Name: Transmisyon elektron mikroskobu mikroorganizmaların seri Ultrathin bölümler elde etmek için bir yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-17T10:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 46 s
Description: Öğrenin, transmisyon elektron mikroskobu için mikroorganizmaların seri ultrathin kesitlerini pahalı ekipman kullanmadan güvenli ve kolay bir şekilde elde etme yöntemini. Bu teknik, hücre biyolojisi araştırmalarında üç boyutlu yapısal bilgi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz içtenlikle Shigeo Kita onun değerli öneriler ve tartışma için teşekkür ederiz. Biz Ayrıca John ve Sumire Eckstein el yazması onların eleştirel okuma için teşekkür ederiz.

Not: Bu çalışmada kullanılan numuneler mikroorganizmaların hızla sıvı azot içinde propanla donmuş, Don % 2 Osmiyum tetroxide içeren aseton içinde değiştirilen ve epoksi reçine1,2,3gömülü olduğunu, 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18.
1. destek film (Resim 1-3) hazırlanması
Not: Gümüş renkli Formvar destek film19cam üzerinde döküm yöntemi kullanılarak hazırlanır.
<ol><li>%1,5 100 mL ekleyin Formvar etilen ve için bir Formvar yapma aparatı (şekil 1). Yarım saniyeden Formvar çözüm cihazları üst sütununda bir cam slayt (76 x 26 x 1,3 mm) 'a' bir kauçuk top19kullanarak üzerinden hava ile çözüm basarak daldırma.<ol>
<li>Üçlü stopcock açarak ve basıncı azaltmak için 'b' havada serbest sütun çözümden drenaj. Gelen ve kuru havada cam kaymak dışarı cam slayt için bir film yüzeyinde biçiminde. Bir akkor lamba Formvar film kurutma hızlandırmak için kullanın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bir tıraş bıçağı (şekil 2a) ile cam slaytta filmin dört kenarları kapalı kazıma ve film ayrılması slayt20, kolaylaştırmak için slayda nefes su filmde kapalı cam kaymak içine çeker tarafından float sonra yavaş yavaş bir düşük yatay açı (yaklaşık 10 °, şekil 2b) su.</li>
	<li>(Çapı 4 mm) delikli alüminyum raf (30 x 25 x 3 mm) kullanarak su Formvar filmden kaldırsanız (şekil 3a). Formvar film ile raf bir desiccator kadar kullanmak (şekil 3b) tutmak.</li>
</ol>2. numune blok bir ultrasonik kesme bıçağı ve bir stereomicroscope (şekil 4) altında bir jilet 21 ile düzeltme
<ol><li>Hücre bloğu yüzeyinde bir ışık mikroskobu ile (şekil 4a) blok ucu gözlemleyerek emin olun.</li>
	<li>Chuck (blok sahibi) numune bloğunda mount ve chuck bir düzeltme sahne21 tarihinde (şekil 4b) bağlayabilirsiniz. Bu düzeltme aşamasında numune arkasından bir aydınlatma mekanizması vardır.</li>
	<li>Bir boyut için blok 0.7 mm x 1.0 mm (rakamlar 4 c, 5 d) kırpın. Epoksi reçine çok zor olduğundan, ilk bir ultrasonik kesme bıçağı kullanarak blok döşeme. Ultrasonik kesme bıçağı Yeni tanıtılan bir makinedir ve bloklar kolayca atılır. O zaman daha fazla bir tıraş bıçağı ile blok döşeme. (Bkz: şekil 5 d, şekil 8) kesme doğrultusunda işaretlemek için bir omuz kesti.</li>
</ol>3. microtome (şekil 5) kullanarak elmas bıçak ile numune caddenin kırparak
<ol><li>Numune caddenin chuck ultramicrotome numune sahibinin ayarlayın. Örnek yer 90° saat yönünün tersine seri ultrathin kesit olduğunda gerçek pozisyon karşı gerçekleştirilen (bkz şekil 5 d).</li>
	<li>Blok yüzeyini bir elmas kesme bıçak (bkz şekil 5 d) ile kesmek. Elmas bıçak kenarı örnek blok yüzüne paralel ayarla ve numune yüzeyi herhangi bir numune (şekil 5 d) kaybetmek en az miktarda kesti. Not: Bu adım numune yüzeyi düzeltmek için yapılır. Numune yüzeyi ince bölümünün parçası değişmeden kalır (Bu nedenle bu bölümü şekil 5 dbir ayna gibi parlıyor değil), bu yüzden örnek herhangi bir bölümünü seri kesit kaybetmemek için. Numune caddenin yüzeyinde maruz olmasıdır.</li>
	<li>Bir ayna (Mesa kesim, M) (şekil 5 c) numune blok kesme izlemek için bıçak sahnesinde yerini.</li>
	<li>(Bu Yakası, şekil 5 d, seri kesit içinde örnek olur) bıçak sahne soldaki (şekil 5a) 30 ° döndürerek kesme bıçağı kullanarak blok sol kenarına kesti.</li>
	<li>Bıçak Sahne Alanı'nda 30 ° (şekil 5b) sağa döndürerek (Bu seri kesit, şekil 5 diçinde örnek alt tarafında olur) numune sol kenarına gelen yaklaşık 100 µm blok surata kesti. Not: Numune yaklaşık 90 ince kısmından seri bölümleri kesilir x 1 mm boyutunda nm. Büyük ölçüde paralel olduklarını öyle ki numune yüzeyi ve bıçak kenarı ayarlamak için kullanılır. Bıçak kenarına paralel olmak numune yüzeyi ayarladıktan sonra büyük ölçüde bir tıraş bıçağı ile kaldırılacak. Microtome kullanarak örnek alt ve üst kenarlarında keserek, her iki örnek düz ve kırılmamış şerit bölümler almak gerekli olan düzgün ve tam olarak birbirlerine (şekil 5 d), paralel haline.</li>
</ol>4. paralel olarak birbirine 21 karşılaştıkları böylece numune yüzeyi ve bıçak kenar ayarlama
<ol><li>Kesme bıçağı çıkarmak ve numune blok 90 ° saat yönünde döndür.</li>
	<li>Ultrathin bir parça bıçak bıçak Sahne Alanı'na ayarlayın.</li>
	<li>Her numune yüzeyi büyük bölümünü kullanarak diğer paralel karşılaştıkları numune yüzeyi ve bıçak kenarı ayarlanır. Not: seri kesit, kesme yüz numune yüzeyi ve bıçak kenar bu bölüm yalnızca, özellikle dikey yönde kullanarak ayarlamak üzere çok küçük olduğu için örnek büyük kısmı ayarı için kullanılır. Böylece, örnek büyük bölümünü kullanarak ayarlamayı kolaylaştırır.</li>
</ol>5. yaymak neopren çözüm örnek blok (şekil 6)
<ol><li>Özgün konum olarak tam olarak aynı konumda numune chuck yerleştirmek için chuck ve microtome chuck sahibinin teyp uygulayın ve sınırında (şekil 6a) kesti.</li>
	<li>Numune chuck microtome çıkar ve stereomicroscope (şekil 6b) altında yerleştirin. Bir tıraş bıçağı ile numune büyük kısmını kesti, ince parça seri halinde hangi bölümlerden bırakarak elde edilir.</li>
	<li>Pasteur pipet kullanmadan, yaklaşık 1 µL % 0.5 neopren çözüm (şekil 6b) seri kesit için bölüm tarafı yapışkan yapmak için kullanılmak üzere numune bırak. Neopren çözüm ile tüm örnek kapak. Aşırı neopren çözüm hemen filtre kağıdı numune yerleştirilen bir parçası ile absorbe. Bir şerit bölümlerin almak seri halinde hücre bölümleri fotoğrafını çekmek esastır ve neopren tutkal bölümleri birbirine yapışmasını için çok yararlıdır.</li>
	<li>3-yarık Izgaralar hazırlamak (yırtmaçlı boyutları: Orta, 0.4 mm x 2.2 mm, her iki taraf 0.2 mm x 2.2 mm) (şekil 6 c) 60 ° ila Izgaralar tanıtıcısı bükme tarafından seri bölümleri seçmek için Izgaralar % 0.5 neopren çözüm ile tedavi ve Izgaralar tarafından hidrofilik yapma kızdırma deşarj22.</li>
</ol>6. yapım seri bölümler (Şekil 7-9)
<ol><li>Yer numune caddenin chuck içeri 5.1 (şekil 6a) olarak aynı konumda microtome bantlanmış parçaları hizalayarak. Bu blok yüz ve bıçak kenarı birbirine mükemmel paralel tutar. Sonra örnek yakın bıçak getir.</li>
	<li>Bıçak teknenin su ile doldurun.</li>
	<li>Microtome hava akımı (Şekil 7) önlemek için plastik bir kapak ile kapak. Not: Hava akımı ultrathin kesit ve sık sık bölümleri alımı sırasında sorunlara neden. Plastik kapak üç delik vardır: tek bir delik için dürbün lensler ve kapağı açıkken işlemi izin vermek silah diğer iki delik vardır. Ahşap kol dayama Izgaralar ile seri bölümleri alma gibi hassas iş yaparken silah yerleştirmek için kullanılır. Ahşap kol dayama operatörün el microtome için titreşim iletimi vermemek için microtome tablo (Şekil 7, oklar), farklı tablolarda yerleştirilir.</li>
	<li>200 nm bölüm kalınlığı (şekil 8) Numune kesme başlatın. 200 nm kalınlık ayarı numune yüzeyinin bıçak getirmekte zaman kazandıracak.</li>
	<li>İlk bölüm kestikten sonra bölüm kalınlığı 70 için ayarla nm (şekil 8).</li>
	<li>Seri bölüm sayısı (tam olarak, yaklaşık 1,8 mm; bölüm sayısı değişir bölümlerinin genişliğini bağlı olarak şerit ulaştığı sonra konuşma) 20 ulaştığında, bölüm kalınlığı 10 değerine ayarlayın kesmeye devam ederken nm (şekil 8). Not: microtome 10 nm-kalın kesitler kesemezsin beri yeni bölüm yok görünür ve daha önce kesme bölümleri bıçak kenarından ayrılmış olmak. El ile bir çift saç iplikçiklerinin kullanma bölümlerine ayırmak zorluk önlemek seri bölümleri seçmek için ayrılmış bölüm grupları (Şekil 9) almak önemlidir. Transmisyon elektron mikroskop görüş alanı 2.0 mm olduğu için bölümler en az 1.8 mm uzunluğunda olmalıdır.</li>
	<li>Bölüm kalınlığı 60'a ayarla nm (şekil 8). Makine önceki 10 nm kalınlığı eklediğinden bu 70 nm bölümler (şekil 8) üretecektir.</li>
	<li>Bölüm kalınlığı 70 için ayarla nm (şekil 8) ve kesim 1,8 mm uzun bölümler elde edilen kadar devam edin.</li>
	<li>Beş 1.8 mm uzun bölümler (Şekil 9) elde edilen kadar 6,6-6.8 yineleyin. Biz genellikle beş bölüm grupları mevcuttur beş örnek sahipleri transmisyon elektron mikroskobu bizim laboratuarımızda, ancak beş sınırı değil yapmak.</li>
</ol>7. alarak seri bölümler (şekil 10-12)
<ol><li>'Bölüm-holding loop'23 yerleştirin (döngü iç çapı: 5.0 mm) (şekil 10a) üçüncü bölüm grubu (şekil 10b) üzerinde. Not: Uygun sırada fotoğraf çekmek için onların kesit sırasına göre bölümler almak gereklidir. Bıçak teknede beş bölüm grupları olduğundan, ancak, bu kez hangi grupları olan kafa karıştırıcı alır. Üçüncü grup üzerinde döngü yerleştirerek, iki grup işleci yakın olduğunu ortaya çıkıyor ve operatör üzerinden uzak iki ilk ve ikinci dördüncü ve beşinci gruplarının (şekil 10b) vardır. Bu-ecek önlemek sipariş karıştırma.</li>
	<li>'Su yüzeyi yükselterek loop'23 yerleştirin (WSRL, döngü iç çap: 4.0 mm) (şekil 11a) (şekil 11b) bıçak sahnede. Alt bir mıknatıs ile donatılmış WSRL sıkıca bıçak sahnede stand.<ol>
<li>WSRL döngü sadece seri bölümler onun mili ve kolu hareket ettirerek yerleştirin. Böylece döngü bölümleri çevreleyen su yüzeyine WSRL döngü indirin.</li>
		<li>Böylece su yüzeyi yüzey gerilimi (rakamlar 11 c-d) tarafından arttıracak vidayı aşağı doğru çevirerek döngü bastır. Bölümü döngünün ortasına doğru taşımak, su tepe üzerinde konumlandırın ve bir saç strand21kullanarak bölümü yönünü ayarlayın.</li>
		<li>Bölüm grupları ile bir çıplak yarık-cımbız tarafından düzenlenen ve su yüzeyine (Şekil 11 d) paralel tutulan GRID, dokunarak seçin. İlk olarak, grid dokunmak değil su bölümleri tam olarak ızgara (Şekil 11 d) ortasına yerleştirmek için bölümler için önemlidir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bölümleri ile birlikte küçük bir damla su ile Izgaralar Formvar destek film16 üzerinde (şekil 12) yerleştirin ve aşırı su filtre kağıdı kullanarak kaldırın. Not: bölümler membran (bölümler) membran (destek film) doğrudan dokunuyor çünkü bir destek film ile kullanılması çekildiği zaman destek film kırışıklıklar genellikle bir sorundur. Destek filmde kırışıklar çıkıyor sorun Formvar destek film16üzerinde küçük bir damla su ile birlikte bir bölümü taşıyan kılavuz yerleştirerek önemli ölçüde azalır.</li>
</ol>8. bölüm16,24 (şekil 13) Boyama
<ol><li>Sonra bölümleri tamamen kurutulur, Formvar filmin Izgaralar çevresinde gözyaşı ve bölümleri taşıyan ızgaraları kaldırmak.</li>
	<li>Doğru sırada (şekil 13) Boyama tüp16 oluk Izgaralar ayarlayın ve uranyl asetat ve kurşun sitrat24bölümlerle leke. Not: Bir oluk 0.6 mm derin 's tüp uzun ekseni boyunca kesilmiş bir tıraş bıçağı ile. Tüp doğrudan ızgaraları kullanımı boyama ve yıkama işlemi16sırasında gerekli olmadığından cımbız, kullanırken destek filmlerin yanlışlıkla kırılma önlemek için yararlıdır.</li>
</ol>9. gözlem seri bölümler (Şekil 14)
<ol><li>Numune tutucu eksenine dikey kılavuz slit uzun ekseninin yönlendirme 5 Izgaralar çok numune tutucu (şekil 14a), doğru sırayla ayarlayın. 'Kılavuz-fixers' tutamaçları dokunmatik değil çünkü Izgaralar kolları (ok uçları) kesilecek, yok.</li>
	<li>Izgaralar 'kılavuz-fixers ile' (şekil 14b) düzeltmek ve numune tutucu transmisyon elektron mikroskobu yerleştirin. Not: Hedef hücre Fotoğraf çekmeden önce tüm hücre bölümleri (iyi fiksasyon ile hayır kirlenme ile iyi durumda ilginç mikroorganizmaların veya hücreleri bulmak için,şekil 15) düşük büyütme görüntüleri almak yararlıdır.</li>
	<li>Yüksek büyütmede tüm hücre bölümlerde hedef hücreleri resimlerini çekmek.</li>
</ol>

<ol><li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+spindle+pole+body+duplicates+in+early+G1+phase+in+a+pathogenic+yeast+Exophiala+dermatitidis%3A+an+ultrastructural+study%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">The spindle pole body duplicates in early G1 phase in a pathogenic yeast Exophiala dermatitidis: an ultrastructural study.</a> Exp. Cell Res. 279, 71-79 (2002).</li>
<li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+spindle+pole+body+of+the+pathogenic+yeast+Exophiala+dermatitidis%3A+variation+in+morphology+and+positional+relationship+to+the+nucleolus+and+the+bud+in+interphase+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The spindle pole body of the pathogenic yeast Exophiala dermatitidis: variation in morphology and positional relationship to the nucleolus and the bud in interphase cells.</a> Eur. J. Cell Biol. 82, 531-538 (2003).</li>
<li>Yamaguchi, M. <a target="_blank" href="http://cat.inist.fr/?aModele=afficheN&cpsidt=17883841">Quantitative and dynamic ultrastructure of yeast cells by electron microscopy.</a> Recent Res. Dev. Microbiology. 8, 219-243 (2004).</li>
<li>Yamaguchi, M., Biswas, S. K., Ohkusu, M., Takeo, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+the+spindle+pole+body+of+the+pathogenic+yeast+Cryptococcus+neoformans+examined+by+freeze-substitution+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Dynamics of the spindle pole body of the pathogenic yeast Cryptococcus neoformans examined by freeze-substitution electron microscopy.</a> FEMS Microbiol. Lett. 296, 257-265 (2009).</li>
<li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+spindle+pole+body+of+the+pathogenic+yeast+Cryptococcus+neoformans%3A+variation+in+morphology+and+positional+relationship+with+the+nucleolus+and+the+bud+in+interphase+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc%22%5BJournal%5D)">The spindle pole body of the pathogenic yeast Cryptococcus neoformans: variation in morphology and positional relationship with the nucleolus and the bud in interphase cells.</a> J. Electron Microsc. 59, 165-172 (2010).</li>
<li>Yamaguchi, M. Structome of Exophiala yeast cells determined by freeze-substitution and serial ultrathin sectioning electron microscopy. Curr. Trends Microbiol. 2, 1-12 (2006).</li>
<li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structome+of+Saccharomyces+cerevisiae+determined+by+freeze-substitution+and+serial+ultrathin+sectioning+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc%22%5BJournal%5D)">Structome of Saccharomyces cerevisiae determined by freeze-substitution and serial ultrathin sectioning electron microscopy.</a> J. Electron Microsc. 60, 321-335 (2011).</li>
<li>Biswas, S. K., Yamaguchi, M., Naoe, N., Takashima, T., Takeo, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+three-dimensional+structural+analysis+of+Exophiala+dermatitidis+yeast+cells+by+freeze-substitution+and+serial+ultrathin+sectioning%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc%22%5BJournal%5D)">Quantitative three-dimensional structural analysis of Exophiala dermatitidis yeast cells by freeze-substitution and serial ultrathin sectioning.</a> J. Electron Microsc. 52, 133-143 (2003).</li>
<li>Yamada, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structome+analysis+of+Escherichia+coli.+cells+by+serial+ultrathin+sectioning+reveals+the+precise+cell+profiles+and+the+ribosome+density%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy%22%5BJournal%5D)">Structome analysis of Escherichia coli. cells by serial ultrathin sectioning reveals the precise cell profiles and the ribosome density.</a> Microscopy. 66, 283-294 (2017).</li>
<li>Yamada, H., Yamaguchi, M., Chikamatsu, K., Aono, A., Mitarai, S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4309607/">Structome analysis of virulent Mycobacterium tuberculosis, which survives with only 700 ribosomes at density per 0.1 fl cytoplasm.</a> PLoS ONE. 10, e0117109(2015).</li>
<li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-voltage+electron+microscopy+tomography+and+structome+analysis+of+unique+spiral+bacteria+from+the+deep+sea%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy%22%5BJournal%5D)">High-voltage electron microscopy tomography and structome analysis of unique spiral bacteria from the deep sea.</a> Microscopy. 65, 363-369 (2016).</li>
<li>Yamaguchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prokaryote+or+eukaryote%3F+A+unique+microorganism+from+the+deep-sea%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc%22%5BJournal%5D)">Prokaryote or eukaryote? A unique microorganism from the deep-sea.</a> J. Electron Microsc. 61, 423-431 (2012).</li>
<li>Yamaguchi, M. <a target="_blank" href="https://www.jstage.jst.go.jp/article/cytologia/78/4/78_333/_article">Ultrathin sectioning of the Myojin parakaryote discovered in the deep sea.</a> Cytologia. 78, 333-334 (2013).</li>
<li>Yamaguchi, M., Worman, C. O. <a target="_blank" href="http://protistology.jp/journal/jjp47/JJP47YAMAGUCHI.pdf">Deep-sea microorganisms and the origin of the eukaryotic cell.</a> Jpn. J. Protozool. 47, 29-48 (2014).</li>
<li>Yamaguchi, M. <a target="_blank" href="https://www.jstage.jst.go.jp/article/myco/65/2/65_81/_article/-char/ja/">An electron microscopic study of microorganisms: from influenza virus to deep-sea microorganisms.</a> JSM Mycotoxins. 65, 81-99 (2015).</li>
<li>Yamaguchi, M., Okada, H., Namiki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Smart+specimen+preparation+for+freeze-substitution+and+serial+ultrathin+sectioning+of+yeast+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc%22%5BJournal%5D)">Smart specimen preparation for freeze-substitution and serial ultrathin sectioning of yeast cells.</a> J. Electron Microsc. 58, 261-266 (2009).</li>
<li>Yamaguchi, M., Biswas, S. K., Suzuki, Y., Furukawa, H., Takeo, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+reconstruction+of+a+pathogenic+yeast+Exophiala+dermatitidis+cell+by+freeze-substitution+and+serial+sectioning+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional reconstruction of a pathogenic yeast Exophiala dermatitidis cell by freeze-substitution and serial sectioning electron microscopy.</a> FEMS Microbiol. Lett. 219, 17-21 (2003).</li>
<li>Kozubowski, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ordered+kinetochore+assembly+in+the+human+pathogenic+basidiomycetous+yeast%2C+Cryptococcus+neoformans%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Ordered kinetochore assembly in the human pathogenic basidiomycetous yeast, Cryptococcus neoformans.</a> mBio. 4, e00614-e00613 (2013).</li>
<li>Yamaguchi, M., Adachi, K. Specimen support. <a target="_blank" href="http://microscopy.or.jp/english/">Guide Book for Electron Microscopy</a>. The Japanese Society of Microscopy, , 2nd ed, Kokusaibunkeninsatsusya, Tokyo. 52-57 (2011).</li>
<li>Hayat, M. A. Support films. <a target="_blank" href="https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19822298860">Principles and Techniques of Electron Microscopy: Biological Application</a>. , 4th ed, Cambridge, Univ. Press. Cambridge, United Kingdom. 216(2000).</li>
<li>Yamaguchi, M., Kita, S. Ultrathin sectioning. <a target="_blank" href="http://microscopy.or.jp/english/">Guide Book for Electron Microscopy</a>. The Japanese Society of Microscopy, , 2nd ed, Kokusaibunkeninsatsusya, Tokyo. 40-52 (2011).</li>
<li>Yamaguchi, M., Aoyama, T., Yamada, N., Chibana, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+measurement+of+hydrophilicity%2Fhydrophobicity+of+the+plasma-polymerized+naphthalene+film+%28Super+support+film%29+and+other+support+films+and+grids+in+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy%22%5BJournal%5D)">Quantitative measurement of hydrophilicity/hydrophobicity of the plasma-polymerized naphthalene film (Super support film) and other support films and grids in electron microscopy.</a> Microscopy. 65, 444-450 (2016).</li>
<li>Kita, S. Reliable method for obtaining serial ultrathin sections using new small tools. Kenbikyo. 46, in Japanese 253-257 (2011).</li>
<li>Yamaguchi, M., Shimizu, M., Yamaguchi, T., Ohkusu, M., Kawamoto, S. <a target="_blank" href="https://www.jstage.jst.go.jp/article/plmorphol1989/17/1/17_1_57/_article/-char/ja/">Repeated use of uranyl acetate solution in section staining in transmission electron microscopy.</a> Plant Morphology. 17, 57-59 (2005).</li>
<li>Hayworth, K. J., Kasthuri, N., Schalek, R., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="http://homes.mpimf-heidelberg.mpg.de/~mhelmsta/pdf/2006%20Hayworth%20Kasthuri%20Schalek%20Lichtman%20MicroscMicroanal.pdf">Automating the collection of ultrathin serial sections for large volume TEM reconstructions.</a> Microsc. Microanal. 12, Suppl . 2. 86-87 (2006).</li>
<li>Hildebrand, D. G. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+serial-section+electron+microscopy+in+larval+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Whole-brain serial-section electron microscopy in larval zebrafish.</a> Nature. 545, 345-349 (2017).</li>
<li>Denk, W., Horstmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+block-face+scanning+electron+microscopy+to+reconstruct+three-dimensional+tissue+nanostructure%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Serial block-face scanning electron microscopy to reconstruct three-dimensional tissue nanostructure.</a> PLoS Biol. 2, e329(2004).</li>
<li>Heymann, J. A. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Site-specific+3D+imaging+of+cells+and+tissues+with+a+dual+beam+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">Site-specific 3D imaging of cells and tissues with a dual beam microscope.</a> J. Struct. Biol. 155, 63-73 (2006).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Burada sunulan yöntem hiçbir pahalı ekipman gerektirir. Sadece bir alüminyum raf (şekil 3), üç-yarık Izgaralar (şekil 6 c), bölüm-holding döngüler (şekil 10a), su yüzeyi yükselterek döngü (şekil 11a) ve boyama tüp (şekil 13) gerektirir. Mevcut yöntemin birçok özellikleri vardır. Numune büyük bölümünü birbirine paralel karşılaştıkları numune yüzeyi ve bıçak kenarı ayarlamak ...

Hücreleri ve hücre bileşenleri üç boyutlu en elektron mikroskobik düzeyde çalışmaya uygun seri ultrathin parça tekniği vazgeçilmezdir. Biz Milli direk vücutta hücre döngüsünün Maya hücreleri dinamikleri okudu ve hücre döngüsü ve çoğaltma1,2,3, saat onların ultrastructure morfolojik değişiklikler ortaya 4,5. 2006'da, biz 'structure' birleştirerek yeni bir kelime 'structome' icat ve '-ome' ve 'nicel ve üç boyutlu yapısal bilgi elektron mikroskobik düzeyde bütün bir hücrenin' 6,7olarak tanımlanır.
Seri ultrathin parça tekniği gerektiren structome analiz, bu Maya hücre Saccharomyces cerevisiae ve Exophiala kemiğin yaklaşık 200.000 ribozomlara7,8, bir vardı bulundu Escherichia coli hücre 26.000 ribozomlara9, Mycobacterium tüberküloz hücre 1,700 ribozomlara10 vardı ve Myojin sarmal bakterilerin vardı sadece 300 ribozomlara11. Bu bilgiler sadece büyüme oranı her organizma, aynı zamanda tür9tanımlaması tahmininde yararlı olur.
Ayrıca, structome analiz yeni bir organizma keşfi yol açtı; Kapalı hücre yapısı vardı bir ara bu12,13,14,15prokaryot ve Ökaryotlar arasında Japonya sahillerine, derin deniz Parakaryon myojinensis bulundu. Şu anda, seri ultrathin parça tekniği master için uzun bir süre süreceğini zor olarak kabul edilir. Bu çalışmada, hangi içinde kimse seri ultrathin zorlanmadan kesit yerine güvenilir bir yöntem geliştirdik.

<table><tbody><tr><td>Formvar yapma aparatı</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>652</td><td>W 180 x D 180 x H 300 mm</td></tr><tr><td>Cam slayt</td><td>Matsunami Co. Ltd., Osaka-76</td><td></td> <td>x 26 x 1.3 mm</td></tr><tr><td>4 mm delikli alüminyum raf</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>658</td><td>W 30 x D 25 x H 3 mm, Bu kağıda bakın</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Nikon Co. Ltd., </td><td></td><td>Tokyo-SMZ 645</td></tr><tr><td>Stereomikroskop için LED aydınlatma</td><td>Nikon Co. Ltd.,</td><td></td> <td>Tokyo-SM-LW 61 Ji</td></tr><tr><td>Kırpma aşaması</td><td>Sunmag Co.Ltd.,</td> <td>Tokyo-Devirme</td> <td>mekanizması donanımlı, Bu kağıda bakın</td></tr><tr><td>Kırpma aşaması için LED aydınlatma</td><td>Sunmag Co.Ltd.,</td> <td>Tokyo-Bu</td> <td>kağıda bakın</td></tr><tr><td>Ultrasonik düzeltme bıçağı</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>5240</td><td>EM-240, Bu kağıda bakın</td></tr><tr><td></td><td>Diatome Co. Ltd.,</td> <td>İsviçre-45&</td><td>deg;</td></tr><tr><td>Ultra ince kesit için elmas bıçak</td><td>Diatome Co. Ltd.,</td><td></td> <td>İsviçre-45 derece;</td></tr><tr><td>Ultramicrotome</td><td>Leica Microsystems, Vienna-Ultracut</td><td></td> <td>S</td></tr><tr><td>Mesa cut</td><td>Leica Microsystems,</td> <td>Viyana-Ayna</td><td></td></tr> <tr><td>%0,5 Neopren W solüsyonu</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>605</td><td></td></tr><tr><td>Özel 3 yarıklı nikel ızgara</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>2458</td><td>Bu kağıda bakın</td></tr><tr><td>Özel 3 yarıklı bakır ızgara</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>2459</td><td>Bu makaleye bakın</td></tr><tr><td>Bölüm tutma döngüsü</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>526</td><td>Bu makaleye bakın</td></tr><tr><td>Su yüzeyi yükseltme döngüsü</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>527</td><td>Bu kağıda bakın</td></tr><tr><td>Boyama tüpü</td><td>Nisshin EM Co. Ltd., Tokyo</td><td>463</td><td>Bu makaleye bakın</td></tr><tr><td>Çoklu numune tutucu</td><td>JEOL Co. Ltd.,</td><td></td> <td>Tokyo-EM-11170</td></tr><tr><td>JEM-1400</td><td>JEOL Co. Ltd.,</td> <td>Tokyo-Transmisyon</td> <td>elektron mikroskobu</td></tr></tbody></table>

transmisyon elektron mikroskobu mikroorganizmaların seri ultrathin bölümler elde etmek için bir yöntem

A Method for Obtaining Serial Ultrathin Sections of Microorganisms in Transmission Electron Microscopy

Hücreleri ve hücre bileşenleri transmisyon elektron mikroskobu yüksek büyütmede üç boyutlu gözlem ultrathin bölümlerini seri: numune hazırlama gerektirir. Seri ultrathin bölümler hazırlama çok zor olarak kabul edilir, uygun yöntemi kullanılırsa oldukça kolay olsa da. Bu yazıda, güvenli bir şekilde mikroorganizmaların seri ultrathin bölümler elde etmek için bir adım adım yordam göstereceğiz. Bu yöntem anahtar noktaları vardır: 1) numune büyük bölümünü kullanmak ve böylece birbirine; paralel numune yüzeyi ve bıçak kenarı ayarlamak için 2) seri grupları bölümlerde kesme ve saç iplikçiklerinin dibinde bir çift yarık Izgaralar üzerine seri bölümler bir grup alınırken kullanma bölümlerine ayırmak zorluk önlemek için; 3) bir 'bölüm-holding loop' kullanın ve bölüm grupları sipariş kadar karıştırma önlemek için; 4) bölümleri su tepe üzerinde konumlandırılmış ve ızgara önce onları Izgaralar üzerinde istediğiniz konuma yerleştirmek için dokundukları olduğunu emin olun ve bir 'su yüzeyi yükselterek loop' kullanmak için; 5) destek film bir alüminyum raf kullanabilir ve Izgaralar bölümleri kurtarmak için ve destek film kırışıklıklar önlemek için kolaylaştırmak için; ve 6) Boyama bir tüp kullanın ve destek filmleri cımbızla yanlışlıkla kesmemek için. Bu yeni yöntem zorluk olmadan seri ultrathin bölümler elde sağlar. Yönteminin Otomatik teyp toplama ultramicrotome yöntemi ve seri blok-yüz veya elektron mikroskobu tarama odaklı iyon ışını kullanarak elde edilemez 3D yüksek çözünürlükte mikroorganizmaların hücre yapıları analiz olanak sağlar.

Bu protokol için üç-yarık Izgaralar seri bölümleri seçmek için kullanılmıştır. Izgaralar nikel veya bakır yapılmıştır. Seri bölümleri orta slit yerleştirilir. Her iki tarafta yırtmaçlı kılavuzla aldığın zaman bölümleri görüntülemek gereklidir. Izgaralar seri bölümleri ile paralel (Şekil 11 d) cımbızla almaya devam etmek, kolu bükülmüş (şekil 6 c, sağ). Küçük bir kolu ciddi sorunlara neden olan bölümleri toplama, kılavuz, ana parç...

Bu çalışmada bir mikroorganizma transmisyon elektron mikroskobu içinde pahalı aletler olmadan seri ultrathin bölümleri elde etmek için güvenilir ve kolay yordamları sunar.

Transmisyon elektron mikroskobu mikroorganizmaların seri Ultrathin bölümler elde etmek için bir yöntem

Observing cells and cell components in three dimensions at high magnification in transmission electron microscopy requires preparing serial ultrathin ...

Bu prosedürün genel amacı, seri ultrayin kesitleri güvenli ve kolay bir şekilde almaktır. Bu yöntem, elektron mikroskobik düzeyde bütün bir hücrenin kantitatif ve üç boyutlu yapısal bilgilerini sağlayarak hücre biyolojisi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, seri ultrayin kesit alımının pahalı bir makineye ihtiyaç duyulmadan yapılabilmesi ve bu yöntemle yüksek çözünürlüklü görüntüler elde edilebilmesidir.Bu prosedüre başlamak için bir lamın yüzeyini temizleyin. Ardından, Formvar destek film hazırlama düzeneğinin üst kolonundaki %1,5'lik Formvar çözeltisine, bir kauçuk top yardımıyla üç yollu musluktan havayla bastırarak lamın yarısını daldırın. Üç yollu musluğu açıp basıncı düşürmek için havayı tahliye ederek çözeltiyi kolondan boşaltın.Ardından cam lamı cihazdan çıkarın ve cam lamın yüzeyinde bir film tabakası oluşturmak için havada kurutun. Cam lam üzerindeki filmin dört kenarını bir jiletle kazıyın. Filmin lamdan ayrılmasını kolaylaştırmak için lamın üzerine nefesinizle buhar yaptıktan sonra, cam lamı düşük bir yatay açıyla yavaşça suyun içine daldırarak filmi yüzdürerek ayırın.Ardından, delikli bir alüminyum raf kullanarak Formvar filmi sudan çıkarın. Örnek bloğunu bir stereo mikroskop altında ultrasonik düzeltme bıçağı ve jiletle düzeltmek için, öncelikle ışık mikroskobu ile bloğun ucunu gözlemleyerek yüzeyde hücrelerin olduğundan emin olun. Daha sonra örnek bloğunu mandrene yerleştirin ve mandreni bir düzeltme tablasına monte edin.Blokları 0,7 by 1,0 milimetre boyutunda kırpın. Epoksi reçine çok sertse, önce ultrasonik kırpma bıçağı kullanarak kutuyu kırpın, ardından bloğu bir jilet ile daha fazla kırpın. Kesim yönünü belirlemek için bir omuz kesin.Mikrotom kullanarak numune bloğunu elmas bıçakla düzeltmek için, numune bloğu tutucusunu ultra mikrotomun numune tutucusuna yerleştirin. Bloğun yüzeyini elmas düzeltme bıçağı ile kesin. Elmas bıçağın kenarını numune bloğunun yüzeyine paralel hale getirin ve herhangi bir numune kaybı yaşamamak için numune yüzeyinden minimum miktarda kesim yapın.Bıçak tablasını 30 derece sola döndürerek, düzeltme bıçağı ile bloğun sol kenarını kesin. Bu kenar, seri kesit alma işleminde örneğin üst tarafı olacaktır. Ardından, bıçak tablasını 30 derece sağa döndürerek bloğun yüzeyini, örneğin sol kenarından yaklaşık 100 mikron uzaklıktan kesin.Bu kenar, seri kesit alma işleminde numunenin alt tarafını oluşturur. Trimming bıçağını çıkarın ve numune bloğunu saat yönünde 90 derece döndürün. Bıçak tablasına bir ultra ince kesit alma bıçağı yerleştirin.Numune yüzeyinin geniş kısmını kullanarak, numune yüzeyi ile bıçak kenarının birbirine paralel olacak şekilde ayarlanmasını sağlayın. Ardından, mikrotomun tutucuya ve tutucu holderına bant yapıştırın ve bandı sınır hattından kesin. Numune tutucusunu mikrotomdan çıkarın ve stereo mikroskobun altına yerleştirin.Seri kesitlerin alınacağı ince kısım kalacak şekilde, numunenin büyük kısmını bir jiletle kesin. Seri kesit alma işlemi için kullanılacak numunenin üzerine bir Pasteur pipeti yardımıyla yaklaşık 1 µL %0,5 Neoprene çözeltisi damlatarak kesit yanlarını yapışkan hale getirin. Ardından numunenin tamamını Neoprene çözeltisi ile kaplayın. Fazla Neoprene çözeltisini, numunenin yakınına yerleştirilen bir filtre kağıdı parçasıyla hemen emdirin.Ardından, seri kesitleri almak için üç adet yarık ızgarası hazırlayın. Bunun için ızgara saplarını 60 dereceye bükün ve ızgaraları %0,5 Neoprene çözeltisi ile işleme tabi tutun. Daha sonra ızgaraları glow discharge yöntemiyle hidrofilik hale getirin.Bantlanmış kısımları hizalayarak numune blok tutucuyu mikrotomda aynı konuma geri yerleştirin. Bu işlem, blok yüzeyinin ve bıçak ağzının birbirine tam paralel kalmasını sağlar. Ardından bıçağı numuneye yaklaştırın.Bıçak teknesi suyla doldurulduktan sonra, hava akışını önlemek için mikrotomu plastik bir kapakla kapatın. Numuneyi 200 nanometre kesit kalınlığında kesmeye başlayın. İlk kesit alındıktan sonra, kesit kalınlığını 70 nanometre olarak ayarlayın.Seri kesit sayısı 20'ye ulaştığında, kesit kalınlığını 10 nanometre olarak ayarlayın. Mikrotom 10 nanometre kalınlığında kesitler alamadığı için yeni bir kesit oluşmaz ve önceden kesilen kesitler bıçak ağzından ayrılır. Ardından, kesit kalınlığını 60 nanometre olarak ayarlayın.Makine önceki 10 nanometrelik kalınlığı ekleyeceği için bu işlem 70 nanometre kalınlığında kesitler oluşturacaktır. Son olarak, kesit kalınlığını tekrar 70 nanometreye ayarlayın ve 1,8 mm uzunluğunda kesitler elde edene kadar kesme işlemine devam edin. Seri kesitleri toplamak için, önce kesit tutma halkasını üçüncü kesit grubunun üzerine yerleştirin.Ardından, su yüzeyi yükseltme halkasını bıçak tablasına yerleştirin. Milini ve sapını hareket ettirerek WSRL halkasını seri kesitlerin hemen üzerine getirin. WSRL halkasını, kesitleri çevreleyecek şekilde su yüzeyine indirin.Vidayı aşağı doğru çevirerek ilmeği aşağı itin, böylece su yüzeyi yüzey gerilimi ile yükselsin. Kesiti ilmeğin merkezine taşıyın. Suyun tepe noktasına yerleştirin ve bir saç teli kullanarak kesitin yönünü ayarlayın.Cımbız yardımıyla desteklenen ve su yüzeyine paralel tutulan boş bir yarık ızgarasına dokunarak kesit gruplarını alın. Kesitlerin bulunduğu ızgaraları, küçük bir su damlasıyla birlikte Formvar destek filmi üzerine yerleştirin. Fazla suyu filtre kağıdı kullanarak temizleyin.Kesitler tamamen kuruduktan sonra, ızgaraların etrafındaki Formvar filmi yırtın ve kesitlerin bulunduğu ızgaraları çıkarın. Izgaraları boyama tüpünün kanalına uygun sırayla yerleştirin ve kesitleri uranil asetat ile kurşun sitratla boyayın. Beş ızgarayı, ızgara yarığının uzun ekseni numune tutucu eksenine dik olacak şekilde yönlendirerek, çoklu numune tutucuya uygun sırayla yerleştirin.Izgarayı ızgara sabitleyiciler ile sabitleyin ve numune tutucuyu transmisyon elektron mikroskobuna yerleştirin. Hedef hücrelerin ve tüm hücre kesitlerinin yüksek büyütmede fotoğraflarını çekmeye geçin. Burada, seri kesitler taşıyan beş ızgaranın düşük büyütmeli bir görünümü gösterilmektedir.Bir ızgara üzerine 18-25 kesit yerleştirildi. Kesitlerin birbirine bitişik olduğuna ve aynı kalınlıkta olduğuna dikkat edin. Perikaryon miyogenezinin seri kesitleri burada gösterilmektedir.Şekil, 67 tam kesitten 12 tanesini göstermektedir. Bu hücrenin, tek bir nükleoid membranına sahip çıplak DNA liflerinden oluşan geniş bir nükleoid ile bakterilere benzeyen endosimbiyontlara sahip olduğu, ancak mitokondri içermediği saptanmıştır. Bu nedenle, bu organizma prokaryottan ökaryota evrilen ara bir yaşam formu gibi görünmektedir.Burada Escherichia coli'nin seri kesitleri gösterilmektedir. Şekil, 12 tam kesiti göstermektedir. İlginç bir şekilde, bu hücrenin 21.700 ribozom içerdiği tespit edilmiştir.Bu videoyu izledikten sonra, seri ultraince kesitlerin nasıl hazırlanacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Bu teknikte uzmanlaşıldığında, işlem uygun şekilde yürütülürse üç saat içinde tamamlanabilir.

a-method-for-obtaining-serial-ultrathin-sections-microorganisms

Research

JoVE Journal

Engineering

Mühendislik

Kaynak: Lutz, D., et.al.  Gelişmekte Olan Fare Beyin ve Omuriliğinin İn Utero Transdüksiyonu Sonrası Ultrastrüktürel Nöroplastisite Parametrelerinin Değerlendirilmesi. J. Vis. Uzm.  (2019). Bu video, bir fare yavrusundan alınan bir beyin bölümünün hazırlanması ve transmisyon elektron mikroskobu (TEM) analizini göstermektedir. Protokol, reçineye gömülü osmiyum tetroksit ile sabitlenmiş doku ile başlar, ardından ilgilenilen bölgeyi izole etmek için hassas kesme ve sırasıyla ışık mikroskobu ve TEM...

Transmisyon Elektron Mikroskobu Kullanılarak Bir Fare Beyin Bölümünün Ultrastrüktürel Analizi

Burada, transmisyon elektron mikroskobu (TEM) analizi için düşük hücre sayılı numunelerin hazırlanmasına yönelik bir protokol sunuyoruz.

TEM analizi için düşük Hücre sayısı ile örnek hazırlanması için alternatif bir yaklaşım

Bu rapor, kalın biyolojik örneklerin taramalı transmisyon elektron tomografisini gerçekleştirmek için bir numune hazırlama protokolünü ve özel görüntüleme koşullarını açıklar.

Tarama Transmisyon Elektron Tomografi ile hazırlanması ve Kalın Biyolojik Örneklerinin Gözlem

Burada, kolay ve düşük maliyetli sağlar ve zaman tasarrufu sağlayan bir protokol kimyasal transmisyon elektron mikroskobu için immünohistokimya ön gömme uyumlu uzun süreli koruma sağlayan, akrolein sabitleyici ile primat beyin dokusunun düzeltmek için.

İmmünohistokimya ve elektron mikroskobu Ön gömme için İnsan Olmayan Primat Beyin Dokusu Hazırlanması

Bu iletişim kuralı bir Taramalı elektron mikroskobu (SEM) kullanarak Nano çözünürlükte görüntüleme için bir doku belirli hücreleri hedef alıyor. Biyolojik malzeme reçine gömülü seri bölümleri çok sayıda hedefi tanımlamak için bir ışık mikroskobu ve sonra SEM hiyerarşik bir düzen izler ilk...

Geniş hacimli içinde belirli hücresel hedefleri bulmak için seri bölümlerin Multimodal hiyerarşik görüntüleme

Fiksasyon, parafin katıştırma ve mikrobiyal koloni biyofilmler için ince parça teknikler açıklanmaktadır. Hazır örnekleri, mikroskobu tarafından biyofilm altyapı ve muhabir ifade desenleri görüntülenmeyecektir.

Parafin gömme ve ince mikrobiyal koloni biyofilmler mikroskobik analizlerin yapıldığı için kesit

Genetik modifikasyondan sonra tüm hücrelerde mitokondri ve endoplazmik retiplinin dağılımını incelemek için bir protokol sunuyoruz, askorbat peroksidaz 2 ve horserpu peroksidaz boyama da dahil olmak üzere bağıntılı ışık ve hacim Elektron Mikroskopisi kullanılarak aynı bölümde hedef geni olan ve olmayan hücrelerin seri bölümlemesi ve elektron mikroskobu ile seri görüntüleme.

Göreli ışık ve hacim elektron mikroskobu ile mitokondri ve endoplazmik reticulum görüntüleme

Burada bakteri, maya, kültürlü hücreler, izole hücreler, hayvan ve insan dokuları ve virüsler de dahil olmak üzere biyolojik örneklerin hızlı donması için sandviç dondurma cihazının nasıl kullanılacağını gösteriyoruz. Ayrıca, hızlı donma işleminden sonra ultra ince kesitler için numunelerin nasıl hazırlanacağını da gösteriyoruz.

Elektron Mikroskopisinde Biyolojik Örneklerin İyi Ultrayapısal Korunması için Sandviç Dondurma Cihazı Kullanılarak Hızlı Dondurma

Karaciğerden hepatositlerdeki organeller veya diğer dokulardaki hücreler arasındaki membran temas bölgelerinin üç boyutlu ayrıntılarını elde etmek için basit ve kapsamlı bir protokoldür.

Hepatositlerde Organeller Arası Temas Bölgelerinin Seri Kesitli Elektron Mikroskobu Kullanılarak Üç Boyutlu Karakterizasyonu

Bu protokol, mikoheterotrofik bitki örneklerinin toplanması, sabitlenmesi ve sürdürülmesi için ayrıntılı prosedürler sağlamayı, mikorizal mantarlarla çimlenmiş bitki dokularında ve tohumlarda mantar kolonizasyonunu incelemek için tarama ve iletim elektron mikroskobu, ışık, konfokal ve floresan mikroskobu gibi farklı mikroskopi tekniklerini uygulamayı amaçlamaktadır.

Mikoheterotrofik Bitki Dokularında Mantar Kolonizasyonunu Yorumlamak ve Tohumların Simbiyotik Çimlenmesi için Mikroskopi Teknikleri

Bu video protokolü, virolojik örneklerin taramalı transmisyon elektron mikroskobu tomografisinin nasıl gerçekleştirileceğini göstermektedir. Optimum sonuçlar için numuneler, yüksek basınçlı dondurma ve ardından dondurma ikamesi ile hazırlanır.

Virolojide Taramalı Transmisyon Elektron Mikroskobu Tomografisi: Yüksek Basınçlı Dondurulmuş, Dondurularak İkame Edilmiş Örneklerin 3 Boyutlu Görüntülenmesi

Öğrenin, transmisyon elektron mikroskobu için mikroorganizmaların seri ultrathin kesitlerini pahalı ekipman kullanmadan güvenli ve kolay bir şekilde elde etme yöntemini. Bu teknik, hücre biyolojisi araştırmalarında üç boyutlu yapısal bilgi sağlar.

Transmisyon elektron mikroskobu mikroorganizmaların seri Ultrathin bölümler elde etmek için bir yöntem

Daha fazla video keşfet