Name: Ratiometric kalsiyum görüntüleme Caenorhabditis Elegans davranışlar içinde bireysel nöronların (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: Öğrenin davranış halindeki Caenorhabditis elegans'ta HSN nöronlarının orantılı kalsiyum görüntüleme yöntemini. Bu teknik, davranışsal nörobilimde sinir devre aktivitesi ile hayvan davranışı arasındaki ilişkiyi incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu eser NINDS KMC (R01 NS086932) için bir hibe tarafından finanse edildi. LMN NIGMS IMSD programı (GM076419 R25) hibe tarafından desteklenmiştir. Suşları C. elegans genetik Merkezi, hangi araştırma altyapı programları (P40 OD010440) NIH ofisi tarafından finanse edilen bu çalışmada kullanılan. James Baker ve Mason Klein yararlı tartışmalar için teşekkür ederiz.

1. suşları, kültür medya ve hayvanlar montajı
<ol><li>20 ° C'de C. elegans solucanlar standart 60 mm Yuvarlak solucanlar büyüme orta (NGM) agar plakaları ile OP50 E. coli bakteriyel gıda19numaralı seribaşı büyümek.</li>
	<li>İki plazmid faiz her hücre özgü organizatörü için hazırlamak: bir, için kayıt intrasellüler Ca2 +GCaMP5 ve mCherry GCaMP5 floresan değişiklikler ratiometric Nefelometri için izin vermek için ifade sürüş ikinci ifadesi sürüş ve nesne bulma ve ölçüm basitleştirin. Not: GCaMP5:mCherry ratiometric görüntüleme odak ve hayvan hareketi değişimler, intrasellüler Ca2 +değil gerçek değişiklikler sonucu GCaMP5 floresan dalgalanmalar düzeltir.</li>
	<li>GCaMP5 ve mCherry ifade plazmid pL15EK görünür kurtarma işaret plazmid ile birlikte LX1832 lite-1(ce314), lin-15(n765ts) X mutant hayvanlar gonads enjekte ve sigara Muv lin-15(+) hayvanlar GCaMP5 ifade yeniden elde etmek ve mCherry yüksek-kopya transgene20,21,22. 1 litre mutant arka plan mavi ışık kaçınma davranışı23,24azaltmak için kullanın.</li>
	<li>Transgenes kromozomlar mozaizm azaltmak ve bileşik mutant suşları25nesil kolaylaştırmak için entegre. Not: Burada açıklanan LX2004 gerilme GCaMP5 ve mCherry HSNs nlp-3 organizatörü üzerinden ifade entegre bir yüksek-kopya transgene taşır (bakınız Tablo reçetesi)26,27, 28 , 29. (e.g.,tph-1, HSN geliştirme veya yumurta döşeme davranışı diğer Organizatör için karşılaştırıldığında önemli hataları neden test olmadan nlp-3 organizatörü sürücü güçlü ifade geç L4 ve Yetişkin Hayvanlar için HSNs bulundu egl-6ve unc-86). Bu zorlanma ve diğerleri GCaMP5 ve mCherry ventral kordon (VC) motor nöronlar, vulva kas ve uv1 nöroendokrin hücrelerin ifade Caenorhabditis genetik Merkezi'nden alınabilir ve yapım ayrıntıları açıklanan 27.</li>
	<li>Bakteriyel bir numaralı seribaşı NGM agar tabak Platin solucan altına gıda almak OP50 uygulamak ve aktarmak için kullanmak ~ GCaMP5 ve mCherry HSNs nlp-3 organizatörü üzerinden ifade 20 geç L4 LX2004 hayvanlar. Gelişmekte olan vulva beyaz Hilal tarafından çevrili bir açık karanlık nokta olarak bir stereomicroscope göründüğünden emin olun. Hayvanlar için 24-40 h 20 ° C'de kuluçkaya.</li>
	<li>Kuluçka sonra OP50 uygulamak için çekme ve transfer ~ 3 solucanların gıda üzerine görüntüleme sırasında beslemek solucanlar için az miktarda bırakarak bir seribaşı NGM plaka. Çok az bakteriyel gıda süre çok fazla yemek arka plan Floresans artırmak ve hipoksi neden plaka merkezinden dolaşmaya solucanlar teşvik edecek yeterli gıda, garanti.</li>
	<li>Kesmek için bir düz yuvarlak spatula kullanın bir ~ 20 x 20 mm yığın solucanları taşıyan plaka ve yığın aşağı doğru bir temiz 24 mm x 60 mm #1.5 coverslip (şekil 1) Merkezi aktarın. Bir taraftan kabarcıklar coverslip altında kapana kısılmış ve görüntüleme ile engel olmaktan tutmak için uygulamayı başlatın. 22 x 22 mm #1 coverslip yapıştırma ve buharlaşma azaltmak için yığın üstüne uygulayın.</li>
</ol>2. donanım ve Araçları Kurulum
<ol><li>Aşamalı yerleştirin, Sahne Alanı'na bir ≥ 0,7 ile ters bir mikroskop transgenik solucanlar sayısal diyafram planı-Apochromat 20 x objektif, motorlu XY sahne bir joystick, bir resim splitter ve floresan ile kontrol edilebilir filtreler için aynı anda GCaMP5 ve mCherry uyarma ve emisyon, floresan ve kızılötesi aydınlık alan görüntüleme ve triggerable bir ışık yayan diyot (LED) aydınlatma sistemi (Şekil 2A) fotoğraf makineleri. Not: Bir 80/20 kiriş-splitter Floresans kameranın görüntü sinyalinin % 80 ve % 20 aydınlık alan kamera gönderir. Dik bir mikroskop-ebilmek da var kullanılmış, ama NGM yığın bir cam slayt ve büyük coverslip arasında bu durumda yer almalıdır.<ol>
<li>Dürbün göz mercekleri bir solucan görüntüleme için seçmek için kullanın. Bir hayvan seçildiğinde, kondansatör yukarıda yer kızılötesi filtreye kaydırın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Transistör transistör mantık (TTL) Tetikleyicileri<ol>
<li>Her üç TTL tetikleyici çıktı satırlarının Floresans kameranın koaksiyel kabloları takın. İlk çıkış LED aydınlatma sistemi BNC girişine #3 bağlayın.</li>
		<li>Yeşil bir BNC 'muz' bağdaştırıcısıyla ikinci çıkış bağlanmak ve kahverengi teller GPIO için çalışan 8-pin GPIO konektöründen #3 (4 pin) ve zemin (PIN 5) kızılötesi fotoğraf makinesinin, sırasıyla giriş.</li>
		<li>Üçüncü çıkış #8 dijital giriş çalışan jumper kabloları ile bir BNC 'muz' bağdaştırıcısına bağlayın ve dijital satın alma aygıt (Şekil 2B) zemin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dijital satın alma aygıt (DAQ)<ol>
<li>DAQ Mikrodenetleyici kurulu bağlanmak ( Tablo malzemelerigörmek) PC yolu ile USB tel kablo. Standart Firmata ( Tablo malzemelerigörmek) protokol ve 57600 baud iletişim kurmak için USB bağlantı noktası yapılandırma ile firmware güncelleştirmek.</li>
	</ol>
</li>
	<li>LED'ler<ol>
<li>LED denetleyicisi yazılımı çalıştırmak ( Tablo malzemelerigörmek). 'Sürekli 'Gated' ve select tetikleyici kanal ' 3' tetikleyici modundan 470 ve 590 nm LED'ler için geçer.</li>
		<li>Açmak ve her LED LED güç girin (Örneğin, küme 470 nm LED için % 20 ve 590 nm LED % 40'a).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Seri-sahne iletişim Bonsai ( Tablo malzemelerigörmek) komut dosyası 'XY sahne final'30çalıştırın. Üzerinde gri 'CsvWriter' düğümü tıklatın ve kaydedilmiş kaydetmek için bir klasör seçin X ve Y sahne bilgi (şekil 3). Yeşil ok ucu DAQ başlatmak için araç çubuğu tuşuna basın. Not: Komut dosyası Floresans kameranın TTL sinyal gönderir X ve Y sahne pozisyon kayıt başlayacaktır. Bu komut dosyası dört sütun veri çıkışları: çerçeve numarası, pozisyon (µm), Y konumu (µm) ve çerçeveler (s) arasındaki aralığı X.</li>
	<li>Kızılötesi kamera kayıt yazılımı ( Tablo malzemelerigörmek) 'Özel Video modları' altında seçme "Tarz 1" (2 x 2 binning; 1024 x 1024 piksel), ve "piksel biçimini Raw 8". Altında ' tetikleyici / Strobe', "3", "Yüksek", '14"'moduna' polarite için tetikleyici giriş hattı (GPIO) ayarlayın. 'Bir TTL tetikleyici sinyal alınana kadar çerçeve kazanım durdurmak için Enable' geçiş.<ol>
<li>O pencereyi açık bırakarak, ana kamera görünüm araç çubuğundaki kırmızı "Kayıt" düğmesini tıklatın. Kaydedilecek görüntü dizileri için klasörü seçin. 'Buffered' kayıt modunu seçin ve 'Görüntüleri' JPEG formatında kaydedin. "Başlamak satın başlatmak için kayıt"'ı tıklatın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Floresans kamera ve görüntü splitter Not: GCaMP5 ve mCherry floresan kanalları aynı anda uygun görüntü kayıt ratiometric Nefelometri için emin olmak için toplanan gerekir. Bir resim splitter iki kanallı bir sensör üzerine GCaMP5 ve mCherry floresan edinimi olanak sağlar.<ol>
<li>Görüntü alma yazılımı 'Yakalama' sekmesinde (bakınız Tablo malzemeler), set çekim hızı 10 MS, 4 x ve 16-bit görüntü derinliği için binning. 512 piksel genişliğinde 256 piksel yüksek ortalanmış kamera subarray seçin. 'Çıkış tetikleyici seçeneklerini göster' tıklatın ve küme için 'Pozitif' tüm tetikleyiciler Not: DAQ bazen 10 ms olmaları durumunda veya daha az TTL Tetikleyicileri kaçırabilirsiniz.</li>
		<li>'Tetikleyici 3' 'Programlanabilir' ayarlanmışken 'Tetikleyici 1' ve 'Tetikleyici 2' 'Maruz kalma' 'Sequence' sekmesi altında 25 Bayan 'nokta' ayarlayınız, 20 Hz. Select 'için geçici arabellek kurtarmak.' adlı görüntüleri toplamak için 50 MS 'Alan Delay1' ile 'Zaman atlamalı' seçin</li>
	</ol>
</li>
	<li>Devresel_ödeme kazanç ve üç kanal confocal görüntüleme sırasında yoğunluğunu lazer<ol>
<li>Arka plan floresan en az (siyah seviyesi) hemen üstünde bir düzeyde bu yüzden Devresel_ödeme kazanç ayarlayın. Tek bir doymuş 12 bit veya 16-bit piksel mCherry kanal presynaptic terminus adlı görülmektedir kadar 561 nm (yeşil) lazer gücünü arttırın.</li>
		<li>Böylece GCaMP5 floresan arka plan yukarıda presynaptic terminus, sadece görülebilir 488 nm (mavi) lazer yoğunluğunu ayarlayın. Floresans yanıt olarak güçlü Ca2 + geçişler arttığında bu düşük ayar GCaMP5 piksellerin doygunluğunu engeller. Sonuna kadar ışık yakalama en üst düzeye çıkarmak için confocal iğne deliği açmak.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Ratiometric Ca2 + görüntüleme ve davranış kaydı
<ol><li>Floresans edinme yazılım 'Sequence' sekmesi altında "kaydetmeye başlamak Başlat". Solucan hücreleri ve sinapslarda ilgi odağı ve görüş alanı (FOV) ortasına koruyarak joystick ile izlemek. Piksel istatistikler her kanal için çubuk grafik penceresinde 'İstatistiği' düğmesini tıklatın.</li>
	<li>En fazla tek piksellik mCherry floresan ≥ presynaptic terminus, 8.000 sayar sağlamak için LED güç ayarlama (~ 4.000 photoelectrons), veren bir ~ 12-bit dinamik alan arka plan yukarıda (~ 100 photoelectrons). GCaMP5 sinyalleri2 + -meli var olmak çevresinde dinlenme (düşük) Ca sırasında presynaptic terminus adlı ~ 2500 sayar - arka plan üstüne sadece görünür.</li>
	<li>Bir yumurta atarken etkin duruma ulaşıncaya kadar kaydı; genellikle bu bir vahşi tipi solucan7her 20-30 dk oluşur. Bir 10dk alt (12,001 çerçeveler), 6000 kare öncesi ve sonrası ilk yumurta atma olayı (çerçeve 6,001) kaydedin. Davranış ve timepoints XY sahne pozisyonun solucan görüntülerin aydınlık alan aynı alt küme küme tuttuğunuzdan emin olun veya veri akışlarını kesin eşitlenmesi kaybolacak.</li>
	<li>ImageJ ve BioFormats eklenti kullanın (Bu Ratiometric Nefelometri yazılım alınabilir görüntü sıralarını görüntü sitometresi standart (.ics) biçimine dönüştürmek için Malzemeler tablobkz:).</li>
</ol>4. görüntü segmentasyonu ve kantitatif analiz
<ol><li>Almak görüntü sıralarını Ratiometric Nefelometri yazılımına ( Tablo malzemelerigörmek). 'Otomatik Kontrast' 'Araçlar' menüsünü tıklayın ve uygun siyah kurmak için her kanalının karşıtlığı ayarlayın (~ 1800) ve beyaz düzeyleri (10.000). 'Renkleri Değiştir...' mCherry ve GCaMP5 kanal renk atamalarını doğru (şekil 4A - C) olduğunu doğrulamak için Araçlar menüsünden seçin.<ol>
<li>Saat serisi 'Sequence' sekmesinde sağ tıklayın ve 20 kare/s ve 1,25 µm/piksel için ayarlayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>'Oran' 'Araçlar' menüsünden seçin ve "GCaMP5" 'A kanal' ve "mCherry" için 'İçin kanal B' seçin. "Hesapla" yanındaki 'eşik' her görüntü sırası arka plan çıkarmak için tıklatın. "Bir gökkuşağı LUT oranı kanala Uygula" seçeneğini belirleyin. Not: 0,3 (düşük Ca2 +) ortalama temel oranında ve en fazla 2-3 (yüksek Ca2 +) oranında bir kayıt için uygun arama tablosu 1 (kırmızı) 0'dan (mavi) olur.</li>
	<li>MCherry kanal (şekil 4D) kullanarak bir yoğunluk oranı modülasyonlu kanalı oluşturur. Yoğunluk oranı modülasyonlu kanal bir oranı renk mCherry kanal parlaklık nerede eşlenen renkler milyonlarca görüntüdür.</li>
	<li>'Ölçüm' sekmesi altında bir nesne bulma Protokolü 'Bulmak nesneleri kullanarak yoğunluğu' Aracı 'Protokol' bölmesine sürükleyerek oluşturun. MCherry pencere yoğunluk değerleri ayarlamak ve nesneleri bulmak için 'dişli' tıklatın.<ol>
<li>Yoğunluk değerleri ≥ 2 seçin standart sapma (SD) arka plan üzerinde (Örneğin, alt limit ~ 2500, üst sınırı 65. 535 '). Presynaptic terminus algılanır ve otomatik olarak 'geribildirim güncelleme' ölçümleri menüsünden seçili olduğundan emin olun. Not: Yazılım aynı zamanda nesneleri ilgili Protokolü 'SD yoğunluğu.' kullanarak arka plan onların standart sapma tanımlayabilirsiniz Özellikle parlak nesne FOV girerse, Bununla birlikte, önemli ölçüde ortalama yoğunluğu HSN bulmak için kullanılan yoğunluk cutoffs etkileyen bu timepoints sırasında değiştirebilirsiniz. Nesneleri bulmak için ham yoğunluk değerleri kullanılırsa bu değişkenliği oluşmaz.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ek filtreler istenmeyen nesneleri gibi kafa, dışlamak gerekirse sadece mCherry kanal (boyut, Max yoğunluğu vb.)hedefleme kuyruk ve floresan bağırsaklarını ekleyin. 'Yapmak ölçüm öğesi' ölçümleri menüden seçin ve seçmek 'Bütün Timepoints.' Not: Bu tüm ölçümler Dosya menüsündeki 'ver' komutunu kullanarak ihraç edilebilir bir virgülle ayrılmış değer (.csv) dosyasına yazma protokolü, yürütülür.</li>
	<li>Exported.csv dosyasını açın ve Timepoint, alan (µm2), ortalama (oranı kanal), Centroid X (µm) ve Centroid Y (µm) veri yeni bir sayfayı kopyalamak. A.csv dosyası sütun başlıkları olmadan ver. Ratiometric Nefelometri yazılım bir hücre ilgi timepoint başına bir veya daha fazla nesne olarak sınıflandırmak.<ol>
<li>Bu nesneler birleştireceğimi için özel bir komut dosyası 'AnalzyeGCaMP_2017.m' kullanın. Not: Komut dosyası aynı zamanda Ca2 + (oranı) doruklarına veri tanımlar ve onların timepoints, en yüksek genlikleri ve tepe genişlikleri a.csv dosyasını kaydeder. Ayrıca ham ve ek açıklama eklenen oranı izlemeleri için postscript dosyaları üretir. Bu bilgileri kullanarak, Ca2 + geçici genlik ve arası geçici aralığı tespit edilmelidir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Çıkış X ve Y centroid değerleri her Floresans nesneden XY-sahne komut dosyasından Bonsai tarafından kaydedilen X ve Y değerlerini ekleyin. Net XY pozisyon bir solucan hareket izleme üretmek için ve hücre deplasman ve farklı davranış Birleşik31eşlik hız hesaplamak için kullanın.</li>
	<li>Kaydedilen aydınlık alan görüntüleri ImageJ sanal bir yığın içe aktarın. Yumurta atarken olaylar ve diğer davranışları açıklama ekleyin. Bu olayların zamanlaması oranı izleme Ca2 + peaks için karşılaştırın.</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip çıkarları var olduğunu bildirin.

Transgenes:
MCherry ifade kodon-iyileştirme ve intron ekleme geliştirilmiş (en çok kullanılan GCaMP gazetecilere değil çünkü), enjekte ~ 4 x GCaMP5 floresan güçlü Ca sırasında karşılaştırılabilir düzeyde sağlamak için GCaMP5 ifade plazmid miktarı 2 + geçişler. Transjenik hayvanlar yumurta döşeme ve diğer davranışları35en az düzeyde etkisi ile facile kurtarılması için lin-15(n765ts) mutasyon kurtarma sağlar. Transgenes tek tip ifade ve farklı hayvan25arasında koşulları görüntüleme sağlamak için entegre edilebilir. Seçilebilir işaretleri antibiyotik direnci36,de dahil olmak üzere37 ve sıcaklığa duyarlı lethals38 kurtarılması da çalışması gerekir, ama çünkü sigara Transjenik hayvanlar ölü, onay transgene entegrasyon ve homozygosity, görünür fenotip25mevcut işaretlere göre daha zordur. Normal hareket bozabilir ve fitness, rol-6(dm)gibi azaltmak baskın işaretler kaçınılmalıdır39olmalıdır. 1 litre Imaging mutant arka plan görüntüleme23,40,41sırasında mavi ışık kaçış yanıt-e doğru azaltmak için esastır. Paralel lite-1olarak davranan gür-3, ek mutasyon daha fazla kalan davranış ve fizyolojik değişiklikleri mavi ışık42tarafından kaynaklanan en aza indirmek. Elverişli bir konuma sahip, gür-3, 1 litreve lin-15 tüm inşaat Ca2 + görüntüleme ve optogenetic deneyler için yeni suşların basitleştiren kromozom X, sağ yarısında yer alır.
Çünkü pozlama süreleri kısadır ve görüntüleri 20 Hz'de toplanır, GCaMP5 ve mCherry sinyalleri parlak olması gerekir. Gürültülü Ca2 + kayıtları için en olası açıklaması loş Floresans zayıf muhabir ifade tarafından neden var. Organizatör da yansıması bölge için makul belirli olmalıdır. HSN hücre vücut ve vulva kaslar üzerine sinapslarda vücut ortasında olduğundan, baş ve kuyruk nlp-3 organizatörü ek ifade genellikle görüş alanı dışında olduğunu ve ek filtreler kullanarak hariç Ratiometric Nefelometri yazılım. GCaMP5 floresan sonuç fiili değişikliklerden değişimler intrasellüler Ca+ 2gözlemlenen emin olmak için denetim transgenes GCaMP5 yerine GFP ifade bağımsız olarak hazırlanmalı ve26analiz. Daha yeni Ca2 + gazetecilere farklı Ca2 + hassasiyetleri, kinetik ve renkleri görüntüleme araçları kullanılabilir seçenek genişletilmiş, ama her yeni muhabir Ca2 +kullanarak doğrulanması gerektiğini-büyük küçük harf duyarlı floresan değişken14 ,16.
Medya:
NGM plakaları görüntüleme için yüksek kaliteli agar ile hazırlanmalıdır. Daha düşük kalite agar tamamen ısıyla, küçük parçacıklar Bu dağılım görüntüleme ve arka plan Floresans artan sırasında ışık bırakarak üzerine eriyecektir değil. Moleküler Biyoloji sınıf özel yerine kullanılabilir ancak eşdeğer plaka sıkılığını korumak için eklenmiş tutar azaltılmalıdır.
Karşılaştırmalar için diğer montaj yöntemleri:
Resim etkinliğinde yumurta döşeme davranışı devre önceki yaklaşımlar bir özel rampasına tutkal ile immobilize solucan kullandık. Bu koşullar, devre aktivite ve davranış yumurta döşeme altında kültür medya Osmolarite8,10,44,45bir azalma olmadan tercih değil. Son kanıtlar birkaç solucan davranışları hücre faaliyet serbestçe hayvanlar davranmak görülen için immobilize hayvanlarda gözlenen ilişki hakkında sorularınız yükselterek gezisidir devlet tarafından modülasyonlu gösteriyor. Biz son zamanlarda yumurta atarken devre etkinlik beklenmedik bir şekilde hareket26,27ile aşamalı göstermiştir. Benzer şekilde, RIA interneuron sinyal compartmentalized Ca2 + duyusal sinir hücreleri ve baş motor nöronlar aktivitesinden hareketleri46yiyecek arama sırasında bütünleştirir. Dışkılama davranış da kesin ve klişeleşmiş değişiklik hayvan atık47kovma önce onların yiyecek spot uzak taşımak sağlar hareket ile eşlik eder. Birlikte, bu sonuçları kısa kayıtları devre faaliyet immobilize hayvanlardan temelde farklı özgürce hayvanların davranış elde olabilir öneririz.
Doğrudan bir coverslip altında olmasına rağmen solucan'ın davranış standart NGM Tabaklarda görülen benzer. Koydu yumurtalar çatlamaya devam edecek ve yetişkin (veri gösterilmez) büyümeye L1 larva yatırılır gıda az miktarda sağlar. Büyük agar Öbek boyutu makul gaz değişimi için sağlar ve her ne kadar çok fazla yemek arka plan Floresans artacak dehidratasyon, direnir. Bu yöntem en iyi yetişkin için çalışsa da, teknik resim L4 hayvanlar için de kullanılabilir. Öyle ki daha küçük larvalar sürünerek zorluk ve sık sık hareketli bir yetişkin sonrasında tuzağa olsun yığın ve coverslip arasındaki sulu katman kalınlığı be.
Bu montaj tekniği sınırlamasından doğrudan mekanik veya kimyasal uyarımı hassas bölgeler için vücudun zor olmasıdır. Desenli aydınlatma teknikleri son gelişmeler baş veya kuyruk ifade mikrobiyal opsins ayrı aydınlatma ile ayrı uyarma ve GCaMP/mCherry floresan midbody48,49olarak algılanmasını sağlar. Sonuç olarak, optogenetic yaklaşımları kullanarak bu sorunu aşmak mümkün olabilir.
Karşılaştırmalar için diğer Ca 2 + Yaklaşımlar görüntüleme:
Bu yöntem inşaat peki sitoplazmik Ca2 + tek gelen değişiklikleri kaydetmek için hücreleri ve onların sinaptik bölgeler çözüldü. Gerçek zamanlı, hacimsel görüntüleme nöronların başından son zamanlarda hücre kimliği ve nucleoplasmic kalsiyum50,51,52değişimler quantitate için hücre çekirdeği konumunu kullanarak elde edilmiştir. Arasındaki nükleer ve sinaptik Ca2 + ilişki belirsizdir. Bizim verileri hücre soma (şekil 4 d) uzak presynaptic termini, HSN intrasellüler Ca2 + en göze çarpan değişiklikler gerçekleşir göstermektedir. HSN ve VC nöronlar presynaptic termini postsinaptik vulva kas26yılında katıştırılır. Öyle olacağını olup olmadığını yeterli çözünürlükte bile disk veya hafif levha teknikleri presynaptic Ca2 + sinyalleri belirli hücrelere somatik kalsiyum hücre kimliği için bir şekilde dayanarak olmadan atfetmek için iplik ile Z boyut belli değil . Teknikleri kullanarak açıklanan burada, her 10 min, iki kanallı 12,001 ile kayıt 256 x 256 piksel 16 bit TIFF görüntüleri ~ 4 GB. Oranı ve yoğunluğu modüle oranı dosya boyutunu Çift Kanal ~ 8 GB. Her iki genotip (vahşi-tipi ve deneysel) 10 hayvan kayıt tipik bir deney yaklaşık 150 GB birincil veri üretir ve toplamak ve analiz etmek için 20 h gerektirir. Hacimsel analizleri timepoint başına 10 Z dilimleri ile daha fazla veri ve analitik zaman, neden o kadar az bu tür çalışmalar tamamlanmıştır açıklayan bir büyüklük gerektirir.
Donanım:
Biz kayıt ve görüntü sıralarını ile yüksek performanslı çift işlemci istasyonlarında analiz (Örneğin, oyun) ekran kartı, RAM, 64 GB ve yüksek performanslı katı hal sürücüler ( Tablo malzemelerigörmek). Veri ağ yedek dizisi (RAID) bağımsız diskler üzerinde depolanan ve bir off-site veri merkezinde bulut için sırt yukarıya.
Yüksek güç kullanarak LED'ler pulsed Floresans uyarma için metal halide veya cıva tabanlı ışık kaynakları üzerinden collimated tavsiye ediyoruz. Birkaç piyasada bulunan çok renkli LED sistemleri bulunan yerlerde geçerlidir. Bazı bu LED sistemler daha yüksek bir ayarlıyoruz maliyet varken, onlar bir uzun ömürlü (> 20.000 h) var, aynı anda dört veya daha fazla farklı fluorophores heyecanlandırmak ve düşük gecikme süresi (10-300 µs geçiş bir seri ve/veya TTL arabirimi kullanarak hassas zamansal kontrol sunuyoruz zaman). Uyarının harekete geçirilmesine karşılık ne zaman veri aslında toplanmakta olan örnek yalnızca ışıklı sağlar. Biz genellikle 10 ms pozlama her 50 ms (% 20 görev oranı) kullanın. Bu fototoksisite azaltır ve Hareket Bulanıklığı daha önce raporlanmış43olarak görüntü yakalama sırasında.
SCMOS kameralar hız ve küçük, hassas piksel büyük dizi için kullanın. Bir EM-CCD kamera daha pahalı bir alternatif olmakla beraber 'bloom' etkileri yakalanan photoelectrons Bitişik piksellerin dökülmesini neden olabilir. Yeni arka ışıklı sCMOS kamera EM-kendilerini benzer fotosensitivite önemli ölçüde azaltılmış pahasına var. Ne olursa olsun hangi sensör kullanılır, GCaMP5 ve mCherry kanalları aynı anda alınması gerekir. Solucanlar hareketli sıralı yakalama kötü kayıtlı görüntüleri ratiometric Nefelometri için uygun olmayan yol açar. Çift kanallı görüntüleme bölme sonra tek kamera gerçekleştirilebilir bir resim splitter (Şekil 2) veya iki özdeş kamera kullanarak kanalları. 16-bit görüntüleri dinamik aralığı 8-bit görüntüleri doğru ratiometric Nefelometri için önerilir. Aydınlık alan solucan davranış için biz büyük 2 x 2 dönüştüm 1024 x 1024 8-bit görüntü sıralarını JPEG sıkıştırma sonra yakalamak için bir 1 inç 4.1 MP yakın kızılötesi USB3 kamera ile çekim. Daha yeni mikroskop modellerde kullanılabilir daha büyük FOV 20 x sadece hafif (şekil 4E) vinyet ile 0,63 x demagnification sonra görüntülenmeyecektir yetişkin bir solucan sağlar.
Standart TTL gerilim sinyalleri aydınlatma ve çerçeve yakalama eşitlemek için kullanmanızı öneririz. Farklı yazılım programları içinde olası gecikmeleri nedeniyle kullanıcıların Floresans kamera tetikleyici çıkışlarını ile master olarak ile diğer cihazlar sürüş TTL çıkış yapılandırma önerilir. Bu şekilde, aydınlık alan ve sahne konum bilgilerini her Ca2 + ölçüm için toplanacaktır.
Yarık veya genellikle paylaşılan confocal tesislerinde bulunan rezonans noktası tarama confocal mikroskoplar de ratiometric Ca2 + görüntüleme sırasında mükemmel performans vermek. Bu tür aletleri aydınlık alan24ile birlikte iki veya daha fazla Floresans Kanallar yakalamak için kullanılabilir. Bu durumda, confocal iğne deliği maksimum çapına açılmalıdır ve spektral dedektörü GCaMP5, mCherry ve kızılötesi aydınlık alan sinyalleri ayırmak için kullanılmalıdır. Bu hafif bir kalın koleksiyonundan en üst düzeye çıkarır (~ 20 µm) hala odak floresan reddedilmesi izin verirken dilim. Bir eksik yanı daha küçük FOV ve donanım ve yazılım özelleştirme için daha fazla kısıtlama var.
Yazılım:
Pek çok üretici sevk ve giriş ve çıkışlarını uyarının harekete geçirilmesine karşılık yapılandırma da dahil olmak üzere özel mülk yazılımla onların kameralar ve mikroskoplar yükleyin. Özellikleri ve bu yazılımın performans kayıt sırasında değişebilir. Solucanlar hızlı hareket izlemek için zor olabilir çünkü düzgün ve istikrarlı 20 Hz değerinde olması gerekir kayıt sırasında ekran görüntü. Performansı artırmak için görüntü sıralarını geçici olarak RAM'de deneme sonunda kaydedilen davranışsal ilgili alt kümeleri ile kaydedilebilir. Bu iki kanallı görüntü sırası dosyalarını içe Ratiometric Nefelometri yazılım aktarmak için açık görüntü sitometresi standart biçime (.ics) dönüştürülebilir. OME-TIFF daha yeni bir açık kaynak resim biçimi olsa da farklı yüklemeler TIFF görüntü sıralarını 4 GB'den büyük kaydedemedi olabilir.
Bir ana Nefelometri boru hattı oranı kanal ve sonra mCherry floresan hücreleri ilgi bulmak için kullanarak bir tarafsız görüntü segmentasyonu yordamı nesil özelliğidir. Her eşya nesnesinin nesne boyutu, XY centroid konum ve en düşük düzeyde, demek ve en fazla Floresans yoğunluk değerleri (oranı kanal da dahil olmak üzere) her kanal için hesaplanır. Birlikte, bu değerler intrasellüler Ca2 + ' da her timepoint kayıt değişiklikleri quantitate için kullanılır. Her timepoint için nesne ölçümleri sonra daha sonraki analizler için a.csv dosyası olarak dışa aktarılır.
Burada açıklanan protokol büyük bir sınırlama verileri farklı şekillerde yazılım ürünlerinin bir patchwork yoluyla taşıma bağımlılık olduğunu. Ek bir tahriş bazı yazılım açık kaynak ve özgür diğerleri kapalıyken, pahalı ve düzensiz güncelleştirilmiş olmasıdır. Önemli bir gelişme kullanın veya benzer düzeyde performans ve rahatlık-in-kullanma edinme üzerinden analiz için sağlayan bir yazılım (ideal olarak açık kaynak) parçası geliştirmek olacaktır. Yukarıda da belirtildiği gibi ratiometric analiz bir deney tamamlamak için gereken saat ve dosya boyutu iki katına çıkar. Bonsai resimleri ve diğer veri akışlarını toplanan ve analiz için'gerçek zamanlı olarak, önemli ölçüde iyileştirilmesi üretimi sağlayacak gibi kullanıcı tarafından özelleştirilebilir çerçeveler entegre kamera sürücüleri nesil.
Gelecek:
Biz genellikle el ile solucan hareketlerini takip ederken, kızılötesi parlak veya karanlık alanlı kayıtları tespit solucan centroid izlenmesine ek görüntü işleme kapalı döngü ayarlama sahne pozisyon sağlamak ve otomatik düğümleri için izin vermelidir izleme (şekil 3 ve veri gösterilmez). Bu yöntem ile elde edilen floresan kayıtları çoğunluğu karanlık ve biyolojik veri ilginç yoksun olduğunu. Sensör üzerinde veya gerçek zamanlı sonrası edinme görüntü görüntü sıralarını ilgili nesneleri kırpma teknikleri işleme yüksek Uzaysal çözünürlük için izin ve özellikle ek Z-dilimler her için toplanan eğer veri analizi potansiyel hızlandırmak timepoint etkinlik devre tüm ön ve postsinaptik hücre içinde görselleştirmek için.

Nörolojik bilimler merkezi amacı nasıl devrelerde sürücü hayvan davranışları için nöronlar iletişim anlamaktır. Sinir devreleri devre etkinlik, böylece davranış değişiklikleri hayvanlar için ortamlar için yanıt için gerekli sürüş değiştirmek için farklı duyusal ipuçlarını bir dizi entegre. Yuvarlak solucanlar, C. elegans, kimin sinaptik bağlantıların tamamen eşlenen1olduğu 302 nöronlar ile basit bir sinir sistemi vardır. Ayrıca, proteinler neurotransmission içinde yer alan için kodlamak genler C. elegans ve memeliler2arasında son derece korunmuş. Onun sinir sisteminin anatomik basitliğine rağmen korunmuş davranışları nasıl davranış3nöronlar düzenleyen anlamak için verimli bir platform sağlayan karmaşık bir repertuar görüntüler.
C. elegans genetik manipülasyon, lazer hücre ablasyon, Elektrofizyolojik teknikleri gibi vivo içinde 4,5Imaging optik gibi yaklaşımlar geniş bir uygulama için mükellef. Son yıllarda yapılan çalışmalarda kolinerjik dahil C. elegans ve GABAergic nöronal ağlar sistemlerinin sinyal büyük nörotransmitter ayrıntılı haritalar doğurmuştur. Bu çalışmalar, tüm nöronal G-protein birleştiğinde reseptörlerinin ifade eşlemek için devam eden çalışmalar ile birlikte bu model son derece detaylı yapısal kaldıraç için benzersiz bir konumda yerleştirin ve fonksiyonel nöronal bağlantı haritalar tam olarak anlamak için nasıl bu farklı reseptörleri ve sürücü farklı yönleri hayvan davranışları ile zaman çizelgelerine aracılığıyla farklı nörotransmitter sinyal.
Herhangi bir sistemdeki dinamik nöronal aktivite desen çalışması için önemli bir önkoşul etkinliklerini bireysel nöronlar veya tüm devreler davranışları sırasında kaydetmek için güçlü yöntemler geliştirmektir. Amenability optik bu tür yaklaşımların sinaptik vezikül füzyon sürücüler presynaptic aktivite görselleştirmek için özellikle önemlidir. Hızlı ve son derece hassas floresan gazetecilere intrasellüler Ca2 +, duyarlı photodetectors, artan kullanılabilirliği ile birlikte hücre ve uyanık, yaşayan hayvanlarda sinirsel aktivite kayıt davranış sırasında devrim. Ca2 + kanalları düzenleyen sinaptik elektriksel aktivitenin önemli bir sonucu olduğu için değişimler intrasellüler Ca2 + hücre etkinliğinde sadakatle rapor davranışsal ilgili değişiklikleri tahmin edilmektedir.
Bu çalışmada, C. elegans6,7yumurta döşeme davranışı teşvik serotonerjik HSN motor nöronlar ratiometric Ca2 + görüntüleme gerçekleştirmek için bir yaklaşım sunuyoruz. Bu yaklaşım Ca2 + C. elegans etkinliğinde ve yumurta atarken devre davranış5,8,9,10sırasında,11 görselleştirmek için önceki çabaları oluşturur . Yöntemi aynı anda hayvan Lokomotor devlet değişikliklerin yanı sıra yumurta atarken olayları ile hücre/devre faaliyette gözlenen değişiklikleri ilişkilendirmek için sağlar. Biz bu yaklaşım yetişkin solucanlar etkinliğinde çalışmaya kullansa da, bizim laboratuvar yayınlanmamış işten bu yaklaşım için Juvenil hayvanlar dördüncü larva (L4) aşamasında de uzatılabilir gösterir. Bu işlev farklı devreler ve davranışları diğer C. elegans nöronların aktivitesinin bu tekniği ile benzer şekilde erişilebilir olmalıdır muhtemeldir. Diğer son zamanlarda geliştirilen hızlı Ca ile üst üste emisyon spectra12,13,14,15,16,2 + göstergeleri optogenetic araçlar17 ve genetik olarak membran voltajı18optik göstergeleri kodlanmış, bize nasıl sinir devresi aktivite değişiklikleri farklı davranış Birleşik sürücü içine delici 'all-optik' araştırmalar gerçekleştirmek izin vermelidir.

<table><tbody><tr><td> C. elegans büyüme, yetiştirme ve montaj</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Escherichia coli bakteri suşu, OP50</td><td>Caenorhabditis Genetik Merkezi</td><td>OP50</td><td>C. elegans için gıda. Urasil oksotrof. E. coli B. Biyogüvenlik Seviyesi 1</td></tr><tr><td>HSN GCaMP5+mKiraz kurdu suşu</td><td>Caenorhabditis Genetik Merkezi</td><td>LX2004</td><td>HSN'de GCaMP5 ve mCherry ekspresyonunu sürmek için nlp-3 promotörü kullanan entegre transgen.&nbsp; Tam genotip:&nbsp; vsIs183 [nlp-3p::GCaMP5::nlp-3 3'UTR + nlp-3p::mCherry::nlp-3 3'UTR + lin-15(+)], lite-1(ce314), lin-15(n765ts) X</td></tr><tr><td>lite-1 (ce314), lin-15 (n765ts) transgen hazırlama için mutant suş</td><td>yazar</td><td>LX1832</td><td>pL15EK lin-15 (n765ts) kurtarma plazmidi. Ayrıca mavi ışık hassasiyetini azaltan linked lite-1 (ce314) mutasyonunu da taşır. Yazardan istek üzerine temin edilebilir</td></tr><tr><td>pL15EK lin-15a/b genomik kurtarma plazmidi</td><td>yazarı</td><td>pL15EK</td><td>LX1832 lite-1(ce314), lin-15(n765ts) X suşuna enjeksiyondan sonra transgenik hayvanların kurtarılması için kurtarma plazmidi. İstek üzerine yazardan temin edilebilir</td></tr><tr><td>pKMC299 plazmid</td><td>yazarı</td><td>pKMC299</td><td>nlp-3 promotöründen HSN'lerde mCherry ekspresyonu için plazmid. Has nlp-3 3' çevrilmemiş bölge</td></tr><tr><td>pKMC300 plazmit</td><td>yazarı</td><td>pKMC300</td><td>nlp-3 promotöründen HSN5'in ekspresyonu için plazmit. nlp-3 3' çevrilmemiş bölgeye sahiptir</td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat Monobazik</td><td>Sigma</td><td>P8281</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat Dibazik</td><td>Sigma</td><td>P5655</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Magnezyum Sülfat Heptahidrat</td><td>Amresco</td><td>0662</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Kalsiyum Klorür Dihidrat</td><td>Alfa Aesar</td><td>12312</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Peptone</td><td>Becton Dickinson</td><td>211820</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Sodyum Klorür</td><td>Amresco</td><td>0241</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Kolesterol</td><td>Alfa Aesar</td><td>A11470</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>Agar, Bakteriyolojik Tip A, Ultrapure</td><td>Affymetrix</td><td>10906</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>60 mm Petri kapları</td><td>VWR</td><td>25384-164&nbsp;</td><td>NGM plakalarının hazırlanması için</td></tr><tr><td>24 x 60 mm mikro kapak camları, #1.5</td><td>VWR</td><td>48393-251</td><td>Solucanların görüntülendiği kapak camı</td></tr><tr><td>22 x 22 mm mikro kapak camları, #1</td><td>VWR</td><td>48366-067</td><td>Agar yığınının üstünü kaplayan kapak camı</td></tr><tr><td>İletilen ışık bazlı stereomikroskop</td><td>Leica</td><td>M50</td><td>Solucan suşu bakımı, evreleme ve montajı için diseksiyon mikroskobu</td></tr><tr><td>Platin iridyum teli, (80:20), 0,2 mm</td><td>ALFA AESAR</td><td>AA39526-BW</td><td>Solucan transferi için</td></tr><tr><td><güçlü>Kalsiyum görüntüleme mikroskobu</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Titreşim önleyici hava tablası</td><td>TMC</td><td>63-544</td><td>Micro-g' Lab Masası 30" x 48" titreşim önleyici masa, 25 mm üstte 4" CleanTop M6 ile</td></tr><tr><td>Ters bileşik mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>431007-9902-000</td><td>Axio Observer.Z1 ters çevrilmiş mikroskop</td></tr><tr><td>Sideport L80/R100 (3 konum)</td><td>Zeiss</td><td>425165-0000-000</td><td>Çıktının %20'sini parlak alan (CMOS) kameraya, %80'ini floresan (sCMOS) kameraya yönlendirmek</td></tr> için <tr><td>Geriye Eğimli Aydınlatma Taşıyıcı</td><td>Zeiss</td><td>423920-0000-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için</td></tr><tr><td>Lamba muhafazası 12V/100W, Kollektör</td><td>Zeiss</td><td>423000-9901-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için</td></tr><tr><td>Halojen lamba 12V/ 100W</td><td>Zeiss</td><td>380059-1660-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için. Beyaz ışıklı LED'ler önemli kızılötesi ışık yaymazlar, bu nedenle kızılötesi bant geçirdikten sonra parlak alan görüntülemeye izin vermezler.</td></tr><tr>Halojen lamba <td>Zeiss</td><td>447958-9000-000</td> BP<td>750-790 için 32 mm Kızılötesi bant geçiren filtre (750-790 nm</td><td>); DMR 32mm, parlak alan ve davranış için kızılötesi aydınlatma için</td></tr><tr><td>6 filtreli Kondenser Taret (LD 0,55 H/DIC/Ph), Motorlu</td><td>Zeiss</td><td>424244-0000-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için</td></tr><tr><td>Kondenser & Deklanşör</td><td>Zeiss</td><td>423921-0000-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için</td></tr><tr><td>Kızılötesi CMOS kamera için fototüplü dürbün merceği</td><td>Zeiss</td><td>425536-0000-000</td><td>Kızılötesi/davranış görüntüleme için</td></tr><tr><td>Göz merceği 10x, 23mm</td><td>Zeiss</td><td>444036-9000-000</td><td>Agar yığınında solucan lokalizasyonu için</td></tr><tr><td>C-Mount Adaptör 2/3" 0.63x büyütücü</td><td>Zeiss</td><td>426113-0000-000</td><td>Dağı kızılötesi CMOS kamera</td></tr><tr><td>Kızılötesi parlak alan ve davranış için CMOS kamera (1 "sensör)</td> <td>FLIR (eski adıyla Point Grey Research)</td> <td>GS3-U3-41C6NIR-C</td><td>Parlak alan görüntüleme için kamera</td></tr><tr><td>USB 3.0 Ana Bilgisayar Denetleyici Kartı</td><td>FLIR (eski adıyla Point Grey Research)</td> <td>ACC-01-1202</td><td>Fresco FL1100, 4 Bağlantı Noktası</td></tr><tr><td>8 pin, 1m GPIO Kablosu, Hirose HR25 Dairesel Konnektör&nbsp;</td><td>FLIR (eski adıyla Point Grey Research)</td> TTL tetikleme için <td>ACC-01-3000</td><td>Kablosu. Yeşil kablo GPIO3 / Pin 4'e bağlanır ve kahverengi kablo Toprağa / Pin 5'e bağlanır</td></tr><tr><td>Plan-Apochromat 20x/0.8 WD=0.55 M27</td><td>Zeiss</td><td>420650-9901-000</td><td>Büyütme, sayısal diyafram açıklığı ve çalışma mesafesinin en iyi kombinasyonu</td></tr><tr><td>6 küp Reflektör Taret, Motorlu</td><td>Zeiss</td><td>424947-0000-000</td><td>Floresan görüntüleme için</td></tr><tr><td>Floresan Işık Treni, Motorlu</td><td>Zeiss</td><td>423607-0000-000</td><td>Floresan görüntüleme için</td></tr><tr><td>Floresan Deklanşör</td><td>Zeiss</td><td>423625-0000-000</td><td>Floresan görüntüleme için</td></tr><tr><td>GFP ve mCherry ikili uyarma ve emisyon filtre kabı (mikroskop için)</td><td>Zeiss</td><td>489062-9901-000</td><td>FL Filtre Seti 62 HE BFP+GFP+HcRed floresan görüntüleme için</td></tr><tr><td>LED aydınlatma sistemi</td><td>Zeiss</td><td>423052-9501-000</td><td>Floresan aydınlatma için tetiklenebilir Colibri.2 LED sistemi</td></tr><tr><td>GFP LED modülü (470 nm)</td><td>Zeiss</td><td>423052-9052-000</td><td>GFP floresan uyarımı için Colibri.2 LED</td></tr><tr><td>mCherry LED modülü (590 nm)</td><td>Zeiss</td><td>423052-9082-000</td><td>mCherry floresan uyarımı için Colibri.2 LED</td></tr><tr><td>Gelen ışık ekipmanı için iris durdurma kaydırıcısı</td><td>Zeiss</td><td>000000-1062-360</td><td>LED aydınlatmayı kamera görüş</td></tr> <tr><td>alanıyla sınırlamak için alan açıklığı irisiC-Mount Adaptör 1" 1.0x</td><td>Zeiss</td><td>426114-0000-000</td><td>Görüntü ayırıcı ve sCMOS floresan kamera için adaptör</td></tr><tr><td>Görüntü ayırıcı</td><td>Hamamatsu</td><td>A12801-01</td><td>Gemini W-View, diğer görüntü ayırıcılar kullanılabilir, ancak bunlar sCMOS kameraların büyük sensör boyutu için optimize edilemeyebilir</td></tr><tr><td>GFP / mCherry dikroik ayna (görüntü ayırıcı)</td><td>Semrock</td><td>Di02-R594-25x36</td><td>GCaMP5'i mCherry ve kızılötesinden bölme sinyaller</td></tr><tr><td>GFP emisyon filtresi (görüntü ayırıcı)</td><td>Semrock</td><td>FF01-525/30-25</td><td>GCaMP5 floresan</td></tr><tr><td>yakalama mCherry/ emisyon filtresi (görüntü ayırıcı)</td><td>Semrock</td><td>FF01-647/57-25</td><td>Bu filtre, parlak alan görüntüleme için kullanılan kızılötesi ışığı hariç tutmak için gereklidir</td></tr><tr><td>floresan için sCMOS kamera (1" sensör)</td><td>Hamamatsu</td><td>A12802-01 / C11440-22CU</td><td>Orca FLAŞ 4.0 V2. Daha yeni modeller, sensörün ayrı yarısında ayrı görüntü alma ayarlarına izin vererek, bir görüntü ayırıcı ile birlikte iki kanallı görüntülerin elde edilmesine olanak tanır</td></tr><tr><td>Motorlu XY Stage</td><td>M&auml; rzh&auml; kullanıcı</td><td>SCAN IM 130 x 100</td><td>Aşama hareketi; bu aşamanın XY çözünürlüğü 0.2 ve mikrodur; adım başına m&nbsp;</td></tr><tr><td>Joystick ile XY Sahne kontrolörü</td><td>LUDL</td><td>MAC6000, XY joystick</td><td>Solucanların manuel takibi. MAC6000 denetleyicisi, 115200 baud Dijital Alım kartına (DAQ) yapılandırılmış seri (RS-232) bağlantı noktası üzerinden PC'ye bağlanmalıdır</td></tr>, <tr><td></td><td>Arduino</td><td>Uno</td><td>SCMOS kameradan TTL tetikleyicileri alır. Uno, standart Firmata paketi ile yüklenmeli ve bilgisayarın USB bağlantı noktası 57600 baud olarak yapılandırılmalıdır</td></tr><tr><td>BNC Erkek - BNC Erkek Kablo - 6 ft</td><td>Hosa Teknolojisi</td><td>TTL tetikleme için HOBB6</td><td>BNC konektörleri</td></tr><tr><td>Altın Kaplama BNC Erkek - SMA erkek koaksiyel kablo (8.8")</td><td>uxcell</td><td>608641773651</td><td>Floresan kamera tetik çıkışlarını bağlamak için</td></tr><tr><td>BNC dönüş kafası adaptörü</td><td>Hantek</td><td>RRBNCTH21</td><td>BNC - Banana Fiş Adaptörü (4mm)</td></tr><tr><td>BNC dişi - dişi konnektör</td><td>Diageng</td><td>20130530009</td><td>Kameradan gelen BNC çıkışını Banana Plug'a bağlamak için dişi - dişi BNC adaptörü</td></tr><tr><td>Lehimsiz esnek breadboard jumper telleri</td><td>Z & T</td><td>GK1212827</td><td>BNC tetik çıkışlarını Arduiono DAQ'a bağlamak için.&nbsp; Erkek erkeğe.</td></tr><tr><td>Yüksek performanslı iş istasyonu</td><td>HP</td><td>Z820</td><td>Windows 7, 64GB RAM, Çift Xeon işlemci, katı hal C: sürücü, seri (RS-232) bağlantı noktası, ethernet bağlantısı için birden fazla PCIe3 yuvası, USB 3.0 kartları ve ek katı hal sürücüleri</td></tr><tr><td>M.2 Katı hal sürücüsü</td><td>Samsung</td><td>MZ-V5P512BW</td><td>Görüntü verilerinin yüksek hızlı akışı ve analizi</td></tr><tr><td>M.2 Katı hal sürücü adaptörü&nbsp; iş istasyonları için</td><td>Lycom</td><td>DT-120</td><td>M.2 - PCIe 3.0 4 şeritli adaptör</td></tr><tr><td>Ağa bağlı depolama</td><td>Synology</td><td>DS-2415+</td><td>Görüntüleme verilerinin depolanması ve analizi</td></tr><tr><td>Sabit disk sürücüleri</td><td>Western Digital</td><td>WD80EFZX</td><td>RED 8 TB, 5400 RPM Sınıfı SATA 6 Gb/s 128MB Önbellek 3,5 İnç. Görüntüleme verilerinin depolanması (10 sürücü + 2 sürücü yedekliliği)</td></tr><tr><td>Yazılım</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluorescence Acquisition</td><td>Hamamatsu</td><td>HCImage DIA</td><td>20 fps'de iki kanallı (GCaMP5 ve mCherry) floresan görüntü dizilerinin kaydı</td></tr><tr><td>Brightfield Acquisition</td><td>FLIR (eski adıyla Point Grey Research)</td><td>Flycapture</td><td>Brightfield JPEG görüntü dizilerinin kaydı</td></tr><tr><td>Stage Seri Bağlantı Noktası Okuyucu</td><td>Bonsai</td><td>https://bitbucket.org/horizongir/bonsai</td><td>Davranış sırasında solucanların izlenmesini kolaylaştırır</td></tr><tr><td>LED kontrol yazılımı</td><td>Zeiss</td><td>Micro Toolbox Test 2011</td><td>Colibri.2 ünitesindeki farklı LED'ler için yoğunluk ve tetikleme girişlerini ayarlamak için</td></tr><tr><td>ImageJ&nbsp;</td><td>NIH</td><td>https://imagej.net/Fiji/Downloads</td><td>Ratiometric Quantitation yazılımı Excel'e içe aktarmak için görüntü dizilerinin ve biçimlendirme değişikliklerinin basit incelemesi</td></tr><tr><td>Microsoft</td><td></td><td>&nbsp; 2002984-001-000001</td><td>MATLAB analizi için Volocity'den virgülle ayrılmış değer verilerinin alt kümelerini oluşturmak için</td></tr><tr>Oran <td>tepe özelliği hesaplamaları için kullanılan</td><td>Tepe Bulma</td><td>MATLAB</td><td>R2017a</td> Komut Dosyası</tr><tr><td>Oransal Kantitasyon</td><td>Perkin Elmer</td><td>Volocity 6.3</td><td>Oransal görüntü kanallarının hesaplanmasını, nesne bulma için görüntü segmentasyonunu ve bulunan nesnelerin</td></tr> <tr><td>oran ölçümünü kolaylaştırırScripts</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>XY-stage-final.bonsai</td><td>Bonsai</td><td>TTL ile tetiklenen DAQ ve aşama konumu seri bağlantı noktası okuyucu</td><td>Bağlı Arduino, kare pozlaması sırasında sCMOS kameradan pozitif bir TTL sinyali aldığında X ve Y aşama konumunu (mikron cinsinden) kaydeder. Komut dosyası, dört sütunlu bir .csv dosyası yazar: kare numarası, X konumu (mikron), Y konumu (mikron) ve kareler arasında geçen süre (20 fps'de kayıt yaparken genellikle ~50 milisaniye).&nbsp; Bu çıktıdan X ve Y tabla konumu (sırasıyla sütun 2 ve 3), kayıt için floresan nesnenin son X ve Y konumunu vermek için AnalyzeGCaMP_2017.m MATLAB komut dosyasından (sırasıyla sütun 4 ve 5) X ve Y merkez konumlarına eklenir.&nbsp;</td></tr></tbody></table>

ratiometric kalsiyum görüntüleme caenorhabditis elegans davranışlar içinde bireysel nöronların

Ratiometric Calcium Imaging of Individual Neurons in Behaving Caenorhabditis Elegans

Hayvanlar davranmak nöral devre etkinliğini önemli ölçüde imzalat veya immobilize hayvanlarda görülen dan farklıdır giderek netlik kazanmıştır. Son derece hassas, genetik olarak kodlanmış floresan gazetecilere Ca2 + hücre ve non-invaziv optik yaklaşımları kullanarak davranıyor hayvanlarda sinirsel aktivite kayıt devrim. Genetik ile birleştirildiğinde ve optogenetic teknikleri, moleküler mekanizmaları bu modüle hücre ve devre aktivite sırasında farklı davranış Birleşik belirlenebilir.
Burada özgürce Caenorhabditis elegans solucanlar davranışlar içinde tek nöronların ratiometric Ca2 + görüntüleme yöntemleri açıklanmaktadır. Biz hayvanlar, kaydedilecek izin bindirmeleri solucanlar üzerinde standart bir yuvarlak solucanlar büyüme medya (NGM) agar büyüyen bir cam coverslip ile hafifçe engellemek basit montaj tekniği göstermek sınırsız hareket ve davranış sırasında yüksek çözünürlüklü. Bu teknik ile onlar sürücü davranış yumurta döşeme gibi intrasellüler Ca2 + serotonerjik hermafrodit belirli nöronlar (HSNs) içinde değişiklikleri kaydetmek için hassas Ca2 + muhabir GCaMP5 kullanın. MCherry, bir Ca2 +co ifade tarafından-büyük küçük harf duyarlı floresan protein, HSN içinde konumunu takip ~ 1 µm ve odak veya hareket değişiklikleri nedeniyle Floresans dalgalanmalar için doğru. Aynı anda, kızılötesi aydınlık alan görüntüleme davranış kayıt ve hayvan izleme motorlu sahne kullanarak sağlar. Etkin ve etkin davranış durumlar arasında üzerinde dakika onlarca yaparak bu mikroskobik teknikler ve veri akışları entegre ederek, biz Ca2 + etkinliğini yumurta atarken C. elegans devrede kaydedebilirsiniz.

Burada açıklanan basit montaj tekniği (şekil 1), yüksek çözünürlüklü bir cam coverslip (şekil 4) aracılığıyla hayvanlar davranmak kayıt izin verirken, L4 ve yetişkin C. elegans kültür ortamını en az değişikliklere neden olur. Kadar büyütme (20 x) yüksek sayısal diyafram hedefleri (0,7-0,8) ile 1 h. orta sağlar için senkronizasyon LED ışık kaynakları, sahne alanı denetleyicileri ve fotoğraf makinesi Pozlama veri toplama birden çok dere 20 kare/s den iyi sağlar Uzaysal çözünürlük 4 x 4 piksel (1,25 µm/piksel) binning ile bile yumurta döşeme davranışı devre, sinaptik bölgesinin. GCaMP5 ve mCherry floresan sinyallerini (şekil 4A, B) eşzamanlı edinimi hayvan hareketi ve odak (şekil 4D) değişiklikler dengeler bir piksel piksel oranı kanal oluşturmak için kullanılır. HSN presynaptic terminus C. elegansbirçok nöronal hücre gövdelerinde ve presynaptic HSN Ca2 + değişiklikleri açıkça görüntülenmeyecektir kadar güçlüyse zaten. Kızılötesi aydınlık alan kameranın geniş FOV (şekil 4E) kayıt sırasında el ile izlenmesi gereken solucan sağlar. Her hayvan için intrasellüler Ca2 + değişiklikleri aydınlık alan görüntülemede yumurta yayın ve değişiklikleri hareket (şekil 4E) dahil olmak üzere belli davranışları ile ilişkili olabilir.
HSN Ca2 + ve hız Nefelometri yumurta döşeme davranışı için geçiş olarak solucanlar onların hareket değiştirmek onaylar. Öncesinde, sırasında ve sonra yumurta atarken etkin duruma (şekil 5A) solucan hız önemli farklılıklar vardır. Bu gürültü görüntüleme veya izleme sistemi için doğal kaynaklanır değil. Bir yumurta atarken olay yakınlaştırma, biz güçlü bir gözlemlemek GCaMP5 floresan (ΔF/F) mCherry floresan nispeten ise yumurta atma olayı önce değişiklik değiştirmeden (şekil 5B). GCaMP5:mCherry oranı (ΔR/R) ölçülen değişiklikler açıkça göstermek an HSN Ca2 + geçici ~ 4 s önceden yumurta versiyon (şekil 5B). Vulva kas kasılması ile çakışık, solucan hareket açık bir yavaşlama uçları yumurta ile serbest oluşur. Önceki sonuçları HSNs tarafından innervated, kolinerjik VC motor nöronlar güçlü vulva kas kasılmaları ve yumurta sürüm 8,10,27sırasında en yüksek etkinliğini gösteren göstermiştir. Biz de VC nöronların optogenetic harekete geçirmek hareket, hemen bir yavaşlama sürücüler göstermiştir VC nöronlar tarafından vulva kas kasılması devrede olabilir düşündüren, böylece yumurta sürüm27 geribildirim alma kadar hareket yavaşlaması .
Görüntüleme ve izleme sistemi açıklanan davranış (şekil 5C) yumurta atarken mekansal organizasyonu görselleştirme sağlar. Daha önce gösterilen, solucanlar girin hemen önce etkin duruma32ileri hareket sürekli çalışır. Solucanlar bakteri agar yığın ortasındaki yiyecek arama zaman çoğunluk harcamak. Etkin durum girmesinden önce solucanlar seyrek HSN Ca2 + geçişler görünümü ile çakışık gıda uzak taşımak. HSN etkinlik sonra yumurta atarken olaylar ayakta birkaç yakından aralıklı HSN Ca2 + geçişler ile patlama ateş içine geçişler. Solucanlar daha sonra kez arkanı, ileriye doğru hareket devam ve yumurtalarını OP50 bakteri yakınındaki başlangıç konumlarına geri doğru yolda. Değişiklikleri yerel O2 ve/veya CO2 konsantrasyonu nerede yumurta33,34bırakmaya solucanlar karar etkileyen olabilir tahmin.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56911/56911fig1.jpg"> Şekil 1. C. elegans yumurta atarken devre faaliyet ve davranış yüksek çözünürlükte görüntüleme için teknik montaj. Üst taraftan son mount. Alt, son mount olarak büyük coverslip alt aracılığıyla izlendi. Oklar, OP50 bakteriyel gıda, C. elegans solucanlar ve yumurta, sandviç NGM agar yığın ve geniş 24 mm x 60 mm coverslip arasında gösterir. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56911/56911fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56911/56911fig2.jpg"> Resim 2 . Widefield ratiometric Ca2 + görüntüleme ve bir ters epifluorescence mikroskobunun kayıt davranışı. (A)solucan konumu ve davranış içinde aydınlık bir 20 x (0.8 NA) üzerinden alan yakalanan planı-Apochromat amacı halojen lamba NGM yığın aracılığıyla yaydığı kızılötesi (750-790 nm) ışık (mor oklar) kullanarak. Bir oyun çubuğu ve motorlu sahne alanı denetleyicisi kayıt sırasında belgili tanımlık kurt görüş alanı içinde korumak için kullanılır. Sahne pozisyon (Δx, Δy) PC seri bağlantı noktası tarafından gönderilir. GCaMP5 ve mCherry proteinlerin içinde belgili tanımlık kurt heyecanlı 470 kullanarak nm (mavi oklar) ve 590 nm (sarı ok) ışık yayan diyot (LED). Yayılan GCaMP5 (Yeşil ok) ve mCherry (turuncu oklar) floresan kızılötesi ışık ile birlikte bir çok bantlı dikroik aynadan geçirir ( Tablo malzemelerigörmek). Bir 80/20 kiriş-splitter 0,63 x demagnifer yakalama için aracılığıyla ışık % 20'si bir kızılötesi duyarlı CMOS fotoğraf makinesi (mor ok) gönderir. Kalan % 80'i ışığa GCaMP5 ayıran bir resim splitter mikroskop yan-bağlantı noktasından gönderilir ve mCherry floresan üzerine ayrı bir sCMOS kamera yarısı kızılötesi aydınlık alan ışık kaldırılırken. Her ikisi fotoğraf makinesi verilerden bir PC'ye USB3 kablolar aktarılır. Floresan sCMOS kamera (mavi) tetikleyici bağlantı noktaları göndermek için kullanılır + 5V TTL LED aydınlatma sistemi, kızılötesi aydınlık alan CMOS kamera ve dijital satın alma aygıt (DAQ) tetikler. (B) tetikleyici 3 TTL sinyalleri dijital pin #8 adlı DAQ tarafından algılanan ve PC USB bağlantısı üzerinden gönderilen çıktı. Bu Dijital Giriµ tetikleyen bir ' nerede XY' X ve Y konumu yakalanan her GCaMP5/mCherry floresan/kızılötesi görüntü için sahne okur Bonsai yazılım komut dosyasından (XY sahne final) seri komut. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56911/56911fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56911/56911fig3.jpg"> Şekil 3 : Bonsai seri-sahne iletişim komut dosyası XY sahne final yerleşimini. Üst DigitalInput düğümü (pembe) TTL Tetikleyicileri DAQ pin #8 gelen okur. Her pozitif TTL gerilim (yeşil) için DAQ bir zaman damgası (mavi) yapar ve seri bağlantı noktası (gri) ile sahne alanı denetleyicisine 'Nerede XY?' dizeyi (pembe) yazar. SerialStringRead düğümü (pembe) X ve Y Koordinat yanıt sahne alanı denetleyicisinden okur. Bu dize sonra mikron dönüştürülür ve içine ayrılır X ve Y koordinatları sahne. Son olarak, bu dört akarsu bir ZIP düğüm (mavi) kullanılarak birleştirilir ve dört column.csv dosyası yazılır: TTL sinyalleri (aralığı düğümü, pembe) alınan çerçeve sayısı, X ve Y koordinatları ve sonraki timepoints arasındaki aralığı (genellikle ~ 50 ms zaman kayıt 20 Hz). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56911/56911fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56911/56911fig4.jpg"> Şekil 4 : HSN Floresans ve yumurta atarken davranış sırasında bütün hayvan aydınlık alan temsilcisi filmler. (A-D) GCaMP5 ve mCherry floresan HSNs hemen önce yumurta yayın içinde aynı anda ratiometric görüntüleme. HSN presynaptic termini ok uçları ile gösterilir. (C) birleştirme, GCaMP5 ve mCherry floresan. (D) yoğunluk modülasyonlu GCaMP5:mCherry oranı; yüksek bir oranı (kırmızı) yüksek intrasellüler Ca2 + presynaptic terminus adlı gösterir. (E) aydınlık alan görüntü tüm solucanın sonra sadece yumurta bırakırlar. Ok uçları içinden yumurta koyulur vulva anterior ve posteiror yarısını gösteriyor. Ölçek çubuğu tüm resimler için olduğunu 50 µm. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56911/56911fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56911/56911fig5.jpg"> Şekil 5 : HSN Ca2 + ve hareket hızını yumurta atarken davranış sırasında kayıt. (A)GCaMP5:mCherry oranı değişiklikleri yanıt olarak intrasellüler Ca2 + geçişler (ΔR/R; kırmızı) anlık solucan hız (µm/s; mavi) ile birlikte izleri. Olaylar yumurta atarken ok uçları tarafından belirtilir. HSN GCaMP5 floresan (yeşil; ΔF/F), mCherry floresan (kırmızı; ΔF/F), GCaMP5:mCherry floresan oranı (siyah; ΔR/R) ve solucan (B) izleri (mavi) yumurta serbest bırakmak an hız. (C) kayma organizasyonu yumurta döşeme ve hareket davranışları tüm 10dk kayıt sırasında. Solucan parça bağlanmış olan mCherry floresan kaydından alınan HSN centroid konumunu XY sahne bilgilerden elde edildi. HSN geçişler (kırmızı daireler) zamanlaması, olaylar (siyah ok uçları), yumurta döşeme ve başlangıç ve bitiş kayıt (yeşil ve mavi elmas) gösterilir. Ölçek çubuğu olduğunu 1 mm. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56911/56911fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Bu iletişim kuralı Caenorhabditis elegans solucanlar davranışlar içinde sinirsel aktivite içinde genetik olarak kodlanmış Ca2 + gazetecilere kayıt değişiklikleri açıklar.

Ratiometric kalsiyum görüntüleme Caenorhabditis Elegans davranışlar içinde bireysel nöronların

It has become increasingly clear that neural circuit activity in behaving animals differs substantially from that seen in anesthetized or immobilized ...

Bu prosedürün genel amacı, hermafrodit spesifik nöronun veya HSN aktivitesinin Caenorhabditis elegans davranışı üzerindeki etkilerinin Oransal Kalsiyum Görüntülemesini gerçekleştirmektir. Bu yöntem, Davranışsal Sinirbilim alanında, hayvanlar davranışsal durumlar arasında geçiş yaparken nöro devre aktivitesinin hayvan davranışlarında nasıl değişiklikler ürettiğine dair temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir. Bu teknik, hücre içi kalsiyum aktivitesindeki değişikliklerin yüksek sinyal-gürültü oranıyla kaydedilmesine izin verirken, aynı zamanda hayvan davranışını ve hareketini de izler.Bu yöntem C.elegans'taki nöronal aktivite hakkında bilgi sağlayabilse de, Drosophila larvaları ve Zebra balıkları dahil olmak üzere diğer şeffaf model sistemlere de uygulanabilir. Prosedürü benimle birlikte gösterecek olan Collin's Labs Öğrencileri: Richard Kopcock, Pravat Dhakal ve Layla Nassar. Hayvanları monte etmek için, önce tohumlanmış bir nematod büyüme ortamı agar plakasından OP50 bakteriyel gıdayı bir platin solucan penasının dibine uygulayın ve hassas kalsiyum raportörü GCaMP5 ve HSN'deki mCherry'yi eksprese eden hayvanlar için yaklaşık 20 geç L dört LX 2, 000'i N-L üç P promotöründen tohumlanmış bir nematod büyüme ortamı plakasına aktarmak için kazmayı kullanın.Gelişmekte olan vulvanın varlığını stereo mikroskop altında beyaz bir hilal ile çevrili net bir karanlık nokta olarak onaylayın ve solucanları 24-40 saat boyunca 20 santigrat derecede inkübe edin. Kuluçka süresinin sonunda, OP50'yi yeni bir penaya uygulayın ve üç solucanı, görüntüleme sırasında solucanların beslenmesi için yeni tabakta küçük bir porsiyon yiyecek bırakarak tohumlanmamış bir nematod büyüme ortamı plakasına aktarın. Daha sonra, tohumlanmamış plakadan 20 x 20 milimetrelik bir parça kesmek için düz yuvarlak bir spatula kullanın ve parçayı, solucan tarafı aşağı bakacak şekilde, 24 x 60 milimetre numaralı 1.5 lamel temiz bir kenarına yerleştirin.Ardından, agar yığınını dikkatlice kapak fişinin ortasına kaydırın ve yapışmayı ve buharlaşmayı azaltmak için agar parçasının üzerine 22 x 22 milimetre bir numaralı bir kapak fişi yerleştirin. Görüntüleyiciyi kurmak için, solucanları ters çevrilmiş bir mikroskop tablasına yerleştirin ve 20x subjektif olanı seçin. Görüntüleme için bir solucan seçmek için dürbün göz merceklerini kullanın ve kızılötesi filtreyi kaydırın ve kondansatörün üzerine yerleştirin.Uygun bir video analiz programı açın ve seri aşama XY aşaması son iletişim komut dosyasını çalıştırın. CsvWriter'a tıklayın ve kaydedilen X ve Y aşama bilgilerini kaydetmek için bir klasör seçin. Ardından, dijital satın alma aygıtını başlatmak için yeşil ok başlığına tıklayın.Kızılötesi kamera kayıt yazılımında ayarlar altında, Kamera Kontrol İletişim Kutusunu Aç/Kapat'ı seçin. Ardından Özel Video Modları menüsünü seçin ve Mod 1 ile Piksel Formatı Ham sekiz'i seçin. Tetik Vuruşu altında, Tetik Giriş Satırı'nı üçe, Polarite'yi yüksek ve Modu 14'e ayarlayın.Floresan kameradan voltaj tetikleme sinyali alınana kadar kare alımını durdurmak için Etkinleştir'i açın. Görüntü görüntüleme penceresi açıkken, Kaydet'i tıklatın ve görüntü dizilerinin kaydedileceği klasörü seçin. Tamponlu Kayıt Modu'nu seçin ve görüntüleri JPEG formatında kaydedin.Ardından, tıklayın Kayda başla edinmeyi başlatmak için. Ardından, Florescence Acquisition Yazılımındaki Capture sekmesini açın ve pozlama süresini 10 milisaniyeye, Binning'i dört X'e ve Görüntü Derinliğini 16 bit olarak ayarlayın. 512 piksel genişliğinde ve 256 piksel yüksekliğinde ortalanmış bir kamera Alt Dizisi seçin.Program, ayrı floresan kanalları oluşturmak için geniş görüntüyü otomatik olarak ikiye bölecektir. Çıkış Tetikleyici Seçeneklerini Göster'e tıklayın ve tüm tetikleyicileri pozitif olarak ayarlayın. Birinci ve ikinci tetikleyicinin Pozlama olarak ayarlandığını ve üçüncü tetikleyicinin 25 milisaniyelik bir süre ile Programlanabilir olarak ayarlandığını onaylayın.Ardından, sıra sekmesi altında, Tarama Ayarları altında Hızlandırılmış Çekim'i seçin, görüntüleri 20 hertz'de toplamak için Alan Gecikmesi'ni bir ila 50 milisaniye arasında ayarlayın. Geçici Arabelleğe kaydet'i seçin. Ratiometric Calcium Imaging için, Sıra sekmesi altında, kayda başlamak ve ilgilenilen hücrelerin ve sinapsların görüş alanının merkezinde odakta tutarak joystick ile solucanı izlemek için Başlat'a tıklayın.Floresan kaydı başladığı anda, senkronize görüntüleri ve sahne konumunu toplamaya başlayan bekleyen parlak alan kamerasına ve sahne kontrolörüne tetikleyiciler gönderilir. Her kanalın piksel istatistiklerini göstermek için Histogram penceresindeki İstatistikler düğmesini tıklayın. LED gücünü, arka plan üzerinde yaklaşık 12 bit dinamik aralık veren kırmızı kanalda 8.000'e eşit veya daha büyük presinaptik terminalde maksimum tek piksel mCherry floresan sağlayacak şekilde ayarlayın.Dinlenme veya düşük kalsiyum sırasında presinaptik terminaldeki Kalsiyum Raportör Sinyalleri yeşil kanalda yaklaşık 2.500 sayım olmalıdır. Bir yumurta yumurtlama aktif durumuna ulaşılana kadar davranışı kaydedin. Ardından, ilk yumurtlama olayından önce 6.000 kare ve sonra 6.001 kare içeren 10 dakikalık bir alt küme kaydedin.Solucan davranışının parlak alan görüntülerinin aynı alt kümesini ve X-Y aşaması konumunun zaman noktalarını tutmaya dikkat edin, aksi takdirde veri akışlarının kesin senkronizasyonu kaybolur. Görüntü Segmentasyonu için, görüntü dizilerini uygun bir Oransal Niceleme Yazılım Programına aktarın ve zaman serisini saniyede 20 kare ve piksel başına 1.25 mikrometre olarak ayarlamak için dizi sekmesindeki zaman serisine sağ tıklayın. Araçlar menüsünde Oran'ı seçin, ardından Kanal A için mCherry'yi ve Kanal B için GCaMP5'i seçin ve her görüntü dizisinden arka planı çıkarmak için Hesapla'ya tıklayın.Oran kanalına bir gökkuşağı arama tablosu uygula'yı seçin ve oran rengini mCherry kanalının parlaklığıyla eşleştirmek için yoğunluk modülasyonlu bir oran kanalı oluşturmak için mCherry Kanalı'nı kullanın. İki kanalı oluşturmak için Oran'a tıklayın. Nesne bulma protokolü oluşturmak için, ölçümler sekmesi altındaki Yoğunluk aracını kullanarak Nesneleri Bul'u protokol bölmesine sürükleyin ve mCherry yoğunluk değerleri penceresini ayarlamak ve Nesneleri Bul'a gitmek için dişli çarkı tıklayın.Hücre gövdesinin ve presinaptik terminalin algılanmasına dikkat ederek arka planın üzerindeki iki standart sapmaya eşit veya daha büyük yoğunluk değerlerini seçin. mCherry kanalını hedefleyen ek filtreleri, yalnızca baş, kuyruk veya bağırsak çiçeklenme gibi istenmeyen nesneleri hariç tutmak için gerektiği kadar ekleyin. Ardından, Ölçümler menüsünü açın ve Ölçüm Öğesi Yap'ı seçin ve görüntü Niceleme Analizi Protokolünü yürütmek için tüm zaman noktalarını seçin.GCaMP5 ve mCherry floresan sinyallerinin aynı anda alınması, hayvan hareketi ve odağındaki değişiklikleri telafi eden bir piksel piksel oran kanalı oluşturmak için kullanılır. Her hayvan için, presinaptik hücre içi HSN kalsiyumundaki değişiklikler, yumurta salınımı ve hareket değişiklikleri dahil olmak üzere parlak alan görüntülemede belirgin olan davranışlarla ilişkilendirilebilir. Gerçekten de, yumurtlama aktif durumundan önce, sırasında ve sonrasında solucan hızında önemli farklılıklar gözlenebilir.Bir yumurtlama olayına yakınlaştırmak, yumurtlama olayından önce GCaMP5 çiçeklenmesinde güçlü bir değişiklik olduğunu ortaya koymaktadır. mCherry çiçeklenme nispeten değişmeden kalırken. Ek olarak, GCaMP5: mCherry oranındaki ölçülen değişiklikler, yumurta salınımından yaklaşık 4 saniye önce bir HSN kalsiyum geçişini açıkça göstermektedir.İlerleyen vulval kas kasılması, yumurta salınımı ile sona eren solucan hareketinde belirgin bir yavaşlamanın kanıtıdır. Ayrıca, solucanların az önce gösterildiği gibi görüntülenmesi ve izlenmesi, yiyecek arama, geçici HSM kalsiyum değişiklikleri ve yumurtlama yerine hareketten önce patlama ateşlemeye geçiş yapan HSN aktivitesinden kaynaklanan yumurtlama davranışının uzamsal organizasyonunun görselleştirilmesine olanak tanır. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik düzgün bir şekilde uygulanırsa bir veya iki saat içinde tamamlanabilir.Bu prosedürü denerken, görüntüleme adımları sırasında ilgilenilen hücrelere ve presinaptik terminallerine odaklanmayı unutmamak önemlidir. Bu prosedürü takiben, HSN'nin presinaptik stimülasyona nasıl yanıt verdiği ile ilgili ek soruları yanıtlamak için Optogenetik Aktivasyon gibi diğer yöntemler gerçekleştirilebilir. Bu teknik, Nörobilim alanındaki araştırmacıların C.elegans'ta yumurtlama devresi işlevini keşfetmelerinin yolunu açmıştır.Bu videoyu izledikten sonra, aktif Caenorhabditis elegans'ta HSN'nin Oransal Kalsiyum Görüntülemesinin nasıl yapıldığını iyi anlamış olmalısınız.

ratiometric-calcium-imaging-individual-neurons-behaving

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video, kalsiyum görüntülemenin arkasındaki kavramları tanıtır ve kalıplanmış agaroz kuyularında bulunan solucanların hızlandırılmış görüntülemesi için örnek bir protokol içerir.

Kalsiyum Görüntüleme: Canlı C. elegans'ta Nöral Aktiviteyi Görselleştirmek İçin Bir Yöntem

Bu video, genetik olarak kodlanmış floresan raportör proteinleri kullanarak Caenorhabditis elegans gibi davranan bireysel nöronlarda kalsiyum görüntüleme tekniğini göstermektedir. Hücre içi kalsiyum seviyelerini nöronal aktivite ve yumurtlama sırasındaki davranış değişiklikleri ile ilişkilendirmek için solucan hareketinin görüntülenmesinde ve nöronlardan gelen raportör floresan oranlarının ölçülmesinde yer alan adımları ana hatlarıyla belirtir.

Caenorhabditis elegans'ta Yumurtlama Davranışını Düzenleyen Bireysel Nöronlarda Kalsiyum Görüntüleme

Kaynak: Doser, R., et al. Nöronal Kalsiyum İşleminin In Vivo Hücre Altı Görüntülenmesi. J. Vis. Uzm. (2023)Bu video, transgenik Caenorhabditis elegans suşlarının ventral sinir kordonu nöronlarındaki hücre altı kalsiyum akışının in vivo görüntülemesini göstermektedir. İki farklı kalsiyum indikatörü kullanılır: bir suşta bir sitoplazmik indikatör ve diğerinde bir mitokondriyal indikatör kullanılır. Nöronlar, nöronal sitoplazma ve mitokondri içindeki floresan yoğunluğundaki gerçek zamanlı...

Caenorhabditis elegans Nöronlarında Hücre Altı Kalsiyum Dinamiğinin Görüntülenmesi

Onun küçük şeffaf gövde, iyi belgelenmiş nöroanatomi ve müsait genetik teknikler ve reaktiflerin bir dizi...

C. vivo Nöronal Kalsiyum Imaging&#39;de elegans

Hayvanın hareketsiz hale getirilmeden uzun zaman ölçeklerinde davranışı ve nöral aktiviteyi görüntülemek, davranışı anlamak için bir ön koşuldur. Agaroz mikroakışkan odacıkların görüntülenmesi (), Caenorhabditis elegans'ın tüm yaşam evreleri için nöral aktivite ve davranışı görüntülemek için kullanılabilir.

Uzun süreli Kalsiyum Görüntüleme için Agaroz microchambers<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Bu yöntem çift optogenetik ve genetik olarak kodlanmış kalsiyum sensörleri görüntü bazal sitosolik kalsiyum düzeyleri ve model organizma C. elegansvücut duvarı kasları uyarılmış kalsiyum geçici değişiklikler için bir yol sağlar.

In Vivo Kalsiyum Görüntüleme C. elegans Vücut Duvar Kasları

Burada iyi kontrol edilen, lokalize olmayan titreşime sahip serbestçe davranan Caenorhabditis elegans'ta kalsiyum görüntüleme için bir sistem bildirilmiştir. Bu sistem, araştırmacıların nano ölçekli yer değiştirmede iyi kontrol edilen özelliklere sahip lokalize olmayan titreşimleri uyandırmalarını ve C. elegans'ın titreşimlere tepkileri sırasında kalsiyum akımlarını ölçmelerini sağlar.

İyi Kontrollü, Lokalize Olmayan Titreşimli Serbest Davranan Caenorhabditis elegans'ta Kalsiyum Görüntüleme

Mevcut yöntemler, kolayca bulunabilen genetik olarak kodlanmış kalsiyum göstergelerini kullanarak Caenorhabditis elegans'ta in vivo olarak yüksek çözünürlüklü, sub-kompartmanlı kalsiyum görüntüleme için orantılı olmayan bir yaklaşımı tanımlamaktadır.

Nöronal Kalsiyum Kullanımının In Vivo Subsellüler Görüntülemesi

Biz büyük ölçekli birden çok tek birimlerinin kayıt ve silikon sondalar ile kemirgenlerde davranan yerel alanda potansiyel yöntemleri açıklanmaktadır. Sürücü imalat, sürücü ve prob implantasyon süreçleri prob eki kolay çoğaltma için yeterli ayrıntıları gösterilmiştir.

Kemirgenler davranmak yılında Hareketli Silikon Problar tarafından Nöronlar Büyük ölçekli Kaydı

Bu protokol, biz görüntüleme Ca son gelişmeleri...

Hipotalamik Fare Beyin Dilimleri GFP etiketli Nöronlar in Görüntüleme Kalsiyum Cevapları

Öğrenin davranış halindeki Caenorhabditis elegans'ta HSN nöronlarının orantılı kalsiyum görüntüleme yöntemini. Bu teknik, davranışsal nörobilimde sinir devre aktivitesi ile hayvan davranışı arasındaki ilişkiyi incelemek için kullanılır.

Ratiometric kalsiyum görüntüleme Caenorhabditis Elegans davranışlar içinde bireysel nöronların

Daha fazla video keşfet