Name: Zebra balığı Spermatogonia bütün testis iğne tarafından dondurma hızlı soğutma dalmış (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 32 s
Description: Öğrenin, Danio rerio testislerinin iğne batırma yöntemiyle dondurulması ve spermatogonya izolasyonunu. Bu protokol, farklı zebra balığı ırklarında tekrarlanabilirliği artırarak üreme biyolojisi araştırmalarına katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışmada ulusal araştırma, geliştirme ve yenilik Office Macaristan (grant 116912 ÁH için), maliyet office tarafından desteklenmiştir (Gıda ve tarım maliyet eylem FA1205: AQUAGAMETE), Stipendium Hungaricum burs programı (grant ZM için) ve yeni Macar Ulusal mükemmellik HGUGM Bursu (EK hibe).

Tüm yöntem tanımlamak burada Macar hayvan refah hukuk tarafından onaylanmıştır.
1. reaktif hazırlık
<ol><li>Hisse senedi çözümleri<ol>
<li>1 M trehalose de tamamen eriyene kadar trehalose dihydrate 0,378 g dH2O. Mix 1 mL ekleyerek hazırlayın.</li>
		<li>1 M Sükroz de tamamen eriyene kadar dH2O. Mix 1 mL sukroz 0.342 g ekleyerek hazırlayın.</li>
		<li>1 M HEPES de tamamen eriyene kadar dH2O. Mix 1 mL HEPES 0,238 g ekleyerek hazırlayın.</li>
		<li>20 mg/mL collagenase (290 U/mg) 100 mg 5 mL için PBS de ekleyerek hazırlayın. İyice eriyene kadar karıştırın. 0.2 µm filtreler steril filtreden. Aliquot 50 µL içine 0.2 mL PCR tüpleri ve 20 ° C'de - dondurma</li>
		<li>15 mg/mL tripsin hazırlamak (~ 10000 U/mg) 75 mg 5 mL için PBS de ekleyerek. İyice eriyene kadar karıştırın. 0.2 µm filtreler steril filtreden. Aliquot 50 µL içine 0.2 mL PCR tüpleri ve 20 ° C'de - dondurma</li>
		<li>1 mg/mL Dnaz hazırlamak ben (~ 3000 U/mg) 5 mg 5 mL için PBS de ekleyerek. İyice eriyene kadar karıştırın. 0.2 µm filtreler steril filtreden. Aliquot 50 µL içine 0.2 mL PCR tüpleri ve 20 ° C'de - dondurma</li>
		<li>%0,4 trypan mavi PBS için 10 mL trypan mavi 40 mg ekleyerek hazırlayın. 0.2 µm filtreler steril filtreden. 1.5 mL tüpler içine aliquot 1 mL.</li>
		<li>200 mg/L MS hazırlamak-de tamamen eriyene kadar ekleyerek MS-222 200 mg 1 litre dH2O. Mix 222 (Tricaine metan Sülfonat). Buna ek olarak, MS-222 çözüm nötr pH 7.0 için sodyum bikarbonat ile tampon.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Vitrifiye için çözümler<ol>
<li>Denge çözüm (ES) hazırlamak: ES 2 mL metanol (MeOH; 1,5 M), 121.5 µL karıştırılarak hazırlamak propilen glikol (PG; 1,5 M), 220 µL FBS (% 10), trehalose hisse senedi çözüm (0,1 M), 50 µL HEPES hisse senedi çözüm (25 mM) ve L-15 1208.5 µL 2 içine 200 µL 200 µL mL tüp.</li>
		<li>Vitrifiye çözüm (VS) hazırlamak: PG (3 M), Dimetil sülfoksit 426 µL 439 µL karıştırılarak vs 2 mL hazırlamak (bana2yani; 3 M), 200 FBS (% 10), trehalose hisse senedi çözüm (0,1 M), HEPES 50 µL 200 µL µL stok çözüm (25 mM) ve L-15 685 µL bir 2 mL tüp.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Isınma için çözümler<ol>
<li>Isınma çözüm 1 (WS1) hazırlamak: WS1 1,5 mL 2 mL tüp içinde FBS (% 10), sukroz hisse senedi çözüm (3 M) 450 µL 150 µL karıştırarak hazırlayın ve L-15 900 µL.</li>
		<li>Isınma çözüm 2 (WS2) hazırlamak: WS2 1,5 mL 2 mL tüp içinde FBS (% 10), sukroz hisse senedi çözüm (1 M) 150 µL 150 µL karıştırarak hazırlayın ve L-15 1200 µL.</li>
		<li>Isınma çözüm 3 (WS3) hazırlamak: WS2 1,5 mL 2 mL tüp içinde karıştırma 150 µL FBS (% 10) tarafından hazırlamak ve L-15 1350 µL.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sindirim çözüm hazırlamak: her örnek hazırlamak için sindirim çözeltinin 500 µL 50 µL collagenase hisse senedi çözüm (2 mg/mL), 50 µL tripsin hisse senedi çözüm (1.5 mg/mL) karıştırılarak, 10 µL Dnaz, ben (20 µg/mL) ve L-15 390 µL 2 ml tüp.</li>
	<li>Diseksiyon Araçları'nı edinmeniz: makas, microscissors, cımbız, eğri cımbız ve akupunktur iğneleri.</li>
</ol>2. testis koleksiyonu
<ol><li>200 mg/L MS içeren bir tabak içine yerleştirerek balık ötenazi-222 (pH = 7). Diseksiyon ile devam etmeden önce solungaçları hareket durdu ve o en az 10 dk ölüm hipoksi tarafından emin olmak için o andan beri geçti emin olun.</li>
	<li>Kağıt havlu üzerinde okşamaya tarafından kuru balık ve sırt tarafında bir diseksiyon Mat yerleştirin.<ol>
<li>Öncelikle pelvis ve göğüs yüzgeçleri daha kolay diseksiyon için kesti.</li>
		<li>Yatay olarak cilt üzerinde balık göğüs yüzgeçleri arasında göbek makasla kesme ve cilt ve temel kas göbek boyunca anal yüzgeç kadar kesti.</li>
		<li>Balık vücut boşluğuna açın ve iğnelerle diseksiyon mat sol ve sağ vücut duvara pin. Not: Testis Yüzme kesesi (şekil 1) her iki tarafında gastrointestinal organ yukarıda yer alır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Kirlenmesini önlemek için sindirim organları almaz ama nazikçe onları bir kenara itmek ve testis karşı taraftan kaldırın. Testisler vücut duvara bağlı olan çok dikkatli bir şekilde çıkarın ve bağlantı Periton microscissors tarafından kesilmiş.</li>
	<li>Ayrıca, kirlenmesini önlemek için ilk olarak testis % 70 etanol 2 s ve sonra yer için onları koyarak sterilize buzda bir 96-şey tabakta L-15 onları. Not: gerekli ise, temiz testis yağ dokusu ve büyük damarları stereomicroscope altında tam kan</li>
</ol>3. hızlı testis dokusunun soğutma
<ol><li>Mark iğneler bağlı olarak örnek uygun etiketleri yazın ve denge (ES) ve Vitrifiye Çözümleri (VS) hazırlayın.</li>
	<li>Testis daha büyük bir iyi tabak veya çanak ve PIN iki ya da üç testisler (veya daha fazla iğne boyutuna bağlı olarak) bir steril akupunktur iğnesi aktarın.<ol>
<li>Öncelikle testis eğri cımbız üstüne getirin. Testis ortasında iğne üzerine getirin ve dikkatle testis yukarı cımbızla çekin.</li>
		<li>Testis delinme sonra hafifçe yukarı doğru iğne üst doğru çekin. Testis birbirinden ayrılır ve onlar are değil düşme ya da aşağı kayan olduğunu doğrulayın.</li>
		<li>2 mL tüp içinde sabitlenmiş testis iğnelerle dolu yer L-15 kadar vitrifikasyon ile (25 ˚C; saklama süresi 1 h geçmemelidir). Not: testis iğne sabitleme hızlı testis kurumasını önlemek için yapılmalıdır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Testis iğneyle denge çözüm içine aktarmak ve 25˚C, 5 min için kuluçkaya.</li>
	<li>İğne vitrifikasyon çözüm içine aktarmak ve 30 için kuluçkaya 25˚C s.</li>
	<li>İğne vitrifikasyon çözümden kaldırmak için hızlı bir şekilde ve yavaşça dokusundan kalan çözüm bir steril kağıt havlu emmek. Kağıt havlu yapışmasını veya düşme testis önlemek için dikkatli olun.</li>
	<li>Hızlı bir şekilde sıvı azot bir Styrofoam kutusu yerleştirilmiş iğne yerleştirin. Not: hızlı bir şekilde sıvı azot buharı için doku maruz önlemek için bu adımı yapmak. Sıvı azot düşük hacimli Çapraz bulaşma örneklerin engellemek için kullanın.</li>
	<li>5-10dk için kapalı bir Styrofoam kutusu içinde sıvı azot iğne tutun.</li>
	<li>Bir açılan 4.5 mL cryotube ve onun cap aynı kutusunda precool.</li>
	<li>5-10 dk sonra sıvı azot yüzeyinin altında ayrı bir cryotube içine her iğne transfer ve cryotube kapatın. Dikkat: Her zaman (örneğin, İZOLELİ eldiven) koruyucu giysi kullandığınızda pozlama için şiddetli soğuktan yol açabilir gibi sıvı azot ile çalışma.</li>
	<li>Cryotube metal baston üzerine yerleştirin ve kısa sürede cryobank teneke kutu yerleştirin. Örnekleri bir teneke kutu depoda saklamak dewar kullanmaya devam etmenize kadar.</li>
</ol>4. ısınma yordamı
<ol><li>Her iğne ayrı ayrı sıcak. Tüm ısınma çözümler 25 ° C'de olmalıdır</li>
	<li>Cryotube metal baston üzerinden bağlantısını kesin ve sıvı azot bir strafor kutu içinde saklanan içine dalma.</li>
	<li>Cryotube (forseps kullanarak) sıvı azot Buhar açmak ve iğne sıvı azot bırakın.</li>
	<li>İğne çok hızlı ilk ısınma çözüm aktarmak ve (25 ° C'de) 1 dk. için kuluçkaya. Hızlı bir şekilde onun havada aktarım sırasında ısınma önlemek için iğne transfer emin olun.</li>
	<li>İğne ikinci ısınma çözüm içine aktarmak ve 3 dak (25 ° C'de) için kuluçkaya.</li>
	<li>İğne üçüncü ısınma çözüm içine aktarmak ve (25 ° C'de) 5 min için kuluçkaya.</li>
	<li>Testis iğne üzerinden onları aşağıya doğru eğimli cımbızla kaydırarak serbest bırakın. Tek tek bir kuyuya ayrı (96-şey plaka) ısıtılan her testis dolu 250 µL % 10 ile desteklenmiş L-15 ile yer FBS. Kuyuları örnek göre etiketlenir emin olun. İyi plaka tüm örneklerini ısındı kadar buz üzerinde ve daha fazla çalışma kadar tutun.</li>
</ol>5. doku sindirim
<ol><li>Ayrılma çözeltinin 500 µL her örneği ayrı 2 mL tüpler için hazır olun. Örnek koduna göre tüpler etiketleyin. Oda sıcaklığında 5 min için hazırlanan ayrılma çözüm kuluçkaya.</li>
	<li>Sindirim çözüm içine ısıtılmış doku ekleyin ve küçük makas en az 30 hareketlerle küçük parçalar halinde kesin.</li>
	<li>Kesme doku 90 dk 25 ˚C az için titreyen bir plaka üzerinde kuluçkaya.</li>
	<li>L-15 ve 100 µL FBS, 400 µL ekleyerek sindirim işlemini durdurmak (% 10 FBS v/v). Kısaca çözüm sallamak ve oda sıcaklığında 1 dk. için kuluçkaya.</li>
	<li>Elde edilen çözüm 1.5 mL tüp içine 50 µm filtreler aracılığıyla filtre. Buna göre tüplere etiket.</li>
	<li>200 × g 10 dk 25 ˚C az için filtre uygulanmış çözüm santrifüj kapasitesi.</li>
	<li>Dikkatle süpernatant kaldırmak ve 20 µL % 10 ile desteklenmiş L15 Pelet resuspend FBS. Pelet tamamen eriyene kadar el ile tüp sallamak. Hücre süspansiyon 4 ˚C veya buz üzerinde daha fazla kullanımda kadar devam.</li>
</ol>6. canlılığı değerlendirme ve Hücre sayımı
<ol><li>Mix 5 µL hücre süspansiyon ve 5 µL % 0,4 trypan mavi çözüm bir uygun şekilde etiketlenmiş 0.2 mL PCR tüp. Farklı birimler kullanılırsa, emin olun seyreltme oranı 1:1 kalır.</li>
	<li>Bu süspansiyon, oda sıcaklığında (25 ° C) 1-3 dk için kuluçkaya.</li>
	<li>Bir hemasitometre mikroskop altında her örnekte canlılığı kontrol edin.</li>
	<li>15 alanları (trypan mavi tarafından günahı) canlı hücreleri saymak. Hücrelerde hücre süspansiyon 20 µm toplam sayısını hesaplayın. Süspansiyon artık herhangi bir aşağı akım uygulama için hazırdır. Not: yordamı büyük vücut büyüklüğü ile diğer türler için en iyi duruma getirme, eşit ağırlık, testis parçaları kullanın. Testis bir birey tüm deneysel grupları için gelen sonuçlarda bireysel farklılıklarına önlemek için kullanın. Zebra balığı söz konusu olduğunda, biz aslında bu sol yararlandı ve sağ testis germ hücreleri13 eşit (ya da çok benzer) sayısı içermelidir (temsilcisi sonuçları görmek). Sağ testis Vitrifiye/sıcak iken sol testis bir denetim olarak tutuldu. Canlılığı yüzdesi hesaplanmıştır taze testis izole hücre sayısı karşılaştırıldığında Vitrifiye/ısındı testislerden izole hücre sayısı.</li>
</ol>

<ol><li>Mazur, P., Leibo, S. P., Seidel, G. R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryopreservation+of+the+germplasm+of+animals+used+in+biological+and+medical+research%3A+Importance%2C+impact%2C+status%2C+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Cryopreservation of the germplasm of animals used in biological and medical research: Importance, impact, status, and future directions.</a> Biol. Reprod. 78 (1), 2-12 (2008).</li>
<li>Carmichael, C., Westerfield, M., Varga, Z. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryopreservation+and+In+Vitro+Fertilization+at+the+Zebrafish+International+Resource+Center%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cryopreservation and In Vitro Fertilization at the Zebrafish International Resource Center.</a> Methods Mol. Biol. 546, 45-65 (2009).</li>
<li>Yang, H., Carmichael, C., Varga, Z. M., Tiersch, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+simplified+and+standardized+protocol+with+potential+for+high-throughput+for+sperm+cryopreservation+in+zebrafish+Danio+rerio%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Development of a simplified and standardized protocol with potential for high-throughput for sperm cryopreservation in zebrafish Danio rerio.</a> Theriogenology. 68 (2), 128-136 (2007).</li>
<li>Morris, J. P. IV, Berghmans, S., Zahrieh, D., Neuberg, D. S., Kanki, J. P., Look, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+sperm+cryopreservation+with+N%2CN-dimethylacetamide%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Zebrafish sperm cryopreservation with N,N-dimethylacetamide.</a> Biotechniques. 35 (5), 956-968 (2003).</li>
<li>Yoshizaki, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spermatogonial+transplantation+in+fish%3A+A+novel+method+for+the+preservation+of+genetic+resources%5BTitle%5D)+AND+%22Comp.+Biochem.+Physiol.+Part+D%3A+Genomics+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Spermatogonial transplantation in fish: A novel method for the preservation of genetic resources.</a> Comp. Biochem. Physiol. Part D: Genomics Proteomics. 6 (1), 55-61 (2011).</li>
<li>Gao, D., Critser, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+cryoinjury+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of cryoinjury in living cells.</a> ILAR J. 41 (4), 187-196 (2000).</li>
<li>Asturiano, J. F., Cabrita, E., Horváth, Á <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progress%2C+challenges+and+perspectives+on+fish+gamete+cryopreservation%3A+A+mini-review%5BTitle%5D)+AND+%22Gen.+Comp.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Progress, challenges and perspectives on fish gamete cryopreservation: A mini-review.</a> Gen. Comp. Endocrinol. 245, 69-76 (2017).</li>
<li>Kása, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+sperm+vitrification+protocols+for+freshwater+fish+%28Eurasian+perch%2C+Perca+fluviatilis%29+and+marine+fish+%28European+eel%2C+Anguilla+anguilla%29%5BTitle%5D)+AND+%22Gen.+Comp.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Development of sperm vitrification protocols for freshwater fish (Eurasian perch, Perca fluviatilis) and marine fish (European eel, Anguilla anguilla).</a> Gen. Comp. Endocrinol. 245, 102-107 (2017).</li>
<li>Cuevas-Uribe, R., Leibo, S. P., Daly, J., Tiersch, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+channel+catfish+with+sperm+cryopreserved+by+rapid+non-equilibrium+cooling%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Production of channel catfish with sperm cryopreserved by rapid non-equilibrium cooling.</a> Cryobiology. 63 (3), 186-197 (2011).</li>
<li>Wang, Y., Xiao, Z., Li, L., Fan, W., Li, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+needle+immersed+vitrification%3A+A+practical+and+convenient+method+with+potential+advantages+in+mouse+and+human+ovarian+tissue+cryopreservation%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Novel needle immersed vitrification: A practical and convenient method with potential advantages in mouse and human ovarian tissue cryopreservation.</a> Hum. Reprod. 23 (10), 2256-2265 (2008).</li>
<li>Liu, J., Cheng, K. M., Silversides, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+Live+Offspring+from+Testicular+Tissue+Cryopreserved+by+Vitrification+Procedures+in+Japanese+Quail+%28Coturnix+japonica%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Production of Live Offspring from Testicular Tissue Cryopreserved by Vitrification Procedures in Japanese Quail (Coturnix japonica).</a> Biol. Reprod. 88 (5), 124(2013).</li>
<li>Liu, J., Cheng, K. M., Silversides, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+needle-in-straw+vitrification+can+effectively+preserve+the+follicle+morphology%2C+viability%2C+and+vascularization+of+ovarian+tissue+in+Japanese+quail+%28Coturnix+japonica%29%5BTitle%5D)+AND+%22Anim.+Reprod.+Sci%22%5BJournal%5D)">Novel needle-in-straw vitrification can effectively preserve the follicle morphology, viability, and vascularization of ovarian tissue in Japanese quail (Coturnix japonica).</a> Anim. Reprod. Sci. 134 (3-4), 197-202 (2012).</li>
<li>Lee, S., Yoshizaki, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+cryopreservation+of+spermatogonia+in+critically+endangered+Manchurian+trout+%28Brachymystax+lenok%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Successful cryopreservation of spermatogonia in critically endangered Manchurian trout (Brachymystax lenok).</a> Cryobiology. 72 (2), 165-168 (2016).</li>
<li>Marques, L. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viability+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29+ovarian+follicles+after+vitrification+in+a+metal+container%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Viability of zebrafish (Danio rerio) ovarian follicles after vitrification in a metal container.</a> Cryobiology. 71 (3), 367-373 (2015).</li>
<li>Lujić, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+successful+vitrification+of+salmonid+ovarian+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">First successful vitrification of salmonid ovarian tissue.</a> Cryobiology. 76, 154-157 (2017).</li>
<li>Bono-Mestre, C., Cardona-Costa, J., García-Ximénez, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+on+cell+viability+of+three+zebrafish+testicular+cell+or+tissue+cryopreservation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22CryoLetters%22%5BJournal%5D)">Effects on cell viability of three zebrafish testicular cell or tissue cryopreservation methods.</a> CryoLetters. 30 (2), 148-152 (2009).</li>
<li>Marinović, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryosurvival+of+isolated+testicular+cells+and+testicular+tissue+of+tench+Tinca+tinca+and+goldfish+Carassius+auratus+following+slow-rate+freezing%5BTitle%5D)+AND+%22Gen.+Comp.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Cryosurvival of isolated testicular cells and testicular tissue of tench Tinca tinca and goldfish Carassius auratus following slow-rate freezing.</a> Gen. Comp. Endocrinol. 245, 77-83 (2017).</li>
<li>Pšenička, M., Saito, T., Rodina, M., Dzyuba, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryopreservation+of+early+stage+Siberian+sturgeon+Acipenser+baerii+germ+cells%2C+comparison+of+whole+tissue+and+dissociated+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Cryopreservation of early stage Siberian sturgeon Acipenser baerii germ cells, comparison of whole tissue and dissociated cells.</a> Cryobiology. 72, 119-122 (2016).</li>
<li>Lee, S., Iwasaki, Y., Shikina, S., Yoshizaki, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+functional+eggs+and+sperm+from+cryopreserved+whole+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Nati.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Generation of functional eggs and sperm from cryopreserved whole testes.</a> Proc. Nati. Acad. Sci. USA. 110 (5), 1640-1645 (2013).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bu çalışmanın temel amacı iğne adapte kuş ve memeli türleri10,11,12 ' ye balık testis (Zebra balığı bir model olarak dondurma için geliştirilen hızlı soğutma yordamı dalmış oldu organizma). Zebra balığı genetik kaynakları dondurma ile ilgili önceki çalışmaların en öncelikle Zebra balığı sperm2,3,4dondurma üzerinde durulmuştur. Ancak, il...

Bilim ve biyoteknoloji yeni eğilimler fareler, Drosophila, Zebra balığı ve canlılar arasında Biyomedikal ve diğer Bilimler1kullanılan diğer türler yeni mutant satırları binlerce yaratılmasına yol açmıştır. Yeni teknolojiler geliştirdi ve kullanılabilir hale gelir, Ayrıca, mutant satırların numaralarını giderek2artar. Bu genetik kaynakları kolonileri damızlık tutmanın ortak uygulamalar ötesinde bir güvenli depolama için gerekliliğini yol açar. Belirsiz bir süre için genetik kaynaklarının güvenli depolama sağlayan bir yöntem olarak olarak üreme sezonu, uzantısı broodstock sürekli bakım gereksinimini kaçınmanızı sağlar ve daha fazla maliyet - dondurma birçok avantaj sunar ve emek verimli2.
Geçtiğimiz birkaç yıl2,3,4 sırasında geliştirilen sperm dondurma protokollerde Zebra balığı erkek genetik materyal başarılı Muhafazası için fırsat sunuyoruz. Ancak, yumurta veya balık embriyo dondurma henüz onların karmaşık yapısı ve sarısı malzeme büyük miktarda nedeniyle mümkün değildir. Son zamanlarda, primordial germ hücreleri (PGCs) veya spermatogonial (SSCs) kök hücre nakli pratiği fonksiyonel sperm ve yumurta nakli5sonra geliştirerek bu bariyer için yan yol sunmaktadır. Bu nedenle, dondurma SSCs, nadir ve değerli genetik kaynakların korunması yeni bir sınır sağlar.
Dondurma pek çok avantajları sunuyor olsa bile, yavaş hızı dondurma işlemi hücre hasarı2' ye neden olabilir birkaç koşulları oluşturur. Bu hücre içi ve hücre dışı buz oluşumu, dehidratasyon, cryoprotectant toksisite ve diğerleri içerir. Hücre içi buz hücreleri zarar, hücre dışı buz hücrelerden su Difüzyon sırasında yavaş kuru buz gibi su kaybı6için neden olabilir iken mekanik hücreleri, kırma için neden olabilir. Son zamanlarda, Vitrifiye buz oluşumu olumsuz etkilerini önleyen bir teknik olarak balık gamet7,8,9dondurma uygulanmıştır. Bir ultra hızlı soğutma tekniği ile iç ve dış ortam buz7,10crystalizing olmadan amorf/cam gibi bir duruma çevirmek sunar. Testis ve Yumurtalık dokusunun başarılı vitrifikasyon böylece uygulama için olanaklar balık de açılış kuş ve memeli türleri10,11,12' kanıtlandığı.
Bu çalışmada, biz iğne batırılır Vitrifiye (NIV) yordamı tüm Zebra balığı testis dondurma için mevcut. Zebra balığı aşamasındaki germ hücreleri kirlenme ve nispeten yüksek miktarda aşamasındaki germ hücreleri düşük varlığı diğer hücreleri, özellikle sperm hücreleri ile verimleri bir dondurma işlemi olmadan yalıtım için güvenilir bir yöntem gösterilmektedir. Bizim bilgi en iyi şekilde, bu ultra hızlı soğutma balık Gonad doku ve Zebra balığı germline hücreleri için detaylı bir görüntülenmeyecektir protokol göstermek için ilk çalışmadır. Ayrıca, tekrarlanabilirlik yönteminin beş farklı Zebra balığı suşları içinde gösterilmiştir: AB vahşi türü, casper (roy- / -; sedef- / -), leopard (leot1/t1), vasa [Tg (vas::eGFP)] ve Wilms tümörü [Tg (wt1b::eGFP 1)] transgenik hattı.

<table><tbody><tr><td>Leibovitz media (L-15)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L1518</td><td>L-glutamin ile desteklenmiş</td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9665</td><td></td></tr><tr><td>Trikain metansülfonat (MS-222)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E10521</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>Sükroz</td><td>Acros Organics</td><td>57-50-1</td><td></td></tr><tr><td>Trehalose</td><td>Acros Organics</td><td>99-20-7</td><td>Dihidrat</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Reanal</td><td>20740-0-08-65</td><td></td></tr><tr><td>Propilen glikol</td><td>Reanal</td><td>08860-1-08-65</td><td></td></tr><tr><td>Dimetil sülfoksit</td><td>Reanal</td><td>00190-1-01-65</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz</td><td>Gibco</td><td>9001-12-1</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8003</td><td></td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Panreac AppliChem</td><td>A3778</td><td></td></tr><tr><td>Tripan mavisi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6146</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat tamponlu salin (PBS)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>P4417</td><td>200 ml PBS çözeltisinin hazırlanması için tabletler</td></tr></tbody></table>

zebra balığı spermatogonia bütün testis iğne tarafından dondurma hızlı soğutma dalmış

Cryopreservation of Zebrafish Spermatogonia by Whole Testes Needle Immersed Ultra-Rapid Cooling

Böylece kolonileri damızlık tutmanın ortak uygulamalar dışında genetik kaynaklarının güvenli depolama için yeni yöntemler için gerekliliğini önde gelen model organizmalar yeni satırları binlerce kurulması için bilim ve biyoteknoloji mevcut eğilimler yol. Bu çalışmanın temel amacı iğne adapte Vitrifiye (NIV) yordamı tüm Zebra balığı testis cryopreserve dalmış oldu. Özellikle nakli sonra erkek ve dişi gamet olgun beri dondurma bütün testisler tarafından aşamasındaki germ hücrelerinin NIV genetik kaynakları, Zebra balığı Muhafazası için olanaklar sunuyor. Testisler, iki cryoprotective medyada (1.5 M metanol ve 1,5 M propilen glikol; içeren denge çözüm ve Vitrifiye çözüm 3 M Dimetil sülfoksit ve 3 M propilen glikol içeren) equilibrated bir akupunktur iğnesi üzerinde pinned eksize ve sıvı azot içine daldı. Örnekleri bir dizi üç sonucu ısınma çözümleri ısındı. Bu teknik en önemli avantajları (1) sperm eksikliği aşağı akım manipülasyonlar; böylece kolaylaştırmak ısıtılan testis sindirim sonra vardır. (2) ultra hızlı sıvı nitrojen bu nedenle soğutma ve cryoprotectants, böylece onların toksisite azaltmak gerekli konsantrasyonu azaltarak en üst düzeye çıkarma en uygun maruz dokuların etkinleştirme soğutma; (3) birkaç testisler zaman uyumlu maruz kalma cryoprotectants ve sıvı azot; ve beş farklı Zebra balığı suşların % 50 üzerinde canlılık elde ederek (4) tekrarlanabilirlik gösterdi.

Ortalama olarak, aşamasındaki germ hücreleri tek taze Zebra balığı testislerden izole balığın büyüklüğüne bağlı olarak 40.000 ve 200.000 hücreler arasında değişmekteydi. Ne zaman tüm 5 suşları taze Zebra balığı testis sindirerek, erken germ hücreleri tek hücre hücre süspansiyonlar (Şekil 2) mevcut değildi. Aşamasındaki germ hücreleri çok sayıda sperm hücreleri de bulundu. Öte yandan, cryopreserved testis sindirim sonra çok daha az sperm elde edildi. Bu sperml...

Bu çalışmanın temel amacı iğne adapte Vitrifiye (NIV) yordamı tüm Zebra balığı testis cryopreserve dalmış oldu. Ayrıca, beş farklı Zebra balığı suşları yönteminde tekrarlanabilirlik test edildi.

Zebra balığı Spermatogonia bütün testis iğne tarafından dondurma hızlı soğutma dalmış

Current trends in science and biotechnology lead to creation of thousands of new lines in model organisms thereby leading to the necessity for new methods ...

Kriyokoruma, canlı hücrelerin ve dokuların, en azından insan ölçeğinde, sonsuz bir süre boyunca düşük sıcaklıklarda muhafaza edilmesi imkanını sunar. Vitrifikasyon, kristalize buz oluşumu ve buna bağlı hasarlar meydana gelmeden, cam benzeri amorf bir duruma ultra hızlı soğutmayı içeren bir kriyokoruma yöntemidir. Bu videoda, tüm zebrafish testislerinin vitrifikasyon protokolünü sunuyoruz; bu yöntem, testislerin daha sonra uygun alıcılara nakledilecek germ hücresi kaynağı olarak kullanılana kadar güvenli bir şekilde saklanmasını sağlar.Mevcut vitrifikasyon protokolünün, germ kök hücre manipülasyonları açısından yavaş dondurma protokollerine göre önemli bir avantajı vardır. Bu avantaj, vitrifikasyon ve ısıtma sonrası spermatozoonların ölmesi ve hücre süspansiyonunda bulunmayacak şekilde ayarlanmalarıdır. Bu nedenle, ısıtma işleminden sonra germ hücrelerinin izole edilmesine gerek yoktur.Bu durum, sonraki manipülasyonları kolaylaştırır. Balığı, pH yedi değerinde 200 milligrams per liter MS-222 içeren bir kaba yerleştirerek ötanazi yapın. Diseksiyona devam etmeden önce, solungaç hareketlerinin durduğundan ve hipoksi nedeniyle ölümün gerçekleştiğinden emin olmak için bu andan itibaren en az 10 dakika geçtiğinden emin olun.Balığı kağıt havluyla tamponlayarak kurulayın ve sırt üstü olacak şekilde bir diseksiyon matına yerleştirin. Öncelikle, diseksiyonu kolaylaştırmak için pelvik ve pektoral yüzgeçleri kesin. Balığın karnındaki pektoral yüzgeçler arasındaki deriyi yatay olarak kesin; ardından deriyi ve altındaki kas dokusunu, anal yüzgece kadar karın boyunca kesin.Balığın vücut boşluğunu açın ve sol ile sağ vücut duvarını iğnelerle diseksiyon matına sabitleyin. Testisler, yüzme kesesinin her iki yanında, gastrointestinal organların üzerinde yer alır. Kontaminasyonu önlemek için gastrointestinal organları dışarı çıkarmayın; bunun yerine onları nazikçe bir yana itin ve karşı taraftaki testisleri çıkarın.Testisler vücut duvarına bağlıdır, bu nedenle onları dikkatlice çıkarın ve bağlayıcı peritonu mikro makasla kesin. Ayrıca, kontaminasyonu önlemek için öncelikle testisleri iki saniye boyunca %70 ethanol içine koyarak sterilize edin ve ardından buz üzerinde 96 kuyucuklu plakadaki L-15 içerisine yerleştirin. İğneleri örnek tipine göre uygun etiketlerle işaretleyin ve dengeleme ile vitrifikasyon çözeltilerini hazırlayın.Testisleri daha geniş kuyucuklu bir plakaya veya kaba aktarın ve iğnenin boyutuna bağlı olarak, steril bir akupunktur iğnesine üç veya daha fazla testisi iğneleyin. Öncelikle, testisleri kavisli cımbızların üzerine yerleştirin. İğnenin ucunu testisin ortasına yerleştirin ve testisi cımbızla dikkatlice yukarıya doğru çekin.Testis delindikten sonra, onu nazikçe iğnenin üst kısmına doğru yukarı çekin. Testislerin birbirinden ayrıldığından ve aşağı düşmediğinden veya kaymadığından emin olun. Sabitlenmiş testislerin bulunduğu iğneleri, 25 derece vitrifikasyon işlemi gerçekleşene kadar L-15 ile doldurulmuş bir Tubulator Eppendorf tüpüne yerleştirin.Saklama süresi bir saati aşmamalıdır. Testislerin bulunduğu iğneyi dengeleyici solüsyona aktarın ve 25 derecede beş dakika inkübe edin. İğneyi vitrifikasyon solüsyonuna aktarın ve 25 derecede 30 saniye inkübe edin.İğneyi vitrifikasyon çözeltisinden çıkarın. Dokuda kalan çözeltiyi steril bir kağıt havlu ile hızlıca ve nazikçe emdirin. Testislerin kağıt havluya yapışmamasına veya düşmemesine dikkat edin.İğneyi hızlıca strafor bir kutu içindeki sıvı azota yerleştirin. İğneyi kapalı bir strafor kutu içindeki sıvı azotta beş ila 10 dakika bekletin. Kapağı açık olan 4,5 mililitrelik bir kriyotüpü ve kapağını aynı kutuda ön soğutmaya tabi tutun.Beş ila 10 dakika sonra, her bir iğneyi sıvı azot yüzeyinin altında ayrı bir kriyotüpe aktarın ve kriyotübü kapatın. Kriyotübü metal bir kan üzerine yerleştirin ve mümkün olan en hızlı şekilde kriyobanka kanisterine yerleştirin. Örnekleri, daha sonra kullanılana kadar bir kanister depolama çekmecesinde saklayın.Her bir iğneyi ayrı ayrı ısıtın. Tüm ısıtma solüsyonları 25 degrees olmalıdır. Kriyotüpü metal kannekten çıkarın ve strafor kutuda saklanan sıvı azota daldırın.Kriyotüpü, pens yardımıyla sıvı azot buharı içinde açın ve iğneyi sıvı azotun içine bırakın. İğneyi çok hızlı bir şekilde birinci ısıtma çözeltisine aktarın ve bir dakika boyunca inkübe edin. Aktarım sırasında iğnenin havada ısınmasını önlemek için hızlı bir şekilde aktardığınızdan emin olun.İğneyi ikinci ısıtma çözeltisine aktarın ve üç dakika boyunca inkübe edin. İğneyi üçüncü ısıtma çözeltisine aktarın ve beş dakika boyunca inkübe edin. Testisleri, kavisli cımbızlarla aşağıya doğru kaydırarak iğneden serbest bırakın.Isıtılmış her bir testisi, %10 FPS ile desteklenmiş 250 µL L-15 ile doldurulmuş ayrı bir kuyuya tek tek yerleştirin. Kuyuların numuneye göre etiketlendiğinden emin olun. Tüm numuneler ısınana ve sonraki işlem aşamasına kadar kuyulu plakayı buz üzerinde tutun.Ayrı iki mililitrelik tüplerde her numune için 500 µL disosiyasyon solüsyonu hazırlayın. Tüpleri numune koduna göre etiketleyin. Hazırlanan disosiyasyon solüsyonunu oda sıcaklığında beş dakika boyunca inkübe edin.Isıtılmış dokuyu sindirim çözeltisine ekleyin ve küçük makasla en az 30 hareketle küçük parçalara ayırın. Dokuyu bir sallama tablasında 24 derece'de 90 dakika boyunca inkübe edin. 400 microliter L-15 ve 100 microliter %10 FPS ekleyerek sindirim işlemini durdurun.Çözeltiyi hafifçe çalkalayın ve oda sıcaklığında bir dakika boyunca inkübe edin. Elde edilen çözeltiyi 50 micron'luk filtreler aracılığıyla 1.5 milliliter'lik bir tüpe süzün. Tüpleri uygun şekilde etiketleyin.Süzülmüş çözeltiyi 25 derecede 10 dakika boyunca 200 G'de santrifüjleyin. Süpernatanı dikkatlice uzaklaştırın ve peleti %10 FPS ile desteklenmiş 20 microliters L-15 içerisinde yeniden süspanse edin. Pelet tamamen çözünene kadar tüpü manuel olarak çalkalayın.Hücre süspansiyonunu, daha sonra kullanana kadar buz üzerinde veya dört derecede tutun. Uygun şekilde etiketlenmiş 0,2 mililitrelik bir PCR tüpü içerisinde beş mikrolitre hücre süspansiyonu ve beş mikrolitre %0,4 trypan blue çözeltisini karıştırın. Farklı hacimler kullanılıyorsa, bire bir seyreltme oranının korunduğundan emin olun.Bu süspansiyonu 25 derecede bir ila üç dakika boyunca inkübe edin. Her bir örneğin canlılığını bir hemositometre kullanarak mikroskop altında kontrol edin. Trypan blue ile boyanmamış canlı hücrelerin sayısını 15 alanda sayın.Hücre süspansiyonunun 20 microliterindeki toplam hücre sayısını hesaplayın. Süspansiyon artık herhangi bir sonraki uygulama için hazırdır. Ortalama olarak, tek bir taze zebrafish testisinden izole edilen erken evre germ hücresi sayısı, balığın boyutuna bağlı olarak 40.000 ile 200.000 hücre arasında değişir.Bu çalışmada kullanılan tüm zebra balığı hatlarında, mevcut vitrifikasyon protokolü ortalama %50 ve üzeri canlılık oranları sağlamıştır. Bu durum, sunulan protokolün uygun canlılık oranlarına ve tekrarlanabilirliğe sahip olduğunu göstermektedir. Beş suşun tamamında taze zebra balığı testisleri sindirildiğinde, erken evre germ hücrelerinin yanı sıra çok sayıda spermatozoa da tespit edilmiştir.Kriyo-korunmuş testislerin sindirilmesinden sonra, çok daha az spermatozoon tespit edilmiştir; bu durum, bu vitrifikasyon protokolünde hayatta kalmadıklarını ve büyük olasılıkla sindirim işlemi sırasında elendiklerini göstermektedir. Bu çalışmada sunulan iğneye sabitlenmiş vitrifikasyon protokolü, testis parçalarının kriyoprezervasyonu açısından çeşitli avantajlar sunmaktadır. İlk olarak, tek bir iğneye birkaç parça sabitlenebilir ve böylece bu parçalar aynı anda kriyoprotektanlara ve sıvı azota maruz bırakılabilir.Ayrıca, bu yöntem kriyoprotektanların doku parçalarına çok düşük miktarlarda tutturulmasını sağlar. Bu sayede, soğutma ve ısıtma hızları daha yüksek olabilir. Önemli bir avantajı ise, spermatozoaların bu protokolden sağ çıkmamasıdır; dolayısıyla sonuç olarak hücre süspansiyonları, sonraki uygulamaları kolaylaştıracak şekilde zenginleştirilmiş spermatogonyalar içerir.Ancak göz önünde bulundurulması gereken husus, azot yoluyla çapraz kontaminasyon olasılığıdır. Bu nedenle, bu yöntem kullanılırken sıvı azot tekrar kullanılmamalıdır.

cryopreservation-zebrafish-spermatogonia-whole-testes-needle-immersed

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu zebrafish yüksek verimlilik için bir sperm dondurulması protokol. Sperm bu protokolü kullanarak,% 25, ​​sonraki vitro fertilizasyon doğurganlık ortalama ve uzun yıllardır istikrarlı dondurularak saklanabilir.

Zebra balığı sperm Kriyoprezervasyon için bir Yüksek Verim Yöntem ve In Vitro Gübreleme

Bu ultraviyole ışık inaktive sperm döllenme hemen sonra ikinci mayoz bölünme bloke ederek gynogenetic diploid zebrafish embriyolar (sadece genetik katkı anneden gelen embriyolar) üretmek için kullanılan bir yöntemdir. EP embriyolarının ilk mayoz bölünme sırasında rekombinasyon nedeniyle tamamen homozigot değildir, ancak onlar kendi sentromer ayrılmış rekombinasyon henüz tüm lokuslar homozigot.

Erken Basınç Gynogenetic Diployid Zebra balığı

Bu videoda, kriyoprotektan olarak etilen glikol ve dimetil sülfoksit ve taşıyıcı sistem olarak kriyojenik saman kullanılarak istenen gelişim aşamasında hasat edilen tavşan embriyolarının vitrifikasyon prosedürünü anlatıyoruz. Vitrifiye embriyolar yüksek hayatta kalma oranına sahiptir ve kullanıma kadar uzun süre saklanabilir.

Kriyojenik Saman Kullanarak Tavşan Embriyosu Vitrifikasyonu: Tavşan Embriyolarını Uzun Süreli Depolama için Korumak İçin Ultra Hızlı Bir Soğutma Tekniği

Zebra balığı, daha yüksek omurgalılarla genetik benzerlikleri nedeniyle gelişimsel biyoloji ve insan hastalıkları araştırmaları için güçlü bir model sistemdir. Bu protokol, erken embriyogenez için gerekli olan genlerdeki resesif mutasyonları tanımlamak için ileri tarama stratejileri için kullanılabilecek haploid zebra balığı embriyoları oluşturmak için bir metodolojiyi açıklar.

Haploit Zebra balığı Embriyolar üretimi ile<em&gt; In Vitro</em&gt; Gübreleme

Kardiyovasküler araştırmalar için zebra balığının kullanımı, yetişkin kalpleri üzerinde yapılan araştırmalara doğru genişliyor. Bu uygulamalar için, kalp dokularının hızlı ve basit bir şekilde izole edilmesi, ölüm sonrası değişikliklerden kaçınmak ve yeterli sayıda numune elde etmek için anahtardır. Burada, yetişkin zebra balığı kalplerini incelemek için hızlı ve tekrarlanabilir bir yöntem açıklıyoruz.

Yüksek verim Uygulamaları Yetişkin Zebra Hearts Kurtarma

Hayvan araştırmalarında tekrarlanan kan örneklemesi gerekli ve önemlidir. Yetişkin zebra balıklarından tekrarlanan kan alımı için yeni, öldürücü olmayan ve güvenilir bir yöntem geliştirdik ve bu yöntemi glikoz metabolizması da dahil olmak üzere kan biyokimyası çalışmasına uyguladık.

Yetişkin Zebra balığı Kan Testleri için Tekrarlanan Kan Alma

ploid manipülasyon için değiştirilmiş bir protokol, erken embriyoda sitokinez bir tek çevrim durak uyarılması için bir ısı şoku kullanır. Bu protokol zebrabalıkları gösterilmiştir, ancak diğer türlere uygulanabilir.

Isıl Şok 2 Tedavi ile Zebra balığı Embriyolar ploidisi Manipülasyon

Burada, zebra balığı embriyoları ve larvalarının tüm preparatlarında floresan antikor aracılı proteinlerin tespiti için bir protokol salıyoruz.

Zebrabalığı Embriyoları ve Larvalarında Tüm Mount Immunohistochemistry

Nükleer yüzey spreadleri, kekozis sırasında kromozom olaylarını incelemek için vazgeçilmez bir araçtır. Burada zebrabalığı spermatositlerinden profaz I sırasında meyotik kromozomları hazırlamak ve görselleştirmek için bir yöntem göstermek.

Zebrabalığı Spermatositlerinden Meiotik Kromozom Spreadlerinin Hazırlanması

Burada, zebra balığında yumurtalık gelişiminin araştırılmasını kolaylaştıracak zebra balığı yumurtalık foliküllerindeki foliküler hücreleri ve oositleri ayırmak için basit bir yöntem sunuyoruz.

Zebra Balıklarının Yumurtalık Foliküllerinde Foliküler Hücrelerin ve Oositlerin Ayrılması

CRISPR-Cas teknolojileri, genom düzenleme alanında devrim yarattı. Bununla birlikte, istenen germline düzenlemesini bulmak ve izole etmek büyük bir darboğaz olmaya devam etmektedir. Bu nedenle, bu protokol, standart PCR, kısıtlama sindirimi ve jel elektroforezi tekniklerini kullanarak germline düzenlemeleri için F0 CRISPR enjekte edilen zebra balığı spermini hızlı bir şekilde taramak için sağlam bir yöntem açıklamaktadır.

Zebra balıklarında germline düzenlemelerinin hızlı izolasyonu için sperm taraması

Öğrenin, Danio rerio testislerinin iğne batırma yöntemiyle dondurulması ve spermatogonya izolasyonunu. Bu protokol, farklı zebra balığı ırklarında tekrarlanabilirliği artırarak üreme biyolojisi araştırmalarına katkı sağlar.

Zebra balığı Spermatogonia bütün testis iğne tarafından dondurma hızlı soğutma dalmış

Daha fazla video keşfet