Name: Tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (TXL) için miyopi Cross-linking değerlendirilmesi için (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 25 s
Description: Keşfedin ikinci harmonik üretimi mikroskopisi ile tavşan sklera dokusunda kollajen çapraz bağlanmasını görselleştirme ve ölçme yöntemini. Bu teknik, tedavi edici doku çapraz bağlanmasını invaziv olmayan şekilde değerlendirmeye olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Tongalp Tezel, MD, istişare sT enjeksiyon ile ilgili için teşekkür ederiz; Theresa Swayne, doktora, Danışma SHG mikroskobu ile ilgili olarak; ve Jimmy Duong tasarım ve Biyoistatistik kaynak ve Biostatistical çekirdek tesisi Columbia Üniversitesi Tıp Merkezi Irving Enstitüsü.
Kısmen körlüğü önlemek için araştırma ve ulusal kurumları, sağlık hibe NCRR UL1RR024156, NEI P30 EY019007, ncı P30 CA013696 ve NEI R01EY020495 (DCP) tarafından desteklenen. Columbia Üniversitesi'nde ilgili fikri mülkiyet sahibi: verilen ABD patent no: 8,466,203 ve yok: 9,125,856. Uluslararası patent bekleyen: PCT/US2015/020276.
Görüntüleri Confocal içinde toplanan ve İhtisas mikroskobu paylaşılan kaynak-Herbert Irving kapsamlı Kanser Merkezi, Columbia Üniversitesi, NIH tarafından desteklenen hibe #P30 CA013696 (Ulusal Kanser Enstitüsü). Confocal mikroskop NIH ile satın alınmış #S10 RR025686 verin.

Tüm yordamları kullanarak kadavra tavşan gözler bozulmadan outbred tavşan başkanları içinde gerçekleştirilmiştir. Bakım ve laboratuvar hayvanlarının kullanımı tüm kurumsal ve ulusal yönergeleri takip edildi.
1. hazırlanması çözümleri
<ol><li>TXL için SMG hazırlık:<ol>
<li>1 mL 0,2 M konsantrasyon sodyum bikarbonat çözüm (NaHCO3) çözüm 0.0165 g 1 mL distile su içinde çözünmüş NaHCO3 tozu kullanarak hazırlayın.</li>
		<li>Toz sodyum hydroxymethylglycinate (SMG) 0.1016 mg 1 mL distile su 800 mM SMG son bir konsantrasyon almak için geçiyoruz. Sodyum bikarbonat çözüm 0.1 M NaHCO3 ve 400 mM SMG son bir konsantrasyon için ayarlayın. SMG konsantrasyonları bağlı olarak istenilen cross-linking etkisi. Burada açıklanan protokolünde 40, 100 ve 400 mM SMG kullanılır.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. subTenon'ın enjeksiyon TXL SMG kullanmak için
<ol><li>İki 1 mL insülin şırınga (25 G iğneler) 400 µL kontrol ve SMG çözüm, sırasıyla doldurun.</li>
	<li>Tavşan kafası profil uçağa yardımı ile bir yastık yerleştirin. Strafor veya bir kağıt yığını kafa içinde en uygun bir pozisyon düzeltmek için kullanılabilir.</li>
	<li>Göz kapakları ile Pediatrik göz spekulum geri çek.</li>
	<li>İlk göz içi basıncı (GiB) bir applanation tonometry aygıtı kullanarak ölçmek.</li>
	<li>Bir doku işaretçisi ile işaret amaçlanan enjeksiyon limbus üst orta kısmında yer.</li>
	<li>Konjonktival forseps (veya herhangi bir Forseps ile tırtıklı yuvarlak uç) ile Enjeksiyon Makinası çevreleyen konjonktiva geri çekmek ve bilir'ın kapsül biraz ötesinde işaretli limbal sitesi (Yani, 2-3 girme konjonktiva, iğne ekleme ««limbus mm'den). Konjonktiva küçük bir insizyon attım da Iris makasla bilir'ın kapsül ile iğne geçişini kolaylaştırmak amacıyla yapılabilir.</li>
	<li>Bir kez bilir'ın kapsül içinde yan yana hareket ettirerek iğne serbestçe hareket eden olduğundan emin olun. Bu süre boyunca, dünya taşımamalısınız. Bu alt-bilir'ın (sT) sklera yukarıda iğne uygun yerleştirme onaylar alanı.</li>
	<li>Eriyik--dan belgili tanımlık tenkıye enjekte ve iğne atın. Hemen enjeksiyonu, bir ön şişkinliği konjonktiva (örneğin, chemosis) görülen oluşturma sT alanda sıvı birikir.</li>
	<li>GiB ölçüm amacıyla Dünya yanlışlıkla bir delikli nedeniyle değişmedi onaylamak için yineleyin.</li>
	<li>Kapak spekulum kaldırmak ve kapalı göz kapakları ile dijital masaj yaklaşık 2-3 dakika için gerçekleştirin.</li>
	<li>Baş 3.5 h bir kuluçka dönemi için bırakın (Oda sıcaklığı 18 ° C =), sonraki adıma geçmeden önce.</li>
</ol>3. doku hazırlık
<ol><li>Dünya erişimi en iyi duruma getirmek için göz kapağı spekulum kullanarak göz kapakları geri çek. Gözün boyutuna göre en iyi şekilde büyüklükte spekulum seçin.</li>
	<li>Limbus çevreleyen konjonktiva ayırın. Zaten enjeksiyon bölgesine yakın kazıma, böylece bir inoculum boyutu yaklaşık 1 x 1 cm içerecektir çepeçevre sınırlarını genişletmek.</li>
	<li>Ekstra oküler kas scleral ekleme kendi sitelerinde de kes.</li>
	<li>Arka taraftan bastırıyor Forseps ile göz küresi yükseltmek. Bu arka dünya erişim sağlar ve optik sinirin oftalmik arter ve ven dünyanın kutup posterior bulunan kesme kolaylaştıracaktır.</li>
	<li>Corneoscleral işaretli enjeksiyon yeri de dahil olmak üzere dış kenarlığı ile karmaşık, kes. Leke hala sklera kalan kısmını görünür olmalıdır.</li>
	<li>Corpus vitreus ve doku Forseps ile çekiş uygulayarak sklera iç tarafına bağlı tüm katmanları kaldırın. Not: Daha fazla adımlar aşağıdaki yordamları üzerinde gerçekleştirilen bağlıdır: 4. - DSC analizi, 5. - SHG mikroskobu.</li>
</ol>4. için bölgesel DSC analizi
<ol><li>
Tedavi göz için: diğer scleral bardaktan makasla kesmek enjeksiyon sitenin üst sektöründe yer alan ve merkezi olarak hizalanmış için dört scleral sektörler. Her iki yan tarafı (Yani, burun ve temporal) ve alt kalan 3 sektörlerden kesti. Not: daha fazla kareler (1-16) ayrılır (1-4) sektörler numaralandırma şekil 1A' gösterilmiştir.</li>
	<li>Scleral sektörler (1-4) daha küçük kareler (1-16) yaklaşık olarak 4 x 4 mm her halinde kesin. Sektör 1 (enjeksiyon tam site bir bireysel kare [kare 2] olun) 9 kareler bölünmüş olmalıdır. Sektör 2 ve 3 (10-11 ve 12-13 kareler) 2 karelere ve sektör 4 (kareler 14-16) 3 karelere bölün.</li>
	<li>Eklenen alanın konumunu analiz dokudan mesafe yerelleştirmek için şekil 1A', gösterildiği gibi her kareye bir numara atamak.</li>
	<li>
Denetim göz için: doku dört scleral sektörler (tedavi dokusu ile benzer) içine bölme doku kare parçalarını dışarı aşağıdaki konumlardan kestikten sonra: 3 kareler üst bölgeden (sektör 1), her iki tarafın (sektör 2 ve 3) ve 1'den 1 alt sektör (sektör 4).</li>
	<li>Gırç kalan retina ve choroidal katmanları ve yıkama iki kez taze PBS ile her zaman çözüm için yaklaşık 10 batık adet bırakarak teker s.</li>
</ol>5. için SHG görüntüleme
<ol><li>1 x 1 cm alan merkezi olarak hizalanmış Enjeksiyon Makinası ile oluşturmak için makas kullanarak sklera üst kısmı kesilmiş.</li>
	<li>Scrape off diğer retina ve choroid katmanları ve çözüm için yaklaşık 10 adet bırakarak her zaman iki kez taze PBS ile yıkayın s.</li>
	<li>Yer 1 mL tüpler doku görüntüleme merkezine ulaşım için PBS çözüm ile dolu. Kuluçka zaman aşağıdaki ve göz küresi diseksiyon ile başlayan tüm yordamları, bir saat içinde yapılmalıdır.</li>
</ol>6. mikroskobu Protokolü
Not: Bu iletişim kuralı için görüntüleme arka dağınık SHG sinyalini kollajen sklera doku mikroskobu tarama lazer için hazırlanmıştır.
<ol><li>
Kurmak mikroskobu
	<ol>
<li>En üst düzeye çıkarmak için sinyal ve kararlılık ne zaman SHG mikroskobu yapmak kullanın bir objektif lens ışık ve yüksek sayısal diyafram (NA) ile kızılötesi iletimi için en iyi duruma getirmek. Bizim hedefimizdir Nikon Apo LWD 25 x / NA1.1 su daldırma.</li>
		<li>Coverslip, 0,17 milimetre kalınlığında örnek derinliği bu durumda eşleştirmek için lens düzeltme yaka ayarlayın.</li>
		<li>25 x objektif lens mount ve görüntüleme yüzey örnek montaj önce karşılamak için su bazlı jel yağlama cömert bir miktar ekleyin. Su bazlı jel deneme sırasında buharlaşır değil ve bu nedenle görüntü kalitesini korur.</li>
		<li>PBS ile 1 mL tüp scleral dokudan iki 25 mm yuvarlak coverslips (episcleral tarafı aşağı) episclera ve coverslip yüzey arasında'deki sağlayan maksimal temas arasında kurutma olmadan yerleştirin. Not: Doku da coverslip üzerinde ele geçen yerleştirilebilir. PBS iyi bir miktar görüntüleme sırasında sulu doku tutmalı. Bu durumda, doku parçası ve PBS cellchamber montaj sonra ekleyin.</li>
		<li>Hücre odası 25 mm yuvarlak coverslip, tek yerleştirerek veya odası alt kısmında bir sandviç tekniği montaj ve mühürlü bir oda oluşturmak için aşağı üst kısmı canı cehenneme. Sıkı bir üst coverslip, yapay olarak düzleştirme önlemek ve dokusuna zarar için kullanıldığında aşağı yatmayacaksın.</li>
		<li>Hücre odası doku örneği ile mikroskop Sahne Alanı'nda bağlayın.</li>
		<li>Mikroskop görünüm iletilen ışık için ayarlayın.</li>
		<li>Sahne getirin ve örnek alt yüzeyine odakta, parlak alan muayene göz parça aracılığıyla tarafından belirlenen öyle ki amaç yüksekliğini ayarlayın.</li>
		<li>Bilgisayar monitörü hariç tüm ışıkları kapatın ve alüminyum folyo levhalar mikroskop Sahne Alanı'nda bol dökümlü ile mümkün olduğu kadar MONITOR gelen ışık engellemek. GaAsP NDD dedektörleri yüksek hassasiyet gibi herhangi bir kaçak ışık dedektörleri ulaşan en aza düşük gürültü satın alma, garanti eder.</li>
		<li>Yazılım Ti Pad panelinde objektif tanımı doğru olup olmadığını denetleyin.</li>
		<li>A1 kompakt GUI panelinde IR lazer görüntüleme için seçin, NDD dedektörleri seçin ve bir 400-450 nm bant filtre ile donatılmış DAPI kanalını seçin.</li>
		<li>860 nm ve açık Kızılötesi Lazer dalga boyu A1 MP GUI Masası'nda ayarlanan çekim.</li>
		<li>Lazer tarama koşulları A1 kompakt GUI panelinde aşağıdaki gibi ayarlayın. Seçin: (a) Galvano inceden inceye gözden geçirmek, (b) tek yönlü tarama, (c) piksel Işınma Zamanı 6.2 µs, (d) çerçeve boyutu 1024 x 1024 piksel, (e) satır ortalama 2 x Not: Galvano inceden inceye gözden geçirmek ve tek yönlü tarama hassas noktasına uyum sağlar. Boyutu 1024 x 1024 tam görüş alanı için 0.5 mikron /pixel piksel boyutunu çevirir. Satır ortalama görüntü çekim gürültü azaltır.</li>
		<li>Lazer güç ve Dedektör kazanç ayarlayarak koşulları A1 kompakt GUI Masası'ndaki görüntüleme ayarla. Geçerli yansımadaki pixel yoğunluk değerleri histogramını görüntüler yukarı bak Tablo panelini (AÜSS) açın. Canlı görüntüleme "Bulmak" modunda açın ve lazer güç ve Dedektör kazanç ayarlayarak piksel aralýðý algılanan en üst düzeye çıkarmak. Doygunluk kaçının. Tipik değerlerdir 2,35 W 860, toplam % 2.5 lazer iktidardan nm ve 100 HV (Dedektör kazanç).</li>
		<li>Not: Bu kurulum için bir dahili güç metre ile ölçülen lazer 5.2 güçtür mW. Her saat bir deney gerçekleştirilir, öyle ki iç güç ölçüm 5.2 sabittir lazer yeniden yüzdeye mW görüntüleme oturumları arasında. Lazer güç ayarlarken özen gösterilmelidir. Bukalemun II lazerdir 3 W lazer 800 nm ve % 10 veya daha yüksek güç potansiyel olarak doku hasarına neden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Resim alma
	<ol>
<li>Önizleme modunda XYZ genel bakış aracını kullanarak doku alan tarama.</li>
		<li>Düşsel hız yukarıya imge içinde bu tarz edinimi için daha düşük çözünürlük (256 x 256 piksel ve hiçbir satır ortalama) için ayarlayın.</li>
		<li>5 x 5, 3 x 3 veya tek alanları doku tüm yüzey kapsayacak şekilde bakış yakalamak. Daha önce genel bakış yakalama her yerde canlı "Scan" modunu ve doku odak haline getirmek. Dokusunun farklı bölgelerde farklı pozisyonlar eksenel yönde olduğunu unutmayın.</li>
		<li>Nerede kollajen lifleri görüş tüm alanı görülür ve o konumda sahne o belirli konuma taşımak için genel bakış aracı çift tıklatın düz bir alan bulun.</li>
		<li>Canlı "Scan" modunu alt uçak odakta öyle ki amaç Z konumunu ayarlamak ve Ti defterinde, Z sürücü optik uçak 10-15 mikron bu alt tabaka üzerinde taşımak için kullanın.</li>
		<li>1024 x 1024 piksel ve ortalama, "Yakala" düğmesini kullanarak 2 x çizgi ile yüksek çözünürlükte bir görüntü elde etmek.</li>
		<li>Kaydetme konumu XYZ genel bakış içindeki "+" düğmesini kullanarak. Bu doku aynı bölgede değil tekrar sağlar.</li>
		<li>Doku her parça için alanları bakış üst üste 10 çekim.</li>
	</ol>
</li>
</ol>7. DSC Protokolü
Not: doku hazırlık tam, bölgesel DSC analizi için veya SHGM gerçekleştirildiğinde doku görüntüleme sonra en kısa zamanda bu adıma geçin.
<ol><li>DSC tava, tartılır ve etiketli hazırlayın. Not: Bu adım, doku kuruma en aza indirmek için doku diseksiyon önce yapılmalıdır.</li>
	<li>Her scleral bir kare bir emici doku ile kuru ve düz dişli forseps kullanarak bir DSC pan dibinde yatıyordu.</li>
	<li>Doku içinde ve kapak sıkışmasını tavayla tartmak ve kaplı doku almak için ağırlık ıslak (örnekleri kütlesi 5-11 mg aralığında olmalıdır). Not: Sonraki doku örneği geçmeden önce crimper kullanarak mühür her pan. Tava hermetik, Termal Analiz önce herhangi bir su kaybını önleme mühürlü.</li>
	<li>Bir kez örnek sıkışmasını, belirlenen konumu DSC tepsiye yerleştirin. Denetim için 6 örnekleri ve 16 tedavi göz için olmalıdır.</li>
	<li>Yazılımları yönetme, doku ağırlığını belirtme aracı kullanarak bir yöntem oluşturun ve aşağıdaki parametreleri kullanarak Termal Analiz çalıştırın: Sıcaklık aralığı 40-80 ° c, Isıtma oranı: 1 ° C/dak, ısı akışı: 17.37 mW, gaz (N2) akış: 19,8 mL/dk, Gaz basıncı: 2,2 bar.</li>
	<li>Bir kez tam, yazılımları yönetme aracı kullanarak hangi termal denatürasyon geçiş sıcaklığı zirvesinde oluşur ayıklanıyor tarafından her örnek için veri analiz.</li>
</ol>8. görüntü analizi
<ol><li>
SHG sinyal
	<ol>
<li>Resmin çoğunlukla kollajen lifleri tarafından işgal öyle ki en az 5-10 her tedavi ve onun kontrol en iyi temsil eden görüntülerin seçin.</li>
		<li>Her resim ImageJ yazılım yükleme ve ortalama piksel yoğunluğu seçerek ölçmek Analiz > ölçüm etkin görüntü için.</li>
		<li>Çıkarılan değerler ortalama piksel yoğunluğu bildirilir ve menüden seçerek histogram yoğunluklarını komplo tarafından da gösterilebilir Analiz > çubuk grafik.</li>
		<li>Buna göre tüm ölçülen verileri belgelemek için bir tablo oluşturmak bir Excel sheet kullanarak örnek kimliği</li>
		<li>Ortalama ve standart sapma tedavi ve kontrol her koşul için piksel yoğunluğunu hesaplamak.</li>
		<li>Öğrencinin kullanarak t-Testi, konsantrasyonları (Yani, 40 mM SMG 0 ve 400 mM SMG 0 vs vs) tüm ikili karşılaştırmalar için farkları karşılaştırın. [P≤0.05].</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Dalgalılık
	<ol>
<li>Kollajen lifleri görüntüler bir görüntü seçin. Örnek başına en az 10 resim (bir denetimi örneğini her konsantrasyon - en az 40 toplam için de dahil olmak üzere) analiz edilmelidir.</li>
		<li>Açık ImageJ > Eklentiler > NeuronJ. NeuronJ önceden yüklenmiş olmasını gerektirir.</li>
		<li>Tüm imagesby açılan bir NeuronJ penceresine sürükleyerek yükleyin.</li>
		<li>Fare ile Fibriller kontur takip lifleri, doğrultuda izleme oluşturma (Tablet çizim kalem kullanılabilir), M toplam lif uzunluğu mesafeyi ölçmek için'ı tıklatın.</li>
		<li>"Teğet düz bir çizgi çizmek ve başlangıç ve daha önce çizilmiş lif dağılımı sonuna bağlamak için" seçeneği. Şimdi uçtan uca uzunluğu ölçmek için M'yi tıklatın.</li>
		<li>Resim başına en az 10 liflerinde üzerinde aynı işlemi tekrarlayın.</li>
		<li>Bu iki ölçüm her 10 liflerinde toplamak ve veri uzunluğu [eğri] ve [doğrusal], uzunluğu toplam lif uzunluğu (kontur) ve uçtan uca uzunluğu (düz çizgi bağlantı) ifade bir excel elektronik tablosu içine sırasıyla giriş.</li>
		<li>Dalgalılık Endeksi (W) formül kullanılarak hesaplanır: W = uzunluk [eğri] / [doğrusal] uzunluğu.</li>
		<li>Tedavi samples(SMG) görüntüleri kontrol örnekleri formülü kullanarak görüntüleri ile gelen verileri karşılaştırarak dalgalılık % hesaplamak: (W [SMG] - 1) / (W [denetim] - 1)</li>
		<li>İkili bir t-test dalgalılık dizin (W) için farklı tedavi koşulları ve denetim arasındaki istatistiksel farklar (p-değerler) kollajen lif morfolojisi belirlemek amacıyla gerçekleştirin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Yapılan deneyler sklera, gelecekteki olasılığını tedaviler cross-linking için bir izleme aracı bu tekniği kullanarak yetiştirmek etkileri cross-linking kollajen değerlendirilmesi için bir yöntem olarak SHG sinyal mikroskobu kullanımı destekleyen kanıtlar göstermiştir kollajen protein hedef. Not, bir enstrüman potansiyel olarak bu SHG sinyal yakalayabilir klinik zaten. Her ne kadar bu araç öncelikle görüntüleme cilt insan DermIS için tasarlanmıştır, bu başarılı bir şekilde görüntü kornea ve sklera23</sup...

İlerici miyop öne enzimatik olmayan scleral (fotokimyasal ve/veya kimyasal), cross-linking yoluyla tedavi edilebilir olması için verilen bu kollajen enzimatik cross-linking engelleme deneysel formu yoksunluk (FD) artırabilir hangi mantıklı-indüklenen miyopi1. Elsheikh ve Phillips2 son zamanlarda ele fizibilite ve standart ultraviyole-bir ışınlama (UVA) kullanarak potansiyel-riboflavin aracılı fotokimyasal (Dresden protokolü olarak da bilinir) kısaltılmış cross-linking burada (riboflavin CXL) olarak miyopi Aksiyel uzama durdurmak posterior scleral istikrar için. Fotokimyasal bu yöntem başarıyla istikrarsızlık Keratokonus ve post-LASIK keratectasia görülen anterior küre yüzeyi (Yani, şişkin kornea) tedavisi için kullanılır. Ancak, bu CXL iletişim kuralı sklera için uygulanması gereken çok daha büyük doku yüzey alanı değiştirmek için yanı sıra bir ultraviyole (UV) ışık kaynağı ile posterior sklera erişim zorlukları ile ilgili sorunlar tarafından engelliyordu. Birden çok arka sklera bölgelerinde ki çalışma3birden çok ayrı ışınlama bölgelerinde gerekli, ancak söyleniyor, CXL yaklaşım görsel biçimde Aksiyel uzama durdurmak için oluşturulduğunu tavşan (tarsorrhaphy tarafından), yoksun. Buna karşılık, enjeksiyon sT alanı üzerinden kimyasal teskin ajan (Yani, cross-linking agent) UV ışık kaynağı tanıtmak için ihtiyaç kaçınarak posterior sklera değiştirmek için daha basit bir yolu temsil edebilir. Bu enjeksiyon tekniği iyi katarakt cerrahisi4,5,6gibi Oftalmolojik yordamları sırasında oküler anestezi inducing kullanışlı bir yol olarak bilinir. Wollensak7 daha önce gliseraldehit (bir kimyasal cross-linking agent kavramına benzer bu çalışmada açıklanan ajanlar (FARs) serbest formaldehit için) kullanarak bir sT enjeksiyon kullanımı nitelendirdi tavşan sklera ve genipin sıkın için vardır FD eskiden şiling şimdi pigs8,9Aksiyel uzunluğu sınırı gösterilmiştir. Bu müfettişler çözünür bir kimyasal ajan üzerinde fotokimyasal CXL tekniği kullanarak açık bir avantaj gösterdi. Böylece, scleral enjekte edilebilir bir kimyasal ajan FARs (Yani, TXL) dahil olmak üzere bazı tip kullanarak cross-linking10, scleral uzama miyopi içinde görülen ilerlemesini durdurmak için uygun tedavi yöntemi verebilir.
Burada sunulan iletişim kuralları kadavra tavşan gözler sklera için sT enjeksiyon yolu ile teslim bir kimyasal cross-linking çözümü sodyum hydroxymethylglycinate (SMG), kullanın. Biz daha önce topikal kimyasal kornea cross-linking için benzer iletişim kuralları hayata geçirdik. Özellikle daha önce bildirilen bu çalışmalarda, konsantrasyon etkileri cross-linking bağımlı SMG, o şeyden de termal denatürasyon analiz11 tarafından belirlenen fotokimyasal CXL ile ulaşılabilir kapsayan etkisi aralığı kullanarak elde .
Burada sT enjeksiyonları scleral doku, termal denatürasyon diferansiyel tarama Kalorimetre (DSC) ve ikinci harmonik üretimi mikroskobu (SHGM) kullanarak üzerinden teslim SMG cross-linking etkisini değerlendirmek için iletişim kurallarını açıklar.
Diferansiyel tarama Kalorimetre (DSC), Termal Analiz olarak da bilinir, bir termal denatürasyon geçiş, scleral doku olduğu çoğunlukla onlar toplu çoğunluk teşkil beri fibriler collagens özellikleri tarafından destekli ölçülür protein. Bu yöntem kollajen moleküler yapısı kararlılığını ve kollajen liflerinde, asıl Tersiyer protein yapısı stabilize çapraz bağlı Tahvil değerlendirir. DSC içinde Isıtma sırasında kritik geçiş sıcaklığı denatürasyon kollajen molekülünün üçlü sarmal, ne jelatin yaygın formları bir süreç, sökme ortaya çıkan sonuçları elde edilir. Bu termal denatürasyon kollajen molekülü boyunca hidrojen bağları bozan ve daha yüksek sıcaklıklara indüklenen cross-linking yöntemleri12,13arası kaymıştır. Bu yöntem özellikle Biyomalzeme sektöründe uzun yıllar için ve deri-yapma içeren işlemler için kullanılmıştır. Ancak, bu yöntem sklera doku çıkarılması gerektirir ve bu nedenle sadece bir ex vivo teknik olarak yararlı olabilir.
İkinci harmonik üretimi mikroskobu (SHGM) ile sigara centrosymmetric moleküler ortamlar belirli malzemelerin doğrusal olmayan optik özellikleri temel alır. Tür malzemelerin, yoğun ışık, örneğin ışık lazerler tarafından üretilen, olay ışık frekans katıdır SHG sinyalleri üretir. SHG sinyalleri oluşturmak için bilinen biyolojik kollajen, mikrotübüller ve kas myosin malzemelerdir. Örneğin, kollajen 860 nm dalga boyu bir kızılötesi ışık ile heyecanlı-ecek göndermek 430 nm dalga boyu ile görünür aralıktaki bir SHG sinyal. İkinci harmonik üretimi (SHG) sinyal görüntüleme tedavi kollajen cross-linking değerlendirmek için umut verici bir yöntemdir. Bu dokularda kollajen liflerinde SHG sinyalleri14yayarlar 30 yıldan fazla zamandır. Ancak, yakın zamanda yüksek çözünürlüklü görüntüleri15 dokular, tendon16, Cilt, kıkırdak17, kan damarlarının18, dahil olmak üzere çeşitli ve kollajen jelleri19elde edilebilir.
Bu bilgiye dayalı, bu çalışmada kollajen kimyasal olarak indüklenen SMG cross-linking aracılığıyla sklera indüklenen SHG sinyal değişiklikleri değerlendirir. Sonuçları, sklera SMG değişiklik doku kollajen lif demetleri (kollajen liflerinde oluşan yüksek sipariş dördüncül yapı) üretilen SHG sinyalleri artırır ve ayrıca kollajen bir yapısal morfolojik değişiklik üretir gösterir fiber ağ, yansıyan fiber bundle "düzleştirme içinde."

<table><tbody><tr><td>MİLLİU-Q SENTEZİ A10 120V</td><td>EMD Millipore, Massachusetts, ABD</td><td></td><td>Çift damıtılmış, deiyonize su. - Protokol Adımı 1.1.1</td></tr><tr><td>Sodyum hidroksimetilglisinat&nbsp;</td><td>Tyger Chemicals Scientific, Inc. Ewing, NJ, ABD</td><td></td><td>Çapraz bağlama reaktifi - protokol adımı 1.1.2</td></tr><tr><td>Luer kilitli şırınga ile enjeksiyon iğnesi</td><td>BD Eclipse, NJ, ABD</td><td></td><td>Alt tenon enjeksiyonu için şırınga. - protokol adımı 2.1</td></tr><tr><td>Tavşan kafası</td><td>La Granja kümes hayvanları</td><td>Yetiştirilmiş</td><td>Tavşan kafası ayrıldı ve ölümden sonraki 1 saat içinde teslim edildi. - Protokol Adımı 2.2</td></tr><tr><td>Tono-pen&nbsp;</td><td>Reichter Technologies Depew, NY</td><td></td><td>IOP ölçümleri - protokol adımı 2.4</td></tr><tr><td>DSC 6000 Otomatik Numune Alma Cihazı</td><td>Perkin-Elmer Waltham, MA, ABD</td><td></td><td>Termal denatürasyon analizörü - protokol adımı 7.4</td></tr><tr><td>Pyris yazılımı&nbsp;</td><td>Perkin-Elmer, Waltham, MA, ABD</td><td>Ver 11.0</td><td>&nbsp; protokol adımı 7.5</td></tr><tr><td>CFI75 Apochromat LWD 25X/1.10 W MP</td><td>Nikon Instruments, Melville, NY, ABD</td><td></td><td>2.0 mm çalışma mesafesine sahip yüksek IR geçirgenliğine sahip suya daldırma objektifi - protokol adımı 8.1.1.</td></tr><tr><td>GenTeal&nbsp;</td><td>Alcon, Fort Worth, Teksas&nbsp;</td><td>B000URVDQ8</td><td>Buharlaşmayı önlemek için su yerine objektif daldırma ortamı olarak kullanılan su bazlı jel - 8.1.1</td></tr><tr><td>Chameleon Vision II&nbsp;</td><td>Tutarlı, Santa Clara, CA, ABD</td><td></td><td>Ti: 80 MHz'de 140 fs darbe genişliğine ve 680 nm ila 1080 nm arasında ayarlanabilir bir aralığa sahip safir darbeli lazer. - Protokol adımı 8.1.11</td></tr><tr><td>AttoFluor hücre odası</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc</td><td>A7816</td><td>Kapak kaymasının sabitlenmesi - protokol adımı 8.1.3</td></tr><tr><td>25 mm yuvarlak lameller, #1.5</td><td>Neuvitro Corporation, Vancouver, WA, ABD</td><td>GG-25-1.5</td><td>protokol adımı 8.1.3</td></tr><tr><td>Eclipse Ti-E</td><td>Nikon Instruments, Melville, NY, ABD</td><td></td><td>protokol adımı 8.1.4.</td></tr><tr><td>Taranmamış (NDD) GaAsP dedektörü</td><td>Nikon Instruments, Melville, NY, ABD</td><td></td><td>400-450 nm bant geçiren filtre ile donatılmıştır - protokol adımı 8.1.7</td></tr><tr><td>A1R-MP lazer tarama sistemi</td><td>Nikon Instruments, Melville, NY, ABD</td><td></td><td>Kızılötesi (IR) çoklu foton uyarımı ile uyumludur. - Protokol Adımı 8.1.8</td></tr><tr><td>NIS Elements yazılımı</td><td>Nikon Instruments, Melville, NY, ABD</td><td>Ver 4.3</td><td>metinde "yazılım" olarak anılır - protokol adımı 8.1.9</td></tr><tr><td>Fiji/ImageJ</td><td>Ulusal Sağlık Enstitüsü</td><td></td><td>&nbsp; protokol adımı 9.1.2</td></tr><tr><td>NeuronJ</td><td>Eric Meijering, Erasmus Üniversitesi Tıp Merkezi, Rotterdam, Hollanda</td><td></td><td>https://imagescience.org/meijering/software/neuronj/, protokol adımı 9.2.2</td></tr><tr><td>için Microsoft Excel&nbsp;</td><td>Microsoft Corporation, Redmond, WA, ABD</td><td>Ver 14</td><td>protokol adımı 9.2.8</td></tr></tbody></table>

tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (txl) için miyopi cross-linking değerlendirilmesi için

Second Harmonic Generation Signals in Rabbit Sclera As a Tool for Evaluation of Therapeutic Tissue Cross-linking (TXL) for Myopia

Yapısal proteinler (fibriler collagens) tedavisi için içine kimyasal bağları (enzimatik olmayan cross-linking) tanıtarak doku güçlendirmek için yöntemleri fotokimyasal cross-linking ve doku (TXL) yöntemleri cross-linking içerir. Mekanik doku özellik değişikliklerini inducing için tür yöntemler için kornea Keratokonus gibi ilerici miyopi, sklera gibi hastalıklarda kornea incelme (mekanik olarak zayıflamış) nerede inceltme ve arka zayıflaması istihdam olmak sklera oluşur ve büyük olasılıkla Aksiyel uzaması için katkıda bulunur. Böyle doku güçlendirilmesi için birincil hedef proteinler Kuru Ağırlık proteinler kornea ve sklera büyük çoğunluğu oluşturan fibriler collagens vardır. Tesadüfen, fibriler collagens ikinci harmonik üretimi sinyalleri doku ekstrasellüler alanda ana kaynağıdır. Bu nedenle, kollajen proteinlerin bu terapiler, cross-linking ile indüklenen gibi değişiklikler potansiyel olarak algılanabilir ve ikinci harmonik üretimi mikroskobu (SHGM) kullanımı ile quantitated. SHGM izleme bir kızılötesi uyarma ışık ile birleştiğinde mikroskobu sistem tarama bir lazer kullanılarak sinyalleri Biyomedikal bilimlerde yaygın kullanımı zevk heyecan verici bir modern görüntüleme yöntemi kaynağıdır. Böylece, mevcut çalışma ölçmek için bir yol cross-linking etkileri ex vivo tavşan sklera, bir kimyasal ajan (sT), alt-bilir'ın uzaya cross-linking enjeksiyonu takiben indüklenen gibi SHGM mikroskobu kullanımını değerlendirmek için yürütülen bir enjeksiyon yaklaşım yani oküler anestezi Oftalmolojik klinik işlemler sırasında neden için standart bir uygulama. Kimyasal ajan cross-linking, sodyum hydroxymethylglycinate (SMG), kozmetik koruyucu ajanlar (FARs) serbest formaldehit bilinen bir sınıf geliyor. SHG sinyalleri artışlar scleral değişiklikleri SMG ile reaksiyonu takip sonuçlandı ve vardiya termal denatürasyon sıcaklık ile ilişkili, değerlendirmek için standart bir yol etkileri cross-linking doku indüklenen.

Termal denatürasyon sıcaklık (Tm) etkisi cross-linking TXL değerlendirmek için bir tahlil yöntemi olarak: Toplam 16 çift tavşan gözler bu deneylerde TXL yordamı için kullanılmıştır. Bu çalışmanın ilk bir parçası, SMG cross-linking Agent kadavra tavşan kafası uzayda sT üzerinden tek bir enjeksiyon tarafından indüklenen cross-linking efekti yerelleştirmesini değerlendirilmiştir. Daha fazla yerde enjeksiyonları sklera istenen bir alanını dengelemek gerekli olabilir bu yana b...

Bu protokol kimyasal ikinci harmonik üretimi görüntüleme ve diferansiyel kalorimetre taramakullanarak tavşan sklera cross-linking değerlendirmek için teknikler açıklanır.

Tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (TXL) için miyopi Cross-linking değerlendirilmesi için

Methods to strengthen tissue by introducing chemical bonds (non-enzymatic cross-linking) into structural proteins (fibrillar collagens) for therapy ...

Bu protokolün genel amacı, sub-tenonun formaldehit salma ajanı enjeksiyonu ile indüklenen ve diferansiyel taramalı kalorimetri ile doğrulandığı gibi skleral dokudaki kollajen çapraz bağlama etkisini görselleştirmek ve ölçmek için ikinci harmonik nesil mikroskobunun kullanımını göstermektir. Bu yöntem, indüklenen çapraz bağlama etkilerini değerlendirmek için invaziv olmayan bir yöntem sağlayarak terapötik doku çapraz bağlama alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin ana avantajı, ikinci harmonik üretilen sinyallerin kollajen fibrillerine oldukça spesifik olması ve bu nedenle antikor boyaması gibi özel bir doku hazırlığına gerek olmamasıdır.Bu yöntem için bu fikir ilk olarak, terapötik kornea dokusu çapraz bağlamasına uygulanan prosedürü okuduğumuzda aklımıza geldi. Başarılı ikinci harmonik nesil mikroskopi, doku hasarını ve sinyal ölçümünde artefaktları önlemek için dokunun dikkatli bir şekilde yerleştirilmesini ve doğru görüntüleme koşullarının ayarlanmasını gerektirdiğinden, bu yöntemin görsel gösterimi kritik öneme sahiptir. Tedaviye, metin protokolünde anlatıldığı gibi tavşanın gözbebeklerine alt tenon enjeksiyonu ile başlayın.Burada alt tenonun enjeksiyon bölgesinin şematik bir temsili gösterilmektedir. Gözün boyutuna göre en uygun boyutta bir spekulum seçin. Üç buçuk saatlik inkübasyondan sonra, küreye erişimi optimize etmek için göz kapağı spekulumunu kullanarak göz kapaklarını geri çekin.Limbusu çevreleyen konjonktivayı ayırın ve ekstra oküler kasları skleral yerleştirme yerlerinde kesin. Skleranın üst kısmını makas veya bıçak kullanarak kesin ve enjeksiyon bölgesi merkezi olarak bulunan bir santimetrelik bir alan oluşturun. Kalan retina ve koroid katmanlarını kazıyın ve her seferinde parçaları yaklaşık 10 saniye boyunca çözelti içinde bırakarak taze PBS ile iki kez yıkayın.Dokuyu, görüntüleme tesisine taşınması için PBS çözeltisi ile doldurulmuş bir mililitrelik tüplere yerleştirin. SHG mikroskobu gerçekleştirirken sinyali ve çözünürlüğü en üst düzeye çıkarmak için, kızılötesi ışığı iletmek için optimize edilmiş ve yüksek sayısal diyafram açıklığına sahip bir objektif lens kullanın. Lensin düzeltme bileziğini numunenin derinliğine uyacak şekilde ayarlayın.Bu durumda, 0.17 milimetre. 25 kez objektif lensi mikroskoba monte edin ve lens yüzeyini kaplamak için bol miktarda su bazlı daldırma jeli ekleyin. Doku görüntülemesinin, numunenin mikroskoba monte edilmesinden itibaren 30 dakika içinde yapılması, dokuyu nemli tutmak ve lens objektifi ile slayt arasındaki daldırma jelinin kurumasını önlemek için önemlidir, çünkü bu, SHG sinyalinde değişikliklere neden olacaktır.Odanın alt kısmına 25 milimetrelik yuvarlak bir kapak sürgüsü yerleştirerek hücre odasını monte edin. Sklera dokusu parçasını kapak kızağına yerleştirin ve 50 ila 100 mikrolitre tampon ekleyin. Dokuyu ikinci bir yuvarlak kapak kayışı ile örtün ve dokuyu bastırmadan veya düzleştirmeden haznenin üst kısmını vidalayın.Ardından, doku örneği ile hücre odasını mikroskop aşamasına monte edin. Sahneyi konumlandırın ve objektifin yüksekliğini, numunenin alt yüzeyi, göz merceğinden geçen parlak alan incelemesi ile belirlendiği gibi odakta olacak şekilde ayarlayın. Bilgisayar monitörü dışındaki tüm ışıkları kapatın ve mikroskop tablasına örtülmüş alüminyum folyo levhalarla monitörden gelen ışığı mümkün olduğunca engelleyin.Yazılımda, Eye Port modunu kapatın. TI Pad panelinde, lens tanımının doğru olduğunu kontrol edin. A1 Kompakt Grafik Kullanıcı Arayüzü panelinde, görüntüleme için kızılötesi lazeri seçin, Taranmamış Dedektörleri seçin ve 400 ila 450 nanometre bant geçiren filtre ile donatılmış DAPI kanalını seçin.A1 Multi Photon Grafik Kullanıcı Arayüzü panelinde, kızılötesi lazerin dalga boyunu 860 nanometreye ayarlayın ve deklanşörü açın. Emisyon dalga boyu sabit yeşil ışıkla gösterildiği gibi değişene kadar bekleyin. A1 Kompakt Grafik Kullanıcı Arayüzü panelinde lazer tarama koşullarını ayarlamak için Galvano tarayıcıyı, birim yönlü taramayı, 1024 x 1024 piksel çerçeve boyutunu, 6,2 mikrosaniye piksel bekleme süresini ve 2X çizgi ortalamasını seçin.Ardından, bulma moduyla canlı hayal etmeyi açın ve lazer gücünü ve dedektör kazancını ayarlayarak AI Kompakt Grafik Kullanıcı Arayüzü panelinde hayal koşullarını ayarlayın. Lazer gücünü 50 miliwatt ile 150 miliwatt arasında, yani 860 nanometrede bir lazer için yüzde iki ile yüzde altı arasında ayarlayın. Bu aralığın üzerinde doku hasarı meydana gelebilir.Geçerli görüntüdeki piksel yoğunluğu değerlerinin histogramını görüntüleyen Arama tablosu panelini açın ve doygunluğu önlerken piksel değerleri aralığını en üst düzeye çıkarmak için HV etiketli çubukta dedektörün kazancını daha fazla ayarlayın. Optimum lazer ve kazanç ayarlarını bulmak için en yüksek SHG sinyaline sahip örneği kullanın. Tek bir deneyde karşılaştırılacak tüm numuneler için aynı ayarları koruyun.Bu uygulama, deneydeki hiçbir numunenin dedektörü doyurmamasını sağlar. Dokuyu taramak için önizleme modunda, XYZ genel bakış aracını açın. Bu modda görüntü alımını hızlandırmak için görüntülemeyi daha düşük çözünürlüğe ayarlayın.XYZ genel bakış panelinde, mevcut konuma sağ tıklayın ve beşe beş, üçe üç tara veya tek görünüm yakalama'yı seçin. Tarama bittikten sonra, geçerli önizlenen alanın dışındaki bir alanı çift tıklatarak yeni bir konuma geçin. Canlı Tarama modunu açın, ardından dokunun farklı bölgeleri eksenel yönde biraz farklı konumlara sahip olabileceğinden dokuyu odak noktasına getirin.Beşe beş, üçe üç veya tek görüş alanlarında yeni bir görünüm alanı yakalayın. Dokunun geniş bir alanı önizlenene kadar bu işlemi tekrarlayın. XYZ genel bakış aracında, sahneyi belirli bir konuma taşımak için kolajen liflerinin tüm görüş alanında görüldüğü bir konuma çift tıklayın.Görüntülemeyi yüksek çözünürlüğe, 1024 x 1024 piksele ve 2X çizgi ortalamasına ayarlayın. Canlı Bul modunu açın, hedefin konumunu alt düz odakta olacak şekilde ayarlayın ve TI Pad'de optik düzlemi bu alt katmanın 10 mikrometre üzerine hareket ettirmek için Z Sürücüsünü kullanın. Yakala düğmesini kullanarak bir görüntü elde edin, XYZ inceleme aracındaki artı düğmesiyle konumu kaydedin.Yeni bir konuma çift tıklayın ve derinlik ayarını ve görüntü yakalama işlemini tekrarlayın. Her doku parçası için 10 görüntü yakalayın. Görünüm alanları, XYZ genel bakış aracında kaydedilen konumlarda gösterildiği gibi çakışmamalıdır.Son olarak, sonraki diferansiyel taramalı kalorimetri analizine hazırlık olarak mikroskopi tamamlandıktan hemen sonra skleral parçaları PBS'li bir mililitrelik tüpe yerleştirin. Başlamak için, kontrolün orta kısmını kesin ve sklerayı makasla tedavi edin. Her skleral kareyi emici bir doku ile kurulayın ve dişli forseps kullanarak bir DSC tavasının dibine düz bir şekilde yerleştirin.Doku içeride ve dudak kıvrılmış ve örtülmüş durumdayken, doku ıslak ağırlığını elde etmek için tavayı tartın. Ardından, tartılan numuneyi DSC otomatik numune alma tepsisinde belirlenen konumuna yerleştirin. Cihaz yönetim yazılımını kullanarak, dokunun ağırlığını belirterek bir yöntem oluşturun ve metin protokolünde listelenen çevreleri kullanarak termal analizi çalıştırın.Tamamlandığında, cihaz görüntüleme yazılımını kullanarak termal denatürasyonun meydana geldiği geçiş sıcaklığı tepe noktasını çıkararak her bir numune için verileri analiz edin. Skleranın SHG görüntüleri Fiji'de ortalama piksel parlaklığı açısından analiz edildi. Bir görüntü açıldığında ve analiz menüsü seçildiğinde ve ardından ölçüm seçildiğinde, sinyalin ortalama parlaklığını içeren sonuçları içeren bir tablo açılır.Alternatif olarak, Çözümle menüsünde, görüntüdeki sinyalin ortalama parlaklığı ve değişimi hakkında bilgi içeren piksel yoğunluğu değerlerinin histogramını oluşturmak için Histogram seçilir. Bu ölçüm, kontrol ve çapraz bağlı numunelerden alınan tüm görüntüler için tekrarlandı. Eşlik eden histogram analizi ile skleranın temsili SHG görüntüleri, ortalama parlaklık da dahil olmak üzere burada gösterilmektedir.Kontrol numunesi, fibrillerin dalgalı bir düzenlemesi ile karakterize edilir. Burada, daha düz görünen kollajen liflerini ortaya çıkaran, artan piksel yoğunluğuna sahip 400 milimolar SMG ile çapraz bağlanmış bir örnek gösterilmektedir. Termal analizin sonuçları, denatürasyon sıcaklığının daha yüksek zirvesini gösterir ve çapraz bağlama etkisini doğrular.Kontrol numunesi ve 400 milimolar çapraz bağlı numune denatürasyon eğrisi gösterilir. Bu videoyu izledikten sonra, çapraz bağlı bir numunenin nasıl hazırlanacağını ve skleral numuneler üzerinde SHG mikroskobunun nasıl gerçekleştirileceğini iyi anlamış olmalısınız. Genel olarak, bu yönteme yeni başlayan kişiler, alt tenon boşluğuna hassas enjeksiyonla mücadele eder, enjeksiyon bölgesinin etrafındaki kareyi cerrahi olarak çıkarır ve dokuyu önizleme modunda taramak için görüntü koşullarını ayarlar.Bu prosedürü takiben, kantitasyon ve morfoloji dahil olmak üzere elastin analizi gibi ek soruları yanıtlamak için otoluorescence gibi diğer yöntemler gerçekleştirilebilir. Bu çapraz bağlama ajanı uygulama tekniğinin etkileri, skleral stabilizasyon amacıyla arka pole daha kolay erişim sağladığı için yüksek miyopi ve posterior stafilom tedavisine kadar uzanır. Bu mikroskopi tekniğinin etkileri, hastalıklı skleradaki kollajen çapraz bağlanma durumunu ölçerek veya istenen çapraz bağlama prosedürü tamamlandıktan sonra sonucun ölçülmesiyle yüksek miyopi ve kollajen zayıflamasının neden olduğu komplikasyonların teşhisine kadar uzanır.Bu nedenle, bu çapraz bağlama yöntemi ve ikinci harmonik nesil mikroskobu, skleral çapraz bağlama hakkında fikir verebilir, ayrıca kornea, cilt, kıkırdak, tendon, kalp kapakçığı ve kan damarları gibi diğer dokulara da uygulanabilir.

second-harmonic-generation-signals-rabbit-sclera-as-tool-for

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Korneal kollajen çapraz bağlama (CXL), kornea stromasının biyomekanik sertliğini iyileştirerek keratokonus ilerlemesini durdurmak için şu anda mevcut olan tek konservatif tedavidir. Bu makalenin amacı, üç farklı CXL protokolünün yöntemlerini vurgulamaktır: konvansiyonel CXL (C-CXL), hızlandırılmış CXL (A-CXL) ve iyontoforez CXL (I-CXL).

Keratokonus Kornea Kollajen çapraz bağlama Üç Farklı Protokoller: Konvansiyonel, Hızlandırılmış ve İyontoforez

Bu eksenel uzama tavşan göz riboflavin ve UVA sklera çapraz bağlanma etkisini göstermektedir. Eksenel uzama onların sağ göz kapaklarını (tarsorrhaphy) dikilmesi yoluyla (erkek ve dişi) 13 gün eski Yeni Zelanda tavşanlarda oluşturuldu.

Skleral bir Tavşan Modelinde Aksiyel Miyopide Önleme Riboflavin ve Ultraviyole-A Radyasyon Kullanımı Çapraz bağlama

Retina pigment epiteli (RPE) yedek stratejileri ve gen temelli tedavi birkaç retinal dejeneratif koşulları için kabul edilir. Klinik çeviri için, büyük göz hayvan modelleri hastalarda uygulanabilir cerrahi teknikleri incelemek gerekmektedir. Burada çok yönlü ve maliyet-etkin bir RPE transplantasyon, yönelikse subretinal cerrahi için bir tavşan modeli sunuyoruz.

Tavşanlarda Subretinal Cerrahi Adım Protokolle Bir Adım

Burada biz kendi alansal kapsama değerlendirmek ve photoreceptor canlılık karakterize subretinal boşluğa gen terapisi ajanların teslim yardımcı olmak üzere yüksek çözünürlüklü spektral alanlı optik koherens tomografi (HR-SD-Ekim) kullanarak yeni bir yaklaşım göstermek.

Ultrahigh çözünürlük fare optik koherens tomografi göz içi enjeksiyon Retina gen terapisi araştırma yardımcı olmak için

Bu çalışmada yağ kaynaklı kök stromal vasküler kesir bulunan hücreleri ve trombosit açısından zengin plazma Limoli retina restorasyon tekniği ile elde edilen trombosit suprachoroidal greft görme keskinliği artırabilirsiniz olup olmadığını değerlendirmek için hedeftir ve Kuru yaşa bağlı makula dejenerasyonu tarafından etkilenen gözde retina hassasiyeti yanıt.

Rejeneratif tedavisi ile Suprachoroidal hücre otogrefti içinde Kuru yaşa bağlı makula dejenerasyonu: ön Vivo içinde rapor

Retina pigment epitel hücreleri hücre-replasman tedavisi için Kuru yaşa bağlı makula dejenerasyonu gelişmiş form olarak hizmet verebilir. Bu iletişim kuralı coğrafi Atrofi büyük gözlü modeli ve hastalık bu modeline insan embriyonik kök hücre kaynaklı retina pigment epitel hücrelerinin nakli subretinal nesil açıklar.

Büyük gözlü manken coğrafi Atrofi, içine insan embriyonik kök hücre elde edilen retina Pigment epitel hücrelerinin subretinal nakli

Bu el yazması roman kurulum ve işletim photoacoustic mikroskobu ve optik Koherens tomografi çift-modalite sistem noninvaziv, etiket içermeyen chorioretinal görüntüleme tavşan gibi daha büyük hayvanlar için yordamı açıklar.

Yaşam tavşan gözünde roman Photoacoustic mikroskobu ve optik Koherens tomografi çift-modality Chorioretinal görüntüleme

Bu protokolün amacı, subakut oküler hipertansiyonu indükleyen limbal vasküler pleksusun 360° termik koterizasyonuna dayanan yeni bir glokomatöz nörodejenerasyon modelini karakterize etmektir.

Kemirgenlerde Cerrahi Olarak İndüklenen Glokom için Limbal Vasküler Pleksusun Tam Daire Koterizasyonu

Tavşanlarda kornea stromal yara onarımı için yerinde mavi ışık-çapraz bağlanabilir jelatin–riboflavin hidrojelinin hazırlanması, zenginleştirilmesi ve uygulanması için tekrarlanabilir bir protokol sunulur; bu süreç cerrahi müdahale, kısmi tarsorrafi ve ameliyat sonrası bakım için prosedürel adımlar içerir.

Tavşanlarda Korneal yara onarımı için zenginleştirilmiş foto-çapraz bağlı jelatin–riboflavin hidrojellerin üretimi ve cerrahi uygulaması

Torasik onkoloji veritabanı translasyonel araştırma amaçlı klinik ve laboratuvar veriler için kapsamlı bir veri havuzu olarak hizmet etmek için geliştirilmiştir. Veritabanı Göğüs Onkoloji Araştırma Programı çerçevesinde translasyonel kanser araştırmacıları hizmet edecektir. Bu veritabanı, diğer kanser modellerinin yanı sıra diğer insan hastalıkları için uyarlanabilir.

Kapsamlı Göğüs Onkoloji Veritabanı Üretimi - Translasyonel Araştırma Aracı

Keşfedin ikinci harmonik üretimi mikroskopisi ile tavşan sklera dokusunda kollajen çapraz bağlanmasını görselleştirme ve ölçme yöntemini. Bu teknik, tedavi edici doku çapraz bağlanmasını invaziv olmayan şekilde değerlendirmeye olanak tanır.

Tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (TXL) için miyopi Cross-linking değerlendirilmesi için (Video) | JoVE Journal

Tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (TXL) için miyopi Cross-linking değerlendirilmesi için

Daha fazla video keşfet