Name: İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel Vitro ve In Vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Öğrenin insan miyokard dokusundan hücre dışı matriks hidrojel üretimini. Bu yöntem, kalp hücre davranışlarını incelemek ve miyokard infarktüsü tedavileri için büyük ölçekli deneyler yapmak amacıyla kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Çalışma Protokolü Helsinki Bildirgesi içinde özetlenen etik ilkelere uyan. Hasta Onam doku kullanımı araştırma amacıyla için sağlanan ve doku toplama sürecinin kurumsal Değerlendirme Komitesi ve Charité - Universitätsmedizin Berlin (EA4/028/12) Etik Komitesi tarafından kabul edildi.

Çalışma Protokolü Helsinki Bildirgesi içinde özetlenen etik ilkelere uyan ve Kurumsal değerlendirme kurulu ve Etik Komitesi Charité Tıp Üniversitesi tarafından onaylanmıştır. Tüm hastalar sağlanan yazılı Onam kalp doku kullanımı deneysel araştırmalar için.
1. kesit için hazırlanması insan Miyokardiyum
<ol><li>Sol ventrikül Miyokardiyum elde etmek (boyutu ameliyat türüne bağlı olarak değişir) doğrudan doğruya--dan belgili tanımlık ameliyathane ve steril bir kap içinde soğuk PBS nakliyesi.</li>
	<li>Tüm yağ dokusu steril neşter ile steril koşullarda No 10 bıçak kaldırın.</li>
	<li>Miyokardiyum yaklaşık 1 x 1 x 1 neşter kullanarak cm küpler içinde kesilmiş.</li>
	<li>Küpleri steril 50 mL tüplerde yerleştirin. Not: duraklatmak için gerçekleştirmek adım 1.5, aksi halde adım 2.2 ile devam edin. Protein yıkımı ve doku kalitesi bir düşüş önlemek için yinelenen donma-çözülme döngüsü kaçının.</li>
	<li>-80 ° C'de küpleri içeren tüpler depolamak Doku için birkaç ay depolanabilir.</li>
</ol>2. kesit Miyokardiyum küpleri dilimler halinde
<ol><li>Dondurucu dışında hazırlanan küpleri içeren tüpler al.</li>
	<li>Buzda cryostat için taşıma.</li>
	<li>-15 ° c için nesne ve Oda sıcaklığı ayarlamak Not: Doğru sıcaklığa mükemmel kesit güvence altına almak önemlidir.</li>
	<li>Sakin ol boş 50 mL tüpler ve pulları odası veya kuru buz.</li>
	<li>Bir katman ekleyin (yaklaşık 0.5 - 1.0 mL) cryosection orta soğuk damga ve izin üzerine Don o kadar beyaz ve sağlam.</li>
	<li>Cryosection orta ikinci bir katman ekleyin ve bir Miyokardiyum küp bu katman üzerine yerleştirin.</li>
	<li>Devam etmeden önce cryosection orta ve Miyokardiyum tamamen donmuş emin olun. Not: Değil donmuş her zaman örnek ve cryosection orta kesit olacak. Tamamen dondurulmuş cryosection orta katı, beyaz ve saydam olmayan için sıvı ve şeffaf döner. Miyokardiyal küpleri en az 30 dk 1 s tamamen 1.4 adımından hemen devam Eğer dondurmak için gerekir. Doku dondurulmuş zaman o zaman dokundu/ele cımbız ile deforme değil.</li>
	<li>Damga ile dondurulmuş Miyokardiyum yuvasına takın ve tüm vidaları sıkın.</li>
	<li>Hatta parça bir yüzey elde edilir kadar doku yüzeyine kırpın.</li>
	<li>Kesit kalınlığı 300 µm için ayarlayın.</li>
	<li>Donmuş Miyokardiyum otomatik kesit ile bölüm. Bu tek tip kesme bölümleri garanti eder. Yaklaşık 30-40 bölümleri bir küpten dilimlenmiş.</li>
	<li>Her dilimin gevşek bir precooled 50 mL tüp kesit sonra yerleştirin. Not: dilimler veya paketi sıkıca bastırmayın. Yaklaşık 40 dilimleri bir tüp içinde uyum.</li>
	<li>Dolu tüpler kapatın ve Buza koyun. Not: 2,14 adımla üzerinde git duraklatmak için aksi takdirde adımla 3.2 devam edin.</li>
	<li>Miyokardiyum dilimler-80 ° C'de depolayın Dilimleri için birkaç ay depolanabilir.</li>
</ol>3. decellularization insan Miyokardiyum dilimleri
<ol><li>50 mL tüpler-80 ° C dondurucu ve buz üzerinde taşıma Miyokardiyum bölüm içeren gerekli dizi çekmek.</li>
	<li>Tüm 50 mL tüpler donmuş bölümlerini adım 3.1 den bir steril kabı aktarın. Yaklaşık 40 dilimleri kabı 50 mL tüp başına eklenir. Kabı üç kez 50 mL tüpler hacmi olmalıdır; Örneğin, decellularization bir 50 mL tüp için 150 mL kabı kullanın.</li>
	<li>50 mL lizis çözüm (10 mM Tris, % 0,1 w/v EDTA, pH 7.4 H2O) 50 mL tüp Miyokardiyum dilimleri ile başına ekleyin.</li>
	<li>100-150 RPM sürekli oda sıcaklığında 2 h için steril bir ölçek Miyokardiyum dilimleri sallamak.</li>
	<li>Dokusu dilimlerin sıvıyla kaba bir süzgeç aracılığıyla süzün. Dokusu dilimlerin künt bir cımbız ile yeni bir steril ölçek aktarın. 50 mL % 0.5 SDS PBS içinde Miyokardiyum dilimleri (miyokard bölümleri iki 50 mL tüp decellularizedÖrneğin, kullanım 100 mL SDS çözüm varken) ilk 50 mL tüp ekleyin.</li>
	<li>Sürekli 100-150 devirde oda sıcaklığında 6 h için salla.</li>
	<li>Dokusu dilimlerin sıvıyla kaba bir süzgeç aracılığıyla süzün. Dokusu dilimlerin künt bir cımbız ile yeni bir steril ölçek aktarmak ve 3 kez 10 dk 50 mL PBS 150 devir / dakikada sallayarak süre yıkayın. Daha sonra bir gecede PBS içinde %1 penisilin/streptomisin ve % 1 ile yıkayın nistatin (PBS-P/S-N) 100-150 devir/dakika ve sallayarak süre 4 ° C. Not: Ayrıntılı çamaşır tamamen herhangi bir kalıntı SDS kaldırmak çok önemlidir. ECM hücreleri ile birlikte kullanıldığında SDS kalan izleri zehirlidir.</li>
	<li>Çamaşır çözümü kaldırmak ve 25 mL ekleyin ısıtılmış FBS (37 ° C) %1 penisilin/streptomisin ve % 1 ile nistatin Miyokardiyum dilimleri ilk 50 mL tüp başına dilimlere decellularized.</li>
	<li>37 ° C'de 3 h için kuluçkaya Bu adımda, matris FBS içsel Dnaz etkinliği nedeniyle kalan DNA kaldırılır.</li>
	<li>Dilimleri için yeni bir steril ölçek aktarmak ve 3 kez 10 dk 50 mL PBS 150 devir / dakikada sallayarak süre yıkayın. Not: ECM dilimleri PBS-P/S-N 4 ° C'de birkaç gün boyunca saklanır. Ancak, bu hemen devam etmek için tavsiye edilir.</li>
</ol>4. Decellularized cECM bir toz için işleme
<ol><li>ECM dilimleri gevşek yeni bir steril 6-şey tabağına yerleştirin. ECM-80 ° C'de dondurmak ve 2 gün içinde bir lyophilizer için lyophilize. Not: birden fazla dilim iyi yerleştirilebilir. Tamamen iyi yüzey kapsayacak şekilde dilimleri düzenleyin. Dilimleri örtüşen sonraki pulverizasyon başarı etkilemez.</li>
	<li>ECM dilim pulverizasyon için kullanım belirli Freze (bkz: Malzemeler tablo) içeren 1.4 mm seramik boncuklar tüpleri. Tüpler gevşek liyofilize ECM ile steril künt cımbız kullanarak doldurun. En iyi sonuçlar için ECM toplam ağırlığı arasında 10-20 mg önerilir. Not: ECM çok sıkı freze tüplerde doludur pulverizasyon süreci olumsuz etkilenecektir.</li>
	<li>Ek-tüpler içinde sıvı azot kıpırdama. Uyarı: sıvı azot son derece düşük sıcaklık, uygun kişisel koruma giymek.</li>
	<li>
Donmuş tüpler freze makinesi yerleştirin ve ECM ezmek.
	<ol>
<li>Bir süre 30 ayarla s ve maksimum hız ve cihazın başlar.</li>
		<li>Bitirdikten sonra tüpler almak ve ek-tekrar sıvı azot içinde dondurma.</li>
		<li>Beş kez tekrarlayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Tüpler üzerinden microparticles 1 mL GKD2O tüp ve sallamak ya da tam çözücü için girdap başına ekleyerek yıkayın. Türdeş olmayan solution'ı 200 µm kafes 50 mL tüp içine filtre.</li>
	<li>-80 ° C ya da sıvı azot tüp dondur.</li>
	<li>Standart kapak tüp 0,22 µm filtre ile değiştirin. Bu filtre kapağı tüp dışarı akan tozu engeller, ancak su buharlaşma için hava sirkülasyonu sağlar.</li>
	<li>Tüpler içinde lyophilizer takın ve tekrar su adımından (Adım 4.5) kaldırmak için lyophilize Not: Bu adımda Lyophilization 3 gün sürebilir.</li>
	<li>Toz-80 ° C'de daha fazla işleme kadar saklamak veya 5.1 adımıyla devam edin.</li>
</ol>5. enzim tabanlı Homogenizing cECM mikro-parçacıklar
<ol><li>0,01 M HCl (pH 2.0) konsantrasyonu 1 mg/mL içinde domuz pepsin geçiyoruz. Tamamen eriyene kadar oda sıcaklığında döner bir shaker yerleştirin.</li>
	<li>Pepsin çözüm için 10 mg/mL nihai bir konsantrasyon içinde lyophilized insan ECM toz (Adım 4.8) geçiyoruz. Pipetting ile iyice karıştırın. Toplam hacim ECM çözümü gerekli miktarına bağlıdır. Örneğin, 10 mg ECM tozu 1 mL pepsin çözümde geçiyoruz. Not: parçacıklar eriterek nazik vortexing (1000-1500 devir/dakika) ile desteklenebilir. Microparticles topaklar kalan sindirim olumsuz etkiler.</li>
	<li>Çözüm 2 mL tüpler 1 ml tüp başına bir birim ile aktarın.</li>
	<li>Tüpler bir tüp shaker 48 h 27 ° c ve 1200 rpm için yerleştirin.</li>
	<li>Tüpler dışarı shaker alın ve buz veya önceden soğutulmuş tüp sahibi yerleştirin.</li>
	<li>Soğuk 10 x PBS (pH 7,4) 1/10 ECM çözümü soğuk 0.1M hacmi ile karışımı 1/9 ECM çözümü hacmi NaOH precooled tüp ve buz üzerinde yer. Bu karışım sindirilir ECM çözümü etkisiz hale getirmek ve geri dönüşümsüz pepsin devre dışı bırakabilirsiniz.</li>
	<li>Nötralizasyon karışımı ve karışımı iyice pipetting veya vortexing yoluyla ECM çözümü ekleyin.</li>
	<li>ECM istenen konsantrasyon ile 1 x PBS (pH 7,4) için ayarlayın. Çözüm pH pH kağıdı ile kontrol edilebilir. Not: ECM çözümü 10 mL örnek hesaplamasında sindirilmiş: 10 mg domuz pepsin 10 mL HCl (pH 2.0) ekleyin. 100 mg ECM toz pepsin ekleyin. Not: 10 mL nötralize için örnek hesaplama ECM çözümü ve 8 mg/mL konsantrasyonu ayarlama sindirmek: Volson = cbaşlatmak x Volbaşlatmak / cson 10 mg / mL x 10 mL / 8 mg/mL = = 12,5 mL Vol10xPBS = Volbaşlatmak / 9 = 1/9 10 mL = 1.11 mL 10 x PBS üzerinden VolNaOH = Volbaşlatmak / 10 = 1/10 üzerinden 10 mL = 1 mL Vol1xPBS VolFinal - Volbaşlatmak - Vol10xPBS - VolNaOH = 12,5 mL - 10 mL-.11 mL-1 mL = 0.39 mL =</li>
</ol>

<ol><li>Elliott, R., Hoehn, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Commercial+Porcine+Skin+for+Wound+Dressings%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+reconstructive+surgery%22%5BJournal%5D)">Use of Commercial Porcine Skin for Wound Dressings.</a> Plastic and reconstructive surgery. 52 (4), 401-405 (1973).</li>
<li>Rienks, M., Papageorgiou, A. -P., Frangogiannis, N. G., Heymans, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+Extracellular+Matrix%3A+An+Ever-Changing+and+Diverse+Entity%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Myocardial Extracellular Matrix: An Ever-Changing and Diverse Entity.</a> Circulation Research. 114 (5), 872-888 (2014).</li>
<li>Prabhu, S. D., Frangogiannis, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Biological+Basis+for+Cardiac+Repair+After+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">The Biological Basis for Cardiac Repair After Myocardial Infarction.</a> Circulation Research. 119 (1), 91-112 (2016).</li>
<li>Boopathy, A. V., Martinez, M. D., Smith, A. W., Brown, M. E., Garcia, A. J., Davis, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intramyocardial+Delivery+of+Notch+Ligand-Containing+Hydrogels+Improves+Cardiac+Function+and+Angiogenesis+Following+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Intramyocardial Delivery of Notch Ligand-Containing Hydrogels Improves Cardiac Function and Angiogenesis Following Infarction.</a> Tissue Eng Part A. 21 (17-18), 2315-2322 (2015).</li>
<li>Gaetani, R., Yin, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+derived+extracellular+matrix+enhances+cardiogenic+properties+of+human+cardiac+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Cardiac derived extracellular matrix enhances cardiogenic properties of human cardiac progenitor cells.</a> Cell Transplant. , (2015).</li>
<li>Kraehenbuehl, T. P., Ferreira, L. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+embryonic+stem+cell-derived+microvascular+grafts+for+cardiac+tissue+preservation+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Human embryonic stem cell-derived microvascular grafts for cardiac tissue preservation after myocardial infarction.</a> Biomaterials. 32 (4), 1102-1109 (2011).</li>
<li>Zhang, J., Klos, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+promotes+highly+efficient+cardiac+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells%3A+The+matrix+sandwich+method%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: The matrix sandwich method.</a> Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).</li>
<li>Fong, A. H., Romero-López, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Adult+Cardiac+Extracellular+Matrix+Promotes+Maturation+of+Human+Induced+Pluripotent+Stem+Cell-Derived+Cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Adult Cardiac Extracellular Matrix Promotes Maturation of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes.</a> Tissue Engineering Part A. 22 (15-16), 1016-1025 (2016).</li>
<li>DeQuach, J. A., Mezzano, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+High+Yielding+Method+for+Preparing+Tissue+Specific+Extracellular+Matrix+Coatings+for+Cell+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Simple and High Yielding Method for Preparing Tissue Specific Extracellular Matrix Coatings for Cell Culture.</a> PLoS ONE. 5 (9), e13039(2010).</li>
<li>Saldin, L. T., Cramer, M. C., Velankar, S. S., White, L. J., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+hydrogels+from+decellularized+tissues%3A+Structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix hydrogels from decellularized tissues: Structure and function.</a> Acta Biomaterialia. 49, 1-15 (2017).</li>
<li>Tukmachev, D., Forostyak, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injectable+extracellular+matrix+hydrogels+as+scaffolds+for+spinal+cord+injury+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Injectable extracellular matrix hydrogels as scaffolds for spinal cord injury repair.</a> Tissue Eng Part A. , (2016).</li>
<li>Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+rheological+characterization+of+a+gel+form+of+the+porcine+urinary+bladder+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Preparation and rheological characterization of a gel form of the porcine urinary bladder matrix.</a> Biomaterials. 29 (11), 1630-1637 (2008).</li>
<li>Singelyn, J. M., Sundaramurthy, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheter-deliverable+hydrogel+derived+from+decellularized+ventricular+extracellular+matrix+increases+endogenous+cardiomyocytes+and+preserves+cardiac+function+post-myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+College+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Catheter-deliverable hydrogel derived from decellularized ventricular extracellular matrix increases endogenous cardiomyocytes and preserves cardiac function post-myocardial infarction.</a> Journal of the American College of Cardiology. 59 (8), 751-763 (2012).</li>
<li>Wainwright, J. M., Czajka, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+cardiac+extracellular+matrix+from+an+intact+porcine+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">Preparation of cardiac extracellular matrix from an intact porcine heart.</a> Tissue Eng Part C Methods. 16 (3), 525-532 (2010).</li>
<li>Ott, H. C., Matthiesen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion-decellularized+matrix%3A+using+nature%27s+platform+to+engineer+a+bioartificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart.</a> Nature Medicine. 14, 213-221 (2008).</li>
<li>Oberwallner, B., Anic, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cardiac+extracellular+matrix+supports+myocardial+lineage+commitment+of+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Human cardiac extracellular matrix supports myocardial lineage commitment of pluripotent stem cells.</a> Eur J Cardiothorac Surg. 47, 416-425 (2015).</li>
<li>Oberwallner, B., Brodarac, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+cardiac+extracellular+matrix+scaffolds+by+decellularization+of+human+myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+A%22%5BJournal%5D)">Preparation of cardiac extracellular matrix scaffolds by decellularization of human myocardium.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part A. 102 (9), 3263-3272 (2014).</li>
<li>Kappler, B., Anic, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cytoprotective+capacity+of+processed+human+cardiac+extracellular+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Materials+Science%3A+Materials+in+Medicine%22%5BJournal%5D)">The cytoprotective capacity of processed human cardiac extracellular matrix.</a> Journal of Materials Science: Materials in Medicine. , (2016).</li>
<li>Bashey, R. I., Martinez-Hernandez, A., Jimenez, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+characterization%2C+and+localization+of+cardiac+collagen+type+VI.+Associations+with+other+extracellular+matrix+components%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Isolation, characterization, and localization of cardiac collagen type VI. Associations with other extracellular matrix components.</a> Circulation Research. 70 (5), (1992).</li>
<li>Wu, J., Ravikumar, P., Nguyen, K. T., Hsia, C. C. W., Hong, Y., Gorler, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+protection+by+inhalation+of+exogenous+solubilized+extracellular+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Lung protection by inhalation of exogenous solubilized extracellular matrix.</a> PLOS ONE. 12 (2), e0171165(2017).</li>
<li>Chen, W. C. W., Wang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+zebrafish+cardiac+extracellular+matrix+induces+mammalian+heart+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Advances%22%5BJournal%5D)">Decellularized zebrafish cardiac extracellular matrix induces mammalian heart regeneration.</a> Science Advances. 2 (11), e1600844(2016).</li>
<li>Godier-Furnémont, A. F. G., Martens, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Composite+scaffold+provides+a+cell+delivery+platform+for+cardiovascular+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Composite scaffold provides a cell delivery platform for cardiovascular repair.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (19), 7974-7979 (2011).</li>
<li>Sarig, U., Sarig, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+myocardial+ECM+patch+drives+cardiac+progenitor+based+restoration+even+after+scarring%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Natural myocardial ECM patch drives cardiac progenitor based restoration even after scarring.</a> Acta Biomaterialia. 44, 209-220 (2016).</li>
<li>Singelyn, J. M., DeQuach, J. A., Seif-Naraghi, S. B., Littlefield, R. B., Schup-Magoffin, P. J., Christman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Naturally+derived+myocardial+matrix+as+an+injectable+scaffold+for+cardiac+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Naturally derived myocardial matrix as an injectable scaffold for cardiac tissue engineering.</a> Biomaterials. 30 (29), 5409-5416 (2009).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

İnsan miyokardiyal ECM hazırlarken aşağıdaki ulaşmak hedeftir: kaldırma ilgili immünojenik hücresel malzemeleri, ECM bütünlüğü ve bioactivity, kısırlık, toksisitesi son ürünü, GMP-işlem uyumluluk, korunması ve ürün işleme açısından belirli bir uygulama için uygunluğunu. Bizim 3-adım decellularization protokol microparticles veya kendi kendine montaj hidrojel işleme daha fazla ile birleştirerek, insan kalp ECM malzeme elde edilir belirli biyolojik aktivitesi sahip, işlemek kolay ve için potansiyele sahiptir çoklu uygulama...

Hücre dışı Matriks (ECM) sadece yapısal destek ama aynı zamanda biyolojik hücre için önemlidir ve doku1işlev sağlar. Kalbinden, fibrozis, iltihap, anjiogenez, cardiomyocyte contractile fonksiyon ve canlılığı ve ikamet progenitör hücre kader gibi Etyopatogenezi yanıt Yönetmeliği ECM katılmaktadır. Birincil bileşenleri ek olarak - lifli glikoproteinlerin, glikozaminoglikan ve Proteoglikanlar - salgılanan büyüme faktörleri, sitokinler ve membranöz veziküller2,3nükleik asitler ve protein içeren bir dizi içerir.
Son zamanlarda acellular ECM hazırlıkları sadece hücre-matris etkileşimleri, potansiyel terapötik hücre tabanlı uygulamalar için de eğitim için çok değerli değildir açık hale gelmiştir. Tedavi hücre ürünlere veya mühendislik dokulara yeterli bir ortam önemini şimdi yaygın kabul edilmektedir. Girişimleri hücre süspansiyonlar veya aktif bileşikler ile tanımlanan biopolymeric hydrogels4,5,6 veya protein kokteyller (Yani, Matrigel, Geltrex) fare sarkomu hücreleri tarafından salgılanan birleştirmek için yapılmıştır 7. ancak, eski bioactivity sınırlı, ikinci GMP-grade süreçlerinde sorunlu ve her ikisi de kalp ECM (cECM)8,9,10, doku özgü bioactivity eksikliği 11,12,13.
Miyokardiyum decellularization daha önce bütün kalp koroner damarlara14,15ile perfüzyon tarafından yapıldı. Bu hayvan kalbimizde mümkün olmakla birlikte, sağlam insan kalpleri nadiren mevcuttur. Bu nedenle, ameliyat odasında alınan doku örnekleri işlemek için izin veren bir daldırma işlemi tercih. Bizim "3-adım" Protokolü 3 ayrı içerir kuluçka Yani lizis, solubilization ve DNA kaldırma adımlarını. Büyük ölçüde korunmuş protein ve glikozaminoglikan kompozisyon16,ile17insan miyokardiyal ECM verimleri. Bu cECM dilimler hücre-matris etkileşimlerin vitro çalışmalar için izin ancak kötü potansiyel insan ölçekli tedavi uygulamaları için uygundur. Üretim sürecinin ardından liyofilize cECM microparticles ya da cECM hidrojel18üretmek için uzatıldı.
Bu iletişim kuralı insan Miyokardiyum miyokard hücre dışı Matriks (ECM) ve biyolojik faaliyetlerini önemli bileşenleri koruyarak cerrahi örneklerinden elde decellularization için izin verir. Bu iletişim kuralı ile korunmuş doku özgü bioactivity insan kalp ECM hücre-matris etkileşimleri deneysel çalışmalar için gerekli olduğunda veya makul bir ortam miyokardiyal rejenerasyon hücre tabanlı yaklaşımlar için gerektiğinde önerilir. İşlenmiş cECM kullanımı mümkün gelecekte tedavi uygulamaları olmalıdır böylece prensipte, bu protokol GMP-sınıf koşullarına, adapte mümkündür.

<table><tbody><tr><td>Balance</td><td>DR Precisa, Dietikon, İsviçre</td><td>Precisa XR 205SM</td><td></td></tr><tr><td>Bıçaklar Nr.10 Skalpell Nr.3</td><td>InstrumenteNRW, Erftstadt, Almanya</td><td>SK-10-004</td><td></td></tr><tr><td>Hücre kültürü plakaları (6 kuyulu)</td><td>Greiner, Frickenhausen, Almanya</td><td>657160</td><td></td></tr><tr><td>Kriyostat CM</td><td>Leica, Wetzlar, Almanya</td><td>3050S</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Almanya</td><td>8043.3</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf reaksiyon tüpleri (1.5 veya 2 ml)</td><td>Greiner, Frickenhausen, Almanya</td><td>616201, 623201</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 15ml, 50ml</td><td>Greiner, Frickenhausen, Almanya</td><td>188271, 227270</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu (FBS)</td><td>Biochrome, Berlin, Almanya</td><td>S 0115</td><td></td></tr><tr><td>Dondurarak Kurutma Sistemi</td><td>Labconco, Kansas City, ABD</td><td>7670520</td><td></td></tr><tr><td>Dondurucu (-80 derece; C)</td> <td>Thermo Scientific, Waltham, MA, ABD</td><td>Forma 900 Serisi</td><td></td></tr><tr><td>HCl</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Almanya</td><td>281.1</td><td></td></tr><tr><td>Mikrotom Bıçakları Tip 819</td><td>Leica, Wetzlar, Almanya</td><td>14035838925</td><td></td></tr><tr><td>Minilys Homojenizatör</td><td>PEQLAB Biotechnologie GmbH, Erlangen, Almanya</td><td>91-PCSM</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Almanya</td><td>K021.1</td><td></td></tr><tr><td>Nystatin</td><td>PAN Biotech, Aidenbach, Almanya</td><td>P06-07800</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Thermo Scientific, Waltham, MA, ABD</td><td>14190-094</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin / streptomisin</td><td>Yaşam Teknolojileri, Darmstadt, Almanya</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Pepsin</td><td>Sigma-Aldrich, Taufkirchen, Almanya</td><td>P6887-1G</td><td></td></tr><tr><td>Precellys Keramik-Kit 1.4 mm</td><td>Peqlab Biotechnolgie, Erlangen, Almanya</td><td>91-PCS-CK14</td><td></td></tr><tr><td>Rotamax 120 Plaka çalkalayıcı</td><td>Heidolph, Schwabach, Almanya</td><td>544-41200-00</td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Almanya</td><td>CN30.3</td><td></td></tr><tr><td>Stereo mikroskop</td><td>Leica, Wetzlar, Almanya</td><td>M125</td><td></td></tr><tr><td>Steriflip-GP, 0,22 & mikro; m</td><td>Merck Millipore, Darmstadt, Almanya</td><td>SCGP00525</td><td></td></tr><tr><td>Stuart analog külbütör ve silindir mikserler</td><td>Sigma-Aldrich, Taufkirchen, Almanya</td><td>Z675113-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Doku Tek O.C.T bileşiği</td><td>Hartenstein, Würzburg, Almanya</td><td>TTEK</td><td></td></tr><tr><td>Transfüzyon seti 200&mikro; m</td><td>Sarstedt, N&uuml; mbrecht, Almanya</td><td>798.200.500</td><td></td></tr><tr><td>TRIS</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Almanya</td><td>5429.3</td><td></td></tr><tr><td>vedena Skalpellgriff Şekil 3, Standart, 125 mm</td><td>Tıbbi Öne Çıkanlar, Rohrdorf, Almanya</td><td>CV102-003</td><td></td></tr><tr><td>Vortex-Genie2</td><td>Bilimsel Endüstri, New York, ABD</td><td>SI-0256</td><td></td></tr></tbody></table>

İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel vitro ve in vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi

Processing of Human Cardiac Tissue Toward Extracellular Matrix Self-assembling Hydrogel for In Vitro and In Vivo Applications

Acellular hücre dışı matriks ürünleri hücre-matris etkileşimleri eğitimi için yararlıdır ve rejeneratif hücre terapisi uygulamaları kolaylaştırmak. Birçok ticari hücre dışı matriks ürün hydrogels veya membranlar olarak kullanılabilir, ancak bunlar doku özgü biyolojik aktivitesi sahip değilsin. Perfüzyon decellularization genellikle insan kalp dokusu ile mümkün olmadığı için 3-adım daldırma decellularization süreci geliştirdik. Ameliyat sırasında tedarik insan miyokardiyal dilimleri ilk deterjan-Alerjik hiperozmolar lizis arabellek, iyonik deterjan, Sodyum Lauryl Sülfat ile kuluçka takip ile tedavi ve içsel Dnaz aktivitesini sömürerek tamamlanmıştır Fetal sığır serum. Bu teknik boş hücre yaprak kalp hücre dışı matriks ile büyük ölçüde fibröz doku mimarisi ve biyopolimer kompozisyon, korunmuş olan kardiyak hücre popülasyonlarının ve pluripotent kök için belirli çevre yardım sağlamak için gösterildi sonuçlanır hücreleri. Kardiyak hücre dışı matriks sayfaları daha sonra daha da daha fazla kimyasal değişiklik yapmadan bir microparticle toz içine işlenmiş veya, bir kendi kendine montaj kardiyak hücre dışı matriks hidrojel ile içine kısa vadeli pepsin sindirim yolu ile korunmuş bioactivity.

3-adım Protokolü insan Miyokardiyum decellularization için burada anahtar ECM bileşenleri ve ECM fibriler yapısını koruyarak süre hücresel malzemenin çıkarılması tamamlamak sonuçları sunulan. Decellularization sonra doku hücrelerinden brüt kaldırılması (şekil 1A) renk değişikliği tarafından belirgindir. H &amp; E ve Masson Trichrome lekeleri ile histolojik çözümleme kalan sağlam hücreleri (şekil 1B) olmaması ortaya. ECM bileşenle...

Bu iletişim kuralı tam decellularization insan Miyokardiyum, hücre dışı matriks bileşenlerinin koruma sırasında açıklar. Microparticles ve cytoprotective kendi kendine montaj hidrojel üretiminde hücre dışı matriks sonuçlarının daha fazla alay.

İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel Vitro ve In Vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi

Acellular extracellular matrix preparations are useful for studying cell-matrix interactions and facilitate regenerative cell therapy applications. ...

Bu prosedürün genel amacı, kardiyak hücre dışı matrisi bir hidrojele işlemektir, bu da matrisin çeşitli hücre bazlı tahlillerde etkisinin incelenmesini sağlar. Bu yöntem, hücre dışı matrisin hücre davranışını nasıl etkilediği gibi kardiyak alandaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, in vitro veya in vivo olarak büyük ölçekli deneyler yapmak için hücre dışı matrisin kullanımını kolaylaştırmasıdır.Bu tekniğin uygulamaları, miyokard enfarktüsü için bir tedaviye doğru genişletilebilir, çünkü matris temel sağkalım ipuçlarını sağlayabilir. Deneye başlamak için, daha önce elde edilmiş bir sol ventrikül miyokarından yağ dokusunu çıkarmak için on numaralı bıçaklı steril bir neşter kullanın. Miyokard'ı bir neşter kullanarak yaklaşık 1 x 1 x 1 cm küpler halinde kesin.Ardından, küpleri 50 mL'lik steril bir tüpe yerleştirin. Küpleri içeren tüpleri 80 santigrat derecede saklayın. Hazırlanan küpleri içeren tüpü dondurucudan çıkarın ve buz üzerinde kriyostata taşıyın.Kriyostatın nesne ve oda sıcaklığını 15 santigrat dereceye ayarlayın. Haznedeki boş 50 mL'lik tüpleri ve pulları soğutun. Soğuk damganın üzerine bir kat kriyoseksiyon ortamı ekleyin ve beyaz ve katı olana kadar donmasına izin verin.İkinci bir kriyoseksiyon ortamı katmanı ekleyin ve ikinci katmana bir miyokard tüpü yerleştirin. Kriyoseksiyon ortamının ve miyokardın tamamen donduğundan emin olun. Ardından, donmuş miyokard içeren damgayı tutucuya yerleştirin ve tüm vidaları sıkın.Düz bir kesit yüzeyi elde edilene kadar dokunun yüzeyini kesin. Düzgün kesim kesitlerini garanti etmek için donmuş miyokardları otomatik kesitlerle bölümlere ayırın. Bir küpten yaklaşık 30 ila 40 bölüm dilimlenebilir.Her dilimi, bölümlere ayırdıktan sonra, önceden soğutulmuş 50 mL'lik bir tüpe gevşek bir şekilde yerleştirin. Doldurulmuş tüpleri kapatın ve buzun üzerine yerleştirin. 50 mL'lik tüplerin donmuş kısımlarını tek bir steril behere aktarın.Miyokard dilimleri içeren 50 mL tüp başına 50 mL lizis çözeltisi ekleyin. Daha sonra, miyokard dilimlerini steril bir beherde çalkalayın. Sıvıyı doku dilimleriyle birlikte kaba bir süzgeçten geçirin.Daha sonra, doku dilimlerini künt bir cımbızla yeni bir steril behere aktarın. İlk 50 mL miyokard dilimi tüpü başına PBS'de 50 mL% 0.5 SDS ekleyin. Beheri oda sıcaklığında 100-150 rpm'de altı saat boyunca sürekli olarak çalkalayın.Çalkaladıktan sonra, sıvıyı doku dilimleri ile birlikte kaba bir süzgeçten geçirin. Künt cımbız kullanarak, doku dilimlerini yeni bir steril behere aktarın ve dilimleri 50 mL PBS ile üç kez yıkayın. Daha sonra, dilimleri gece boyunca PBS'de,% 1 penisilin streptomisin ve% 1 nistatin ile yıkayın.Ertesi gün, yıkama solüsyonunu çıkarın ve ilk 50 mL miyokard dilimleri tüpü başına hücreden arındırılmış dilimlere% 1 penisilin streptomisin ve% 1 nistatin ile 37 santigrat derecede önceden ısıtılmış 25 mL FBS ekleyin. Matristen kalan DNA'yı çıkarmak için dilimleri 37 santigrat derecede üç saat inkübe edin. Daha sonra dilimleri yeni bir steril behere aktarın ve 50 mL PBS ile üç kez yıkayın.ECM dilimlerini yeni bir steril altı kuyulu plakaya gevşek bir şekilde yerleştirin. ECM'yi 80 santigrat derecede dondurun ve bir liyofilize içinde iki gün boyunca liyofilize edin. ECM diliminin toz haline getirilmesi için 1,4 mm seramik boncuklar içeren freze boruları kullanın.Steril, künt cımbız kullanarak tüpleri liyofilize ECM ile gevşek bir şekilde doldurun. Tüpleri sıvı nitrojen içinde dondurun. Dondurulmuş boruları freze makinesine yerleştirin ve ECM'yi toz haline getirin.Süreyi 30 saniye olarak ayarlayın, maksimum hızı ayarlayın ve cihazı başlatın. Toz haline getirdikten sonra, tüpleri çıkarın ve tekrar sıvı nitrojen içinde dondurun. Tüp başına 1 mL ddH20 ekleyerek mikropartikülleri tüplerden yıkayın ve tam çözünme için çalkalayın.Daha sonra, heterojen çözeltiyi 200 mikrometre ağından 50 mL'lik bir tüpe süzün. Tüpü sıvı nitrojen içinde dondurun. Tozun tüpten dışarı akmasını önlemek için standart tüp kapağını 0.22 mikrometre filtre ile değiştirin.Tüpü liyofilizatöre yerleştirin ve suyu yıkama adımından çıkarmak için tekrar liyofilize edin. Önceden hazırlanmış liyofilize insan ECM tozunu pepsin çözeltisi içinde, mL başına 10 mg'lık bir nihai konsantrasyona çözün. Çözeltiyi, tüp başına 1 mL hacimli 2 mL tüplere aktarın.İyice karıştırmak için çözeltiyi pipetleyin. Ardından, tüpleri çalkalayıcıya yerleştirin ve 27 santigrat derecede 48 saat boyunca 1200 rpm'de çalkalayın. Tüpleri çalkalayıcıdan çıkarın ve buzun veya önceden soğutulmuş bir tüp tutucunun üzerine yerleştirin.Soğuk 10X PBS'nin ECM çözeltisinin hacminin 1/9'unu, soğuk 0.1 molar sodyum hidroksitten oluşan ECM çözeltisinin 1/10'u ile önceden soğutulmuş bir tüpte karıştırın ve sindirilmiş ECM çözeltisini nötralize etmek ve pepsini etkisiz hale getirmek için buzun üzerine yerleştirin. Son olarak, ECM çözeltisini nötralizasyon karışımına ekleyin ve pipetleme veya girdaplama yoluyla iyice karıştırın. Bireysel ECM bileşenleri için kantitatif tahliller, tek başına SDS ile hücreden arındırmaya kıyasla daha eksiksiz bir DNA uzaklaştırması ve toplam kollajen, elastin ve glikosominoglikanların daha iyi korunduğunu ortaya koydu.RT-PCR, spontan farklılaşma geçiren Murine ESC'de yapısal kardiyomiyosit proteinlerinin, erken ve geç kardiyomiyojenik transkripsiyon faktörlerinin ve endotel hücrelerinin yüzey marker genlerinin ekspresyonunu ölçmek için kullanıldı. cECM ile temas, pluripotent kök hücreleri, tercihen kardiyomiyosit benzeri bir fenotipe doğru yönlendirir. Faz kontrast ışık mikroskobu, cECM'nin 48 saat boyunca enzimatik sindiriminin daha homojenize bir ECM çözeltisi ile sonuçlandığını göstermektedir.İnsan kardiyak fibroblastlarının cECM hidrojel üzerinde canlı / ölü boyanması, canlılığın arttığını gösterir. Hem cECM mikropartikülleri hem de cECM hidrojeli, standart kültürdeki hücrelere kıyasla iskemik koşullarda kasılma HL-1 hücrelerinin metabolik aktivitesini arttırır. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, uygun şekilde yapılırsa, dokudan hidrojele kadar bir hafta içinde yapılabilir.Geliştirildikten sonra, bu teknik, kardiyak rejenerasyon alanındaki araştırmacıların, in vitro ve in vivo model sistemlerde kardiyak hücre dışı matrisin etkilerini keşfetmelerinin yolunu açtı.

processing-human-cardiac-tissue-toward-extracellular-matrix-self

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Enjektabl bir matris jel decellularized doku hazırlanması ve sıçan miyokardın içine enjekte...

Miyokard Doku Mühendisliği Biyolojik Türetilmiş Enjektabl Malzeme imalatı

Biz yenidoğan kardiyomiyositlerde izolasyonu ve doku mühendisliği için fibrin hidrojel yapıları kapsülleme hücrelerin hazırlanması açıklar. Biz elektrik stimülasyonu ve hücre canlılığı ve immünohistolojik boyama üzerine oluşturulan etkin bir güç de dahil olmak üzere kültür süre sonra doku mühendislik miyokardın analiz yöntemleri açıklanmaktadır.

Kalp Doku Mühendisliği Fibrin Hidrojel kardiyomiyositlerinin Kapsülleme

Bu el yazması, yüzey işaretleyici ekspresyonu ve hücre sıralaması kullanılarak tanımlanmış tasarlanmış kardiyak dokuların oluşturulmasını açıklar. Tanımlanan dokular daha sonra insan kalbinin işlevsel, ancak kontrollü bir model sistemini sağlamak için kardiyak hücre tedavisi mekanizmalarını araştırmak için çok dokulu bir biyoreaktörde kullanılabilir.

Tanımlı İnsan Engineered Kalp Dokuların inşaatı Kardiyak Hücre Tedavisinin Mekanizmaları Eğitim için

uyarılmış pluripotent kök hücreler (hiPSC) kardiyomiyositlerini -türevlenmiş dan Burada, insan mühendisliği kalp dokusu üretimini göstermektedir. Biz hERG kanalı inhibitörü e-4031 ile büzülme kuvveti ve kasılma biçimi örnek değişiklik analiz etmek için bir yöntem sunulmaktadır. Bu yöntem, kalp ilaç taraması için sağlamlık ve uygunluğu yüksek seviyesini gösterir.

Kardiyak İlaç güvenlik Taraması için insan mühendisliği kalp dokusunun Otomatik Büzülme Analizi

Bu yöntem, decellularization karmaşık bir solid organ ozmotik şok ve perfüzyon en az organ matris bozulma ile iyonik deterjan dayalı basit bir protokol kullanarak sağlar. Gerçek zamanlı akış dinamiği ve hücresel enkaz çıkış izleme ile basınçlı bir kese içinde insan kalpleri bir roman decellularization tekniği oluşmaktadır.

Decellularization ters yönde bir basınçlı bir kese içinde bütün insan kalp

Bu protokol, kalp hastalıkları için hücre implantasyon tedavisinin araştırılmasına olanak sağlamak için insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerden elde edilen kardiyovasküler hücreleri içeren mesh şeklinde tasarlanmış kardiyak dokular üreder.

In Vivo Miyokardiyal Onarım için İnsan iPS Hücrelerinden Elde Edilen Örgü Şekilli Mühendislik Kardiyak Dokuların Hazırlanması

Kök hücre bazlı tedavi, miyokard enfarktüsünden sonra yaralı kalp dokularını onarmak için etkili bir strateji olarak ortaya çıkmıştır. Enzmatik olarak çapraz bağlanabilen jelatin hidrojelleri kullanarak kök hücre nakli için en uygun in vivo uygulamayı sağlıyoruz.

Murine Modelinde Miyokard İnfarktüsünden Sonra MSC Yüklemeli Enjekte Edilebilir Hidrojellerin intramiyokardiyal Transplantasyonu

Bu protokolün amacı, kardiyak doku mühendisliği, ilaç taraması ve hastalık modelleme uygulamaları için biyomimetik, kollajen bazlı bir hidrojel içinde kardiyak fibroblastlar (KF' ler) ile birlikte kültürlenmiş kök hücre türevi kardiyomiyositlerden oluşan, yüksek hizalanmış insan kardiyak dokusunun üç boyutlu (3D) mikroakışkan modelinin gelişimini açıklamak ve göstermektir.

Mikroakışkan Bir Platformda 3D Organize İnsan Kardiyak Dokusu Geliştirme

Burada, yüksek verimli, çok boyutlu bir formatta kültürlenmiş, insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositlerden kardiyak sferoidlerin (CSs) üretilmesi ve kriyoprezervasyonu için bir dizi protokol sunulmaktadır. Bu üç boyutlu model, hastalık modellemesi, yüksek verimli taramalar için sağlam bir platform olarak işlev görür ve kriyoprezervasyondan sonra işlevselliğini korur.

İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücre Kaynaklı Kardiyak Sferoidlerin Üretimi, Yüksek Verimli Taraması ve Biyobankacılığı

Yetişkin insan kalbinden izole edilen fibroblastlar, miyokarda özgü hücre dışı matrisi üretmek için jelatin kaplı tabaklar üzerinde birleşecek şekilde kültürlendi. Hücreden arındırmadan sonra, bu substrat diğer kardiyak hücrelerin ve hücre-matris etkileşimlerinin kültürü ve incelenmesi için kullanılabilir.

Kültür Çanağı Kaplaması için Yetişkin İnsan Fibroblastlarından Kardiyak Hücre Dışı Matriks Üretimi

Eriyik elektrospinning yazma (MEW), polikaprolakton (PCL) iskeleleri ve fibrin hidrojelleri hiPSC türevi kardiyomiyositler ve fibroblastlarla birleştiren 3D miyokardiyal dokular oluşturmak için tekrarlanabilir bir yöntem sunulmuştur. Bu teknik, iskele mimarisi üzerinde hassas kontrol sağlar ve klinik öncesi ilaç testlerinde ve kalp hastalığı modellemesinde uygulanabilir.

Polikaprolakton İskelelerinin ve hiPSC'den Türetilmiş Kardiyak Hücrelerin Eriyik Elektrospinning Yazımı Kullanılarak 3D İnsan Miyokard Dokusu Üretimi

Öğrenin insan miyokard dokusundan hücre dışı matriks hidrojel üretimini. Bu yöntem, kalp hücre davranışlarını incelemek ve miyokard infarktüsü tedavileri için büyük ölçekli deneyler yapmak amacıyla kullanılır.

İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel Vitro ve In Vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi

Daha fazla video keşfet