June 10th, 2017
Bu protokol, bitki hücre duvarlarındaki lignin, selüloz ve hemiselülozun Raman görüntüleme ve çok değişkenli analizi kullanılarak görselleştirilmesi için genel bir yöntem sunmayı amaçlamaktadır.
Bu deneyin genel amacı, Raman görüntüleme ve çok değişkenli analiz ile bitki hücre duvarındaki lignin, selüloz ve hemiselülozu görselleştirmek için genel bir yöntem sunmaktır. Bu yöntem, ana kimyasal bileşenlerin bitki hücre duvarında nasıl dağıldığı gibi bitki biyokütlesi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, minimum numune hazırlığı ile numune hakkında işçiliksiz ve tahribatsız bilgilerin elde edilebilmesidir.
Başlamak için, bitki örneğinden küçük bir doku bloğu kesin. Dokuyu 30 dakika kaynar deiyonize suya batırın. Daha sonra hemen 30 dakika oda sıcaklığında deiyonize suya aktarın.
Doku kabın dibine çökene kadar bu adımı tekrarlayın, bu da dokudaki havanın alındığını ve dokunun yumuşadığını gösterir. %20, 50, %70 ve% 90 oranında PEG ve deiyonize su ile saf PEG hazırlayın. Çözeltileri 65 santigrat derecede tutun.
Suyun yerini almak için dokuyu bir dizi kademeli PEG banyosunda inkübe edin ve PEG'nin sızmasına izin verin. Bir saat boyunca %20 PEG, bir buçuk saat %50 PEG, iki saat %70 PEG, iki saat %90 PEG ve 10 saat %100 PEG'de kurutun. Ardından, bir kaseti bir fırında 65 santigrat derecede önceden ısıtın.
PEG içeren doku bloğunu kasete dökün ve ardından doku bloğunu önceden ısıtılmış cımbız veya iğneler kullanarak istenen konuma yerleştirin. Kaseti yavaşça soğutun ve mendili kullanana kadar oda sıcaklığında saklayın. Hedef dokuyu içeren PEG bloğunu keskin bir tıraş bıçağı kullanarak küçük bir blok halinde inceleyin.
Küçük PEG bloğunu mikrotomun üzerine monte edin ve PEG bloğundan ince bölümler kesin. Ardından, PEG'yi dokudan çıkarmak için bölümleri bir saat sınıfında 10 kez deiyonize su ile durulayın. Daha sonra, ekstraktları çıkarmak için bölümleri altı saat boyunca toluen ve etanol ile daldırın.
Bir beherde 65 mL deiyonize su, 0.5 mL asetik asit ve 0.6 g sodyum klorürü karıştırarak reaksiyon sıvısını hazırlayın. 5 mL'lik bir şişeye bir bölüm ve 3 mL reaksiyon sıvısı ekleyin. Şişenin üstünü vidalayın.
Daha sonra, dokunun ligninini çıkarmak için şişeyi iki saat boyunca 75 santigrat derecede bir su banyosunda ısıtın. Bölümü bir saat camında deiyonize su ile 10 kez durulayın. Daha sonra, işlenmemiş ve odunlaşmış bölümü bir cam mikroskop lamına aktarın.
Fırça veya iğne kullanarak bölümü dikkatlice açın. Fazla deiyonize suyu kağıt mendil ile çıkarın. Ardından, bölümü döteryum okside batırın.
Numuneyi bir cam kapak astarı ile örtün. Döteryum oksidin buharlaşmasını önlemek için kapak fişini oje ile kapatın. Konfokal Raman mikroskobunun cihaz işletim yazılımını açın.
Lazeri açın ve 100x mikroskop objektifi ile kristal ve silikonun hizmetine odaklanın. Cihazı kalibre etmek için kalibrasyon düğmesine tıklayın. Cihazı optik mikroskop moduna getirin ve mikroskop lambasını açın.
Mikroskop slaytını, kapak sürgüsü objektife bakacak şekilde sahneye monte edin. Numuneyi 20x mikroskop objektifi ile görüntüleyin ve ilgilenilen alanı bulun. Daldırma mikroskobu objektifine geçin.
Kapak kızağına daldırma yağı sürün, ardından numunenin yüzeyine odaklanın. Ardından, cihazı Raman test moduna geçirin ve mikroskop lambasını kapatın. Dikdörtgen bir araç kullanarak bir eşleme alanı seçin.
Elde edilen spektrum sayısını belirlemek için adım boyutunu değiştirin. Adım boyutunun, hedefin sayısal açıklığı ile hesaplanan nokta çapından daha büyük olması gerektiğini unutmayın. Bunun altındaki boyutlar aşırı örneklemeye neden olur.
En iyi sinyal-gürültü oranını ve spektral kaliteyi elde etmek için optimum spektral parametreleri ve numune uygunluğuna bağlı olarak uygun bir alım süresini ayarlayın. Genel olarak, 532 nanometrelik bir lazer dalga boyu, %100'lük bir filtre, 300'lük bir delik, 100'lük bir yarık, 1840 ters santimetrelik bir spektrometre, 1200T'lik oluklar, 60x yağ hedefi ve iki saniyelik bir edinme süresi kullanarak görüntüleme parametrelerini cihaz yazılımına girin. Veri işlemeden önce spektral verileri kaydedin ve metin protokolünde açıklandığı gibi veri analizine devam etmeden önce verileri evrensel bir formata dönüştürün.
Kavak hücre duvarının orijinal Raman spektrumları burada gösterilmektedir. Temel kaymalar ve kozmik ani yükselmeler dahil olmak üzere iki ana gürültü sinyali, gerçek sinyallerle birlikte kanallara yayılır. Bunlar veri analizinden önce kaldırılmalıdır.
Bu gürültü sinyallerini ortadan kaldırmak için Savitzky-Golay algoritması veya dalgacık algoritması gibi bir gürültü azaltma tekniği uygulanabilir. Lignin görüntüleme için, aromatik halka simetrik germe titreşimi nedeniyle 1600 ters santimetre civarındaki spektral zirveyi düşünün. Polisakkarit görüntüleme için, CH ve CH2889 gerilmeleri nedeniyle 2 ters santimetre civarında spektral zirveyi kullanın.
Bununla birlikte, selüloz ve hemiselülozun Raman görüntüleri doğrudan oluşturulamaz. Delignifikasyon, bunların spektral özelliklerini ortaya çıkarmak için gerekli bir prosedürdür. Genel olarak, bu yöntemde yeniyiz.
Mücadele ediyoruz, çünkü numune kesitlerinin ele alınması ve görünümü ve veri analizi konusunda eğitim gerektiriyor. Bu videoyu izledikten sonra, yerinde yöntemler kullanılarak bitki hücre duvarı hakkında kimyasal bilgilerin nasıl elde edileceğini iyi anlamış olmalısınız. Bu prosedürü takiben, bitki hücre duvarının inatçılığı gibi ek soruları yanıtlamak için kimyasal ön işlem gibi diğer yöntemler de gerçekleştirilebilir.
Bu yöntem, bitki hücre duvarı içindeki iç yapısal yapı ve topokimya hakkında bilgi sağlayabilse de, diğer biyolojik örneklere de uygulanabilir.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Bu protokol, Raman görüntüleme ve çok değişkenli analiz kullanarak bitki hücre duvarlarındaki lignin, selüloz ve hemiselülozun görselleştirilmesi için bir yöntem sunar. Bu teknik, bitki biyokütlesinin kimyasal bileşimi hakkında yıkıcı olmayan bilgiler sağlar.
This method enables non-destructive, label-free visualization of lignin, cellulose, and hemicellulose in plant cell walls, supporting mechanistic de-risking in biomass conversion and bio-based material development. By providing spatially resolved chemical composition data, it aids in target validation for enzyme engineering and pretreatment optimization. The approach reduces reliance on destructive assays and enhances predictive confidence in early-stage biomass screening workflows.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, supporting early biomass characterization and enabling data-driven decisions in enzyme and pretreatment development pipelines.