28 Mart 2018
Bu iletişim kuralı thalamocortical akson dallanma ve synapse oluşumu organotypic cocultures, talamus ve serebral korteks eşzamanlı görüntüleme için bir yöntemi açıklar. Bireysel thalamocortical akson ve presynaptic onların terminalleri bir tek hücre çoğalmasıyla tekniği ile DsRed ve synaptophysin GFP öğesini tarafından görüntülenmiştir.
Bu yöntemin genel amacı, talamokortikal projeksiyonda akson dallanmasının ve sinaps oluşumunun dinamik morfolojik değişikliklerini incelemektir. Bu yöntem, yeni nöral devre oluşumu gibi nörobiyoloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, bireysel canlı hücrelerde akson büyümesinin ve sinaps oluşumunun aynı anda gözlemlenmesidir.
Bu yöntem, talamokortikal projeksiyonlarda akson dallanması ve sinaps oluşumu arasındaki ilişki hakkında fikir verebilir. Serebral korteksteki içsel bağlantı gibi diğer nöral devrelere de uygulanabilir. Bu işleme başlamak için tüm cerrahi aletleri %70 etanol ile 10 dakika veya daha uzun süre sterilize edin.
Daha sonra, buz gibi soğuk anestezi altında doğum sonrası ikinci gün faresinden tüm beyni hızlı bir şekilde inceleyin. Ardından, beyni 40 mililitre soğuk Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisi içeren 100 milimetrelik bir petri kabına yerleştirin. Binoküler mikroskop altında, pia maddesini ince forsepslerle dikkatlice çıkarın ve birincil görsel ve somatosensoriyel korteksi mikrocerrahi makas kullanarak 300 ila 400 mikron kalınlığında dilimler halinde kesin.
Bundan sonra, kortikal dilimleri tek kullanımlık bir plastik pipet kullanarak kültür ekinin membran filtresine aktarın. Tek kullanımlık plastik pipetle kültür ekinin merkezine yakın dilimlerin konumlarını ayarlayın ve ek parçadaki fazla ortamı çıkarın. Dilimleri serum içeren kültür ortamında 37 santigrat derecede tutun ve yanına bir E15 embriyosundan talamik bir blok yerleştirmeden önce bir gün boyunca tek başına kültürleyin.
Ortamın seviyesini dilim yüzeyinin biraz altına ayarlayın, böylece dilimler hem gazı hem de ortamı yeterli miktarda alabilir. Bu, dilimlerin canlılığı için çok önemlidir. Bu adımda, cam kılcal damarları bir elektrot çektirme ile yapın.
Daha sonra plazmit enjeksiyonu için cam kılcal damarların uçlarını kırın. Elektrot pipetleri için, cam kılcal damarların uçlarını zımpara kağıdı ile zımparalayın ve parlatın. Ardından, 50 ila 200 mikronluk bir iç çap elde etmek için onları ateşle parlatın.
Ardından, elektrot pipetini ve ejeksiyon pipetini manipülatörlere takın. Beş mikrolitre plazmit çözeltisini bir petri kabına aktarın. Ardından çözeltiyi kılcal hareket ile elektrot pipetine çekin.
0,2 milimetre çapındaki elektrodu elektrot pipetine yerleştirin. Ejeksiyon pipetini plastik bir tüplü bir mililitrelik şırıngaya bağladıktan sonra, beş mikrolitre plazmit çözeltisini tekrar bir petri kabına aktarın. Ardından şırıngayı kullanarak çözeltiyi yavaşça ejeksiyon pipetine çekin.
Bunu takiben, kokültürü elektroporasyon aşamasına aktarın ve bir milimetre çapındaki elektrodu kültür ortamına yerleştirin. Daha sonra, ejeksiyon pipetini kültürlenmiş talamik blok üzerine yerleştirin. Uç talamik bloğun yüzeyine temas ettikten sonra şırıngayı manuel olarak itin.
Ejeksiyon pipetinin geri çekilmesinden hemen sonra elektrot pipetini talamik bloğa yerleştirin. Şimdi, elektrik darbelerini iletin. Osiloskop üzerindeki tren genliğini ve sayısını izleyin.
Daha sonra, elektrot pipetini geri çekin ve tabağı inkübatöre geri koyun. Numuneyi gözlemlemek için, kültür kabını EGFP ve DsRed için iki filtre seti ile donatılmış dik bir konfokal mikroskop sahnesine yerleştirin. Ardından, 20x uzun çalışma mesafeli objektif lens ile bir ila yedi mikronluk adım boyutlarında 10 ila 25 optik bölümün görüntülerini çekin.
Hem DsRed hem de Syp-EGFP'yi ifade eden, ayrı ayrı ayırt edilebilir etiketli aksonları seçin. Burada gösterilen, 12 DIV'den sonra talamik ve kortikal dilimlerin organotipik bir kokültürüdür. İşte kutulu bölgenin büyütülmüş bir görüntüsü.
Ve burada DsRed etiketli bir talamik hücre bir akson kortikal dilime uzatıyor ve üst katmanlarda dallar oluşturuyor. Bu görüntüler DsRed etiketli talamokortikal akson ve Syp-EGFP punktayı göstermektedir. Tek bir talamokortikal akson boyunca ayrı Syp-EGFP birikimi gözlendi.
DsRed artı Syp-EGFP plazmitleri, elektroporasyon kullanılarak bir DIV'de kültürlenmiş talamik hücrelere sokuldu. Bu akson dört gün boyunca günlük olarak görüntülendi. Akson dallanması ve sinaps oluşumu, ekleme ve eleme ile dinamikti.
Bu işlemleri takiben, genin akson dallanması ve sinaps oluşumlarındaki rolünü araştırmak için Syp-EGFP ve DsRed ile birlikte ilginç genlerle elektroporasyon yapılabilir. Bu teknik, nörobiyoloji alanındaki araştırmacıların nöral devrelerin dinamik değişim mekanizmalarını keşfetmelerinin yolunu açmaktadır.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu çalışma, talamus ve serebral korteksin organotipik kokültürlerinde talamokortikal akson dallanmasının ve sinaps oluşumunun eş zamanlı görüntülenmesine yönelik bir protokol sunmaktadır. Çalışma, talamokortikal projeksiyondaki dinamik morfolojik değişikliklere odaklanarak, yeni nöral devre oluşumu ile akson büyümesi ve sinaps gelişimi arasındaki ilişkiye dair içgörüler sağlamaktadır.
Bu yöntem, yaşayan nöral devrelerde akson dallanmasının ve sinaps oluşumunun eş zamanlı olarak görselleştirilmesini sağlayarak, nörogelişimsel hedef doğrulamadaki temel bir mekanistik boşluğu doldurmaktadır. Yapısal plastisiteye ilişkin dinamik ve tek hücre çözünürlüğünde veriler sunarak, sinaptik hedeflerin mekanistik risklerinin azaltılmasının kritik olduğu erken keşif aşamalarında öngörülebilir güvenilirliği destekler. Bu yaklaşım, mekanistik içgörülerden nöropsikiyatrik hastalık modellerindeki devre düzeyindeki fenotiplerin preklinik değerlendirmesine kadar translasyonel bir süreklilik sunar.
Bu yöntem, nöral devre modellerinde fonksiyonel analiz sonuçlarından önce meydana gelen yapısal plastisitenin doğrudan gözlemlenmesine olanak tanıyarak erken keşif iş akışlarına entegre olur.