Name: Contractile fare faaliyet kaynaklı kas iskelet fenotipik uyarlamalar çalışmaya kronik stimulasyon uygulanması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 50 s
Description: Öğrenin, kronik kasılma aktivitesi modeliyle sıçan arka bacaklarında egzersiz kaynaklı iskelet kası fenotipik uyarlamalarını kısa sürede gözlemleyin. Bu yöntem mitokondriyal biyogenez ve otojiyi araştırmak için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Liam Tyron el yazması uzman onun okuma için minnettarız. Bu eser Doğa Bilimleri ve mühendislik Araştırma Konseyi, Kanada (NSERC) ö. A. Hood için fon tarafından desteklenmiştir. Ö. A. Hood ayrıca Kanada araştırma sandalye hücre fizyolojisi sahiptir.

Tüm hayvan ile ilgili yordamları gözden geçirilmiş ve York Üniversitesi hayvan bakımı Komitesi tarafından onaylanmış. York Üniversitesi'nde hayvan tesisinde gelişinden sonra gıda sağlanan ad libitumile cerrahi işlem öncesinde onların ortama parkenizin en az beş gün tüm rats verildi. Her ne kadar bu iletişim kuralı diğer türler15,17,22' ye daha önce uygulanmış olan geçerli kağıt Pette ve meslektaşları23 öncü çalışmaları oluşturur ve sıçan modelinde özellikle duruluyor.
1. kronik Contractile etkinlik birimi hazırlanması
<ol><li>Bir voltmetre kullanarak, sikke lityum piller potansiyelini denetleyin. Not: Her pil potansiyelini 3.0 ± 0.10 V olması gerekir.</li>
	<li>Böylece toplam potansiyel 6-9 V iki ya da üç pil birimi yuvasına takın. Not: Bütün deneysel işlem sırasında ne kadar potansiyel (6 veya 9 V) korumak için göz önünde bulundurulacak araştırmacılar takdirine kadar öyle. Çalışma tasarım ve uyarıcı istenen yoğunluğuna bağlı olarak, 2 veya 3 piller kullanılabilir.</li>
	<li>Birim düzgün nabız göstergesi 1 darbe taşınabilir kızılötesi strobe ışık tarafından yayılan birimine açarak çalıştığından emin olun.</li>
</ol>2. cerrahi işlem kronik Contractile aktivitesinin
Not: tüm cerrahi alet cerrahi işlem önce Sterilize. Hem sırasında ve hemen sonrasında ameliyat, fareler vücut sıcaklığını bir Isıtma yastığı tarafından korunur. Bu cerrahi işlem cerrahi örtüsü üzerinde gerçekleştirmek için arzu edilir. Cerrah steril cerrahi eldiven gibi temiz laboratuar önlüğünü giymelisin. Gerekirse, bu tek kullanımlık maske maske takmak için tavsiye edilir.
<ol><li>Fareler küçük % 1-3 anestezi isoflurane inhalasyon ile oksijen, bir gaz Buharlaştırıcı sistemi tarafından işletilmektedir. Hayvan tamamen hindlimb ayak çimdik denetleyerek ve solunum derinlik ve oranı gözlemleyerek sakinleştirici aldı onaylayın. Oküler yağ gözler kuruluğu önlemek için geçerlidir. Meloksikam (0,5 mg/mL) 2 mg/kg bir Subkutan Enjeksiyon uygulanır. Not: Ayrıca analjezi (örneğin, Meloksikam artı lidokain) sırasında ve ameliyat sonrası ağrı en aza indirmek için Multi-Modal bir uygulama olması önerilir.</li>
	<li>Yavaşça sol hindlimb yanı sıra bir şerit arka boyun, gövde etrafında civarında arkasında forelimbs ve anterior Toraks genelinde tıraş. Yavaşça iyot ve etil alkol dezenfekte ile traş alanlarını silin.</li>
	<li>Onun karnına döşeme hayvanla (kürek kemikleri arasındaki aşikar alan) traş bölgesinin merkezinde boyun arkasında küçük bir insizyon attım (~0.5 cm) yapmak bir neşter (No. 10 bıçak) kullanarak.</li>
	<li>Ortak peroneal sinir bulun.<ol>
<li>Hayvan sağ yan üzerine rulo ve ~ 2-3 cm olun-uzun sol hindlimb deride kesti. Diz eklem çukur ve arka kuyruk kökeni yakın arasında landmarked üst kalça kas gruplarını kesi çevresini hedef. Not: ilk kesi alan vücut konumunu değiştirirken kontamine değil dikkatli olun.</li>
		<li>Künt uçlu kullanarak eğri Cerrahi makas, subkutan alan yaygın olarak incelemek ~3.5 - 4 cm, deri bir cep arasında açılan deri ve temel kas yapmak için temel kas ayıran. Cilt kesi (~1.5 cm2) tüm çevresi temel doku açın.</li>
		<li>Küçük bir insizyon attım (daha az 0.5 cm) ile Cerrahi makas makas ipuçları kas doğrudan aşağı kesiyorsun sağlanması, pazı kemiği kas üzerinde olun.</li>
		<li>İç kas gruplarını ve ortak peroneal sinir görünür hale gelene kadar hafifçe açık kesme alan (dış kas dokuları (Yani, pazı kemiği) derinliği ~0.5 cm olan). Forseps kullanarak, yavaşça touch/görünür sinir kıstırmak ve hedef kas gruplarını (Örneğin, TA kas) ve ayak parmakları (görünür dorsiflexion) ortak peroneal sinir izole olduğunu doğrulamak için yanıt gözlemlemek. Not: Bu adım kesme veya sinir zarar önlemek için son derece dikkatli yapılmalıdır.</li>
		<li>Pencereyi pencerenin boyutunu ~1.5 cm2 pencerenin ortasına yalan peroneal sinir ile öyle ki açık metal traktör ile çekerek tarafından tamir. Askıları ve/veya tablo, yüzey (veya cerrahi kurulu) bağlanır lastik bantlar bağlı küçük metal kanca kullanın (şekil 2A).</li>
	</ol></li>
	<li>Tel sinir iki tarafa da ekleyin.<ol>
<li>~ 50-60 cm, politetrafloroetilin (PTFE) hazırlamak-kaplı ince paslanmaz çelik tel ve ikiye katlayın. Not: PTFA kaplı tel ameliyattan önce UV ışık altında göstermek yararlı olabilir.</li>
		<li>Tel bir 30 cm uzunluğundaki paslanmaz çelik çubuk yarık içine katlanmış parçası kanca. Çubuk, Tel, boyun arkasında küçük kesi alan doğru hindlimb, açık cebinden subkutan birlikte bir L Şekil desen bacak yukarı ve arka ortasına boyunca geçirin.</li>
		<li>Tel iki ucu hindlimb bulmak. Tüm teller PTFE yalıtılmış olduğundan teller şerit. Bir neşter kullanarak, dikkatle tel ucu ~1.5 cm şerit. Teller yıpranmış olmak, onları kesip ve yeniden şerit. Sökülen tel biter körelmenin 21-G iğne etrafında bir coil yapmak (5 kez), sarın. Bobinler düzgün yapıldıktan sonra iğneyi onları serbest bırakın.</li>
		<li>Bir boyutu 6-0 cerrahi ipek kullanarak, her bir ortak peroneal sinir (şekil 2A) her iki tarafında bobinleri güvenli.<ol>
<li>Bobin En sonunda bir düğüm yapın ve sinir sol tarafındaki dikiş. Bobin 1.5-2.5 mm den sinir olduğundan emin olun.</li>
			<li>Bobin güvenliğini sağlamak için iki veya üç ek dikiş bobin boyunca geçerlidir.</li>
			<li>Sinir sağ tarafta bu adımları yineleyin.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Antibiyotik çözüm (serum Ampisilin; 132 mg/mL) 2-3 damla uygulamak ve dikkatle boyutu 5-0 ipek kullanarak pencere (i.e., pazı kemiği kas dokusu) dikiş at.</li>
	</ol></li>
	<li>Gevşek tel (yaklaşık işaret parmağı çapı) ve subkutan pocket dikilmiş kesi pazı kemiği kas (yaklaşık yukarıda kalça) yukarıda içine itme kalan bolluk Rüzgar.</li>
	<li>Antibiyotik çözüm tekrar (serum Ampisilin; 132 mg/mL) 2-3 damla uygulanır. Zımbalama tarafından açılan cilt kapatın.</li>
	<li>(Boyun kesi bölgeden geliyor) teller CCA Stimülatörü bağlayın.<ol>
<li>Pin yuva ile tel bağlayın.<ol>
<li>Belgili tanımlık kesme 2 tel biter (Bu müşteri adayına peroneal sinir her iki tarafına sütüre bobinler) oluşturmak için boynun üst kısmında çıkan tel döngü kesti.</li>
			<li>Bir neşter, tarafından ~0.5 cm. kesim kapalı yıpranmış teller, tellerin uçları kapalı şerit varsa kullanarak.</li>
			<li>Yavaş yavaş kablolar soyulmuş parçalar pin yuva deliğe itmek ve pin yuva teller kullanarak bir havya, lehim.</li>
		</ol>
</li>
		<li>İsteğe bağlı olarak, kablo bağlantısını kontrol edin.<ol>
<li>Pimleri büyük benchtop Stimülatörü birim yolu ile timsah klipleri bağlayın.</li>
			<li>Dorsiflexes ayak TA kas sözleşmeleri ve sol onaylamak için bir tek darbe 9 V (0.1 ms, 10 Hz) teslim.</li>
		</ol>
</li>
		<li>PIN bağlı telli uçları ~ 4 cm x 4 cm steril gazlı bez pad üzerinden geçmek.</li>
		<li>İğneler CCA Stimülatörü birimine bağlayın.<ol>
<li>Teller Stimülatörü kutusu tabanındaki delikten geçmek. Not: Bu kutuyu CCA Stimülatörü birimi için ev yapımı odası ve 3.5 cm × 3,5 cm × 2,5 cm13.</li>
			<li>Bağlantı kutuları CCA biriminin pimleri ekleyin. CCA birim odanın içine kırmadan. Yapışkan bir çivinin odasının altındaki CCA Birimi güvenliğini sağlamak için kullanın.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Atletik bir teyp veya gözenekli cerrahi teyp kullanarak, odası traş gövde etrafında bant ile düzeltmek. Odası taping üç katmanları ile üst kapatın ve bir kaset kutusu (şekil 2B) güvenliğini sağlamak için uyarıcı kutusu kenarları sarma tarafından bitirmek.</li>
	</ol></li>
	<li>CCA kızılötesi ışık tek bir darbe birimine açarak çalışıp çalışmadığını kontrol edin (dalga boyu spektrum > 770 nm) taşınabilir kızılötesi strobe ışık tarafından yayılan. Not: CCA düzgün çalışıyorsa, araştırmacılar hindlimb kasları (Yani, TA) yanıt kızılötesi ışık olarak sözleşme yaptığınız görmek mümkün olacaktır.</li>
	<li>Fareyi gözlemlemek ve tamamen kendine geldi kadar sıcaklık izlemek. Diğer hayvanların herhangi bir zarar görmesini önlemek için bir tek yolcu kafeste ev ve tüm tüneller ve plastik nesnelere çalışma uyarıcı birimine hasar görmesi veya hayvan yaralanma riskini azaltmak için geri kalanı için kafeste bırakmayın. Amoksisilin dahil bir su şişesiyle (0,5 mg/mL) sağlayın.</li>
	<li>Meloksikam 1 mg/kg doz subkutan her 24 saat en az 72 h için devam ediyor ameliyatı takiben uygulanır.</li>
</ol>3. kronik Contractile etkinliği
<ol><li>Ameliyattan sonra en az 5-7 gün tam bir iyileşme kesi ve dikiş alanların içinde/etrafında iskelet kasları için izin. Not: Sırasında ve sonrasında CCA yordam iyice her hayvanın durumu (Örneğin, yeme, içme, ve/veya taşıma) davranışları gözlemleyerek kontrol edin. Buna ek olarak, herhangi bir ağır stres veya yan etkileri bir değişiklik öncesi ve sonrası CCA yordamı vücut ağırlığının denetleyerek belirler.</li>
	<li>Tek bir nabız kızılötesi ışığın uyarıcı birimine açarak CCA stimülasyon günü, CCA üzerinde açmak (dalga boyu aralığı > 770 nm) taşınabilir kızılötesi strobe ışık tarafından.</li>
	<li>3 veya 6 h 10 Hz CCA stimülasyon uygulanır. Not: Uyarılması için zaman dilimi kadar araştırmacıdır. Stimülasyon sıklığını asla bu deneylerde değişikliğe uğramış ve mitokondrial uyum içinde yalnızca çok mütevazı geliştirmeleri 6 h/gün, bizim deneyim 3 uyarmaya genişleterek gözlenmiştir. Mümkünse, her 30-60 dk stimülasyon ve hayvan kontrol edin.</li>
	<li>İstenen CCA süre sonrasında, CCA birim yolu ile kızılötesi ışık pozlama (üniteyi dönüm olarak aynı yordam) kapatın.</li>
	<li>Eğer birden fazla gün uygulayarak, 3.2 adımı yineleyin. 3,4 için.</li>
	<li>Doku toplama zamanlamasını belirlemek. Örneğin, CCA (Yani, 18 h 6 h son CCA uyarılması sonra), anestezi altında CCA cerrahi işlem sırasında tamamlandý olarak yürütülen son bout başlangıcından sonra doku 24 h toplamak. Hemen tüm dokularda topladıktan sonra hayvanlar hayvan hala anestezi altında iken kalp bilincin ötenazi.</li>
</ol>

<ol><li>Holloszy, J. O., Coyle, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptations+of+skeletal+muscle+to+endurance+exercise+and+their+metabolic+consequences%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol+Respir+Environ+Exerc+Physiol%22%5BJournal%5D)">Adaptations of skeletal muscle to endurance exercise and their metabolic consequences.</a> J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 56 (4), 831-838 (1984).</li>
<li>Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invited+Review%3A+contractile+activity-induced+mitochondrial+biogenesis+in+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Invited Review: contractile activity-induced mitochondrial biogenesis in skeletal muscle.</a> J Appl Physiol. 90 (3), 1137-1157 (2001).</li>
<li>Fernandes, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+training+restores+the+endothelial+progenitor+cells+number+and+function+in+hypertension%3A+implications+for+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hypertens%22%5BJournal%5D)">Exercise training restores the endothelial progenitor cells number and function in hypertension: implications for angiogenesis.</a> J Hypertens. 30 (11), 2133-2143 (2012).</li>
<li>Chabi, B., Adhihetty, P. J., O'Leary, M. F., Menzies, K. J., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+Sirt1+expression+and+mitochondrial+proteins+during+conditions+of+chronic+muscle+use+and+disuse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Relationship between Sirt1 expression and mitochondrial proteins during conditions of chronic muscle use and disuse.</a> J Appl Physiol. 107 (6), 1730-1735 (2009).</li>
<li>Lessard, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+to+aerobic+exercise+training+causes+metabolic+dysfunction+and+reveals+novel+exercise-regulated+signaling+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Resistance to aerobic exercise training causes metabolic dysfunction and reveals novel exercise-regulated signaling networks.</a> Diabetes. 62 (8), 2717-2727 (2013).</li>
<li>Irrcher, I., Adhihetty, P. J., Sheehan, T., Joseph, A. M., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PPARgamma+coactivator-1alpha+expression+during+thyroid+hormone-+and+contractile+activity-induced+mitochondrial+adaptations%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">PPARgamma coactivator-1alpha expression during thyroid hormone- and contractile activity-induced mitochondrial adaptations.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 284 (6), C1669-C1677 (2003).</li>
<li>Tamura, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postexercise+whole+body+heat+stress+additively+enhances+endurance+training-induced+mitochondrial+adaptations+in+mouse+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Regul+Integr+Comp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Postexercise whole body heat stress additively enhances endurance training-induced mitochondrial adaptations in mouse skeletal muscle.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 307 (7), R931-R943 (2014).</li>
<li>Mosole, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+high-level+exercise+promotes+muscle+reinnervation+with+age%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neuropathol+Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Long-term high-level exercise promotes muscle reinnervation with age.</a> J Neuropathol Exp Neurol. 73 (4), 284-294 (2014).</li>
<li>Irrcher, I., Walkinshaw, D. R., Sheehan, T. E., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thyroid+hormone+%28T3%29+rapidly+activates+p38+and+AMPK+in+skeletal+muscle+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Thyroid hormone (T3) rapidly activates p38 and AMPK in skeletal muscle in vivo.</a> J Appl Physiol. 104 (1), 178-185 (2008).</li>
<li>Lesmana, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+change+in+thyroid+hormone+signaling+by+altered+training+intensity+in+male+rat+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Endocr+J%22%5BJournal%5D)">The change in thyroid hormone signaling by altered training intensity in male rat skeletal muscle.</a> Endocr J. 63 (8), 727-738 (2016).</li>
<li>Hokama, J. Y., Streeper, R. S., Henriksen, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voluntary+exercise+training+enhances+glucose+transport+in+muscle+stimulated+by+insulin-like+growth+factor+I%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Voluntary exercise training enhances glucose transport in muscle stimulated by insulin-like growth factor I.</a> J Appl Physiol. 82 (2), 508-512 (1997).</li>
<li>Tyler, K. R., Wright, A. J. A. Light weight portable stimulators for stimulation of skeletal muscles at different frequencies and for cardiac pacing. J Physiol Lond. 307, 6-7 (1980).</li>
<li>Takahashi, M., Rana, A., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portable+electrical+stimulator+for+use+in+small+animals%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Portable electrical stimulator for use in small animals.</a> J Appl Physiol. 74 (2), 942-945 (1993).</li>
<li>Ljubicic, V., Adhihetty, P. J., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+animal+models%3A+chronic+electrical+stimulation-induced+contractile+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Can+J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Application of animal models: chronic electrical stimulation-induced contractile activity.</a> Can J Appl Physiol. 30 (5), 625-643 (2005).</li>
<li>Pette, D., Vrbova, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+does+chronic+electrical+stimulation+teach+us+about+muscle+plasticity%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">What does chronic electrical stimulation teach us about muscle plasticity?</a> Muscle Nerve. 22 (6), 666-677 (1999).</li>
<li>Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+Perspectives%3A+plasticity+of+mammalian+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Historical Perspectives: plasticity of mammalian skeletal muscle.</a> J Appl Physiol. 90 (3), 1119-1124 (2001).</li>
<li>Pette, D., Vrbova, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Contribution+of+Neuromuscular+Stimulation+in+Elucidating+Muscle+Plasticity+Revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Transl+Myol%22%5BJournal%5D)">The Contribution of Neuromuscular Stimulation in Elucidating Muscle Plasticity Revisited.</a> Eur J Transl Myol. 27 (1), 6368(2017).</li>
<li>Skorjanc, D., Jaschinski, F., Heine, G., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequential+increases+in+capillarization+and+mitochondrial+enzymes+in+low-frequency-stimulated+rabbit+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Sequential increases in capillarization and mitochondrial enzymes in low-frequency-stimulated rabbit muscle.</a> Am J Physiol. 274 (3 Pt 1), C810-C818 (1998).</li>
<li>Kim, Y., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+the+autophagy+system+during+chronic+contractile+activity-induced+muscle+adaptations%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rep%22%5BJournal%5D)">Regulation of the autophagy system during chronic contractile activity-induced muscle adaptations.</a> Physiol Rep. 5 (14), (2017).</li>
<li>Memme, J. M., Oliveira, A. N., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronology+of+UPR+activation+in+skeletal+muscle+adaptations+to+chronic+contractile+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Chronology of UPR activation in skeletal muscle adaptations to chronic contractile activity.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 310 (11), C1024-C1036 (2016).</li>
<li>Ljubicic, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+basis+for+an+attenuated+mitochondrial+adaptive+plasticity+in+aged+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+%28Albany+NY%29%22%5BJournal%5D)">Molecular basis for an attenuated mitochondrial adaptive plasticity in aged skeletal muscle.</a> Aging (Albany NY). 1 (9), 818-830 (2009).</li>
<li>Schwarz, G., Leisner, E., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+telestimulation+systems+for+chronic+indirect+muscle+stimulation+in+caged+rabbits+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Two telestimulation systems for chronic indirect muscle stimulation in caged rabbits and mice.</a> Pflugers Arch. 398 (2), 130-133 (1983).</li>
<li>Simoneau, J. A., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species-specific+effects+of+chronic+nerve+stimulation+upon+tibialis+anterior+muscle+in+mouse%2C+rat%2C+guinea+pig%2C+and+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Species-specific effects of chronic nerve stimulation upon tibialis anterior muscle in mouse, rat, guinea pig, and rabbit.</a> Pflugers Arch. 412 (1-2), 86-92 (1988).</li>
<li>Ohlendieck, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+chronic+low-frequency+stimulation+on+Ca2%2B-regulatory+membrane+proteins+in+rabbit+fast+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Effects of chronic low-frequency stimulation on Ca2+-regulatory membrane proteins in rabbit fast muscle.</a> Pflugers Arch. 438 (5), 700-708 (1999).</li>
<li>Brown, M. D., Cotter, M. A., Hudlicka, O., Vrbova, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+different+patterns+of+muscle+activity+on+capillary+density%2C+mechanical+properties+and+structure+of+slow+and+fast+rabbit+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">The effects of different patterns of muscle activity on capillary density, mechanical properties and structure of slow and fast rabbit muscles.</a> Pflugers Arch. 361 (3), 241-250 (1976).</li>
<li>Skorjanc, D., Traub, I., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identical+responses+of+fast+muscle+to+sustained+activity+by+low-frequency+stimulation+in+young+and+aging+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Identical responses of fast muscle to sustained activity by low-frequency stimulation in young and aging rats.</a> J Appl Physiol. 85 (2), 437-441 (1998).</li>
<li>Kim, Y., Triolo, M., Hood, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Aging+and+Exercise+on+Mitochondrial+Quality+Control+in+Skeletal+Muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Oxid+Med+Cell+Longev%22%5BJournal%5D)">Impact of Aging and Exercise on Mitochondrial Quality Control in Skeletal Muscle.</a> Oxid Med Cell Longev. 2017, 3165396(2017).</li>
<li>Callewaert, L., Puers, B., Sansen, W., Jarvis, J. C., Salmons, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmable+implantable+device+for+investigating+the+adaptive+response+of+skeletal+muscle+to+chronic+electrical+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Biol+Eng+Comput%22%5BJournal%5D)">Programmable implantable device for investigating the adaptive response of skeletal muscle to chronic electrical stimulation.</a> Med Biol Eng Comput. 29 (5), 548-553 (1991).</li>
<li>Kern, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+stimulation+counteracts+muscle+decline+in+seniors%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Aging+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Electrical stimulation counteracts muscle decline in seniors.</a> Front Aging Neurosci. 6, 189(2014).</li>
<li>Zampieri, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+exercise+in+aging+human+skeletal+muscle+increases+mitochondrial+calcium+uniporter+expression+levels+and+affects+mitochondria+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rep%22%5BJournal%5D)">Physical exercise in aging human skeletal muscle increases mitochondrial calcium uniporter expression levels and affects mitochondria dynamics.</a> Physiol Rep. 4 (24), (2016).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

13,24,25 egzersiz kas fenotipik uyarlamalar çalışmak için mükemmel bir model egzersiz yoluyla düşük frekanslı kas uyarımı vivo içindekronik contractile etkinliği (CCA) modeldir , 26. önceki çalışmalar20,27' de gösterildiği CCA hangi tarafından araştırmacılar denetim eğitim birimleri ve Frekanslar (Yani, zaman ve gün) v...

İskelet kası bioenergetics ve fiziksel yapısı1değişiklikler ile eğitim egzersiz uyarlayabilirsiniz. Dayanıklılık eğitim tarafından getirdiği önemli değişiklikler bir artış mitokondrial bileşenler (Örneğin, sitokrom c oksidaz [COX] alt birimleri) ifadesi değerlendirilebilir, mitokondrial Biyogenez ifadesinin yanı sıra biridir Transkripsiyon coactivator PGC-1α2. Çalışmalar giderek artan sayıda mitokondrial ciro ve mitophagy, dahil olmak üzere çok sayıda diğer faktörler de kas uyarlamaları için önemli olduğunu belirttiler. Ancak, hangi akut veya kronik egzersiz tarafından mekanizmaları bunlar düzenleyici kas iskelet süreçlerinde hala belirsiz.
Egzersizden kaynaklanan kas uyarlamalar düzenleyen yolları betimlemek için çeşitli egzersiz modelleri genellikle tekerlek çalışan ve egzersiz yüzme koşu bandı, dahil kemirgen çalışmalarda kullanılmıştır. Ancak, bu iletişim kuralları ~ 4-12 hafta bu fenotipik değişiklikler3,4,5gözlemlemek için gerekli olan bazı sınırlamalar sahip. Bu önemli ölçüde daha kısa bir sürede kas uyarlamaları için açabilir gibi alternatif bir deneysel yöntem düşük frekanslı stimülasyon kaynaklı kronik contractile etkinliği (CCA) etkili, kullanılmış olan (Yani, 7 gün) ve etkileri gibi görünüyor olmak karşılaştırılabilir ya da diğer egzersiz protokolleri bile daha büyüktür. Ayrıca, hormonal6, sıcaklık7ve nörolojik etkiler8 varlığı bu kronik egzersiz kas özel yanıt anlamak zor hale getirebilir. Örneğin, tiroid hormon9,10 ve insülin benzeri büyüme faktörü (IGF) -111 da iskelet diğer sinyal yollar düzenleyen eğitim kaynaklı kas uyarlamaları, arabuluculuk tespit edilmiştir Kas. Özellikle, CCA kaynaklı etkileri en az odak kas iskelet doğrudan yanıt contractile aktivite olarak yerleştirilmesini sağlayan sistemik faktörler tarafından düzenlenmektedir.
Dış ünitenin CCA için ilk Tyler ve Wright12tarafından tanıtıldı ve değişiklikler12ile geliştirilmiştir. Kısacası, birim üç ana bölümden oluşmaktadır: açma ve kapatma-ebilmek var olmak dönük kızılötesi ışık, bir darbe jeneratör ve nabız göstergesi (şekil 1) maruz bir kızılötesi Dedektör. Detaylı devre tasarımı in Stimülatörü birim oldu daha önce açıklanan13. CCA detaylı ve belirli özellikleri daha fazla bulunabilir bir dizi inceleme derinlemesine makaleler14,15,16,17. Kısacası, stimülasyon Protokolü ortak peroneal sinir düşük frekansta etkinleştirmek için tasarlanmıştır (Yani, 10 Hz), ve innervated kasları (tibialis anterior [TA] ve ekstansiyon digitorum longus [Edi] kas) için sözleşme zorunda kalan bir önceden belirlenmiş süre (örneğin, 3-6 h). Zaman içinde bu bir daha aerobik fenotip, kapiller yoğunluk18 ve mitokondrial içerik19,20,21artış gösterdiği söz konusu kasları geçirir. Bu nedenle, bu yöntem bazı fareler büyük dayanıklılık eğitim adaptasyonu kas iskelet içinde taklit etmek için kanıtlanmış bir modeldir.
Bu kağıt böylece araştırmacılar kendi egzersiz çalışmaları bu modelde uygulayabilirsiniz CCA ikna etmek için elektrot implantasyonu ameliyatı detaylı bir yordam sunar. CCA böylece egzersiz eğitim başlangıcı takip hem erken ve daha sonra zaman noktalarda çeşitli moleküler ve sinyal olayların soruşturma için etkili bir araç sağlayan kas uyarlamaları, saat ders çalışmak için mükemmel bir model var.

<table><tbody><tr><td>Sprague Dawley Rat</td><td>Charles</td><td>River Strain 400</td><td></td></tr><tr><td>Kronik kasılma aktivite ünitesi</td><td>Ev yapımı</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>CCA ünitesi koruyucu kutu (3,5 x 3,5 x 2,5 cm)</td><td>Ev yapımı</td><td>n/a</td><td>Kutu opak malzemeden yapılmalı veya opak bir bantla kaplanmalıdır</td></tr><tr><td>Madeni para lityum iyon piller (3V)</td><td>Panasonic</td><td>CR2016</td><td></td></tr><tr><td>Medwire</td><td>Leico Endüstriler</td><td>316SS7/44T</td><td></td></tr><tr><td>Lehim pimi (soket)</td><td>Digi-Key</td><td>ED6218-ND</td><td></td></tr><tr><td>Zonas gözenekli bant</td><td>Johnson & Johnson</td><td>5104</td><td></td></tr><tr><td>Sütür ipek (Boyut 5)</td><td>Ethicon</td><td>640G</td><td></td></tr><tr><td>Sütür ipek (Boyut 6)</td><td>Ethicon</td><td>706G</td><td></td></tr><tr><td>Kavisli küt makas (11,5 cm Uzunluk)</td><td>FST</td><td>14075-11</td><td></td></tr><tr><td>Kavisli küt makas (15 cm Uzunluk)</td><td>F.S.T.</td><td>14111-15</td><td></td></tr><tr><td>Hassas hemostatik forseps (16 cm Uzunluk)</td><td>Lawton</td><td>06-0230</td><td></td></tr><tr><td>Neşter</td><td>Tüyü</td><td>3</td><td></td></tr><tr><td>Kavisli forseps</td><td>FST</td><td>11052-10</td><td></td></tr><tr><td>Paslanmaz çelik çubuk (30 cm; 7 mm çap)</td><td>Ev yapımı</td><td>n/a</td><td>Derinin altında tünel açmak için teli tutmak için çubuğun bir ucunda 5 mm yarık olmalıdır</td></tr><tr><td>Forseps uygulayan klips</td><td>KLS Martin</td><td>20-916-12</td><td></td></tr><tr><td>Zımbalar (klipsler)</td><td>Bbraun</td><td>BN507R</td><td></td></tr><tr><td>Metal kancalar/ekartör</td><td>Ev yapımı</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Povidon-iyot (500 mL)</td><td>Rougier</td><td>#NPN00172944</td><td></td></tr><tr><td>Ampisilin sodyum</td><td>Novopharm</td><td>#DIN00872644</td><td></td></tr><tr><td>Metacam</td><td>Boehringer</td><td>#DIN02240463</td><td></td></tr><tr><td>Dijital multimetre (voltmetre)</td><td>Soar Corporation</td><td>ME-501</td><td></td></tr><tr><td>LED dijital stroboskop</td><td>Lutron Elektronik Kurumsal</td><td>DT-2269</td><td></td></tr></tbody></table>

contractile fare faaliyet kaynaklı kas iskelet fenotipik uyarlamalar çalışmaya kronik stimulasyon uygulanması

Application of Chronic Stimulation to Study Contractile Activity-induced Rat Skeletal Muscle Phenotypic Adaptations

Biyokimyasal ve fizyolojik özelliklerini büyük ölçüde yanıt kronik egzersiz olarak değişmiş gibi iskelet kas son derece uyarlanabilir bir doku olduğunu. Çeşitli kas uyarlamaları hakkında getirmek temel mekanizmaları araştırmak için bir dizi egzersiz Protokolü koşu bandı, tekerlek koşu ve yüzme egzersiz gibi hayvan çalışmalarında kullanılmıştır. Ancak, bunlar modelleri egzersiz de Böylece daralma kaynaklı kas özgü uyarlamalar eğitim uygulamaları sınırlama humoral veya nörolojik faktörler tarafından düzenlenmiş olabilir kas uyarlamalar ulaşmak için uzun bir süre gerektirir. Bu başarıyla 7 gün içinde sistemik faktörler bağımsız kas mitokondrial uyarlamaları için açabilir gibi dolaylı düşük frekans stimülasyon (10 Hz) Kronik contractile etkinliği (CCA) ikna etmek için alternatif bir model egzersiz eğitim için kullanılmıştır. Bu kağıt CCA tedavisi için sıçan, kas iskelet uygulamak için gelecekte yaygın uygulama çalışmaları için gereken cerrahi teknik ayrıntıları.

Kronik contractile aktivite (CCA) kas iskelet içinde olumlu mitokondrial uyarlamalar ikna etmek için etkili bir araç olduğunu göstermiştir. CCA (günde 6 saat) 7 gün tabi fareler uyarılan kas unstimulated kontralateral (kontrol) hindlimb ile karşılaştırıldığında geliştirilmiş mitokondrial Biyogenez görüntülemek. Bu artış, mitokondrial Biyogenez PGC-1α (şekil 3A), artan protein ifadesi ile birlikte diğer anahtar mitokondrial proteinlerin COX yükselmeler mitokon...

Bu iletişim kuralı sıçan hindlimb iskelet kas uyarımı kaynaklı uyarlamalar gözlemlemek için egzersiz kronik contractile etkinlik modeli açıklar.

Contractile fare faaliyet kaynaklı kas iskelet fenotipik uyarlamalar çalışmaya kronik stimulasyon uygulanması

Skeletal muscle is a highly adaptable tissue, as its biochemical and physiological properties are greatly altered in response to chronic exercise. To ...

Egzersizin kronik kasılma aktivitesi modeli, in vivo olarak egzersiz eğitimi uyaranlarına iskelet kası adaptasyonlarını incelemek için yararlıdır. Özellikle, bu model yedi gün içinde altı haftalık bir eğitim protokolünün fenotipik adaptasyonlarını ortaya çıkarır. Bu yöntem, mitokondriyal biyogenez, otofaji ve egzersizle ilişkili diğer birçok hücresel adaptasyon gibi kas fizyolojisi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Bu tekniğin temel avantajı, birkaç ay gerektiren diğer egzersiz eğitim protokollerine kıyasla yedi günlük kısa bir süre boyunca kas spesifik adaptasyonların gözlemlenmesine izin vermesidir. Bu tekniğin etkileri, kas atrofisi yaşlarının tedavisine kadar uzanır, çünkü kronik kas stimülasyonunun yaşlanmaya bağlı kas zayıflığını iyileştirmede bir etkisi olduğu gösterilmiştir. Genel olarak, bu yönteme yeni başlayan kişiler, ortak peroneal siniri işaretleme ve her iki uca elektrik bobinleri takma zorluğu nedeniyle mücadele edeceklerdir, çünkü bunlar pratik ve hassasiyet gerektirir.Sıçanı oksijenle% bir ila 3 izofluran inhalasyonu altında uyuşturarak başlayın ve arka bacak ayak parmağı tutamına yanıtı kontrol ederek ve solunum derinliğini ve hızını gözlemleyerek tam sedasyonu onaylayın. Kuruluğu önlemek için gözlere oküler kayganlaştırıcı uygulayın ve fareyi düşük ila orta ayarda bir ısıtma yastığına yerleştirin. Sol arka bacak ve boynun arkasından gövdenin etrafına, ön ayakların arkasına ve ön göğüs boyunca bir şeridi nazikçe tıraş edin.Dezenfekte etmek için traşlı alanları iyot ve etil alkol ile nazikçe silin. Hayvan yüzüstü yatarken, traş edilen bölgenin ortasında, boynun arkasında yaklaşık 0,5 santimetrelik küçük bir kesi yapmak için 10 numara bıçaklı steril bir neşter kullanın. Daha sonra hayvanı sağ tarafına yuvarlayın ve sol arka bacak derisinde diz ekleminin çukuru arasında ve kuyruğun kökenine yakın iki ila üç santimetrelik bir kesim yapın.Künt uçlu kavisli cerrahi makas kullanarak, deri altı bölgesini yaklaşık 3,5 ila dört santimetreye kadar inceleyin ve açık cilt ile alttaki kas arasında bir cep oluşturmak için cildi alttaki kastan ayırın. Ardından, pazı femoris kası üzerinde 0,5 santimetreden daha küçük bir kesi yapmak için cerrahi makas kullanın ve makasın uçlarının doğrudan kasın içinden geçtiğinden emin olun. Ardından, iç kas grupları ve ortak peroneal sinir görünene kadar kesilen alanı yavaşça açın.Siniri kesmemek veya zarar vermekten kaçınmak için çok dikkatli olun. Daha sonra 50 ila 60 santimetre PTFE kaplı ince paslanmaz çelik tel hazırlayın ve ikiye katlayın. Telin katlanmış kısmını 30 santimetre paslanmaz çelik çubuğun yarığına asın.Boynun arkasındaki küçük kesi alanına ulaşmak için teli arka bacağın açık cebinden ve sırtın merkezi boyunca L şeklinde bir desende geçirmek için çubuğu kullanın. Pencereyi, peroneal sinir pencerenin ortasında olacak şekilde pencerenin boyutu yaklaşık 1,5 santimetre kare olana kadar metal ekartörlerle çekerek sabitleyin. Bir neşter kullanarak, telin uçlarını dikkatlice 1,5 santimetre soyun.Bir bobin yapmak için soyulmuş tel uçlarını körelmiş 21 gauge bir iğnenin etrafına beş kez sarın. Bobinler düzgün bir şekilde yapıldıktan sonra, iğneyi onlardan serbest bırakın. Bobinin en ucundan bir düğüm yapın ve bobinin sinirden 1,5 ila 2,5 milimetre uzakta olduğundan emin olarak sinirin sol tarafına dikin.Bobini sabitlemek için, bobin boyunca iki veya üç ek dikiş uygulayın. Bu adım, sinire ve alttaki kaslara zarar vermekten kaçınmak ve tüm hayvanlarda tüm tutarlı stimülasyon koşullarını elde etmek için önemli ölçüde pratik ve sabır gerektirir. Bir çalışma sırasında tüm cerrahi prosedürleri tamamlamak için yetenekli bir araştırmacıya sahip olmak en iyisidir.İki veya üç damla antibiyotik solüsyonu uygulayın ve ardından 5-0 numara ipek kullanarak pencereyi dikkatlice dikin. Kalan tel gevşekliğini gevşek bir şekilde sarın ve kalçanın üzerindeki pazı femoris kasının dikişli kesisinin üzerindeki deri altı cebe itin. İki ila üç damla antibiyotik solüsyonu uygulayın ve açık cildi zımbalayarak kapatın.Daha sonra, hayvanı sternal pozisyona getirin ve iki tel ucu oluşturmak için boynun üst kısmındaki kesikten çıkan tel halkayı kesin. Bir neşter kullanarak, tellerin uçlarını 0,5 santimetre soyun. Yıpranmış kabloları kesin.Tellerin soyulmuş kısımlarını yavaşça pim yuvalarının deliğine itin ve bir havya kullanarak telleri pim yuvalarına lehimleyin. Pime bağlı tel uçlarını 4,4 santimetrelik steril bir gazlı bez pedinden geçirin. Ardından telleri stimülatör kutusunun tabanındaki delikten geçirin.Pimleri CCA ünitesindeki bağlantı soketlerine takın. CCA ünitesini haznenin altına sabitlemek için yapışkan bir çivi kullanarak CCA ünitesini yavaşça hazneye yerleştirin. Tıraşlı gövdenin etrafındaki hazneyi sabitlemek için atletik bant veya gözenekli cerrahi bant kullanın.Haznenin üst kısmını üç kat bantla kapatın. Ve kutuyu sabitlemek için stimülatör kutusunun kenarlarına bant sararak bitirin. Üniteyi taşınabilir bir kızılötesi flaş ışığı tarafından yayılan tek bir kızılötesi ışık darbesine maruz bırakarak CCA'nın çalışıp çalışmadığını kontrol edin.CCA düzgün çalışıyorsa, arka bacak kasları kızılötesi ışığa tepki olarak kasılır. CCA prosedüründen sonra vücut ağırlığının değişmesinden kaynaklanan herhangi bir ciddi stres veya yan etkiyi belirlemeye yardımcı olmak için bir temel ölçüm kaydetmek için CCA prosedürüne başlamadan kısa bir süre önce hayvanları tartın. CCA stimülasyonu gününde, stimülatör ünitesini taşınabilir bir kızılötesi flaş ışığı ile tek bir kızılötesi ışık darbesine maruz bırakarak CCA'yı açın ve üç veya altı saatlik 10 hertz CCA stimülasyonu uygulayın.Stimülasyonu ve hayvanı her 30 ila 60 dakikada bir kontrol edin. İstenen CCA süresinin ardından, kızılötesi ışığa maruz kalma yoluyla CCA ünitesini kapatın. Günde altı saat boyunca yedi günlük CCA'ya maruz kalan sıçanlar, uyarılmamış kontralateral arka bacak ile karşılaştırıldığında, uyarılmış kasta gelişmiş mitokondriyal biyogenez gösterir.Mitokondriyal biyogenezdeki bu artış, PGC-1 alfa'nın protein ekspresyonunun artmasıyla gösterilir. Mitokondriyal solunum kapasitesini ölçmek için geçirgen kas liflerinin incelenmesi, CCA'nın kontrol kasına göre kasın maksimum solunum kapasitesinde bir artışa neden olduğunu ortaya koymaktadır. Hem subsarkolemmal hem de intermiyofibriller mitokondriyal popülasyonlar, yedi günlük CCA'nın ardından uyarılmamış kasın kontrolüne kıyasla artmıştır.Otofaji ve lizozomal sistemlere adaptasyonlar da CCA ile sağlanabilir. Lizozomal biyogenezin ana düzenleyicisi olan Transkripsiyon faktörü EB'nin protein bolluğunda bir artış, CCA'dan sonra tüm zaman noktalarında gözlenir. Bu işlemi takiben, kolşisin tedavisi ile otofaji aküsünün tahmini gibi ek sorulara cevap vermek için genel subkutan veya intraperitoneal enjeksiyonlar gibi diğer yöntemler uygulanabilir.Bu videoyu izledikten sonra, dayanıklılık antrenmanını takiben kas fenotipik değişikliklerini incelemek için mevcut kronik kasılma aktivite modelini nasıl uygulayacağınızı iyi anlamış olmalısınız.

application-chronic-stimulation-to-study-contractile-activity-induced

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Bir In vivo</emDaralma indüklenen Sakatlık ve Kurtarma Non-invaziv İzleme> Kemirgen Model

Bu video cerrahi hazırlık ve sıçan medial gastroknemius kas hazırlık kasılma cevapları incelemek için gerekli prosedürleri...

Rat Prosedürleri<em&gt; In situ</em&gt; İskelet Kası Kontraktil Özellikleri

Ön kompartman kasları nöromüsküler elektriksel stimülasyon bir fare modeli (NMES), güvenli ve ucuz bir klinik yöntem, anlatılmıştır. Bu modelde, farelerde ve spesifik hedef kas kontraksiyonlarının ortaya çıkarmak amacıyla, kolayca bulunabilen bir klinik cihazı değiştirerek bir avantaja sahiptir.

Nöromüsküler Elektriksel Stimülasyon tarafından Kas Eğitimi A Mürin Modeli

Biz doğrudan kas kuvveti, kas gücü, kasılma kinetiği ve izole iskelet kaslarında yorulma ölçmek için bir yöntem...

İzole İskelet Kaslar Kasılma, çabuk yorulma ve Alternans Ex Vivo Değerlendirilmesi

Bu protokol, in vitro kas hücrelerinin kasılma ölçmek için esnek kültür yüzeyleri olarak mikro silikon konsolun kullanımını tarif etmektedir. Hücresel kasılması, ölçülen kaydedilen ve in vitro kontraktil fonksiyon ölçmek için non-invazif ve ölçeklenebilir sisteminin temin edilmesiyle, kuvvet çıktılan dönüştürülebilir dirsekli bükme neden olur.

Mikro Silikon konsolun Kullanımı Hücresel kasılma fonksiyonunu değerlendirmek için İn Vitro

Murin sol ventrikül papiller kas in vitro kardiyak kontraktiliteyi araştırmak için kullanılabilir. Bu makalede ayrıntılı olarak izolasyon ve deneysel protokoller kalp kasılma özelliklerini incelemek için açıklar.

Farelerde Kardiyak inotropiyi Soruşturma İzole papiller Kaslar kontraktilite Ölçümleri

Bu makalede, 3D insan iskelet kas mikrotleri dizileri ve kas gücü ve kalsiyum elleçleme analizleri de dahil olmak üzere minimal invaziv aşağı akış in situ fonksiyon tahlilleri üretmek için ayrıntılı bir protokol açıklanmaktadır.

İnsan İskelet Kas Mikrotissularında İskelet Kas Sağlığının Fonksiyonel Ölçümlerinin Değerlendirilmesi

İnsan mühendisliği iskelet kası dokusu ve optogenetik motonöronlar kullanarak nöromüsküler kavşak fonksiyonunu karakterize etmek için tekrarlanabilir, otomatik ve tarafsız bir görüntüleme sistemi tanımladık. Bu sistem, zaman içinde nöromüsküler bağlantının fonksiyonel olarak ölçülmesine izin verir ve nörotoksinlerin ve myastenia gravis hasta serumunun neden olduğu azalmış nöromüsküler fonksiyonu tespit eder.

İnsan Nöromüsküler Kavşağının Optogenetik Modelinin Mühendisliği ve Karakterizasyonu

İzole sıçan miyositlerinde kalsiyum (Ca2+) geçici ölçümü ile birlikte sarkomer uzunluğu tespiti yoluyla kontraktil fonksiyonun ölçümünü tanımlayan bir dizi protokol sunulmaktadır. Bu yaklaşımın kalp yetmezliğinin hayvan modellerindeki çalışmalar için uygulanması da dahil edilmiştir.

Kemirgen Miyositlerde Kardiyak Kasılma Disfonksiyonu ve Ca2+ Geçicilerinin Analizi

Optik berraklık, zebra balıklarında hücre biyolojik ve fizyolojik çalışmaları için önemli bir avantajdır. Bireysel hayvanlarda hücre büyümesinin ölçülmesi için sağlam yöntemler, iskelet kasının ve komşu dokuların büyümesinin tüm vücut büyümesiyle nasıl bütünleştiğine dair yeni bilgiler sağlayan tanımlanmıştır.

Değiştirilmiş elektriksel aktiviteye maruz kalan bireysel canlı zebra balıklarında iskelet kası büyümesinin gerçek zamanlı ve tekrarlanan ölçümü

Burada, transkutanöz kas stimülasyonu kullanarak sıçan plantar fleksörlerinde in vivo tork-açısal hız-güç ilişkisini invazif olmayan bir şekilde ölçmek için yeni bir protokol sunuyoruz. Bu kurulum, günlük hareketlerin sabit yük doğasını daha iyi temsil etmek için izotonik kas kasılmalarının bir kuvvet dönüştürücü/uzunluk kontrol sistemi üzerinde basit bir şekilde test edilmesini sağlar.

Sabit Yük (İzotonik) ve Sabit Hız (İzokinetik) Tork-Hız-Güç Profillerinin Oluşturulması Sıçan Plantar Fleksörleri için İn vivo

Öğrenin, kronik kasılma aktivitesi modeliyle sıçan arka bacaklarında egzersiz kaynaklı iskelet kası fenotipik uyarlamalarını kısa sürede gözlemleyin. Bu yöntem mitokondriyal biyogenez ve otojiyi araştırmak için değerlidir.

Contractile fare faaliyet kaynaklı kas iskelet fenotipik uyarlamalar çalışmaya kronik stimulasyon uygulanması

Daha fazla video keşfet