordamı, kolay ve hızlı bir mikrosıvısal aygıt ile özelleştirilebilir geometri ve petrol kurtarma çalışmaları için organik sıvılar tarafından şişme direnç üretmek için hedeftir. Bir polydimethylsiloxane kalıp ilk oluşturulan ve epoksi esaslı aygıt döküm için kullanılır. Bir temsilci deplasman çalışma bildirilmektedir.

Gözenek çaplı olay süreçleri gözenekli ortamda petrol kurtarma uygulamaları için karakterize için mikrosıvısal aygıtlar

Bu iletişim kuralı kez mikro eşleşmeyen Kırılma endeksi nedeniyle microchannel yapıları ve sulu bir çözüm arasında ortaya çıkan eserler ortadan kaldırmak için MY133-V2000 mikrosıvısal cihazları imalatı açıklar. Bu iletişim kuralı bir akrilik sahibi yapışma kimyasal ve mekanik olarak iyileştirilmesi kapsüllenmiş aygıt sıkıştırmak için kullanır.

Biyomedikal Havacilik için refraktif Dizin eşleşen cihazların imalat

Mevcut protokol, yüksek çözünürlüklü mikroskopi görüntülemeyi eşzamanlı basınç farkı ölçümleriyle birleştirerek yarı-2D gözenekli ortamlarda biyofilm gelişimini incelemek için mikroakışkan bir platformu tanımlamaktadır. Platform, gözenekli ortamlardaki gözenek boyutunun ve sıvı akış hızlarının biyotıkanma üzerindeki etkisini ölçer.

Gözenekli Ortamlarda Biyotıkanıklığı İncelemek için Mikroakışkan Bir Platform

Bu protokol, 3D lazer baskı kullanılarak implante edilebilir bir entegre görüntüleme penceresinin imalatını açıklar. Pencere, mikro iskelelerle birleştirilmiş bir mikro mercek sisteminden oluşur. Yöntem, biyouyumlu fotorezist SZ2080'in sürekli bir sırayla iki fotonlu polimerizasyonunu (2PP) içerir ve üretim verimliliğini ve farklı bileşenler arasındaki hizalamayı optimize eder.

Gelişmiş In Vivo Görüntüleme için Mikroyapılı Görüntüleme Penceresine Entegre Edilmiş İmplante Edilebilir Optiklerin Mikrofabrikasyonu

Bu protokol, mikrotübül polimer mekaniğini araştırmak için uygun bir mikroakışkan cihazın tasarımını ve üretimini detaylandırır. Mikrofabrikasyon, otomatik akış kontrolü ve hesaplamalı modelleme tekniklerinin sentezi, hücresel hücre iskeletini in vitro olarak araştırmak için ideal olan esnek bir sistem sağlar.

Mikrotübül Polimer Mekaniğinin İncelenmesi için Mikroakışkan Tabanlı Bir Yaklaşımın Geliştirilmesi

Burada, küçük moleküller ve proteinlerin desenli yüzeylerin desenlendirme oksit-silisyum ve germanyum ve reaktif organik mono tabakaları göstermek işlevsellik için basit bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yaklaşım tamamen kimyasal oksidasyon yüzeyleri korur özelliği morfolojisi üzerinde hassas kontrol sağlar, ve kimyasal ayrımcılık desenleri hazır erişim sağlar.

Yumuşak Litografik işlevsellik ve Desenlendirme Oksit Silisyum ve germanyum

Keşfedin, Fourier dönüşümlü kızılötesi mikrospektroskopi ile uyumlu plastik mikroakışkan cihazların yumuşak teknik kullanılarak üretim yöntemini. Bu protokol, canlı hücre biyokimyasını zarar vermeden incelemeyi kolaylaştırır.

Görünüm-bağlantı noktaları görünür ve kızılötesi ışık şeffaf plastik mikrosıvısal cihazlar üretmek için yumuşak tekniğinde yordamı (Video) | JoVE Journal

Görünüm-bağlantı noktaları görünür ve kızılötesi ışık şeffaf plastik mikrosıvısal cihazlar üretmek için yumuşak tekniğinde yordamı

Daha fazla video keşfet